WO2011125674A1

WO2011125674A1 - アフィニティークロマトグラフィー用充填剤

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Publication number: WO2011125674A1
Application number: PCT/JP2011/057886
Authority: WO
Inventors: 田守　功二; 毅由安陪; 友亮岡野; 昌輝籾山; 川井　洋; 慧日向寺; 知範塩谷; 和弘一久; 勇王
Original assignee: Jsr株式会社
Priority date: 2010-03-31
Filing date: 2011-03-29
Publication date: 2011-10-13
Also published as: KR20130018256A; JPWO2011125674A1; US20130085199A1; JP5998050B2; US9162161B2

Abstract

　タンパク質の動的結合容量が高く、しかも耐アルカリ性および保存安定性に優れるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を提供する。本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤は、（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体　４０～９９．５質量部、（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体　０．５～３０質量部、（Ｍ－３）（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体　０～５９．５質量部、ならびに（Ｍ－４）（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体　０～２５質量部（但し、（Ｍ－１）、（Ｍ－２）、（Ｍ－３）および（Ｍ－４）の合計は１００質量部である。）の共重合体からなる多孔質粒子と、前記共重合体に含まれるエポキシ基を開環させて得られる開環エポキシ基と、前記多孔質粒子に結合したリガンドとを含むことを特徴とする。

Description

アフィニティークロマトグラフィー用充填剤

　本発明は、タンパク質の動的結合容量が高く、しかも耐アルカリ性に優れた、タンパク質精製に有用なアフィニティークロマトグラフィー用充填剤に関する。特に、抗体精製などに有用な特定のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤に関する。

　アフィニティークロマトグラフィーは、モノクローナル抗体を含めたタンパク質の研究、開発および製造において重要な役割を担っている。アフィニティークロマトグラフィー用充填剤は一般的に、標的分子と選択的に結合するリガンドを有する固相担体を含む。アフィニティークロマトグラフィーは、固相担体上のリガンドが標的分子に対して高い選択性を有するために、イオンクロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、逆相液体クロマトグラフィーなどの他のクロマトグラフィーに比べて、優れた収率および高速で経済的な精製が可能となる。

　一般に、タンパク精製用のアフィニティークロマトグラフィーでは、繰り返して行われる精製工程における洗浄に水酸化ナトリウム水溶液などの強アルカリ水溶液が用いられるので、アフィニティークロマトグラフィー用充填剤には高い耐アルカリ性が要求される。特にプロテインＡのようなタンパク質をリガンドとしたアフィニティークロマトグラフィー用充填剤では、強アルカリ水溶液による洗浄や保存中に、タンパク質リガンド自体の劣化やタンパク質リガンドと固相担体上の残存反応基との反応劣化が進む場合があるため、耐アルカリ性と保存安定性の向上が求められる。分析用クロマトグラフィーなどで汎用的なシリカ系の充填剤は、強アルカリ水溶液に溶解してしまうために、繰り返して使用するタンパク質精製用のアフィニティークロマトグラフィーには使用できない。

　こうしたなか、アフィニティークロマトグラフィー用充填剤の固相担体として、高い親水性を有し、リガンドの活性が高く、標的分子に対する動的結合容量が高いアガロース粒子の使用が提案されている（特許文献１、２）。

　他のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤の固相担体としては、耐アルカリ性に優れたスチレン－ジビニルベンゼンの共重合体からなる多孔質粒子の使用が提案されている（特許文献３、４）。

　一方、水酸基含有メタクリレート系ビニル単量体の重合体からなる多孔質粒子をクロマトグラフィーに用いる例はあったものの、これらはいずれも分析を目的としたゲル濾過クロマトグラフィー、逆相液体クロマトグラフィーのみに適合するものである（特許文献５、６）。

特表２００８－５２３１４０号公報特表２００９－５２２５８０号公報特開平０８－２７８２９９号公報特表平１０－５０１１７３号公報特開２００２－２３９３８０号公報特許第３３１６９１５号明細書

　しかしながら、アガロース粒子は、一般に弾性率が低いため、高速で媒体を流したときにカラムの圧力が高くなるという欠点を有している。また、アガロース粒子は、一般に、天然の海草から長く複雑な工程を経て製造されるために、一定の品質のものが得られにくい。一方、スチレン－ジビニルベンゼンのようなビニル単量体の共重合体からなる多孔質粒子は、一般に耐アルカリ性に優れるが、親水性が低いために、リガンドの活性が低く、標的分子に対する動的結合容量が低いという欠点を有する。さらに、従来のようなゲル濾過クロマトグラフィーや逆相液体クロマトグラフィーに用いられていた水酸基含有架橋性ビニル単量体の重合体からなる多孔質粒子は、アフィニティークロマトグラフィー用充填剤としての高い動的結合容量と保存安定性の両立を達成できるものではない。

　そこで、本発明は、特定のビニル単量体を用いた重合体からなる多孔質粒子と、前記多孔質粒子に結合するリガンドとを含むことにより、タンパク質の動的結合容量が高く、しかも耐アルカリ性および保存安定性に優れたアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を提供する。

　本発明の一態様に係るアフィニティークロマトグラフィー用充填剤は、
　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体　４０～９９．５質量部
　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体　０．５～３０質量部、
　（Ｍ－３）（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体　０～５９．５質量部、ならびに
　（Ｍ－４）（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体　０～２５質量部（但し、（Ｍ－１）、（Ｍ－２）、（Ｍ－３）および（Ｍ－４）の合計は１００質量部である。）
の共重合体からなる多孔質粒子と、
　前記共重合体に含まれるエポキシ基を開環させて得られる開環エポキシ基と、
　前記多孔質粒子に結合したリガンドと
を含む。

　上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤において、前記リガンドが、耐アルカリ性のイムノグロブリン結合性タンパク質であってもよい。

　上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤において、（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体が下記一般式（Ａ）で示される単量体であってもよい。
　　Ｈ_２Ｃ＝Ｃ（ＣＨ_３）Ｃ（＝Ｏ）ＯＣＨ_２ＣＨ（ＯＨ）－Ｒ　・・・（Ａ）
　（式中、Ｒは水素原子または１価の有機基を示す。）

　この場合、上記一般式（Ａ）におけるＲがヒドロキシメチル基またはメタクリロイルオキシメチル基であってもよい。

　上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤において、前記多孔質粒子の粒子径が３５～１００μｍであってもよい。

　本発明の別の一態様に係るイムノグロブリンを単離する方法は、
　上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤を用いて、前記充填剤にイムノグロブリンを吸着させる工程、
　前記イムノグロブリンを溶出させる工程、および
　前記充填剤をアルカリ性液で洗浄する工程
を含む。

　本発明の別の一態様に係るカラムは、上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤が充填されたアフィニティークロマトグラフィー用充填カラムである。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤によれば、タンパク質の動的結合容量が高く、しかも耐アルカリ性および保存安定性に優れる。また、上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤を、例えばイムノグロブリンの精製に用いた場合、繰り返し使用してもイムノグロブリンの動的結合容量が低下しにくいため、安価なイムノグロブリン精製が可能となる。

図１は、本発明の実施例１で調製されたイムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰ４Ｚ）のアミノ酸配列を示す図である。図２は、発現ベクター（ｐＥＴＭ－１１）に挿入された、本発明の実施例１に係るイムノグロブリン結合タンパク質をコードするＤＮＡフラグメントの構成を説明する図である。図３は、本発明の実施例２で調製されたイムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰＡＴＫ）のアミノ酸配列を示す図である。図４は、発現ベクター（ｐＥＴＭ－１１）に挿入された、本発明の実施例２に係るイムノグロブリン結合タンパク質をコードするＤＮＡフラグメントの構成を説明する図である。

　以下、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤について、具体的に説明する。

　１．アフィニティークロマトグラフィー用充填剤
　１．１．多孔質粒子の構成
　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を構成する多孔質粒子は、
　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体　４０～９９．５質量部、
　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体　０．５～３０質量部、
　（Ｍ－３）（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体　０～５９．５質量部、ならびに
　（Ｍ－４）（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体０～２５質量部（但し、（Ｍ－１）、（Ｍ－２）、（Ｍ－３）および（Ｍ－４）の合計は１００質量部）の共重合体からなり、該共重合体に含まれるエポキシ基を開環させて得られる開環エポキシ基を有する。ここで、多孔質粒子は、リガンド結合前の担体粒子をいう。

　１．１．１．（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を有するビニル単量体
　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体は、１分子中に、１個以上のメタクリロイル基と、１個以上の水酸基とを有し、エポキシ基を含有しないビニル単量体である。（Ｍ－１）を特定量用いて、多孔質粒子を親水化し、これを含むことにより、タンパク質の動的結合容量が高く、しかも耐アルカリ性に優れたアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を得ることが出来る。

　以下、（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体として、（Ｍ－１－１）１分子中に１個のメタクリロイル基を有する水酸基含有非架橋性ビニル単量体と、（Ｍ－１－２）１分子中に２個以上のメタクリロイル基を有する水酸基含有架橋性ビニル単量体とに分けて説明する。

　（Ｍ－１－１）１分子中に１個のメタクリロイル基を有する水酸基含有非架橋性ビニル単量体としては、例えば、グリセロールモノメタクリレート、トリメチロールエタンモノメタクリレート、トリメチロールプロパンモノメタクリレート、ブタントリオールモノメタクリレート、ペンタエリスリトールモノメタクリレート、ジペンタエリスリトールモノメタクリレート、イノシトールモノメタクリレート、ヒドロキシエチルメタクリレート、ヒドロキシプロピルメタクリレート、ヒドロキシエチルメタクリルアミド、ポリエチレングリコールメタクリルエステルなどが挙げられる。これらの中でも、式（Ａ）で示される単量体が好ましい。

　Ｈ_２Ｃ＝Ｃ（ＣＨ_３）Ｃ（＝Ｏ）ＯＣＨ_２ＣＨ（ＯＨ）－Ｒ　・・・（Ａ）
　（式中、Ｒは水素原子または１価の有機基を示す。）

　一般式（Ａ）において、Ｒがメタクリロイル基を有さない１価の有機基である場合、１～８個の炭素原子を有する有機基であるのが好ましい。好ましい（Ｍ－１－１）としては、グリセロールモノメタクリレート、２－ヒドロキシエチルメタクリレート、２－ヒドロキシプロピルメタクリレートなどが挙げられ、Ｒがヒドロキシメチル基に相当するグリセロールモノメタクリレートが最も好ましい。

　（Ｍ－１－２）１分子中に２個以上のメタクリロイル基を有する水酸基含有架橋性ビニル単量体としては、各種糖類の２置換以上のメタクリレート、多価アルコールのメタクリレート、または、多価アルコールのメタクリルアミドが好ましい。具体的には、グリセリンジメタクリレート、トリメチロールエタンジメタクリレート、トリメチロールプロパンジメタクリレート、ブタントリオールジメタクリレート、ペンタエリスリトールジメタクリレート、ペンタエリスリトールトリメタクリレート、ジペンタエリスリトールジメタクリレート、ジペンタエリスリトールトリメタクリレート、ジペンタエリスリトールテトラメタクリレート、ジペンタエリスリトールペンタメタクリレート、イノシトールジメタクリレート、イノシトールトリメタクリレート、イノシトールテトラメタクリレートなどが挙げられる。その他、各種糖類の２置換以上のメタクリレート、例えば、グルコースジメタクリレート、グルコーストリメタクリレート、グルコーステトラメタクリレート、マンニトールジメタクリレート、マンニトールトリメタクリレート、マンニトールテトラメタクリレート、マンニトールペンタメタクリレートなども挙げられる。さらに、ジアミノプロパノール、トリスヒドロキシメチルアミノメタン、グルコサミンなどの多価アミノアルコールとメタクリル酸との脱水縮合反応物と同様の構造を有する水酸基含有架橋性ビニル単量体なども挙げられる。

　中でも、式（Ａ）に該当する化合物がより好ましい。
　一般式（Ａ）において、Ｒは、１～８個の炭素原子を有する有機基であるのが好ましい。このような（Ｍ－１－２）としては、Ｒがメタクリロイルオキシメチル基に相当するグリセリンジメタクリレートが最も好ましい。

