WO2004086037A1 - 試験紙および多孔質膜 - Google Patents

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WO2004086037A1
WO2004086037A1 PCT/JP2004/004024 JP2004004024W WO2004086037A1 WO 2004086037 A1 WO2004086037 A1 WO 2004086037A1 JP 2004004024 W JP2004004024 W JP 2004004024W WO 2004086037 A1 WO2004086037 A1 WO 2004086037A1
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layer
porous membrane
test paper
sample
porous
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PCT/JP2004/004024
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English (en)
French (fr)
Inventor
Ken Tatebe
Katsuyuki Ooba
Original Assignee
Terumo Kabushiki Kaisha
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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/52Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
    • G01N33/525Multi-layer analytical elements
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10TTECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10T436/25Chemistry: analytical and immunological testing including sample preparation
    • Y10T436/25375Liberation or purification of sample or separation of material from a sample [e.g., filtering, centrifuging, etc.]
    • Y10T436/255Liberation or purification of sample or separation of material from a sample [e.g., filtering, centrifuging, etc.] including use of a solid sorbent, semipermeable membrane, or liquid extraction

Definitions

  • the present invention relates to an assay for measuring the amount of a specific component in a sample, for example, measuring a blood glucose level.
  • the present invention relates to a test paper and a porous membrane used therefor.
  • a blood glucose measurement device for measuring a blood glucose level is known.
  • This blood glucose measurement device quantifies the blood glucose level by optically measuring (colorimetrically measuring) the degree of coloration of a test paper that is colored according to the amount of glucose (glucose) in blood.
  • the colorimetry is performed by irradiating the test paper with light and measuring the intensity of the reflected light in a photometric unit having a light emitting element and a light receiving element.
  • the blood glucose (sample) is supplied to the test paper and deployed, and then the measurement of the blood glucose level is started. However, from the supply of the blood to the test paper to the colorimetry.
  • test paper a porous membrane having a structure in which a reagent is supported on one sheet substrate made of a porous material capable of absorbing the test is known. Since the test paper has a small pore diameter of about 0.5 im of the pores of the sheet substrate, it has water permeability, that is, spreadability. Therefore, there is a problem that the development of the sample takes a long time. Such a long time required for developing the specimen is particularly disadvantageous for the automatic blood glucose measuring device.
  • isotropic porous membranes must be treated as two-sided, as they have different rates of sample development, unless they are completely isotropic.
  • front and back of the membrane cannot usually be distinguished by the naked eye, when producing an isotropic porous membrane, if a slight anisotropy occurs in the membrane, the measurement accuracy is affected. There is a problem of giving.
  • a porous first layer carrying a reagent that reacts with a specific component in a sample to produce a color, and a function of filtering off a filtered substance in the sample A test paper characterized in that the test paper is used by supplying a sample from the side of the first layer to be used, wherein the first layer and the second layer are used.
  • the test paper according to any one of the above (1) to (4) has been proposed by the present applicant ( No. 1 1 1 8 see 3 4 7 4 No.) It is a porous membrane with an average pore diameter of 0.1 to 2 m, a film thickness of 50 to 200 m, and a porosity of 50 to 95%, and the ratio of the average pore diameter on one surface to the average pore diameter on the other surface.
  • a test paper having an anisotropic porous membrane having a ratio of 1.5 or more has been proposed by the present applicant (see JP-A-2001-164030).
  • test paper described in JP-A-11-183474 when used, a step of laminating the first layer and the second layer is necessary, which complicates the manufacturing process. Further, even when the test paper described in JP-A-2001-164030 is used, it is required that the plasma component reacted with the reagent can be rapidly developed on the measurement surface while filtering the blood cells. There were the following issues. In other words, the smaller the pore size is, the more effective it is to filter and remove blood cells.However, if the pore size is too small, the development of plasma components will be slowed down.
  • An object of the present invention is to solve the above-described various problems, to provide a test paper which can reduce the time required for developing a sample, and has high force measurement accuracy, and a porous membrane used therefor.
  • the inventor has a function of filtering off a filtered substance in a sample, and reacts with a specific component in the sample.
  • a porous membrane and a test paper having a specific layer carrying a reagent that responds to the color can solve the various problems described above, shorten the time required for sample development, and improve measurement accuracy.
  • the inventors have found that the cost is high, and have completed the present invention.
  • the present invention provides the test papers described in the following (1) to (5) and the porous membranes described in (6) to (9) used therein.
  • test paper comprising a porous membrane having a function of filtering a separated substance in a sample, and carrying a reagent that reacts with a specific component in the sample to form a color
  • the porous membrane has a first layer having a surface to which a specimen is supplied, and a second layer having a surface from which the specimen exudes and is measured.
  • the first layer is composed of large pores, the surface of the first layer is a smooth surface having pores, the second layer is composed of small pores, and the second layer is composed of small pores.
  • the thickness of the porous film is 50 to 200 m
  • the porosity is 60 to 95%
  • the average pore size on the surface of the first layer is 0.5 to 10 m
  • the second layer is A test paper having an average pore size of 0.1 to 3.0 m on the surface of the layer. .
  • a porous membrane having a first layer having a surface and a second layer having another surface
  • the first layer is composed of large pores
  • the surface of the first layer is a smooth surface having pores
  • the second layer is composed of small pores
  • the second layer is composed of small pores.
  • the surface is a surface having an opening
  • a boundary between the first layer and the second layer is 1 to 1/5 of the thickness of the porous film from the surface of the first layer.
  • the film thickness is 50 to 200 m
  • the porosity is 60 to 95%
  • the average pore diameter of the surface of the first layer is 0.5 to 10 im
  • the average of the surface of the second layer is A porous membrane having a pore size of 0.1 to 3.0 m.
  • FIG. 1 is an electron micrograph of the surface of the second layer of the porous film obtained in Example 3.
  • FIG. 2 is an electron micrograph showing a frozen fractured cross section of the porous membrane obtained in Example 3. You.
  • FIG. 3 is an electron micrograph showing a frozen section of the porous membrane obtained in Comparative Example 3.
  • FIG. 4 is an electron micrograph showing a frozen section of the porous membrane of Comparative Example 7.
  • FIG. 5 is a graph showing a calibration curve obtained from reflection absorbance measurement performed using the porous membranes of Examples 8 to 11. BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
  • the test paper of the present invention is a test paper having a function of filtering off a filtered substance in a sample, comprising a porous membrane carrying a reagent that reacts with a specific component in the sample to produce a color,
  • the porous membrane has a first layer having a surface to which a specimen is supplied, and a second layer having a surface from which the specimen exudes and is measured.
  • the first layer is composed of large pores
  • the surface of the first layer is a smooth surface having pores
  • the second layer is composed of small pores
  • the second layer is composed of small pores.
  • the surface has an opening
  • the boundary between the first layer and the second layer is 1Z5 to 1/1 / th of the thickness of the porous film from the surface of the first layer. In the range up to 2,
  • the thickness of the porous film is 50 to 200 im
  • the porosity is 60 to 95%
  • the average pore size on the surface of the first layer is 0.5 to 10 m.
  • the average pore diameter on the surface of the second layer is 0.1 to 3.0 m.
  • the porous membrane is a porous membrane that has a function of filtering off a filtered substance in a sample and carries a reagent that reacts with a specific component in the sample to develop a color.
  • specific examples of the sample include blood, urine, sweat, lymph, bile, saliva, and the like.
  • the specific components in the sample vary depending on the sample, but include glucose, cholesterol, hemoglobin, lactic acid, hemoglobin ATC, and ketone bodies.
  • examples of the filtered substance include those containing blood cell components such as red blood cells.
  • test paper of the present invention is used for measuring a blood glucose level as the above reagent, specifically, glucose oxidase (GOD), peroxy citrate (POD), ascorbic acid oxidase, alcohol oxidase Enzymes such as cholesterol oxidase; chromogenic agents such as 4-aminoantipyrine, N-ethyl-1N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -1m-toluidine; buffers such as phosphate buffer Are preferably exemplified.
  • GOD glucose oxidase
  • POD peroxy citrate
  • ascorbic acid oxidase alcohol oxidase Enzymes such as cholesterol oxidase
  • chromogenic agents such as 4-aminoantipyrine, N-ethyl-1N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -1m-toluidine
  • buffers such as phosphate buffer are preferably exemplified.
  • Loading amount of the reagent to be supported on the porous film (g Z cm 2) is involved in the reaction rate of the specific Ingredient, 8 0 ⁇ 2 4 0 0 g Z cm 2, preferably 1 6 8 It is preferable that the concentration be 1,260 g / cm 2 because the color development changes linearly from a low blood sugar level to a high blood sugar level.
  • the porous film forming the test paper of the present invention includes a first layer having a surface on which the sample is supplied and a second layer having a surface on which the sample is exuded and measured.
  • the first layer is composed of large pores
  • the surface of the first layer is a smooth surface having pores
  • the second layer is composed of small pores.
  • the surface of the second layer is a surface having an opening.
