WO2006085402A1 - ウシ白血病発症に対する抵抗性の判定方法 - Google Patents

ウシ白血病発症に対する抵抗性の判定方法 Download PDF

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WO2006085402A1
WO2006085402A1 PCT/JP2005/015779 JP2005015779W WO2006085402A1 WO 2006085402 A1 WO2006085402 A1 WO 2006085402A1 JP 2005015779 W JP2005015779 W JP 2005015779W WO 2006085402 A1 WO2006085402 A1 WO 2006085402A1
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dqa1
aryl
chain
leukemia
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Yoko Aida
Shinnosuke Takeshima
Mayu Kado
Akimi Miki
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Riken
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    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/172—Haplotypes

Definitions

  • the present invention relates to a method for determining resistance to the onset of leukemia, and a kit therefor.
  • the present invention also relates to a method for producing a ushi having resistance to the development of leukemia leukemia.
  • BLV Usi leukemia virus
  • HTLV-1 human T-cell leukemia virus
  • EBL causes
  • BLV-infected cattle show three conditions: undeveloped health, persistent lymphocytosis (PL), and leukemia after a longer incubation period.
  • PL persistent lymphocytosis
  • the present inventors have previously shown that one of the causes of disease susceptibility is the polymorphism of the DR molecule of ushi major histocompatibility antigen (BoLA) (Patent Documents 1 and 2: Japanese Patent Application Laid-Open No. 2004-294405). No. 301518 and JP 2001-238679).
  • the BoLA gene region is located on chromosome 23 and contains class I, class II and class III genes having high homology with humans and mice. Among them, DR and DQ gene subregions are mapped to the class lib subregion. To date, five DQA and DQB genes have been identified in the DQ gene region.
  • DQA and DQB genes differ in number and composition depending on the haplotype, and it is thought that they form one or two DQ molecules and induce antigen presentation ability although they are weak (Non-Patent Documents 1 to 4: Schneider S) , Roessl i D., and Excoffier L., A software for population genetics data analysis, rlequin, en etics and Biometry Laboratory, University of Geneva, Switzerland, 2000; Aida Y., Characterization and Expression of Bovine MHC Class II Genes , Bulletin de la Soc iete Franco- Japonaise des Sciences Veterinaires, 3 ⁇ 43 ⁇ 4b ⁇ , p.17-24, 1995 Cattle; Burke M.G., Stone RT, and Muggli- Cockett NE, Nucleotide-sequence and northern anal ysis of a bovine major histocompatibility class II DR— beta— like cDNA, Animal geneti cs, 22nd, p.343-352, 1991; Fraser DC,
  • An object of the present invention is to provide a method and means for finding an aryl associated with resistance to leprosy leukemia and for determining the resistance.
  • the present inventor has intensively studied to solve the above-mentioned problems, and uses the boar leukemia virus infected boar leukemia virus and the boar leukemosis leech virus in BoLA-DQA1 and BoLA-DQA2. As a result, it was found that DQA1 * 0101 aryl was present at a significantly high frequency in the healthy rabbit group. In addition, the present inventor obtained the finding that ushi having both DQA1 * 0101 aryl and DRB3 * 0701 aryl in BoLA — DRB3 has a particularly high resistance to rush leukemia virus. O Completed
  • the present invention includes the following (1) to (14).
  • a susceptibility to ushi leukemia virus in a test ushi comprising determining whether or not the 75th amino acid of the ushi major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain is Norin.
  • DQA1 * 0101 aryl indicates that the test susceptibility is resistant to the development of ushi leukemia caused by ushi leukemia virus infection.
  • step (b) can be performed by, for example, a typing method (PCR-SBT) based on the single-stranded polymerase chain reaction sequence.
  • step (b) comprises (b 1) performing an amplification reaction using a primer consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 and a primer consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 4, or (b2 )
  • step (b) may further include the step (b3) of determining the base sequence of the obtained amplification product.
  • DQA1 * 0101 aryl and DRB3 * 0701 aryl indicates that the test susceptibility is resistant to susceptibility to development of sci leukemia virus infection.
  • steps (b) and (c) can be performed by a typing method (PCR-SBT) based on the polymerase chain reaction single nucleotide sequence.
  • PCR-SBT a typing method
  • DRB3 * 14012, DQA1 * 10012, and DQA2 * 22021, and the presence of a haplotype that does not have the DQA3 gene indicates that the test susceptibility is resistant to the development of leukemia leukemia. The method as described above.
  • a ushi is produced using a ushi determined to have leukemia onset resistance, A method for producing ushi which is resistant to ushi leukemia onset by ushi leukemia virus infection.
  • Ushi major histocompatibility antigen DQ molecule against the development of Ushi leukemia caused by Ushi leukemia virus infection comprising means for detecting DQA1 * 01 01 aryl of DQA1 gene encoding ⁇ chain
  • a kit for determining resistance comprising
  • a method for determining resistance to rush leukemia caused by rush leukemia virus involves the presence of D QA1 * 0101 aryl in the ushi major histocompatibility antigen DQ molecule ⁇ chain, or the DQA 1 * 0101 arryl in the ushi major histocompatibility antigen DQ molecule chain and the DRB3 * 0701 aryl in the DR molecule j8 chain. It is possible to easily and quickly determine the onset resistance of a test eagle by detecting a haplotype that is a specific allylica. It is useful for the production of ushi which has resistance to the onset.
  • FIG. 1 shows the result of comparing DQA1 * 0101 aryl with other aryls for a part of the amino acid sequence of the ⁇ chain of the BoLA-DQ molecule.
  • the 75th amino acid residue is D-AQ 1 * 0101 araryl! And parin (V), while the other aralkyl is iso-orcin (I).
  • FIG. 2 shows the position of the 75th amino acid residue of the ⁇ chain of the DQ molecule in the three-dimensional structure of HLA-DQ8.
  • the right figure shows the ⁇ chain with DQA1 * 0101 aryl
  • the left figure shows the ⁇ chain with other aryl.
  • the upper side represents the ⁇ 1 domain of the DQ molecule
  • the lower side represents the ⁇ 1 domain of the DQ molecule.
  • the elongated sequence at the center represents the antigenic peptide
  • the upper right represents the 75th amino acid residue of the a chain.
  • FIG. 3 shows BoLA-DQAl and DQA2 and BoLA-DRB3 alleles in healthy and leukemia-onset ushi infected with ushi leukemia virus (BLV).
  • Fig. 4 shows a comparison of the frequency of BoLA-DQAl and DQA2 aryls in healthy and leukemic lees infected with ushi leukemia virus (BLV).
  • FIG. 5 shows the results of analysis of the percentage of BLV-infected cells (%) and the presence of DQA1 * 0101 and DRB3 * 0701.
  • FIG. 6 shows DRB3 * 0701 and DQA * 0101 alleles, DRB3 * 07
  • a graph plotting the BLV infected cell rate (%) is shown for individuals having only 01 araryl, and those having neither DRB3 * 0701 arly nor DQA * 0101 arly.
  • Figure 7 shows DRB—D of 30 BLV-infected healthy mice and 23 BLV-infected leukemia-onset mice.
  • FIG. 8 shows a predicted norotype based on the result of FIG.
  • FIG. 9 shows the results of summarizing the haplotypes of healthy and leukemia-onset ushi.
  • Figure 10 has a resistive haplotype (DRB3 * 0701— DQA1 * 0101— DQA2 * 220 31— DQA3 (—) or DRB3 * 14012— DQA 10012— DQA2 * 22021— DQ A3 (—)) The results of comparing the number of BLV-infected cells between individuals and individuals with other haplotypes are shown.
  • the present invention is a method for determining resistance to the development of leukemia leukemia virus (BLV) infection.
  • BLV leukemia leukemia virus
  • ushi individuals who have homozygous or heterozygous DQA1 * 0101 allylic DQ molecule of ushi major histocompatibility antigen (BoLA) are resistant to the development of leukemia caused by BLV infection. Based on knowledge.
  • Ushi major histocompatibility antigen is a membrane protein that is presented to T cells by binding to foreign antigenic peptides such as bacteria and viruses, and is generally a major histocompatibility gene. It is called a complex (Major histocompatibity complex; MHC) molecule. It is known that there are many arities in BoLA. For example, BoLA Nomenclature Committee Web site, Internet site http://www.projects.roslin.ac.uk/ bola / bolahome.html)! /, published ""
  • the ⁇ chain of the DQ molecule of ushi major histocompatibility antigen (BoLA) is encoded by DQA1-5.
  • the amino acid sequence of the ⁇ chain of the DQ molecule is shown in SEQ ID NO: 12, and the nucleotide sequence encoding the ⁇ chain is shown in SEQ ID NO: 13 (registered as accession numbers ⁇ 09045.1 and D50454, respectively).
  • the “DQA1 * 0101 aryl” described in the present specification is one of the DQA1 aryls encoding the DQ molecule ⁇ chain, and includes the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 and the amino acid shown in SEQ ID NO: 2. It has an arrangement.
  • this DQ Al * 0101 allyl was compared with the amino acid sequence of the other allyl shown in FIG. 1, and the 75th amino acid of the ⁇ chain of the BoLA-DQ molecule was palin (V) (in SEQ ID NO: 2).
  • the amino acid at position 98) is isoleucine (I) in the other aralkyl (SEQ ID NO: 12).
  • the “75th amino acid” refers to the 75th amino acid in SEQ ID NO: 12, excluding the signal peptide having the first 23 amino acid force, and counting the first amino acid force of the mature protein.
  • the 308th to 310th bases in SEQ ID NO: 1 are GTCs
  • the 292th to 294th bases in SEQ ID NO: 13 are ATCs. Is different. Based on this difference, the function of the 75th amino acid residue of the ⁇ chain was predicted with reference to the three-dimensional structure of HLA-DQ8. This 75th amino acid residue is the residue of the amino acid residue that directly recognizes the antigenic peptide. It was suggested that it may be a group (Fig. 2).
  • test tussis it is determined whether or not the test tussis is a force that is the 75th amino acid force parin of the main histology compatible antigen DQ molecule ⁇ chain.
  • the DQA1 * 0101 aryl in the DQA1 gene encoding the BoLA-DQ molecule ⁇ chain is detected in the test doll. Then, based on the determination result (detection result), it is determined whether or not the test tussis exhibits resistance to the onset of rush leukemia.
  • “detection of DQ Al * 0101 aryl” means whether or not the test ushi has DQA1 having the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 and the amino acid shown in SEQ ID NO: 2. Determine whether or not to express the DQ molecule a chain containing the sequence, as well as whether or not the 75th amino acid of the oc major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain is palin or encodes the DQ molecule chain It also means determining whether or not the base of the 308th to 310th (SEQ ID NO: 1) or 292 to 294th (SEQ ID NO: 13) of the gene is 0.
  • “resistance to onset” means the difficulty of susceptibility to leukemia leukemia (resistance) caused by ushi leukemia virus (BLV) infection. This means that the probability of developing ushi leukemia is low.
  • detection of DQA1 * 0101 aryl in a test ushi can be performed at the gene level or protein level.
  • genomic DNA or mRNA can be prepared from a test ushi, and DQA1 * 0101 aryl in genomic DNA or mRNA can be detected based on the nucleotide sequence.
  • the test lion can also prepare a DQ molecule protein of ushi major histocompatibility antigen (BoLA), and detect DQA1 * 0101 aryl in the DQ molecule using, for example, an antibody.
  • BoLA major histocompatibility antigen
  • genomic DNA or mRNA is prepared from a ushi (test moth) to be determined for resistance to the development of ushi leukemia.
  • Genomic DNA can be prepared by a known method such as the phenol Z black mouth form method and the cetyltrimethyl ammonium bromide (CTAB) method.
  • CTAB cetyltrimethyl ammonium bromide
  • the mRNA can be prepared by a known method such as guanidine isothiocyanate method.
  • Kits for preparing genomic DNA or mRNA are also commercially available, such as Wizard Genomic DNA Purification Kit (Promega) for preparing genomic DNA, for example NucleoT rap (registered trademark) mRNA Kit (Clontech) and the like can be used.
  • cDNA may be synthesized from mRNA for detection of aryl as described below. Methods for synthesizing cDNA are known in the art. For example, cDNA can be synthesized from RNA using reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) using random primers or poly-T primers.
  • RT-PCR reverse transcriptase polymerase chain reaction
  • the source for preparing DNA or RNA is not particularly limited, and cells or tissues rubbed from blood, saliva, nasal mucosa, etc. can be used.
  • the species of the test russia is not particularly limited as long as it belongs to ruminants (Bos Taurus, Bos indicus). For example, Ayrshire, British Friesian, Danish Black Pied, Danish Red, Hereford, Holstein Friesian, Jersey , Limousin, Japanese black hair, Japanese short angle, etc.
  • Detection of DQA1 * 0101 aryl in genomic DNA or mRNA can be performed, for example, by means of gene polymorphism detection means known in the art, including but not limited to direct sequencing, polymerase chain reaction (PCR) , A method using restriction enzyme fragment length polymorphism (RFLP), a method using a hybridization method, a method using a primer extension reaction, mass spectrometry and the like. Both of these methods are well known to those skilled in the art. The outline will be described below.
  • DQA 1 * 0101 aryl can be detected by direct sequencing using genomic DNA or mRNA-derived cDNA.
  • direct sequencing method first, a cDNA derived from the test force genomic DNA or mRNA is prepared, and the region containing the DQA1 * 0101 aryl to be detected is cloned into a vector and amplified in a host cell (eg, a bacterium). Make it wide.
  • a host cell eg, a bacterium
  • DNA in the region containing the DQA1 * 0101 aryl to be detected can be amplified by PCR. After amplification, the DNA in the detection target region is sequenced. Sequencing methods include, but are not limited to, manual sequencing methods or automated sequencing methods.
  • Manual sequencing methods include, for example, radioactive marker nucleo
  • the method using a tide etc. is mentioned, As the automatic sequencing method, the method using a dye terminator is mentioned. Based on the sequencing results, determine whether the test tuss have the DQA1 * 0101 aryl.
  • PCR polymerase chain reaction
  • primer capable of amplifying the second exon of BoLA-DQAl an amplification reaction was performed using the prepared genomic DNA as a cocoon to amplify a nucleic acid fragment having the base sequence of the second exon.