　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体の使用量は、共重合体を構成する全単量体１００質量部のうち、４０～９９．５質量部、好ましくは４５～９５質量部である。（Ｍ－１）が４０質量部未満であると、リガンドの活性が低くなるためタンパク質の動的結合量が低くなり、９９．５質量部を超えると、（Ｍ－２）が０．５質量部未満となることから、リガンドの結合量が減ってタンパク質の動的結合量が低くなる。なお、（Ｍ－１）として、（Ｍ－１－１）と（Ｍ－１－２）とを併用してもよいが、（Ｍ－１－１）のみ用いるのが好ましい。

　１．１．２．（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体
　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体は、１分子中に、１個以上の重合性ビニル基（エチレン性不飽和結合を有する基）と、１個以上のエポキシ基とを有する単量体である。エポキシ基含有ビニル単量体は、得られる共重合体からなる多孔質粒子に適切な量のエポキシ基を導入し、適切なリガンド結合量を得るための必須成分である。

　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体としては、１分子中に、１個の重合性ビニル基と、１個のエポキシ基を有する単量体が工業的に容易に入手できる。このようなエポキシ基含有ビニル単量体としては、例えば、グリシジル（メタ）アクリレート、４－ヒドロキシブチル（メタ）アクリレートグリシジルエーテル、３，４－エポキシシクロヘキシルメチル（メタ）アクリレート、α－（メタ）アクリル－ω－グリシジルポリエチレングリコール等の（メタ）アクリル酸エステル類；ビニルベンジルグリシジルエーテル等の芳香族ビニル化合物；アリルグリシジルエーテル、３，４－エポキシ－１－ブテン、３，４－エポキシ－３－メチル－１－ブテン等が挙げられ、グリシジルメタクリレート、４－ヒドロキシブチルアクリレートグリシジルエーテルが好ましく、グリシジルメタクリレートが特に好ましい。

　そのほか、（Ｍ－２）として、水酸基とエポキシ基とを含有する、メタクリロイル基を含有するビニル単量体を使用することもできる。このような単量体としては、例えば、グリセリンモノメタクリレートグリシジルエーテル、ペンタエリスリトールジメタクリレートグリシジルエーテルなどが例示できる。

　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体の使用量は、共重合体を構成する全単量体１００質量部のうち、０．５～３０質量部、好ましくは１～２０質量部である。（Ｍ－２）が０．５質量部未満であると、リガンドの結合量が減ってタンパク質の動的結合量が低くなり、３０質量部を超えると、保存中にリガンドの活性が低くなってタンパク質の動的結合量が低くなる。

　１．１．３．（Ｍ－３）上記（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体
　（Ｍ－３）上記（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体としては、具体的には、（Ｍ－３－１）１分子中に１個のメタクリロイル基を有する水酸基非含有非架橋性ビニル単量体と、（Ｍ－３－２）１分子中に２個以上のメタクリロイル基を有する水酸基非含有架橋性ビニル単量体とが挙げられる。以下、各々に分けて説明する。

　（Ｍ－３－１）１分子中に１個のメタクリロイル基を有する水酸基非含有非架橋性ビニル単量体としては、精製時の夾雑タンパク質の非特異吸着を防ぐ点から、非イオン性モノマーが好ましい。このような非イオン性モノマーとしては、例えば、メチルメタクリレート、エチルメタクリレート、ブチルメタクリレート、シクロヘキシルメタクリレート、メトキシエチルメタクリレートなどのメタクリレート類、メタクリルアミド、ジメチルメタクリルアミド、メタクリロイルモルホリン、ダイアセトンメタクリルアミドなどのメタクリルアミド類が挙げられる。なお、非イオン性モノマーであっても、２－エチルヘキシルメタクリレート、ステアリルメタクリレートのような疎水性メタクリレートは、精製時の夾雑タンパクの非特異吸着を増加させる場合があるので、好ましくない。

　（Ｍ－３－２）１分子中に２個以上のメタクリロイル基を有する水酸基非含有架橋性ビニル単量体としては、例えば、エチレングリコールジメタクリレート、ジエチレングリコールジメタクリレート、トリエチレングリコールジメタクリレート、テトラエチレングリコールジメタクリレート、プロピレングリコールジメタクリレート、ジプロピレングリコールジメタクリレート、トリプロピレングリコールジメタクリレート、テトラプロピレングリコールジメタクリレート、１，４－ブタンジオールジメタクリレート、１，６－ヘキサンジオールジメタクリレート、トリメチロールプロパントリメタクリレート、ペンタエリスリトールテトラメタクリレートなどが挙げられる。比較的少量の使用で良好な多孔性が得られ、（Ｍ－１）の使用量を制限することが少ない点で、トリメチロールプロパントリメタクリレートが特に好ましい。

　（Ｍ－３）上記（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体の使用量は、共重合体を構成する全単量体１００質量部のうち、０～５９．５質量部、好ましくは０～５０質量部である。（Ｍ－３）が５９．５質量部を超えると、リガンドの活性が低くなってタンパク質の動的結合量が低くなる。

　１．１．４．（Ｍ－４）上記（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体
　（Ｍ－４）上記（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体は、上記（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外の残余のビニル単量体である。本発明の目的である高いタンパク質の動的結合量と優れた耐アルカリ性を阻害しない範囲で２５質量部以下の量で使用できる。（Ｍ－４）としては、非架橋性単量体として、エチレン、プロピレン、スチレン、酢酸ビニル、Ｎ－ビニルアセトアミドなどが挙げられ、架橋性単量体として、ジビニルベンゼン、ブタジエン、イソシアヌル酸ジアリル、イソシアヌル酸トリアリルなどが挙げられる。ジビニルベンゼンは、多孔質粒子の硬さを増し、クロマトグラフィーカラムの圧力を低下させるために有効な単量体である。（Ｍ－４）は、２５質量部を超えると、タンパク質の動的結合量が低下したり、耐アルカリ性が低下したりする。

　そのほか、好ましい共重合体を構成する単量体における好適な量比の具体例としては、
　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体　４５～９５質量部
　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体　１～２０質量部、
　（Ｍ－３）（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体　０～５０質量部、ならびに
　（Ｍ－４）（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体　０～２５質量部の共重合体（但し、（Ｍ－１）、（Ｍ－２）、（Ｍ－３）および（Ｍ－４）の合計は１００質量部である。）
が挙げられる。

　１．１．５．多孔質粒子の製造
　多孔質粒子は、公知のシード重合、懸濁重合などにより製造することができる。シード重合法として、特公昭５７－２４３６９号公報記載の二段膨潤重合法も好適に用いられる。重合に際しては、上記単量体の他、水、ポロジェンを必須成分とし、重合開始剤、高分子分散剤、界面活性剤、塩、シード粒子、水溶性重合禁止剤などを必要に応じて使用する。

　多孔質粒子の製造における好ましい重合法は、
　上述の単量体混合物（（Ｍ－１）および（Ｍ－２）、ならびに必要に応じて（Ｍ－３）および／または（Ｍ－４））１００質量部と、
　（Ｐ－１）炭素数７～１４である直鎖状、分岐鎖状および環状のアルコール、エーテル、アルデヒド、ケトン、エステル、炭素数８～１０のアルキルベンゼンから選ばれる少なくとも１つのポロジェンと、を必須成分とする水系混合物の懸濁重合法である。

　このとき、さらに（Ｐ－２）として（Ｐ－１）以外のポロジェンを併用してもよい。ポロジェンの使用量は、好ましくはモノマー１００質量部に対して合計で１００～４００質量部である。（Ｐ－１）の使用量はポロジェンの合計量１００質量％中に１０質量％以上であることが好ましい。

　（Ｐ－１）のポロジェンを具体的に例示すると、
　アルコールとして、１－ヘプタノール、２－ヘプタノール、３－ヘプタノール、４－ヘプタノール、２，４－ジメチル－３－ペンタノール、５－メチル－２－ヘキサノール、２－エチル－１－ヘキサノール、２－オクタノール、３－オクタノール、５－メチル－３－ヘプタノール、１－ノナノール、３，５，５－トリメチルヘキサノール；
　エーテルとして、ヘキシルメチルエーテル、ジブチルエーテル、シネオール；
　アルデヒドとして、ヘプタナール、オクタナール、２－エチル－１－ヘキサナール、ノナナール、３，５，５－トリメチルヘキサナール、１－デカナール、ドデカナール；
　ケトンとして、２－ヘプタノン、３－ヘプタノン、４－ヘプタノン、２，４－ジメチル－３－ペンタノン、４，４－ジメチル－２－ペンタノン、５－メチル－２－ヘキサノン、２－オクタノン、３－オクタノン、５－メチル－３－ヘプタノン、２，６－ジメチル－４－ヘプタノン、２－ノナノン、３－ノナノン、４－ノナノン、３，３，５－トリメチルシクロヘキサノン、２－デカノン、３－デカノン、２－ウンデカノン、４－ｔ－ペンチルシクロヘキサノン、２－ヘキシルシクロペンタノン、２－ヘプチルシクロペンタノン、ジシクロヘキシルケトン；
　エステルとして、蟻酸ヘキシル、酢酸ペンチル、酢酸イソペンチル、プロピオン酸ブチル、プロピオン酸イソブチル、酪酸プロピル、酪酸イソプロピル、イソ酪酸プロピル、イソ酪酸イソプロピル、吉草酸エチル、イソ吉草酸エチル、ピバル酸エチル、ヘキサン酸メチル、酢酸ヘキシル、酢酸シクロヘキシル、酢酸－２－エチルブチル、プロピオン酸イソペンチル、酪酸ブチル、イソ酪酸ブチル、酪酸イソブチル、イソ酪酸イソブチル、吉草酸プロピル、イソ吉草酸プロピル、ヘキサン酸エチル、ヘプタン酸メチル、酢酸ヘプチル、プロピオン酸ヘキシル、酪酸ペンチル、酪酸イソペンチル、イソ酪酸ペンチル、イソ酪酸イソペンチル、吉草酸イソブチル、ヘキサン酸プロピル、ヘキサン酸イソプロピル、ヘプタン酸エチル、オクタン酸メチル、酢酸オクチル、酢酸イソオクチル、酢酸－２－エチルヘキシル、酪酸ヘキシル、酪酸シクロヘキシル、吉草酸ペンチル、イソ吉草酸イソペンチル、ヘキサン酸ブチル、ヘキサン酸イソブチル、オクタン酸エチル、ノナン酸メチル、酢酸ノニル、ヘキサン酸ペンチル、ノナン酸エチル、２－エチルヘキサン酸プロピル、３，５，５－トリメチルヘキサン酸エチル、デカン酸メチル、δ－ドデカノラクトン、酢酸デシル、デカン酸エチル、酢酸シトロネリル、ドデカン酸メチル、酢酸ドデシル、ドデカン酸エチル；
　アルキルベンゼンとして、キシレン、エチルベンゼン、クメン、ｎ－プロピルベンゼン、ｎ－ブチルベンゼン、ｔ－ブチルベンゼン、ｓｅｃ－ブチルベンゼン、ｉｓｏ－ブチルベンゼン、エチルトルエン、シメン、メシチレンなどが挙げられる。

　（Ｐ－１）のポロジェンとしては、親水性を阻害せず、リガンドの活性を高く維持できることから、アルコール、エーテル、アルデヒド、ケトン、エステルが好ましく、ケトン、エステルがさらに好ましく、炭素数７～１０のケトン、エステルが最も好ましい。

　（Ｐ－２）は（Ｐ－１）以外のポロジェンであり、多孔質粒子の細孔容積を調整するために加えても良い成分であり、２０℃における（Ｐ－２）の水への溶解度は２０％以下であることが好ましい。

　ポロジェンの構成として、（Ｐ－２）のポロジェン、すなわち炭素数７未満の直鎖および分岐のアルコール、エーテル、アルデヒド、ケトン、エステル、炭素数８未満のアルキルベンゼンを主成分とすると、タンパク質分離などに適した大きな細孔径とはならず、また、細孔容積が小さくなる場合がある。また、炭素数１４を超えるアルコール、エーテル、アルデヒド、ケトン、エステル、または、炭素数１０を超えるアルキルベンゼンを主成分とすると、細孔容積が小さくなるか、あるいは、多孔質でない微小な粒子が形成される場合がある。