  • the large pore portion is a film portion having a cross-sectional density of 40% or less among the divided portions obtained by dividing the porous film into a desired number (for example, 10 divisions) in the thickness direction.
  • the pores are film portions having a cross-sectional density of more than 40%.
  • the cross-sectional density was measured by scanning the film portion of the cross section of the above porous film at a magnification of 150 ⁇ with a scanner at 300 dpi and 8-bit gray scale. 5% from the black side and 5% from the white side are binarized with the average value of the scale value including the black element as the boundary, and the ratio of the black element is defined as the cross-sectional density.
  • the opening is a hole opened on the surface of the porous membrane, and the surface of the second layer preferably has a gloss of 11 or less, more preferably 3 or less. 110, more preferably 3-8.
  • the glossiness of the surface of the second layer is in the above range, the surface of the second layer is uneven and has no gloss or gloss.
  • the direct light reflected on the surface becomes noise, and therefore, it is preferable that the surface of the second layer is uneven and has no gloss or gloss.
  • a measuring instrument that performs colorimetric measurement on test paper shines measurement light on the test paper and detects the amount of light that is reflected back.
  • the ratio of the amount of light applied and the amount of light reflected back is the reflectivity.
  • the reflectance of the test paper before the sample is added (white reflectance)
  • Reflection ratio White reflectance / Color reflectance oc Sample concentration
  • the surface of the second layer is in a state without gloss and gloss.
  • the boundary between the first layer and the second layer is in a range from the surface of the first layer to 1/5 to 1Z2 of the thickness of the porous film. From the relationship between the large pores and the small pores, the average pore diameter of the first layer in the cross section of the porous membrane is larger than the average pore diameter of the second layer.
  • the filtered material in the sample is removed. This is preferable because it can be separated by filtration at a position distant from the surface (measurement surface) of the second layer, and can sufficiently support the reagent.
  • the porous film has a thickness of 50 to 200 m, preferably 90 to 180 m. m, and more preferably 110 to 150 m.
  • the thickness of the porous membrane is within this range, sufficient membrane strength can be obtained, the influence of the above-mentioned separated material is reduced, and the above-described sample exudation time (development time) is reduced, and the required sample is reduced. It is preferable because the amount can be small.
  • the porosity of the porous membrane is 60 to 95%, preferably 70 to 80%.
  • the porosity of the porous membrane is in this range, the sample and the reagent can be sufficiently supported, and it is preferable because sufficient membrane strength can be obtained.
  • the porosity (%) is obtained by a gravimetric method using the following equation.
  • Porosity (%) ⁇ i-one (dry membrane weight Z specific gravity of membrane component) / membrane volume ⁇ X100
  • the membrane is a porous membrane, and the specific gravity of the membrane component is porous. This is the specific gravity of the polymer that constitutes the membrane.
  • the average pore size of the first layer is larger than the average pore size of the second layer, and further, the average pore size on the surface of the first layer.
  • the pore size (average pore size on the surface of the first layer) is 0.5 to 10 im, preferably 1.0 to 5.0 m, and the average pore size (opening on the surface of the second layer)
  • the average pore diameter on the surface of the layer is 0.1 to 3.0 m, preferably 0.5 to 3.0 um.
  • the average pore size on the surface of the first layer is within this range, it is preferable because the sample is soaked quickly and there is no clogging due to the filtrate, and the average pore size on the surface of the second layer is within this range. This is preferable because the sample can be developed quickly and the reagent can be sufficiently supported.
  • polymer used as the material of the porous membrane examples include, for example, nitro Examples include cellulose, polyvinyl difluoride, cellulose acetate, polysulfone, polyethersulfone, and polyethylene. Among them, polyethersulfone is preferred because the reagent activity used for carrying out the blood glucose level measurement is least deteriorated with time.
  • the reason that the porous membrane supports a hydrophilic agent, is composed of a membrane material having hydrophilicity, or is subjected to a hydrophilic treatment can shorten the time for supplying and developing the specimen. Is preferred.
  • hydrophilizing agent examples include surfactants such as Triton X-100 (Rohm & Haas), water-soluble silicon, hydroxypropyl cellulose, polyethylene glycol, polypropylene glycol and the like.
  • hydrophilization treatment include plasma treatment, glow discharge, corona discharge, and ultraviolet irradiation.
  • the above-mentioned porous membrane may optionally be made of an electrolyte (for example, phosphate, phthalate, co-octamate, citrate, borate, acetate) Salt) and organic substances (for example, glycine and trishydroxymethylaminomethane).
  • an electrolyte for example, phosphate, phthalate, co-octamate, citrate, borate, acetate
  • organic substances for example, glycine and trishydroxymethylaminomethane
  • the test paper of the present invention comprising such a porous membrane can shorten the time required for developing the sample, and can separate the filtered material in the sample from the surface (measurement surface) of the second layer. It is useful because it can be suitably used as a test paper for a component measurement chip because the measurement accuracy is increased by filtering off at a remote position.
  • the shape of the test paper of the present invention is not particularly limited, and may be selected as necessary, such as a square such as a circle, an ellipse, a square, a rectangle, a rhombus, a triangle, a hexagon, an octagon, and the like. be able to.
  • the porous membrane of the present invention is a porous membrane that can be used as the porous membrane forming the test paper of the present invention described above. Specifically, the first membrane having a surface and the other A second membrane having a surface and a second layer,
  • the first layer is composed of large pores
  • the surface of the first layer is a smooth surface having pores
  • the second layer is composed of small pores
  • the second layer is composed of small pores.
  • the surface has an opening
  • the boundary between the first layer and the second layer is 1Z5 to 1Z of the thickness of the porous film from the surface of the first layer. In the range up to 2,
  • the film thickness is 50 to 201 1 111
  • the porosity is 60 to 95%
  • the average pore diameter on the surface of the first layer is 0.5 to 10 m
  • the porous membrane has an average pore diameter of 0.1 to 3.0 m on the surface of the second layer.
  • the porous membrane of the present invention is not particularly limited as long as it is a membrane that does not carry the reagent among the porous membranes forming the test paper of the present invention described above.
  • the porous membrane of the present invention is characterized in that the ratio of the average pore diameter on the surface of the first layer to the average pore diameter on the surface of the second layer is 1 to 6, which was measured when used as a test paper. It is preferred because the body develops faster, more preferably from 1 to 4.
  • the porous film of the present invention preferably has a surface of the second layer having a glossiness of 11 or less, more preferably. It is preferably 3 to 10, more preferably 3 to 8.
  • the surface of the second layer is uneven and has no gloss or gloss.
  • the surface of the second layer is uneven and has no gloss or gloss.
  • a wet membrane is preferably exemplified.
  • melt film formation, dry film formation, etc. are known, but when an anisotropic film whose pore size on one surface is different from that on the opposite surface is manufactured, wet film formation is used. Manufacturing is preferred.
  • the wet film forming includes: a film forming stock solution supplying step of spreading a film forming stock solution on a substrate in a film form; a coagulation bath dipping step of dipping the substrate after the film forming stock solution supplying step into a coagulation bath;
  • the method includes a washing step of removing the solvent component and Z or the water-soluble additive component from the substrate after the immersion step in a water bath, and a drying step of drying the substrate after the washing step.
  • the film forming stock solution supplying step is a step of applying the film forming stock solution on the substrate in a film form. Specifically, the film forming stock solution is applied to the surface of the base material, and the cast thickness can be adjusted. This is the process of pushing and spreading using a brush, or spreading from a T-die.
  • the undiluted film-forming solution contains a water-insoluble first component polymer as a membrane component and a water-soluble second component to be extracted, and has a concentration of the first component polymer of 12 to 15%. Is preferred. If the water-insoluble first component polymer and the water-soluble second component are contained, the aggregation of the polymer is suppressed, and pores are formed in the space after the extraction and removal of these components, thereby improving the porosity. Is preferred because
  • the water-insoluble first component polymer specifically, for example, nitrocell Loose, polyvinylidene fluoride, cellulose acetate, polysulfone, polyethylene, polyethersulfone, and the like.
  • polyester sulphone is preferable because, as described above, when a reagent used for measuring a blood glucose level is carried, the reagent activity is least deteriorated with time.
  • water-soluble second component examples include, for example, polypinylpyrrolidone, polyethylene glycol, polyacrylamide, and polyacrylic acid that can be dissolved in a solvent described below and easily extracted and removed after a coagulation bath immersion step described later. , Hydroxypropyl pill cellulose, methyl cellulose and the like.
  • polyvinylpyrrolidone does not dissolve in nitrocellulose, polyvinyl difluoride, cellulose acetate, polysulfone, polyethylene, polyethersulfone, etc., but dissolves in a polar solvent that dissolves these polymers and solidifies. It is preferable because it has the property that it can be extracted and removed with water later.
  • Examples of the solvent of the stock solution for the purpose of dissolving the first component polymer and the water-soluble second component include N-methyl-2-pyrrolidone (NMP), dimethylformamide, and dimethyl.
  • NMP N-methyl-2-pyrrolidone
  • Organic polar solvents such as sulfoxide and dimethylacetamide are exemplified, and N-methyl-2-pyrrolidone is preferable.