  • the primer capable of amplifying the second exon of BoLA-DQAl is preferably capable of amplifying the entire region of the second exon. Therefore, primers can be designed based on the sequences of introns located on both sides of the second exon. Alternatively, a primer can be designed based on the sequence of the boundary region between intron and exon.
  • Primer design methods are well known in the art, and primers that can be used in the present invention satisfy conditions that allow specific annealing, for example, lengths and bases that allow specific annealing.
  • the length having a function as a primer is preferably 10 bases or more, more preferably 16 to 50 bases, and further preferably 20 to 30 bases.
  • Tm melting temperature
  • Tm means the temperature at which 50% of any nucleic acid strand forms a hybrid with its complementary strand, and the annealing temperature is required to form a double-stranded DNA and primer that anneals. Need to optimize S.
  • the designed primer can be chemically synthesized by a known oligonucleotide synthesis method, but is usually synthesized using a commercially available chemical synthesizer.
  • the primer set that can be used in the present invention and can amplify the second exon of BoLA—DQA1 is not limited, but includes the following (a) and (b). Is:
  • R represents A or G
  • the amplification reaction is not particularly limited, but is preferably performed by a polymerase chain reaction (PCR) method.
  • PCR polymerase chain reaction
  • amplification reaction In order to increase the specificity of amplification, it is preferable to perform the amplification reaction two or more times using two or more sets of primers. Specifically, first, a nucleic acid fragment containing the base sequence of the second exon of BoLA-DQAl is amplified using genomic DNA derived from the test eagle as a saddle type. Next, using the amplified nucleic acid fragment as a saddle type, a nucleic acid fragment further containing the base sequence of the second exon of BoLA-DQAl is amplified.
  • the primers used in each amplification reaction may be designed at the same position, or may be designed inside the primer position in the first amplification. it can.
  • An example of a primer set for performing a double amplification reaction to detect the DQA1 * 0101 aryl of BoLA—DQAl is not limited, but a genomic DNA derived from a test eagle
  • the following primer set (a) can be used in the amplification reaction described below, and the following primer set (b) can be used in the amplification reaction using the amplified nucleic acid fragment as a cage type:
  • nucleic acid fragment containing the base sequence of the second exon of BoLA-DQAl can be specifically amplified using the genomic DNA derived from the test ridge as a saddle type.
  • the base sequence of the amplified nucleic acid fragment is determined, and the determined base sequence is compared with the known DQ Al * 0101 aryl base sequence (SEQ ID NO: 1). This allows us to determine if the test doll BoL A—DQA1 has the DQA1 * 0101 aryl.
  • Sequencing methods are well known in the art and any method can be used. Examples include, but are not limited to, a direct 'sequencing method that can determine the sequence without cloning the amplified nucleic acid fragment into a vector.
  • a powerful sequencing method can be easily performed using a commercially available kit such as CEQ TM DTCS Quick Start Kit (BECKMAN), BigDye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit ABI310 (Applied Biosystems) and the like.
  • primers that can be used to determine the base sequence of BoLA-DQA1 second exon include, but are not limited to, the following set of primers (c):
  • R represents A or G
  • the base sequence is compared with the base sequence of DQA1 * 0101 aryl (SEQ ID NO: 1).
  • DQA1 * 0101 aryl can also be detected using PCR.
  • PCR is performed using oligonucleotide primers that hybridize only to sequences having the DQA1 * 0101 aryl or sequences having other aryls.
  • DQA1 * 0101 aryl can also be detected using restriction fragment length polymorphism (RFLP).
  • RFLP restriction fragment length polymorphism
  • the region containing the DQA1 * 0101 aryl to be detected is amplified by PCR.
  • the PCR product is then cleaved with a restriction enzyme known to produce a fragment of unique length in the DQA1 * 0101 aryl.
  • PCR products digested with restriction enzymes are generally separated by gel electrophoresis and visualized by ethidium bromide staining.
  • the DQA1 * 0101 aralkyl in the test ushi can be detected.
  • DQA1 * 0101 aryl can also be detected using hybridization.
  • the hybridization method is a method for determining the presence or absence of DQA1 * 0101 aryl based on the genomic DNA or mRNA strength of test moths and the ability to hybridize to complementary DNA molecules (eg oligonucleotide probes). It is. This hybridization method can be performed using various techniques for hybridization and detection.
  • Whether or not the probe is neutralized against the DQA1 * 0101 aryl to be detected can be directly detected by visualizing the probe. This is known, for example, as Northern or Southern Atsey (see, eg, Ausabel et al. (Ed.), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, NY (1991)).
  • Northern assay isolate the genomic DNA, and in the case of Northern activity, isolate the RNA from the test sushi. Subsequently, the isolated DNA or RNA is cleaved with a series of restriction enzymes. Next Then, DNA or RNA is separated and transferred to a membrane. This separation operation can be performed, for example, on an agarose gel.
  • Transfer to the membrane is performed by transferring a labeled probe or a probe specific to the DQA1 * 0101 aryl to be detected to the membrane under suitable stringency conditions. Labeling can be performed, for example, by introducing radioactive nucleotides. After removing the unbound probe, the labeled probe can be visualized to detect the presence of binding, and whether or not it has DQA1 * 0101 can be determined by the presence or absence of the binding.
  • the hybridization can be detected using a DNA chip.
  • an oligonucleotide probe is attached to a solid support. This probe is designed to be specific to the DQA1 * 0101 aryl.
  • a DNA sample derived from a test ushi is brought into contact with a DNA chip to detect hybridization.
  • DQA1 * 0101 aryl can be detected by using an antibody that can specifically recognize the ⁇ chain of the DQ molecule having DQA1 * 0101 aryl.
  • An antibody capable of specifically recognizing the a chain of a DQ molecule having DQA1 * 0101 aryl comprises the 75th amino acid residue in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12, and at least 5 It can be prepared by using a peptide having a residual amino acid residue, preferably 6 to: LO consecutive amino acid residues, as an antigen for immunization of an animal.
  • the method for producing an antibody and the method for detecting the ⁇ chain of a DQ molecule having a DQA1 * 0101 aryl using the antibody can be carried out using methods known in the art.
  • DQA1 * 0101 aryl indicates the possibility that the test susceptibility has resistance to the development of leukemia leukemia caused by ushi leukemia virus infection.
  • the presence of this DQA1 * 0101 aryl may be either homo or hetero.
  • the method for determining the resistance of the leech leukemia virus (BLV) infection of the present invention to the onset of leukemia leukemia comprises the DQA1 * 0101 aryl of the DQ molecule of the major histocompatibility antigen (BoLA) and the DR molecule of BoLA. It is based on the knowledge that the puppy individuals with the DRB3 * 0701 allyl are highly resistant to the development of leukemia leukemia caused by BLV infection.
  • the ⁇ chain of DR molecule of ushi major histocompatibility antigen (BoLA) is encoded by DRB3.
  • the amino acid sequence of part of the ⁇ chain (DRB3) of the DR molecule is shown in SEQ ID NO: 17, and the base sequence encoding part of the ⁇ chain (D RB3) is shown in SEQ ID NO: 16 (accession number ⁇ ⁇ 001012698, respectively).
  • D RB3 * 0701 aryl described above is one of the DRB3 aryls encoding the DR molecule ⁇ chain, and has the base sequence shown in SEQ ID NO: 14 and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 15.
  • DRB3 * 0701 aryl sequence (SEQ ID NOs: 14 and 15) corresponds to a part of the DR molecule ⁇ chain. Therefore, the “74th amino acid” in this specification is the 74th of SEQ ID NO: 15. Does not correspond.
  • DRB3 * 0701 allyl is characterized in that amino acids 74, 77 and 78 of the ⁇ chain of BoLA—DR molecule are glutamic acid ( ⁇ ), arginine (R) and parin (V) (SEQ ID NO: Amino acids at positions 66, 69 and 70 in 15; amino acids 103, 106 and 107 in SEQ ID NO: 17).
  • the 74th, 77th and 78th amino acids means that in SEQ ID NO: 17, except for the first 29 amino acid force signal peptide, the first amino acid force of the mature protein is counted as 74th, The 77th and 78th amino acids!
  • the present inventor has found that the urine force having both the DQA1 * 0101 aryl in the DQA1 gene and the DRB3 * 0701 aryl in the DRB3 gene is particularly resistant to the development of leprosy leukemia. Therefore, in the present invention, whether or not it is the 75th amino acid force parin of the ushi main histocompatibility antigen DQ molecule a chain in the test ushi, as well as the 74th position of the ushi main histocompatibility antigen DR molecule ⁇ chain, It is determined whether the 77th and 78th amino acids are glutamic acid, arginine, and parin, respectively.
  • detecting 0 ⁇ 3 8 1 * 01 01 aryl in 0 ⁇ 3 8 1 gene encoding 801 ⁇ ⁇ — 0 ⁇ 3 molecular chain in the test mouse, and the primary major histocompatibility antigen DR molecule DR that encodes 13 chains Includes detection of DRB3 * 0701 aryl in the B3 gene. Then, based on the result of the determination (detection result), it is determined whether or not the test tussis exhibits resistance to the onset of leukemia.
  • Detection of DQA1 * 0101 aryl in the test ushi can be performed as described above.
  • DRB3 * 0701 aryl in the test ushi can be detected by methods known in the art, for example, Patent Document 1 (Japanese Patent Laid-Open No. 2004-301518), Patent Document 2 (Japanese Patent Laid-Open No. 2001-2386 79), It can be carried out using the methods described in WO98Z03680 pamphlet, WO98 / 36092 pamphlet, JP2000-6698A and JP2001-178499A.
  • DQA1 * 0101 aryl and DRB3 * 0701 aryl indicate that the test susceptibility is likely to be resistant to the development of lucid leukemia due to russia leukemia virus infection.
  • the presence of DQA1 * 0101 aryl and DRB3 * 0701 aryl may be homo or heterozygous.
  • the method for determining the resistance of the leprosy leukemia virus (BLV) infection to the occurrence of leprosy leukemia virus of the present invention is as follows: DRB3 * 0701 aryl, DQA1 * 0101 aryl and DQA2 * of the major histocompatibility antigen (BoLA) 22031 aryl, DQA3 gene not present, p-type, or DRB3 * 14012, DQA1 * 10012 and DQA2 * 22 021 haplotypes, and DQA3 gene not present This is based on the knowledge that individuals are highly resistant to the development of leukemia due to BLV infection.
  • BoLA major histocompatibility antigen
  • DQA2 * 22031 aryl refers to a major major histocompatibility antigen
  • DQA2 DQ molecule
  • DQA3 gene encodes the DQ molecule ⁇ chain of BoLA, and the presence of the DQA3 gene is DQA * 27011 aryl, DQA * 27012 azinole, D ⁇ 3A * 2702 azinole. , D ⁇ 3A * 2301 Azinole, D ⁇ 3A * 2601 Azinole, DQ A * 2602 Aryl, DQA * 2603 Aryl, etc.
  • DQ A * 27011 aryl has the base sequence shown in SEQ ID NO: 29 (accession number Z79520). Registered as!
  • the present inventor has a DRB3 * 0701 aryl in the DRB3 gene, a DQA1 * 0101 aryl in the DQA1 gene, a DQA2 * 22031 aryl in the DQA2 gene, and a sushi force that does not have the DQA3 gene. It has been found that the resistance to is high. Therefore, in the present invention, DRB3 * 0701 aryl in DRB3 gene encoding ushi major histocompatibility antigen DR molecule 13 chain is detected in the test ushi; ushi major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain is encoded.
  • DQA3 gene is as follows: DQA * 27011 aryl, DQA * 27012 azinole, D ⁇ 3A * 2702 azinole, D ⁇ 3A * 2301 azinole, D ⁇ 3A * 2601 azinole, DQ A * 2602 azinole, and DQA * 2603 It is represented by detection of any one or more of aryl, etc. (see Keith et al., Immuno. Genetics 1997, 46: 237-244).
  • the "DRB3 * 14012 aryl” described in the present specification is one of the aryls of the DRB3 gene that encodes the DR molecule ⁇ chain of the primary major histocompatibility antigen (BoLA) of SEQ ID NO: 23 And the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 24 (registered as accession numbers 82035 and CAB52187.1, respectively).
  • the “DQA1 * 10012 aryl” described in the present specification encodes the DQ molecule ⁇ chain of BoLA and has the base sequence shown in SEQ ID NO: 25 and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 26. (Registered as accession numbers U80881 and ⁇ 62026.1, respectively).
  • DQA2 * 2 2021 encodes the DLA molecule ⁇ chain of BoLA and has the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 27 and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 28. (Registered as AC session number D50045 and ⁇ 08765.1, respectively!).
  • the present inventor has a DRB3 * 14012 aryl in the DRB3 gene, a DQA1 * 10012 aryl in the DQA1 gene, a DQA2 * 22021 aryl in the DQA2 gene, and has no DQA3 gene. We found high resistance to the onset.
  • a DRB3 * 14012 aryl having the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 23 in the DRB3 gene encoding ushi major histocompatibility antigen DR molecule / 3 chain is detected in the test ushi; Detection of DQ A1 * 10012 aryl having the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 25 in the DQA1 gene encoding the major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain; DQA2 gene encoding the major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain And detecting the presence of the DQA3 gene encoding octo major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain. Then, based on the determination result (detection result), it is determined whether or not the test tussis exhibits resistance to the onset of leukemia leukemia.
  • Detection of the DRB3 gene aryl (DRB3 * 0701 or DRB3 * 14012) and the detection of the DQA1 gene aryl (DQA1 * 0101 or DQA1 * 10012) can be performed as described above. .
  • DQA2 gene aryl (DQ A2 * 22031 or DQA2 * 22021) detection and DQA3 gene (DQA * 27011 alinole, D ⁇ 3A * 27012 azinole, DQA * 2702TU / V, D ⁇ 3A * 2301 Azinole, DQA * 2601T aryl, DQA * 2602 aryl, DQA * 2603 aryl, etc.) amplify all or part of the DQA2 gene using a primer set that can amplify the DQA2 gene, and the amplification products By determining the sequence and confirming whether or not it has a specific aryl sequence.
  • the primer set that can be used in the present invention and can amplify the second exon of BoLA-DQA2 includes, but is not limited to, the following (d) to (g):
  • Y represents C or T
  • a primer that can be used to determine the base sequence of BoLA-DQA2 second exon is not limited, but the primer set of (e) or (g) above. Is mentioned.