　（Ｐ－１）を含むポロジェンの合計量は、上記単量体混合物１００質量部に対し、通常１００～４００質量部であり、好ましくは１５０～３００質量部である。ポロジェンの合計量が１００質量部未満であると、タンパク質分離などに適した大きな細孔径とはならず、また、細孔容積が小さくなる。ポロジェンの合計量が４００質量部を超えると、細孔容積が過大になるか、あるいは、多孔質でない微小な粒子が形成される。

　（Ｐ－１）はポロジェンの合計量１００質量％中に１０質量％以上であることが好ましく、２０質量％以上であることが好ましい。（Ｐ－１）がポロジェンの合計量中に１０質量％以下であると、細孔容積が小さくなることがある。

　懸濁重合における重合溶媒は、水である。水には、本発明の効果を損なわない範囲で、アルコール等の有機溶媒等が含まれていてもよい。水の量は、単量体全量１００質量部に対し、好ましくは２００～１００００質量部、より好ましくは５００～５０００質量部である。水の量が上記の範囲内であると重合中の粒子同士の合一が抑制され、粒径制御が容易であり、生産性に優れる。

　重合開始剤としては、過硫酸カリウム、過硫酸ナトリウム、過硫酸アンモニウムなどの過硫酸塩、過酸化水素、ｔ－ブチルハイドロパーオキサイド、ｔ－ブチルパーオキシマレイン酸、コハク酸パーオキサイド、２，２’－アゾビス〔２－Ｎ－ベンジルアミジノ〕プロパン塩酸塩などの水溶性開始剤；ベンゾイルパーオキサイド、ラウロイルパーオキサイド、クメンハイドロパーオキサイド、ジイソプロピルパーオキシジカーボネート、クミルパーオキシネオデカノエート、クミルパーオキシオクタノエート、ｔ－ブチルパーオキシ－２－エチルヘキサノエート、３，５，５－トリメチルヘキサノイルパーオキサイド、アゾビスイソブチロニトリル、アゾビスイソバレロニトリルなどの油溶性開始剤；有機パーオキサイドと亜硫酸ナトリウム、ロンガリット、アスコルビン酸ナトリウムなどの還元剤を併用したレドックス系開始剤などが使用でき、好ましくは油溶性開始剤または油溶性のレドックス開始剤であり、生産性の点からより好ましくは油溶性開始剤である。重合開始剤の量は、単量体全量１００質量部に対し、好ましくは０．０１～１０質量部、より好ましくは０．０５～５質量部である。これら重合開始剤は、水、単量体混合物あるいはポロジェンに溶解して重合系に供してもよいし、室温および加熱中の重合系に単独で添加してもよい。過硫酸塩など、重合中に酸性または塩基性を示す開始剤を使用し、かつ、エポキシ基の加水分解を防止する必要がある場合は、ｐＨを中性付近に維持する緩衝溶液中で懸濁重合することが好ましい。紫外線、電子線などを照射することにより開始剤を使用せずに懸濁重合することも可能であり、公知の光ラジカル開始剤を使用することも可能である。

　高分子分散剤としては、ケン化度８０～９５％のポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドンなどの水溶性ポリマーを使用することができる。

　界面活性剤としては、ドデシル硫酸ナトリウム、ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム、ポリオキシエチレンドデシルエーテル硫酸エステル塩などのアニオン性界面活性剤、ポリオキシエチレンアルキルエーテルなどの非イオン性界面活性剤などを使用することができる。

　塩としては、塩化ナトリウム、硫酸ナトリウム、炭酸ナトリウムなどが好適に使用できる。

　シード粒子としては、重量平均分子量１，０００～１００，０００程度のポリスチレン粒子、ポリアルキル（メタ）アクリレート粒子などを使用することができる。

　水溶性重合禁止剤としては、ヨウ化カリウムなどのヨウ化物塩、亜硝酸ナトリウムなどの亜硝酸塩、チオ硫酸ナトリウムなどのチオ硫酸塩、スルホン化ナフトヒドロキノンアンモニウム塩などの水溶性キノン化合物などが好適に使用できる。

　シード重合では、シード粒子の大きさと量、単量体の量、ポロジェンの量を調整することにより、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤として必要な粒径を有する多孔質粒子を得ることができる。懸濁重合では、高分子分散剤および界面活性剤の種類と量、攪拌速度、攪拌翼および重合容器の形状と大きさを調整することにより、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤として必要な粒径を有する多孔質粒子を得ることができる。

　多孔質粒子の細孔容積は、単量体とポロジェンとの比を変えることで調節することが公知である。他に、重合時に使用する塩や重合禁止剤の種類と量、重合温度などによっても多孔質粒子の細孔容積を調節することができる。アフィニティークロマトグラフィー用充填剤としての多孔質粒子の細孔容積は、リガンド結合前の多孔質粒子の細孔容積と、結合するリガンドの量によって調節することができる。

　重合の温度および時間は、レドックス系開始剤以外の開始剤を使用する場合、好ましくは４０～１００℃で３０分～２４時間、より好ましくは６０～９０℃で１～１０時間である。

　重合完結後、シード粒子および／またはポロジェンの良溶媒を用いて洗浄することが、後述のリガンドの結合が容易となる点から、好ましい。洗浄溶媒としては、アセトン、エタノール、イソプロピルアルコールなどが好適に使用できる。また、必要に応じて、洗浄の前後に、超音波分散機などを用いて、多孔質粒子を分散しても良い。さらに、デカンテーション、ろ過などの方法により、小粒子や粗大粒子を除去することが、圧力特性の向上やタンパク質などの動的結合容量の向上の点から好ましい。

　１．１．６．エポキシ基含有量
　リガンド結合前の多孔質粒子に含まれるエポキシ基は、リガンドを結合するための官能基であり、また、さらに開環後にアフィニティークロマトグラフィー用充填剤としての親水性向上の元となる官能基である。リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量は、好ましくは０．０５～２ｍｍｏｌ／ｇであり、さらに好ましくは０．０８～１．５ｍｍｏｌ／ｇであり、最も好ましくは０．１０～１．０ｍｍｏｌ／ｇである。リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量が０．０５ｍｍｏｌ／ｇ以上であると、リガンドの結合量が適度であり、タンパク質の動的結合容量の低下が抑制される。リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量が２ｍｍｏｌ／ｇ以下であると、保存中におけるリガンドの活性の低下が抑制され、タンパク質の動的結合容量の低下も抑制される。リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量は、多孔質粒子に塩酸（または、塩化物イオンを含む塩）を過剰に添加して塩酸を付加反応することによりエポキシ基を開環し、残余の塩酸を過剰量の塩基（例えば水酸化ナトリウム水溶液）で中和した後、残余の水酸化ナトリウムを塩酸で逆滴定することにより定量することが出来る。リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量は、エポキシ基含ビニル単量体の量、重合温度、重合時間、重合液のｐＨ、さらには、重合後の開環処理などによって、調整することが出来る。

　１．２．アフィニティークロマトグラフィー用充填剤の構成
　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤は、前記単量体の共重合体からなり、前記共重合体に含まれるエポキシ基を開環させて得られる開環エポキシ基を有する多孔質粒子と、前記多孔質粒子に結合するリガンドと、を含む。

　１．２．１．リガンド
　リガンドは、標的物に対して適度なアフィニティーを有するものであれば、その種類は特に限定されないが、例えば、プロテインＡ、プロテインＧ、アビジン等のタンパク質；インシュリン等のペプチド；モノクローナル抗体等の抗体；酵素；ホルモン；ＤＮＡ；ＲＮＡ；ヘパリン、ルイスＸ、ガングリオシド等の糖質；イミノジ酢酸、合成色素、２－アミノフェニル硼素酸、４－アミノベンズアミジン、グルタチオン、ビオチンやその誘導体のような低分子化合物を用いることができる。上記に例示したリガンドはその全体を用いてもよいが、リコンビナント、酵素処理等によって得られるそのフラグメントを用いてもよい。また、人工的に合成されたペプチドやペプチド誘導体であってもよい。

　イムノグロブリンの分離または精製に好適なリガンドとしては、例えばプロテインＡおよびプロテインＧであり、さらに好ましくはプロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインであり、最も好ましくはプロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインの末端に、４個以上の連続するヒスチジン単位を含むペプチドを付加したタンパク質であり、このようなタンパク質としては、例えば、後述する一般式（１）または一般式（２）で表されるイムノグロブリン結合タンパク質が挙げられる。

　なお、本発明において、「タンパク質」とは、ペプチド構造単位を有するあらゆる分子をいい、例えば、天然型タンパク質の部分的断片や天然型タンパク質のアミノ酸配列を人為的に改変した変異体を含む概念である。また、「イムノグロブリン結合ドメイン」とは、単独でイムノグロブリン結合活性を有するポリペプチドの機能単位を表し、「イムノグロブリン結合タンパク質」とは、イムノグロブリンに特異的な親和性を有し、かつ、「イムノグロブリン結合ドメイン」を含むタンパク質を表す。「イムノグロブリン結合」とはイムノグロブリン分子の相補性決定領域（ＣＤＲ）以外の領域、特にＦｃフラグメントに結合することを表す。本発明において、アフィニティークロマトグラフィーに関連して使用される用語「リガンド」とは、アフィニティークロマトグラフィーの標的物質と結合する分子のことを表す。

　１．２．２．イムノグロブリン結合ドメイン
　プロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインは、天然型のイムノグロブリン結合ドメインであってもよいし、または、組換え型のイムノグロブリン結合ドメインであってもよい。プロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインは、Ａドメイン、Ｂドメイン、Ｃドメイン、Ｄドメイン、Ｅドメイン、およびＺドメインから選ばれる少なくとも１種であることが好ましい。Ａドメイン、Ｂドメイン、Ｃドメイン、Ｄドメイン、およびＥドメインのアミノ酸配列は例えば、Ｍｏｋｓ　Ｔ，　Ａｂｒａｈｍｓ　Ｌ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃａｌ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｃｏｎｓｉｓｔｓ　ｏｆ　ｆｉｖｅ　ＩｇＧ－ｂｉｎｄｉｎｇ　ｄｏｍａｉｎｓ，　Ｅｕｒ　Ｊ　Ｂｉｏｃｈｅｍ．　１９８６，　１５６，　６３７－６４３のＦｉｇ．１に記載されている。該文献はこの参照により開示に含まれる。また、上記文献に記載された各ドメインのアミノ酸配列と７０％以上（好ましくは９０％以上）の相同性を有するアミノ酸配列からなるタンパク質も、本発明におけるプロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインとして使用することができる。

　組換え型のイムノグロブリン結合ドメインは、イムノグロブリン結合活性において、改変前のイムノグロブリン結合ドメインと同等のものとして扱うことができ、例えば、天然型のプロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインのアミノ酸配列と７０％以上（好ましくは９０％以上）の相同性を保持することが好ましい。具体例としては、ニルソン・ビー（Ｎｉｌｓｓｏｎ　Ｂ．）他、プロテイン・エンジニアリング（Ｐｒｏｔｅｉｎ　ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ）、１９８７年、第１巻、２号、１０７－１１３頁に記載されているＺドメイン（配列番号１）、Ｈｏｂｅｒ　Ｓらによる米国特許出願２００６／０１９４９５５Ａ１に記載されているアルカリ耐性を有するＺドメインの変異体（ｍｕｔａｎｔ）が挙げられる。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤に用いられるリガンドは、複数の同一または異なる種類のイムノグロブリン結合ドメインを有していてもよい。

　例えば、上記リガンドは、プロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインとして、（Ｄドメイン－Ａドメイン）ｎ（ここで、ｎは１以上の整数（好ましくは１～６）を示し、ＤドメインとＡドメインとの間には任意のアミノ酸配列が存在していてもよい。）、すなわち、ＡドメインおよびＤドメインを含む繰り返し単位を含むものであってもよい。また、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤は使用時にアルカリ水溶液に接触する機会を有するため、上記リガンドは、プロテインＡのＺドメインを含む繰り返し単位を含むものであってもよい。