  • the charging ratio of the first component polymer to the water-soluble second component is preferably 1: 1 to 1: 3.
  • the second layer composed of the small pores occupies a portion of the porous film that is more than half of the film thickness, maintains the porosity, and does not hinder the exudation of the sample. preferable.
  • the cast thickness adjusted when the film-forming stock solution is applied on a substrate is preferably 70 to 260 nm, and the thickness of the obtained porous film falls within the above-described preferred range. Preferred for all reasons.
  • the substrate a conventionally known substrate can be used, and it is preferable that the substrate on which the film forming stock solution is applied has a rough surface.
  • a substrate include a plate glass having a gloss of 12 or less, a mat film having a gloss of 12 or less, and a gloss of polyethylene terephthalate having a gloss of 12 or less.
  • Plate glass or the like coated with an eraser film e.g., a matte film having a gloss of 12 or less
  • the glossiness conforms to JIS Z8741.
  • the coagulation bath immersion step is a step of immersing the base material after the film formation stock solution supply step in a coagulation bath containing water.Specifically, the base material coated with the film formation stock solution is converted into a coagulation bath. And dipping the first component polymer on the substrate.
  • a water-based coagulation bath containing 60 to 85 wZw%, preferably 70 to 80 wZw%, of the solvent of the stock solution for film formation is suitably exemplified, and specifically, N-methylol It is preferably an aqueous solution containing 60 to 85 w / w% of 2-pyrrolidone.
  • the content of the solvent is within this range, slow solidification of the first component polymer is realized, and a film having a porous structure is formed.
  • the concentration of the solvent of the film forming stock solution in the coagulation bath is lower than 60 wZw%, the above-mentioned effect of adding the solvent of the film forming stock solution cannot be obtained, and if it exceeds 85 wZw%, the film does not coagulate. .
  • the immersion of the base material in the coagulation bath may be carried out at a temperature of the coagulation bath of 10 to 50, preferably 20 to 4 (3 to 20 minutes in TC, preferably 5 to 10 minutes. If the temperature of the coagulation bath is within this range, the precipitation rate of the first component polymer is suitable. In this case, a film having a porous structure is formed. If the immersion time is shorter than 3 minutes, no film is formed because the first component polymer is not completely precipitated, and if the immersion time is longer than 20 minutes, the film structure does not change and the production efficiency decreases.
  • the washing step is a step of removing the solvent component and the Z or water-soluble additive component from the base material after the coagulation bath immersion step in a water bath.
  • the first component polymer is precipitated.
  • the film made of the first component polymer By immersing the formed film (hereinafter, simply referred to as “the film made of the first component polymer”) in a water bath for 10 to 100 minutes, preferably for 15 to 60 minutes, the solvent component and the This is a step of extracting and removing Z or the water-soluble additive component (for example, the solvent, the water-soluble second component).
  • the drying step is a step of drying the film made of the first component polymer after the washing step. Specifically, the drying step is preferably performed at 30 to 10 ° C. using natural drying or an electric oven. Is a method of drying at 40 to 80 ° C. for 1 minute to 24 hours, preferably for 1 minute to 2 hours.
  • the porous membrane produced by such a production method comprises, as an anisotropic porous membrane, a first layer having a surface to which a sample is supplied and a second layer having a surface from which the sample is exuded and measured. Wherein the boundary between the first layer and the second layer is in a range from the surface of the first layer to / to ⁇ of the thickness of the porous film. This is useful because
  • Example:! ⁇ 7, Comparative example:! ⁇ 7 The porous membranes of Examples 1 to 7 and Comparative Examples 1 to 6 were formed under the following conditions. First, the film-forming stock solution shown in Table 1 below was supplied linearly to the base material with a syringe, and spread using an applicator capable of adjusting the cast thickness to the cast thickness shown in Table 2 below. .
  • Each base material on which the film forming stock solution was spread was immersed in a coagulation bath consisting of an aqueous solution of N-methyl-2-pyrrolidone (aqueous NMP solution) prepared at the coagulation bath solvent concentration and coagulation bath temperature shown in Table 2 below. Then, polyether sulfone as the first component polymer was precipitated. After that, the membrane made of polyethersulfone is immersed in a water bath to extract and remove NMP as a solvent component and polyvinylpyrrolidone as a water-soluble second component, and then dry in a 60 ° C oven to obtain a porous membrane.
  • aqueous NMP solution aqueous NMP solution
  • a plate glass coated with a matte film (Matsuto Film) made of polyethylene terephthalate (PET) and having a gloss of 12 or less (JIS Z 8741) was used as the substrate.
  • a matte film made of polyethylene terephthalate (PET) and having a gloss of 12 or less (JIS Z 8741) was used.
  • polyethersulfone (Sumikaexel 5200P, manufactured by Sumitomo Chemical Co., Ltd.) was used as the first component polymer
  • polypinylpyrrolidone plaque K2932, manufactured by ISP
  • N-methyl-1-pyrrolidone manufactured by BASF was used as a solvent.
  • the average pore diameter of the surface of the first layer and the surface of the second layer of each porous membrane, the ratio of the average pore diameter of the surface of the first layer to the average pore diameter of the surface of the second layer, the first layer The position of the boundary between the layer and the second layer, the film thickness, and the porosity were determined by the following methods. The results are shown in Table 3 below.
  • the average pore size of the surface is determined by taking an image of the surface of each porous membrane with a scanning electron microscope (JSM-840, manufactured by JEOL Ltd.) and analyzing the obtained image by an image analyzer (IP-100 PC manufactured by Asahi Kasei Corporation). ), The hole diameter of the holes in the visual field was calculated as the equivalent circle diameter in area conversion, and the arithmetic average was taken as the average hole diameter of the surface. From the obtained average pore diameter, the ratio of the average pore diameter of the surface of the first layer to the average pore diameter of the surface of the second layer is defined as an average pore diameter ratio. I asked.
  • FIG. 1 shows an electron micrograph of the surface of the second layer of the porous film obtained in Example 3.
  • the position of the boundary was determined by taking a frozen section of each porous membrane with a scanning electron microscope (JSM-840, manufactured by JEOL Ltd.) and determining the above-mentioned large and small pores from the cross-sectional density of the obtained image. By observing the part, the position of the boundary between the first layer and the second layer was obtained.
  • the measurement of the cross-sectional density was performed on each divided portion obtained by dividing each porous film into 10 portions in the thickness direction.
  • the cross-sectional density was obtained by taking in the film portion of the cross-section of each porous film at a magnification of 150 ⁇ electron microscope at 300 dpi and 8-bit gray scale using a scanner.
  • the obtained image was binarized using the average value of the scale value including the black component of 5% from the black side and 5% from the white side as a boundary, and was calculated from the ratio of the black component.
  • FIG. 2 shows an electron micrograph showing a frozen section of the porous membrane obtained in Example 3
  • FIG. 3 shows an electron micrograph showing a frozen section of the porous membrane obtained in Comparative Example 3.
  • FIG. 4 shows an electron micrograph showing a frozen fractured cross section of the porous membrane of Comparative Example 7. The thickness of each porous membrane was measured with a micrometer (made by Mitutoyo Corporation).
  • Porosity (%) ⁇ 1 ⁇ (weight of dry membrane Z specific gravity of membrane component) ⁇ Volume of membrane ⁇ X100 was measured by a gravimetric method.
  • the membrane is each of the obtained porous membranes
  • the specific gravity of the membrane component is the specific gravity of the polymer constituting each of the obtained porous membranes.
  • a specific gravity of sulfone of 1.37 was used.
  • the final rate of change is the rate of change (100% change) between the reflectance after the measurement time (260 seconds) has elapsed and the reflectance at the measurement start (0 seconds). is there.
  • the measurement conditions were: photometric value: reflectance, wavelength: 610 nm, slit width: 2.0 nm, timing mode: auto, measurement time: 260 seconds, sampling pitch:
  • the measurement conditions were: photometric value: reflectance, wavelength range (nm): 700 nm to 500 nm, scan speed: medium speed, slit ⁇ : 2.0 nm, and sampling pitch: 1. Onm.
  • the above reagents include glucose oxidase (GOD), peroxidase (POD) and 4-aminoantipyrine, N-ethyl-N- (2-hydroxy-13-sulfopropyl) _m-toluidine (TOOS). And Triton X-100 was used as the hydrophilizing agent.
  • the method of loading these reagents and the hydrophilizing agent can be selected under the usual conditions and the like.
  • the obtained reagent and the hydrophilizing agent are dissolved in a phosphate buffer solution.
  • Each of the porous membranes is immersed and coated with the reagent and the hydrophilizing agent. After being dried, it was supported by drying.
  • the total carrying amount (mgZcm 2 ) of the reagent and the hydrophilizing agent is determined by precisely weighing the weight of each porous membrane before supporting the reagent and the hydrophilizing agent and the weight after supporting the porous membrane. Asked from.
  • a PET film with a surface roughness of 2.9, 5.5 and 11.3 by sandblasting and a glossy PET film ( Glossiness of 50) was sandblasted, the untreated PET film was left as it was, and the film was adhered to a glass plate, and the film was formed under the same conditions as in Example 4 in Table 2.
