WO2005062056A1 - リポアラビノマンナンの測定方法とその応用 - Google Patents

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WO2005062056A1
WO2005062056A1 PCT/JP2004/019206 JP2004019206W WO2005062056A1 WO 2005062056 A1 WO2005062056 A1 WO 2005062056A1 JP 2004019206 W JP2004019206 W JP 2004019206W WO 2005062056 A1 WO2005062056 A1 WO 2005062056A1
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lam
limulus reagent
present
kit
measurement
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PCT/JP2004/019206
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Inventor
Shigenori Tanaka
Shoji Takahashi
Original Assignee
Seikagaku Corporation
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    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/579Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving limulus lysate
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    • G01N2400/10Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • G01N2400/50Lipopolysaccharides; LPS

Definitions

  • the present invention provides a method for measuring lipoarabinomannan, a kit used therefor, a method for removing the reactivity of lipoarabinomannan to a limulus reagent, an endotoxin to which the method is applied, and
  • Limulus reagent (also referred to as lysate reagent) is a reagent containing horseshoe germ amebosite lysate as a main component, and includes endotoxin (hereinafter abbreviated as Et) and (1 ⁇ 3). ) — J8-Used for the detection and measurement of glucans (hereinafter abbreviated as BG). Et and BG have reactivity to the Limulus reagent, and when these substances come into contact with the Limulus reagent, a cascade reaction involving various factors in the Limulus reagent (hereinafter, referred to as a Limulus reaction) is initiated. These substances can be detected and measured by detecting the reaction.
  • LAM lipoarabinomannan
  • Patent Literature 1 discloses a Limulus reaction-active substance physically different from Et or BG, a method for inactivating the substance, a method for measuring the same, and the like. However, this substance is completely different from LAM as described below, and there is no disclosure or suggestion that LAM is reactive with Limulus reagent.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Application Laid-Open No. 10-185924
  • the present invention relates to a method for measuring LAM, a kit used therefor, a method for removing the reactivity of LAM to a Limulus reagent, a method for measuring Et and BG using the same, a kit used therefor, a binding agent for LAM, and the like.
  • the purpose is to provide. Means for solving the problem
  • the present invention provides a method for measuring LAM in a sample (hereinafter, referred to as the LAM measurement method of the present invention), which comprises at least a step of bringing a Limulus reagent into contact with a “sample containing LAM”. .
  • the method further comprises the step of heating the “sample containing LAM” before contacting with the Limulus reagent.
  • the Limulus reagent is preferably an Et-specific Limulus reagent.
  • the present invention also provides a method for detecting acid-fast bacilli (hereinafter, referred to as the method for detecting acid-fast bacterium), characterized by using the LAM measurement method of the present invention.
  • Mycobacteria to be detected are preferably Mycobacterium tuberculosis.
  • the present invention also provides a LAM measurement kit containing the Limulus reagent as a component (hereinafter, referred to as the LAM measurement kit of the present invention).
  • the Limulus reagent is preferably an Et-specific Limulus reagent.
  • the present invention also provides an acid-fast bacterium detection kit (hereinafter referred to as the present invention acid-fast bacterium detection kit) comprising the LAM measurement kit of the present invention.
  • Mycobacteria to be detected are preferably Mycobacterium tuberculosis.
  • the present invention includes the step of coexisting at least one or more substances selected from the following group in the ⁇ sample containing LAM ''.
  • a method for removing the reactivity of LAM in a sample with a Limulus reagent hereinafter, referred to as the reactive removal method of the present invention).
  • Surfactants anti-tuberculosis antibodies, anti-LAM antibodies, BG, carboxymethylated BG, factor G activation inhibitors, strong alkaline substances, polymyxin B, colistin, concanapalin A, histidine, histamine.
  • the present invention also provides a method for measuring Et using a Limulus reagent, which comprises at least a step of removing the reactivity of LAM to a Limulus reagent by the method for removing reactivity of the present invention.
  • a method for measuring Et in “M-containing sample” (hereinafter referred to as the Et measuring method of the present invention).
  • the Limulus reagent is an Et-specific Limulus reagent.
  • the present invention also provides a method for detecting an Et-related disease, which comprises using the Et measurement method of the present invention (hereinafter, referred to as an Et-related disease detecting method of the present invention).
  • the present invention also provides an Et measurement kit (hereinafter, referred to as the Et measurement kit of the present invention), which contains a Limulus reagent and one or more substances selected from the following group as constituent components.
  • the Limulus reagent is an Et-specific Limulus reagent.
  • the present invention also provides an Et-related disease detection kit (hereinafter, referred to as the present Et-related disease detection kit) comprising the Et measurement kit of the present invention.
  • an Et-related disease detection kit hereinafter, referred to as the present Et-related disease detection kit
  • the present invention provides a method for measuring BG using a Limulus reagent, the method comprising at least a step of removing the reactivity of LAM to a Limulus reagent by the reactive removal method of the present invention.
  • a measuring method hereinafter, referred to as a BG measuring method of the present invention.
  • the Limulus reagent is a BG-specific Limulus reagent.
  • the present invention also provides a method for detecting mycosis, which comprises using the BG measurement method of the present invention.
  • the present invention also provides a BG measurement kit (hereinafter, referred to as the BG measurement kit of the present invention), which comprises a Limulus reagent and one or more substances selected from the following group as constituent components.
  • a BG measurement kit hereinafter, referred to as the BG measurement kit of the present invention
  • Surfactants anti-tuberculosis antibodies, anti-LAM antibodies, strongly alkaline substances, polymyxin B, colistin, concanavalin eight, histidine, histamine.
  • the present invention also provides a mycosis detection kit comprising the BG measurement kit of the present invention (hereinafter referred to as the mycosis detection kit of the present invention).
  • the present invention further provides a binder for LAM (hereinafter, referred to as a binder of the present invention), which comprises one or more substances selected from the following group strengths as active ingredients.
  • a binder for LAM hereinafter, referred to as a binder of the present invention
  • Anti-tuberculosis antibody anti-LAM antibody, (1 ⁇ 3) -j8-glucan, carboxymethylated (1 ⁇ 3) -j8-glucan, factor G activation inhibitor, polymyxin B, colistin, concanavalin k histidine, histamine.
  • the LAM measurement method of the present invention, the acid-fast bacterium detection method of the present invention, the LAM measurement kit of the present invention, and the acid-fast bacterium detection kit of the present invention can be used to detect LAM and acid-fast bacilli simply, quickly and inexpensively. Can be very useful.
  • the reactive removal method of the present invention can remove the effect of LAM on the Limulus reaction simply, quickly and inexpensively, and is extremely useful.
  • the Et measuring method of the present invention, the Et-related disease detecting method of the present invention, the Et measuring kit of the present invention, and the Et-related disease detecting kit of the present invention detect Et and Et-related diseases specifically, simply, quickly, and inexpensively. Can be very useful.
  • the BG measurement method of the present invention, the mycosis detection method of the present invention, the BG measurement kit of the present invention, and the mycosis detection kit of the present invention measure BG and mycosis specifically, simply, quickly, and inexpensively. Can be very useful.
  • the binder of the present invention can be used for detection and measurement of LAM and removal of LAM, and is extremely useful.
  • the LAM measurement method of the present invention is a method for measuring LAM in a sample, the method including at least a step of contacting a Limulus reagent with a “sample containing LAM”.
  • the "Limulus reagent” is not particularly limited as long as it is a reagent containing horseshoe Cred lysate as a main component.
  • the two types of helmets are also not limited, including Limulus 'Polyphemus (North American-made Butuga), Takipleus' Tridentatas, Takipleus. Slow amebosite lysates can also be used. Amebosite 'lysate can be produced by a known method. Alternatively, a commercially available Limulus reagent may be used.
  • This Limulus reagent is a Limulus reagent prepared so as not to react with BG (hereinafter referred to as "Et-specific Limulus reagent"), and a rim that reacts with Et and BG.
  • the reagent may be a Luz reagent, but is preferably an “Et-specific Limulus reagent”.
  • This Et-specific Limulus reagent can be produced by a known method, and commercially available reagents can be used. Talk about doing things.
  • sample containing LAM is not particularly limited as long as it is a sample containing LAM or suspected of containing LAM! Since LAM is a cell wall component peculiar to acid-fast bacterium, for example, it may contain or contain live cell-killed bacterium of acid-fast bacterium (for example, tuberculosis bacterium) itself, its cell wall and cell wall component. Examples include suspected samples. Examples of such a sample include a tuberculosis vaccine.
  • sample containing LAM a “sample derived from a living body” can also be used.
  • the “sample derived from a living body” is not particularly limited, but is preferably a body fluid.
  • the body fluid is not particularly limited as long as it is a body fluid containing LAM!
  • blood used herein as a concept including serum and plasma
  • urine sweat, saliva, tears, synovial fluid, sputum, milk, cerebrospinal fluid, and the like can be exemplified. Of these, blood is preferred.
  • a factor that interferes with the Limulus reaction in blood can be determined by a known method (for example, Japanese Patent Application Laid-Open No. 58-85162, etc.). It is preferable to remove or inactivate in advance by the method described in (1).
  • the method of “contacting” the Limulus reagent with the sample is not limited as long as the factor in the Limulus reagent contacts the LAM molecule in the sample.
  • the Limulus reagent may be added to the sample, or both may be added simultaneously.
  • the LAM measurement method of the present invention may include other steps as long as the method includes a step of bringing a Limulus reagent into contact with a "sample containing LAM".
  • the method further includes a step of heating the “sample containing LAM” before contact with the Limulus reagent.
  • heating means that heat is heated to a room temperature.
  • the temperature after heating is not particularly limited, but it is preferable to heat to 37 to 121 ° C, preferably 60 to 100 ° C, especially 95 ° C.
  • the time for maintaining the heated state is not particularly limited, but it is preferable to maintain the heated state for 5 to 60 minutes, preferably 10 to 30 minutes, and especially about 20 minutes.
  • LAM in the sample can be measured.
  • Detection and measurement of the Limulus reaction can be performed by a known method.
  • known methods such as a colorimetric method (endpoint attraction force assay), a geli-dori method, and a turbidimetric method (endpoint attraction force assay) can be used to perform the detection according to each method.
  • Knowledge and measurement methods can be adopted.
  • measurement is a concept that includes not only quantitative measurement but also qualitative measurement (such as measurement of the presence or absence of LAM).
  • LAM For the quantitative measurement of LAM, various methods can be adopted depending on the purpose. For example, using a sample whose LAM concentration is known, a calibration curve and a relational expression are prepared for the relationship between the LAM concentration and the intensity of the Limulus reaction, and strict quantification can be performed by using this. If strict quantification is not required, two or more samples may be compared for the amount of LAM between the samples! / ,. Since LAM induces a Limulus reaction, the higher the intensity of the Limulus reaction, the greater the amount of LAM in the sample.
  • the acid-fast bacterium detection method of the present invention is a method for detecting acid-fast bacterium, characterized by using the LAM measurement method of the present invention.
  • the acid-fast bacterium detection method of the present invention is a direct application of the LAM measurement method of the present invention to the detection of acid-fast bacilli. Since LAM is a cell wall component specific to acid-fast bacilli, acid-fast bacilli can be detected by measuring LAM.
  • the bacteria to be detected are not particularly limited as long as they are classified as acid-fast bacteria. Absent.
  • bacteria belonging to the genera Mycobacterium, Nocardia, Rhodococcus, Gordonia, and Corynebacterium are exemplified.
  • M. tuberculosis which belongs to the genus Mycobacterium is preferred.
  • the acid-fast bacterium to be detected may be a live cell or a dead cell!
  • detection of acid-fast bacterium means not only qualitative detection (detection of the presence or absence of acid-fast bacterium) but also quantitative detection (quantity of acid-fast bacterium). And the detection of malignancy of mycobacterial infection, etc.).
  • LAM which is a cell wall component specific to acid-fast bacteria, induces a Limulus reaction, so if a Limulus reaction is detected, acid-fast bacteria will be present in the sample.
  • the LAM measurement kit of the present invention is a LAM measurement kit containing a Limulus reagent as a component.
  • the description of the “Limulus reagent” is the same as in 1> above. That is, this Limulus reagent is also preferably an Et-specific Limulus reagent.
