WO2004026282A1 - Thermolabiles liposom mit geregelter freigabetemperatur - Google Patents

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Hansjörg EIBL
Lars H. Lindner
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    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10—Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents

Definitions

  • the invention relates to a thermolabile liposome with a regulated release temperature for the liposome content, in particular a liposome stable at 37 ° C. in serum with a regulated release temperature between 40 and 80 ° C.
  • Liposomes are artificially formed vesicles from lipid bilayers which enclose an aqueous compartment (Bangham et al., 1 965). Originally used as a model system for a cell membrane, liposomes have recently been further developed primarily for the transport of drugs. Liposomes can increase the tolerability of active ingredients (reduction of the active toxicity of amphothericin B by liposomal formulation (AmBisome ® ) by a factor of 75 (Proffitt et al., 1 991)). However, they also open up the possibility of specifically transporting medicinal substances into diseased tissue (Forssen et al., 1 992).
  • liposomes are mainly taken up in cells of the reticuloendothelial system (RES) of the liver and spleen (Gregoriadis and Nerunhun, 1 974).
  • RES reticuloendothelial system
  • spleen a reticuloendothelial system
  • tumors which are often very well vascularized (Jain, 1 996) and whose vessels are particularly permeable due to widened interendothelial connections, a large number of fenestrations and discontinuous basement membranes (Murray and Carmichael, 1 995), the probability of uptake would increase This massively increases liposomes.
  • the invention is therefore based on the object of providing a liposome which has a significantly improved half-life in serum compared to the usual half-life of known liposomes in the order of 4 hours, and which is such that the content of the liposomes is at a certain temperature is released quickly.
  • a liposome with a regulated release temperature for the liposome content which is characterized in that it consists essentially of at least one phosphatidylcholine with a main transition temperature in the range from 0 to 80 ° C and more than 15 to 70 wt. -% Phosphatidyloligoglycerin is formed.
  • a liposome with a regulated release temperature for the liposome content which is characterized in that it consists essentially of at least one phosphatidylcholine with a main transition temperature in the range from 0 to 80 ° C and more than 15 to 70 wt. -% Phosphatidyloligoglycerin is formed.
  • the liposomes according to the invention additionally contain smaller amounts Alkylphosphocholines, preferably 10 to 15% by weight.
  • Suitable substances include hexadecylphosphocholine, oleylphosphocholine and ether lysolecithins.
  • the hydroxyl group in position 2 of the glycerol can be methylated or free.
  • the alkylphosphocholines have an antitumor effect due to temperature-dependent release from the liposomes.
  • Liposomes constructed according to the invention have significantly improved half-lives of up to more than 25 hours in the serum and can, by suitable selection of the components and amounts of the components depending on their main transition temperature, release the ingredient (s) quickly and completely at a predetermined temperature ,
  • the liposome according to the invention is preferred from about 20 to 75% by weight dipalmitoyl lecithin (1, 2-dipalmitoylglycero-3-phosphocholine), about 10 to 25% by weight distearoyl lecithin (1, 2-distearoylglycero-3-phosphocholine) and more than 15 to about 50 wt .-% dipalmitoylphosphoglyceroglycerin composed.
  • dipalmitoyl lecithin 1, 2-dipalmitoylglycero-3-phosphocholine
  • distearoyl lecithin 1, 2-distearoylglycero-3-phosphocholine
  • dipalmitoylphosphoglyceroglycerin composed.
  • Such a preferred composition is stable at 37 ° C in the serum, but releases the content quickly when the temperature exceeds 40 ° C.
  • Another preferred composition with improved release of the substances enclosed in the liposome consists of about 15 to 70% by weight of dipalmitoyl lecithin, about 10 to 25% by weight of distearoyl lecithin and more than 15 to about 45% by weight of dipalmitoylphosphoglyceroglycerin.
  • the above-mentioned preferred composition of the liposome according to the invention can be tailored for other temperature ranges by choosing components with the most suitable main transition temperature.
  • Table 1 shows the main transition temperatures (T M ) of phosphatidylcholines, the main transition temperatures of which are in the range from 0 to 80 ° C. The main transition temperatures can be seen from the table, depending on the chain length and the distribution over positions 1 and 2 of glycero-3-phosphocholine or over positions 1 and 3 of glycero-2-phosphocholine.
  • the values listed in Table 1 show that by using fatty acids with an odd chain length and suitable distribution over the basic glycerol structure, practically any desired temperature in the specified range from 0 to 80 ° C. can be set.
  • the phosphatidyl oligoglycerol content in the liposome according to the invention is essential for the long circulation time required in the serum.
  • Phosphatidyl oligoglycerols and their preparation are known from DE 1 96 22 224. Dipalmitoylphosphoglyceroglycerin (DPPG2) is preferably used.
  • thermolabile liposomes according to the invention are outstandingly suitable for use in various fields, but especially in the context of regional deep hyperthermia.