　また、本発明において、リガンドは、上記各ドメイン、またはそのフラグメントもしくは変異体を、単独でまたは組み合わせて２個以上含むことができる。

　本発明において、イムノグロブリン結合ドメインのフラグメントとは、当該ドメインのアミノ酸配列の一部を有するものであり、且つイムノグロブリン結合活性を有するものをいう。好ましくは、イムノグロブリン結合ドメインのフラグメントとは、当該ドメインのアミノ酸配列と９０％以上、より好ましくは９５％以上の配列同一性を有し、且つイムノグロブリン結合活性を有するものをいう。また本発明において、イムノグロブリン結合ドメインの変異体とは、好ましくは当該ドメインのアミノ酸配列と９０％以上、より好ましくは９５％以上の配列同一性を有し、且つイムノグロブリン結合活性を有するものをいう。

　例えば、本発明に用いられるリガンドは、Ｚドメイン、またはそのフラグメントもしくは変異体から選ばれる少なくとも１個を含むことができる。Ｚドメインについては、ニルソン・ビー（Ｎｉｌｓｓｏｎ　Ｂ．）他、プロテイン・エンジニアリング（Ｐｒｏｔｅｉｎ　ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ）、１９８７年、第１巻、２号、１０７－１１３頁）に記載されている。

　また、本発明において、リガンドは、Ｚドメイン、またはそのフラグメントもしくは変異体を単独でまたは組み合わせて２個以上（好ましくは４～１０個）含むことができる。

　Ｚドメインの変異体としては、例えば、特許第４３９１８３０号に記載された配列を有するタンパク質が挙げられる。例えば、特許第４３９１８３０号の請求項１には、配列番号１で規定される２以上の反復単位（Ｚドメイン）を含み、２３位のアミノ酸残基がスレオニンであるタンパク質が記載されている。

　また、Ｚドメインのフラグメント（Ｚフラグメント）とは、Ｚドメインのアミノ酸配列の一部を有するものであり、例えば、Ｚドメインのアミノ酸配列の９０％以上を有するものであることが好ましく、９５％以上を有するものであることがより好ましく、且つイムノグロブリン結合活性を有するものをいう。また、Ｚドメインの変異体とは、例えば、Ｚドメインのアミノ酸配列と９０％以上の相同性を有するものであり、９５％以上の相同性を有するものであるのが好ましく、且つイムノグロブリン結合活性を有するものをいう。Ｚドメインの変異体は、Ｚドメインと比較してアルカリ耐性が改良されたものであることが好ましい。この場合、Ｚドメインの変異体がＺドメインと比較してアルカリ耐性が改良されているかどうかは、後述する実施例記載の方法にて確認することができる。

　１．２．３．イムノグロブリン結合タンパク質１
　好ましいリガンドの一例であるイムノグロブリン結合タンパク質（以下、「タンパク質１」ともいう。）は、下記一般式（１）で表される。

　Ｒ－Ｒ^２　・・・・・（１）
　（式中、Ｒは４～２０個のヒスチジンが連続した部位を含む４～３００個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を示し、Ｒ^２はプロテインＡのイムノグロブリン結合ドメインを少なくとも１個含む５０～５００個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を示す（ここで、Ｒ^２がＲに結合する末端はイムノグロブリン結合ドメインのＣ末端またはＮ末端である。）。）

　上記一般式（１）において、Ｒで表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は８～１００個であることが好ましく、Ｒに含まれるヒスチジンが連続した部位のヒスチジンの数は４～８個であることが好ましい。また、上記一般式（１）において、Ｒ^２で表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は１２０～４８０個であることが好ましい。

　上記一般式（１）において、Ｒで表されるアミノ酸配列およびＲ^２で表されるアミノ酸配列のうち少なくとも一方が、リジン、アルギニン、およびシステインから選ばれる１種のアミノ酸を含む１～５０個のアミノ酸からなるドメインｔを含むことが好ましい。この場合、上記アミノ酸配列中に同一または異なるドメインｔが複数含まれていてもよい。

　また、上記一般式（１）において、Ｒ－は下記一般式（２）で表される基であることが好ましい。

　Ｒ^１－ｒ－　・・・・・（２）
　（式中、Ｒ^１は４～２０個のヒスチジンが連続した部位を含む４～１００個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を示し（ここで、Ｒ^１において、前記ヒスチジンが連続した部位の末端がｒと結合する。）、ｒは７～２００個のアミノ酸からなる任意のアミノ酸配列を示す。）

　上記一般式（２）において、Ｒ^１で表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は４～２５個であることが好ましく、Ｒ^１に含まれるヒスチジンが連続した部位のヒスチジンの数は４～８個であることが好ましく、ｒで表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は１０～５０個であることが好ましい。

　また、上記一般式（２）に示されるｒで表されるアミノ酸配列中には、ＴＥＶドメインが含まれていてもよい。ｒで表されるアミノ酸配列中にＴＥＶドメインが含まれていることにより、ＴＥＶプロテアーゼによる切断によってＲとＲ^２との分離が可能になるうえ、ＴＥＶドメインは、担体への固定化量が多く、かつ、当該担体のイムノグロブリン保持能力を高めるという効果を実現するために好ましい配列である。また、ｒで表されるアミノ酸配列中に、ＴＥＶドメインの変異体（Ｍｕｔａｎｔ）（該ＴＥＶプロテアーゼで切断できるか否かと関係なく、ＴＥＶドメインのアミノ配列と７０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を有する。）が含まれていてもよい。

　本発明で用いるタンパク質１を構成するアミノ酸の総個数は通常５４～８００であり、粒子に結合させる用途に使用する場合、８０～６００であるのが好ましい。

　１．２．４．イムノグロブリン結合タンパク質２
　リガンドは、耐アルカリ性のイムノグロブリン結合性タンパク質であってもよい。耐アルカリ性のイムノグロブリン結合性タンパク質として、好ましいリガンドの別の一例であるイムノグロブリン結合タンパク質（以下、「タンパク質２」ともいう。）は、下記一般式（３）で表される。

　Ｒ－Ｒ^２　・・・・・（３）
　（式中、Ｒは４～２０個のヒスチジンが連続した部位を含む４～３００個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を示し、Ｒ^２はＺドメイン、またはそのフラグメントもしくは変異体を含む５０～５００個のアミノ酸からなる、イムノグロブリンと結合可能なアミノ酸配列を示す（ここで、Ｒ^２がＲに結合する末端はイムノグロブリン結合ドメインのＣ末端またはＮ末端である。）。）

　上記一般式（３）において、Ｒで表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は８～１００個であることが好ましく、Ｒに含まれるヒスチジンが連続した部位のヒスチジンの数は４～８個であることが好ましい。また、上記一般式（１）において、Ｒ^２で表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は１２０～４８０個であることが好ましい。

　また、上記一般式（３）において、Ｒ－は下記一般式（４）で表される基であることが好ましい。

　Ｒ^１－ｒ－　・・・・・（４）
　（式中、Ｒ^１は４～２０個のヒスチジンが連続した部位を含む４～１００個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を示し（ここで、Ｒ^１において、前記ヒスチジンが連続した部位の末端がｒと結合する。）、ｒは７～２００個のアミノ酸からなる任意のアミノ酸配列を示す。）

　また、上記一般式（２）と同様に、上記一般式（４）におけるｒで表されるアミノ酸配列中には、ＴＥＶドメインが含まれていてもよい。ｒで表されるアミノ酸配列中にＴＥＶドメインが含まれていることにより、ＴＥＶプロテアーゼによる切断によってＲとＲ^２との分離が可能になるうえ、ＴＥＶドメインは、本発明の効果（担体への固定化量が多く、かつ、当該担体のイムノグロブリン保持能力を高めること）を実現するために好ましい配列である。また、ｒで表されるアミノ酸配列中に、ＴＥＶドメインの変異体（Ｍｕｔａｎｔ）（該ＴＥＶプロテアーゼで切断できるか否かと関係なく、ＴＥＶドメインのアミノ配列と７０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を有する。）が含まれていてもよい。

　上記一般式（４）において、Ｒ^１で表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は４～２５個であることが好ましく、Ｒ^１に含まれるヒスチジンが連続した部位のヒスチジンの数は４～８個であることが好ましく、ｒで表されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸の数は１０～５０個であることが好ましい。

　上記一般式（３）において、Ｒで表されるアミノ酸配列およびＲ^２で表されるアミノ酸配列のうち少なくとも一方が、リジン、アルギニン、およびシステインから選ばれる１種のアミノ酸を含む１～５０個のアミノ酸からなるドメインｔを含むことが好ましい。この場合、上記アミノ酸配列中に同一または異なるドメインｔが複数含まれていてもよい。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤において、リガンドとしてタンパク質２を用いた場合、アルカリ性条件下での洗浄（例えば水酸化ナトリウム等のアルカリ性液を用いた洗浄）に対して高い耐性を有する。その理由としては、ヒスチジンが連続した部位をＺドメインに付加したことにより、多孔質粒子とＺドメインの結合位置がヒスチジン連続部位のない場合とは異なること、および固定化後のＺドメインに何らかの構造変化が起こり、アルカリ耐性が高くなったことなどが考えられる。実際の理由を実験により確認することはできていないが、耐アルカリ性の実験結果は、ヒスチジン連続部位を付加することによる作用効果があることを示している。

　なお、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を用いてイムノグロブリンを単離する場合、例えば、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を用いて、前記充填剤にイムノグロブリンを吸着させる工程（第一の工程）、前記イムノグロブリンを溶出させる工程（第二の工程）、および前記充填剤をアルカリ性液でＣＩＰ洗浄する工程（第三の工程）により、イムノグロブリンを単離することができる。

　第一の工程では、上記アフィニティークロマトグラフィー用充填剤を充填したカラム等にイムノグロブリンを含有する溶液を、該充填剤のリガンドにイムノグロブリンが吸着する条件にて流す。ここで、上記イムノグロブリンを含有する溶液とは、イムノグロブリンを含有する任意の溶液であればよく、例えば、血清等の生体由来の検体、ハイブリドーマ培地の上清等が挙げられる。上記イムノグロブリンが吸着する条件としては、例えば、イムノグロブリン濃度０．１～１０ｇ／Ｌ、溶液のｐＨ５～９、カラム中の滞留時間０．５～５０分、温度０～４０℃が挙げられる。

　この第一の工程では、溶液中のイムノグロブリン以外の物質のほとんどは吸着されずカラムを通過する。通常、一部の弱く保持された物質を除去するため、充填剤をＮａＣｌなどの塩を含む中性の緩衝液、例えば、リン酸二水素ナトリウム／リン酸水素二ナトリウム溶液、クエン酸／リン酸水素二ナトリウム溶液、塩酸／トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン溶液、ＨＥＰＥＳ／水酸化ナトリウム溶液等、で洗浄する。第二の工程では、ｐＨ２～５の適切な緩衝液、例えば、クエン酸／クエン酸ナトリウム溶液、酢酸／酢酸ナトリウム溶液、塩酸／グリシン溶液等、を流しイムノグロブリンを溶出させる。第三の工程では、アルカリ性液で充填剤を洗浄（ＣＩＰ洗浄）する。