  • the LAM measurement kit of the present invention contains at least a "Limulus reagent" as a component, and may further contain other components as far as it is possible. Examples of such constituents include distilled water for blank test, a reaction reagent solution, a reaction buffer, and the like. Furthermore, the LAM measurement kit of the present invention can contain a positive control (QC control) for keeping the execution level between measurement batches at a constant level. [0042] These components can be stored and stored in separate containers. LAM measurement using the LAM measurement kit of the present invention can be performed according to the LAM measurement method of the present invention ⁇ 1>.
  • the mycobacterial detection kit of the present invention is a mycobacterial detection kit comprising the LAM measurement kit of the present invention.
  • the description of the LAM measurement kit of the present invention see 3> above.
  • the acid-fast bacterium to be detected by the acid-fast bacterium detection kit of the present invention is the same as that of the above-mentioned ⁇ 2>. That is, the acid-fast bacterium to be detected is preferably tuberculosis bacterium.
  • Detection of acid-fast bacteria using the acid-fast bacterium detection kit of the present invention can be performed according to the above-mentioned ⁇ 2> acid-fast bacterium detection method of the present invention.
  • the reactive removal method of the present invention comprises the step of coexisting one or more substances selected from the following groups in a ⁇ sample containing LAM '', wherein the reactivity of the LAM in the sample to a limulus reagent is determined. It is a method of removing.
  • Surfactant anti-tuberculosis antibody, anti-LAM antibody, BG, carboxymethylated BG, factor G activation inhibitor, strong alkaline substance, polymyxin B, colistin, concanapalin A
  • sample containing LAM and the “Limulus reagent” is the same as the above-described 1> LAM measurement method of the present invention.
  • the ⁇ surfactant '' that can be used here does not impair the reactivity of Et or BG to the Limulus reagent and has an inhibitory effect on various factors involved in the Limulus reaction present in the Limulus reagent. There is no particular limitation as long as it is a thing!
  • a deviation such as a cationic surfactant, an anionic surfactant, an amphoteric surfactant, a nonionic surfactant or a naturally derived surfactant may be used! / ⁇ .
  • nonionic surfactant having a small direct action on Et.
  • these surfactants may be used in appropriate combination.
  • polyoxyethylenes polyoxyethylene alkyl ether (general formula, CH (OCH CH)
  • CE polyoxyethylene alkyl phenyl ether
  • C ⁇ polyoxyethylene alkyl phenyl ether
  • Sorbitan (C sorbitan E) which are respectively Brij (CE), TergitoKC E), and Triton
  • X (C ⁇ ) and Tween (C sorbitan E) are commonly called (trade names), and are widely used for many purposes, such as the solubility of membrane proteins.
  • n an integer from 8 to 18 are preferred.
  • polyoxyethylenes examples include polyoxyethylene dodecyl ether, polyoxyethylene hexadecyl ether (also referred to as polyoxyethylene cetyl ether), polyoxyethylene isooctyl phenyl ether, polyoxyethylene Examples thereof include ethylene nonyl ether, polyoxyethylene fatty acid ester and polyoxyethylene sorbitol ester. Among these, polyoxyethylene hexadecyl ether is extremely preferred. These surfactants are preferably used as an aqueous solution and have a certain micelle size.
  • the solvent of the aqueous solution of these surfactants may be a buffer solution.
  • the buffer is preferably a buffer adjusted to about pH 7-9.
  • a good buffer eg, HEPES (N-2-hydroxyethylpiperazine N, -2-ethanesulfonic acid buffer)
  • Collamine chloride buffer BES buffer, MOPS buffer, TES buffer, HEPPS buffer (N-2-hydroxyethylpiperazine N, -3 propanesulfonic acid)
  • Tricine buffer glycinamide buffer, Bicine buffer, TAPS buffer, etc.
  • Tris-HCl buffer Tris-HCl buffer and the like.
  • the amount of surfactant coexisting in the "sample containing LAM” can be appropriately changed according to the type of surfactant and the like, and is not particularly limited.
  • the specific concentration of the surfactant is usually 0.001% to 0.8% (W / V), preferably 0.003%, as the final concentration when the sample is brought into contact with the “sample containing LAM”. 0.5% (W / V), more preferably 0.005% —0.3
  • the "anti-tuberculosis antibody” that can be used herein is not particularly limited as long as it is an antibody that binds to LAM present on the cell wall of M. tuberculosis, such as M. tuberculosis and its cell wall components.
  • the antigen may be one produced by a known method or a commercially available one. Above all, antibodies that specifically bind to LAM present on the cell wall of M. tuberculosis are preferred.
  • anti-LAM antibody that can be used here is not particularly limited as long as it is an antibody that binds to LAM, and is produced by a known method using LAM as an antigen. It may be a commercially available product. Among them, antibodies that specifically bind to LAM are preferred.
  • These antibodies not only completely retain the molecular structure of the immunoglobulin, but also treat the Fab with a protease that does not degrade the antigen binding site (Fab) (eg, plasmin, pepsin, papain, etc.). It may be a fragment containing! Examples of the fragment containing Fab of the antibody include Fabc, (Fab '), and the like, in addition to Fab.
  • Fab antigen binding site
  • fragments containing these antibody Fabs and chimeric antibodies can be produced by genetic engineering. Fragments containing antibody Fabs and chimeric antibodies as described above are also included in the concept of “antibody” in the present specification.
  • the amounts of these antibodies coexisting in the "sample containing LAM" can be appropriately changed depending on the type of the antibodies and the like, and are not particularly limited.
  • BG The “BG” that can be used here is not particularly limited, but examples include Pakiman, curdlan, CSBG (BG derived from Candida albicans cells), and the like. Of these, Pakiman is preferred. BG is not limited to one containing only ⁇ -1,3 bonds, but may be branched by ⁇ -1,6 bonds. [0057] BG may be a derivative in which a functional group or the like is modified. An example of such a derivative is carboxymethylated BG. Of these, carboxymethylcadran is preferred.
  • BG and its derivatives coexisting in the "sample containing LAM" can be appropriately changed according to their types, molecular sizes, and the like, and are not particularly limited.
  • the ⁇ Factor G activity inhibitor '' that can be used here is not particularly limited as long as it is a substance having an action of inhibiting the activity of Factor G present in the Limulus reagent.
  • polydarcoside described in International Publication WO90Z02951 pamphlet and the like are exemplified.
  • the amount of the “Factor G activity inhibitor” coexisting in the “LAM-containing sample” can be appropriately changed according to the type of the “Factor G activity inhibitor”, and is not particularly limited.
  • the “strongly alkaline substance” that can be used here is not particularly limited, but is preferably an alkali metal hydroxide.
  • alkali metal hydroxide include sodium hydroxide and potassium hydroxide.
  • polymyxin B "colistin”, “concanapalin A”, “histidine”, “histamine” which can be used here, and those commercially available can also be used.
  • the method of allowing these substances to coexist in the "sample containing LAM” is usually achieved by thoroughly mixing the “sample containing LAM” and these substances.
  • mixing and reacting the “sample containing LAM” with the addition of these substances in a Limulus reagent is more desirable to mix the sample with the “LAM-containing sample” before contacting the Limulus reagent with the “LAM-containing sample” before contacting the Limulus reagent with the “LAM-containing sample”.
  • the reactivity of LAM to the Limulus reagent in the "sample containing LAM" can be specifically removed.
  • Et measurement method of the present invention is a method for measuring Et using a Limulus reagent, which comprises at least a step of removing the reactivity of LAM to the Limulus reagent by the reactive removal method of the present invention. This is a method for measuring Et.
  • this Limulus reagent is also preferably an Et-specific Limulus reagent.
  • the Et measuring method of the present invention differs from the Et measuring method using a Limulus reagent in that it includes a step of removing the reactivity of LAM to the Limulus reagent by the reactive removing method of the present invention. May be included.
  • the timing of removing the reactivity of LAM to the Limulus reagent by the reactive removal method of the present invention is not particularly limited. However, before the Limulus reagent is brought into contact with the "sample containing LAM", It is preferable to provide a step of removing the reactivity of LAM in the sample with the Limulus reagent by the reactive removal method of the present invention.
  • the Et in the sample can be removed without being affected by the LAM. Can be measured.
  • Detection and measurement of the Limulus reaction caused by Et can be performed by a known method.
  • a known method such as a colorimetric method (endpoint attraction force assay), a geli dani method, a turbidimetric method (endpoint attraction force assay), and the like, may be used. Appropriate detection ⁇ Measurement methods can be adopted.
  • measurement in the present specification is a concept that includes not only quantitative measurement but also qualitative measurement (such as measurement of the presence or absence of Et).
  • the amount of Et between two or more samples may be compared. Since Et induces the Limulus reaction, the higher the intensity of the Limulus reaction, the greater the amount of Et in the sample.
  • the method for detecting Et-related disease of the present invention is a method for detecting Et-related disease, characterized by using the Et measuring method of the present invention.
  • the Et-related disease detection method of the present invention is obtained by directly applying the Et-measuring method of the present invention to the detection of Et-related disease.
  • the above ⁇ 6> was referred to.
  • a sample derived from a living body containing Et or suspected of containing Et is used as the “sample containing LAM” in the Et measuring method of the present invention.
  • the Et-related disease to be detected is not particularly limited as long as it is a disease caused based on Et.
  • Etemia and Gram-negative bacterial infections are exemplified.
  • sample derived from a living body is not particularly limited, but is preferably a body fluid.
  • Body fluid is not particularly limited, but is preferably a body fluid.
  • blood used herein as a concept including serum and plasma
  • urine sweat, saliva, tears, synovial fluid, sputum, milk, cerebrospinal fluid and the like can be exemplified. Of these, blood is preferred.
  • the limulus reaction interfering factor (serine protease, serine protease inhibitor, etc.) in the blood can be determined by a known method (eg, Japanese Patent Application Laid-Open No. 58-85162, etc.). It is preferable to remove or inactivate in advance by the method described in (1).
  • an Et-related disease By using the Et measurement method of the present invention for such a sample, an Et-related disease can be detected.
  • the term ⁇ detection '' as used herein is a concept that includes not only qualitative detection (detection of the presence or absence of Et-related disease) but also quantitative detection (detection of the malignancy of Et-related disease, etc.) It is.
  • a calibration curve and a relational expression are prepared for the relationship between the Et amount and the strength of the Limulus reaction using a sample with a known Et amount, and strict quantification can be performed by using this. If strict quantification is not required, the amount of Et between two or more samples may be compared. Since Et induces a Limulus reaction, the higher the strength of the Limulus reaction, the higher the amount of Et in the sample, and in response to this, it should be correlated with the high or suspected Et-related disease malignancy. Can be.
  • the Et measuring kit of the present invention is an Et measuring kit containing, as constituents, a Limulus reagent and one or more substances selected from the group consisting of:
  • the “Limulus reagent” and the description of each of the above substances are the same as in ⁇ 1> and ⁇ 5> above. That is, the Limulus reagent used here is also preferably an Et-specific Limulus reagent.
  • the Et measurement kit of the present invention may further contain other components as long as it contains at least the "Limulus reagent" as a component. Examples of such constituents include distilled water for blank test, a reaction reagent solution, a reaction buffer, and the like. Further, the Et measurement kit of the present invention can contain a positive control (QC control) or the like for maintaining the execution level between the measurement batches at a constant level.
  • QC control positive control
  • the measurement of Et using the Et measurement kit of the present invention follows the Et measurement method of the present invention described in 6> above. Can be done.
  • the Et-related disease detection kit of the present invention is an Et-related disease detection kit comprising the Et measurement kit of the present invention.
  • the Et measurement kit of the present invention see 8> above.
  • the description of the Et-related disease to be detected by the Et-related disease detection kit of the present invention and the description of the "biologically-derived sample” to be used and the like are the same as those described in the above ⁇ 7>.
  • examples of the Et-related disease to be detected include Etemia and Gram-negative bacterial infection
  • the “biologically-derived sample” used is preferably blood.
  • the Limulus reaction-interfering factor serine protease inhibitor, etc.
  • the detection of an Et-related disease using the Et-related disease detection kit of the present invention can be performed according to the above-described ⁇ 7> Et-related disease detection method of the present invention.