  • a haplotype without a gene indicates that the test susceptibility is likely to be resistant to the development of ushi leukemia caused by ushi leukemia virus infection.
  • the presence of allyl in this haplotype may be either homo or hetero.
  • the kit of the present invention can be used to determine the resistance to the onset of leukemia leukemia caused by ushi leukemia virus infection, and provides a means for detecting DQA1 * 0101 aryl in the ushi major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain. Is included.
  • Ushi major histocompatibility antigen DQ molecule Means to detect DQA1 * 0101 aryl in a chain Specific examples include, but are not limited to, primers that can amplify the region containing DQA1 * 0101 aryl, primers that can sequence the region containing DQA1 * 0101 aryl, and DQA1 * 0101 aryl Primers or probes that can bind to, antibodies that can specifically bind to BoLA—DQ molecules containing DQA1 * 0101 aryl, and the like.
  • the kit of the present invention is used as a primer set for amplifying the second exon of BoLA-DQA1 as follows (a) or (b) It is preferred to include at least one primer set of and also more preferred to include both (a) and (b) primer sets:
  • the kit of the present invention preferably includes the following primer set (c) as a primer set for sequencing the second exon of BoLA—DQA1:
  • the kit of the present invention also includes a means for detecting the DQA1 gene DQA1 * 0101 aryl encoding the ushi major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain, and the ushi major histocompatibility antigen DR molecule j8 chain.
  • Means for detecting the DRB3 * 0701 aryl of the DRB3 gene may be included.
  • Means for detecting DRB3 * 0701 aryl are not limited to, for example, primers that can amplify a region containing DRB3 * 0701 aryl, and sequencing a region containing DRB3 * 0701 aryl Primers, probes or probes that can specifically bind to DRB3 * 0701 aryl, BoL A containing DRB3 * 0701 aryl, antibodies that can specifically bind to DR molecules, etc. .
  • the kit of the present invention comprises a means for detecting DRB3 * 0701 aryl of DRB3 gene encoding ushi major histocompatibility antigen DR molecule / 3 chain, ushi major histocompatibility antigen DQ molecule a Means for detecting DQA1 * 0101 aryl of the DQA1 gene encoding the chain, ushi major tissue compatible antigen DQ molecule Means for detecting DQA2 * 22031 allelic of the DQA2 gene encoding the alpha chain, major tissue compatible antigen DQ molecule for ushi
  • a means for detecting the DQA3 gene encoding the oc chain may be included.
  • the kit of the present invention comprises means for detecting DRB3 * 14012 aryl of DR B3 gene encoding ushi major histocompatibility antigen DR molecule / 3 chain, ushi major histocompatibility antigen DQ molecule ⁇ chain Means to detect DQA1 * 10012 aryl of the encoded DQA1 gene, Ushi major histocompatibility antigen DQ molecule Means to detect DQA2 * 22021 aryl of the DQA2 gene encoding alpha chain, Ushi major histocompatibility antigen DQ molecule oc chain And a means for detecting the DQA3 gene encoding. Kits that include a powerful tool can determine haplotypes associated with resistance to the development of leprosy leukemia in the main antigen compatible with urticaria.
  • the means for detecting the aryl is not limited, for example, but a primer capable of amplifying the region containing the aryl, a primer capable of sequencing the region containing the aryl, Primers or probes that can specifically bind to aryl, antibodies that can specifically bind to BoLA-DR molecules containing the above aryl, etc. (see, for example, Da Mota, AF et al. , Eur. J. Immunogenet. 2004, 3 1, 31-35; Takeshima et al., Immunogenet. 2001, 53, 74-81; van Eijk et al., Anim. Ge net. 1992, 23, 483-496, etc. See).
  • the kit of the present invention may further contain a knocker, a dNTP mixture, enzymes (such as a polymerase) that constitute a reaction solution, and the like.
  • DQA1 * 0101 aryl As described above, by detecting DQA1 * 0101 aryl, or DQA1 * 0101 and DRB3 * 0701 aryl, it is possible to determine the resistance to the development of leukemic leukemia virus (BLV). By using this determination result, it is possible to create a ushi that has resistance to the onset of ushi leukemia. Also DRB3 * 0701 Aryl, DQA1 * 0101 Aryl And DQA2 * 22031 allylic and haplotypes without the DQA3 gene, or DRB3 * 14012 allylic, DQA1 * 10012 allylic and DQA2 * 22021 allylic S present, and haplotypes without the DQA3 gene present. Since it is possible to determine the resistance of leukemia virus (BLV) to the development of ushi leukemia, this determination can be used to create ushi that is resistant to the development of ushi leukemia.
  • BLV leukemia virus
  • DQA1 * 0101 araryl, or DQA1 * 0101 araryl and DRB3 * 0701 araryl is detected in fertilized eggs of urushi, and fertilized eggs having DQA1 * 0101 aril, or DQA1 * 0101 aril and DR B3 * 0701 aril
  • DQA1 * 0101 aril and DR B3 * 0701 aril By selecting and transplanting to the uterus of a female moth, it is possible to produce a ushi that is resistant to the development of leukemia.
  • a fertilized egg that has 2021 aryl and no DQA3 gene and transplants it into the uterus of a female worm a worm having resistance to the development of leukemia can be produced.
  • genomic DNA was extracted using DNA 52 samples (WK series) of standard ushi typed at the international BoLA workshop.
  • Genomic DNA was extracted from whole blood using Wizard Genomic DNA Purification Kit (Promega). To 300 ⁇ l of blood, 900 ⁇ l of Cell Lysis Solution was added and stirred by inversion, and allowed to stand at room temperature for 10 minutes. After centrifuging at 20,400 Xg and 4 ° C for 20 seconds, the supernatant was removed, and the precipitate was dissolved with 300 ⁇ l of Nuclei Lysis Solution. 1. Add 51 RNase A Solution 37. Reacted with C for 1 hour. 100 1 Protein Precipitation Solution was mixed well, and then centrifuged at 20,400 X g for 3 minutes at room temperature.
  • BoLA-DQA 1 aryl was determined for the 52 DNA samples prepared in Example 1!
  • RTaq DNA elongation enzyme (TOYOBO), 25 ⁇ l of 1 XrTaq buffer containing 1 ⁇ l of genome, after denaturation at 94 ° C for 2 minutes, then at 94 ° C for 20 seconds; at 60 ° C for 20 seconds , And treatment at 72 ° C for 40 seconds as one cycle, after 15 cycles of treatment, the film was extended at 72 ° C for 4 minutes.
  • the primers used were DQAlintL2 and DQA1-677R (SEQ ID NOs: 3 and 4), which can specifically amplify BoLA—DQA1 second exon by PCR.
  • 1 ⁇ l of the IstPCR product is 120 ⁇ each dNTP, 1.5 mM MgCl, 400 nM
  • DQAintL3.1 and DQAlex2REVverl. 1 were used as sequence primers (SEQ ID NOs: 7 and 8).
  • CEQ TM DTCS Quick Start Kit (BECKMAN) was used for the sequencing reaction. 1 ⁇ 1 PCR product, 2 ⁇ 1 lOpmolZ ⁇ 1 primer, 4 ⁇ 1 DTCS Quick Start Mix (BECKMAN), 4 ⁇ 1 2.5 X Sequencing Buffer (Edge Biosystems), and sterile 9 ⁇ l of water was mixed and treated for 30 cycles at 95 ° C for 20 seconds; 50 ° C for 20 seconds; and 60 ° C for 4 minutes.
  • Sequence PCR products are purified using CENTRI-SE P COLUMNS (PRINCETON SEPARATIONS) according to the instructions and then dissolved in 20 ⁇ 1 of Sample Loading Solution (BECKMAN) for CEQ TM 2000X L DNA Analysis System Sequencer (BECKMAN COULTER). Sequencing was performed with CEQ TM 2000XL DNA Analysis System (BECK MAN COULTER). The primer site is removed from the determined base sequence and the base sequence of the aryl is registered in the database using the homology search program BLAST on the National Center for Biotechnology Information! It was determined.
  • AmpliTaq Gold TM DNA Elongase (Applied Biosystems), 25 ⁇ l Gene Amp R Gold buffer containing 1 ⁇ l genome after denaturation at 95 ° C for 10 min, then at 95 ° C for 1 min; 55 ° The treatment for 30 seconds at C and 40 seconds at 72 ° C was taken as one cycle, and after 15 cycles of treatment, elongation was performed at 72 ° C for 4 minutes.
  • the primers used were DQA2intL06 and QA006 that can specifically amplify BoLA-DQA2 second exon by PCR (SEQ ID NOs: 9 and 10).
  • DQA2intL06 and DQA2exon2-1 were used (sequence numbers 9 and 11).
  • CEQ TM DTCS Quick Start Kit (BECKMAN) was used for the sequencing reaction.
  • Mix 1 ⁇ l PCR product, 2 ⁇ l lOpmolZ ⁇ 1 primer, 4 ⁇ l DTCS Quick Start Mix (BECKMAN), 4 ⁇ l 2.5 X Sequencing Buffer (Edge Biosystems), and 9 ⁇ l sterile water Then, treatment was carried out for 30 cycles at 95 ° C for 20 seconds; at 50 ° C for 20 seconds; at 60 ° C for 4 minutes as one cycle.
  • Sequence PCR products are purified using CENTRI-SE P COLUMNS (PRINCETON SEPARATIONS) according to the instructions and then dissolved in 20 ⁇ 1 of Sample Loading Solution (BECKMAN) for CEQ TM 2000X L DNA Analysis System Sequencer (BECKMAN COULTER). Sequencing was performed with CEQ TM 2000XL DNA Analysis System (BECK MAN COULTER). The primer site is removed from the determined base sequence and the base sequence of the aryl is registered in the database using the homology search program BLAST on the National Center for Biotechnology Information! It was determined.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Laid-Open No. 2004-301518
  • International Publication No. 98/03680 International Publication No. 98Z36092
  • JP 2000-86698 JP 2001-178499
  • JP 2001-238679 the aryl of BoLA-DRB3 was determined.
  • an aryl as shown in FIG. 3 was detected.
  • Example 5 it became clear that DQA1 * 0101 aryl in Ushi BoLA was resistant to leukemia caused by Ushi leukemia virus (BLV) infection. I further analyzed.
  • FIG. 1 shows the results of predicting the function of the 75th amino acid residue of the DQ a chain with reference to the three-dimensional structure of HLA-DQ8.
  • the right figure shows the ⁇ chain with the DQA1 * 0101 aryl
  • the left figure shows the a chain with the other aryl.
  • the upper side represents the a1 domain of the DQ molecule
  • the lower side represents the / 31 domain of the DQ molecule.
  • the elongated sequence in the middle represents the antigenic peptide
  • the upper right represents the 75th amino acid residue of the ex chain.
  • the right figure in Fig. 2 shows that this 75th amino acid residue interacts directly with the antigenic peptide. Therefore, it was suggested that this amino acid residue may be an amino acid residue that directly recognizes the antigenic peptide.
  • primers PC03 ACACAACTGTGTTCACTAGC; SEQ ID NO: 20
  • PC04 CAACTTCATCCACGTTCACC; SEQ ID NO: 21
  • FLK Fetal Hedge Kidney Cells infected with BLV have been reported to integrate and / or have 6 copies of BLV (Astier, T. et al., Amn. Rech. Vet. 9: 643-649, 1978), so total DNA from BLV cells with 6 copies of FLK—BLV genome was diluted with total DNA from FLK cells and these samples were expressed as a percentage of BLV positive cells. Used as a standard for calculating.
  • Fig. 5 shows the BLV-infected cell rate (%) in 53 test dolls and the analysis results of the DQA1 gene aryl and DRB3 gene aryl.
  • individuals with DRB3 * 0701 and DQA * 0101 aryl individuals with only DRB3 * 0701 aryl, and individuals with neither DRB3 * 0701 aryl nor DQA * 0101 aryl
  • a graph plotting the percentage of infected cells (%) is shown in FIG.
  • Fig. 7 shows the results of analysis of aryls present in the genes DRB3, DQA1, DQA2, and DQA3.
  • “* 27011” represents the DQA3 aryl.
  • this analysis predicted the haplotypes that are thought to be related to the onset of ushi leukemia (Fig. 8).
  • FIG. 9 shows the results of sorting out the predicted neuroprotypes in BLV-infected healthy mice and BLV-infected leukemia-onset cells.
  • (1) for the DQA3 gene indicates the absence of the DQA3 gene.
  • the resistance to the development of leukemia leukemia virus A determination method is provided.
  • the method involves the presence of DQA1 * 0101 allyl in the ⁇ chain of the major histologically compatible antigen DQ molecule, or the presence or identification of DRB3 * 0701 allylic in the DR chain 13 of the DQA1 * 0101 allylic and ushi major histocompatibility antigens.
  • DQA1 * 0101 allyl in the ⁇ chain of the major histologically compatible antigen DQ molecule
  • DRB3 * 0701 allylic in the DR chain 13 of the DQA1 * 0101 allylic and ushi major histocompatibility antigens.