  • Regional deep hyperthermia which is used in combination with systemic chemotherapy at specialized clinical centers, is an ideal technique for tumor-specific liposomal transport and the subsequent release of a drug from the liposomal envelope.
  • hyperthermia promotes the extravasation of liposomes from tumor capillaries into the interstitium (Gaber et al., 1 996).
  • warming can induce a release of the drug from special thermosensitive liposomes (Magin and Niesman, 1 984).
  • thermolability of the liposomes according to the invention is caused by the phase change of the phospholipids within the liposome membrane. If the phase transition temperature is passed through, there is a brief membrane instability and subsequent release of the liposomal content.
  • the tumor is regionally overheated, so that the temperature is above the limit temperature
  • the liposome content here is, in particular, active ingredients which can be used in oncology, such as, for example Cytostatics.
  • contrast agents such as gadolinium, for example Magnevist ® can MultiHance ® or Omniscan ®, carboxyfluorescein, iodine-containing contrast agents, which are derived sfch of pyridines or aromatic carboxylic acids, or the like. released alone or together with an active ingredient.
  • the temperature-dependent release of gadolinium from the liposomes can be visualized by means of an altered T1 time using an MRI (0.2 or 1.5 Teslar).
  • a non-invasive thermometry is made possible, in which the temperature reached can be determined by MRC, which measures the released gadolinium.
  • MRC which measures the released gadolinium.
  • a hyperthermia device coupled with an MRC device is expediently used. It is also conceivable to use liposomes with an iodine-containing contrast medium for imaging in computer tomography (for example for the thermoablation of liver metastases).
  • liposomes according to the invention can be found in ophthalmology.
  • a fluorescent labeling substance e.g. in the case of laser treatment by releasing the fluorescent active substance, e.g. Carboxyfluorescein, prove where the desired overheating actually occurred.
  • liposomes according to the invention can therefore generally be used to make it possible to subsequently determine the temperatures reached, e.g. when certain heating temperatures or the like. should be determined.
  • the liposomes according to the invention essentially consist of the substances specified above, which are preferably in pure form.
  • Impurities should be kept as low as possible, in particular the cholesterol content should be as low as possible.
  • Liposomes that are completely free of cholesterol since cholesterol leads to smearing of the phase transition temperature and thus to a too wide thermal transition range.
  • thermolabile liposomes according to the invention are prepared in a conventional manner by dissolving the lipids, e.g. in chloroform or chloroform / water / isopropanol, stripping off the solvent, advantageously in vacuo in a rotary evaporator, annealing the lipids with aqueous solutions of the ingredients to be encapsulated at temperatures which are above the phase transition temperature.
  • the duration of this tempering treatment is expediently 30 to 60 minutes, but it can also be shorter or longer. Homogenization takes place by repeated freeze-thawing processes, for example 2 to 5 times freezing and thawing again.
  • lipid suspension obtained is extruded through a membrane of defined pore size at a temperature above the phase transition temperature in order to achieve the desired liposome size.
  • Suitable membranes are, for example, polycarbonate membranes with a defined pore size, such as 100 to 200 nm.
  • non-encapsulated contents may be used, such as column chromatography, column chromatography or the like.
  • Figure 1 shows the values obtained for the in vitro CF release from thermolabile liposomes.
  • Liposome composition :
  • Figure 2 shows how the release temperature of DDPG 2 / DSPC / DPPC liposomes is influenced by varying the proportion of DSPC at the expense of DPPC.
  • Figure 3 shows the improvement in CF release from DPDG 2 / DSPC / DPPC liposomes by increasing the proportion of DPPG 2 at the expense of DPPC (constant proportion of DSPC at 20%).
  • Figure 4 shows the photon correlation spectroscopy (PCS) of liposomes from 30% by weight DPPG 2 , 20% by weight DSPC and 50% by weight DPPC (average size: 175 nm).
  • PCS photon correlation spectroscopy
  • Example 1 a The liposomes listed in Table 2 are prepared in the manner described above.
  • Chamber model The chamber model of the Syrian hamster (A-Mel-3 melanoma of the Syrian hamster) is suitable for intravital microscopic detection of caroxyfluorescein (CF) release from thermolabile liposomes in the hyperthermia field.
  • a transparent, dorsal skin chamber is implanted in a Syrian golden hamster. After the skin chamber has been implanted, cells of the hamster's A-Mel-3 melanoma are implanted on the subcutaneous tissue in the chamber.
  • a tumor of several millimeters in size grows within the hamster's dorsal skin.
  • the microcirculation as well as the fluorescence accumulation within the tumor can be observed with a modified vital microscope.
  • the animals also receive a central venous catheter. With the help of a heat exchanger located under the skin chamber, the tumor can be locally heated to 42 ° C. The tumor temperature can be measured directly using a temperature probe (Endrich, 1 988).