  • the BG measurement method of the present invention is a method for measuring BG using a Limulus reagent, which comprises at least a step of removing the reactivity of LAM to the Limulus reagent by the reactive removal method of the present invention. This is a method of measuring BG.
  • the BG measurement method of the present invention includes the other steps in the method of measuring BG using a Limulus reagent, as long as the method includes the step of removing the reactivity of LAM to the Limulus reagent by the method of removing reactivity of the present invention. May be included.
  • the LAM Limulus reagent in the “sample containing LAM” BG in the sample can be measured without being affected by LAM.
  • the mycosis detection method of the present invention is a mycosis detection method using the BG measurement method of the present invention.
  • the mycosis detection method of the present invention is a direct application of the BG measurement method of the present invention to detection of mycosis.
  • BG measurement method of the present invention see ⁇ 10> above.
  • a sample derived from a living body containing BG or suspected of containing BG is used as the “sample containing LAM” in the BG measurement method of the present invention.
  • Mycosis to be detected is not particularly limited as long as it is a disease classified into the mycosis category.
  • mycosis category For example, deep fungal infections and the like are exemplified.
  • the description of the “biologically-derived sample” is the same as in the above-mentioned ⁇ 7>, the method for detecting an Et-related disease of the present invention.
  • the limulus reaction-inhibiting factor serine protease, serine protease inhibitor, etc.
  • the limulus reaction-inhibiting factor in the blood can be determined by a known method (for example, a method described in JP-A-58-85162). ) Is preferable to remove or inactivate in advance! /, And the point is also the same as the above ⁇ 7>.
  • mycoses can be detected by using the BG measurement method of the present invention.
  • the BG measurement kit of the present invention is a BG measurement kit comprising, as constituents, a Limulus reagent and one or more substances selected from the group consisting of the following.
  • Surfactants anti-tuberculosis antibodies, anti-LAM antibodies, strongly alkaline substances, polymyxin B, colistin, concanavalin VIII, histidine, histamine.
  • Limulus reagent same as ⁇ 1> and ⁇ 5> It is.
  • the Limulus reagent used here is preferably a BG-specific Limulus reagent.
  • the BG measurement kit of the present invention may further contain other components as long as it contains at least the "Limulus reagent" as a component. Explanation of such constituents
  • the measurement of BG using the BG measurement kit of the present invention can be performed according to the BG measurement method of the present invention ⁇ 10>.
  • the mycosis detection kit of the present invention is a mycosis detection kit comprising the BG measurement kit of the present invention.
  • the description of the BG measurement kit of the present invention see 12> above.
  • the mycosis to be detected is exemplified by a deep fungal infection
  • the "biologically-derived sample” used is preferably blood.
  • blood when blood is used as a “biologically-derived sample”, it is preferable to remove or inactivate limulus reaction-interfering factors (serine protease, serine protease inhibitor, etc.) in the blood in advance. It is the same as 11>.
  • Detection of mycosis using the mycosis detection kit of the present invention can be performed according to the mycosis detection method of the present invention described in ⁇ 11> above.
  • an active ingredient comprising one or more substances selected from the group consisting of:
  • a binder for M (hereinafter, referred to as a binder of the present invention) is provided.
  • the binder of the present invention may contain other substances as long as it contains at least one of the above substance groups as an active ingredient.
  • other substance refers to the compound of the present invention. There is no particular limitation as long as it does not substantially impair the binding activity of the substance that is the active ingredient of the agent to LAM.
  • other substances include, for example, active ingredient substances in the present binding agent among excipients, buffers, stabilizers, preservatives, etc. used in the preparation of ordinary drugs or reagents. Does not substantially impair the binding action to LAM! /.
  • the term "binder for LAM” is used to mean an agent used for binding an active ingredient substance in the agent to LAM. And since the active ingredient substance binds to LAM, the binder of the present invention can be used for, for example, detection and measurement of LAM and removal of LAM.
  • the binder of the present invention is brought into contact with LAM (the molecule of the active ingredient substance in the binder of the present invention is brought into contact with the LAM molecule), and then the active ingredient substance bound to LAM is directly or eluted.
  • the active substance in the binding agent of the present invention is a substance that can be detected as any special signal (for example, an enzyme, a radioisotope, a fluorescent dye, a chemiluminescent substance, a hapten, a metal particle, a specific binding pair, etc.). It is marked with, you can!
  • the method for labeling and the method for detection and measurement thereof are not particularly limited, and a known method can be used.
  • the binder of the present invention is fixed to an insoluble carrier (the molecules of the active ingredient substance in the binder of the present invention are immobilized on the insoluble carrier), and this is brought into contact with a solution containing LAM.
  • the LAM in the solution can be removed by binding the LAM to the active ingredient substance molecule immobilized by the method and then separating the carrier to which the active ingredient substance is fixed from the solution.
  • the carrier for fixing the active ingredient substance in the binder of the present invention and the fixing method are not particularly limited, and known methods can be used.
  • the present invention provides a method for detecting and measuring LAM characterized by using one or more substances which also have the following group power, and comprising one or more substances which are the following group powers.
  • a kit for measuring LAM containing as a component, a method for removing LAM comprising using a carrier to which one or more substances selected from the following group strengths are fixed, and one or more selected from the following groups It also includes the concept of a LAM remover (adsorption remover) containing a carrier to which the above substance is fixed.
  • Anti-tuberculosis antibody anti-LAM antibody, (1 ⁇ 3) ⁇ -glucan, carboxymethylated (1 ⁇ 3) j8-glucan, factor G activation inhibitor, polymyxin B, colistin, concanavalin k histidine, histamine.
  • a method for measuring the Et activity (concentration) of a sample containing LAM without being affected by the coexisting LAM A method of contacting with at least one substance selected from an antibody and an anti-LAM antibody and measuring with an Et-specific Limulus reagent.
  • a method for measuring Et activity (concentration) in a sample containing LAM without being affected by coexisting LAM and BG A method in which a Limulus reagent that reacts with both Et and BG is measured after contact with a factor activity inhibitor.
  • a method for measuring the Et activity (concentration) in a sample containing LAM without being affected by the coexisting LAM and BG A method of contacting with a dani inhibitor and then measuring with a Limulus reagent that reacts with both Et and BG.
  • a method for measuring LAM activity (concentration) in a sample containing LAM without being affected by coexisting Et and BG A method in which heating is performed in the presence of one dran, and then measurement is performed using a Limulus reagent that reacts with both Et and BG.
  • Plasma or serum is used as the “sample containing LAM” in (13) and (14) above.
  • a method to detect L. tuberculosis infection by measuring LAM activity (concentration) in blood by using it.
  • Plasma or serum was previously treated with a surfactant, ⁇ at least one substance which is also selected from anti-tuberculosis, anti-tuberculosis antibody and anti-LAM antibody activity '' and ⁇ Factor G activity inhibitor, curdlan and carboxy. Diluted with an aqueous solution containing at least one substance selected from methylcurdlanka, heated, and then measured with a Limulus reagent that reacts with both Et and BG to determine the coexistence of LAM and BG. Measure Et activity (concentration) in blood without being affected
  • Etemia or a method for detecting Gram-negative bacterial infection.
  • Plasma or serum is diluted with an aqueous solution containing a surfactant and ⁇ at least one substance selected from pachyman, an anti-tuberculosis killed cell antibody and an anti-LAM antibody '' in advance, and heated, and then Et-specific.
  • a surfactant ⁇ at least one substance selected from pachyman, an anti-tuberculosis killed cell antibody and an anti-LAM antibody '' in advance
  • a method for detecting Etemia or gram-negative bacterial infection by measuring blood Et activity (concentration) without being affected by coexisting LAM and BG, by measuring with a selective Limulus reagent.
  • Plasma or serum is heated in advance in the presence of polymyxin B, and then measured with a Limulus reagent that reacts with both Et and BG, so that it is not affected by coexisting LAM and Et.
  • the LAM used in this example was isolated and purified to high purity from dead cells of Mycobacterium tuberculosis (Aoyama B strain; Mycobacterium tuberculosis Aoyama-B) by organic solvent extraction and column chromatography. Light Tester Co., Ltd.).
  • Example 1 [0102] This LAM was dissolved in distilled water (Et and BG-free) to a concentration of 200ngZmL to prepare a sample containing LAM. After performing the following various treatments on this sample, 25 L of the sample was placed in an Et- and BG-free microtiter plate (Toxipet plate 96F, sold by Seikagaku Corporation) and an Et-specific Limulus reagent (trade name Endo) Spec ES test MK, mixed with 100 L of Seikagaku Corporation, and measured at 37 ° C for 30 minutes in a microplate reader (Slider SK603, sold by Seikagaku Corporation).
  • Et- and BG-free microtiter plate Teoxipet plate 96F, sold by Seikagaku Corporation
  • Et-specific Limulus reagent trade name Endo
  • Spec ES test MK mixed with 100 L of Seikagaku Corporation, and measured at 37 ° C for 30 minutes in a microplate reader (Slider SK603, sold by Seikag
  • the Limulus reagent used here has been treated so that only the factor C can be activated by losing the reactivity of the factor G (it is treated so as to react only with Et). Therefore, if a Limulus reaction is detected here, it means that factor C has been activated (the added sample has factor C activation activity).
  • Acid heat treatment Equivalent amount of HC1 aqueous solution was added to the LAM-containing sample to give a final concentration of 0.2 M, mixed, and incubated at 37 ° C for 60 minutes.
  • Detergent treatment (LAM-containing samples are treated with various nonionic detergents (Brij 56 Triton-N-101 Triton so that the final concentration is 0.005 to 0.5%).
  • Triton X-114 or Tergitol NP-9) was added to an equal amount of kagami and mixed.
  • LAM-containing sample is treated with Et-specific Limulus reagent (trade name: EndSpec ES Test MK, sold by Seikagaku Corporation))
  • Et-specific Limulus reagent trade name: EndSpec ES Test MK, sold by Seikagaku Corporation
  • mouse anti-factor C monoclonal antibody (2C12; ascites ) In one vial, mouse anti-factor C monoclonal antibody (2C12; ascites )), And added a 20-fold diluted solution of 140 / z1 ”to perform a limnores reaction.
  • Boiling treatment 44.4% Surfactant treatment 0%
  • the blood cell (amebosite) power of horseshoe-tooth (Takipleus tridentatus) is also measured according to the method described in Reference Example 3 of WO90 Z02951 pamphlet.
  • a freeze-dried product containing Gly-Arg-pNA A freeze-dried product containing Gly-Arg-pNA).
  • Tris-HCl buffer pH 8.0. Used for dissolution and reaction of Limulus reagent.
  • Lyophilized product containing LAM Lyophilized product containing LAM.
  • the sample is heated in advance by the method described in "1> LAM measurement method of the present invention” and then subjected to a Limulus reaction using the kit, whereby LAM (acid-fast bacterium) in the sample is removed. Measurements can be detected without being affected by Et.
  • Tris-HCl buffer pH 8.0. Used for dissolution and reaction of Limulus reagent.
  • Escherichia coli 0111 Lyophilized product containing Et derived from B4 strain.
  • Second liquid 0.2% Triton X-100, 0.14% ethyleneimine polymer, 0.02 mol / L Ca C1, 0.06 mono-ZL bicine
  • This pretreatment liquid is used to inactivate the Limulus reaction-inhibiting factor therein when plasma or serum is used as a sample. Immediately before use, mix liquid 1 and liquid 2.
  • Surfactants are used to remove the Limulus reagent reactivity of LAM. That is, a sample (a blood sample treated with a blood pretreatment solution in the case of a blood sample) is preliminarily treated with this surfactant and then subjected to a Limulus reaction, whereby Et (Et-related disease) is reduced by LAM. The measurement can be detected without being affected by the noise.
  • the LAM measurement method of the present invention, the acid-fast bacterium detection method of the present invention, the LAM measurement kit of the present invention, and the acid-fast bacterium detection kit of the present invention can be used for measuring and detecting LAM and acid-fast bacilli.
  • the reactive removal method of the present invention can be used for removing the influence of LAM on the Limulus reaction.
  • the Et measuring method of the present invention can be used for measuring and detecting Et and Et-related diseases. .