　ここで使用されるアルカリ性液としては、例えば、水酸化ナトリウム水溶液、水酸化カリウム水溶液、トリエチルアミン、水酸化テトラブチルアンモニウム等が挙げられる。

　１．２．５．タンパク質１および２の製造
　本発明で用いるタンパク質１および２を製造するための標準技術としては、例えば、Ｆｒｅｄｅｒｉｃｋ　Ｍ．　ＡｕｓｂｅｌらによるＣｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　Ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ＢｉｏｌｏｇｙやＳａｍｂｒｏｏｋら編集のＭｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ，　３^ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ，　２００１）などに記載されている公知の遺伝子組換え技術を利用することができる。例えば、本発明で用いるタンパク質１または２は、米国特許第５，１５１，３５０号明細書に記載されている遺伝子組換え技術を用いて製造することができる。すなわち、目的の改変タンパク質（タンパク質１または２）をコードする核酸配列を含有させた発現ベクターを大腸菌などの宿主に形質転換し、当該細胞を適切な液体培地で培養することにより、培養後の細胞から、本発明で用いるタンパク質１または２を大量かつ経済的に取得することができる。好ましい発現ベクターとしては、細菌内で複製可能な既知のベクターのいずれをも用いることができ、例えば、米国特許第５，１５１，３５０号明細書に記載されているプラスミドや、Ｓａｍｂｒｏｏｋら編集のＭｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ，　３^ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ，　２００１）などに記載されているプラスミドが挙げられる。また、宿主中に核酸を導入することにより宿主を形質転換させるためには、当該技術分野において知られるいずれの方法を用いてもよく、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら編集のＭｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ，　３^ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ，　２００１）などに記載されている公知の方法を利用することができる。形質転換した細菌を培養して、発現されたタンパク質を回収する方法は、当業者によく知られている。

　具体的には、所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡを数十塩基からなる合成オリゴヌクレオチドに分割して合成し、それらをＤＮＡリガーゼによるライゲーション反応によって繋げてプラスミドに挿入することにより、目的の発現ベクターを取得することができる。その際に、当該タンパク質を大腸菌で効率良く発現させる目的で、大腸菌の至適コドンを用いた核酸配列を採用することは、当業者によって一般的に行われる方法である。また、後述する本発明の実施例に示されるようにＳｔｒａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓのゲノムＤＮＡからＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　Ｃｈａｉｎ　Ｒｅａｃｔｉｏｎ）技術を用いて所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を構築することが可能である。

　例えば、上記製造方法で用いる核酸は、イムノグロブリン結合タンパク質（タンパク質１または２）あるいはその等機能変異体をコードし得る。本発明において、イムノグロブリン結合タンパク質の「等機能変異体（ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｖａｒｉａｎｔ）」とは、部分的なアミノ酸の付加、削除、置換、アミノ酸残基の化学的修飾等により改変されたイムノグロブリン結合タンパク質であって、改変前のイムノグロブリン結合タンパク質のアミノ酸配列と７０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を保持し、かつ、イムノグロブリン結合活性において、改変前のイムノグロブリン結合タンパク質と同等のものとして扱うことができるものを意味する。すなわち、上記核酸としては、本明細書におけるタンパク質１または２をコードする核酸が含まれる。

　また、上述したように、本発明で用いるタンパク質１および２は、イムノグロブリン結合ドメインを１個以上（好ましくは２～１２個、より好ましくは４～１０個）を含むタンパク質であってもよい。この様なタンパク質をコードするｃＤＮＡは、１個のイムノグロブリン結合ドメインをコードするｃＤＮＡ（相補的ＤＮＡ）を所定の個数、直列に連結することにより、容易に作成することができる。こうして作成したｃＤＮＡを適切な発現プラスミドに挿入して利用することにより、イムノグロブリン結合ドメインを１個以上含むタンパク質を容易に製造することができる。

　例えば、後述する実施例において示される配列番号４のアミノ酸配列を有するタンパク質（ＳＰＡＴＫ）や配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質（ＳＰ４Ｚ）、配列番号２または配列番号４において１個または数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつイムノグロブリン結合活性を有するタンパク質は、本発明で用いるイムノグロブリン結合タンパク質として好適である。

　１．２．６．リガンドの結合
　上記担体と上記リガンドの結合方法としては、多孔質粒子に含まれるエポキシ基をそのままリガンドとの結合部位として利用することが、プロセスとして簡便であり、好ましい。その他に、多孔質粒子に含まれるエポキシ基を開環して生成するアルコール性水酸基をトシル基などで活性化してから、リガンドを結合する方法や、多孔質粒子に含まれるエポキシ基または、当該エポキシ基の開環により生成する基からさらにリンカーを伸ばしてから、当該リンカーを介して多孔質粒子にリガンドを結合しても良い。

　リガンドの結合条件は、リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量、リガンドの種類により異なるが、当業者にとっての公知の方法を採用することができる。リガンドがタンパク質である場合は、タンパク質のＮ末端のアミノ基、タンパク質に含まれるリジン、システインがエポキシとの反応点になりうる。タンパク質を結合する場合、例えば、タンパク質の等電点に近いバッファー類の水溶液を用い、必要により塩化ナトリウムや硫酸ナトリウムなどの塩を添加し、タンパク質と多孔質粒子を混合しながら、０～４０℃で１～２４時間反応させて、リガンドであるタンパク質を結合することができる。

　リガンドの結合量は、リガンドの種類、標的分子の種類などによって、適宜調節されるが、プロテインＡのような抗体結合性タンパク質をリガンドとして結合する場合、多孔質粒子１ｇ当たり、好ましくは１０～２００ｍｇ、より好ましくは２５～１００ｍｇである。プロテインＡのような抗体結合性タンパク質をリガンドとして結合する場合、多孔質粒子１ｇ当たりのリガンドの結合量が１０ｍｇ以上であると動的結合容量に優れ、２００ｍｇ以下であると、結合した抗体の溶出のために多量の溶出液の量が適量となる。

　１．２．７．開環エポキシ基
　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を構成する多孔質粒子は、開環エポキシ基を有する。この開環エポキシ基は、上記特定の重合体からなる多孔質粒子にリガンドを結合した後に、該重合体に含まれるエポキシ基、すなわち、リガンドと結合したエポキシ基以外の残余のエポキシ基を開環させて得られる。これは、多孔質粒子をアフィニティークロマトグラフィー用充填剤として使用する前に、多孔質粒子の表面のエポキシ基が実質的に全て開環していることを意味する。

　なお、多孔質粒子の表面のエポキシ基が実質的に全て開環しているとは、開環エポキシ基を有する多孔質粒子に残留するエポキシ基が、具体的には、好ましくは０．０４ｍｍｏｌ／ｇ未満、さらに好ましくは０．０２ｍｍｏｌ／ｇ未満であることを意味し、エポキシ基が残留していないことが最も好ましい。開環エポキシ基の残留量が０．０４ｍｍｏｌ／ｇ未満であると、保存安定性に優れる。

　エポキシ基が開環して生成する開環エポキシ基であるアルコール性水酸基は、粒子表面を親水化し、タンパク質などの非特異吸着を防止すると共に、水中で粒子の靱性を向上させ、高流速下の粒子の破壊を防止する役割を果たす。多孔質粒子中のエポキシ基の開環方法としては、例えば、水溶媒中で、酸またはアルカリにより、加熱または室温で攪拌する方法を挙げることができる。また、メルカプトエタノール、チオグリセロールなどのメルカプト基を有するブロッキング剤やモノエタノールアミンなどのアミノ基を有するブロッキング剤で、エポキシ基を開環させても良い。最も好ましい開環エポキシ基は、多孔質粒子に含まれるエポキシ基をチオグリセロールにより開環させて得られる開環エポキシ基である。チオグリセロールは、原料としてメルカプトエタノールなどよりも毒性が低く、チオグリセロールが付加したエポキシ開環基は、アミノ基を有するブロッキング剤による開環基よりも非特異吸着が低い上に、動的結合量が高くなるといった利点を有する。

　１．２．８．粒子径、細孔容積など
　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を構成する多孔質粒子の粒子径は、通常、３５～１００μｍであり、好ましくは３８～７５μｍである。粒子径が、３５μｍ以上であると、圧力特性に優れる。１００μｍ以下であると、動的結合容量が高い充填剤が得られる。開環エポキシ基を有する多孔質粒子の粒子径は、上述の通り、多孔質粒子を重合する際の条件で調整することができる。なお、本発明における「粒子径」とは、レーザ回折散乱式粒度分布測定装置により得られる体積平均粒子径である。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を構成する開環エポキシ基を有する多孔質粒子は、水銀ポロシメータで孔径１０～５０００ｎｍの範囲に相当するポアを測定したときに、好ましくは１．００～３．００ｍｌ／ｇ、さらに好ましくは１．０５～２．１０ｍｌ／ｇの細孔容積を有する。細孔容積が上記の範囲内であるとタンパク質の動的結合容量が高い充填剤が得られる。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を構成する開環エポキシ基を有する多孔質粒子は、好ましくは８０～１５０ｍ^２／ｇ、より好ましくは１００～１４０ｍ^２／ｇの比表面積を有する。ここで、比表面積が８０ｍ^２／ｇ未満であると、動的結合容量に劣り、一方、１５０ｍ^２／ｇを超えると、充填剤の強度が劣るために高流速下で充填剤が破壊されて、カラム圧力が上昇する場合がある。本発明における「比表面積」とは、水銀ポロシメーターにより得られる細孔径１０～５０００ｎｍの細孔の有する表面積を粒子の乾燥質量で除した値である。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を構成する開環エポキシ基を有する多孔質粒子は、好ましくは５５～３００ｎｍ、より好ましくは６０～２５０ｎｍの体積平均細孔径を有する。ここで、体積平均細孔径が５５ｎｍ未満であると、高流速下の動的結合容量低下が顕著になる場合があり、一方、３００ｎｍを超えると、流速にかかわらず動的結合容量が低下する場合がある。本発明における「体積平均細孔径」とは、水銀ポロシメーターにより得られる細孔径１０～５０００ｎｍの細孔の体積平均細孔径である。

　２．実施例
　以下、本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を、実施例を挙げてさらに具体的に説明する。また、以下の記載は本発明の態様を概括的に示すものであり、特に理由なく、かかる記載により本発明は限定されるものではない。

　２．１．評価方法
　２．１．１．エポキシ基含有量
　リガンド結合前の多孔質粒子のエポキシ基含有量は、重合で使用したエポキシ基含有モノマー量より計算されるエポキシ基のモル数が２．００ｍｍｏｌとなるように、質量濃度約１０％で正確な質量濃度がわかっている多孔質粒子水分散体をポリエチレンボトルに質量で測り取り、これに濃度３８％の塩化カルシウム水溶液２５ｍＬおよび２規定の塩酸２．００ｍＬを加えて、７５℃で２時間３０分攪拌することによりエポキシ基を開環し、冷却後、２規定の水酸化ナトリウム水溶液２．５０ｍＬで中和し、さらにｐＨメーターでｐＨをモニターしながら０．１規定の塩酸で逆滴定することにより定量した。

　２．１．２．粒子径（体積平均粒子径）
　レーザ回折散乱式粒度分布測定装置（ベックマン・コールター社製　ＬＳ１３３２０）により、粒子の体積平均粒子径を測定した。

　２．１．３．細孔容積、比表面積、体積平均細孔径
　４０℃で２４時間真空乾燥させて乾燥粒子を得、水銀ポロシメーター（島津製作所社製　オートポアＩＶ９５２０）にて乾燥粒子の細孔容積、比表面積、および体積平均細孔径（細孔径）を求めた。測定範囲は細孔径範囲で１０～５０００ｎｍとした。

　２．１．４．耐アルカリ性
　得られた多孔質粒子とこれに結合したリガンドとを含む充填剤を１ｍＬ（５ｍｍΦ×５０ｍｍ長）カラムに充填し、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製ＡＫＴＡｐｒｉｍｅ　ｐｌｕｓに接続して、２０ｍＭのリン酸バッファー（ｐＨ７．５）を２０ｍＬ流して洗浄し、次に７５ｍＭグリシン塩酸塩バッファー（ｐＨ３．２）を流速０．２ｍＬ／分で流しながら、ｐＨ６．５に達するまでの通液容量を測定して、初期の中和通液量とした。次に、０．３規定の水酸化ナトリウム水溶液でカラム内を置換してから、２５℃で１５時間静置した。上記と同様に洗浄、中和通液量を測定し、アルカリ劣化後の中和通液量とした。初期の中和通液量とアルカリ劣化後の中和通液量との液量差（表２～表４において「液量差」と記載する。）を耐アルカリ性の指標とした。すなわち、初期の中和通液量とアルカリ劣化後の中和通液量との液量差が小さいほど、アルカリ劣化が少なく、耐アルカリ性が優れているといえる。

