WO2009136573A1 - 血液分析装置、血液分析方法、溶血剤および染色剤 - Google Patents

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hemolytic agent
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英彬 松本
欣也 内橋
裕司 糸瀬
小西　綾
吉田　歩
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    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention relates to a blood analyzer, a blood analysis method, a hemolytic agent, and a staining agent, and in particular, a blood analysis device that classifies white blood cells and detects malaria-infected red blood cells, a blood analysis method, and a hemolytic agent used in this blood analysis method And dyeing agents.
  • blood analyzers that classify white blood cells are known. Such a blood analyzer is disclosed in, for example, JP-A-2006-292738. Conventionally, blood analyzers that detect malaria-infected erythrocytes are also known. Such a blood analyzer is disclosed in, for example, Japanese Patent Application Laid-Open No. 2006-304774.
  • the blood analyzer described in JP-A-2006-292738 described above uses a dedicated reagent for white blood cell classification to measure scattered light and fluorescence with a flow cytometer (optical information generation unit), and the white blood cells in the measurement sample Are classified into four.
  • the blood analyzer described in JP-A-2006-304774 uses a dedicated reagent for detecting malaria-infected erythrocytes, measures scattered light and fluorescence with a flow cytometer (light information generation unit), Is configured to detect malaria-infected erythrocytes.
  • the blood analyzer disclosed in JP-A-2006-292738 performs white blood cell classification using a reagent dedicated for white blood cell classification
  • the blood analyzer disclosed in JP-A-2006-304774 discloses a reagent for white blood cell classification.
  • the detection of malaria-infected erythrocytes is performed using a dedicated reagent for detection of malaria-infected erythrocytes having a different composition from that of the above, the blood analyzer of JP-A-2006-292738 and the blood analyzer of JP-A-2006-304774 Even if a blood analyzer capable of performing both leukocyte classification and malaria-infected erythrocyte detection is obtained in combination, two types of reagents with different compositions are used to perform both leukocyte classification and malaria-infected erythrocyte detection. There is a problem that it is necessary to develop separately and as a result, a burden is placed on the user.
  • the present invention has been made to solve the above-described problems, and one object of the present invention is to reduce four burdens of leukocytes in a measurement sample while reducing the burden on the user due to reagent development. And a blood analyzer capable of detecting malaria-infected erythrocytes, a blood analysis method, and a hemolyzing agent and a staining agent used in the blood analysis method.
  • a blood analyzer includes a first measurement sample including a blood sample and a hemolytic agent, a blood sample, and the same hemolytic agent and staining agent as the hemolytic agent.
  • White blood cells in the first measurement sample based on the optical information generation unit that generates the information and the second scattered light information, the first fluorescence information generated by the optical information generation unit, and the two types of first scattered light information Are classified into at least four types of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other groups, and the second fluorescence information and the second scattered light information generated by the optical information generation unit Based on the above, the blood cells in the second measurement sample are separated from malaria-infected erythrocytes and malaria-infected erythrocytes. And a control unit which classifies the to and population.
  • the sample preparation unit further prepares a third measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent, and the blood analysis device extracts the sample electricity from the third measurement sample.
  • An electrical information generation unit for generating information is further provided, and the control unit converts the white blood cells in the third measurement sample into at least lymphocytes and a group other than lymphocytes based on the electrical information generated by the electrical information generation unit. And classifying the white blood cells in the measurement sample into at least lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils based on the classification results of the first classification and the second classification. It is comprised so that it may classify
  • the apparatus further includes a second optical information generation unit that generates at least one of transmitted light information or scattered light information of the sample from the third measurement sample, and the control unit is generated by the second optical information generation unit.
  • the hemoglobin concentration in the third measurement sample is obtained based on at least one of the transmitted light information and the scattered light information.
  • the dilution factor of the hemolytic agent in the second measurement sample is different from the dilution factor of the hemolytic agent in the first measurement sample.
  • the dilution factor of the hemolytic agent in the second measurement sample is smaller than the dilution factor of the hemolytic agent in the first measurement sample.
  • the sample preparation unit mixes the blood sample, the hemolytic agent contained in a predetermined reagent container, and a predetermined amount of the diluted solution to prepare the first measurement sample.
  • the second measurement sample is prepared by mixing and mixing the blood sample, the hemolytic agent accommodated in a predetermined reagent container, and a diluent less than the predetermined amount.
  • the sample preparation unit is configured to prepare the second measurement sample by mixing the blood sample in a state where the hemolytic agent and the diluent are mixed.
  • the sample preparation unit is provided in a second reagent container different from the first reagent container containing at least a blood sample and a hemolytic agent used for the first measurement sample.
  • a second measurement sample is prepared by mixing the stored hemolytic agent.
  • the hemolytic agent accommodated in the second reagent container is preferably diluted 9 times or more and 12 times or less.
  • the hemolytic agent preferably contains two types of cationic surfactants.
  • the stain may contain a fluorescent dye represented by the following formula and a nonionic surfactant.
  • the blood analysis method prepares a first measurement sample containing a blood sample and a hemolytic agent, and a second measurement sample containing the blood sample and the same hemolytic agent and staining agent as the hemolytic agent. And generating first fluorescence information and at least two types of first scattered light information from the first measurement sample, and generating second fluorescence information and second scattered light information from the second measurement sample.
  • the white blood cells in the first measurement sample are at least monocytes, neutrophils
  • the blood cells in the second measurement sample are classified based on the step of classifying into four groups of eosinophils and other populations, and the second fluorescence information and the second scattered light information generated from the second measurement sample. Classifying into malaria-infected erythrocytes and populations other than malaria-infected erythrocytes Equipped with a.
  • a hemolytic agent prepares a first measurement sample containing a blood sample and a hemolytic agent, and a second measurement sample containing the blood sample and the same hemolytic agent and staining agent as the hemolytic agent.
  • the white blood cells in the first measurement sample are at least monocytes, neutrophils,
  • the blood cells in the second measurement sample are classified into malaria on the basis of the step of classifying them into four groups of acid spheres and other populations, and the second fluorescence information and the second scattered light information generated from the second measurement sample. Categorizing into infected red blood cells and populations other than malaria infected red blood cells Used in that blood analysis method.
  • a staining agent prepares a first measurement sample containing a blood sample and a hemolytic agent, and a second measurement sample containing the blood sample and the same hemolytic agent and staining agent as the hemolytic agent.
  • the white blood cells in the first measurement sample are at least monocytes, neutrophils,
  • the blood cells in the second measurement sample are classified into malaria on the basis of the step of classifying them into four groups of acid spheres and other populations, and the second fluorescence information and the second scattered light information generated from the second measurement sample. Categorizing into infected red blood cells and populations other than malaria infected red blood cells Used in that blood analysis method.
  • FIG. 1 It is a front view which shows schematic structure of the blood analyzer by one Embodiment of this invention. It is a block diagram which shows the structure of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a perspective view which shows the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a perspective view which shows the internal structure of the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a side view which shows the internal structure of the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a perspective view which shows typically the structure of the flow cell provided in the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG.
  • FIG. 2 is a particle size distribution diagram of white blood cells created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • 2 is a scattergram for white blood cell classification created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • 2 is a scattergram for white blood cell classification created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • 2 is a scattergram for classifying malaria created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 4 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 2.15 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1. .
  • FIG. 4 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 2.15 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 3 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1. .
  • FIG. 4 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown
  • FIG. 3 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1. .
  • FIG. 11 is a diagram showing an experimental result when the hemolytic agent shown in FIG. 10 is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 11 is a diagram showing an experimental result when the hemolytic agent shown in FIG. 10 is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • the blood analyzer 1 is an apparatus used for blood tests, and is mainly composed of a measurement unit 2 and a data processing unit 3.
  • the blood analyzer 1 is installed in a medical institution such as a hospital or a pathological examination facility, for example.
  • the measurement unit 2 performs a predetermined measurement on the components contained in the blood sample
  • the data processing unit 3 receives the measurement data to perform analysis processing.
  • the measurement unit 2 and the data processing unit 3 are connected by a data transmission cable 3a so that data communication can be performed.
  • the measurement unit 2 and the data processing unit 3 may be directly connected by a data transmission cable 3a.
  • the measurement unit 2 and the data processing unit 3 may be connected via a dedicated line using a telephone line, a communication network such as a LAN or the Internet. It may be connected.
  • the measurement unit 2 includes a sample supply unit 4, a WBC classification measurement unit 5, a DC measurement unit 6, an HGB measurement unit 7, a control unit 8, and a communication unit 9. .
  • a blood collection tube setting portion 2 a configured to be able to set a blood collection tube 20 containing a blood sample is provided in the lower right part of the front of the measurement unit 2.
  • the blood collection tube setting unit 2a is configured to be pushed forward by the user pressing a button switch 2b provided in the vicinity thereof. The user can set the blood collection tube 20 in a state in which the blood collection tube setting unit 2a protrudes. Then, after setting the blood collection tube 20, the blood collection tube setting unit 2 a is configured to be returned to the inside of the measurement unit 2 when the user presses the button switch 2 b again.
  • the measurement unit 2 includes a pipette 21 for aspirating the measurement sample, and chambers 22 and 23 (see FIG. 5) for mixing and preparing the blood sample and the reagent.
  • the pipette 21 is formed in a tubular shape extending in the vertical direction, and its tip is sharply pointed.
  • the pipette 21 is connected to a syringe pump (not shown), and is configured to suck and discharge a predetermined amount of liquid by the operation of the syringe pump.
  • the pipette 21 is connected to a moving mechanism, and is configured to be movable in the vertical direction and the front-back direction.
  • the pipette 21 is configured to suck a blood sample contained in the blood collection tube 20 by puncturing a sharp tip into a rubber cap 20 a that seals the blood collection tube 20.
  • the pipette 21 is configured to suck the blood sample and then move to a predetermined position by the moving mechanism to supply the blood sample into the chambers 22 and 23.
  • the sample supply unit 4 is a fluid unit having chambers 22 and 23, a plurality of solenoid valves, a diaphragm pump, and the like.
  • the chamber 22 is provided for preparing a measurement sample used for measurement of red blood cells, platelets, and hemoglobin concentration.
  • the chamber 23 is provided for preparing a measurement sample used for white blood cell measurement.
  • a reagent container is connected to the fluid unit constituted by the sample supply unit 4. Specifically, the diluent container 24 for containing the diluent, the hemolyzer container 25 for containing the hemolyzing agent 100, and the staining liquid container 26 for containing the staining liquid used for the measurement sample for malaria detection. Is connected to the fluid unit. Accordingly, the diluent and hemolytic agent 100 can be supplied to the chamber 22, and the diluent, hemolytic agent 100 and staining solution can be supplied to the chamber 23.