  • the BG measurement method of the present invention, the mycosis detection method of the present invention, the BG measurement kit of the present invention, and the mycosis detection kit of the present invention can be used for measurement and detection of BG and mycosis.
  • the binder of the present invention can be used for detection and measurement of LAM, a kit used therefor, a method of removing LAM, a remover of LAM (adsorption remover), and the like.

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Abstract

 リムルス試薬とLAM含有試料との接触工程を少なくとも含むLAMの測定法と抗酸菌の検知法、LAM含有試料に所定の物質を共存させる工程を少なくとも含むLAMのリムルス試薬に対する反応性除去法、リムルス試薬を用いるEtの測定法においてLAMのリムルス試薬に対する反応性を前記の除去法で除去する工程を少なくとも含むLAM含有試料中のEtの測定法とEt関連疾患の検知法、リムルス試薬を用いるBGの測定法においてLAMのリムルス試薬に対する反応性を前記の除去法で除去する工程を少なくとも含むLAM含有試料中のBGの測定法と真菌症の検知法等。

Description

明 細 書
リポアラビノマンナンの測定方法とその応用
技術分野
[0001] 本発明は、リポアラビノマンナンの測定方法、これに用いるキット、リポアラビノマン ナンのリムルス試薬に対する反応性の除去方法、これを応用したエンドトキシン及び (
1→3)— 18—グルカンの測定方法、これらに用いるキット及びリポアラビノマンナンに 対する結合剤等に関する。
背景技術
[0002] リムルス試薬 (ライセート試薬とも呼ばれて 、る。)は、カブトガ二のァメボサイト ·ライ セートを主成分とする試薬であって、エンドトキシン (以下、 Etと略記する。)や(1→3 )— j8 -グルカン(以下、 BGと略記する。)の検知 ·測定に用いられている。 Etや BGは リムルス試薬に対する反応性を有しており、リムルス試薬とこれらの物質が接触すると 、リムルス試薬中の種々の因子が関与するカスケード反応(以下、リムルス反応という 。)が惹起され、この反応を検知することでこれらの物質を検知 ·測定することができる
[0003] 一方、リポアラビノマンナン (以下、 LAMと略記する。 )は、抗酸菌(例えば、結核菌 等)に特有の細胞壁成分であることが知られている。
特許文献 1には、 Etや BGとは物質的に異なるリムルス反応活性ィ匕物質、その不活 化方法、その測定方法等が開示されている。しかしこの物質は後述の通り LAMとは 全く異なるものであり、 LAMがリムルス試薬に対して反応性を有することについての 開示や示唆はない。
特許文献 1:特開平 10- 185924号公報
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0004] 本発明は、 LAMの測定方法、これに用いるキット、 LAMのリムルス試薬に対する 反応性の除去方法、これを応用した Et及び BGの測定方法、これらに用いるキット、 L AMに対する結合剤等を提供することを目的とする。 課題を解決するための手段
[0005] 本発明者は上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、 LAMがリムルス 試薬に対する反応性を有することを初めて見出し、この知見に基づいて、 LAMの測 定方法、これに用いるキット、 LAMのリムルス試薬に対する反応性の除去方法、これ を応用した Et及び BGの測定方法並びにこれらに用いるキット等を提供するに至った
[0006] すなわち本発明は、リムルス試薬と「LAMを含有する試料」とを接触させる工程を 少なくとも含む、当該試料中の LAMの測定方法 (以下、本発明 LAM測定方法とい う。)を提供する。この方法は、リムルス試薬との接触前に、「LAMを含有する試料」を 加熱する工程をさらに含むことが好ましい。また、リムルス試薬は Et特異的リムルス試 薬であることが好ましい。
[0007] また本発明は、本発明 LAM測定方法を用いることを特徴とする、抗酸菌の検知方 法 (以下、本発明抗酸菌検知方法という。)を提供する。検知対象とする抗酸菌は、 結核菌が好ましい。
[0008] また本発明は、リムルス試薬を構成成分として含む、 LAMの測定キット(以下、本 発明 LAM測定キットという。)を提供する。リムルス試薬は、 Et特異的リムルス試薬で あることが好ましい。
[0009] また本発明は、本発明 LAM測定キットからなる、抗酸菌の検知キット(以下、本発 明抗酸菌検知キットという)を提供する。検知対象とする抗酸菌は、結核菌が好ましい また本発明は、「LAMを含有する試料」に、下記の群カゝら選ばれる 1又は 2以上の 物質を共存させる工程を少なくとも含む、当該試料中の LAMのリムルス試薬に対す る反応性を除去する方法 (以下、本発明反応性除去方法という。)を提供する。
[0010] 界面活性剤、抗結核抗体、抗 LAM抗体、 BG、カルボキシメチル化された BG、 G 因子活性化阻害剤、強アルカリ性物質、ポリミキシン B、コリスチン、コンカナパリン A 、ヒスチジン、ヒスタミン。
[0011] また本発明は、リムルス試薬を用いる Etの測定方法において、 LAMのリムルス試 薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去する工程を少なくとも含む、「LA Mを含有する試料」中の Etの測定方法 (以下、本発明 Et測定方法という。)を提供す る。リムルス試薬は、 Et特異的リムルス試薬であることが好ましい。
[0012] また本発明は、本発明 Et測定方法を用いることを特徴とする、 Et関連疾患の検知 方法 (以下、本発明 Et関連疾患検知方法という。)を提供する。
また本発明は、リムルス試薬と下記の群カゝら選ばれる 1又は 2以上の物質を構成成 分として含む、 Etの測定キット(以下、本発明 Et測定キットという。)を提供する。
[0013] 界面活性剤、抗結核抗体、抗 LAM抗体、 BG、カルボキシメチル化された BG、 G 因子活性化阻害剤、強アルカリ性物質。
リムルス試薬は、 Et特異的リムルス試薬であることが好まし 、。
[0014] また本発明は、本発明 Et測定キットからなる、 Et関連疾患の検知キット(以下、本発 明 Et関連疾患検知キットという。)を提供する。
また本発明は、リムルス試薬を用いる BGの測定方法において、 LAMのリムルス試 薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去する工程を少なくとも含む、「LA Mを含有する試料」中の BGの測定方法 (以下、本発明 BG測定方法という。)を提供 する。リムルス試薬は、 BG特異的リムルス試薬であることが好ましい。
[0015] また本発明は、本発明 BG測定方法を用いることを特徴とする、真菌症の検知方法
(以下、本発明真菌症検知方法という。)を提供する。
また本発明は、リムルス試薬と下記の群カゝら選ばれる 1又は 2以上の物質を構成成 分として含む、 BGの測定キット(以下、本発明 BG測定キットという。)を提供する。
[0016] 界面活性剤、抗結核抗体、抗 LAM抗体、強アルカリ性物質、ポリミキシン B、コリス チン、コンカナバリン八、ヒスチジン、ヒスタミン。
また本発明は、本発明 BG測定キットからなる、真菌症の検知キット(以下、本発明 真菌症検知キットという。)を提供する。
[0017] さらに本発明は、下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物質を有効成分とする、 LA Mに対する結合剤 (以下、本発明結合剤という。)を提供する。
抗結核抗体、抗 LAM抗体、(1→3)— j8—グルカン、カルボキシメチル化された(1 →3)— j8—グルカン、 G因子活性化阻害剤、ポリミキシン B、コリスチン、コンカナバリ ン k ヒスチジン、ヒスタミン。 発明の効果
[0018] 本発明 LAM測定方法、本発明抗酸菌検知方法、本発明 LAM測定キット及び本 発明抗酸菌検知キットは、 LAMや抗酸菌を簡便、迅速かつ安価に測定'検知するこ とができ、極めて有用である。
[0019] また、本発明反応性除去方法は、リムルス反応における LAMの影響を簡便、迅速 かつ安価に除去することができ、極めて有用である。
本発明 Et測定方法、本発明 Et関連疾患検知方法、本発明 Et測定キット及び本発 明 Et関連疾患検知キットは、 Etや Et関連疾患を特異的、かつ簡便、迅速、安価に 測定 '検知することができ、極めて有用である。
[0020] 本発明 BG測定方法、本発明真菌症検知方法、本発明 BG測定キット及び本発明 真菌症検知キットは、 BGや真菌症を特異的、かつ簡便、迅速、安価に測定 '検知す ることができ、極めて有用である。
[0021] 本発明結合剤は、 LAMの検知 ·測定や LAMの除去に用いることができ、極めて 有用である。
発明を実施するための最良の形態
[0022] < 1 >本発明 LAM測定方法
本発明 LAM測定方法は、リムルス試薬と「LAMを含有する試料」とを接触させる 工程を少なくとも含む、当該試料中の LAMの測定方法である。
[0023] 「リムルス試薬」は、カブトガ二のァメボサイト ·ライセートを主成分とする試薬である 限りにおいて特に限定されない。このカブトガ二の種類も限定されず、リムルス'ポリフ ェムス(北アメリカ産力ブトガ-)、タキプレウス'トリデンタツス、タキプレウス.ギガス、タ キプレウス ·口タンディ力ウダ(以上はアジア産の力ブトガ-)の 、ずれのァメボサイト · ライセートをも用いることができる。ァメボサイト'ライセートは、公知の方法で製造する ことができる。また、市販されているリムルス試薬を用いてもよい。
[0024] このリムルス試薬は、 BGに反応しないように調製されたリムルス試薬 (本明細書中 において、「Et特異的リムルス試薬」という。)であっても、 Etにも BGにも反応するリム ルス試薬であっても良いが、「Et特異的リムルス試薬」であることが好ましい。この Et 特異的リムルス試薬は公知の方法で製造することもでき、市販されて ヽるものを利用 することちでさる。
[0025] 「LAMを含有する試料」は、 LAMを含有し又は LAMを含有して!/、ることが疑われ る試料である限りにお 、て特に限定されな 、。 LAMは抗酸菌特有の細胞壁成分で あることから、例えば抗酸菌 (例えば結核菌等)の生菌ゃ死菌自体、その細胞壁、細 胞壁成分を含有し又は含有して ヽることが疑われる試料等が例示される。このような 試料としては、結核ワクチン等が例示される。
[0026] また「LAMを含有する試料」として「生体由来の試料」を用いることもできる。「生体 由来の試料」も特に限定されないが、体液であることが好ましい。体液は、 LAMが含 有されて!/、る又はその可能性がある体液である限りにお 、て特に限定されな 、。例 えば、血液 (本明細書では、血清や血漿をも含む概念として用いる。)、尿、汗、唾液 、涙液、関節液、喀痰、乳汁、髄液等を例示することができる。なかでも血液が好まし い。
[0027] なお、「生体由来の試料」として血液用いる場合は、血液中のリムルス反応妨害因 子(セリンプロテアーゼ、セリンプロテアーゼインヒビター等)を公知の方法 (例えば、 特開昭 58— 85162号公報等に記載の方法)で予め除去又は不活ィ匕しておくことが 好ましい。
[0028] また、リムルス試薬と試料との「接触」の方法も、リムルス試薬中の因子と試料中の L AM分子とが接触する限りにお 、て限定されず、リムルス試薬に試料を添加してもよ ぐ試料にリムルス試薬を添加してもよぐ両者を同時に添加してもよい。
[0029] 本発明 LAM測定方法は、リムルス試薬と「LAMを含有する試料」とを接触させる 工程を含む限りにおいて、他の工程を含んでいてもよい。例えば、リムルス試薬との 接触前に、「LAMを含有する試料」を加熱する工程をさらに含むことが好ましい。本 明細書において「加熱」とは、室温の状態のものに熱をカ卩えることを意味する。加熱 後の温度は特に限定されないが、 37— 121°C、好ましくは 60— 100°C、なかでも 95 °Cまで加熱することが好ま ヽ。加熱した状態を維持する時間も特に限定されな ヽが 、 5— 60分、好ましくは 10— 30分、なかでも 20分程度加熱状態を維持することが好 ましい。