　２．１．５．タンパク質の動的結合容量
　ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製ＡＫＴＡｐｒｉｍｅ　ｐｌｕｓを用いて、線流速３００ｃｍ／ｈｒにおけるタンパク質（ヒトＩｇＧ抗体）の動的結合容量を測定した。カラム容量は４ｍＬ（５ｍｍΦ×２００ｍｍ長）、ヒトＩｇＧ抗体（Ｅｑｕｉｔｅｃｈ　Ｂｉｏ社製　ＨＧＧ－１０００）は２０ｍＭリン酸バッファー（ｐＨ７．５）で５ｍｇ／ｍＬに希釈したものを使用し、溶出先端１０％ブレークスルーのときのヒトＩｇＧ抗体吸着量とカラム充填体積から動的結合容量（表２～表４において「ＤＢＣ」と記載する。）を求めた。以下、動的結合容量はＤＢＣと記載することがある。

　２．１．６．保存安定性
　初期のＤＢＣを測定したカラムのまま、４０℃で３週間保存し、このカラムの保存後のＤＢＣを同様に測定した。初期のＤＢＣに対する保存後のＤＢＣの割合（維持率）を％で示し、保存安定性の指標とした。

　２．１．７．プロテインＡ結合量
　多孔質粒子に結合したリガンドであるプロテインＡ（ＳＰＡ）の結合量は、ビシンコニン酸（ＢＣＡ）試薬を用いた試薬セットで定量した。具体的には、固形分換算で１ｍｇの充填剤をテストチューブに採取し、これをＴｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社（旧ＰＩＥＲＣＥ社）のＢＣＡ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　Ｋｉｔで定量した。反応は、３７℃で３０分間、転倒混和することによって行った。検量線は、多孔質粒子に結合させたプロテインＡと同一のロットのものを用いて作成した。

　２．２．実験例
　２．２．１．実施例１
　（ｉ）多孔質粒子の懸濁重合
　４２５１ｇの純水にポリビニルアルコール（クラレ社製　ＰＶＡ－２１７）８．５０ｇ、ドデシル硫酸ナトリウム（花王社製　エマール１０Ｇ）０．４３ｇおよび硫酸ナトリウム２１．３ｇを添加し、一晩撹拌して水溶液（Ｓ－１）を調製した。重合当日、（Ｓ－１）の２０ｇを別に抜き取っておいた。

　次に、（Ｍ－１）グリセロールモノメタクリレート（日本油脂社製）８２．４ｇ、（Ｍ－２）グリシジルメタクリレート（三菱レーヨン社製）１６．５ｇ、（Ｍ－３）トリメチロールプロパントリメタクリレート（サートマー社製）６５．９ｇを２－オクタノン（東洋合成社製）２４６ｇおよびアセトフェノン（和光純薬工業社製）６１．７ｇに溶解させ、単量体溶液を調製した。なお、単量体の全質量を１００質量部としたときの、各単量体の部数は、グリセロールモノメタクリレート８０質量部、グリシジルメタクリレート１０質量部、トリメチロールプロパントリメタクリレート４０質量部である。

　抜き取っておいた（Ｓ－１）２０ｇに２、２’－アゾイソブチロニトリル（和光純薬工業社製）２．０ｇを添加して分散し、開始剤分散液とした。

　次いで、準備した水溶液（Ｓ－１）および単量体溶液をバッフル付きの７Ｌセパラブルフラスコ内に投入し、温度計、攪拌翼、および冷却管を装着して、温水バスにセットし、窒素雰囲気下、２４０ｒｐｍで撹拌を開始した。続いて、セパラブルフラスコを温水バスにより加温し、内温が８５℃に到達したところで、開始剤分散液を添加し、８５℃に温度を保持しつつ、５時間攪拌を行った。

　次いで、反応液を冷却したのち、かかる反応液をヌッチェでろ過し、純水とイソプロピルアルコールで洗浄した。洗浄した粒子をポリビンに移し、水に分散してデカンテーションを３回行い、小粒子を除いた。以上の操作により水に分散した１２．５質量％の多孔質粒子１（粒子乾燥質量１０５ｇ）を得た。多孔質粒子１のエポキシ基含有量は、０．５５ｍｍｏｌ／ｇであった。

　（ｉｉ）リガンドの作製
　２．２．１．１．ＳＰ４Ｚ発現ベクターの構築
　イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰ４Ｚ）発現ベクターを下記のステップで構築した。図２は、ＳＰ４Ｚベクターの構築方法を説明する図である。

　（１）ステップ１
　単量体ＺドメインをコードするＤＮＡを出発物質として、ＮｃｏＩ切断部位およびＥｃｏＲＩ切断部位を有する単量体Ｚドメインベクター（Ａ－ｐＥＴＭ１１）（ＳＰ１Ｚ）を構築した。

　（２）ステップ２
　次に、Ａ－ｐＥＴＭ１１ベクターにもう一個Ｚドメインを付加して、ＥｃｏＲＩ切断部位およびＳａｃＩ切断部位を有する２量体Ｚドメインベクター（ＡＢ－ｐＥＴＭ１１）（ＳＰ２Ｚ）を構築した。

　（３）ステップ３
　次いで、ＡＢ－ｐＥＴＭ１１ベクターに更にもう一個Ｚドメインを付加して、ＳａｃＩ切断部位およびＨｉｎｄ　ＩＩＩ切断部位を有する３量体Ｚドメインベクター（ＡＢＣ－ｐＥＴＭ１１）（ＳＰ３Ｚ）を構築した。

　（４）ステップ４
　最後に、ＡＢＣ－ｐＥＴＭ１１ベクターに４個目のＺドメインを付加して、ＨｉｎｄＩＩＩ切断部位およびＸｈｏＩ切断部位を有するｐＥＴＭ１１－ＳＰ４Ｚのベクターを構築した。

　２．２．１．２．ＳＰ１Ｚ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドン有りの単量体Ｚドメインベクター）の構築（図２のステップ１）
　ＳＰＺＫ　ＤＮＡ（配列番号３）をテンプレートとし、フォワードプライマーとしてプライマー１５３（配列番号５）およびリバースプライマーとしてプライマー１５６（配列番号８）を用いてＰＣＲを実施した。プライマー１５３およびプライマー１５６にはそれぞれ、ＮｃｏＩ切断部位およびＳａｃＩの制限酵素切断部位が含まれる。ＰＣＲの条件は以下の通りである。

　段階１：９４℃１分間１サイクル、段階２：９４℃３０秒間、５５℃３０秒間、７２℃２．５分間（２５サイクル）、段階３：７２℃１０分間１サイクル、その後４℃で保持した。

　ＰＣＲ生成物はＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製生成キットで精製した。次に、ＮｃｏＩ制限酵素およびＳａｃＩ制限酵素を用いて切断されたｐＥＴＭ１１ベクターとＰＣＲ生成物とのライゲーションを行った。制限酵素による消化反応は、Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌａｎｄ　Ｂｉｏｌａｂｓ製ＮｃｏＩ制限酵素およびＳａｃＩ制限酵素を用いて３７℃１時間行い、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製生成キットでＰＣＲ精製した。

　ライゲーション反応は、Ｔ４　ＤＮＡリガーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）で室温にて終夜行った。ライゲーションで得られたベクターをＤＨ５ａ　ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　ｃｅｌｌ（Ｂｉｏｍｅｄａｌ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）で形質転換させ、得られた形質転換体を、カナマイシンを含むＬＢ培地で３７℃終夜培養し、陽性Ｃｏｌｏｎｙからプラスミドを抽出し、挿入されたＤＮＡフラグメントの配列が正しいことを３７３０　ＤＮＡ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅｒ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）で確認した。

　２．２．１．３．Ａ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドン無しの単量体Ｚドメインベクター）の構築
　プライマー１５３，１５６の代わりに、フォワードプライマーとしてプライマー１５３およびリバースプライマーとしてプライマー１５４（配列番号６）を用いて、実験２．２．１．２．と同様にＡ－ｐＥＴＭ１１ベクターを構築した。なお、ＤＮＡフラグメントの挿入は、ｐＥＴＭ１１のＮｃｏＩ切断部位およびＥｃｏＲＩ切断部位を利用している。

　２．２．１．４．ＳＰ２Ｚ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドン有りの２量体Ｚドメインベクター）の構築
　フォワードプライマーとしてプライマー１５５（配列番号７）およびリバースプライマーとしてプライマー１５６を用いて、ＰＣＲでＥｃｏＲＩ切断部位およびＳａｃＩ切断部位を有する単量体ＺドメインのＤＮＡを調製し、Ａ－ｐＥＴＭ１１のＥｃｏＲＩ切断部位およびＳａｃＩ切断部位に挿入して構築した。実験は実験２．２．１．２．と同様の条件で行った。

　２．２．１．５．ＡＢ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドンなしの２量体Ｚドメインベクター）の構築
　フォワードプライマーとしてプライマー１５５およびリバースプライマーとしてプライマー１５７（配列番号９）を用いて、ＰＣＲでＥｃｏＲＩ切断部位およびＳａｃＩ切断部位を有する終止コドンなしの単量体ＺドメインのＤＮＡを調製し、Ａ－ｐＥＴＭ１１のＥｃｏＲＩ切断部位およびＳａｃＩ切断部位に挿入して、ＡＢ－ｐＥＴＭ１１ベクターを構築した。実験は実験２．２．１．２．と同様の条件で行った。

　２．２．１．６．ＳＰ３Ｚ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドン有りの３量体Ｚドメインベクター）の構築
　フォワードプライマーとしてプライマー１５８（配列番号１０）およびリバースプライマーとしてプライマー１６１（配列番号１３）を用いて、ＰＣＲでＳａｃＩ切断部位およびＸｈｏＩ切断部位を有する単量体ＺドメインのＤＮＡを調製し、ＡＢ－ｐＥＴＭ１１のＥｃｏＲＩ切断部位およびＳａｃＩ切断部位に挿入して構築した。実験は実験２．２．１．２．と同様の条件で行った。

　２．２．１．７．ＡＢＣ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドン無しの３量体Ｚドメインベクター）の構築
　フォワードプライマーとしてプライマー１５８およびリバースプライマーとしてプライマー１５９（配列番号１１）を用いて、ＰＣＲでＳａｃＩ切断部位およびＨｉｎｄＩＩＩ切断部位を有する終止コドン無しの単量体ＺドメインのＤＮＡを調製し、ＡＢ－ｐＥＴＭ１１のＳａｃＩ切断部位およびＨｉｎｄＩＩＩ切断部位に挿入して、ＡＢＣ－ｐＥＴＭ１１ベクターを構築した。実験は実験２．２．１．２．と同様の条件で行った。

　２．２．１．８．ＳＰ４Ｚ－ｐＥＴＭ１１ベクター（終止コドン有りの４量体Ｚドメインベクター）の構築
　プライマー１６０（配列番号１２）およびプライマー１６１を用いて、ＰＣＲでＨｉｎｄＩＩＩ切断部位およびＸｈｏＩ切断部位を有する単量体ＺドメインのＤＮＡを調製し、ＡＢＣ－ｐＥＴＭ１１のＨｉｎｄＩＩＩ切断部位およびＸｈｏＩ切断部位に挿入して、ＳＰ４Ｚ－ｐＥＴＭ１１ベクターを構築した。実験は実験２．２．１．２．と同様の条件で行った。

　２．２．１．９．ＳＰ４Ｚの発現および精製
　得られたＳＰ４Ｚ－ｐＥＴＭ１１ベクターをＥ．ｃｏｌｉ（ＢＬ２１株）細胞（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ製）に導入し、１８℃で１ｍＭのＩＰＴＧ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ製）を添加し、１５時間インキュベートして、組み換え型イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰ４Ｚ）を発現させた。誘導に先立って、吸光度（ＯＤ６００）が約０．６に到達するまで上記細胞を３７℃でインキュベートした。タンパク質発現後、細胞を回収し、ｐＨ８．０のトリス緩衝液中で破砕した。