  • the WBC classification measurement unit 5 is an optical flow cytometer, and is provided for performing white blood cell classification detection and malaria-infected red blood cell detection (hereinafter referred to as malaria detection) by a flow cytometry method using semiconductor laser light. Yes.
  • the WBC classification measurement unit 5 includes a flow cell 51 (see FIG. 6) that forms a liquid flow of the measurement sample.
  • the flow cell 51 is formed in a tubular shape by a material such as translucent quartz, glass, and synthetic resin, and the inside thereof is a flow path through which a measurement sample and a sheath liquid (diluent) flow.
  • the flow cell 51 is provided with an orifice 51a whose inner space is narrowed narrower than other portions.
  • the vicinity of the inlet of the orifice 51a has a double tube structure, and the inner tube portion is a sample nozzle 51b.
  • the space outside the sample nozzle 51b is a flow path 51c through which the sheath liquid (diluent) flows, and the sheath liquid (diluent) flows through the flow path 51c and is introduced into the orifice 51a.
  • the sheath liquid (dilution liquid) supplied to the flow cell 51 flows so as to surround the measurement sample discharged from the sample nozzle 51b.
  • the flow of the measurement sample is narrowed down by the orifice 51a, and the white blood cells and red blood cells contained in the measurement sample are surrounded by the sheath liquid (diluent) and pass through the orifice 51a one by one.
  • a semiconductor laser light source 52 is arranged so as to emit laser light toward the orifice 51a of the flow cell 51.
  • the semiconductor laser light source 52 has a blue-violet semiconductor laser element 52a and is configured to emit blue-violet laser light having a wavelength of about 405 nm.
  • An irradiation lens system 53 including a plurality of lenses is disposed between the semiconductor laser light source 52 and the flow cell 51. By this irradiation lens system 53, the parallel beam emitted from the semiconductor laser light source 52 is focused on the beam spot.
  • a beam stopper 54a is provided on the optical axis linearly extending from the semiconductor laser light source 52 so as to face the irradiation lens system 53 with the flow cell 51 interposed therebetween.
  • the beam stopper 54a is a semiconductor laser light source.
  • the direct light from 52 is shielded.
  • a photodiode 54 is disposed further downstream of the beam stopper 54a on the optical axis.
  • the photodiode 54 is configured to receive the scattered light of the laser light generated by the measurement sample flowing through the flow cell 51. Specifically, among the light traveling along the optical axis extending linearly from the semiconductor laser light source 52, the direct light of the semiconductor laser light source 52 is blocked by the beam stopper 54a. Only scattered light (hereinafter referred to as forward scattered light) traveling along the axial direction is received.
  • the photodiode 54 is configured to photoelectrically convert forward scattered light emitted from the flow cell 51 and transmit an electric signal (hereinafter referred to as forward scattered light signal) generated thereby to the amplifier 54b.
  • the amplifier 54 b is configured to amplify the transmitted forward scattered light signal and output it to the control unit 8.
  • a side condenser lens 55 is disposed on the side of the flow cell 51 and in a direction orthogonal to the optical axis extending linearly from the semiconductor laser light source 52 to the photodiode 54. Is configured to collect side light (light emitted in a direction intersecting the optical axis) generated when a blood cell passing through the flow cell 51 is irradiated with laser light.
  • a dichroic mirror 56 is provided on the downstream side of the side condenser lens 55, and the dichroic mirror 56 is configured to divide the signal light transmitted from the side condenser lens 55 into a scattered light component and a fluorescent component.
  • a photodiode 57 for receiving side scattered light is provided, and light from the dichroic mirror 56 is provided.
  • An optical filter 58a and an avalanche photodiode 58 are provided on the downstream side of the shaft.
  • the photodiode 57 is configured to photoelectrically convert the side scattered light component divided by the dichroic mirror 56 and transmit an electric signal (hereinafter referred to as a side scattered light signal) generated thereby to the amplifier 57a.
  • the amplifier 57 a is configured to amplify the transmitted side scattered light signal and output the amplified side scattered light signal to the control unit 8.
  • the avalanche photodiode 58 is configured to photoelectrically convert the side fluorescent component after wavelength selection by the optical filter 58a, and to transmit an electric signal (side fluorescent signal) generated thereby to the amplifier 58b. Yes.
  • the amplifier 58b is configured to amplify the transmitted side fluorescent signal and output it to the control unit 8.
  • the DC measurement unit 6 is configured to be able to measure the red blood cell count (RBC) and the platelet count (PLT) by the sheath flow DC detection method. Further, the DC measurement unit 6 is configured to be able to obtain measurement data for calculating a hematocrit value (HCT) by the red blood cell pulse peak value detection method. Furthermore, the DC measurement unit 6 is also used for white blood cell count (WBC) detection for calculating the lymphocyte ratio.
  • the DC measurement unit 6 has a flow cell, and a measurement sample is transferred from the chamber 22 to the flow cell. For example, when measuring the number of red blood cells and platelets, as shown in FIG.
  • a measurement sample prepared by mixing a blood sample and a diluent in the chamber 22 together with a sheath solution (diluent) 4 to the flow cell.
  • a liquid flow is formed in a state where the measurement sample is surrounded by the sheath liquid (diluent).
  • the HGB measuring unit 7 is configured to measure the amount of hemoglobin (HGB) by the methemoglobin method. As shown in FIG. 9, the HGB measurement unit 7 has a cell for storing a diluted sample, and the measurement sample is transferred from the chamber 22 to this cell. And the HGB measurement part 7 has a light emitting diode which irradiates the light whose wavelength is about 555 nm, and measures the light absorbency by irradiating the light from a light emitting diode to the measurement sample in the said cell. It is configured.
  • a measurement sample is prepared by mixing the blood sample, the diluent, and the hemolytic agent 100 in the chamber 22.
  • the control unit 8 includes a CPU, a ROM, a RAM, and the like, and is configured to perform operation control of each unit of the measurement unit 2.
  • the communication unit 9 is, for example, an RS-232C interface, a USB interface, or an Ethernet (registered trademark) interface, and is configured to be able to transmit / receive data to / from the data processing unit 3.
  • the data processing unit 3 includes a CPU 31, a ROM 32, a RAM 33, a hard disk 34, a communication interface 35, an input unit 36 such as a keyboard and a mouse, and a display device 37.
  • the hard disk 34 of the data processing unit 3 is installed with an operating system and an application program for analyzing the measurement data received from the measurement unit 2.
  • the CPU 31 of the data processing unit 3 analyzes the measurement data by executing this application program, and performs white blood cell count (WBC), red blood cell count (RBC), hemoglobin amount (HGB), Hematocrit value (HCT), average erythrocyte volume (MCV), average erythrocyte hemoglobin amount (MCH), average erythrocyte hemoglobin concentration (MCHC), and platelet count (PLT) are calculated. Further, the CPU 31 creates a scattergram using the forward scattered light signal, the side scattered light signal, and the side fluorescent signal, and converts the white blood cells into neutrophils (Neut), lymphocytes, monocytes (Mono), and eosinophils. It is configured to be classified into five types: sphere (EO) and basophil (BASO).
  • the communication interface 35 is, for example, an RS-232C interface, a USB interface, or an Ethernet (registered trademark) interface, and is configured to be able to transmit and receive data to and from the measurement unit 2.
  • the hemolytic agent 100 in the present embodiment includes two kinds of cationic surfactants (lauryltrimethylammonium chloride; 34.1 mM, stearyltrimethylammonium chloride; 1.7 mM), and Does not contain labeling substances.
  • the hemolytic agent 100 has a property of converting hemoglobin in blood into methemoglobin.
  • the hemolytic agent 100 includes a phosphate buffer in order to maintain the pH at about 5 to about 7. This makes it possible to partially lyse the cell membrane of erythrocytes so that a fluorescent dye described later can permeate the cell membrane while the malaria parasite is held inside the erythrocytes.
  • each measurement sample used for each measurement has a different dilution ratio of the hemolytic agent 100 and a dilution ratio of the blood sample.
  • the white blood cells in the measurement sample are classified into four by simply changing the dilution factor without using two or more hemolytic agents having different compositions, and It is possible to detect malaria-infected erythrocytes.
  • the staining solution is a fluorescent dye (for example, Invitrogen's Hoechst 34580) having the chemical structure shown in FIG. 11 and a nonionic surfactant group that substantially dissolves the cell membrane of erythrocytes.
  • the fluorescent dye is specifically a DNA selective fluorescent dye, and preferably a DNA selective bisbenzimide fluorescent dye.
  • the DNA-selective fluorescent dye is a fluorescent dye that stains DNA more strongly than RNA, and the DNA-selective bisbenzimide fluorescent dye has a skeleton of bisimide.
  • This fluorescent dye can be excited by blue-violet laser light (wavelength is about 405 nm) emitted from the semiconductor laser light source 52a.
  • step S1 when the blood analyzer 1 is activated, after initialization of an application program and the like, it is determined in step S1 whether or not there is a measurement start instruction from the user by the CPU 31 of the data processing unit 3, This determination is repeated until instructed. If there is a measurement start instruction, a measurement start instruction signal is transmitted from the data processing unit 3 to the measurement unit 2 in step S2.
  • step S21 the control unit 8 of the measurement unit 2 determines whether a measurement start instruction signal is received, and this determination is repeated until it is received.
  • step S22 a blood sample is aspirated from the blood collection tube 20 set in the blood collection tube setting section 2a by the pipette 21.
  • step S23 the sample supply unit 4 prepares an RBC / PLT measurement sample (hereinafter referred to as a fourth measurement sample). Specifically, as shown in FIG. 13, a predetermined amount (for example, 2.0 mL) of diluent from the diluent container 24 and a predetermined amount (for example, 6 ⁇ L) sucked from the blood collection tube 20 by the pipette 21. A blood sample is supplied to the chamber 22 and agitated. Thereby, a predetermined amount (for example, 2.0 mL) of the fourth measurement sample is prepared.
  • a predetermined amount for example, 2.0 mL
  • step S24 a part (for example, 1 mL) of the fourth measurement sample in the chamber 22 is transferred to the DC measurement unit 6 together with the sheath liquid (diluent), and the DC measurement unit 6 performs the fourth measurement. RBC and PLT detection of the sample is performed.