[0030] リムルス試薬と試料とが接触することにより、試料中の LAMがリムルス試薬中の。因 子 (Etによって活性ィ匕される因子として知られている。)を活性ィ匕し、これによつてリム ルス反応が惹起されることとなる。
[0031] このリムルス反応を検知し測定することによって、試料中の LAMを測定することが できる。リムルス反応の検知 ·測定は、公知の方法で行うことができる。例えば、比色 法 (エンドポイントアツセィゃ力イネティックアツセィ)、ゲルイ匕法、比濁法 (エンドポイン トアツセィゃ力イネティックアツセィ)等の公知の方法で、それぞれの方法に応じた検 知 ·測定方法を採用することができる。
[0032] なお本明細書にぉ 、て「測定」とは、定量的な測定のみならず、定性的な測定 (LA Mの存否の測定等)をも含む概念である。
LAMの定量的な測定は、目的に応じて種々の方法を採用することができる。例え ば、 LAM濃度が既知の試料を用いて LAM濃度とリムルス反応の強度との関係につ いて検量線や関係式を作成しておき、これを用いることによって厳密な定量を行うこと ができる。また、厳密な定量が必要ない場合には、 2つ以上の試料についてその試 料間の LAM量の多少を比較してもよ!/、。 LAMはリムルス反応を惹起させることから 、リムルス反応の強度が高ければ、試料中の LAM量も多いこととなる。
[0033] LAMの定性的な測定は、リムルス反応の有無を検知することによって行うことがで きる。 LAMはリムルス反応を惹起させることから、リムルス反応が検知されれば、試料 中に LAMが存在することとなる。
< 2>本発明抗酸菌検知方法
本発明抗酸菌検知方法は、本発明 LAM測定方法を用いることを特徴とする、抗酸 菌の検知方法である。
[0034] 本発明抗酸菌検知方法は、本発明 LAM測定方法を、そのまま抗酸菌の検知に応 用したものである。 LAMは抗酸菌特有の細胞壁成分であることから、 LAMを測定す ることによって、抗酸菌の検知を行うことができる。
[0035] 本発明 LAM測定方法については上記 < 1 >を参照されたい。本発明抗酸菌検知 方法では、本発明 LAM測定方法における「LAMを含有する試料」として、抗酸菌を 含有し又は抗酸菌を含有して ヽることが疑われる試料を用いることとなる。
[0036] 検知対象とする菌は、抗酸菌として分類される菌である限りにおいて特に限定され ない。 ί列えば、 Mycobacterium属、 Nocardia属、 Rhodococcus属、 Gordonia属、 Corynebacterium属に属する細菌等が例示される。なかでも結核菌 (Mycobacterium 属に属する)が好ましい。
[0037] また、検知対象とする抗酸菌は、生菌であっても死菌であってもよ!/、。
このような試料について、本発明 LAM測定方法を用いることによって、抗酸菌の検 知をすることができる。
[0038] なお本明細書にぉ 、て、抗酸菌の「検知」とは、定性的な検知 (抗酸菌の存否の検 知)のみならず、定量的な検知 (抗酸菌の量の検知や、抗酸菌感染の悪性度の検知 等)をも含む概念である。
[0039] 抗酸菌の定性的な測定は、リムルス反応の有無を検知することによって行うことがで きる。抗酸菌特有の細胞壁成分である LAMはリムルス反応を惹起させることから、リ ムルス反応が検知されれば、試料中に抗酸菌が存在することとなる。
[0040] 抗酸菌の定量的な測定は、目的に応じて種々の方法を採用することができる。例え ば、抗酸菌量が既知の試料を用いて抗酸菌量とリムルス反応の強度との関係につい て検量線や関係式を作成しておき、これを用いることによって厳密な定量を行うことが できる。また、厳密な定量が必要ない場合には、 2つ以上の試料についてその試料 間の抗酸菌量の多少を比較してもよ 、。抗酸菌特有の細胞壁成分である LAMはリ ムルス反応を惹起させることから、リムルス反応の強度が高ければ、試料中の抗酸菌 量ち多 ヽこととなる。
< 3 >本発明 LAM測定キット
本発明 LAM測定キットは、リムルス試薬を構成成分として含む、 LAMの測定キット である。「リムルス試薬」の説明については、前記のく 1 >と同様である。すなわち、こ のリムルス試薬も Et特異的リムルス試薬であることが好ましい。
[0041] 本発明 LAM測定キットは、少なくとも「リムルス試薬」を構成成分として含んで 、る 限りにおいて、他の構成成分をさらに含んでいてもよい。このような構成成分としては 、例えばブランクテスト用蒸留水,反応試薬溶解液、反応用緩衝液等を挙げることが できる。さらに本発明 LAM測定キットには、測定バッチ同士の実施レベルを一定水 準に保っための陽性コントロール (QCコントロール)等を含有させることもできる。 [0042] これらの構成成分は、それぞれ別体の容器に収容し保存しておくことができる。 本発明 LAM測定キットを用いた LAMの測定は、前記 < 1 >の本発明 LAM測定 方法に従って行うことができる。
<4>本発明抗酸菌検知キット
本発明抗酸菌検知キットは、本発明 LAM測定キットからなる、抗酸菌の検知キット である。本発明 LAM測定キットの説明は、前記く 3 >を参照されたい。
[0043] 本発明抗酸菌検知キットの検知対象とする抗酸菌の説明につ!/、ては、前記 < 2 > の本発明抗酸菌検知方法と同様である。すなわち、検知対象とする抗酸菌は、結核 菌であることが好ましい。
[0044] 本発明抗酸菌検知キットを用いた抗酸菌の検知は、前記 < 2>の本発明抗酸菌検 知方法に従って行うことができる。
< 5 >本発明反応性除去方法
本発明反応性除去方法は、「LAMを含有する試料」に、下記の群から選ばれる 1 又は 2以上の物質を共存させる工程を少なくとも含む、当該試料中の LAMのリムル ス試薬に対する反応性を除去する方法である。
[0045] 界面活性剤、抗結核抗体、抗 LAM抗体、 BG、カルボキシメチル化された BG、 G 因子活性化阻害剤、強アルカリ性物質、ポリミキシン B、コリスチン、コンカナパリン A
、ヒスチジン、ヒスタミン。
[0046] 「LAMを含有する試料」や「リムルス試薬」についての説明は、前記く 1 >の本発 明 LAM測定方法と同様である。
ここで用いることができる「界面活性剤」は、 Etや BGのリムルス試薬に対する反応 性を損なわせるものではなぐかつ、リムルス試薬中に存在するリムルス反応に関与 する種々の因子に対して阻害作用がな 、ものである限りにお 、て特に限定されな!、
。例えば、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤、非ィ オン性界面活性剤または天然由来の界面活性剤などの 、ずれであってもよ!/ヽ。
[0047] なかでも、 Etに対する直接作用の少ない非イオン性界面活性剤を選択することが 好ましい。なお、これらの界面活性剤を適宜組み合わせて用いてもよい。
非イオン性界面活性剤の中でも、親水性部分にポリオキシエチレンを有する構造を もつ界面活性剤(以下、「ポリオキシエチレン類」とも 、う)が好まし!/、。ポリオキシェチ レン類としては、ポリオキシエチレンアルキルエーテル(一般式、 C H (OCH CH )
n 2n+l 2 2 x
OHと表され、通常省略して C Eと表記する)、アルキル鎖とポリオキシエチレン鎖の 間にフエ-ル基が入ったポリオキシエチレンアルキルフエ-ルエーテル(C ΦΕ )及 びァシルポリオキシエチレンソルビタン(Cソルビタン E )などが挙げられ、これらは、 それぞれ Brij(C E )、 TergitoKC E )、 Triton
X (C ΦΕ )、 Tween (Cソルビタン E )という一般的名称(商品名)で呼ばれ、膜タンパ ク質の可溶ィ匕など多くの目的で汎用されている。
[0048] ここで用いることができるポリオキシエチレン類のポリオキシエチレン鎖(上記一般式 中の「(0CH CH ) 0H」部分、「Ex」とも略記する)は、特に限定されないが、 x= 2— 2
2 2
5の整数、好ましくは x=4— 23の整数、さらに好ましくは x= 7— 13の整数である化 合物が好ま 、。また本発明で用いられるポリオキシエチレン類のアルキル基(上記 式中の「C H 」部分、「Cn」とも略記する)の炭素数としては、特に限定されないが、
n 2n+l
n = 8— 18の整数である化合物が好ましい。
[0049] このようなポリオキシエチレン類としては、ポリオキシエチレンドデシルエーテル、ポ リオキシエチレンへキサデシルエーテル(ポリオキシエチレンセチルエーテルとも 、う )、ポリオキシエチレンイソォクチルフエニルエーテル、ポリオキシエチレンノニルフエ -ルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステルならびにポリオキシエチレンソルビ トールエステルなどが挙げられる。これらの中でも、ポリオキシエチレンへキサデシル エーテルが極めて好ましい。またこれらの界面活性剤は水溶液として用い、一定のミ セルサイズを有するものが望まし 、。
[0050] なお、これらの界面活性剤の水溶液の溶媒は、緩衝液であってもよ ヽ。緩衝液とし ては、 pH7— 9程度に調整された緩衝液であることが好ましぐ例えばグッド緩衝液〔 例えば、 HEPES (N— 2—ヒドロキシェチルピペラジン N,— 2—エタンスルホン酸緩衝 液) ,コラミンクロリド緩衝液, BES緩衝液, MOPS緩衝液, TES緩衝液, HEPPS緩 衝液(N— 2—ヒドロキシェチルピペラジン N,— 3 プロパンスルホン酸), Tricine緩 衝液,グリシンアミド緩衝液, Bicine緩衝液, TAPS緩衝液等〕 ,トリス—塩酸緩衝液 等を挙げることができる。 [0051] 「LAMを含有する試料」に共存させる界面活性剤の量は、界面活性剤の種類等に 応じて適宜変更可能であり、特に限定されない。具体的な界面活性剤の濃度として は、「LAMを含有する試料」に接触した際の終濃度として、通常 0. 001%— 0. 8% ( W/V)、好ましくは 0. 003%— 0. 5% (W/V)、さらに好ましくは 0. 005%— 0. 3
% (wZv)等が例示される。
[0052] また、ここで用いることができる「抗結核抗体」は、結核菌の細胞壁に存在する LA Mに対して結合する抗体である限りにおいて特に限定されず、結核菌やその細胞壁 成分等を抗原として公知の方法で製造したものであってもよぐ市販のものであっても よい。なかでも、結核菌の細胞壁に存在する LAMに特異的に結合する抗体が好ま しい。
[0053] また、ここで用いることができる「抗 LAM抗体」は、 LAMに対して結合する抗体で ある限りにお 、て特に限定されず、 LAMを抗原として公知の方法で製造したもので あってもよぐ市販のものであってもよい。なかでも、 LAMに特異的に結合する抗体 が好ましい。
[0054] これらの抗体は、免疫グロブリンの分子構造を完全に保持しているものは勿論、抗 原結合部位 (Fab)を分解しないプロテアーゼ (例えばプラスミン、ペプシン、パパイン 等)で処理して Fabを含むフラグメントとしたものであっても良!、。抗体の Fabを含むフ ラグメントとしては、 Fab以外に、 Fabc、 (Fab')等が例示される。
2
[0055] また、抗体をコードする遺伝子の塩基配列や抗体のアミノ酸配列が決定されれば、 遺伝子工学的にこれらの抗体の Fabを含むフラグメントやキメラ抗体を作製することも できる。以上のような、抗体の Fabを含むフラグメントやキメラ抗体も、本明細書におけ る「抗体」の概念に包含される。
[0056] 「LAMを含有する試料」に共存させるこれらの抗体の量は、抗体の種類等に応じて 適宜変更可能であり、特に限定されない。
また、ここで用いることができる「BG」も特に限定されないが、パキマン、カードラン、 CSBG (Candida albicans菌体由来の BG)等が例示される。なかでもパキマンが好ま しい。また BGは、 β— 1, 3結合のみを含むものだけでなぐ β— 1, 6結合等で枝分か れしたものであってもょ 、。 [0057] また、 BGは官能基等が修飾された誘導体であってもよい。このような誘導体として は、例えばカルボキシメチルイ匕された BGを例示することができる。なかでもカルボキ シメチルカ一ドランが好まし 、。
[0058] 「LAMを含有する試料」に共存させる BGやその誘導体の量は、これらの種類、分 子サイズ等に応じて適宜変更可能であり、特に限定されない。
また、ここで用いることができる「G因子活性ィ匕阻害剤」も、リムルス試薬中に存在す る G因子の活性ィ匕を阻害する作用を有する物質である限りにおいて特に限定されな いが、例えば国際公開 WO90Z02951号パンフレットに記載されているポリダルコシ ド等が例示される。「LAMを含有する試料」に共存させる「G因子活性ィ匕阻害剤」の 量は、「G因子活性ィ匕阻害剤」の種類等に応じて適宜変更可能であり、特に限定され ない。