　得られた組み換え型イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰ４Ｚ）は、Ｎｉアフィニティクロマトグラフィー（Ｎｉ－ＮＴＡ（ニトリロトリ酢酸）粒子、キアゲン社製）によって精製された。精製されたイムノグロブリン結合タンパク質は陰イオン交換クロマトグラフィー（Ｑ－セファロースＦＦ、ＧＥバイオサイエンス社製）によって、さらに精製された。ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって確認されたイムノグロブリン結合タンパク質の純度は９６％であった。

　また、得られた組み換え型イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰ４Ｚ）は、ＭＡＬＤＩ－ＴＯＦマススペクトル分析により、それぞれアミノ酸配列が一致したことにより、図１に示すアミノ酸配列（配列番号２）を有することが確認された。

　なお、図１において、ＲおよびＲ^２は上記一般式（１）及び（３）におけるＲおよびＲ^２に対応し、Ｒ^１およびｒは上記一般式（２）及び（４）におけるＲ^１およびｒに対応する。ｒ中の下線部はＴＥＶドメイン（ＴＥＶプロテアーゼ（ペプチド結合加水分解合成酵素）切断部位）を示す。

　（ｉｉｉ）多孔質粒子とリガンドとの結合
　粒子乾燥質量換算で１ｇの多孔質粒子１、０．１ｇのＳＰ４Ｚが２５ｍＬの０．１Ｍリン酸バッファー（ｐＨ６．８）に分散した混合液を調製し、１０℃で２４時間転倒混和し、ＳＰ４Ｚ（リガンド）を多孔質粒子１に結合させた。生成した粒子を濾過した後、１Ｍチオグリセロール２５ｍＬと混合し３０℃で４時間反応させ、残余のエポキシ基を開環し、ＰＢＳ／０．５％Ｔｗｅｅｎ２０で洗浄後、ＰＢＳで洗浄し、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤１（Ａ－１）を得た。Ｔｈｅｒｍｏ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｐｉｅｒｃｅ　ＢＣＡ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　ｋｉｔで定量測定を行ったところ、前記粒子に結合したＳＰ４Ｚの量は８４ｍｇ／ｇ粒子であった。

　（ｉｖ）評価
　（Ａ－１）の粒子径は５８μｍ、細孔容積は１．２２ｍＬ／ｇ、比表面積は１１１ｍ^２／ｇ、体積平均細孔径は７４ｎｍであった。アルカリ劣化による液量差は０．３２ｍＬ、タンパク質（ヒトＩｇＧ抗体）の動的結合容量は４３ｍｇ／ｍＬ、保存試験後のタンパク質（ヒトＩｇＧ抗体）の動的結合容量は４４ｍｇ／ｍＬであり、ＤＢＣ維持率は１０２％であった。

　２．２．２．実施例２　
（ｉ）リガンドの作製
　後述する調製例（１）～（５）により、図３に示されるアミノ酸配列を有するイムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰＡＴＫ（配列番号４））を調製した。

　（１）ステップ１
　Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓのゲノムＤＮＡをテンプレートとして、制限酵素ＮｃｏＩサイトを有するプライマー（Ｐｒｉｍｅｒ１１）、及び制限酵素ＢａｍＨ１とＨｉｎｄＩＩＩサイトを有するプライマー（Ｐｒｉｍｅｒ１２）を用いてＰＣＲでＤ－ＡドメンをコードするＤＮＡを得た。このＤＮＡを制限酵素ＮｃｏＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで切断し、同じく制限酵素ＮｃｏＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで切断されたｐＥＴＭ１１にライゲーションしてＳＰＡＫプラスミドを構築した。

　（２）ステップ２
　次に、上記に得られたＳＰＡＫプラスミドをテンプレートとして制限酵素ＢａｍＨＩサイトを有するプライマー（Ｐｒｉｍｅｒ１３）と制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩサイトを有するプライマー（Ｐｒｉｍｅｒ１４）を用いてＰＣＲで新たなＤ－ＡドメンをコードするＤＮＡを得た。このＤＮＡを制限酵素ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで切断し、同じく制限酵素ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで切断された上記に得られたＳＰＡＫプラスミドにライゲーションしてＳＰＡＴＫプラスミドを構築した。

　（３）ＳＰＡＫプラスミドの構築
　Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓのゲノムＤＮＡをテンプレートとして、Ｐｒｉｍｅｒ１１とＰｒｉｍｅｒ１２を用いてＰＣＲを実施した。ＰＣＲの条件は以下の通りである。

　段階１：９４℃１分間１サイクル、段階２：９４℃３０秒間、５３℃３０秒間、７２℃２．５分間（２５サイクル）、段階３：７２℃１０分間１サイクル、その後４℃で保持した。

　ＰＣＲ生成物はＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製の精製キットで精製した。次に、ＮｃｏＩ制限酵素およびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素を用いて切断した。ｐＥＴＭ１１ベクターについて同じくＮｃｏＩ制限酵素およびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素で切断した。制限酵素による消化反応は、Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌａｎｄ　Ｂｉｏｌａｂｓ製ＮｃｏＩ制限酵素およびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素を用いて行い、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製精製キットで精製した。ライゲーション反応は、Ｔ４　ＤＮＡリガーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）で室温にて終夜行った。ライゲーションで得られたベクターをＤＨ５ａ　ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　ｃｅｌｌ（Ｂｉｏｍｅｄａｌ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）に形質転換させ、陽性ｃｏｌｏｎｙのプラスミド（ＳＰＡＫプラスミド）の配列が正しいことを３７３０　ＤＮＡ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅｒ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）で確認した。

　（４）ＳＰＡＴＫプラスミドの構築の構築
　ＳＰＡＫプラスミドをテンプレートとしてＰｒｉｍｅｒ１３とＰｒｉｍｅｒ１４を用いてＰＣＲで新たなＤ－ＡドメンをコードするＤＮＡを得た。ＰＣＲの条件は段階１：９４℃１分間１サイクル、段階２：９４℃３０秒間、５５℃３０秒間、７２℃２．５分間（２５サイクル）、段階３：７２℃１０分間１サイクル、その後４℃で保持した。ＰＣＲ生成物はＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製の精製キットで精製した。次に、ＢａｍＨＩ制限酵素およびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素用いてこのＤＮＡを切断した。ＳＰＡＫプラスミドについても同じくＢａｍＨＩ制限酵素およびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素で切断した。制限酵素による消化反応は、Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌａｎｄ　Ｂｉｏｌａｂｓ製ＢａｍＨＩ制限酵素およびＨｉｎｄＩＩＩ制限酵素を用い、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製精製キットで精製した。ライゲーション反応は、Ｔ４　ＤＮＡリガーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）で室温にて終夜行った。ライゲーションで得られたベクターをＤＨ５ａ　ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　ｃｅｌｌ（Ｂｉｏｍｅｄａｌ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）に形質転換させ、陽性ｃｏｌｏｎｙのプラスミド（ＳＰＡＴＫプラスミド）の配列が正しいことを３７３０　ＤＮＡ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅｒ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）で確認した。

　（５）ＳＰＡＴＫの発現および精製
　得られたＳＰＡＴＫプラスミドをＥ．ｃｏｌｉ（ＢＬ２１株）細胞（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ製）に形質転換した。１８℃で１ｍＭのＩＰＴＧ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ製）を添加し、１５時間インキュベートして、組み換え型イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰＡＴＫ）を発現させた。誘導に先立って、吸光度（ＯＤ６００）が約０．６に到達するまで上記細胞を３７℃でインキュベートした。タンパク質発現後、細胞を回収し、ｐＨ８．０のトリス緩衝液中で破砕した。

　得られた組み換え型イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰＡＴＫ）は、Ｎｉアフィニティクロマトグラフィー（Ｎｉ－ＮＴＡ（ニトリロトリ酢酸）粒子、キアゲン社製）によって精製された。精製されたイムノグロブリン結合タンパク質は陰イオン交換クロマトグラフィー（Ｑ－セファロースＦＦ、ＧＥバイオサイエンス社製）によって、さらに精製された。ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって確認されたイムノグロブリン結合タンパク質の純度は９６％であった。

　また、得られた組み換え型イムノグロブリン結合タンパク質（ＳＰＡＴＫ）は、ＭＡＬＤＩ－ＴＯＦマススペクトル分析により、それぞれアミノ酸配列が一致したことにより、図３に示すアミノ酸配列を有することが確認された。

　（ｉｉ）多孔質粒子とリガンドとの結合
　リガンドとしてＳＰ４Ｚの代わりにＳＰＡＴＫを使用した以外は、実施例１と同様にして、実施例１で得られた多孔質粒子１を使用して、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤２（Ａ－２）を得た。前記粒子に結合したＳＰＡＴＫの量は８３ｍｇ／ｇ粒子であった。結果を表２に示す。

　（Ａ－２）の粒子径は５８μｍ、細孔容積は１．２３ｍＬ／ｇ、比表面積は１１２ｍ^２／ｇ、体積平均細孔径は７６ｎｍであった。アルカリ劣化による液量差は０．３３ｍＬ、タンパク質（ヒトＩｇＧ抗体）の動的結合容量は４４ｍｇ／ｍＬ、保存試験後のタンパク質（ヒトＩｇＧ抗体）の動的結合容量は３２ｍｇ／ｍＬであり、ＤＢＣ維持率は７４％であった。

　２．２．３．比較例１～２
　実施例１～２で、各単量体の部数を表２の通りとした以外は、同様にして、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子２からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤１～２（Ｂ－１～２）を得、評価した。結果を表２に示す。

　２．２．４．実施例３
　４０９１ｇの純水にポリビニルアルコール（クラレ社製　ＰＶＡ－２１７）８．５２ｇ、ドデシル硫酸ナトリウム（花王社製　エマール１０Ｇ）２．１３ｇおよび炭酸ナトリウム４．２６ｇを添加し、一晩撹拌して水溶液（Ｓ－２－１）を調製した。さらに重合当日、（Ｓ－２－１）の３０ｇを別に抜き取り、残りの（Ｓ－２－１）に亜硝酸ナトリウム２．１３ｇを溶解して、水溶液（Ｓ－２－２）を調製した。

　次に、グリセロールメタクリレート（日本油脂社製）３５．９ｇ、グリセリンジメタクリレート（新中村化学工業社製）１２５ｇ、グリシジルメタクリレート（三菱レーヨン社製）１７．９ｇを２－オクタノン（東洋合成社製）８６．４ｇおよびアセトフェノン（和光純薬工業社製）２５３ｇに溶解させ、単量体溶液を調製した。なお、単量体の全質量を１００質量部としたときの、各単量体の部数は、グリセロールメタクリレート２０質量部、グリセリンジメタクリレート７０質量部、グリシジルメタクリレート１０質量部である。

　（Ｓ－２－１）３０ｇに２、２’－アゾイソブチロニトリル（和光純薬工業社製）２．２ｇを添加して分散し、開始剤分散液とした。

　次いで、準備した水溶液（Ｓ－２－２）および単量体溶液をバッフル付きの７Ｌセパラブルフラスコ内に投入し、温度計、攪拌翼、および冷却管を装着して、温水バスにセットし、窒素雰囲気下、２２０ｒｐｍで撹拌を開始した。続いて、セパラブルフラスコを温水バスにより加温し、内温が８５℃に到達したところで、開始剤分散液を添加し、８５℃に温度を保持しつつ、５時間攪拌を行った。

　次いで、反応液を冷却したのち、かかる反応液をヌッチェでろ過し、純水とイソプロピルアルコールで洗浄した。洗浄した粒子をポリビンに移し、水に分散してデカンテーションを３回行い、小粒子を除いた。以上の操作により水に分散した１２．５質量％の多孔質粒子３（粒子乾燥質量１２３ｇ）を得た。多孔質粒子３のエポキシ基含有量は、０．４７ｍｍｏｌ／ｇであった。

　多孔質粒子１の代わりに多孔質粒子３を使用した以外は、実施例１と同様にして、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子３からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤３（Ａ－３）を得た。結果を表３に示す。