  • step S25 the sample supply unit 4 prepares a WBC (for DC detection) / HGB measurement sample (hereinafter referred to as a third measurement sample). Specifically, as shown in FIG. 13, a predetermined amount (for example, 0.5 mL) of the hemolytic agent 100 is supplied from the hemolytic agent container 25 to the chamber 22 in which a predetermined amount (for example, 1 mL) of the fourth measurement sample remains. Supplied and stirred. That is, after the blood sample and the diluent are mixed in the chamber 22, the hemolytic agent 100 is mixed to prepare the third measurement sample.
  • a predetermined amount for example, 0.5 mL
  • a predetermined amount for example, 1 mL
  • red blood cells are hemolyzed and hemoglobin is converted into methemoglobin.
  • the third measurement sample in the chamber 22 is transferred to the DC measurement unit 6, and the WBC measurement of the third measurement sample is performed.
  • step S27 the third measurement sample is transferred to the HGB measurement unit 7, and HGB detection of the third measurement sample is performed.
  • a predetermined amount for example, 1 mL
  • a diluted hemolytic agent obtained by diluting the same hemolytic agent 100 contained in the
  • the blood sample and the staining solution are mixed in the state where the hemolytic agent 100 and the diluent are mixed in the chamber 23.
  • the hemolytic agent 100 is mixed with the blood sample in a state diluted with a diluent, it is possible to prevent the blood sample from being mixed with a hemolytic agent having a concentration higher than a desired concentration.
  • a second measurement sample in which the blood sample is diluted 100 times is prepared.
  • the red blood cell in the measurement sample is moderately reduced by making the dilution rate (9 times) of the hemolytic agent 100 in the second measurement sample smaller than the dilution rate (25 times) of the hemolysis agent 100 in the first measurement sample.
  • step S31 the second measurement sample in the chamber 23 is transferred to the WBC classification measurement unit 5 together with the sheath liquid (diluent), and the WBC classification measurement unit 5 detects malaria of the second measurement sample. Is called.
  • step S ⁇ b> 32 the measurement data measured in each detection unit is transmitted from the measurement unit 2 to the data processing unit 3.
  • step S3 it is determined whether or not the measurement data transmitted by the measurement unit 2 has been received, and this determination is repeated until it is received.
  • the CPU 31 calculates the white blood cell count (WBC) based on the measurement data obtained by WBC detection measured in step S26.
  • step S5 the CPU 31 creates a leukocyte particle size distribution map based on the measurement data obtained by WBC detection, and calculates the lymphocyte ratio relative to the white blood cell count (WBC), as shown in FIG.
  • the lymphocytes appear as the first mountain (group) from the left in the particle size distribution diagram.
  • the leukocytes are a group of lymphocytes and basophils, monocytes and granulocytes (neutrophils and eosinophils). (Group with sphere).
  • the CPU 31 creates a scattergram as shown in FIG. 15 using the forward scattered light signal and the side scattered light signal, and from this scattergram, a group of lymphocytes and basophils, The ratio of monocytes and granulocytes (neutrophil and eosinophil population) to each white blood cell count (WBC) is calculated.
  • WBC white blood cell count
  • leukocytes are classified into 3 groups of lymphocytes and basophils, monocytes and granulocytes (a group of neutrophils and eosinophils) on the scattergram. It can be seen that it can be classified into two types.
  • step S7 the CPU 31 classifies the leukocytes into two groups, eosinophils and a group other than eosinophils, based on the measurement data obtained by WBC classification detection. Specifically, the CPU 31 creates a scattergram using the forward scattered light signal and the side fluorescence signal, as shown in FIG. 16, and from this scattergram, the eosinophil ratio to the white blood cell count (WBC) is determined. calculate.
  • This side fluorescent signal is based on autofluorescence of leukocytes excited by blue-violet laser light (wavelength of about 405 nm) emitted from the semiconductor laser light source 52. Eosinophils are other than leukocyte eosinophils.
  • the CPU 31 can also calculate the ratio of eosinophils to the white blood cell count (WBC) from the scattergram based on the side scattered light signal and the side fluorescence signal.
  • WBC white blood cell count
  • FIG. 23 a blood sample actually collected from a subject is measured using the hemolytic agent in the present embodiment (see FIG. 10), and based on the forward scattered light signal and the side fluorescence signal obtained as a result. Shows the scattergram. As shown in FIG. 23, it can be seen that the actual measurement results can be classified into eosinophils and groups other than eosinophils on the scattergram.
  • step S8 the CPU 31 subtracts the eosinophil ratio calculated in step S7 from the granulocyte (the group of neutrophils and eosinophils) ratio calculated in step S6, thereby obtaining the white blood cell count ( The neutrophil ratio relative to (WBC) is calculated.
  • leukocytes are classified into four groups: lymphocytes and basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils.
  • step S9 the CPU 31 calculates the basophil ratio relative to the white blood cell count (WBC) by subtracting the lymphocyte ratio calculated in step S5 from the ratio of the population of lymphocytes and basophils. .
  • leukocytes are classified into five types: lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils and eosinophils.
  • step S10 the CPU 31 classifies malaria-infected erythrocytes from a group other than malaria-infected erythrocytes based on the measurement data obtained by malaria detection measured in step S31. Specifically, the CPU 31 creates a scattergram using the forward scattered light signal and the side fluorescence signal as shown in FIG. 17, and from this scattergram, malaria-infected erythrocytes are collected from a group other than malaria-infected erythrocytes. Classify. More specifically, in the scattergram of FIG. 17, red blood cells that are not infected with malaria appear in a region with low fluorescence intensity, while malaria-infected red blood cells appear in a region with relatively high fluorescence intensity. In addition, leukocytes appear in a region where both fluorescence intensity and scattered light intensity are large due to their size and DNA amount. This makes it possible to determine the presence or absence of malaria infection.
  • step S11 the CPU 31 calculates the red blood cell count (RBC), platelet count (PLT), and hematocrit value (HCT) based on the measurement data by RBC / PLT detection measured in step S24.
  • RBC red blood cell count
  • PLT platelet count
  • HCT hematocrit value
  • step S12 the CPU 31 calculates the hemoglobin amount (HGB) based on the measurement data obtained by the HGB detection measured in step S27. That is, the hemoglobin concentration is calculated based on the absorbance obtained by the HGB detection using the SLS hemoglobin method. As a result, the hemoglobin concentration can be obtained using the same third measurement sample as the measurement sample used for classifying leukocytes into five (neutrophils, lymphocytes, monocytes, eosinophils and basophils). is there.
  • HGB hemoglobin amount
  • step S13 from the red blood cell count (RBC), hematocrit value (HCT) and hemoglobin amount (HGB) calculated as described above, the CPU 31 causes the average red blood cell volume (MCV), average red blood cell hemoglobin amount (MCH) and Average erythrocyte hemoglobin concentration (MCHC) is calculated.
  • MCV average red blood cell volume
  • MCH average red blood cell hemoglobin amount
  • MCHC Average erythrocyte hemoglobin concentration
  • MCV (HCT / RBC) ⁇ 1000 (1)
  • MCV represents the mean red blood cell volume (fL)
  • HCT represents the hematocrit value (%)
  • RBC represents the number of red blood cells ( ⁇ 10 4 / ⁇ L).
  • MCH (HGB / RBC) ⁇ 1000 (2)
  • MCH represents the average amount of red blood cell pigment (pg)
  • HGB represents the amount of hemoglobin (g / dL)
  • RBC represents the number of red blood cells ( ⁇ 10 4 / ⁇ L).
  • MCHC (HGB / HCT) ⁇ 100 (3)
  • MCHC represents the average erythrocyte hemoglobin concentration (g / dL)
  • HGB represents the hemoglobin amount (g / dL)
  • HCT represents the hematocrit value (%).
  • step S14 the white blood cell count (WBC), red blood cell count (RBC), hemoglobin amount (HGB), hematocrit value (HCT), average red blood cell volume (MCV), average red blood cell hemoglobin amount (calculated as described above) MCH), average erythrocyte hemoglobin concentration (MCHC), and platelet count (PLT) are output to the display device 37. Further, the neutrophil ratio, lymphocyte ratio, monocyte ratio, eosinophil ratio, and basophil ratio relative to the white blood cell count (WBC) are output to the display device 37, and the result of malaria detection is also output.
  • the neutrophil count, lymphocyte count, monocyte count, eosinophil count and basophil count calculated based on the white blood cell count (WBC) and each blood cell ratio The number of balls is output.
  • step S15 it is determined whether or not there is a shutdown instruction from the user. If there is no instruction, the process proceeds to step S1. When there is a shutdown instruction, the operation of the data processing unit 3 for the sample analysis process in the blood analyzer 1 is terminated. On the measurement unit 2 side, after transmitting the measurement data to the data processing unit 3 in step S32, it is determined in step S33 whether or not there has been a shutdown instruction from the user. If there is no instruction, the process proceeds to step S21. To be migrated. If there is a shutdown instruction, the operation of the measurement unit 2 of the sample analysis process in the blood analyzer 1 is ended.
  • the WBC classification measurement unit 5 uses the blood sample and the hemolytic agent 100.
  • blood cells in the second measurement sample are classified into groups other than malaria-infected erythrocytes and malaria-infected erythrocytes.
  • the hemolytic agent for classifying the white blood cells into four and the hemolytic agent for detecting malaria-infected red blood cells can be used in common. It is not necessary to develop two different reagents (hemolytic agent) compositions in order to perform the A infected erythrocytes detection. Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four and the malaria-infected red blood cells can be detected.
  • the white blood cells in the third measurement sample are classified into lymphocytes and a group other than lymphocytes based on the measurement data obtained by the DC measurement unit 6, and the classification results and the above-described white blood cells are classified.
  • the white blood cells in the measurement sample are classified into at least five of lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils.
  • the CPU 31 it is possible to classify white blood cells into lymphocytes and a group other than lymphocytes using the same hemolytic agent 100 as the hemolytic agent for performing white blood cell classification and malaria-infected red blood cell detection.
  • the white blood cells in the measurement sample can be classified into 5 without separately developing different hemolytic agents.
  • the side fluorescent signal, the forward scattered light signal, and the side light generated from the first measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent 100 by the WBC classification measurement unit 5 are used.
  • the step of classifying the white blood cells in the first measurement sample into at least four of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other groups, and WBC classification measurement unit 5 Infects blood cells in the second measurement sample with malaria based on the side fluorescence signal and the forward scattered light signal generated from the blood sample, the same hemolysis agent 100 as the hemolysis agent 100, and the second measurement sample containing the staining agent.