  • the glossiness of the substrate side surface was 3 (Example 8), 6 (Example 9), 10 (Example 10) (above, using a sandblasted PET film), 43 (Example Example 1 1) (Using untreated PET film)
  • a porous membrane was produced. These porous membranes were coated with the following reagents and used for experiments.
  • Coated reagents G ⁇ D, P ⁇ D, and 4-aminoantipyrine .. N-ethyl-N- (2-hydroxy-1-3-sulfopropyl) — m-toluidine (TOOS). Triton X-100 (hydrophilizing agent) )
  • the porous membrane to be evaluated is fixed to the sample holder of a spectrophotometer (UV-2400 (PC) S manufactured by Shimadzu Corporation) so that the reflection absorbance can be measured, and the blood glucose level is 100 Hg / d1 and 400 ⁇ g.
  • the human blood adjusted to / d1 was added to the surface of the first layer by 51 with a micropipette (manufactured by Eppendorf), and the reflection absorption spectrum of the reflection absorption of the surface of the second layer was measured. By closing the obtained results, a calibration curve was created from the relationship between the blood glucose level and the reflection ratio, and the slope was determined.
  • FIG. 5 is a graph showing a calibration curve. Table 5 shows the reflection ratio at each blood glucose level and the slope of the calibration curve. .
  • the porous membrane of the present invention can be used as a test paper for a component measurement chip of a blood measurement device.
  • the test paper of the present invention has a high developing speed of the sample and can shorten the developing time, and at the time of colorimetry, a separated substance in the sample is filtered and removed to secure a sufficient amount of the reagent carried. This is useful because more accurate measurement can be performed.
  • a test paper in which the surface of the second layer to which light is applied when measuring the reflection absorbance has a glossiness of 11 or less is a region having a high blood sugar level, specifically, for example, about 400 xg / dl.

Abstract

 本発明の目的は、検体の展開に要する時間(展開時間)を短縮することができ、かつ測定精度が高い試験紙およびそれに用いる多孔質膜を提供することである。 本発明の試験紙は検体中の濾別物を濾別する機能を有し、該検体中の特定成分と反応して呈色する試薬を担持する多孔質膜からなる試験紙であって、前記多孔質膜が、検体が供給される表面を有する第1の層と、該検体がしみ出し測定される表面を有する第2の層とを有し、前記第1の層が大孔部からなり、該第1の層の表面が開孔部を有する平滑な表面であり、前記第2の層が小孔部からなり、該第2の層の表面が開孔部を有する表面であって、該第1の層と該第2の層との境界が、該第1の層の表面から前記多孔質膜の膜厚の1/5乃至1/2までの範囲にあり、さらに、前記多孔質膜の膜厚が50~200μm、空孔率が60~95%であり、前記第1の層の表面の平均孔径が0.5~10μmであり、前記第2の層の表面の平均孔径が0.1~3.0μmである。

Description

試験紙および多孔質膜
技術分野 本発明は、 例えば血糖値の測定のような、 検体中の特定成分の量を測定する試 明
験紙およびそれに用いる多孔質膜に関するものである。
背景技術 血糖値の測定を行う血糖測定装置 (血中成分測定装置) が知られている。 この 血糖測定装置は、 血中のグルコース (ブドウ糖) 量に応じて呈色する試験紙の呈 色の度合いを光学的に測定 (測色) して血糖値を定量化するものであり、 試験紙 の測色は、 発光素子および受光素子を備える測光部において、 試験紙に光を照射 しその反射光の強度を測定することにより行われている。 また、 このような血糖測定装置では、 試験紙に血液 (検体) を供給、 展開する 操作を行った後、 血糖値の測定を開始するが、 試験紙への血液の供給から測色ま での時間が一定でなく、 それによる測定誤差が生じるという問題がある。 そのた め、 試験紙への供給 ·展開から測定までの一連の操作を連続的、 自動的に行うこ とが出来る血糖自動測定装置の開発が望まれている。 一方、 上記試験紙としては、 検 :を吸収可能な多孔質材料で構成された 1枚の シート基材に試薬を担持させた構成の多孔質膜が知られている。 この試験紙は、 シート基材の細孔の孔径が 0 . 5 i m程度と小さいため、 通水性、 すなわち展延 性が低く、 そのため検体の展開に時間がかかるという問題がある。 このように検 体の展開に要する時間が長いということは、 特に、 上記血糖自動測定装置に とって不利である。
また、 上記試験紙として、 膜の表から裏まで孔径が均一な等方性の多孔質膜を 用いた場合も、 検体中の濾別物を膜表面で除去することになるため、 検体の展開 に時間がかかるという問題があり、 検体の展開が遅いと少量の検体では測定面ま でしみ出さないため、 供給する検体の量が増えるという問題がある。
さらに、 等方性の多孔質膜は、 完全に等方性でない限り、 裏表で検体の展開速 度が異なり、 裏表のあるものとして取り扱う必要がある。 しかしながら、 通常、 膜の裏表は肉眼で区別することができないため、 等方性の多孔質膜を製造する際 に、 該膜にわずかな異方性を発生させてしまうと、 測定精度に影響を与えてしま うという問題がある。
このような問題点を解決する手段として、 (1 ) 検体中の特定成分と反応して 呈色する試薬を担持する多孔質の第 1の層と、 検体中の濾別物を濾別する機能を 有する多孔質の第 2の層とを積層してなり、 上記第 1の層側から検体を供給して 使用することを特徴とする試験紙、 (2 ) 上記第 1の層および上記第 2の層がそ れぞれ親水性を有している上記 (1 ) に記載の試験紙、 (3 ) 上記第 1の層にお ける細孔の孔径が 8〜5 0 である上記 (1 ) または (2 ) に記載の試験紙、 ( 4 ) 上記第 2の層における細孔の孔径が 5 以下である上記 ( 1 ) ないし ( 3 ) のいずれかに記載の試験紙、 及び (5 ) 上記検体は血液であり、 上記濾別 物は主に赤血球を含む血球である上記 (1 ) ないし (4 ) のいずれかに記載の試 験紙が、 本出願人により提案されており (特開平 1 1— 1 8 3 4 7 4号参照) 、 また、 平均孔径が 0. 1〜 2 m、 膜厚が 50〜 200 m及び空孔率が 50〜 95 %の多孔質膜であり、 一方の表面の平均孔径と他方の表面の平均孔径の比が 1. 5以上である異方性の多孔質膜を有する試験紙が、 本出願人により提案され ている (特開 2001- 164030号参照) 。
しかしながら、 特開平 1 1— 183474号に記載の試験紙を用いた場合に は、 第 1の層と第 2の層とを積層させる工程が必要であり、 製造工程が複雑とな る。 また、 特開 2001— 164030号に記載の試験紙を用いた場合にも、 血 球を濾別しつつ試薬と反応した血漿成分を迅速に測定面へ展開させ得ることが要 求されるため、 以下に示すような課題があった。 すなわち、 血球を濾別 ·除去す るためには孔径を小さくする程効果があるが、 孔径を小さくし過ぎると血漿成分 の展開が遅くなり、 また、 検体の入り口側の孔径を大きくし、 出口側の孔径を小 さくすることで展開速度を維持しつつ血球を除去する際にも、 血球除去が測定面 直前で行われたのでは、 血球成分の血色素が多孔質構造を通して透けて見えてし まうため、 測定精度に影響を与えてしまい、 さらに、 孔径が大きい部分が多い と、 表面積が小さくなり、 測定に必要な試薬を十分に担持させることができな かった。 発明の開示
本発明は、 上述した種々の課題を解決し、 検体の展開に要する時間を短縮する ことができ、 力 測定精度が高い試験紙およびそれに用いる多孔質膜を提供する ことを目的とする。
本発明者は、 検体中の濾別物を濾別する機能を有し、 該検体中の特定成分と反 応して呈色する試薬を担持し、 特定の層を有する多孔質膜および試験紙が、 上述 した種々の課題を解決し、 検体の展開に要する時間を短縮することができ、 かつ 測定精度が高くなることを見出し本発明を完成させるに至つた。
すなわち、 本発明は、 下記 (1) 〜 (5) に記載の試験紙およびそれに用いる (6) 〜 (9) に記載の多孔質膜を提供する。
(1) 検体中の濾別物を濾別する機能を有し、 該検体中の特定成分と反応して 呈色する試薬を担持する多孔質膜からなる試験紙であって、
上記多孔質膜が、 検体が供給される表面を有する第 1の層と、 該検体がしみ出 し測定される表面を有する第 2の層とを有し、
上記第 1の層が大孔部からなり、 該第 1の層の表面が開孔部を有する平滑な表 面であり、 上記第 2の層が小孔部からなり、 該第 2の層の表面が開孔部を有する 表面であって、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表面から上記 多孔質膜の膜厚の 1 / 5乃至 1 Z 2までの範囲にあり、
さらに、 上記多孔質膜の膜厚が 50〜200 m、 空孔率が 60〜 95%であ り、 上記第 1の層の表面の平均孔径が 0. 5〜10 mであり、 上記第 2の層の 表面の平均孔径が 0. 1〜3. 0 mである試験紙。 .