  • SEQ ID NOs: 3-11, 18-21, 30 and 31 Synthetic oligonucleotides (wherein R represents A or G)

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Abstract

　本発明は、ウシ白血病発症に対する抵抗性の判定方法、並びにそのためのキットに関する。また本発明は、ウシ白血病発症に対する抵抗性を有するウシの作出方法に関する。

Description

ゥシ白血病発症に対する抵抗性の判定方法
技術分野
[0001] 本発明は、ゥシ白血病発症に対する抵抗性の判定方法、並びにそのためのキット に関する。また本発明は、ゥシ白血病発症に対する抵抗性を有するゥシの作出方法 に関する。
背景技術
[0002] ゥシ白血病ウィルス (BLV)は、ヒト T細胞白血病ウィルス (HTLV- 1)に最も近縁 なレトロウイルスであり、長 、潜伏期間を経て B細胞の悪性腫瘍である地方病性ゥシ 白血病 (EBL)を引き起こす。 BLV感染牛は、未発症健康、持続性リンパ球増多症（ PL)、さらに長い潜伏期の後白血病を発症するという、 3つの病態を示す。そして、そ の病態には、 HTLV—1と同様に疾患感受性の個体差が存在する。本発明者らは以 前、疾患感受性の原因の 1つがゥシ主要組織適合抗原 (BoLA)の DR分子の多型 性にあることを示して 、る（特許文献 1及び 2：特開 2004 - 301518号公報及び特開 2001— 238679号公報）。
[0003] 一方、 BoLA遺伝子領域は、第 23染色体上に位置し、ヒト、マウスと相同性の高い 、クラス I、クラス II及びクラス III遺伝子を含んでいる。その中でも、クラス lib亜領域に は DRと DQの各遺伝子亜領域がマップされて ヽる。 DQ遺伝子領域には現在までに DQAと DQB遺伝子が各 5個ずつ同定されている。 DQAと DQB遺伝子は、ハプロタ ィプによって数や構成が異なっていて、一つあるいは二つの DQ分子を形成し、弱い ながらも抗原提示能を誘導すると考えられる（非特許文献 1〜4： Schneider S., Roessl i D.,及び Excoffier L., A software for population genetics data analysis, rlequin, en etics and Biometry Laboratory, University of Geneva, Switzerland, 2000年； Aida Y. , Characterization and Expression of Bovine MHC Class II Genes, Bulletin de la Soc iete Franco- Japonaise des Sciences Veterinaires, ¾¾b^, p.17- 24, 1995牛； Burke M .G., Stone R.T.,及び Muggli- Cockett N.E., Nucleotide- sequence and northern anal ysis of a bovine major histocompatibility class II DR— beta— like cDNA, Animal geneti cs,第 22卷， p.343-352, 1991年； Fraser D.C., Craigmile S" Campbell J.D.M. , Oliver R.A., Brown D.J., Russell G.C., Spooner R.L. ,及び Glass E.J. , Functional expressi on of a cattle MHC class II DR- like antigen on mouse L- cells, Immunogenetics,第 4 3卷， p.296-303, 1996年参照）。本発明者らは、このような BoLA— DQA遺伝子のァ リルを効率よく決定する方法を開発して!/ヽる（特許文献 3：特願 2004— 109385号（2 004年 4月 1日出願)）。
[0004] 当該技術分野では、より効率的にかつ確実にゥシ白血病ウィルスに対する抵抗性 を判定する方法が望まれて 、る。
発明の開示
[0005] 本発明は、ゥシ白血病に対する抵抗性に関連するァリルを見出し、力かる抵抗性を 判定する方法及び手段を提供することを目的とする。
[0006] 本発明者は、上記課題を解決するため鋭意検討を行 ヽ、ゥシ白血病ウィルスに感 染した健康ゥシと白血病発症ゥシとを用いて BoLA— DQA1及び BoLA— DQA2に おけるァリルを検出したところ、 DQA1 *0101ァリルが健康ゥシ群において有意に高 頻度に存在するという知見を得た。また本発明者は、 DQA1 *0101ァリルと、 BoLA — DRB3における DRB3* 0701ァリルの両方を有するゥシはゥシ白血病ウィルスに 対する抵抗性が特に高いという知見を得、これらの知見から本発明を完成するに至 つた o
[0007] すなわち、本発明は、以下の（1)〜（14)である。
[0008] ( 1)被験ゥシにおいて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖の 75番目のアミノ酸が ノ リンである力否かを判定することを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感 染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定する方法。
[0009] (2)被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺 伝子における配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出す ることを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対 する抵抗性を判定する方法。
[0010] (3)被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗 性を判定する方法であって、 (a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァリルを検出するステップ、
を含み、 DQA1 *0101ァリルの存在は、該被験ゥシがゥシ白血病ウィルス感染によ るゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すものである、上記方法。
[0011] 上記方法において、ステップ (b)は、例えばポリメラーゼ連鎖反応一塩基配列に基 づくタイピング法 (PCR— SBT)により行うことができる。具体的には、ステップ (b)は、 (b 1)配列番号 3に示される塩基配列からなるプライマー及び配列番号 4に示される 塩基配列からなるプライマーを用いた増幅反応を行うステップ、又は (b2)配列番号 5 に示される塩基配列からなるプライマー及び配列番号 6に示される塩基配列力 なる プライマーを用いた増幅反応を行うステップ、ある 、は (b l)及び (b2)の両方のステ ップを含むものである。また、ステップ (b)が、（b3)得られた増幅産物の塩基配列を 決定するステップ、をさらに含んでもよい。
[0012] (4)被験ゥシにおいて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖の 75番目のアミノ酸が ノ《リンである力否力、並びにゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖の 74番目、 77番目 及び 78番目のアミノ酸がそれぞれグルタミン酸、アルギニン及びパリンであるか否か を判定することを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病 発症に対する抵抗性を判定する方法。
[0013] (5)被験ゥシにおいて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺 伝子における配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出す ること、並びにゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖の 74番目、 77番目及び 78番目 のアミノ酸がそれぞれグルタミン酸、アルギニン及びパリンであるか否かを判定するこ とを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する 抵抗性を判定する方法。
[0014] (6)被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺 伝子における配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出す ること、及びゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードする DRB3遺伝子における 配列番号 14に示される塩基配列を有する DRB3* 0701ァリルを検出することを含む 、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を 判定する方法。
[0015] (7)被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗 性を判定する方法であって、
(a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァリルを検出するステップ、
(c)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードす る DRB3遺伝子の DRB3 *0701ァリルを検出するステップ、
を含み、 DQA1 *0101ァリル及び DRB3 *0701ァリルの存在は、該被験ゥシがゥシ 白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すもので ある、上記方法。
[0016] 上記方法において、ステップ (b)及び (c)は、ポリメラーゼ連鎖反応一塩基配列に 基づくタイピング法 (PCR— SBT)により行うことができる。
[0017] (8)被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードする DRB3遺 伝子における配列番号 14に示される塩基配列を有する DRB3*0701ァリルを検出 すること；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子における 配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出すること；ゥシ主 要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA2遺伝子における配列番号 22に示 される塩基配列を有する DQA2* 22031ァリルを検出すること;及びゥシ主要組織適 合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA3遺伝子の存在を検出することを含む、被験 ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定 する方法。
[0018] (9)被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗 性を判定する方法であって、
(a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコード する DRB3遺伝子の DRB3 *0701ァリルを検出するステップ、 (c)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァリルを検出するステップ、
(d)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA2遺伝子の DQA2* 22031ァリルを検出するステップ、
(e)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA3遺伝子の存在を検出するステップ、
を含み、 DRB3 *0701ァリル、 DQA1 *0101ァリル及び DQA2* 22031ァリルが存 在し、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイプの存在は、該被験ゥシがゥシ白血病 ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すものである、 上記方法。
[0019] ( 10)被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードする DRB3遺 伝子における配列番号 23に示される塩基配列を有する DRB3* 14012ァリルを検出 すること；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子における 配列番号 25に示される塩基配列を有する DQA1 * 10012ァリルを検出すること；ゥシ 主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA2遺伝子における配列番号 27に 示される塩基配列を有する DQA2* 22021ァリルを検出すること;及びゥシ主要組織 適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA3遺伝子の存在を検出することを含む、被 験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判 定する方法。
[0020] (11)被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗 性を判定する方法であって、
(a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコード する DRB3遺伝子の DRB3 * 14012ァリルを検出するステップ、
(c)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 10012ァリルを検出するステップ、
(d)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA2遺伝子の DQA2* 22021ァリルを検出するステップ、 (e)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA3遺伝子の存在を検出するステップ、
を含み、 DRB3 * 14012ァリル、 DQA1 * 10012ァリル及び DQA2* 22021ァリルカ S 存在し、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイプの存在は、該被験ゥシがゥシ白血 病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すものである 、上記方法。
[0021] ( 12)上記（ 1)〜（ 11)の 、ずれかの方法を用 、て白血病発症抵抗性を有すると判定 されたゥシを用いてゥシを作出することを特徴とする、ゥシ白血病ウィルス感染による ゥシ白血病発症に対する抵抗性を有するゥシの作出方法。
[0022] ( 13)ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコードする DQA1遺伝子の DQA1 * 01 01ァリルを検出する手段を含むことを特徴とする、ゥシ白血病ウィルス感染によるゥ シ白血病発症に対する抵抗性を判定するためのキット。
[0023] ( 14)ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 a鎖をコードする DQA1遺伝子の DQA1 * 01 01ァリルを検出する手段、及びゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードする DR Β3遺伝子の DRB3 *0701ァリルを検出する手段を含むことを特徴とする、ゥシ白血 病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定するためのキット。
[0024] 本発明により、ゥシ白血病ウィルス (BLV)によるゥシ白血病発症に対する抵抗性の 判定方法が提供される。該方法は、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖における D QA1 *0101ァリルの存在、又はゥシ主要組織適合抗原 DQ分子ひ鎖における DQA 1 * 0101ァリル及び DR分子 j8鎖における DRB3 *0701ァリルを検出することにより、 あるいは特定のァリルカ なるハプロタイプを検出することにより、被験ゥシの発症抵 抗性を簡便かつ迅速に判定することができるため、ゥシの白血病発症機構の研究、 ゥシ白血病発症に対する抵抗性を有するゥシの作出などに有用である。
図面の簡単な説明
[0025] [図 1]図 1は、 BoLA—DQ分子の α鎖のアミノ酸配列の一部について、 DQA1 *010 1ァリルと他のァリルとの比較を行った結果を示す。 75番目のアミノ酸残基は、 DQA 1 * 0101ァリルにお!、てパリン（V)であるのに対し、他のァリルにお!ヽてはイソ口イシ ン (I)である。 [図 2]図 2は、 HLA— DQ8の三次元立体構造における、 DQ分子の α鎖の 75番目 のアミノ酸残基の位置を示す。右図は、 DQA1 *0101ァリルを有する α鎖を示し、左 図は他のァリルを有する α鎖を示す。上側が DQ分子の α 1ドメインを、下側が DQ分 子の β 1ドメインを表す。また、中央部分の細長い配列は抗原ペプチドを表し、右上 は a鎖の 75番目のアミノ酸残基を表す。