　２．２．５．実施例４
　３００ｇの純水にポリビニルアルコール（クラレ社製　ＰＶＡ－２１７）０．６００ｇ、ドデシル硫酸ナトリウム（花王社製　エマール１０Ｇ）０．０３０ｇおよび硫酸ナトリウム１．５０ｇを添加し、一晩撹拌して水溶液（Ｓ－３－１）を調製した。さらに重合当日、（Ｓ－３－１）の５ｇを別に抜き取り、残りの（Ｓ－３－１）に亜硝酸ナトリウム０．１５０ｇを溶解して、水溶液（Ｓ－３－２）を調製した。

　次に、グリセリンジメタクリレート（新中村化学工業社製）８．１９ｇ、グリシジルメタクリレート（三菱レーヨン社製）３．５１ｇを２－オクタノン（東洋合成社製）６．２５ｇおよびアセトフェノン（和光純薬工業社製）１８．３ｇに溶解させ、単量体溶液を調製した。なお、単量体の全質量を１００質量部としたときの、各単量体の部数は、グリセリンジメタクリレート７０質量部、グリシジルメタクリレート３０質量部である。

　（Ｓ－３－１）５ｇに２、２’－アゾイソブチロニトリル（和光純薬工業社製）０．１４９ｇを添加して分散し、開始剤分散液とした。

　次いで、得られた水溶液（Ｓ－３－２）および単量体溶液をバッフル付きの０．５Ｌセパラブルフラスコ内に投入し、温度計、攪拌翼、および冷却管を装着して、温水バスにセットし、窒素雰囲気下、６８０ｒｐｍで撹拌を開始した。続いて、セパラブルフラスコを温水バスにより加温し、内温が８５℃に到達したところで、開始剤分散液を添加し、８５℃に温度を保持しつつ、５時間攪拌を行った。

　次いで、反応液を冷却したのち、かかる反応液をヌッチェでろ過し、純水とイソプロピルアルコールで洗浄した。洗浄した粒子をポリビンに移し、水に分散してデカンテーションを３回行い、小粒子を除いた。以上の操作により水に分散した１２．５質量％の多孔質粒子４（粒子乾燥質量８．７ｇ）を得た。多孔質粒子４のエポキシ基含有量は、１．７ｍｍｏｌ／ｇであった。

　多孔質粒子１の代わりに多孔質粒子４を使用した以外は、実施例１と同様にして、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子４からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤４（Ａ－４）を得た。結果を表３に示す。

　２．２．６．実施例５～７
　実施例４において、単量体全量を１００質量部としたときの、各単量体の部数を表３の通りとした以外は、同様にして、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤５～７（Ａ－５～７）を得、評価した。結果を表３に示す。

　２．２．７．実施例８
　３４３ｇの純水にポリビニルアルコール（クラレ社製　ＰＶＡ－２１７）０．６８７ｇ、ドデシル硫酸ナトリウム（花王社製　エマール１０Ｇ）０．０７１ｇおよび硫酸ナトリウム１．７８ｇを添加し、一晩撹拌して水溶液（Ｓ－４）を調製した。重合当日、（Ｓ－４）の１０ｇを別に抜き取っておいた。

　次に、グリセロールメタクリレート（日本油脂社製）８．０２ｇ、４－ヒドロキシブチルアクリレートグリシジルエーテル（日本化成社製）１．６０ｇ、トリメチロールプロパントリメタクリレート（サートマー社製）６．４１ｇを２－オクタノン（東洋合成社製）１９．４ｇおよびアセトフェノン（和光純薬工業社製）４．９９ｇに溶解させ、単量体溶液を調製した。なお、単量体の全質量を１００質量部としたときの、各単量体の部数は、グリセロールメタクリレート５０質量部、４－ヒドロキシブチルアクリレートグリシジルエーテル１０質量部、トリメチロールプロパントリメタクリレート４０質量部である。

　（Ｓ－４）１０ｇに２、２’－アゾイソブチロニトリル（和光純薬工業社製）０．１９０ｇを添加して分散し、開始剤分散液とした。

　次いで、得られた水溶液（Ｓ－４）および単量体溶液をバッフル付きの０．５Ｌセパラブルフラスコ内に投入し、温度計、攪拌翼、および冷却管を装着して、温水バスにセットし、窒素雰囲気下、５５０ｒｐｍで撹拌を開始した。続いて、セパラブルフラスコを温水バスにより加温し、内温が８５℃に到達したところで、開始剤分散液を添加し、８５℃に温度を保持しつつ、５時間攪拌を行った。

　次いで、反応液を冷却したのち、かかる反応液をヌッチェでろ過し、純水とイソプロピルアルコールで洗浄した。洗浄した粒子をポリビンに移し、水に分散してデカンテーションを３回行い、小粒子を除いた。以上の操作により水に分散した１２．５質量％の多孔質粒子８（粒子乾燥質量７．５ｇ）を得た。多孔質粒子８のエポキシ基含有量は、０．３３ｍｍｏｌ／ｇであった。

　多孔質粒子１の代わりに多孔質粒子８を使用した以外は、実施例１と同様にして、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子８からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤８（Ａ－８）を得た。結果を表４に示す。

　２．２．８．比較例３
　実施例８で、単量体の種類および部数を、表４の通りとした以外は、同様にして、比較アフィニティークロマトグラフィー用充填剤３（Ｂ－３）を得、評価した。結果を表４に示す。

　２．２．９．実施例９
　実施例８で、ドデシル硫酸ナトリウムの量を０．０３６ｇとし、単量体の種類および部数を表４の通りとし、攪拌数を４５０ｒｐｍとした以外は、同様にして、開環エポキシ基を有しリガンドが結合した多孔質粒子９からなるアフィニティークロマトグラフィー用充填剤６９（Ａ－９）を得、評価した。結果を表４に示す。

　２．２．１０．比較例４
　実施例９で、単量体の部数を、表４の通りとした以外は、同様にして、比較アフィニティークロマトグラフィー用充填剤４（Ｂ－４）を得、評価した。結果を表４に示す。

　２．２．１１．比較例５
　（ｉ）多孔質粒子の懸濁重合
　４２５７ｇの純水にポリビニルアルコール（クラレ社製　ＰＶＡ－２１７）８．５１ｇ、ドデシル硫酸ナトリウム（花王社製　エマール１０Ｇ）０．４２５ｇおよび硫酸ナトリウム２１．３ｇを添加し、一晩撹拌して水溶液（Ｓ－５－１）を調製した。さらに重合当日、（Ｓ－５－１）の２０ｇを別に抜き取り、残りの（Ｓ－５－１）にヨウ化カリウム２．１３ｇを溶解して、水溶液（Ｓ－５－２）を調整した。

　次に、ペンタエリスリトールトリアクリレート６０質量％およびペンタエリスリトールテトラアクリレート４０質量％からなる単量体（新中村化学工業社製商品名「ＮＫエステルＡ－ＴＭＭ－３ＬＭ－Ｎ」）１０４ｇ、４－ヒドロキシブチルアクリレートグリシジルエーテル（日本化成社製）２０．７ｇ、ヒドロキシエチルアクリルアミド（興人社製）８２．９ｇを２－オクタノン（東洋合成社製）１３４ｇおよびアセトフェノン（和光純薬工業社製）１６９ｇに溶解させ、単量体溶液を調製した。なお、単量体の全質量を１００質量部としたときの、各単量体の部数は、ペンタエリスリトールトリアクリレート３０部、ペンタエリスリトールテトラアクリレート２０部、４－ヒドロキシブチルアクリレートグリシジルエーテル１０部、ヒドロキシエチルアクリルアミド４０部である。

　（Ｓ－５－１）２０ｇに２、２’－アゾイソブチロニトリル（和光純薬工業社製）１．９２ｇを添加して分散し、開始剤分散液とした。

　次いで、準備した水溶液（Ｓ－５－２）および単量体溶液をバッフル付きの７Ｌセパラブルフラスコ内に投入し、温度計、攪拌翼、および冷却管を装着して、温水バスにセットし、窒素雰囲気下、３００ｒｐｍで撹拌を開始した。続いて、セパラブルフラスコを温水バスにより加温し、内温が８０℃に到達したところで、開始剤分散液を添加し、８０℃に温度を保持しつつ、５時間攪拌を行った。

　次いで、反応液を冷却したのち、かかる反応液をヌッチェでろ過し、純水とイソプロピルアルコールで洗浄した。洗浄した粒子をポリビンに移し、水に分散してデカンテーションを３回行い、小粒子を除いた。以上の操作により水に分散した１２．５質量％の多孔質粒子（粒子乾燥質量１０７ｇ）を得た。多孔質粒子のエポキシ含有量は、０．２９ｍｍｏｌ／ｇであった。

　（ｉｉ）リガンドの作製、（ｉｉｉ）多孔質粒子とリガンドとの結合、および（ｉｖ）評価は実施例１と同様の方法で行った。結果を表４に示す。

　表２～４によれば、実施例１～９の充填剤を用いた場合、比較例１～５の充填剤を用いた場合と比較して、リガンドの保持量が多く、保存安定性に優れていることが理解できる。また、表２～表４によれば、リガンドとしてＳＰ４Ｚを用いた場合（実施例１、３、８、９）、液量差がより小さく、耐アルカリ性がより良好であることが理解できる。

　本実施形態に係る説明は以上である。本発明は、上述した実施形態に限定されるものではなく、さらなる種々の変形が可能である。また本発明は、実施形態で説明した構成と実質的に同一の構成（例えば、機能、方法および結果が同一の構成、あるいは目的および結果が同一の構成）を含む。また、本発明は、実施形態で説明した構成の本質的でない部分を置き換えた構成を含む。また、本発明は、実施形態で説明した構成と同一の作用効果を奏する構成または同一の目的を達成することができる構成を含む。また、本発明は、実施形態で説明した構成に公知技術を付加した構成を含む。

　本発明のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤は、従来の担体と比較してイムノグロブリン結合タンパク質の保持量が多く、かつ、当該タンパク質の保持能に優れている。これにより、目的タンパク質の捕捉量を高めることができるため、目的タンパク質（抗体）の結合容量を増大させることができる。その結果、純度の高い目的タンパク質を効率良く、低コストでかつ大量に精製することができる。

Claims

　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体　４０～９９．５質量部
　（Ｍ－２）エポキシ基含有ビニル単量体　０．５～３０質量部、
　（Ｍ－３）（Ｍ－１）および（Ｍ－２）以外のメタクリロイル基を含有するビニル単量体　０～５９．５質量部、ならびに
　（Ｍ－４）（Ｍ－１）、（Ｍ－２）および（Ｍ－３）以外のビニル単量体　０～２５質量部（但し、（Ｍ－１）、（Ｍ－２）、（Ｍ－３）および（Ｍ－４）の合計は１００質量部である。）
の共重合体からなる多孔質粒子と、
　前記共重合体に含まれるエポキシ基を開環させて得られる開環エポキシ基と、
　前記多孔質粒子に結合したリガンドと
を含むことを特徴とする、
　アフィニティークロマトグラフィー用充填剤。
　前記リガンドが、耐アルカリ性のイムノグロブリン結合性タンパク質である、請求項１に記載のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤。
　（Ｍ－１）水酸基を含有しエポキシ基を含有しないメタクリロイル基を含有するビニル単量体が下記一般式（Ａ）で示される単量体である、請求項１または２に記載のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤。
Ｈ_２Ｃ＝Ｃ（ＣＨ_３）Ｃ（＝Ｏ）ＯＣＨ_２ＣＨ（ＯＨ）－Ｒ　・・(Ａ)
（式中、Ｒは水素原子または１価の有機基を示す。）
　上記一般式（Ａ）におけるＲがヒドロキシメチル基またはメタクリロイルオキシメチル基である、請求項３に記載のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤。
　前記多孔質粒子の粒子径が３５～１００μｍである、請求項１～４のいずれか１つに記載のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤。
　請求項１～５のいずれか１つに記載のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤を用いて、前記充填剤にイムノグロブリンを吸着させる工程、
　前記イムノグロブリンを溶出させる工程、および
　前記充填剤をアルカリ性液で洗浄する工程
を含む、イムノグロブリンを単離する方法。
　請求項１～５のいずれか１つに記載のアフィニティークロマトグラフィー用充填剤が充填された、アフィニティークロマトグラフィー用充填カラム。