(2) 上記第 2の層の表面の光沢度が、 1 1以下である上記 (1) に記載の試 験紙。
(3) 上記第 2の層の表面が、 凸凹を有することにより光沢および艷がない表 面である上記 (1) または (2) に記載の試験紙。
(4) 上記多孔質膜の材質が、 ポリエーテルスルホンである上記 ( 1 ) 〜 (5) 上記検体が血液であり、 上記濾過物が赤血球を含む上記 (1) 〜 (4) のいずれかに記載の試験紙。
(6) 表面を有する第 1の層と 他の表面を有する第 2の層とを有する多孔質 膜であって、
上記第 1の層が大孔部からなり、 該第 1の層の表面が開孔部を有する平滑な表 面であり、 上記第 2の層が小孔部からなり、 該第 2の層の表面が開孔部を有する 表面であって、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表面から上記 多孔質膜の膜厚の 1 / 5乃至 1ノ 2までの範 にあり、
さらに、 膜厚が 50〜200 m、 空孔率が 60〜 95 %であり、 上記第 1の 層の表面の平均孔径が 0. 5〜10 imであり、 上記第 2の層の表面の平均孔径 が 0. 1〜3. 0 mである多孔質膜。
(7) 上記第 2の層の表面の平均孔径に対する上記第 1の層の表面の平均孔径 の比が、 1〜6である上記 (6) に記載の多孔質膜。
(8) 上記第 2の層の表面の光沢度が、 1 1以下である上記 (6) または (7) に記載の多孔質膜。
(9) 上記第 2の層の表面が、 凸凹を有することにより光沢および艷がない表 面である上記 (6) 〜 (8) のいずれかに記載の多孔質膜。 図面の簡単な説明
図 1は、 実施例 3で得られた多孔質膜の第 2の層の表面の電子顕微鏡写真であ る。
図 2は、 実施例 3で得られた多孔質膜の凍結割断面を示す電子顕微鏡写真であ る。
図 3は、 比較例 3で得られた多孔質膜の凍結割断面を示す電子顕微鏡写真であ 図 4は、 比較例 7の多孔質膜の凍結割断面を示す電子顕微鏡写真である。 図 5は、 実施例 8〜 1 1の多孔質膜を用いて実施した反射吸光度測定から得ら れた検量線を示したグラフである。 発明を実施するための最良の形態
本発明の試験紙は、 検体中の濾別物を濾別する機能を有し、 該検体中の特定成 分と反応して呈色する試薬を担持する多孔質膜からなる試験紙であって、 上記多孔質膜が、 検体が供給される表面を有する第 1の層と、 該検体がしみ出 し測定される表面を有する第 2の層とを有し、
上記第 1の層が大孔部からなり、 該第 1の層の表面が開孔部を有する平滑な表 面であり、 上記第 2の層が小孔部からなり、 該第 2の層の表面が開孔部を有する 表面であって、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表面から上記 多孔質膜の膜厚の 1 Z 5乃至 1 / 2までの範囲にあり、
さらに、 上記多孔質膜の膜厚が 5 0〜2 0 0 i m、 空孔率が 6 0〜 9 5 %であ り、 上記第 1の層の表面の平均孔径が 0 . 5〜1 0 mであり、 上記第 2の層の 表面の平均孔径が 0 . 1〜3 . 0 mである試験紙である。
以下に、 本発明の試験紙を形成する多孔質膜について詳細に説明する。
上記多孔質膜は、 上述したように、 検体中の濾別物を濾別する機能を有し、 該 検体中の特定成分と反応して呈色する試薬を担持する多孔質膜である。 ここで、 上記検体としては、 具体的には、 例えば、 血液、 尿、 汗、 リンパ液、 胆汁、 唾液等が挙げられる。
また、 上記検体中の特定成分としては、 検体によっても異なるが、 グルコ一 ス、 コレステロール、 ヘモグロビン、 乳酸、 ヘモグロビン AT C、 ケトン体等が 挙げられる。
上記濾別物としては、 上記検体が血液である場合、 赤血球等の血球成分を含む ものが挙げられる。
上記試薬としては、 本発明の試験紙を血糖値測定用に用いる場合、 具体的に は、 グルコースォキシ夕一ゼ (G O D) 、 ペルォキシ夕一ゼ (P O D) 、 ァスコ ルビン酸ォキシダーゼ、 アルコールォキシダーゼ、 コレステロールォキシダ一ゼ 等の酵素; 4—ァミノアンチピリン、 N—ェチル一N— (2—ヒドロキシー3 _ スルホプロピル) 一 m—卜ルイジン等の発色剤; リン酸緩衝液等の緩衝剤等が好 適に例示される。
上記多孔質膜に担持させる上記試薬の担持量 ( g Z c m2 ) は、 上記特定成 分との反応率に関与し、 8 0〜2 4 0 0 g Z c m2 、 好ましくは 1 6 8〜1 2 6 0 g / c m2 であることが低い血糖値から高い血糖値まで直線的に発色が変 化する理由から好ましい。
また、 本発明の試験紙を形成する多孔質膜は、 上述したように、 上記検体が供 給される表面を有する第 1の層と、 該検体がしみ出し測定される表面を有する第 2の層とを有しており、 該第 1の層は大孔部からなり、 該第 1の層の表面は開孔 部を有する平滑な表面であって、 該第 2の層は小孔部からなり、 該第 2の層の表 面は開孔部を有する表面である。 ここで、 大孔部とは、 上記多孔質膜を厚さ方向に所望の数分割 (例えば、 1 0 分割) した各分割部分のうち、 断面密度が 4 0 %以下の膜部分のことであり、 小 孔部とは 該断面密度が 4 0 %超の膜部分のことである。 また、 断面密度の測定 は、 上記多孔質膜の断面の 1 5 0 0倍電子顕微鏡写真の膜部分を、 3 0 0 d p i、 8ビットグレースケールでスキャナ一で取り込んで行い、 取り込まれた画像 を、 黒色側から 5 %、 白色側から 5 %の黒色要素を含むスケール値の平均値を境 として 2値化し、 黒色要素の割合を断面密度とする。
上記開孔部とは、 上記多孔質膜の表面に開いた孔部のことであり、 また、 上記 第 2の層の表面は、 光沢度が 1 1以下であることが好ましく、 より好ましくは 3〜 1 0であり、 さらに好ましくは 3〜8である。 第 2の層の表面の光沢度が上 記の範囲であると、 該第 2の層の表面が凸凹を有し光沢および艷がない状態であ る。 後述するように、 反射吸光度の測定において、 表面反射した直接光はノイズ' となるので、 第 2の層の表面は、 凸凹を有し光沢および艷がない状態であること が好ましい。
このことを以下に詳しく述べる。
試験紙を比色測定する測定器は、 試験紙に測定用の光を当て、 反射して戻って くる光の量を検出している。 当てた光と反射して戻ってくる光の量の比が反射率 となる。 このような測定器では、 一定波長 (具体的には、 例えば 6 0 5〜6 1 0 n m) の光を当てた場合における、 検体が添加される前の試験紙の反射率 (白反 射率) と検体が添加され試薬により発色した試験紙の反射率 (色反射率) の比 と、 検体濃度との間に成立する検量線 (下記式で表される関係) を利用して、 検 体濃度を測定している。 . 反射比率 = 白反射率/色反射率 oc 検体濃度
ここで検体濃度が高くなるほど色反射率が低下するので、 反射比率は大きくな る。 このとき多孔質膜の測定表面に光沢または艷があると 試験紙に当たった光 は試験紙の色の濃さにかかわらず一定の光を反射する。 このため、 下記式に示す ように、 白反射率も色反射率もこの光沢の分だけ反射率が高くなつてしまう。 反射比率 = (白反射率 +膜光沢度) / (色反射率 +膜光沢度)
伹し、 膜光沢度 =一定
すなわち、 膜光沢による反射があった場合、 膜光沢による反射がなかった場合 と比べて、 検体による試験紙の発色、 すなわち色反射率の変化が同一であつたと しても、 膜光沢による反射によって上式の分子、 分母のいずれもがかさ上げさ れ、 反射比率の変化が小さくなつてしまう。 この結果、 測定値の測定感度および 測定精度が低下する。 ゆえに、 第 2の層の表面は、 光沢および艷がない状態であ ることが好ましい。
上記第 1の層と上記第 2の層との境界は、 該第 1の層の表面から、 上記多孔質 膜の膜厚の 1 / 5乃至 1 Z 2までの範囲にあり、 また、 上述した大孔部と小孔部 の関係から、 上記多孔質膜の断面における、 上記第 1の層の平均孔径は、 上記第 2の層の平均孔径ょりも大きい。
上記第 1の層と上記第 2の層との境界がこの範囲にあり、 上記第 1の層の平均 孔径が上記第 2の層の平均孔径ょりも大きければ、 上記検体中の濾別物を第 2の 層の表面 (測定面) から離れた位置で濾別することができ、 上記試薬を十分に担 持させることができるため好ましい。