  • a step of classifying the red blood cells into a group other than the malaria-infected red blood cells thereby making the hemolytic agent for classifying the white blood cells into four and the hemolytic agent for detecting the malaria-infected red blood cells common. Since it is not necessary to develop two different reagents (hemolytic agent) compositions in order to perform the white blood cell classification and malaria infected erythrocytes detection. Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four and the malaria-infected red blood cells can be detected.
  • the hemolytic agent according to the present embodiment is converted from the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattering generated from the WBC classification measurement unit 5 from the first measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent 100.
  • the step of classifying the white blood cells in the first measurement sample into at least four of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other populations and the WBC classification measurement unit 5
  • a side fluorescence signal and a forward scattered light signal generated from a blood sample a second measurement sample containing the same hemolyzing agent 100 as the hemolytic agent 100, and a staining agent
  • blood cells in the second measurement sample are converted to malaria-infected erythrocytes.
  • a hemolytic agent for classifying leukocytes into four and a hemolytic agent for detecting malaria-infected erythrocytes It is possible to Tonghua, it is not necessary to develop two different reagents (hemolytic agent) compositions in order to perform the white blood cell classification and malaria infected erythrocytes detection. Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four and the malaria-infected red blood cells can be detected.
  • the staining agent according to the present embodiment is obtained by using the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattering generated from the first measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent 100 by the WBC classification measurement unit 5.
  • the step of classifying the white blood cells in the first measurement sample into at least four of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other populations, and the WBC classification measurement unit 5 Based on a side fluorescence signal and a forward scattered light signal generated from a blood sample, a second measurement sample containing the same hemolyzing agent 100 as the hemolytic agent 100, and a staining agent, blood cells in the second measurement sample are converted to malaria-infected erythrocytes.
  • a hemolytic agent for classifying leukocytes into four and a hemolytic agent for detecting malaria-infected erythrocytes It is possible to Tonghua, it is not necessary to develop two different reagents (hemolytic agent) compositions in order to perform the white blood cell classification and malaria infected erythrocytes detection. Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four and the malaria-infected red blood cells can be detected.
  • Example 2 the malaria infection rate obtained by visual observation and the malaria infection rate obtained based on the method described in the above embodiment (the same reagent as the reagent described in the above embodiment was used). The relationship is shown in Table 1 below. The visual measurement and the measurement by the method described in the above embodiment were performed on the same specimen for a plurality of blood samples.
  • the malaria infection rate obtained by visual observation and the malaria infection rate obtained based on the method described in the above embodiment are substantially the same, and according to the method described in the above embodiment. It was confirmed that malaria-infected erythrocytes could be detected with high accuracy.
  • Malaria infection rate (%) X / Y ⁇ 100 (4)
  • Y represents the predetermined number.
  • Y is about 10,000 for samples 1 and 2, about 20,000 for sample 3, and about 30,000 for sample 4.
  • the malaria infection rate obtained based on the method described in the above embodiment was calculated by the following equation (5).
  • Malaria infection rate (%) (6) / (7) ⁇ 100 (5)
  • (6) is A ⁇ B / C
  • (7) is the number of red blood cells obtained by measuring the same blood sample with a multi-item automatic blood cell analyzer XE-2100 (manufactured by Sysmex Corporation). Represent each.
  • A is the number of blood cells in the malaria region of FIG. 17
  • B is the number of white blood cells obtained by measuring the same blood sample with the multi-item automatic blood cell analyzer XE-2100
  • C is the white blood cell number of FIG. The number of blood cells in the region.
  • a hemolytic agent container as a reagent container that accommodates a hemolytic agent commonly used for WBC detection, HGB detection, WBC classification detection, and malaria detection is connected to the sample supply unit.
  • the present invention is not limited to this, and four hemolytic agent containers may be connected to the sample supply unit so as to accommodate the hemolytic agent used for each detection separately, and any one of the above four detections.
  • the hemolytic agent used in the above may be accommodated in a common hemolytic agent container, and two or three hemolytic agent containers may be connected to the sample supply unit. Further, five or more hemolytic agent containers may be connected to the sample supply unit.
  • the hemolytic agent accommodated in each hemolytic agent container is previously diluted to a predetermined dilution rate, the hemolytic agent is diluted to a desired dilution rate when preparing a measurement sample used for each detection. There is no need to provide a separate process.
  • a hemolytic agent not containing a labeling substance is shown as an example of the hemolytic agent.
  • the present invention is not limited to this, and the hemolytic agent may contain a labeling substance.
  • the present invention is not limited to this, and WBC detection, HGB detection, and WBC classification detection are used. Separate hemolytic agents may be used.
  • each detection process is performed in the order of RBC / PLT detection, WBC detection, HGB detection, WBC classification detection, and malaria detection from the earliest in the sample analysis process.
  • each detection process may be performed in a sequence other than the above.
  • the order of the white blood cell classification process, the malaria classification process, the red blood cell count / platelet count calculation process, and the hemoglobin amount calculation process in the sample analysis process can be appropriately changed.
  • the example which provides the semiconductor laser light source which has a blue-violet semiconductor laser element was shown in the said embodiment, this invention is not limited to this, Other than a blue-violet semiconductor laser element, such as a blue semiconductor laser element or an argon laser element A light source having a laser element may be provided.