[0059] また、ここで用いることができる「強アルカリ性物質」も特に限定されないが、アルカリ 金属水酸ィ匕物であることが好ましい。アルカリ金属水酸ィ匕物としては、水酸化ナトリウ ムゃ水酸化カリウム等が例示される。
[0060] また、ここで用いることができる「ポリミキシン B」、「コリスチン」、「コンカナパリン A」、 「ヒスチジン」、「ヒスタミンは」、巿販のものを用いることもできる。
「LAMを含有する試料」にこれらの物質を共存させる際の順序や方法等は、これら の物質が修飾や破壊されることなく「LAMを含有する試料」中に存在することとなる 限りにおいて、特に限定されない。
[0061] 「LAMを含有する試料」にこれらの物質を共存させる方法は、通常、「LAMを含有 する試料」とこれらの物質とを十分混合することにより達成される。また、「LAMを含 有する試料」とこれらの物質とを共存させる順序にっ 、ては、リムルス試薬中にこれら の物質をカ卩えてお ヽて「LAMを含有する試料」との混合及び反応を同時に行っても よ!ヽが、リムルス試薬と「LAMを含有する試料」とを接触させる前に予め「LAMを含 有する試料」と混合されて ヽる方が効果の点でより望ま ヽ。
[0062] 本発明反応性除去方法により、「LAMを含有する試料」中の LAMのリムルス試薬 に対する反応性を特異的に除去することができる。
く 6 >本発明 Et測定方法 本発明 Et測定方法は、リムルス試薬を用いる Etの測定方法において、 LAMのリム ルス試薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去する工程を少なくとも含 む、「LAMを含有する試料」中の Etの測定方法である。
[0063] 「リムルス試薬」や「LAMを含有する試料」についての説明は、前記 < 1 >の本発 明 LAM測定方法と同様である。すなわち、このリムルス試薬も、 Et特異的リムルス試 薬であることが好ましい。
[0064] また、本発明反応性除去方法については、前記く 5 >を参照されたい。ただし、こ こではポリミキシン B、コリスチン、コンカナバリン八、ヒスチジン、ヒスタミン以外の物質 を用いる必要がある。
[0065] 本発明 Et測定方法は、リムルス試薬を用いる Etの測定方法にぉ 、て、 LAMのリム ルス試薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去する工程を含む限りにお いて、他の工程を含んでいてもよい。
[0066] また、 LAMのリムルス試薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去するタ イミングも特に限定されな 、が、リムルス試薬と「LAMを含有する試料」とを接触させ る前に、当該試料中の LAMのリムルス試薬に対する反応性を本発明反応性除去方 法で除去する工程を置くことが好ましい。ここにいう「接触」についての説明は、前記
< 1 >の本発明 LAM測定方法と同様である。
[0067] 本発明 Et測定方法によれば、「LAMを含有する試料」中の LAMのリムルス試薬に 対する反応性が除去されることから、当該試料中の Etを、 LAMの影響を受けること なく測定することができる。
[0068] Etによって引き起こされるリムルス反応の検知 ·測定は、公知の方法で行うことがで きる。例えば、比色法 (エンドポイントアツセィゃ力イネティックアツセィ)、ゲルイ匕法、 比濁法 (エンドポイントアツセィゃ力イネティックアツセィ)等の公知の方法で、それぞ れの方法に応じた検知 ·測定方法を採用することができる。
[0069] 前記の通り、本明細書において「測定」とは、定量的な測定のみならず、定性的な 測定 (Etの存否の測定等)をも含む概念である。
Etの定量的な測定は、目的に応じて種々の方法を採用することができる。例えば、
Et濃度が既知の試料を用 、て Et濃度とリムルス反応の強度との関係につ 、て検量 線や関係式を作成しておき、これを用いることによって厳密な定量を行うことができる
。また、厳密な定量が必要ない場合には、 2つ以上の試料についてその試料間の Et 量の多少を比較してもよい。 Etはリムルス反応を惹起させることから、リムルス反応の 強度が高ければ、試料中の Et量も多いこととなる。
[0070] Etの定性的な測定は、リムルス反応の有無を検知することによって行うことができる
。 Etはリムルス反応を惹起させることから、リムルス反応が検知されれば、試料中に E tが存在することとなる。
< 7>本発明 Et関連疾患検知方法
本発明 Et関連疾患検知方法は、本発明 Et測定方法を用いることを特徴とする、 Et 関連疾患の検知方法である。
[0071] 本発明 Et関連疾患検知方法は、本発明 Et測定方法を、そのまま Et関連疾患の検 知に応用したものである。
本発明 Et測定方法にっ 、ては上記 < 6 >を参照された 、。本発明 Et関連疾患検 知方法では、本発明 Et測定方法における「LAMを含有する試料」として、 Etを含有 し又は Etを含有していることが疑われる生体由来の試料を用いることとなる。
[0072] 検知対象とする Et関連疾患は、 Etに基づいて引き起こされる疾患である限りにお いて特に限定されない。例えば、 Et血症やグラム陰性菌感染症が例示される。
また「生体由来の試料」も特に限定されないが、体液であることが好ましい。体液は
、 Etが含有されて 、る又はその可能性がある体液である限りにお 、て特に限定され ない。例えば、血液 (本明細書では、血清や血漿をも含む概念として用いる。)、尿、 汗、唾液、涙液、関節液、喀痰、乳汁、髄液等を例示することができる。なかでも血液 が好ましい。
[0073] なお、「生体由来の試料」として血液用いる場合は、血液中のリムルス反応妨害因 子(セリンプロテアーゼ、セリンプロテアーゼインヒビター等)を公知の方法 (例えば、 特開昭 58— 85162号公報等に記載の方法)で予め除去又は不活ィ匕しておくことが 好ましい。
[0074] このような試料について、本発明 Et測定方法を用いることによって、 Et関連疾患の 検知をすることができる。 前記の通り、本明細書において「検知」とは、定性的な検知 (Et関連疾患の存否の 検知)のみならず、定量的な検知 (Et関連疾患の悪性度の検知等)をも含む概念で ある。
[0075] Et関連疾患の定性的な測定は、リムルス反応の有無を検出することによって行うこ とができる。 Etはリムルス反応を惹起させることから、リムルス反応が検知されれば、 E t関連疾患であるか又はその疑いがあることになる。
[0076] Et関連疾患の定量的な測定は、目的に応じて種々の方法を採用することができる 。例えば、 Et量が既知の試料を用いて Et量とリムルス反応の強度との関係について 検量線や関係式を作成しておき、これを用いることによって厳密な定量を行うことが できる。また、厳密な定量が必要ない場合には、 2つ以上の試料についてその試料 間の Et量の多少を比較してもよい。 Etはリムルス反応を惹起させることから、リムルス 反応の強度が高ければ試料中の Et量も多いこととなり、これに対応して Et関連疾患 の悪性度が高 、又はその疑 、があると関連づけることができる。
く 8 >本発明 Et測定キット
本発明 Et測定キットは、リムルス試薬と下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物質 を構成成分として含む、 Etの測定キットである。
[0077] 界面活性剤、抗結核抗体、抗 LAM抗体、 BG、カルボキシメチル化された BG、 G 因子活性化阻害剤、強アルカリ性物質。
「リムルス試薬」、上記の各物質の説明については、前記の < 1 >及び < 5 >と同様 である。すなわち、ここで用いるリムルス試薬も Et特異的リムルス試薬であることが好 ましい。
[0078] 本発明 Et測定キットは、少なくとも「リムルス試薬」を構成成分として含んでいる限り において、他の構成成分をさらに含んでいてもよい。このような構成成分としては、例 えばブランクテスト用蒸留水,反応試薬溶解液、反応用緩衝液等を挙げることができ る。さらに本発明 Et測定キットには、測定バッチ同士の実施レベルを一定水準に保 つための陽性コントロール (QCコントロール)等を含有させることもできる。
[0079] これらの構成成分は、それぞれ別体の容器に収容し保存しておくことができる。
本発明 Et測定キットを用いた Etの測定は、前記く 6 >の本発明 Et測定方法に従つ て行うことができる。
< 9 >本発明 Et関連疾患検知キット
本発明 Et関連疾患検知キットは、本発明 Et測定キットからなる、 Et関連疾患の検 知キットである。本発明 Et測定キットの説明は、前記く 8 >を参照されたい。
[0080] 本発明 Et関連疾患検知キットの検知対象とする Et関連疾患の説明、及び、用いる 「生体由来の試料」等の説明については、前記 < 7>の本発明 Et関連疾患検知方 法と同様である。すなわち、検知対象とする Et関連疾患としては Et血症やグラム陰 性菌感染症が例示され、用いる「生体由来の試料」は血液であることが好ましい。ま た、「生体由来の試料」として血液を用いる場合に、血液中のリムルス反応妨害因子( セリンプロテアーゼ、セリンプロテアーゼインヒビター等)を予め除去又は不活化して おくことが好ま 、点についても、前記く 7 >と同様である。
[0081] 本発明 Et関連疾患検知キットを用いた Et関連疾患の検知は、前記 < 7>の本発 明 Et関連疾患検知方法に従って行うことができる。
< 10 >本発明 BG測定方法
本発明 BG測定方法は、リムルス試薬を用いる BGの測定方法において、 LAMのリ ムルス試薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去する工程を少なくとも含 む、「LAMを含有する試料」中の BGの測定方法である。
[0082] 「リムルス試薬」や「LAMを含有する試料」についての説明は、前記 < 1 >の本発 明 LAM測定方法と同様である。
また、本発明反応性除去方法については、前記く 5 >を参照されたい。ただし、こ こでは、 BG、カルボキシメチルイ匕された BG、 G因子活性ィ匕阻害剤以外の物質を用 いる必要がある。
[0083] 本発明 BG測定方法は、リムルス試薬を用いる BGの測定方法において、 LAMのリ ムルス試薬に対する反応性を本発明反応性除去方法で除去する工程を含む限り〖こ おいて、他の工程を含んでいてもよい。
[0084] また、本発明反応性除去方法を適用するタイミング、「接触」についての説明等に っ 、ても、前記く 6 >の本発明 Et測定方法と同様である。
本発明 BG測定方法によれば、「LAMを含有する試料」中の LAMのリムルス試薬 に対する反応性が除去されることから、当該試料中の BGを、 LAMの影響を受けるこ となく測定することができる。
[0085] BGによって引き起こされるリムルス反応の検知 ·測定に関する説明、「測定」につい ての説明等も、前記く 6 >の本発明 Et測定方法と同様である。
< 11 >本発明真菌症検知方法
本発明真菌症検知方法は、本発明 BG測定方法を用いることを特徴とする、真菌症 の検知方法である。
[0086] 本発明真菌症検知方法は、本発明 BG測定方法を、そのまま真菌症の検知に応用 したものである。
本発明 BG測定方法については上記 < 10 >を参照されたい。本発明真菌症検知 方法では、本発明 BG測定方法における「LAMを含有する試料」として、 BGを含有 し又は BGを含有していることが疑われる生体由来の試料を用いることとなる。
[0087] 検知対象とする真菌症は、真菌症のカテゴリーに分類される疾患である限りにおい て特に限定されない。例えば、深在性真菌感染症等が例示される。
「生体由来の試料」の説明については、前記 < 7>の本発明 Et関連疾患検知方法 と同様である。「生体由来の試料」として血液用いる場合は、血液中のリムルス反応妨 害因子(セリンプロテアーゼ、セリンプロテアーゼインヒビター等)を公知の方法 (例え ば、特開昭 58— 85162号公報等に記載の方法)で予め除去又は不活ィ匕しておくこと が好まし!/、点についても、前記 < 7 >と同様である。
[0088] このような試料について、本発明 BG測定方法を用いることによって、真菌症の検知 をすることができる。
「検知」の説明等についても、前記 < 7 >と同様である。
< 12 >本発明 BG測定キット
本発明 BG測定キットは、リムルス試薬と下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物質 を構成成分として含む、 BGの測定キットである。