また、 上記多孔質膜の膜厚は 5 0〜 2 0 0 m、 好ましくは 9 0〜 1 8 0 m、 より好ましくは 1 1 0〜1 5 0 mである。 上記多孔質膜の膜厚がこの範囲 であれば、 十分な膜強度が得られ、 上記濾別物による影響も少なくなり、 また上 記検体のしみ出し時間 (展開時間) が短縮され、 必要な検体量も少なくて済む理 由から好ましい。
さらに、 上記多孔質膜の空孔率は 6 0〜 9 5 %、 好ましくは 7 0〜8 0 %であ る。 上記多孔質膜の空孔率がこの範囲であれば、 上記検体および試薬を十分に担 持させることができ、 また十分な膜強度が得られる理由から好ましい。
ここで、 空孔率 (%) は、 下記式を用いて重量法により求められる。
空孔率 (%) = { i一 (乾燥膜重量 Z膜成分の比重) /膜体積 } X 1 0 0 式中、 膜とは多孔質膜のことであり、 膜成分の比重とは多孔質膜を構成するポ リマ一の比重である。
上述したように、 上記多孔質膜の断面における、 上記第 1の層の平均孔径は、 上記第 2の層の平均孔径よりも大きく、 さらに、 上記第 1の層の表面における開 口部の平均孔径 (第 1の層の表面の平均孔径) は 0 . 5〜1 0 i m、 好ましくは 1 . 0〜5 . 0 mであり、 上記第 2の層の表面における開口部の平均孔径 (第 2の層の表面の平均孔径) は 0 . 1〜3 . 0 m、 好ましくは 0 . 5〜3 . 0 u mである。
上記第 1の層の表面の平均孔径がこの範囲であれば、 検体のしみ込みが速く、 濾別物による目詰まりがない理由から好ましく、 上記第 2の層の表面の平均孔径 がこの範囲であれば、 検体の展開が速く、 上記試薬を十分に担持させることがで きる理由から好ましい。
上記多孔質膜の膜材質となるポリマーとしては、 具体的には、 例えば、 ニトロ セルロース、 ポリビニルジフロラィド、 セルロースァセテ一卜、 ポリスルホン、 ポリエーテルスルホン、 ポリエチレン等が挙げられる。 これらのうち、 ポリエー テルスルホンであることが 血糖値測定に使用する試薬を担持する場合に試薬活 性の経時的劣化が最も少ないという理由から好ましい。
また、 上記多孔質膜は、 親水化剤を担持させる、 親水性を有する膜材質から構 成する、 もしくは親水化処理を行うことが、 検体の供給、 展開させる時間を短縮 することができるという理由から好ましい。
上記親水化剤としては、 具体的には、 例えば、 トライトン X— 1 0 0 ( R o h m&H a a s社製) 等の界面活性剤、 水溶性シリコン、 ヒドロキシプロピルセル ロース、 ポリエチレングリコール、 ポリプロピレングリコール等が挙げられる。 親水化処理としては、 具体的には、 プラズマ処理、 グロ一放電、 コロナ放電、 紫 外線照射等の処理方法が好適に例示される。
さらに、 上記多孔質膜は、 上述した試薬および親水化剤以外に、 所望により電 解質 (例えば、 リン酸塩、 フタル酸塩、 コ八ク酸塩、 クェン酸塩、 ホウ酸塩、 酢 酸塩) 、 有機物 (例えば、 グリシン、 トリスヒドロキシメチルァミノメタン) を 担持していてもよい。
このような多孔質膜からなる本発明の試験紙は、 上述したように、 検体の展開 時間を短縮することができ、 かつ、 検体中の濾別物を第 2の層の表面 (測定面) から離れた位置で濾別することから測定精度が高くなるため、 成分測定用チップ の試験紙に好適に用いることができるため有用である。
また、 本発明の試験紙の形状は、 特に限定されず、 円形、 楕円形、 正方形、 長 方形、 菱形等の四角形、 三角形、 六角形、 八角形等、 必要に応じ選択して用いる ことができる。
次に、 本発明の多孔質膜について詳細に説明する。
本発明の多孔質膜は., 上述した本発明の試験紙を形成する多孔質膜に用いるこ とができる多孔質膜であり、 具体的には、 表面を有する第 1の層と、 他の表面を 有する第 2の層とを有する多孔質膜であって、
上記第 1の層が大孔部からなり、 該第 1の層の表面が開孔部を有する平滑な表 面であり、 上記第 2の層が小孔部からなり、 該第 2の層の表面が開孔部を有する 表面であって、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表面から上記 多孔質膜の膜厚の 1 Z 5乃至 1 Z 2までの範囲にあり、
さらに、 膜厚が5 0〜2 0 0 1 111、 空孔率が 6 0〜 9 5 %であり、 上記第 1の 層の表面の平均孔径が 0 . 5〜 1 0 mであり、 上記第 2の層の表面の平均孔径 力 0 . 1〜3 . 0 mである多孔質膜である。
すなわち、 本発明の多孔質膜は、 上述した本発明の試験紙を形成する多孔質膜 のうち、 上記試薬を担持していない膜であれば特に限定されない。
また、 本発明の多孔質膜は、 上記第 2の層の表面の平均孔径に対する上記第 1 の層の表面の平均孔径の比が 1〜 6であることが、 試験紙として利用した際に検 体の展開が速くなる理由から好ましく、 1〜 4であることがより好ましい。 さらに、 上述した本発明の試験紙を形成する多孔質膜と同様、 本発明の多孔質 膜は、 上記第 2の層の表面は、 光沢度が 1 1以下であることが好ましく、 より好 ましくは 3〜 1 0であり、 さらに好ましくは 3〜 8である。 第 2の層の表面の光 沢度が上記の範囲であれば、 該第 2の層の表面が、 凸凹を有し光沢および艷がな い状態である。 比色式の試験紙として利用した際の反射吸光度測定において、 表 面反射した直接光がノイズとなるので、 第 2の層の表面は、 凸凹を有し光沢およ び艷がない状態であることが好ましい。
次に、 上記多孔質膜 (本発明の試験紙を形成する多孔質膜および本発明の多孔 質膜) の製造方法について詳細に説明する。
上記多孔質膜の製造方法としては、 湿式製膜が好適に例示される。 湿式製膜の 他には、 溶融製膜、 乾式製膜等が知られているが、 一方の表面の孔径が反対側の 表面の孔径と異なる異方性膜を製造する場合、 湿式製膜により製造することが好 ましい。
上記湿式製膜は、 製膜原液を基材上に膜状に広げる製膜原液供給工程と、 該製 膜原液供給工程後の基材を凝固浴に浸漬させる凝固浴浸漬工程と、 該凝固浴浸漬 工程後の基材を水浴中で溶剤成分および Zまたは水溶性添加剤成分を除去する洗 浄工程と、 該洗浄工程後の基材を乾燥させる乾燥工程とを具備する。
上記製膜原液供給工程は、 製膜原液を基材上に膜状に塗布する工程であり、 具 体的には、 製膜原液を、 基材の表面に、 キャスト厚調整可能なアプリケ一夕を用 いて押し広げる、 もしくは塗り広げる、 もしくは T—ダイから吐出する工程であ る。
上記製膜原液としては、 膜成分となる非水溶性第 1成分ポリマ一と被抽出成分 である水溶性第 2成分とを含み、 第 1成分ポリマーの濃度が 1 2〜1 5 セ%の ものが好ましい。 非水溶性第 1成分ポリマーと水溶性第 2成分とを含んでいれ ば、 ポリマーの凝集を抑制し、 これらの成分を抽出除去したあとの空間に孔が形 成され空孔率を向上させることができるため好ましい。
上記非水溶性第 1成分ポリマ一としては、 具体的には、 例えば、 ニトロセル ロース、 ポリフッ化ビニリデン、 セル口一スアセテート、 ポリスルホン、 ポリエ チレン、 ポリエーテルスルホン等が挙げられる。 これらのうち、 ポリェ一テルス ルホンがであることが、 上述したように、 血糖値測定に使用する試薬を担持する 場合に試薬活性の経時的劣化が最も少ない理由から好ましい。
上記水溶性第 2成分としては、 具体的には、 例えば、 後述する溶媒には溶解 し、 後述する凝固浴浸漬工程後に容易に抽出除去できるポリピニルピロリドン、 ポリエチレングリコール、 ボリアクリルアミド、 ポリアクリル酸、 ヒドロキシプ 口ピルセルロース、 メチルセルロース等が挙げられる。 これらのうち、 ポリビニ ルピロリドンは、 ニトロセルロース、 ポリビニルジフロラィド、 セルロースァセ テ一卜、 ポリスルホン、 ポリエチレン、 ポリエーテルスルホンなどとは溶解せ ず、 これらのポリマ一を溶かす極性溶媒に溶解し、 凝固後には水により抽出除去 できるといった特性を有するため好ましい。
第 1成分ポリマ一と水溶性第 2成分との溶解を目的とする製膜原液の溶媒とし ては、 具体的には、 N—メチル _ 2—ピロリドン (NM P ) 、 ジメチルホルムァ ミド、 ジメチルスルホキシド、 ジメチルァセトアミド等の有機極性溶媒が挙げら れ、 N—メチルー 2—ピロリドンであることが好ましい。