[図 3]図 3は、ゥシ白血病ウィルス（BLV)に感染した健康ゥシと白血病発症ゥシにお ける、 BoLA—DQAl及び DQA2、並びに BoLA— DRB3のァリルを示す。
[図 4]図 4は、ゥシ白血病ウィルス（BLV)に感染した健康ゥシと白血病発症ゥシにお ける BoLA—DQAl及び DQA2のァリルの存在頻度の比較を示す。
[図 5]図 5は、 BLV感染細胞率（％)と DQA1 *0101ァリル及び DRB3 *0701ァリル の存在にっ 、ての分析結果を示す。
[図 6]図 6は、 DRB3 *0701ァリル及び DQA*0101ァリルを有する個体、 DRB3 *07
01ァリルのみを有する個体、 DRB3 *0701ァリルも DQA*0101ァリルも有しない個 体にっ 、て、 BLV感染細胞率（％)をプロットしたグラフを示す。
[図 7]図 7は、 BLV感染健康ゥシ 30頭と BLV感染白血病発症ゥシ 23頭の DRB— D
QA1 - DQA2 - DQA3のァリルのタイピング結果を示す。
[図 8]図 8は、図 7の結果に基づいて予測したノヽプロタイプを示す。
[図 9]図 9は、健康ゥシ及び白血病発症ゥシが有するハプロタイプをまとめた結果を示 す。
[図 10]図 10は、抵抗性ハプロタイプ（DRB3 *0701— DQA1 * 0101— DQA2* 220 31— DQA3 (— )、又は DRB3 * 14012— DQA 10012— DQA2* 22021— DQ A3 (—））を有する個体と他のハプロタイプを有する個体の BLV感染細胞数を比較し た結果を示す。
発明の実施するための最良の形態
以下、本発明を詳細に説明する。本願は、 2005年 2月 10日に出願された日本国 特許出願第 2005— 34944号、及び 2005年 7月 29日に出願された日本国特許出 願第 2005— 222165号の優先権を主張するものであり、上記特許出願の特許請求 の範囲、明細書及び Z又は図面に記載される内容を包含する。 [0027] 1.ゥシ白血病発症に対する抵抗性の判定
本発明は、ゥシ白血病ウィルス (BLV)感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性 を判定する方法である。本発明の方法は、ゥシ主要組織適合抗原 (BoLA)の DQ分 子の DQA1 *0101ァリルをホモ又はへテロに有するゥシ個体が BLV感染によるゥシ 白血病発症に対して抵抗性を示すという知見に基づくものである。
[0028] ゥシ主要組織適合抗原 (BoLA)とは、移植片ゃ細菌、ウィルスなどの外来抗原べ プチドと結合して T細胞に提示する膜タンパク質であり、一般には主要組織適合性遺 伝子複合体（Major histocompatibity complex ;MHC)分子と呼ばれるものである。 B oLAには、多くのァリルが存在することが知られており、これらの情報については、例 えば BoLA Nomenclature Committee Web site、インターネットサイト http://ww w. pro jects.roslin.ac.uk/bola/bolahome. html)にお!/、て公開され" Π、る。
[0029] ゥシ主要組織適合抗原（BoLA)の DQ分子の α鎖は、 DQA1〜5によりコードされ ている。 DQ分子の α鎖のアミノ酸配列を配列番号 12に、 α鎖をコードする塩基配列 を配列番号 13に示す（それぞれ、ァクセッション番号 ΒΑΑ09045. 1及び D50454 として登録されている）。本明細書において記載する「DQA1 *0101ァリル」とは、こ の DQ分子 α鎖をコードする DQA1のァリルの 1種であり、配列番号 1に示される塩 基配列及び配列番号 2に示されるアミノ酸配列を有するものである。ここで、この DQ Al *0101ァリルは、図 1に示す他のァリルのアミノ酸配列との比較により、 BoLA— DQ分子の α鎖の 75番目のアミノ酸がパリン (V)であり（配列番号 2における 98番目 のアミノ酸）、他のァリルではイソロイシン (I)である（配列番号 12) t 、う相違を示す。 ここで、「75番目のアミノ酸」とは、配列番号 12において、最初の 23アミノ酸力もなる シグナルペプチドを除き、成熟タンパク質の 1番目のアミノ酸力も数えて 75番目のアミ ノ酸のことをいう。また、塩基配列において、 DQA1 *0101ァリルでは、配列番号 1に おける 308〜310番目の塩基が GTCであるのに対し、他のァリルでは配列番号 13 における 292〜294番目の塩基が ATCである点で相違する。この相違点に基づい て、 HLA— DQ8の 3次元立体構造を参照に α鎖の 75番目のアミノ酸残基の機能を 予測したところ、この 75番目のアミノ酸残基は抗原ペプチドを直接認識するアミノ酸 残基である可能性が示唆された（図 2)。 [0030] 従って、本発明にお ヽては、被験ゥシにお!/ヽてゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α 鎖の 75番目のアミノ酸力パリンである力否かを判定する。好ましくは、被験ゥシにお いて BoLA—DQ分子 α鎖をコードする DQA1遺伝子における DQA1 *0101ァリル を検出する。そして、その判定結果 (検出結果）に基づいて該被験ゥシがゥシ白血病 発症に対する抵抗性を示すか否かを判定する。ここで、本明細書においては、「DQ Al *0101ァリルの検出」とは、被験ゥシが配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1を有するか否か、及び配列番号 2に示されるアミノ酸配列を含む DQ分子 a 鎖を発現するか否かを判定すること、並びにゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖の 75番目のアミノ酸がパリンである力否か又は該 DQ分子ひ鎖をコードする遺伝子の 3 08〜310番目（配列番号1)若しくは292〜294番目（配列番号13)の塩基が0丁じ であるか否かを判定することも意味する。また「発症に対する抵抗性」とは、ゥシ白血 病ウィルス (BLV)感染によるゥシ白血病への罹りにくさ（抵抗性)を意味し、「抵抗性 を有する」とは、他の被験ゥシと比較して、ゥシ白血病を発症する確率が低いことを意 味する。
[0031] 本発明において、被験ゥシにおける DQA1 * 0101ァリルの検出は、遺伝子レベル 又はタンパク質レベルで行うことができる。例えば、被験ゥシからゲノム DNA又は mR NAを調製し、塩基配列に基づいて、ゲノム DNA又は mRNAにおける DQA1 * 010 1ァリルを検出することができる。また、被験ゥシカもゥシ主要組織適合抗原 (BoLA) の DQ分子タンパク質を調製し、例えば抗体などを用いて DQ分子における DQA1 * 0101ァリルを検出することができる。これらの方法について、以下簡単に説明する。
[0032] ( 1)被験ゥシからのゲノム DNA又は mRNA調製
本発明の方法では、ゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定しょうとするゥシ (被験 ゥシ）からゲノム DNA又は mRNAを調製する。ゲノム DNAの調製は、公知の方法、 例えばフエノール Zクロ口ホルム法、セチルトリメチルアンモ-ゥムブロミド（CTAB)法 などにより調製することができる。また、 mRNAの調製は、公知の方法、例えばグァ- ジンイソチオシァネート法などにより調製することができる。ゲノム DNA又は mRNA を調製するためのキットも市販されており、ゲノム DNAの調製用には例えば Wizard Genomic DNA Purification Kit (Promega)など、 mRNAの調製用には例えば NucleoT rap (登録商標) mRNA Kit (Clontech)などを使用することができる。
[0033] また、後述するァリルの検出のため、 mRNAから cDNAを合成してもよい。 cDNA の合成方法は当技術分野で公知であり、例えば、 RNAから、逆転写酵素 ポリメラ ーゼ連鎖反応 (RT—PCR)によりランダムプライマー又はポリ Tプライマーを使用して cDNAを合成することができる。
[0034] DNA又は RNAを調製する供与源もまた特に限定されるものではなぐ細胞又は組 織、血液、唾液、鼻腔粘膜からこすりとつた細胞などを用いることができる。
[0035] 被験ゥシは、反芻類に属するゥシ（Bos Taurus, Bos indicus)であればその種は特 に限定されるものではない。例えば、エアーシア（Ayrshire)、ブリティッシュフリージア ン（British Friesian)、デンマーク黒肢（Danish Black Pied)、デンマーク赤毛（Danish Red)、ヘレフォード（Hereford)、ホルスタインフリージアン（Holstein Friesian)、ジャー ジー（Jersey)、リムーザン（Limousin)、黒毛和種、日本短角などが挙げられる。
[0036] (2)ゲノム DNA又は mRNAにおけるァリルの検出
ゲノム DNA又は mRNAにおける DQA1 *0101ァリルの検出は、例えば、当技術 分野で公知の遺伝子多型検出手段により行うことができ、限定するものではないが、 直接配列決定法、ポリメラーゼ連鎖反応 (PCR)を利用した方法、制限酵素断片長多 型 (RFLP)を利用した方法、ハイブリダィゼーシヨン法を利用した方法、プライマー伸 長反応を利用する方法、質量分光法などが挙げられる。これらの方法はいずれも当 業者に周知である。以下にその概要を説明する。
[0037] (2- 1)直接配列決定法
DQA 1 *0101ァリルは、ゲノム DNA又は mRNA由来の cDN Aを用 、て直接配列 決定法により検出することができる。直接配列決定法においては、最初に、被験ゥシ 力 ゲノム DNA又は mRNA由来の cDNAを調製し、検出対象となる DQA1*0101 ァリルを含む領域をベクターにクローユングし、宿主細胞 (例えば細菌）において増 幅させる。あるいは、検出対象の DQA1 *0101ァリルを含む領域内の DNAを PCR により増幅することも可能である。増幅後、検出対象領域内の DNAを配列決定する 。配列決定法としては、限定されるものではないが、手動式配列決定法又は自動配 列決定法が挙げられる。手動配列決定法としては、例えば放射性マーカーヌクレオ チドを使用する方法などが挙げられ、自動配列決定法としては、ダイターミネータ一 を使用する方法などが挙げられる。配列決定の結果に基づいて、被験ゥシが DQA1 *0101ァリルを有するか否かを判定する。
[0038] 本発明においては、特に、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR)を利用して DQA1*0101 ァリルを含む領域を増幅した後、得られた増幅産物の塩基配列決定を行う、ポリメラ ーゼ連鎖反応一塩基配列に基づくタイピング法 (PCR— SBT)が好ましい。 PCR- SBT法により DQA1 *0101ァリルを検出する方法について、以下詳述する。
[0039] 最初に、 BoLA—DQAlの第 2ェクソンを増幅可能なプライマーを用いて、調製し たゲノム DNAを铸型とした増幅反応を行 、、第 2ェクソンの塩基配列を有する核酸 断片を増幅する。 BoLA—DQAlの第 2ェクソンを増幅可能なプライマーは、第 2ェ クソンの全領域を増幅できることが好ましい。従って、第 2ェクソンの両側に位置する イントロンの配列に基づいてプライマーを設計することができる。あるいは、イントロン とェクソンとの境界領域の配列に基づ 、てプライマーを設計することもできる。
[0040] プライマーの設計手法は当技術分野で周知であり、本発明において使用可能なプ ライマーは、特異的なアニーリングが可能な条件を満たす、例えば特異的なァニーリ ングが可能な長さ及び塩基組成 (融解温度)を有するように設計される。例えば、ブラ イマ一としての機能を有する長さとしては、 10塩基以上が好ましぐさらに好ましくは 1 6〜50塩基であり、さらに好ましくは 20〜30塩基である。また設計の際には、プライ マーの融解温度 (Tm)を確認することが好ましい。 Tmとは、任意の核酸鎖の 50%が その相補鎖とハイブリッドを形成する温度を意味し、铸型となる DNAとプライマーとが 二本鎖を形成してアニーリングするためには、アニーリングの温度を最適化する必要 力 Sある。一方、この温度を下げすぎると非特異的な反応が起こるため、温度は可能な 限り高いことが望ましい。 Tmの確認には、公知のプライマー設計用ソフトウェアを利 用することができる。設計されたプライマーは、公知のオリゴヌクレオチド合成手法に より化学合成することができるが、通常は、市販の化学合成装置を使用して合成され る。
[0041] 本発明において使用可能な、 BoLA— DQA1の第 2ェクソンを増幅することができ るプライマーセットとしては、限定するものではないが、以下の（a)及び (b)が挙げら れる：
(a)配列番号 3に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 4に示す塩基配列 からなるプライマー
5，- CAC AAA TGA AGC CCA CAA TG- 3，（配列番号 3)
5，- CCC TAG GGA AAA GGG AGT GA- 3，（配列番号 4)
(b)配列番号 5に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 6に示す塩基配列 からなるプライマー
5，- GCC CAC AAT GTT TGA TAG TC- 3，（配列番号 5)
5，- GGG RAC ACA TAC TGT TGG T- 3，（配列番号 6)
(配列中、 Rは A又は Gを表す)。
[0042] 増幅反応は、特に限定されないが、好ましくはポリメラーゼ連鎖反応 (PCR)法によ り行う。
[0043] また、増幅の特異性を高めるために、 2組以上のプライマーを用いて 2回以上増幅 反応を行うことが好ましい。具体的には、最初に、被験ゥシに由来するゲノム DNAを 铸型として、 BoLA—DQAlの第 2ェクソンの塩基配列を含む核酸断片を増幅する。 次いで、増幅された核酸断片を铸型として、さらに BoLA—DQAlの第 2ェクソンの 塩基配列を含む核酸断片を増幅する。このように 2回以上増幅反応を行う場合には、 各増幅反応で使用するプライマーを、同じ位置に設計してもよいし、あるいは、最初 の増幅におけるプライマーの位置よりも内側に設計することができる。
[0044] BoLA—DQAlの DQA1*0101ァリルを検出するために 2回増幅反応を行う場合 のプライマーセットの例としては、限定するものではないが、被験ゥシに由来するゲノ ム DNAを铸型とした増幅反応において以下の（a)のプライマーセットを用い、増幅さ れた核酸断片を铸型とした増幅反応において以下の（b)のプライマーセットを用いる ことができる：
(a)配列番号 3に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 4に示す塩基配列 からなるプライマー
(b)配列番号 5に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 6に示す塩基配列 からなるプライマー。 [0045] 上述のようにして、被験ゥシに由来するゲノム DNAを铸型として、 BoLA—DQAl の第 2ェクソンの塩基配列を含む核酸断片を特異的に増幅することができる。
[0046] 続 、て、増幅した核酸断片の塩基配列を決定し、決定した塩基配列と、既知の DQ Al *0101ァリルの塩基配列（配列番号 1)とを比較する。これにより、被験ゥシの BoL A— DQA1が DQA1 *0101ァリルを有するかを決定することができる。
[0047] 配列決定法は当技術分野で周知であり、任意の方法を使用することができる。例え ば限定されるものではないが、増幅した核酸断片をベクターにクローユングすること なく配列を決定することができるダイレクト 'シーケンス法が挙げられる。力かる配列決 定法は、市販のキット、例えば CEQ™DTCS Quick Start Kit (BECKMAN)、 BigDye T erminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit ABI310 (Applied Biosystems)などを 用いて簡便に行うことができる。
[0048] ダイレクト 'シーケンス法を行う場合には、 BoLA—DQAlの第 2ェクソンを特異的 に配列決定することが可能なプライマーを用いることが好まし 、。
[0049] 本発明の方法において、 BoLA— DQA1第 2ェクソンの塩基配列を決定するため に使用可能なプライマーとしては、限定するものではないが、以下の（c)のプライマ 一セットが挙げられる：
(c)配列番号 7に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 8に示す塩基配列 からなるプライマー
5' -AC A ATG TTT GAT AGT CAA TTT C- 3' (配列番号 7)
5，- GGG RAC ACA TAC TGT TGG TAG- 3，（配列番号 8)
(配列中、 Rは A又は Gを表す)。
[0050] 核酸断片の塩基配列 (すなわち第 2ェクソンの塩基配列)を決定した後、その塩基 配列と、 DQA1 *0101ァリルの塩基配列（配列番号 1)を比較する。
[0051] (2— 2) PCR法