[0089] 界面活性剤、抗結核抗体、抗 LAM抗体、強アルカリ性物質、ポリミキシン B、コリス チン、コンカナバリン八、ヒスチジン、ヒスタミン。
「リムルス試薬」、上記の各物質の説明については、前記の < 1 >及び < 5 >と同様 である。ただし、ここで用いるリムルス試薬は、 BG特異的リムルス試薬であることが好 ましい。
[0090] 本発明 BG測定キットは、少なくとも「リムルス試薬」を構成成分として含んでいる限り において、他の構成成分をさらに含んでいてもよい。このような構成成分の説明等は
、上記く 8 >の本発明 Et測定キットと同様である。
[0091] 本発明 BG測定キットを用いた BGの測定は、前記 < 10>の本発明 BG測定方法に 従って行うことができる。
く 13 >本発明真菌症検知キット
本発明真菌症検知キットは、本発明 BG測定キットからなる、真菌症の検知キットで ある。本発明 BG測定キットの説明は、前記く 12>を参照されたい。
[0092] 本発明真菌症検知キットの検知対象とする真菌症の説明、及び、用いる「生体由来 の試料」等の説明につ 、ては、前記 < 11 >の本発明真菌症検知方法と同様である
。すなわち、検知対象とする真菌症としては深在性真菌感染症が例示され、用いる「 生体由来の試料」は血液であることが好ましい。また、「生体由来の試料」として血液 を用いる場合に、血液中のリムルス反応妨害因子 (セリンプロテアーゼ、セリンプロテ ァーゼインヒビター等)を予め除去又は不活ィ匕しておくことが好ましい点についても、 前記く 11 >と同様である。
[0093] 本発明真菌症検知キットを用いた真菌症の検知は、前記 < 11 >の本発明真菌症 検知方法に従って行うことができる。
く 14 >本発明結合剤
さらに本発明は、下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物質を有効成分とする、 LA
Mに対する結合剤 (以下、本発明結合剤という。)を提供する。
[0094] 抗結核抗体、抗 LAM抗体、 (1→3) βーグルカン、カルボキシメチル化された ( 1
→3) j8—グルカン、 G因子活性化阻害剤、ポリミキシン B、コリスチン、コンカナバリ ン k ヒスチジン、ヒスタミン。
[0095] 上記の各物質の説明については、前記の < 5 >と同様である。
また本発明結合剤は、前記の物質群の少なくとも 1つを有効成分として含んでいる 限りにおいて、他の物質を含んでいてもよい。ここにいう「他の物質」は、本発明結合 剤の有効成分である物質の LAMに対する結合作用を、実質的に害しないものであ る限りにおいて特に限定されない。このような「他の物質」としては、例えば通常の医 薬又は試薬の調製に用いられる賦形剤、緩衝剤、安定化剤、保存剤等のうち、本発 明結合剤中の有効成分物質の LAMに対する結合作用を実質的に害しな!/、ものが 挙げられる。
[0096] なお、本明細書において「LAMに対する結合剤」という用語は、当該剤中の有効 成分物質を LAMに結合させるために用いられる剤を意味するものとして用いる。 そして本発明結合剤は、その有効成分物質が LAMに結合することから、例えば L AMの検知 ·測定や LAMの除去等に用いることができる。
[0097] すなわち、本発明結合剤を LAMに接触 (本発明結合剤中の有効成分物質の分子 と、 LAM分子とを接触)させ、その後、 LAMに結合した有効成分物質を直接又は溶 出させて力も検出することにより、 LAMの検知 '測定を行うことができる。この場合、 本発明結合剤中の有効成分物質は、何らかの特殊なシグナルとして検出しうる物質 ( 例えば、酵素、放射性同位元素、蛍光色素、化学発光物質、ハプテン、金属粒子、 特異的結合対など)で標識されて 、てもよ!、。標識する方法やその検知 ·測定方法も 特に限定されず、公知の手法を用いることができる。
[0098] また、本発明結合剤を不溶性の担体に固着 (本発明結合剤中の有効成分物質の 分子を不溶性の担体に固相ィ匕)させ、これを LAMを含有する溶液に接触させること で固相化された有効成分物質分子に LAMを結合させ、その後有効成分物質が固 着された担体を溶液と分離することによって、溶液中の LAMを除去することができる 。本発明結合剤中の有効成分物質を固着させる担体及び固着方法は特に限定され ず、公知の手法を用いることができる。
[0099] したがって、本発明は、下記の群力も選ばれる 1又は 2以上の物質を用いることを特 徴とする LAMの検知 ·測定方法、下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物質を構成 成分として含む LAMの測定キット、下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物質が固 着された担体を用いることを特徴とする LAMの除去方法、及び、下記の群から選ば れる 1又は 2以上の物質が固着された担体を含む LAMの除去剤(吸着除去剤)等の 概念をも包含する。 抗結核抗体、抗 LAM抗体、 (1→3) βーグルカン、カルボキシメチル化された ( 1 →3) j8—グルカン、 G因子活性化阻害剤、ポリミキシン B、コリスチン、コンカナバリ ン k ヒスチジン、ヒスタミン。
< 15 >本発明の具体的な実施態様の例
例えば、以下に示す具体的な実施態様は、いずれも本発明に包含されるものであ る。なお、以下の態様はあくまで例示であって、これらにより本発明の技術的範囲が 限定されるものではない。
(1) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存している LAMの影響を受ける ことなく測定する方法であって、当該試料を予め界面活性剤、パキマン、抗結核死菌 体抗体及び抗 LAM抗体カゝら選ばれる少なくとも 1つの物質と接触させてから、 Et特 異的リムルス試薬で測定する方法。
(2) LAMを含有する試料中の LAM活性 (濃度)を、共存して ヽる Etの影響を受ける ことなく測定する方法であって、当該試料を予め加熱してから、 Et特異的リムルス試 薬で測定する方法。
(3)上記(1)の方法で血中の Et濃度を測定し、 Et血症又はグラム陰性菌感染症を 検知する方法。
(4)上記(2)の方法で血中の LAM濃度を測定し、結核感染を検知する方法。
(5) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して ヽる LAM及び BGの影響 を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め界面活性剤及び G因子活 性ィ匕阻害剤と接触させてから、 Etと BGの両方に反応するリムルス試薬で測定する方 法。
(6) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して ヽる LAM及び BGの影響 を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予めパキマン及び G因子活性ィ匕 阻害剤と接触させてから、 Etと BGの両方に反応するリムルス試薬で測定する方法。
(7) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して ヽる LAM及び BGの影響 を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め抗結核死菌体抗体及び G 因子活性ィ匕阻害剤と接触させてから、 Etと BGの両方に反応するリムルス試薬で測 定する方法。 (8) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して ヽる LAM及び BGの影響 を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め抗 LAM抗体及び G因子活 性ィ匕阻害剤と接触させてから、 Etと BGの両方に反応するリムルス試薬で測定する方 法。
(9) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して ヽる LAM及び BGの影響 を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め界面活性剤及びカードラン (及び/又はカルボキシメチルカードラン)と接触させてから、 Etと BGの両方に反応 するリムルス試薬で測定する方法。
(10) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して ヽる LAM及び BGの影 響を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予めパキマン及びカードラン( 及び Z又はカルボキシメチルカードラン)と接触させてから、 Etと BGの両方に反応す るリムルス試薬で測定する方法。
(11) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して!/ヽる LAM及び BGの影 響を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め抗結核死菌体抗体及び カードラン (及び/又はカルボキシメチルカードラン)と接触させてから、 Etと BGの両 方に反応するリムルス試薬で測定する方法。
(12) LAMを含有する試料中の Et活性 (濃度)を、共存して!/ヽる LAM及び BGの影 響を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め抗 LAM抗体及びカード ラン (及び/又はカルボキシメチルカードラン)と接触させてから、 Etと BGの両方に 反応するリムルス試薬で測定する方法。
(13) LAMを含有する試料中の LAM活性 (濃度)を、共存している Et及び BGの影 響を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予め G因子活性ィ匕阻害剤の 存在下で加熱してから、 Etと BGの両方に反応するリムルス試薬で測定する方法。
(14) LAMを含有する試料中の LAM活性 (濃度)を、共存して ヽる Et及び BGの影 響を受けることなく測定する方法であって、当該試料を予めカードラン及び Z又は力 ルボキシメチルカ一ドランの存在下で加熱してから、 Etと BGの両方に反応するリム ルス試薬で測定する方法。
(15)上記(13)及び(14)における「LAMを含有する試料」として血漿または血清を 用いることにより血中の LAM活性 (濃度)を測定し、結核感染を検知する方法。
(16)血漿又は血清を、予め界面活性剤、「パキマン、抗結核死菌体抗体及び抗 LA M抗体力も選ばれる少なくとも 1つの物質」及び「G因子活性ィ匕阻害剤、カードラン及 びカルボキシメチルカードランカゝら選ばれる少なくとも 1つの物質」を含む水溶液で希 釈し、加熱してから、 Etと BGの両方に反応するリムルス試薬で測定することによって 、共存して 、る LAM及び BGの影響を受けることなく血中の Et活性 (濃度)を測定し
、 Et血症又はグラム陰性菌感染症を検知する方法。
(17)血漿又は血清を、予め界面活性剤及び「パキマン、抗結核死菌体抗体及び抗 LAM抗体カゝら選ばれる少なくとも 1つの物質」を含む水溶液で希釈し、加熱してから 、 Et特異的リムルス試薬で測定することによって、共存している LAM及び BGの影響 を受けることなく血中の Et活性 (濃度)を測定し、 Et血症又はグラム陰性菌感染症を 検知する方法。
(18)血漿又は血清を、予めポリミキシン Bの存在下で加熱してから、 Etと BGの両方 に反応するリムルス試薬で測定することによって、共存して ヽる LAM及び Etの影響 を受けることなく血中の BG活性 (濃度)を測定し、深在性真菌感染症を検知する方 法。
(19)本発明結合剤の有効成分物質 (標識したもの)の分子と、 LAM分子とを接触さ せ、その後、 LAMに結合した当該物質(当該標識)を直接又は溶出させて力 検出 することにより、 LAMの検知'測定を行う方法。
(20)本発明結合剤の有効成分物質の分子を不溶性の担体に固相化し、これを LA Mを含有する溶液に接触させ、その後当該担体を溶液と分離して除去することによる 、溶液中の LAMを除去する方法。
以下に、本発明の実施例を具体的に説明する。し力しながら、これらにより本発明 の技術的範囲が限定されるものではな 、。
なお、本実施例で使用した LAMは、ヒト型結核菌(青山 B株; Mycobacterium tuberculosis Aoyama-B)株の死菌体から有機溶媒抽出とカラムクロマトグラフィーで 高純度に単離精製した LAMけ力ライテスタ株式会社販売)である。