' 製膜原液において、 上記第 1成分ポリマーと上記水溶性第 2成分との仕込み比 は、 1 : 1〜1 : 3であることが好ましい。 仕込み比がこの範囲であると、 小孔 部からなる第 2の層が、 多孔質膜において膜厚の半分以上の部分を占め、 空孔率 を保ち、 さらに検体のしみ出しを妨げない理由から好ましい。
なお、 上記製膜原液が基材上に塗布される時に調整されるキャスト厚は、 7 0〜2 6 0 n mであることが、 得られる多孔質膜の膜厚が上述した好適範囲に収 まる理由から好ましい。
上記基材は、 従来公知のものを用いることができ、 上記製膜原液を塗布する面 に凸凹の表面を有する基材であることが好ましい。 このような基材としては、 具 体的には、 光沢度が 1 2以下である板ガラス、 光沢度 1 2以下のマットフィル ム、 ポリエチレンテレフタレ一ト製の光沢度が 1 2以下である艷消しフィルム ( 例えば、 光沢度 1 2以下のマツトフイルム) をコートした板ガラス等が、 得られ る多孔質膜の第 2の層の表面に該基材の凸凹が転写されることになるため好適に 例示される。 ここで光沢度は、 J I S Z 8 7 4 1に準拠する。
上記凝固浴浸漬工程は、 上記製膜原液供給工程後の基材を水を含有する凝固浴 に浸漬させる工程であり、 具体的には、 上記製膜原液が塗布された基材を凝固浴 に浸漬させて、 上記第 1成分ポリマーを該基材上に析出させる工程である。
凝固浴としては、 6 0〜8 5 wZw%、 好ましくは 7 0〜8 0 wZw%の上記 製膜原液の溶媒を含有する水系凝固浴が好適に例示され、 具体的には、 N—メチ ルー 2 _ピロリドンを 6 0〜8 5 w/w%含有する水溶液であることが好まし い。 溶媒の含有率がこの範囲であれば、 上記第 1成分ポリマ一の緩慢な凝固が実 現し、 多孔質構造の膜が形成される。
また、 凝固浴中の製膜原液の溶媒の濃度が 6 0 wZw%を下回ると、 上述した 製膜原液の溶媒の添加効果が得られず、 8 5 wZw%を越えると膜が凝固しな い。
また、 上記凝固浴への基材の浸漬は、 該凝固浴の温度が 1 0〜5 0 、 好まし くは 2 0〜4 (TCで、 3〜2 0分間、 好ましくは 5〜1 0分間浸潰させることが 好ましい。 凝固浴の温度がこの範囲であれば、 第 1成分ポリマーの析出速度が適 当となり多孔質構造の膜が形成される。 また、 浸漬させる時間が 3分より短いと 第 1成分ポリマーが全て析出しないため膜が形成されず、 時間が 2 0分より長い と膜構造は変化せず生産効率が低下してしまう。
上記洗浄工程は、 上記凝固浴浸漬工程後の基材を水浴中で溶剤成分および Zま たは水溶性添加剤成分を除去する工程であり、 具体的には、 第 1成分ポリマーが 析出されて形成される膜 (以下、 単に 「第 1成分ポリマーからなる膜」 という) を、 水浴中に 1 0〜1 0 0 0分間、 好ましくは 1 5〜6 0分間浸漬させること で、 上記溶剤成分および Zまたは上記水溶性添加剤成分 (例えば、 上記溶媒、 上 記水溶性第 2成分) 等を抽出除去する工程である。
上記乾燥工程は、 上記洗浄工程後の第 1成分ポリマーからなる膜を乾燥させる 工程であり、 具体的には、 自然乾燥や電気オーブン等を用いて、 3 0〜1 0' 0 °C、 好ましくは 4 0〜 8 0 °Cで、 1分〜 2 4時間、 好ましくは 1分〜 2時間乾燥 させる方法が例示される。
このような製造方法により製造される多孔質膜は、 異方性の多孔質膜として、 検体が供給される表面を有する第 1の層と、 該検体がしみ出し測定される表面を 有する第 2の層とを有し、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表 面から上記多孔質膜の膜厚の 1 / 5乃至 1 / 2までの範囲にあるため有用であ る。
[実施例]
以下に、 実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、 本発明はこれらの 実施例に限定されるものではない。
(実施例:!〜 7、 比較例:!〜 7 ) 実施例 1〜 7および比較例 1〜 6の多孔質膜を、 以下に示す条件で製膜した。 まず、 下記表 1に示す製膜原液を、 基材上にシリンジで線状に供給し、 キャス ト厚調節可能なアプリケ一夕により、 下記表 2に示すキヤスト厚となるように塗 り広げた。
製膜原液が塗り広げられた各基材を、 下記表 2に示す凝固浴溶媒濃度、 凝固浴 温度で調製された N—メチル _ 2—ピロリドン水溶液 (NMP水溶液) からなる 凝固浴中に浸漬させ、 第 1成分ポリマーであるポリエーテルスルホンを析出させ た。 その後、 ポリエーテルスルホンからなる膜を水浴中に浸漬させ、 溶媒成分で ある N M Pおよび水溶性第 2成分であるポリビニルピロリドンを抽出除去した 後、 60°Cオーブン中で乾燥させて、 各多孔質膜を得た。
ここで、 上記基材として、 ポリエチレンテレフタレ一ト (PET) 製の光沢度 が 12以下 ( J I S Z 8741) である艷消しフィルム (マツトフイルム) を コートした板ガラスを用いた。 また、 上述したように、 第 1成分ポリマーとして ポリエーテルスルホン (スミカェクセル 5200 P、 住友化学社製) を用い、 水 溶性第 2成分としてポリピニルピロリドン (プラスドン K 29 32、 I SP社 製) を用い、 溶媒として N—メチル一2—ピロリドン (BASF社製) を用い た。
また、 比較例 7の試験紙を形成する多孔質膜として、 市販の等方性構造の膜 ( Su po r-45 OWE , 米国ポール社) を用いた。 8 表 1
Figure imgf000019_0001
表 2
Figure imgf000019_0002
各多孔質膜の、 第 1の層の表面および第 2の層の表面の平均孔径、 第 2の層の 表面の平均孔径に対する前記第 1の層の表面の平均孔径の比、 第 1の層と第 2の 層との境界の位置、 膜厚、 および、 空孔率を以下に示す方法で求めた。 結果を下 記表 3に示す。
表面の平均孔径は、 各多孔質膜の表面を走査型電子顕微鏡 ( J S M— 8 4 0日 本電子製) で撮影し、 得られた画像を画像解析装置 ( I P— 1 0 0 0 P C旭化成 製) により解析して、 視野内の孔の孔径を面積換算で円相当径として算出し、 相 加平均を表面の平均孔径とした。 また、 得られた平均孔径から、 第 2の層の表面 の平均孔径に対する前記第 1の層の表面の平均孔径の比を、 平均孔径比率として 求めた。
図 1に、 実施例 3で得られた多孔質膜の第 2の層の表面の電子顕微鏡写真を示 す。 これにより、 第 2の層の表面に凸凹な表面が形成されていることが分かる。 境界の位置は、 各多孔質膜の凍結割断面を走査型電子顕微鏡 (J S M—8 4 0 日本電子製) で撮影し、 得られた画像の断面密度から上述した大孔部および小孔 部の部分を観測することで、 第 1の層と第 2の層との境界の位置を求めた。 ここで、 断面密度の測定は、 各多孔質膜を厚さ方向に 1 0分割した各分割部分 について行った。 また、 断面密度は、 上述したように、 各多孔質膜の断面の 1 5 0 0倍電子顕微鏡写真の膜部分を、 3 0 0 d p i、 8ビットグレースケールでス キヤナ一で取り込んで行い、 取り込まれた画像を、 黒色側から 5 %.、 白色側から 5 %の黒色要素を含むスケール値の平均値を境として 2値化し、 黒色要素の割合 から求めた。
図 2に実施例 3で得られた多孔質膜の凍結割断面を示す電子顕微鏡写真を示 し、 図 3に比較例 3で得られた多孔質膜の凍結割断面を示す電子顕微鏡写真を示 し、 図 4に比較例 7の多孔質膜の凍結割断面を示す電子顕微鏡写真を示す。 膜厚は、 各多孔質膜をマイクロメーター (ミツトヨ社製) で測定した。
また、 空孔率 (%) は、 上述したように、 下記式
空孔率 (%) = { 1 - (乾燥膜重量 Z膜成分の比重) ノ膜体積 } X 1 0 0 を用いて重量法により測定した。 式中、 膜とは得られた各多孔質膜のことで あり、 膜成分の比重とは、 得られた各多孔質膜を構成するポリマーの比重であつ て、 本実施例においては、 ポリエーテルスルホンの比重 1 . 3 7を用いた。 表 3
Figure imgf000021_0001
(試験例 1 )
実施例 1〜 7および比較例 1〜 Ίの多孔質膜を用い、 試薬および親水化剤を担 持させずに次の実験を行った。