  • the hemolytic agent in the second measurement sample is diluted 9 times, but the present invention is not limited to this. Further, the hemolytic agent in the second measurement sample is preferably diluted 9 times or more and 12 times or less.
  • a hemolytic agent it is an alkyl trimethyl ammonium salt
  • Cationic surfactant (lauryl trimethyl ammonium chloride; 34.1 mM, stearyl trimethyl whose alkyl group has 12 to 18 carbon atoms)
  • a hemolytic agent containing ammonium chloride (1.7 mM) was shown, but the present invention is not limited to this, and a WBC (a total of lauryltrimethylammonium chloride and stearyltrimethylammonium chloride in the above embodiment) is not limited thereto.
  • the concentration in the measurement sample is 0.62 mM or more and 2.15 mM or less, it may be a hemolytic agent containing a cationic surfactant having a concentration other than the above.
  • the concentration of the active agent in the hemolytic agent is 15.5 mM, and the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent when the concentration of the cationic surfactant in the WBC (classification) measurement sample is 2.15 mM. 75 mM.
  • the concentration of the cationic surfactant in the WBC (for classification) measurement sample is 2.15 mM. Even above, it can be measured.
  • the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent is varied in the blood analyzer according to one embodiment of the present invention.
  • a plurality of experimental results were obtained in which the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent varies by a small amount.
  • the concentration of the cationic surfactant in the WBC (for classification) measurement sample is 2
  • Two experimental results in the case of using a hemolytic agent having a concentration of 15 mM and in the case of using a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in the WBC (for classification) measurement sample of the cationic surfactant will be described.
  • leukocytes are classified into three groups: a lymphocyte and basophil group, a monocyte, and a granulocyte (neutrophil and eosinophil group). It is possible. Further, as shown in FIGS. 19 and 21, it is possible to classify into eosinophils and groups other than eosinophils on the scattergram. From these classification results, it is possible to classify leukocytes into four groups: a group of lymphocytes and basophils, monocytes, neutrophils and eosinophils. Therefore, it is considered that leukocytes can be classified into four categories when the concentration of the cationic surfactant in the WBC (for classification) measurement sample is in the range of 0.62 mM to 2.15 mM.

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Abstract

　この血液分析装置は、血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、血液試料と溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製する試料調製部と、光情報生成部が生成する蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を少なくとも、単球と好中球と好酸球と他の集団との４つに分類し、光情報生成部が生成する蛍光情報と散乱光情報とに基づいて、第２測定試料中の血球をマラリア感染赤血球と他の集団とに分類する制御部とを備える。

Description

血液分析装置、血液分析方法、溶血剤および染色剤
　本発明は、血液分析装置、血液分析方法、溶血剤および染色剤に関し、特に、白血球を分類し、マラリア感染赤血球を検出する血液分析装置、血液分析方法、ならびに、この血液分析方法に用いる溶血剤および染色剤に関する。
　従来、白血球を分類する血液分析装置が知られている。このような血液分析装置は、たとえば、特開２００６－２９２７３８号公報に開示されている。また、従来、マラリア感染赤血球を検出する血液分析装置も知られている。このような血液分析装置は、たとえば、特開２００６－３０４７７４号公報に開示されている。
　上記特開２００６－２９２７３８号公報に記載の血液分析装置は、白血球分類用の専用の試薬を用いて、フローサイトメータ（光情報生成部）により散乱光および蛍光を測定し、測定試料中の白血球を４つに分類するように構成されている。
　上記特開２００６－３０４７７４号公報に記載の血液分析装置は、マラリア感染赤血球検出用の専用の試薬を用いて、フローサイトメータ（光情報生成部）により散乱光および蛍光を測定し、測定試料中のマラリア感染赤血球を検出するように構成されている。
　また、近年、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出の両方を行うことが可能な血液分析装置が望まれている。
　しかしながら、上記特開２００６－２９２７３８号公報の血液分析装置では、白血球分類用の専用の試薬を用いて白血球分類を行うとともに、上記特開２００６－３０４７７４号公報の血液分析装置では、白血球分類用試薬とは組成の異なるマラリア感染赤血球検出用の専用の試薬を用いてマラリア感染赤血球検出を行うので、上記特開２００６－２９２７３８号公報の血液分析装置と上記特開２００６－３０４７７４号公報の血液分析装置とを組み合わせて、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出の両方を行うことが可能な血液分析装置を得た場合でも、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出の両方を行うために組成の異なる２種類の試薬を別々に開発する必要があり、その結果、ユーザに負担がかかるという問題点がある。
　この発明は、上記のような課題を解決するためになされたものであり、この発明の１つの目的は、試薬開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、マラリア感染赤血球を検出することが可能な血液分析装置、血液分析方法、ならびに、この血液分析方法に用いる溶血剤および染色剤を提供することである。
　上記目的を達成するために、この発明の第１の局面による血液分析装置は、血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製する試料調製部と、第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成する光情報生成部と、光情報生成部により生成された第１蛍光情報と２種類の第１散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類し、光情報生成部により生成された第２蛍光情報と第２散乱光情報とに基づいて、第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類する制御部とを備える。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、試料調製部は、血液試料と溶血剤とを含む第３測定試料をさらに調製し、血液分析装置は、第３測定試料から、試料の電気情報を生成する電気情報生成部をさらに備え、制御部は、電気情報生成部により生成された電気情報に基づいて、第３測定試料中の白血球を少なくともリンパ球とリンパ球以外の集団とに第２分類するとともに、第１分類および第２分類の分類結果に基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するように構成されている。
　この場合、好ましくは、第３測定試料から、試料の透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成する第２光情報生成部をさらに備え、制御部は、第２光情報生成部により生成された透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、第３測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するように構成されている。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、第２測定試料における溶血剤の希釈倍率は、第１測定試料における溶血剤の希釈倍率と異なる。
　この場合、好ましくは、第２測定試料における溶血剤の希釈倍率は、第１測定試料における溶血剤の希釈倍率よりも小さい。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、試料調製部は、血液試料、所定の試薬容器に収容された溶血剤、および、所定量の希釈液を混合することにより第１測定試料を調製し、血液試料、所定の試薬容器に収容された溶血剤、および、所定量よりも少ない量の希釈液を混合することにより第２測定試料を調製するように構成されている。
　この場合、好ましくは、試料調製部は、溶血剤と希釈液とを混合した状態で、血液試料を混合することにより第２測定試料を調製するように構成されている。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、試料調製部は、少なくとも血液試料、および、第１測定試料に用いられる溶血剤が収容された第１試薬容器とは異なる第２試薬容器に収容された溶血剤を混合することにより第２測定試料を調製するように構成されている。
　この場合、好ましくは、第２試薬容器に収容された溶血剤は、９倍以上１２倍以下に希釈されている。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、溶血剤は、２種類のカチオン性界面活性剤を含む。
　上記第１の局面による血液分析装置において、染色剤は、以下の式で示される蛍光色素と、ノニオン界面活性剤とを含んでいてもよい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
　この発明の第２の局面による血液分析方法は、血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製するステップと、第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成するステップと、第１測定試料から生成された第１蛍光情報と２種類の第１散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、第２測定試料から生成された第２蛍光情報と第２散乱光情報とに基づいて、第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備える。
　この発明の第３の局面による溶血剤は、血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製するステップと、第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成するステップと、第１測定試料から生成された第１蛍光情報と２種類の第１散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、第２測定試料から生成された第２蛍光情報と第２散乱光情報とに基づいて、第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備える血液分析方法に用いられる。
　この発明の第４の局面による染色剤は、血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製するステップと、第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成するステップと、第１測定試料から生成された第１蛍光情報と２種類の第１散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、第２測定試料から生成された第２蛍光情報と第２散乱光情報とに基づいて、第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備える血液分析方法に用いられる。