DQA1 *0101ァリルは、 PCR法を利用して検出することもできる。 PCRは、 DQA1 *0101ァリルを有する配列又は他のァリルを有する配列にのみハイブリダィズするォ リゴヌクレオチドプライマーを利用して行う。その DQA1*0101ァリル用及びその他 のァリル用の両方のプライマーセットを使用して被験ゥシ由来のゲノム DNA又は mR NA由来の cDNAを増幅する。 DQA1 *0101ァリル用プライマーのみ力 PCR産物を 生成した場合には、被験ゥシは DQA1 *0101ァリルをホモで有し、 DQA1*0101ァ リル用プライマーと他のァリル用プライマーからの PCR産物が生成された場合には、 被験ゥシは DQA1 *0101ァリルをへテロで有することになる。他のァリル用プライマ 一のみが PCR産物を生成した場合には、被験ゥシは DQA1 *0101ァリルを有しない
[0052] (2— 3)RFLP法
DQA1 *0101ァリルは、制限酵素断片長多型（Restriction Fragment Length Poly morphism;RFLP)を利用して検出することもできる。まず、検出対象の DQA1 *010 1ァリルを含む領域を PCRで増幅する。続いてこの PCR産物を、 DQA1 *0101ァリ ルに独特な長さの断片を生じることが知られている制限酵素で切断する。制限酵素 により消化された PCR産物は、一般的にはゲル電気泳動により分離し、ェチジゥムブ ロマイド染色により可視化する。断片の長さを、分子量マーカー、並びに他のァリル 及び DQA1 *0101ァリルの対照により生じた断片の長さと比較することによって、被 験ゥシにおける DQA1 *0101ァリルを検出することができる。
[0053] (2— 4)ハイブリダィゼーシヨン法
DQA1 *0101ァリルは、ハイブリダィゼーシヨンを利用して検出することもできる。ハ イブリダィゼーシヨン法は、被験ゥシ由来のゲノム DNA又は mRNA力 それに対し 相補的な DNA分子 (例えばオリゴヌクレオチドプローブ）とハイブリダィズする能力に 基づいて、 DQA1 *0101ァリルの有無を決定する方法である。ハイブリダィゼーショ ン及び検出のための種々の技術を利用してこのハイブリダィゼーシヨン法を行うこと ができる。
[0054] プローブが検出対象の DQA1 *0101ァリルに対しノヽイブリダィズした力否かは、そ の結合したプローブを可視化することにより直接検出することができる。これは、例え ば、ノーザン又はサザンアツセィとして知られている（例えば、 Ausabel et al. (編)， Cur rent Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, NY (1991)参照）。サザンァ ッセィの場合にはゲノム DNAを、ノーザンアツセィの場合には RNAを被験ゥシから 単離する。続いて、単離した DNA又は RNAを、一連の制限酵素群で切断する。次 に、 DNA又は RNAを分離し、膜に転写する。この分離操作は、例えばァガロースゲ ル上で行うことができる。膜への転写は、標識化プローブ、又は検出対象の DQA1 * 0101ァリルに特異的なプローブを、好適なストリンジエンシー条件下で膜に転写して 行う。標識は、例えば放射性ヌクレオチドを導入することにより行うことができる。未結 合のプローブを除去した後、標識ィヒプローブを可視化することにより、結合の存在を 検出することができ、その結合の有無により、 DQA1 * 0101ァリルを有するか否かに ついて判断しうる。
[0055] あるいは、ハイブリダィゼーシヨンは DNAチップを利用して検出することもできる。こ の方法においては、オリゴヌクレオチドプローブを固相支持体に貼り付ける。このプロ ーブは、 DQA1 *0101ァリルに特異的なものとなるように設計する。被験ゥシ由来の DNAサンプルを DNAチップと接触させ、ハイブリダィゼーシヨンを検出する。
[0056] (2— 5)タンパク質レベルでの検出
本発明の方法においては、タンパク質レベルで DQA1 * 0101ァリルを検出すること も可能である。具体的には、 DQA1 *0101ァリルを有する DQ分子の α鎖を特異的 に認識することができる抗体を用いることにより、 DQA1 *0101ァリルを検出すること ができる。
[0057] DQA1 *0101ァリルを有する DQ分子の a鎖を特異的に認識することができる抗 体は、配列番号 12に示すアミノ酸配列において、 75番目のアミノ酸残基を含み、か つ少なくとも 5個の連続するアミノ酸残基、好ましくは 6〜： LO個の連続するアミノ酸残 基力 なるペプチドを抗原として動物の免疫に用 、ることにより、作製することができ る。
[0058] 抗体の作製方法、及び抗体を用いた DQA1 * 0101ァリルを有する DQ分子の α鎖 の検出方法は、当技術分野で公知の方法を用いて行うことができる。
[0059] (3)ゥシ白血病発症に対する抵抗性の判定
DQA1 *0101ァリルの存在は、該被験ゥシがゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白 血病発症に対する抵抗性を有する可能性を示すものである。この DQA1 * 0101ァリ ルの存在は、ホモ又はへテロのいずれでもよい。
[0060] 2. BoLAの DR分子 β鎖のァリルを利用したゥシ白血病発症に対する抵抗性の判定 さらに本発明のゥシ白血病ウィルス (BLV)感染によるゥシ白血病発症に対する抵 抗性を判定する方法は、ゥシ主要組織適合抗原 (BoLA)の DQ分子の DQA1 *010 1ァリル及び BoLAの DR分子の DRB3*0701ァリルを有するゥシ個体が BLV感染 によるゥシ白血病発症に対して高 、抵抗性を示すと 、う知見に基づくものである。
[0061] ゥシ主要組織適合抗原（BoLA)の DR分子の β鎖は、 DRB3によりコードされてい る。 DR分子の β鎖の一部（DRB3)のアミノ酸配列を配列番号 17に、 β鎖の一部（D RB3)をコードする塩基配列を配列番号 16に示す（それぞれ、ァクセッション番号 ΝΡ 一 001012698及び ΝΜ一 001012680として登録されて!/、る）。本明糸田書にお！/、て 記載する「DRB3*0701ァリル」とは、この DR分子 β鎖をコードする DRB3のァリル の 1種であり、配列番号 14に示される塩基配列及び配列番号 15に示されるアミノ酸 配列を有するものである（それぞれ、ァクセッション番号 Χ87648及び CAA60988と して登録されている）。なお、 DRB3*0701ァリルの配列（配列番号 14及び 15)は、 DR分子 β鎖の一部に相当し、そのため本明細書中でいう「74番目のアミノ酸」は配 列番号 15の 74番目には対応するものではない。 DRB3*0701ァリルは、 BoLA—D R分子の β鎖の 74番目、 77番目及び 78番目のアミノ酸がグルタミン酸 (Ε)、アルギ ニン (R)及びパリン (V)であることを特徴とする（配列番号 15における 66番目、 69番 目及び 70番目のアミノ酸；配列番号 17における 103、番目 106番目及び 107番目 のアミノ酸)。ここで、「74番目、 77番目及び 78番目のアミノ酸」とは、配列番号 17に おいて、最初の 29アミノ酸力もなるシグナルペプチドを除き、成熟タンパク質の 1番目 のアミノ酸力 数えてそれぞれ 74番目、 77番目及び 78番目のアミノ酸のことを!、う。
[0062] 本発明者は、上述した DQA1遺伝子における DQA1 *0101ァリルと DRB3遺伝子 における DRB3*0701ァリルの両方を有するゥシ力 特にゥシ白血病発症に対する 抵抗性が高いことを見出した。従って、本発明においては、被験ゥシにおいてゥシ主 要組織適合抗原 DQ分子 a鎖の 75番目のアミノ酸力パリンであるか否力、並びにゥ シ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖の 74番目、 77番目及び 78番目のアミノ酸がそれ ぞれグルタミン酸、アルギニン及びパリンであるカゝ否かを判定する。好ましくは、被験 ゥシにおいて 801^\—0<3分子ひ鎖をコードする0<3八1遺伝子にぉける0<3八1 *01 01ァリルを検出すること、及びゥシ主要組織適合抗原 DR分子 13鎖をコードする DR B3遺伝子における DRB3*0701ァリルを検出することを含む。そして、その判定結 果 (検出結果）に基づ!、て該被験ゥシがゥシ白血病発症に対する抵抗性を示すか否 かを判定する。
[0063] 被験ゥシにおける DQA1 *0101ァリルの検出は、上述したように行うことができる。
また、被験ゥシにおける DRB3*0701ァリルの検出は、当技術分野で公知の方法、 例えば特許文献 1 (特開 2004 - 301518号公報）、特許文献 2 (特開 2001— 2386 79号公報）、国際公開第 98Z03680号パンフレット、国際公開第 98/36092号パ ンフレット、特開 2000-6698号公報、特開 2001— 178499号公報に記載の方法 などを利用して行うことができる。
[0064] DQA1 *0101ァリル及び DRB3*0701ァリルの存在は、該被験ゥシがゥシ白血病 ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有する可能性が高いことを示 すものである。この DQA1 *0101ァリル及び DRB3*0701ァリルの存在は、ホモ又 はへテロの 、ずれでもよ 、。
[0065] 3.ハプロタイプを利用したゥシ白血病発症に対する抵抗性の判定
さらに本発明のゥシ白血病ウィルス (BLV)感染によるゥシ白血病発症に対する抵 抗性を判定する方法は、ゥシ主要組織適合抗原 (BoLA)の DRB3*0701ァリル、 D QA1 *0101ァリル及び DQA2*22031ァリルが存在し、 DQA3遺伝子が存在しな 、ノヽプ pタイプ、又 ίま DRB3* 14012ァリノレ、 DQA1 * 10012ァリノレ及び DQA2*22 021ァリルが存在し、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイプを有するゥシ個体が、 BLV感染によるゥシ白血病発症に対して高 、抵抗性を示すと 、う知見に基づくもの である。
[0066] 本明細書において記載する「DQA2*22031ァリル」とは、ゥシ主要組織適合抗原
(BoLA)の DQ分子 α鎖をコードする DQA2遺伝子のァリルの 1種であり、配列番号 22に示される塩基配列を有するものである（ァクセッション番号 Ζ79517として登録さ れている）。また、本明細書において記載する「DQA3遺伝子」とは、 BoLAの DQ分 子 α鎖をコードするものであり、 DQA3遺伝子の存在は DQA*27011ァリル、 DQA * 27012アジノレ、 D<3A* 2702アジノレ、 D<3A*2301アジノレ、 D<3A*2601アジノレ、 DQ A* 2602ァリル、及び DQA* 2603ァリル等のいずれか 1つ以上が検出されることに よって表される（Keith et al" Immuno. genetics 1997, 46:237- 244参照）。ここで、 DQ A* 27011ァリルは、配列番号 29に示される塩基配列を有するものである（ァクセッ シヨン番号 Z79520として登録されて!、る）。
[0067] 本発明者は、上述した DRB3遺伝子における DRB3* 0701ァリル、 DQA1遺伝子 における DQA1 *0101ァリル、 DQA2遺伝子における DQA2* 22031ァリルを有し 、 DQA3遺伝子を有しないゥシ力 特にゥシ白血病発症に対する抵抗性が高いこと を見出した。従って、本発明においては、被験ゥシにおいて、ゥシ主要組織適合抗原 DR分子 13鎖をコードする DRB3遺伝子における DRB3 *0701ァリルを検出すること ；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子における DQA1 * 0101ァリルを検出すること；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA 2遺伝子における DQA2* 22031ァリルを検出すること;及びゥシ主要組織適合抗原 DQ分子ひ鎖をコードする DQA3遺伝子の存在を検出することを含む。そして、その 判定結果 (検出結果）に基づ 、て該被験ゥシがゥシ白血病発症に対する抵抗性を示 すか否かを判定する。ここで、 DQA3遺伝子の存在は、 DQA* 27011ァリル、 DQA * 27012アジノレ、 D<3A* 2702アジノレ、 D<3A* 2301アジノレ、 D<3A* 2601アジノレ、 DQ A* 2602ァリル、及び DQA* 2603ァリル等のいずれか 1つ以上が検出されることに よって表される（Keith et al., Immuno. genetics 1997, 46:237- 244参照）。
[0068] また、本明細書において記載する「DRB3 * 14012ァリル」とは、ゥシ主要組織適合 抗原（BoLA)の DR分子 β鎖をコードする DRB3遺伝子のァリルの 1種であり、配列 番号 23に示される塩基配列及び配列番号 24に示されるアミノ酸配列を有するもので ある（それぞれァクセッション番号 Ζ82035及び CAB52187. 1として登録されている )。また、本明細書において記載する「DQA1 * 10012ァリル」とは、 BoLAの DQ分 子 α鎖をコードするものであり、配列番号 25に示される塩基配列及び配列番号 26に 示されるアミノ酸配列を有するものである（それぞれァクセッション番号 U80881及び ΑΑΒ62026. 1として登録されている）。また本明細書において記載する「DQA2* 2 2021」とは、 BoLAの DQ分子 α鎖をコードするものであり、配列番号 27に示される 塩基配列及び配列番号 28に示されるアミノ酸配列を有するものである（それぞれァク セッション番号 D50045及び ΒΑΑ08765. 1として登録されて!、る）。 [0069] 本発明者は、上述した DRB3遺伝子における DRB3* 14012ァリル、 DQA1遺伝 子における DQA1 * 10012ァリル、 DQA2遺伝子における DQA2* 22021ァリルを 有し、 DQA3遺伝子を有しないゥシ力 特にゥシ白血病発症に対する抵抗性が高い ことを見出した。従って、本発明においては、被験ゥシにおいて、ゥシ主要組織適合 抗原 DR分子 /3鎖をコードする DRB3遺伝子における配列番号 23に示される塩基配 列を有する DRB3* 14012ァリルを検出すること；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc 鎖をコードする DQA1遺伝子における配列番号 25に示される塩基配列を有する DQ A1 * 10012ァリルを検出すること；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA2遺伝子における配列番号 27に示される塩基配列を有する DQA2* 22021ァ リルを検出すること;及びゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA3遺 伝子の存在を検出することを含む。そして、その判定結果 (検出結果）に基づいて該 被験ゥシがゥシ白血病発症に対する抵抗性を示すか否かを判定する。
[0070] 被験ゥシにおける DRB3遺伝子のァリル（DRB3*0701又は DRB3* 14012)の検 出、並びに DQA1遺伝子のァリル（DQA1 *0101又は DQA1 * 10012)の検出は、 上述したように行うことができる。また、被験ゥシにおける DQA2遺伝子のァリル (DQ A2* 22031又は DQA2* 22021)の検出、及び DQA3遺伝子（DQA* 27011ァリ ノレ、 D<3A* 27012アジノレ、 DQA* 2702TU/V, D<3A* 2301アジノレ、 DQA* 2601T リル、 DQA* 2602ァリル、及び DQA* 2603ァリル等）は、 DQA2遺伝子を増幅する ことができるプライマーセットを用いて DQA2遺伝子の全体又は一部を増幅し、その 増幅産物の配列を決定し、特定のァリルの配列を有する力否か確認することにより行 うことができる。また、本発明において使用可能な、 BoLA— DQA2の第 2ェクソンを 増幅することができるプライマーセットとして、限定するものではないが、以下の（d)〜 (g)が挙げられる：
(d)配列番号 9に示す塩基配列力もなるプライマー及び配列番号 10に示す塩基配 列からなるプライマー
5，- TTT TCC ACC TTY CTG CTC CT- 3 ' (配列番号 9)
5，- CAC TTA CCA TTG ATA ACA GG- 3 ' (配列番号 10)
(配列中、 Yは C又は Tを表す） (e)配列番号 9に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 1 1に示す塩基配 列からなるプライマー
5，- TTT TCC ACC TTY CTG CTC CT- 3' (配列番号 9)
5，- TTG ATA ACA GGG GTA AAG TTG GA- 3，（配列番号 11)
(配列中、 Yは C又は Tを表す）
(f)配列番号 30に示す塩基配列からなるプライマー及び配列番号 10に示す塩基配 列からなるプライマー
5，- TTT GCT TAG AGA CAT TGT GC- 3，（配列番号 30)
5，- CAC TTA CCA TTG ATA ACA GG- 3' (配列番号 10)
(g)配列番号 31に示す塩基配列力もなるプライマー及び配列番号 10に示す塩基配 列からなるプライマー
5，- TTT TCC ACC TTY YTG CTC CT- 3' (配列番号 31)
5，- CAC TTA CCA TTG ATA ACA GG- 3' (配列番号 10)
(配列中、 Yは C又は Tを表す)。
[0071] また本発明の方法において、 BoLA— DQA2第 2ェクソンの塩基配列を決定する ために使用可能なプライマーとしては、限定するものではないが、上記の（e)又は (g )のプライマーセットが挙げられる。