試薬および親水化剤を担持しない各多孔質膜を、 反射吸光度が測定できるよう に分光光度計 (UV—2 4 0 0 ( P C ) S 島津製作所社製) のサンプルホルダ 一に固定し、 ヒト血液を第 1の層の表面へマイクロピペット (エツペンドルフ社 製) で 5 1添加し、 第 2の層の表面の反射吸光度の時間変化を測定した。 1秒 間の反射率の変化割合が、 最終変化率の 1 %を超えた時から、 1秒間の反射率の 変化割合が 1 %を下回ったときまでの時間を展開時間 Δ tとした。 結果を下記表 4に示す。
ここで、 最終変化率とは、 測定時間 (2 6 0秒) 経過後の反射率と、 測定ス タート (0秒) 時の反射率との変化率 (変化率 1 0 0 %) のことである。 なお、 測定条件は、 測光値:反射率、 波長: 610 nm, スリット幅: 2. 0 nm、 タイミングモード:オート、 測定時間: 260秒、 サンプリングピッチ:
0. 1 s e c、 セル数: : K デ一夕数: 901であった。
(試験例 2)
実施例 1〜 7および比較例 1〜 7の多孔質膜を用い、 次の実験を行った。 各多 孔質膜に、 以下に示す試薬および親水化剤を担持させた。
試薬および親水化剤を担持させた各多孔質膜を、 反射吸光度が測定できるよう に分光光度計 (UV— 2400 (PC) S 島津製作所社製) のサンプルホル ダ一に固定し、 ヒト血液を第 1の層の表面へマイクロピペット (エツペンドルフ 社製) で 5 1添加し、 第 2の層の表面の反射吸光度の反射吸光スペクトルを測 定した。 各多孔質膜単体のスぺクトルと比較し血色素の影響の有無を判定した。 結果を下記表 4に示す。
なお、 測定条件は、 測光値:反射率、 波長範囲 (nm) : 700n m〜 500 nm、 スキャン速度:中速、 スリット Ψϊ : 2. 0 nm、 サンプリングピッチ: 1. Onmであった。
上記試薬としては、 グルコースォキシタ一ゼ (GOD) 、 ペルォキシタ一ゼ ( POD) および 4ーァミノアンチピリン、 N—ェチルー N— (2—ヒドロキシ一 3—スルホプロピル) _m—トルイジン (TOOS) を用い、 上記親水化剤とし てはトライトン X— 100を用いた。
また、 これらの試薬および親水化剤の担持方法は、 通常行われる条件等を選択 することができ、 本実施例においては、 上記試薬および親水化剤を溶解させたリ ン酸緩衝液に、 得られた各多孔質膜を浸漬させ、 該試薬および親水化剤がコート された後に乾燥することにより担持させた。
試薬および親水化剤の合計の担持量 (mgZcm2 ) は、 試薬および親水化剤 を担持させる前の各多孔質膜の重量と、 担持させた後の重量とを精秤し それら の重量の差から求めた。
Figure imgf000023_0001
Figure imgf000023_0002
(実施例 8〜 1 1 )
基材として、 サンドブラスト処理をすることで表面に凹凸をつけて光沢度をそ れぞれ 2. 9、 5. 5、 1 1. 3とした PETフィルムと、 通常の光沢のある P ETフィルム (光沢度 50 ) を、 サンドブラス卜処理したものは、 該処理面を上 にして、 未処理の P ETフィルムはそのままで、 ガラス板にはりつけて、 表 2の 実施例 4と同じ条件で成膜を行い、 基材側表面の光沢度がそれぞれ 3 (実施例 8) 、 6 (実施例 9) 、 10 (実施例 10) (以上、 サンドブラス卜処理の PE Tフィルムを使用) 、 43 (実施例 1 1) (未処理の P E Tフィルムを使用 ) の 多孔質膜を作製した。 これら多孔質膜に、 以下の試薬をコートして、 実験に供し た。
コートした試薬: G〇D、 P〇 Dおよび 4一ァミノアンチピリン .. N—ェチルー N- (2—ヒドロキシ一 3—スルホプロピル) — m—トルイジン (TOOS) . トライトン X— 100 (親水化剤)
コ一ト処理後の多孔質膜を用いて、 次の実験を行った。
評価する多孔質膜を反射吸光度が測定できるように分光光度計 (UV— 240 0 (PC) S 島津製作所社製) のサンプルホルダーに固定し、 血糖値を 100 H g/d 1および 400 β g/d 1に調整したヒト血液を第 1の層の表面へマイ クロピペット (エツペンドルフ社製) で 5 1添加し、 第 2の層の表面の反射吸 光度の反射吸光スペクトルを測定した。 得られた結果に塞づいて、 血糖値と反射 比率との関係から検量線を作成して、 その傾きを求めた。 図 5は、 検量線を示し たグラフである。 また、 各血糖値における反射比率と、 検量線の傾きを表 5に示 した。 .
3¾ 0
Figure imgf000024_0001
これらの結果から、 光沢度が 43である実施例 11の多孔質膜では、 血糖値 4 0 0 g/cl 1のヒト血液を測定した場合、 光沢度が 3〜 10である実施例 8〜 10の多孔質膜に比べて反射比率の低下が認められ、 検量線の傾きも小さくなつ ていた。 血糖値の測定が必要となるのは、 主として糖尿病患者のように血糖値が 高くなつている、 具体的にはたとえば血糖値が 400 g/d 1程度に上昇して いる患者であるため、 光沢度 11以下の多孔質膜を用いた場合、 このような高血 糖値領域における測定精度をより向上させることができる。 産業上の利用可能性
本発明の多孔質膜は、 血液測定装置の成分測定用チップの試験紙として使用す ることができる。 本発明の試験紙は、 検体の展開速度が速く、 展開時間を短くす ることができるとともに、 測色に際し、 検体中の濾別物を濾別 ·除去し、 十分な 試薬担持量を確保することができ、 より高精度の測定を行うことができるため有 用である。
特に、 反射吸光度の測定の際に、 光が当たる第 2の層の表面の光沢度が 11以 下である試験紙は、 血糖値が高い領域、 具体的には例えば、 400 xg/d l程 度、 における測定精度が特に優れている。

Claims

請 求 の 範 囲
1. 検体中の濾別物を濾別する機能を有し、 該検体中の特定成分と反応して 呈色する試薬を担持する多孔質膜からなる試験紙であって、
前記多孔質膜が、 検体が供給される表面を有する第 1の層と、 該検体がしみ出 し測定される表面を有する第 2の層とを有し、
前記第 1の層が大孔部からなり、 該第 1の層の表面が開孔部を有する平滑な表 面であり、 前記第 2の層が小孔部からなり、 該第 2の層の表面が開孔部を有する 表面であって、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表面から前記 多孔質膜の膜厚の 1/5乃至 1ノ2までの範囲にあり、
さらに、 前記多孔質膜の膜厚が 50〜200 //m、 空孔率が 60〜 95%であ り、 前記第 1の層の表面の平均孔径が 0. 5〜10 mであり、 前記第 2の層の 表面の平均孔径が 0. 1〜3. 0 mである試験紙。
2. 前記第 2の層の表面の光沢度が、 11以下である請求の範囲 1に記載の 試験紙。
3. 前記第 2の層の表面が、 凸凹を有することにより光沢および艷がない表 面である請求の範囲 1に記載の試験紙。
4. 前記多孔質膜の材質が、 ポリエーテルスルホンである請求の範囲 1に記 載の試験紙。
5. 前記検体が血液であり、 前記濾過物が赤血球を含む請求の範囲 1に記載 の試験紙。
6. 表面を有する第 1の層と、 他の表面を有する第 2の層とを有する多孔質 膜であって、
前記第 1の層が大孔部からなり、 該第 1の層の表面が開孔部を有する平滑な表 面であり 前記第 2の層が小孔部からなり 該第 2の層の表面が開孔部を有する 表面であって、 該第 1の層と該第 2の層との境界が、 該第 1の層の表面から前記 多孔質膜の膜厚の 1/5乃至 1Z2までの範囲にあり、
さらに、 膜厚が 50〜200 m, 空孔率が 60〜95%であり、 前記第 1の 層の表面の平均孔径が 0. 5〜 10 mであり、 前記第 2の層の表面の平均孔径 が 0. 1〜3. 0 mである多孔質膜。
7. 前記第 2の層の表面の平均孔径に対する前記第 1の層の表面の平均孔径 の比が、 1〜 6である請求の範囲 6に記載の多孔質膜。
8. 前記第 2の層の表面の光沢度が、 11以下である請求の範囲 6に記載の 多孔質膜。
9. 前記第 2の層の表面が、 凸凹を有することにより光沢および艷がない表 面である請求の範囲 6に記載の多孔質膜。
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