本発明の一実施形態による血液分析装置の概略構成を示す正面図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の構成を示すブロック図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットを示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットの内部構造を示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットの内部構造を示す側面図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたフローセルの構成を模式的に示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたＷＢＣ分類測定部の構成を示す概略図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたＤＣ測定部の構成を模式的に示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたＨＧＢ測定部の構成を模式的に示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置に用いられる溶血剤の組成を示す図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置に用いられるマラリア検出用の染色液の組成を示す図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置における試料分析処理を示すフローチャートである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置に用いられる第３測定試料および第４測定試料の作成工程を説明するための図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成される白血球の粒度分布図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成される白血球分類用のスキャッタグラムである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成される白血球分類用のスキャッタグラムである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成されるマラリア分類用のスキャッタグラムである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、図１０に示した溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、図１０に示した溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。
　以下、本発明の実施形態を図面に基づいて説明する。
　まず、図１～図１１を参照して、本発明の一実施形態による血液分析装置１の構成について説明する。
　本実施形態による血液分析装置１は、図１に示すように、血液検査に使用される装置であり、測定ユニット２と、データ処理ユニット３とによって主として構成されている。また、血液分析装置１は、たとえば、病院または病理検査施設などの医療機関の施設内に設置されている。また、血液分析装置１では、測定ユニット２により血液試料中に含まれる成分について所定の測定を行い、この測定データをデータ処理ユニット３で受信して分析処理を行っている。そして、測定ユニット２とデータ処理ユニット３とは、互いにデータ通信可能なように、データ伝送ケーブル３ａにより接続されている。なお、測定ユニット２とデータ処理ユニット３とは、データ伝送ケーブル３ａにより直接接続される構成であってもよいし、たとえば、電話回線を使用した専用回線、ＬＡＮまたはインターネットなどの通信ネットワークを介して接続されていてもよい。
　測定ユニット２は、図２に示すように、試料供給部４と、ＷＢＣ分類測定部５と、ＤＣ測定部６と、ＨＧＢ測定部７と、制御部８と、通信部９とを含んでいる。また、図３に示すように、測定ユニット２の正面右下部分には、血液試料を収容した採血管２０をセット可能に構成された採血管セット部２ａが設けられている。この採血管セット部２ａは、その近傍に設けられたボタンスイッチ２ｂをユーザが押下することにより、手前方向に迫り出すように構成されている。ユーザは、採血管セット部２ａが迫り出した状態で採血管２０をセットすることが可能である。そして、採血管２０をセットした後、ユーザが再度ボタンスイッチ２ｂを押下することにより、採血管セット部２ａは測定ユニット２の内部に戻されるように構成されている。
　測定ユニット２の内部には、図４および図５に示すように、測定試料を吸引するピペット２１、および、血液試料と試薬とを混合調製するためのチャンバ２２、２３（図５参照）などが設けられている。ピペット２１は、上下方向に延びた管状に形成されており、その先端は鋭く尖っている。また、ピペット２１は、図示しないシリンジポンプに連結されており、このシリンジポンプの動作によって液体を所定量だけ吸引するとともに、吐出することが可能なように構成されている。また、ピペット２１は、移動機構に接続されており、上下方向および前後方向にそれぞれ移動可能に構成されている。また、ピペット２１は、採血管２０を密閉するゴム製のキャップ２０ａに、鋭利な先端を穿刺することにより、採血管２０に収容された血液試料を吸引するように構成されている。また、ピペット２１は、血液試料を吸引した後、移動機構により所定の位置まで移動され、チャンバ２２および２３内に血液試料を供給するように構成されている。
　試料供給部４は、チャンバ２２および２３、複数の電磁弁、ダイヤフラムポンプなどを有する流体ユニットである。チャンバ２２は、赤血球、血小板の測定、およびヘモグロビン濃度の測定に用いられる測定試料を調製するために設けられている。また、チャンバ２３は、白血球の測定に用いられる測定試料を調製するために設けられている。また、試料供給部４により構成される流体ユニットには、試薬容器が接続されている。具体的には、希釈液を収容するための希釈液容器２４、溶血剤１００を収容するための溶血剤容器２５およびマラリア検出用の測定試料に用いられる染色液を収容するための染色液容器２６が流体ユニットに接続されている。これにより、希釈液および溶血剤１００をチャンバ２２に供給することが可能であるとともに、希釈液、溶血剤１００および染色液をチャンバ２３に供給することが可能である。
　ＷＢＣ分類測定部５は、光学式のフローサイトメータであり、半導体レーザ光を用いたフローサイトメトリー法により、白血球分類検出およびマラリア感染赤血球検出（以下、マラリア検出という）を行うために設けられている。また、ＷＢＣ分類測定部５は、測定試料の液流を形成するフローセル５１（図６参照）を有している。フローセル５１は、透光性を有する石英、ガラス、合成樹脂などの材料によって管状に構成されており、その内部が測定試料およびシース液（希釈液）が通流する流路となっている。このフローセル５１には、内部空間が他の部分よりも細く絞り込まれたオリフィス５１ａが設けられている。また、オリフィス５１ａの入口付近は二重管構造となっており、その内側管部分は試料ノズル５１ｂとなっている。また、試料ノズル５１ｂの外側の空間はシース液（希釈液）が通流する流路５１ｃであり、シース液（希釈液）は、流路５１ｃを通流し、オリフィス５１ａに導入される。このようにフローセル５１に供給されたシース液（希釈液）は、試料ノズル５１ｂから吐出された測定試料を取り囲むように流れる。そして、オリフィス５１ａによって測定試料の流れが細く絞り込まれ、測定試料に含まれる白血球、赤血球などの粒子がシース液（希釈液）に取り囲まれて１つずつオリフィス５１ａを通過する。
　また、ＷＢＣ分類測定部５には、半導体レーザ光源５２が、フローセル５１のオリフィス５１ａへ向けてレーザ光を出射するように配置されている。この半導体レーザ光源５２は、青紫色半導体レーザ素子５２ａを有し、波長が約４０５ｎｍの青紫色レーザ光を出射することが可能なように構成されている。また、半導体レーザ光源５２とフローセル５１との間には、複数のレンズからなる照射レンズ系５３が配置されている。この照射レンズ系５３によって、半導体レーザ光源５２から出射された平行ビームがビームスポットに集束されるようになっている。また、半導体レーザ光源５２から直線的に延びた光軸上には、フローセル５１を挟んで照射レンズ系５３に対向するように、ビームストッパ５４ａが設けられており、ビームストッパ５４ａは、半導体レーザ光源５２からの直接光を遮光するように構成されている。
　また、ビームストッパ５４ａのさらに光軸下流側には、フォトダイオード５４が配置されている。フォトダイオード５４は、フローセル５１を流れる測定試料により生じるレーザ光の散乱光を受光するように構成されている。具体的には、半導体レーザ光源５２から直線的に延びた光軸に沿って進行する光のうち、半導体レーザ光源５２の直接光はビームストッパ５４ａによって遮断されるので、フォトダイオード５４は、概ね光軸方向に沿って進行する散乱光（以下、前方散乱光という）のみを受光するように構成されている。また、フォトダイオード５４は、フローセル５１から発せられた前方散乱光を光電変換し、これによって生じた電気信号（以下、前方散乱光信号という）をアンプ５４ｂに伝達するように構成されている。そして、アンプ５４ｂは、伝達された前方散乱光信号を増幅し、制御部８に出力するように構成されている。
　また、フローセル５１の側方であって、半導体レーザ光源５２からフォトダイオード５４へ直線的に延びる光軸に対して直交する方向には、側方集光レンズ５５が配置されており、この側方集光レンズ５５は、フローセル５１内を通過する血球にレーザ光を照射したときに発生する側方光（前記光軸に対して交差する方向へ出射される光）を集光するように構成されている。側方集光レンズ５５の下流側にはダイクロイックミラー５６が設けられており、ダイクロイックミラー５６は、側方集光レンズ５５から送られる信号光を散乱光成分と蛍光成分とに分けるように構成されている。ダイクロイックミラー５６の側方（側方集光レンズ５５とダイクロイックミラー５６とを結ぶ光軸方向に交差する方向）には、側方散乱光受光用のフォトダイオード５７が設けられており、ダイクロイックミラー５６の光軸下流側には、光学フィルタ５８ａおよびアバランシェフォトダイオード５８が設けられている。また、フォトダイオード５７は、ダイクロイックミラー５６で分けられた側方散乱光成分を光電変換し、これによって生じた電気信号（以下、側方散乱光信号という）をアンプ５７ａに伝達するように構成されている。そして、アンプ５７ａは、伝達された側方散乱光信号を増幅し、制御部８に出力するように構成されている。
　また、アバランシェフォトダイオード５８は、光学フィルタ５８ａにより波長選択された後の側方蛍光成分を光電変換し、これによって生じた電気信号（側方蛍光信号）をアンプ５８ｂに伝達するように構成されている。そして、アンプ５８ｂは、伝達された側方蛍光信号を増幅し、制御部８に出力するように構成されている。
　ＤＣ測定部６は、シースフローＤＣ検出法により、赤血球数（ＲＢＣ）および血小板数（ＰＬＴ）を測定することが可能なように構成されている。また、ＤＣ測定部６は、赤血球パルス波高値検出法により、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）を算出するための測定データも得ることが可能に構成されている。さらに、ＤＣ測定部６は、リンパ球比率を算出するための白血球数（ＷＢＣ）検出にも用いられる。また、ＤＣ測定部６は、フローセルを有しており、このフローセルにチャンバ２２から測定試料が移送されるようになっている。たとえば、赤血球数および血小板数の測定を行う場合には、図８に示すように、チャンバ２２において血液試料と希釈液とが混合調製された測定試料が、シース液（希釈液）とともに試料供給部４からフローセルに移送される。そして、フローセル内では、測定試料がシース液（希釈液）によって取り囲まれた状態の液流が形成される。
　ＨＧＢ測定部７は、メトヘモグロビン法により、血色素量（ＨＧＢ）を測定するように構成されている。ＨＧＢ測定部７は、図９に示すように、希釈試料を収容するセルを有しており、このセルにチャンバ２２から測定試料が移送されるようになっている。そして、ＨＧＢ測定部７は、波長が約５５５ｎｍの光を照射する発光ダイオードを有しており、上記セル中の測定試料に発光ダイオードからの光を照射することによって、その吸光度を測定するように構成されている。なお、ヘモグロビンの測定を行う場合には、チャンバ２２において、血液試料、希釈液および溶血剤１００が混合され測定試料が調製される。
　制御部８は、ＣＰＵ、ＲＯＭ、ＲＡＭなどから構成されており、測定ユニット２の各部の動作制御を行うように構成されている。
　通信部９は、たとえば、ＲＳ－２３２Ｃインタフェース、ＵＳＢインタフェース、Ｅｔｈｅｒｎｅｔ（登録商標）インタフェースであり、データ処理ユニット３との間でデータの送受信を行うことが可能なように構成されている。
　データ処理ユニット３は、図２に示すように、ＣＰＵ３１、ＲＯＭ３２、ＲＡＭ３３、ハードディスク３４、通信インタフェース３５、キーボードおよびマウスなどの入力部３６、およびディスプレイ装置３７を備えるコンピュータによって構成されている。データ処理ユニット３のハードディスク３４には、オペレーティングシステムと、測定ユニット２から受信した測定データを分析処理するためのアプリケーションプログラムがインストールされている。
　ここで、本実施形態では、データ処理ユニット３のＣＰＵ３１は、このアプリケーションプログラムを実行することにより、測定データを分析処理し、白血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）、血色素量（ＨＧＢ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）、平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）、血小板数（ＰＬＴ）を算出するように構成されている。さらに、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号、側方散乱光信号、側方蛍光信号を用いてスキャッタグラムを作成して、白血球を好中球（Ｎｅｕｔ）、リンパ球、単球（Ｍｏｎｏ）、好酸球（ＥＯ）、好塩基球（ＢＡＳＯ）の５つに分類するように構成されている。
　通信インタフェース３５は、たとえば、ＲＳ－２３２Ｃインタフェース、ＵＳＢインタフェース、Ｅｔｈｅｒｎｅｔ（登録商標）インタフェースであり、測定ユニット２との間でデータの送受信を行うことが可能に構成されている。
　また、本実施形態における溶血剤１００は、図１０に示すように、２種類のカチオン性界面活性剤（ラウリルトリメチルアンモニウムクロライド；３４．１ｍＭ、ステアリルトリメチルアンモニウムクロライド；１．７ｍＭ）を含み、かつ、標識物質を含んでいない。また、この溶血剤１００は、血液中のヘモグロビンをメトヘモグロビンへと転化する性質を有している。また、溶血剤１００は、ｐＨを約５～約７に保つためにリン酸緩衝液を含んでいる。これにより、マラリア原虫を赤血球内部に保持した状態で、後述する蛍光色素が細胞膜を透過できるように、赤血球の細胞膜を部分的に溶解することが可能となる。また、後述するように、各測定に用いられる各測定試料は、それぞれ、溶血剤１００の希釈倍率、および、血液試料の希釈倍率が異なっている。このように２種類のカチオン性界面活性剤を用いることによって、組成が異なる２種類以上の溶血剤を用いることなく希釈倍率を変えるだけで、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、マラリア感染赤血球の検出を行うことが可能である。
　また、本実施形態では、染色液は、図１１に示す化学式の構造を有する蛍光色素（たとえば、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社のヘキスト３４５８０）と、実質的に赤血球の細胞膜を溶解するノニオン界面活性剤群のうちの１つとを含有している。この蛍光色素は、具体的には、ＤＮＡ選択的蛍光色素であり、好ましくは、ＤＮＡ選択的ビスベンズイミド系蛍光色素がよい。なお、ＤＮＡ選択的蛍光色素とは、ＲＮＡよりもＤＮＡを強く染色する蛍光色素であり、ＤＮＡ選択的ビスベンズイミド系蛍光色素とは、骨格がビスイミド系のものである。このように、ＤＮＡ選択的蛍光色素を用いることによって、核のない赤血球は染色されず、マラリア原虫のＤＮＡが染色されるので、上記したフローサイトメータにより得られるスキャッタグラム（図１７参照）から、容易に、内部にマラリア原虫を有するマラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とを分類することが可能である。なお、この蛍光色素は、半導体レーザ光源５２ａから出射される青紫色レーザ光（波長が約４０５ｎｍ）により励起可能である。
　次に、図１２～図１７を参照して、本発明の一実施形態による血液分析装置１における試料分析処理について説明する。
　まず、血液分析装置１が起動されると、アプリケーションプログラムなどの初期化が行われた後、ステップＳ１において、データ処理ユニット３のＣＰＵ３１により、ユーザからの測定開始指示があったか否かが判断され、指示があるまでこの判断が繰り返される。そして、測定開始指示があった場合には、ステップＳ２において、データ処理ユニット３から測定ユニット２に測定開始指示信号が送信される。