[0072] DRB3 * 0701ァリル、 DQA1 * 0101ァリル及び DQA2 * 22031ァリルが存在し、 D QA3遺伝子が存在しないハプロタイプ、又は DRB3 * 14012ァリル、 DQA1 * 1001 2ァリル及び DQA2 * 22021ァリルが存在し、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイ プは、被験ゥシがゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を 有する可能性が高 、ことを示すものである。このハプロタイプにおけるァリルの存在は 、ホモ又はへテロのいずれでもよい。
[0073] 4.キット
本発明のキットは、ゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性 を判定するために用いることができ、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖における D QA1 * 0101ァリルを検出する手段を含むものである。
[0074] ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 a鎖における DQA1 * 0101ァリルを検出する手段 としては、例えば限定されるものではないが、 DQA1*0101ァリルを含む領域を増幅 することができるプライマー、 DQA1 *0101ァリルを含む領域を配列決定することが できるプライマー、 DQA1*0101ァリルに特異的に結合することができるプライマー 又はプローブ、 DQA1*0101ァリルを含む BoLA— DQ分子に対して特異的に結合 することができる抗体、などが含まれる。
[0075] PCR— SBT法により DQA1*0101ァリルを検出する場合には、本発明のキットは、 BoLA— DQA1の第 2ェクソンを増幅するためのプライマーセットとして、以下の（a) 又は（b)の少なくとも 1つのプライマーセットを含むことが好ましぐまた、（a)及び (b) の両方のプライマーセットを含むことがさらに好ましい：
(a)配列番号 3に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 4に示す塩基配列 からなるプライマー
(b)配列番号 5に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 6に示す塩基配列 からなるプライマー。
[0076] さらに本発明のキットは、 BoLA— DQA1の第 2ェクソンを配列決定するためのプラ イマ一セットとして、以下の（c)のプライマーセットを含むことが好まし ヽ：
(c)配列番号 7に示す塩基配列力 なるプライマー及び配列番号 8に示す塩基配列 からなるプライマー。
[0077] また本発明のキットは、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺 伝子の DQA1*0101ァリルを検出する手段、及びゥシ主要組織適合抗原 DR分子 j8鎖をコードする DRB3遺伝子の DRB3*0701ァリルを検出する手段を含むもので あってもよい。
[0078] DRB3*0701ァリルを検出する手段としては、例えば限定されるものではないが、 DRB3*0701ァリルを含む領域を増幅することができるプライマー、 DRB3*0701ァ リルを含む領域を配列決定することができるプライマー、 DRB3*0701ァリルに特異 的に結合することができるプライマー又はプローブ、 DRB3*0701ァリルを含む BoL A— DR分子に対して特異的に結合することができる抗体、などが含まれる。
[0079] さらに本発明のキットは、ゥシ主要組織適合抗原 DR分子 /3鎖をコードする DRB3 遺伝子の DRB3*0701ァリルを検出する手段、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 a 鎖をコードする DQA1遺伝子の DQA1 *0101ァリルを検出する手段、ゥシ主要組織 適合抗原 DQ分子 α鎖をコードする DQA2遺伝子の DQA2* 22031ァリルを検出す る手段、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA3遺伝子を検出する 手段を含むものであってよい。カゝかる手段を含むキットにより、ゥシ主要組織適合抗 原におけるゥシ白血病発症に対する抵抗性に関連するハプロタイプを判定すること ができる。
[0080] またさらに本発明のキットは、ゥシ主要組織適合抗原 DR分子 /3鎖をコードする DR B3遺伝子の DRB3 * 14012ァリルを検出する手段、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分 子 α鎖をコードする DQA1遺伝子の DQA1 * 10012ァリルを検出する手段、ゥシ主 要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコードする DQA2遺伝子の DQA2* 22021ァリルを 検出する手段、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA3遺伝子を検 出する手段を含むものであってよい。力かる手段を含むキットにより、ゥシ主要組織適 合抗原におけるゥシ白血病発症に対する抵抗性に関連するハプロタイプを判定する ことができる。
[0081] 上記ァリルを検出する手段としては、例えば限定されるものではないが、上記ァリル を含む領域を増幅することができるプライマー、上記ァリルを含む領域を配列決定す ることができるプライマー、上記ァリルに特異的に結合することができるプライマー又 はプローブ、上記ァリルを含む BoLA— DR分子に対して特異的に結合することがで きる抗体、などが含まれる（例えば Da Mota, AF et al.， Eur. J. Immunogenet. 2004, 3 1 , 31-35 ; Takeshima et al., Immunogenet. 2001 , 53, 74-81； van Eijk et al., Anim. ge net. 1992, 23, 483-496などを参照）。
[0082] 本発明のキットは、特定のァリルを検出する手段のほか、さらに、反応液を構成する ノ ッファー、 dNTP混合物、酵素類 (ポリメラーゼなど)などを含んでもよい。
[0083] 5.ゥシ白血病発症に対する抵抗性を有するゥシの作出
上述のように、 DQA1 *0101ァリル、又は DQA1 *0101ァリルと DRB3 *0701ァリ ルを検出することにより、ゥシ白血病ウィルス (BLV)によるゥシ白血病発症の抵抗性 を判定することができるため、この判定結果を利用して、ゥシ白血病発症の抵抗性を 有するゥシを作出することができる。また、 DRB3 *0701ァリル、 DQA1 *0101ァリル 及び DQA2*22031ァリルが存在し、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイプ、又 は DRB3* 14012ァリル、 DQA1 * 10012ァリル及び DQA2*22021ァリルカ S存在し 、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイプを検出することにより、ゥシ白血病ウィルス (BLV)によるゥシ白血病発症の抵抗性を判定することができるため、この判定結果 を利用して、ゥシ白血病発症の抵抗性を有するゥシを作出することができる。
[0084] 例えば、ゥシの受精卵において DQA1 *0101ァリル、又は DQA1 *0101ァリルと DRB3*0701ァリルを検出し、 DQA1 *0101ァリル、又は DQA1 *0101ァリルと DR B3*0701ァリルを有する受精卵を選択して雌ゥシの子宮に移植することによって、ゥ シ白血病発症の抵抗性を有するゥシを作出することができる。あるいは、 DRB3*07 01ァリル、 DQA1 *0101ァリル及び DQA2*22031ァリルを有し、 DQA3遺伝子を 有しない受精卵、又は DRB3* 14012ァリル、 0<3八1 * 10012ァリル及び0<3八2*2 2021ァリルを有し、 DQA3遺伝子を有しな 、受精卵を選択して雌ゥシの子宮に移植 することによって、ゥシ白血病発症の抵抗性を有するゥシを作出することができる。
[0085] また、ゥシ白血病発症の抵抗性を有すると判定された雄ゥシ及び雌ゥシ由来の精 子及び卵子を用いることによって、ゥシ白血病発症の抵抗性を有するゥシを作出する ことも可能である。
実施例
[0086] 以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲はこ れら実施例に限定されるものではない。
[0087] 〔実施例 1〕
本実施例にぉ 、ては、国際 BoLAワークショップにてタイピングされた標準ゥシの D NA52サンプル (WKシリーズ）を使用してゲノム DNAを抽出した。
[0088] 全血からのゲノム DNAの抽出は、 Wizard Genomic DNA Purification Kit (Promega )を使用した。 300 μ 1の血液に対し、 900 μ 1の Cell Lysis Solutionを加え転倒攪拌し 、 10分間室温で静置した。 20, 400 X g、 4°Cで 20秒間遠心後上清を除き、沈殿を 3 00 μ 1の Nuclei Lysis Solutionで溶解した。 1. 5 1の分解酵素（RNase A Solution)を 加え 37。Cで 1時間反応した。 100 1の Protein Precipitation Solutionをカ卩え良く混合 した後、 20, 400 X g、室温で 3分間遠心した。 300 1のイソプロパノールの入ったチ ユーブに上清をカ卩ぇ混合した後、 20, 400 X g、 4°Cで 1分間遠心し DNAの沈殿を 得た。 70%エタノール 300 1で洗浄し、乾燥させた後、蒸留水 50mlをカ卩ぇ 4°Cで一 晚かけて溶解した。 DNAの濃度は分光光度計により 260nmでの吸収量を測定する ことにより算出した。
[0089] 〔実施例 2〕
実施例 1で調製した 52頭由来の DN Aサンプルにつ!/、て、 BoLA - DQA 1のァリ ルを決定した。
[0090] (l) BoLA-DQAl IstPCR
120 Μの各 dNTP、 1. 5mMの MgCl 、 400nMのプライマー、及び 1. 25ュ-ッ
2
トの rTaq DNA伸長酵素（TOYOBO)、 1 μ 1のゲノムを含む 25 μ 1の 1 XrTaq緩衝液 を 94°Cで 2分間の変性処理後、 94°Cで 20秒； 60°Cで 20秒、及び 72°Cで 40秒の処 理を 1サイクルとして 15サイクルの処理の後、 72°Cで 4分間伸長させた。プライマー は、 BoLA— DQA1第 2ェクソンを PCR法により特異的に増幅できる DQAlintL2及 び DQA1— 677Rを用いた（配列番号 3及び 4)。
[0091] (2) BoLA-DQAl 2ndPCR
IstPCR産物のうち 1 μ 1を 120 μ Μの各 dNTP、 1. 5mMの MgCl 、 400nMのプ
2
ライマー、及び 0. 5ユニットの AmpliTaq Gold™ DNA伸長酵素（Applied Biosystems) を含む 24 μ 1の Gene AmpR Gold緩衝液を 95°Cで 10分間の変性処理後、 94°Cで 20 秒； 60°Cで 20秒、及び 72°Cで 40秒の処理を 1サイクルとして 30サイクルの処理の後 、 72°Cで 4分間伸長させた。プライマーは、さらに内側を特異的に増幅できる DQAi ntL3及び DQAlexREVver2. 1を用いた（配列番号 5及び 6)。これによつて、 355 bpの DNA断片が得られた。 PCR産物をェチヂゥムブロマイド入り 2%ァガロースゲ ルで電気泳動をして、 DNAが増幅されて!、るか確認した。
[0092] (3)ダイレクト 'シーケンス法
シーケンスプライマーとして DQAintL3. 1及び DQAlex2REVverl. 1を用いた（ 配列番号 7及び 8)。 CEQ™DTCS Quick Start Kit (BECKMAN)をシーケンス反応に 用いた。 1 μ 1の PCR産物、 2 μ 1の lOpmolZ μ 1プライマー、 4 μ 1の DTCS Quick Sta rt Mix (BECKMAN)、 4 μ 1の2.5 X Sequencing Buffer (Edge Biosystems)、及び滅菌 水 9 μ 1を混和し、 95°Cで 20秒； 50°Cで 20秒； 60°Cで 4分間の処理を 1サイクルとし て 30サイクルの処理を行った。シーケンス PCR産物は、説明書に従って CENTRI-SE P COLUMNS (PRINCETON SEPARATIONS)を用いて精製し、その後 CEQ™ 2000X L DNA Analysis Systemシーケンサー（BECKMAN COULTER)用の Sample Loading Solution (BECKMAN) 20 μ 1に溶解し、 CEQ™ 2000XL DNA Analysis System (BECK MAN COULTER)でシーケンスを行った。決定された塩基配列からプライマー部位を 除去し、 National Center for Biotechnology Information上のホモロジ一検索プログラ ム、 BLASTを使用してァリルの塩基配列をデータベースに登録されて!、る塩基配列 と照合し、ァリルを決定した。
[0093] その結果、全てのサンプルにおいて DQA1の増幅が確認できた。また、図 3に示す ようなァリルが検出された。
[0094] 〔実施例 3〕
実施例 1で調製した 52頭由来の DNAサンプルについて、 BoLA—DQA2のァリ ルを決定した。
[0095] (l) BoLA-DQA2 IstPCR
120 Μの各 dNTP、 1. 5mMの MgCl、 400nMのプライマー、及び 0. 5ユニット
2
の AmpliTaq Gold™ DNA伸長酵素（Applied Biosystems)、 1 μ 1のゲノムを含む 25 μ 1 の Gene AmpR Gold緩衝液を 95°Cで 10分間の変性処理後、 95°Cで 1分間； 55°Cで 3 0秒、及び 72°Cで 40秒の処理を 1サイクルとして 15サイクルの処理の後、 72°Cで 4 分間伸長させた。プライマーは、 BoLA—DQA2第 2ェクソンを PCR法により特異的 に増幅できる DQA2intL06及び QA006を用いた（配列番号 9及び 10)。
[0096] (2) BoLA-DQA2 2ndPCR
IstPCR産物のうち 1 μ 1を同条件の試薬 24 μ 1に混和し、 95°Cで 10分間の変性処 理後、 95°Cで 1分間； 63°Cで 30秒、及び 72°Cで 40秒の処理を 1サイクルとして 35サ イタルの処理の後、 72°Cで 4分間伸長させた。プライマーは、さらに内側を特異的に 増幅できる DQA2intL06及び DQA2exon2く - 1を用いた（配列番号 9及び 11)。 これによつて、 283bpの DNA断片が得られた。 PCR産物をェチヂゥムブロマイド入り 2%ァガロースゲルで電気泳動をして、 DNAが増幅されて!、るか確認した。 [0097] (3)ダイレクト 'シーケンス法
シーケンスプライマーとして DQA2intL06及び DQA2exon2く - 1を用いた（配 列番号 9及び 11)。 CEQ™DTCS Quick Start Kit (BECKMAN)をシーケンス反応に 用いた。 1 μ 1の PCR産物、 2 μ 1の lOpmolZ μ 1プライマー、 4 μ 1の DTCS Quick Sta rt Mix (BECKMAN)、 4 μ 1の2.5 X Sequencing Buffer (Edge Biosystems)、及び滅菌 水 9 μ 1を混和し、 95°Cで 20秒； 50°Cで 20秒； 60°Cで 4分間の処理を 1サイクルとし て 30サイクルの処理を行った。シーケンス PCR産物は、説明書に従って CENTRI-SE P COLUMNS (PRINCETON SEPARATIONS)を用いて精製し、その後 CEQ™ 2000X L DNA Analysis Systemシーケンサー（BECKMAN COULTER)用の Sample Loading Solution (BECKMAN) 20 μ 1に溶解し、 CEQ™ 2000XL DNA Analysis System (BECK MAN COULTER)でシーケンスを行った。決定された塩基配列からプライマー部位を 除去し、 National Center for Biotechnology Information上のホモロジ一検索プログラ ム、 BLASTを使用してァリルの塩基配列をデータベースに登録されて!、る塩基配列 と照合し、ァリルを決定した。
[0098] その結果、 52サンプル中 41サンプルに DQA2の増幅が認められた。また、図 3に 示すようなァリルが検出された。
[0099] 〔実施例 4〕
実施例 1で調製した 52頭由来の DNAサンプルにつ ヽて、公知の方法 (特許文献 1 (特開 2004— 301518号公報）、国際公開第 98/03680号パンフレット、国際公開 第 98Z36092号パンフレット、特開 2000— 86698号公報、特開 2001— 178499 号公報、及び特開 2001— 238679号公報）に従って BoLA— DRB3のァリルを決 定した。その結果、図 3に示すようなァリルが検出された。
[0100] 〔実施例 5〕