実施例 1 [0102] この LAMを、 200ngZmLとなるように蒸留水(Et及び BGフリー)に溶解して、 LA Mを含有する試料を作成した。この試料に以下の各種の処理を施した後、その 25 Lを Et及び BGフリーのマイクロタイタープレート(トキシペットプレート 96F、生化学ェ 業株式会社販売)中で Et特異的リムルス試薬 (商品名 エンドスペック ESテスト MK 、生化学工業株式会社販売) 100 Lと混合し、マイクロプレートリーダー(ゥエルリ一 ダー SK603、生化学工業株式会社販売)内で 37°Cで 30分間測定した。
[0103] その後、 1分間当たりの吸光度 [A405nm- 492 (対照波長)]変化率 (mAbs/min) 力 リムルス反応の程度を算出し、無処理の試料 (コントロール)と比較した。
なお、ここで用いたリムルス試薬は、 G因子の反応性を喪失させることにより C因子 のみが活性ィ匕されうるように処理してある(Etにのみ反応するように処理してある)。従 つて、ここでリムルス反応が検知されたとすれば、 C因子が活性ィ匕されたこと(添加し た試料には、 C因子活性ィ匕能があること)を意味することとなる。
(処理)
'ポリミキシン B処理 (LAM含有試料に、終濃度が lmg/mLとなるようにポリミキシン B硫酸塩 (Sigma社)を等量添加して混合した。 )
•酸加熱処理 (LAM含有試料に、終濃度が 0. 2Mとなるように HC1水溶液を等量添 カロして混合し、 37°Cで 60分間インキュベートした。 )
'アルカリ加熱処理 (LAM含有試料に、終濃度が 0. 2Mとなるように KOH水溶液を 等量添加して混合し、 37°Cで 60分間インキュベートした。 )
•煮沸処理 (LAM含有試料を 60分間煮沸した。 )
•界面活性剤処理 (LAM含有試料に、終濃度が 0. 005— 0. 5%となるように各種の 非イオン性界面活性剤(Brij 56 Triton- N- 101 Triton
X-405 Triton X-114又は Tergitol NP-9)を等量添カ卩して混合した。 )
• BG処理 (LAM含有試料に、終濃度が 50pg/mLとなるようにパキマンを等量添加 して混合した。 )
'コンカナパリン A処理(湿重量 0. 25gのコンカナパリン A(Con A)セファロース 4B (ァ マシャム 'バイオサイエンス社販売)に LAM水溶液 lmLを添カ卩し、混合した後、 3, 0 OOrpmで 10分間遠心分離して得られる上清を用いた。 ) '抗結核抗体に対する反応性 (LAMの抗結核抗体 (抗ヒト型結核死菌体モノクロ一 ナル抗体)に対する反応性を検討した。 )
'抗じ因子抗体処理 (LAM含有試料に、「Et特異的リムルス試薬 (商品名:エンドス ペック ESテスト MK、生化学工業株式会社販売) 1バイアルに、マウス抗 C因子モノ クローナル抗体(2C12 ;腹水)の 20倍希釈液 140 /z 1を添加した溶液」を添加して、リ ムノレス反応を行ったもの。 )
結果を表 1に示す。なお、表 1中の「 +」は反応が検知されたことを示し、表 1中で具 体的な数値を示してあるものは、無処理の試料 (コントロール)における反応性を 100 %としたときの相対値を意味する。
[0104] [表 1] 表 1
無処理の試料 (コントロール) +
ポリミキシン B処理 7.5% 酸加熱処理 72.0% アルカリ加熱処理 0¾
煮沸処理 44.4% 界面活性剤処理 0%
B G処理 1.6% コンカナバリン A処理 5.7¾ 抗結核抗体に対する反応性 +
抗 C因子抗体処理 0%
[0105] この結果から、 LAMがリムルス試薬に対して反応性を有する(C因子活性ィ匕能を有 する)ことが明らかになった。したがって、リムルス試薬を用いて LAMの測定や、 LA Mを細胞壁成分として保持する抗酸菌の検知が可能であることが示された。
[0106] また、 LAMが有するリムルス試薬反応性は、ポリミキシン B、強アルカリ性物質、各 種の非イオン性界面活性剤、 BG、コンカナノリン A等によって消失又は低減させるこ とができることが明ら力となった。
[0107] また、 LAMが抗結核抗体に反応することが確認されたことから、 LAM含有試料を 抗結核抗体と反応させておくことによつても、 LAMのリムルス試薬に対する反応性を 消失又は低減させることができることが示唆された。
[0108] さらに、 LAMが抗結核抗体やコンカナノ リン A等と結合することが示されたことから 、これらを用いて LAMの除去等もできることが示された。
したがって、 LAM含有試料をこのような物質で処理することによって、 LAMの影響 を受けずに Etや BGの測定ができることが示された。さらに、これによつて LAMの影 響を受けずに Et関連疾患や真菌症の検知もできることが示された。さらに、抗結核抗 体ゃコンカナパリン A等を LAMの結合剤として用いたり、 LAMの除去等に用いるこ とがでさることち示された。
実施例 2
[0109] (1)本発明 LAM測定キット (本発明抗酸菌検知キット)の製造例
以下の構成試薬カゝらなるキットを作製した。
A. Et特異的比色法リムルス試薬
カブトガ- (タキプレウス ·トリデンタツス)の血球 (ァメボサイト)力も国際公開 WO90 Z02951号パンフレットの参考例 3に記載の方法に従って調製した G因子の反応性 を喪失させたライセートと、発色合成基質 (Boc-Leu-Gly-Arg-pNA)等を含む凍結乾 燥品。
B.蒸留水(Etフリー)
ブランクテスト、陽性コントロールの溶解と希釈、及び検体の希釈等に用いる。
C.緩衝液
0. 2モル/ Lトリス-塩酸緩衝液 (pH 8. 0)。リムルス試薬の溶解及び反応に用い る。
D.陽性コントロール
LAMを含有する凍結乾燥品。
[0110] 検体を予め前記「く 1 >本発明 LAM測定方法」に記載の方法で加熱してから、本 キットを用いてリムルス反応を行わせることによって、検体中の LAM (抗酸菌)を Etの 影響を受けることなく測定'検知できる。
(2)本発明 Et測定キット (本発明 Et関連疾患検知キット)の製造例 以下の構成試薬カゝらなるキットを作製した。
A. Et特異的比色法リムルス試薬
エンドスペック ESテスト MK (商品名;生化学工業株式会社販売)を用いる。
B.蒸留水(Etフリー)
ブランクテスト、陽性コントロールの溶解と希釈、及び検体の希釈等に用いる。
C.緩衝液
0. 2モル/ Lトリス-塩酸緩衝液 (pH 8. 0)。リムルス試薬の溶解及び反応に用い る。
D.陽性コントロール
大腸菌 0111: B4株由来の Etを含有する凍結乾燥品。
E.血液前処理液
第 1液: 0. 2モル ZL KOH、 0. 2%ポリプレン
第 2液: 0. 2% Triton X- 100、 0. 14%エチレンィミンポリマー、 0. 02モル/ L Ca C1、 0. 06モノレ ZLビシン
2
この前処理液は、検体として血漿又は血清を用いる際に、その中のリムルス反応妨 害因子を不活ィ匕するために用いる。使用直前に、第 1液と第 2液とを混合する。
F.界面活性剤
Tergitol NP-9を 0. 01%含有する水溶液。
[0111] 界面活性剤は、 LAMのリムルス試薬反応性の除去のために用いる。すなわち、検 体 (血液検体の場合は、血液前処理液で処理したもの)を予めこの界面活性剤で処 理し、その後にリムルス反応を行わせることによって、 Et (Et関連疾患)を、 LAMの 影響を受けることなく測定'検知できる。
[0112] 本発明を詳細にまた特定の実施態様を参照して説明したが、本発明の精神と範囲 を逸脱すること無く様々な変更や修正を加えることができることは当業者にとって明ら かである。
[0113] 本出願は、 2003年 12月 22日出願の日本特許出願(特願 2003-425472)に基づくもの であり、その内容はここに参照として取り込まれる。ここに引用されるすべての参照は 全体として取り込まれる。 産業上の利用可能性
[0114] 本発明 LAM測定方法、本発明抗酸菌検知方法、本発明 LAM測定キット及び本 発明抗酸菌検知キットは、 LAMや抗酸菌の測定'検知に利用することができる。 また、本発明反応性除去方法は、リムルス反応における LAMの影響の除去に利用 することができる。
[0115] また、本発明 Et測定方法、本発明 Et関連疾患検知方法、本発明 Et測定キット及 び本発明 Et関連疾患検知キットは、 Etや Et関連疾患の測定'検知に利用することが できる。
[0116] また、本発明 BG測定方法、本発明真菌症検知方法、本発明 BG測定キット及び本 発明真菌症検知キットは、 BGや真菌症の測定'検知に利用することができる。
また、本発明結合剤は、 LAMの検知'測定、これに用いるキット、 LAMの除去方法 及び LAMの除去剤(吸着除去剤)等に利用することができる。

Claims

請求の範囲
[I] リムルス試薬と「リポアラビノマンナンを含有する試料」とを接触させる工程を少なくと も含む、当該試料中のリポアラビノマンナンの測定方法。
[2] リムルス試薬との接触前に、「リポアラビノマンナンを含有する試料」を加熱する工程 をさらに含む、請求項 1に記載の測定方法。
[3] リムルス試薬力 エンドトキシン特異的リムルス試薬である、請求項 2に記載の測定 方法。
[4] 請求項 1一 3のいずれか 1項に記載の測定方法を用いることを特徴とする、抗酸菌 の検知方法。
[5] 抗酸菌が、結核菌である、請求項 4に記載の検知方法。
[6] リムルス試薬を構成成分として含む、リポアラビノマンナンの測定キット。
[7] リムルス試薬力 エンドトキシン特異的リムルス試薬である、請求項 6に記載のキット
[8] 請求項 6又は 7に記載のキットからなる、抗酸菌の検知キット。
[9] 抗酸菌が、結核菌である、請求項 8に記載の検知キット。
[10] 「リポアラビノマンナンを含有する試料」に、下記の群力 選ばれる 1又は 2以上の物 質を共存させる工程を少なくとも含む、当該試料中のリポアラビノマンナンのリムルス 試薬に対する反応性を除去する方法;
界面活性剤、抗結核抗体、抗リポアラビノマンナン抗体、(1→3)— 18—グルカン、力 ルボキシメチルイ匕された(1→3)— 18 -グルカン、 G因子活性ィ匕阻害剤、強アルカリ性 物質、ポリミキシン B、コリスチン、コンカナバリン八、ヒスチジン、ヒスタミン。
[II] リムルス試薬を用いるエンドトキシンの測定方法において、リポアラビノマンナンのリ ムルス試薬に対する反応性を請求項 10に記載の方法で除去する工程を少なくとも 含む、「リポアラビノマンナンを含有する試料」中のエンドトキシンの測定方法。
[12] リムルス試薬力 エンドトキシン特異的リムルス試薬である、請求項 11に記載の測 定方法。
[13] 請求項 11又は 12に記載の測定方法を用いることを特徴とする、エンドトキシン関連 疾患の検知方法。
[14] リムルス試薬と下記の群から選ばれる 1又は 2以上の物質を構成成分として含む、 エンドトキシンの測定キット;
界面活性剤、抗結核抗体、抗リポアラビノマンナン抗体、(1→3)— 18—グルカン、力 ルボキシメチルイ匕された(1→3)— 18 -グルカン、 G因子活性ィ匕阻害剤、強アルカリ性 物質。
[15] リムルス試薬力 エンドトキシン特異的リムルス試薬である、請求項 14に記載のキッ
[16] 請求項 14又は 15に記載のキットからなる、エンドトキシン関連疾患の検知キット。
[17] リムルス試薬を用いる(1→3)— |8—グルカンの測定方法において、リポアラビノマン ナンのリムルス試薬に対する反応性を請求項 10に記載の方法で除去する工程を少 なくとも含む、「リポアラビノマンナンを含有する試料」中の(1→3)— ーグルカンの測 定方法。
[18] リムルス試薬力 (1→3)— 18 -グルカン特異的リムルス試薬である、請求項 17に記 載の測定方法。
[19] 請求項 17又は 18に記載の測定方法を用いることを特徴とする、真菌症の検知方 法。
[20] リムルス試薬と下記の群から選ばれる 1又は 2以上の物質を構成成分として含む、 (
1→3)— j8—グルカンの測定キット;
界面活性剤、抗結核抗体、抗リポアラビノマンナン抗体、強アルカリ性物質、ポリミ キシン B、コリスチン、コンカナノ リン A、ヒスチジン、ヒスタミン。
[21] リムルス試薬力 (1→3)— |8—グルカン特異的リムルス試薬である、請求項 20に記 載のキット。
[22] 請求項 20又は 21に記載のキットからなる、真菌症の検知キット。
[23] 下記の群力も選ばれる 1又は 2以上の物質を有効成分とする、リポアラビノマンナン に対する結合剤;
抗結核抗体、抗リポアラビノマンナン抗体、(1→3)— 18 -グルカン、カルボキシメチ ルイ匕された(1→3)— 18—グルカン、 G因子活性ィ匕阻害剤、ポリミキシン B、コリスチン、 コンカナバリン八、ヒスチジン、ヒスタミン。
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