　そして、ステップＳ２１において、測定ユニット２の制御部８により、測定開始指示信号が受信されたか否かが判断され、受信するまでこの判断が繰り返される。測定ユニット２が測定開始指示信号を受信すると、ステップＳ２２において、ピペット２１により、採血管セット部２ａにセットされた採血管２０から血液試料が吸引される。
　そして、ステップＳ２３において、試料供給部４により、ＲＢＣ／ＰＬＴ測定試料（以下、第４測定試料という）が調製される。具体的には、図１３に示すように、希釈液容器２４から所定量（たとえば、２．０ｍＬ）の希釈液、および、ピペット２１により採血管２０から吸引された所定量（たとえば、６μＬ）の血液試料がチャンバ２２に供給され、攪拌される。これにより、所定量（たとえば、２．０ｍＬ）の第４測定試料が調製される。その後、ステップＳ２４において、チャンバ２２内の第４測定試料の一部（たとえば、１ｍＬ）が、シース液（希釈液）とともにＤＣ測定部６に移送されるとともに、ＤＣ測定部６により、第４測定試料のＲＢＣおよびＰＬＴ検出が行われる。
　そして、ステップＳ２５において、試料供給部４により、ＷＢＣ（ＤＣ検出用）・ＨＧＢ測定試料（以下、第３測定試料という）が調製される。具体的には、図１３に示すように、所定量（たとえば、１ｍＬ）の第４測定試料が残存するチャンバ２２に、溶血剤容器２５から所定量（たとえば、０．５ｍＬ）の溶血剤１００が供給され、攪拌される。すなわち、チャンバ２２において血液試料と希釈液とが混合された後、溶血剤１００が混合されて第３測定試料が調製される。これにより、溶血剤１００が３倍に希釈（溶血剤／希釈液＝１／２）され、血液試料が５００倍に希釈された第３測定試料が調製される。また、これにより、赤血球が溶血されるとともに、ヘモグロビンがメトヘモグロビンへと転化される。その後、ステップＳ２６において、チャンバ２２内の第３測定試料がＤＣ測定部６に移送されて、第３測定試料のＷＢＣ測定が行われる。また、ステップＳ２７において、第３測定試料がＨＧＢ測定部７に移送されて、第３測定試料のＨＧＢ検出が行われる。
　そして、ステップＳ２８において、試料供給部４により、ＷＢＣ（分類用）測定試料（以下、第１測定試料という）が調製される。具体的には、上記した第３測定試料に含まれるのと同じ溶血剤１００が２５倍に希釈（溶血剤／希釈液＝１／２４）された所定量（たとえば、１ｍＬ）の希釈溶血剤、および、採血管２０から吸引された所定量（たとえば、１０μＬ）の血液試料がチャンバ２３に供給され、攪拌される。これにより、血液試料が１００倍に希釈された第１測定試料が調製される。その後、ステップＳ２９において、チャンバ２３内の第１測定試料が、シース液（希釈液）とともにＷＢＣ分類測定部５に移送されるとともに、ＷＢＣ分類測定部５により、第１測定試料のＷＢＣ検出が行われる。
　ここで、本実施形態では、ステップＳ３０において、試料供給部４により、マラリア測定試料（以下、第２測定試料という）が調製される。具体的には、上記した第１測定試料に含まれるのと同じ溶血剤１００が９倍に希釈（溶血剤／希釈液＝１／８）された所定量（たとえば、１ｍＬ）の希釈溶血剤に、採血管２０から吸引された所定量（たとえば、１０μＬ）の血液試料、および、染色液容器２６から所定量（たとえば、１０μＬ）の染色液がチャンバ２３に供給され、攪拌される。すなわち、チャンバ２３において溶血剤１００と希釈液とが混合された状態で、血液試料および染色液が混合される。これにより、溶血剤１００は希釈液で希釈された状態で血液試料に混合されるので、血液試料が所望の濃度よりも高い濃度の溶血剤と混合されるのを抑制することが可能である。そして、血液試料が１００倍に希釈された第２測定試料が調製される。このように、第２測定試料における溶血剤１００の希釈倍率（９倍）を、第１測定試料における溶血剤１００の希釈倍率（２５倍）よりも小さくすることによって、測定試料中の赤血球を適度に溶血することができるので、精度よくマラリア感染赤血球の検出を行うことが可能となる。また、これにより、溶血剤容器２５に収容された共通の溶血剤１００を用いて、第１測定試料および第２測定試料の両方を調製することが可能となる。その後、ステップＳ３１において、チャンバ２３内の第２測定試料が、シース液（希釈液）とともにＷＢＣ分類測定部５に移送されるとともに、ＷＢＣ分類測定部５により、第２測定試料のマラリア検出が行われる。そして、ステップＳ３２において、各検出部において測定された測定データが、測定ユニット２からデータ処理ユニット３に送信される。
　データ処理ユニット３では、ステップＳ３において、測定ユニット２が送信した測定データが受信されたか否かが判断され、受信するまでこの判断が繰り返される。そして、測定データを受信すると、ステップＳ４において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２６で測定されたＷＢＣ検出による測定データに基づいて、白血球数（ＷＢＣ）が算出される。また、ステップＳ５において、ＣＰＵ３１により、ＷＢＣ検出による測定データに基づいて、図１４に示すように、白血球の粒度分布図が作成され、白血球数（ＷＢＣ）に対するリンパ球比率が算出される。なお、リンパ球は、粒度分布図において、左から１つ目の山（集団）として現れる。
　次に、ステップＳ６において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２９で測定されたＷＢＣ分類検出による測定データに基づいて、白血球がリンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）の３つに分類される。具体的には、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号および側方散乱光信号を用いて、図１５に示すように、スキャッタグラムを作成し、このスキャッタグラムから、リンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）のそれぞれの白血球数（ＷＢＣ）に対する比率を算出する。ここで、図２２には、実際に被験者から採取した血液試料を、本実施形態における溶血剤（図１０参照）を用いて測定し、その結果得られた前方散乱光信号および側方散乱光信号によるスキャッタグラムを示す。図２２に示すように、実際の測定結果においても、スキャッタグラム上で、白血球をリンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）の３つに分類することが可能であることが分かる。
　そして、ステップＳ７において、ＣＰＵ３１により、ＷＢＣ分類検出による測定データに基づいて、白血球が好酸球および好酸球以外の集団の２つに分類される。具体的には、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号および側方蛍光信号を用いて、図１６に示すように、スキャッタグラムを作成し、このスキャッタグラムから、白血球数（ＷＢＣ）に対する好酸球比率を算出する。この側方蛍光信号は、半導体レーザ光源５２から出射された青紫色レーザ光（波長が約４０５ｎｍ）により励起された白血球の自家蛍光に基づくものであり、好酸球は、白血球の好酸球以外の集団よりも強い蛍光強度を有している。なお、ＣＰＵ３１は、側方散乱光信号および側方蛍光信号によるスキャッタグラムから、白血球数（ＷＢＣ）に対する好酸球比率を算出することも可能である。ここで、図２３には、実際に被験者から採取した血液試料を、本実施形態における溶血剤（図１０参照）を用いて測定し、その結果得られた前方散乱光信号および側方蛍光信号によるスキャッタグラムを示す。図２３に示すように、実際の測定結果においても、スキャッタグラム上で、好酸球と好酸球以外の集団とに分類することが可能であることが分かる。
　その後、ステップＳ８において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ６で算出された顆粒球（好中球と好酸球との集団）比率から、ステップＳ７で算出された好酸球比率を差し引くことによって、白血球数（ＷＢＣ）に対する好中球比率が算出される。これにより、白血球がリンパ球と好塩基球との集団、単球、好中球および好酸球の４つに分類される。そして、ステップＳ９において、ＣＰＵ３１により、リンパ球と好塩基球との集団の比率から、ステップＳ５で算出されたリンパ球比率を差し引くことによって、白血球数（ＷＢＣ）に対する好塩基球比率が算出される。これにより、白血球がリンパ球、好塩基球、単球、好中球および好酸球の５つに分類される。
　また、本実施形態では、ステップＳ１０において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ３１で測定されたマラリア検出による測定データに基づいて、マラリア感染赤血球がマラリア感染赤血球以外の集団から分類される。具体的には、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号および側方蛍光信号を用いて、図１７に示すように、スキャッタグラムを作成し、このスキャッタグラムから、マラリア感染赤血球をマラリア感染赤血球以外の集団から分類する。より具体的には、図１７のスキャッタグラムにおいて、マラリアに感染していない赤血球は蛍光強度の小さい領域に現れる一方、マラリア感染赤血球は比較的蛍光強度の大きい領域に現れる。また、白血球は、そのサイズおよびＤＮＡ量に起因して、蛍光強度および散乱光強度の両方が大きい領域に現れる。これにより、マラリア感染の有無を判断することが可能となる。
　次に、ステップＳ１１において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２４で測定されたＲＢＣ／ＰＬＴ検出による測定データに基づいて、赤血球数（ＲＢＣ）、血小板数（ＰＬＴ）およびヘマトクリット値（ＨＣＴ）が算出される。
　そして、ステップＳ１２において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２７で測定されたＨＧＢ検出による測定データに基づいて、血色素量（ＨＧＢ）が算出される。すなわち、ＳＬＳヘモグロビン法を用いたＨＧＢ検出により得られた吸光度に基づいて、ヘモグロビン濃度が算出される。これにより、白血球を５つ（好中球、リンパ球、単球、好酸球および好塩基球）に分類するために用いる測定試料と同じ第３測定試料を用いて、ヘモグロビン濃度を取得可能である。
　その後、ステップＳ１３において、上記のように算出された赤血球数（ＲＢＣ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）および血色素量（ＨＧＢ）から、ＣＰＵ３１により、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）および平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）が算出される。各値の算出式をそれぞれ以下の式（１）～（３）に示す。
　ＭＣＶ＝（ＨＣＴ／ＲＢＣ）×１０００・・・・・（１）
　上記式（１）において、ＭＣＶは平均赤血球容積（ｆＬ）、ＨＣＴはヘマトクリット値（％）、ＲＢＣは赤血球数（×１０４／μＬ）をそれぞれ表す。
　ＭＣＨ＝（ＨＧＢ／ＲＢＣ）×１０００・・・・・（２）
　上記式（２）において、ＭＣＨは平均赤血球血色素量（ｐｇ）、ＨＧＢは血色素量（ｇ／ｄＬ）、ＲＢＣは赤血球数（×１０４／μＬ）をそれぞれ表す。
　ＭＣＨＣ＝（ＨＧＢ／ＨＣＴ）×１００・・・・・（３）
　上記式（３）において、ＭＣＨＣは平均赤血球血色素濃度（ｇ／ｄＬ）、ＨＧＢは血色素量（ｇ／ｄＬ）、ＨＣＴはヘマトクリット値（％）をそれぞれ表す。
　そして、ステップＳ１４において、上記のように算出された、白血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）、血色素量（ＨＧＢ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）、平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）、血小板数（ＰＬＴ）の算出結果がディスプレイ装置３７に出力される。さらに、白血球数（ＷＢＣ）に対する好中球比率、リンパ球比率、単球比率、好酸球比率および好塩基球比率がディスプレイ装置３７に出力されるとともに、マラリア検出の結果も出力される。なお、白血球数（ＷＢＣ）に対する各血球比率に加えて、白血球数（ＷＢＣ）および各血球比率に基づいて算出された好中球数、リンパ球数、単球数、好酸球数および好塩基球数が出力される。
　その後、ステップＳ１５において、ユーザからのシャットダウン指示の有無が判断され、指示がない場合には、ステップＳ１に移行される。シャットダウン指示があった場合には、血液分析装置１における試料分析処理のデータ処理ユニット３の動作が終了される。また、測定ユニット２側では、ステップＳ３２で測定データをデータ処理ユニット３に送信した後、ステップＳ３３において、ユーザからのシャットダウン指示があったか否かが判断され、指示がない場合には、ステップＳ２１に移行される。シャットダウン指示があった場合には、血液分析装置１における試料分析処理の測定ユニット２の動作が終了される。
　本実施形態では、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類し、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料、前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００、および染色剤を含む第２測定試料から生成された側方蛍光信号および前方散乱光信号に基づいて、第２測定試料中の血球をマラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するＣＰＵ３１を設けることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とマラリア感染赤血球を検出するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出を行うために組成の異なる２種類の試薬（溶血剤）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、マラリア感染赤血球の検出を行うことができる。
　また、本実施形態では、ＤＣ測定部６により得られた測定データに基づいて、第３測定試料中の白血球をリンパ球とリンパ球以外の集団とに分類するとともに、この分類結果と上記した白血球の４分類の分類結果とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するようにＣＰＵ３１を構成することによって、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出を行うための溶血剤と同じ溶血剤１００を用いて、白血球をリンパ球とリンパ球以外の集団とに分類することができるので、組成の異なる溶血剤を別途開発することなく、測定試料中の白血球を５つに分類することができる。
　また、本実施形態による血液分析方法では、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料、前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００、および染色剤を含む第２測定試料から生成された側方蛍光信号および前方散乱光信号に基づいて、第２測定試料中の血球をマラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを設けることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とマラリア感染赤血球を検出するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出を行うために組成の異なる２種類の試薬（溶血剤）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、マラリア感染赤血球の検出を行うことができる。