本実施例においては、ゥシが有するァリルの比較を行った。実施例 2及び 3の結果 、ゥシ 52サンプルのァリルの検出に成功し、 DQA1の既知ァリル 31種類のうち 14種 類力 DQA2の既知ァリル 13種類のうち 7種類が検出された（図 4)。また、ゥシ白血 病ウィルス（BLV)感染健康ゥシ 29頭及び白血病発症ゥシ 23頭の合計 52頭の DQ A1及び DQA2のァリルについて比較した。その結果を図 3に示す。 BLV感染ゥシに おいては、 DQA1 *0101を有する個体の頻度が有意に高力つた（図 3及び 4；健康ゥ シ 37%、発症ゥシ 0%、 p = 0. 001185)。
[0101] また、実施例 4において調べたように、 BoLA—DRB3に存在する抵抗性ァリル DR B*0701, *0902及び *1401(DRj8鎖の 71番、 77番及び 78番【こ ERVのアミノ酸 を有する、特許文献 1)も含めて解析した結果（図 3)、 DRBに存在する抵抗性ァリル (DRB*0701、 *0902及び * 1401)又は DQAに存在する抵抗性ァリル（DQA1 * 0 101)のいずれか一方、又は両方を有する個体の頻度は、発症ゥシが 9%であるのに 対して健康ゥシは 67%であった（p = 0. 000019)。
[0102] 〔実施例 6〕
実施例 5において、ゥシ BoLAにおける DQA1*0101ァリルがゥシ白血病ウィルス (BLV)感染による白血病の発症に対して抵抗性を示すことが明ら力となったので、こ の DQA1 *0101ァリルにつ!、てさらに解析した。
[0103] DQA1*0101ァリルと他の DQA1ァリルの予想アミノ酸配列を比較したところ、 DQ Al*0101ァリルでは 75番目のアミノ酸残基がパリンであるのに対し、他のァリルでは イソロイシンであった（図 1)。そこで、 HLA—DQ8の 3次元立体構造を参照しながら DQa鎖の 75番目のアミノ酸残基の機能を予測した結果を図 2に示す。図 2におい て、右図は、 DQA1*0101ァリルを有する α鎖を示し、左図は他のァリルを有する a 鎖を示す。また、上側が DQ分子の a 1ドメインを、下側が DQ分子の /31ドメインを表 す。中央部分の細長い配列は抗原ペプチドを表し、右上は ex鎖の 75番目のアミノ酸 残基を表す。図 2の右図から、この 75番目のアミノ酸残基が抗原ペプチドと直接相互 作用していることが示された。従って、このアミノ酸残基は抗原ペプチドを直接認識す るアミノ酸残基である可能性が示唆された。
[0104] 〔実施例 7〕
本実施例においては、 DQA1*0101ァリルと DRB3*0701ァリルの存在と白血病 抵抗性との関連性につ！、て解析した。
[0105] 実施例 1〜5に記載の方法に従って、 53頭の被験ゥシにおける DQA1遺伝子に存 在するァリルを検出し、また特許文献 2 (特開 2001— 238679号公報）に記載の PC R— SBT法 (具体的には、特許文献 2の [0029]の項に記載のプライマーを使用）に 従って、被験ゥシにおける DRB3遺伝子に存在するァリルを検出した。
[0106] 次に、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス (BLV)に感染した白血球の割合（％) を調べるため、リアルタイム定量 PCR (LightCycler System; Roche Diagnostics)シス テムを使用した。被験ゥシの血液から、 LyghtCycler-FastStart DNA Master SYBR Gr een I (Roche Diagnostics)、並びに BLV LTRの一部の増幅用のプライマー 256 (GA GCTCTCTTGCTCCCGAGAC ;配列番号 18)及び 453 (GAAACAAACGCGGGTG CAAGCCAG ;配列番号 19)の存在下で、 30ngの総 DNAを増幅した。また、铸型 D NAの濃度をモニターするためプライマー PC03 (ACACAACTGTGTTCACTAGC； 配列番号 20)及び PC04 (CAACTTCATCCACGTTCACC；配列番号 21)を用いて 各サンプル中のゥシ ι8グロビン遺伝子を増幅した。 BLVに感染した胎仔ヒッジ腎細 胞（FLK) 1細胞当たり 6コピーの BLVが integrateして!/、ることが報告されて 、る (Asti er, T. et al.， Amn. Rech. Vet. 9:643-649, 1978)ため、 6コピーの FLK— BLVゲノム を有する BLV細胞からの総 DNAを、 FLK細胞由来の総 DNAで希釈し、これらのサ ンプルを BLV陽性細胞の割合 (％)を計算するための標準として使用した。
[0107] 53頭の被験ゥシの BLV感染細胞率（％)と DQA1遺伝子のァリル及び DRB3遺伝 子のァリルについての分析結果を図 5に示す。また、図 5に示す結果に基づいて、 D RB3*0701ァリル及び DQA*0101ァリルを有する個体、 DRB3*0701ァリルのみ を有する個体、 DRB3*0701ァリルも DQA*0101ァリルも有しない個体について、 BLV感染細胞率（％)をプロットしたグラフを図 6に示す。これらの結果から、 DRB3* 0701ァリルと DQA*0101ァリルの両方を有する個体は、 BLV感染細胞率が有意に 低く（p = 0. 0015)、そのため、これらのァリルを有する個体は、 BLVによるゥシ白血 病発症に対する抵抗性が高いことが示された。
[0108] 〔実施例 8〕
本実施例においては、ゥシ主要組織適合抗原をコードする遺伝子のうち、 DRB3、 DQA1、 DQA2及び DQA3に存在するァリルの頻度とゥシ白血病抵抗性との関連 性について調べた。
[0109] 実施例 1〜5に記載の方法に従って、 53頭の被験ゥシ (BLV感染健康ゥシ 30頭及 び白血病発症ゥシ 23頭）における DQA1及び DQA2遺伝子に存在するァリルを検 出し、また特許文献 2 (特開 2001— 238679号公報）に記載の PCR— SBT法 (具体 的には、特許文献 2の [0029]の項に記載のプライマーを使用）に従って、被験ゥシ における DRB3遺伝子に存在するァリルを検出した。さらに、実施例 2に記載の方法 に従って、 DQA* 27011ァリルの有無を調べることにより、 DQA3遺伝子を検出した
[0110] DRB3、 DQA1、 DQA2、及び DQA3の遺伝子に存在するァリルの分析の結果を 図 7に示す。図 7において、「*27011」は DQA3のァリルを表す。またこの分析結果 力もゥシ白血病の発症に関連して 、ると考えられるハプロタイプを予測した（図 8)。
[0111] BLV感染健康ゥシと BLV感染白血病発症ゥシにおける予測したノヽプロタイプの存 在を整理した結果を図 9に示す。この分析の結果、 DRB3*0701 -DQA1 *0101 - DQA2 * 22031— DQA3 ( - )のハプロタイプ、及び DRB3 * 14012— DQA1 * 1 0012— DQA2* 22021—DQA3 (—)のハプロタイプが、健康ゥシでそれぞれ 10% 及び 12%で存在するのに対して、白血病発症ゥシではいずれも 0%で存在し、その 存在頻度が有意に減少していた (p = 0. 035、 p = 0. 018)。ここで DQA3遺伝子に ついての（一）は、 DQA3遺伝子が存在しないことを表す。
[0112] 続いて、実施例 6に記載のように、新たに BLV感染ゥシ 53頭における DRB3、 DQ Al、 DQA2及び DQA3遺伝子のァリルをタイピングし、 BLV感染細胞数の割合との 相関性を解析した。その結果、 DRB3*0701— DQA1 *0101— DQA2*22031— DQA3 ( - )のハプロタイプ、又は DRB3 * 14012- DQA1 * 10012— DQA2 * 220 21— DQA3 (—）のハプロタイプ（以下、抵抗性ノヽプロタイプという）を有する個体は、 これを持たな 、個体と比較して、 BLV感染細胞数の割合が有意に減少して 、ること が示された（図 10、 p = 0. 001446)。このことから、抵抗性ハプロタイプを有するゥシ は、 BLV感染細胞数が低く抑えられ、その結果、白血病発症のリスクが低下し、白血 病発症に抵抗性を示すことが示唆された。
[0113] 本明細書中で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願は、その全文を参考とし て本明細書中にとり入れるものとする。
産業上の利用の可能性
[0114] 本発明により、ゥシ白血病ウィルス (BLV)によるゥシ白血病発症に対する抵抗性の 判定方法が提供される。該方法は、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖における D QA1 *0101ァリルの存在、又は DQA1 *0101ァリルとゥシ主要組織適合抗原 DR分 子 13鎖における DRB3*0701ァリルの存在、あるいは特定のァリルからなるハプロタ イブを検出することにより、被験ゥシの発症抵抗性を簡便かつ迅速に判定することが できるため、ゥシの白血病発症機構の研究、ゥシ白血病発症に対する抵抗性を有す るゥシの作出などに有用である。
配列表フリーテキスト
配列番号 3〜11、 18〜21、 30及び 31：合成オリゴヌクレオチド（配列中、 Rは A又 は Gを表す）

Claims

請求の範囲
[1] 被験ゥシにおいて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖の 75番目のアミノ酸がバリ ンであるか否かを判定することを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染に よるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定する方法。
[2] 被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子 における配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出するこ とを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する 抵抗性を判定する方法。
[3] 被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を 判定する方法であって、
(a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァリルを検出するステップ、
を含み、 DQA1 *0101ァリルの存在は、該被験ゥシがゥシ白血病ウィルス感染によ るゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すものである、上記方法。
[4] ステップ (b)が、ポリメラーゼ連鎖反応—塩基配列に基づくタイピング法 (PCR— SB T)により行われる、請求項 3記載の方法。
[5] ステップ (b)が、
(b 1)配列番号 3に示される塩基配列からなるプライマー及び配列番号 4に示される 塩基配列からなるプライマーを用いた増幅反応を行うステップ、又は
(b2)配列番号 5に示される塩基配列からなるプライマー及び配列番号 6に示される 塩基配列からなるプライマーを用いた増幅反応を行うステップ、
あるいは (b l)及び (b2)の両方のステップを含む、請求項 3又は 4記載の方法。
[6] ステップ (b)が、
(b3)得られた増幅産物の塩基配列を決定するステップ、
をさらに含む、請求項 5記載の方法。
[7] 被験ゥシにお!/、て、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖の 75番目のアミノ酸がバリ ンであるか否か、並びにゥシ主要組織適合抗原 DR分子 13鎖の 74番目、 77番目及 び 78番目のアミノ酸がそれぞれグルタミン酸、アルギニン及びパリンであるか否かを 判定することを含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発 症に対する抵抗性を判定する方法。
[8] 被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子 における配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出するこ と、並びにゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖の 74番目、 77番目及び 78番目のァ ミノ酸がそれぞれグルタミン酸、アルギニン及びパリンである力否かを判定することを 含む、被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵 抗性を判定する方法。
[9] 被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子 における配列番号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出するこ と、及びゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードする DRB3遺伝子における配 列番号 14に示される塩基配列を有する DRB3* 0701ァリルを検出することを含む、 被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を 判定する方法。
[10] 被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を 判定する方法であって、
(a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァリルを検出するステップ、
(c)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードす る DRB3遺伝子の DRB3 *0701ァリルを検出するステップ、
を含み、 DQA1 *0101ァリル及び DRB3 *0701ァリルの存在は、該被験ゥシがゥシ 白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すもので ある、上記方法。
[11] ステップ (b)及び (c)が、ポリメラーゼ連鎖反応一塩基配列に基づくタイピング法 (PC
R- SBT)により行われる、請求項 10記載の方法。
[12] 被験ゥシにお!/ヽて、ゥシ主要組織適合抗原 DR分子 13鎖をコードする DRB3遺伝子 における配列番号 14に示される塩基配列を有する DRB3*0701ァリルを検出するこ と；ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA1遺伝子における配列番 号 1に示される塩基配列を有する DQA1 *0101ァリルを検出すること；ゥシ主要組織 適合抗原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA2遺伝子における配列番号 22に示される 塩基配列を有する DQA2* 22031ァリルを検出すること;及びゥシ主要組織適合抗 原 DQ分子 oc鎖をコードする DQA3遺伝子の存在を検出することを含む、被験ゥシ におけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定する 方法。
[13] 被験ゥシにおけるゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を 判定する方法であって、
(a)被験ゥシからゲノム DN A又は mRNAを調製するステップ、
(b)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコード する DRB3遺伝子の DRB3 *0701ァリルを検出するステップ、
(c)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァリルを検出するステップ、
(d)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA2遺伝子の DQA2* 22031ァリルを検出するステップ、
(e)ゲノム DNA又は mRNAにおけるゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコード する DQA3遺伝子の存在を検出するステップ、
を含み、 DRB3 *0701ァリル、 DQA1 *0101ァリル及び DQA2* 22031ァリルが存 在し、 DQA3遺伝子が存在しないハプロタイプの存在は、該被験ゥシがゥシ白血病 ウィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有することを示すものである、 上記方法。
[14] 請求項 1〜13のいずれか 1項に記載の方法を用いてゥシ白血病発症に対する抵抗 性を有すると判定されたゥシを用いてゥシを作出することを特徴とする、ゥシ白血病ゥ ィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を有するゥシの作出方法。
[15] ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 a鎖をコードする DQA1遺伝子の DQA1 * 0101ァ リルを検出する手段を含むことを特徴とする、ゥシ白血病ウィルス感染によるゥシ白血 病発症に対する抵抗性を判定するためのキット。
ゥシ主要組織適合抗原 DQ分子 α鎖をコードする DQA1遺伝子の DQA1*0101ァ リルを検出する手段、及びゥシ主要組織適合抗原 DR分子 β鎖をコードする DRB3 遺伝子の DRB3*0701ァリルを検出する手段を含むことを特徴とする、ゥシ白血病ゥ ィルス感染によるゥシ白血病発症に対する抵抗性を判定するためのキット。
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