　また、本実施形態による溶血剤を、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料、前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００、および染色剤を含む第２測定試料から生成された側方蛍光信号および前方散乱光信号に基づいて、第２測定試料中の血球をマラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備えた血液分析方法に用いることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とマラリア感染赤血球を検出するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出を行うために組成の異なる２種類の試薬（溶血剤）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、マラリア感染赤血球の検出を行うことができる。
　また、本実施形態による染色剤を、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料、前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００、および染色剤を含む第２測定試料から生成された側方蛍光信号および前方散乱光信号に基づいて、第２測定試料中の血球をマラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備えた血液分析方法に用いることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とマラリア感染赤血球を検出するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびマラリア感染赤血球検出を行うために組成の異なる２種類の試薬（溶血剤）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、マラリア感染赤血球の検出を行うことができる。
　（実施例）
　次に、目視により得られたマラリア感染率と、上記実施形態に記載の方法（試薬は、上記実施形態に記載の試薬と同様のものを使用した）に基づいて得られたマラリア感染率との関係を以下の表１に示す。なお、目視による測定と上記実施形態に記載の方法による測定とは、複数の血液試料について、同じ検体について行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　表１に示すように、目視により得られたマラリア感染率と、上記実施形態に記載の方法に基づいて得られたマラリア感染率とは略一致しており、上記実施形態に記載の方法によれば、マラリア感染赤血球を精度よく検出できることを確認することができた。
　なお、目視によるマラリア感染率は、以下の式（４）により算出した。
　マラリア感染率（％）＝Ｘ／Ｙ×１００・・・・・（４）
　上記式（４）において、Ｘは目視によりカウントされた所定数（＝Ｙ）の赤血球のうち、マラリアに感染していると決定された赤血球の数、Ｙは上記所定数をそれぞれ表す。なお、表１において、Ｙは、サンプル１および２については約１０，０００、サンプル３については約２０，０００、サンプル４については約３０，０００である。
　また、上記実施形態に記載の方法に基づいて得られたマラリア感染率は、以下の式（５）により算出した。
　マラリア感染率（％）＝（６）／（７）×１００・・・・・（５）
　上記式（５）において、（６）はＡ×Ｂ／Ｃ、（７）は同じ血液試料を多項目自動血球分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社製）で測定して得られた赤血球数をそれぞれ表す。なお、上記（６）のＡは図１７のマラリア領域内の血球数、Ｂは同じ血液試料を多項目自動血球分析装置ＸＥ－２１００で測定して得られた白血球数、Ｃは図１７の白血球領域内の血球数である。
　なお、今回開示された実施形態は、全ての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は、上記した実施形態の説明ではなく特許請求の範囲によって示され、さらに特許請求の範囲と均等の意味および範囲内での全ての変更が含まれる。
　たとえば、上記実施形態では、ＷＢＣ検出、ＨＧＢ検出、ＷＢＣ分類検出およびマラリア検出に共通に用いられる溶血剤を収容する１つの、試薬容器としての溶血剤容器を試料供給部に接続する例を示したが、本発明はこれに限らず、各検出に用いる溶血剤をそれぞれ別々に収容するように４つの溶血剤容器を試料供給部に接続してもよいし、上記４つの検出のうち、いずれかに用いる溶血剤を共通の溶血剤容器に収容し、２つまたは３つの溶血剤容器を試料供給部に接続してもよい。また、５つ以上の溶血剤容器を試料供給部に接続してもよい。この際、各溶血剤容器に収容する溶血剤を、それぞれ予め所定の希釈倍率に希釈しておけば、各検出に用いる測定試料を調製する際に、溶血剤を所望の希釈倍率に希釈するための工程を別途設ける必要がない。
　また、上記実施形態では、溶血剤の一例として、標識物質を含まない溶血剤を示したが、本発明はこれに限らず、溶血剤が標識物質を含んでいてもよい。
　また、上記実施形態では、ＷＢＣ検出およびＨＧＢ検出に、ＷＢＣ分類検出に用いる溶血剤と同じ溶血剤を用いる例を示したが、本発明はこれに限らず、ＷＢＣ検出、ＨＧＢ検出およびＷＢＣ分類検出にそれぞれ別々の専用の溶血剤を用いてもよい。
　また、上記実施形態では、試料分析処理において、早いものからＲＢＣ／ＰＬＴ検出、ＷＢＣ検出、ＨＧＢ検出、ＷＢＣ分類検出およびマラリア検出の順序で各検出処理を行う例を示したが、本発明はこれに限らず、試料分析処理において、上記以外の順序で各検出処理を行ってもよい。また、試料分析処理における、白血球分類処理、マラリア分類処理、赤血球数・血小板数算出処理、および、血色素量算出処理の順序も適宜変更可能である。
　また、上記実施形態では、青紫色半導体レーザ素子を有する半導体レーザ光源を設ける例を示したが、本発明はこれに限らず、青色半導体レーザ素子またはアルゴンレーザ素子など、青紫色半導体レーザ素子以外のレーザ素子を有する光源を設けてもよい。
　また、上記実施形態では、第２測定試料における溶血剤を９倍に希釈する構成の例を示したが、本発明はこれに限られない。また、第２測定試料における溶血剤は、９倍以上１２倍以下に希釈することが好ましい。
　また、上記実施形態では、溶血剤の一例として、アルキルトリメチルアンモニウム塩であって、アルキル基の炭素数が１２以上１８以下であるカチオン性界面活性剤（ラウリルトリメチルアンモニウムクロライド；３４．１ｍＭ、ステアリルトリメチルアンモニウムクロライド；１．７ｍＭ）を含む溶血剤を示したが、本発明はこれに限らず、カチオン性界面活性剤（上記実施形態では、ラウリルトリメチルアンモニウムクロライドとステアリルトリメチルアンモニウムクロライドの合計）のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が、０．６２ｍＭ以上２．１５ｍＭ以下であれば、上記以外の濃度のカチオン性界面活性剤を含む溶血剤であってもよい。なお、上記実施形態では、溶血剤を２５倍希釈して測定試料を調製しているので、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭになるときのカチオン性界面活性剤の溶血剤における濃度は１５．５ｍＭであり、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭになるときのカチオン性界面活性剤の溶血剤における濃度は５３．７５ｍＭである。また、上記の溶血剤に代えて、アルキル基の炭素数が８以上１０以下であるカチオン性界面活性剤を用いれば、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭ以上であっても測定可能である。
　ここで、本発明の一実施形態による血液分析装置において、溶血剤におけるカチオン性界面活性剤の濃度を変動させた場合の実験結果について説明する。実験では、溶血剤におけるカチオン性界面活性剤の濃度が微量ずつ異なる複数の実験結果を得たが、ここでは、代表して、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭである溶血剤を用いた場合、および、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭである溶血剤を用いた場合の２つの実験結果について説明する。
　図１８および図２０に示すように、スキャッタグラム上で、白血球をリンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）の３つに分類することが可能である。また、図１９および図２１に示すように、スキャッタグラム上で、好酸球と好酸球以外の集団とに分類することが可能である。また、これらの分類結果から白血球を、リンパ球と好塩基球との集団、単球、好中球および好酸球の４つに分類することが可能である。したがって、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭ以上２．１５ｍＭ以下の範囲においては、白血球を４分類することが可能であると考えられる。

Claims (14)

  1. 　血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、前記血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製する試料調製部と、
    　前記第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、前記第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成する光情報生成部と、
    　前記光情報生成部により生成された前記第１蛍光情報と前記２種類の第１散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類し、前記光情報生成部により生成された前記第２蛍光情報と前記第２散乱光情報とに基づいて、前記第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類する制御部とを備える、血液分析装置。
  2. 　前記試料調製部は、前記血液試料と前記溶血剤とを含む第３測定試料をさらに調製し、
    　前記血液分析装置は、前記第３測定試料から、試料の電気情報を生成する電気情報生成部をさらに備え、
    　前記制御部は、前記電気情報生成部により生成された電気情報に基づいて、前記第３測定試料中の白血球を少なくともリンパ球とリンパ球以外の集団とに第２分類するとともに、前記第１分類および前記第２分類の分類結果に基づいて、前記測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するように構成されている、請求項１に記載の血液分析装置。
  3. 　前記第３測定試料から、試料の透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成する第２光情報生成部をさらに備え、
    　前記制御部は、前記第２光情報生成部により生成された前記透過光情報または前記散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、前記第３測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するように構成されている、請求項２に記載の血液分析装置。
  4. 　前記第２測定試料における前記溶血剤の希釈倍率は、前記第１測定試料における前記溶血剤の希釈倍率と異なる、請求項１～３のいずれか１項に記載の血液分析装置。
  5. 　前記第２測定試料における前記溶血剤の希釈倍率は、前記第１測定試料における前記溶血剤の希釈倍率よりも小さい、請求項４に記載の血液分析装置。
  6. 　前記試料調製部は、前記血液試料、所定の試薬容器に収容された前記溶血剤、および、所定量の希釈液を混合することにより前記第１測定試料を調製し、前記血液試料、前記所定の試薬容器に収容された前記溶血剤、および、前記所定量よりも少ない量の前記希釈液を混合することにより前記第２測定試料を調製するように構成されている、請求項１に記載の血液分析装置。
  7. 　前記試料調製部は、前記溶血剤と前記希釈液とを混合した状態で、前記血液試料を混合することにより前記第２測定試料を調製するように構成されている、請求項６に記載の血液分析装置。
  8. 　前記試料調製部は、少なくとも前記血液試料、および、前記第１測定試料に用いられる前記溶血剤が収容された第１試薬容器とは異なる第２試薬容器に収容された前記溶血剤を混合することにより前記第２測定試料を調製するように構成されている、請求項１に記載の血液分析装置。
  9. 　前記第２試薬容器に収容された前記溶血剤は、９倍以上１２倍以下に希釈されている、請求項８に記載の血液分析装置。
  10. 　前記溶血剤は、２種類のカチオン性界面活性剤を含む、請求項１に記載の血液分析装置。
  11. 　前記染色剤は、以下の式で示される蛍光色素と、ノニオン界面活性剤とを含む、請求項１に記載の血液分析装置。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
  12. 　血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、前記血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製するステップと、
    　前記第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、前記第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成するステップと、
    　前記第１測定試料から生成された前記第１蛍光情報と前記２種類の第１散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、
    　前記第２測定試料から生成された前記第２蛍光情報と前記第２散乱光情報とに基づいて、前記第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備える、血液分析方法。
  13. 　血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、前記血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製するステップと、前記第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、前記第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成するステップと、前記第１測定試料から生成された前記第１蛍光情報と前記２種類の第１散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、前記第２測定試料から生成された前記第２蛍光情報と前記第２散乱光情報とに基づいて、前記第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備える血液分析方法に用いられる前記溶血剤。
  14. 　血液試料と溶血剤とを含む第１測定試料と、前記血液試料と前記溶血剤と同じ溶血剤と染色剤とを含む第２測定試料とを調製するステップと、前記第１測定試料から、第１蛍光情報と、少なくとも２種類の第１散乱光情報とを生成するとともに、前記第２測定試料から、第２蛍光情報と第２散乱光情報とを生成するステップと、前記第１測定試料から生成された前記第１蛍光情報と前記２種類の第１散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、前記第２測定試料から生成された前記第２蛍光情報と前記第２散乱光情報とに基づいて、前記第２測定試料中の血球を、マラリア感染赤血球とマラリア感染赤血球以外の集団とに分類するステップとを備える血液分析方法に用いられる前記染色剤。
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