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Abstract

Die Erfindung betrifft ein thermolabiles Liposom mit geregelter Freigabetemperatur für den Liposomeninhalt, insbesondere ein bei 37°C in Serum stabiles Liposom mit einer geregelten Freigabetemperatur zwischen 40 und 80°C.

Description

Thermolabiles Liposom mit geregelter Freigabetemperatur
Beschreibung
Die Erfindung betrifft ein thermolabiles Liposom mit geregelter Freigabetemperatur für den Liposomeninhalt, insbesondere ein bei 37 °C in Serum stabiles Liposom mit einer geregelten Freigabetemperatur zwischen 40 und 80 °C.
Liposomen sind künstlich gebildete Vesikel aus Lipiddoppelschichten, welche ein wässriges Kompartiment einschließen (Bangham et al., 1 965). Ursprünglich noch als Modellsystem für eine Zellmembran genutzt, wurden Liposomen in jüngster Zeit vor allem für den Arzneistofftransport weiterentwickelt. Liposomen können dabei die Verträglichkeit von Wirkstoffen steigern (Senkung der aktiven Toxizität von Amphothericin B durch liposomale Formulierung (AmBisome®) um den Faktor 75 (Proffitt et al., 1 991 )) . Sie eröffnen aber auch die Möglichkeit, Arzneistoffe gezielt in erkranktes Gewebe zu transportieren (Forssen et al., 1 992) . Nach intravenöser Applikation werden Liposomen hauptsächlich in Zellen des retikuloendothelialen Systems (RES) der Leber und Milz aufgenommen (Gregoriadis und Nerunhun, 1 974). Um Liposomen als Arzneistoffträger für Zellen außerhalb des RES nutzen zu können, versuchte man die Zirkulationszeit der Liposomen im Blut zu erhöhen. Vor allem in Tumoren, die häufig sehr gut vaskularisiert sind (Jain, 1 996) und deren Gefäße durch geweitete interendotheliale Verbindungen, eine große Anzahl von Fenestrierungen sowie diskontinuierliche Basalmembranen (Murray and Carmichael, 1 995) besonders durchlässig sind, würde sich die Aufnahmewahrscheinlichkeit von Liposomen dadurch massiv erhöhen.
Ein erstes Problem bei der Verwendung von Liposomen zum Transport von Wirkstoffen oder Markierungsstoffen in Körperflüssigkeiten liegt daher in der Erhöhung der Zirkulationszeit im Serum. Man hat zwar bereits gefunden, dass durch kovalente Bindung von Methoxypolyethylenglykolen an die Liposomenmembran die frühzeitige Erkennung der Liposomen durch das RES verhindert wird und damit die Zirkulationszeit der Liposomen verbessert werden kann. Neben einer Verbesserung der Zirkulationszeit besteht jedoch auch ein großes Interesse an einer Möglichkeit, durch Temperatureinwirkung eine gezielte Freigabe der Liposomeninhaltsstoffe bei bestimmter Temperatur zu erreichen.
Der Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, ein Liposom bereitzustellen, welches eine wesentlich verbesserte Halbwertszeit im Serum aufweist, verglichen mit der üblichen Halbwertszeit bekannter Liposomen in der Größenordnung um 4 Stunden, und welches so beschaffen ist, dass der Inhalt der Liposomen bei einer bestimmten Temperatur rasch freigesetzt wird.
Gelöst wird diese Aufgabe gemäß der vorliegenden Erfindung durch ein Liposom mit geregelter Freigabetemperatur für den Liposomeninhalt, welches dadurch gekennzeichnet ist, dass es im Wesentlichen aus m i n d e s t e n s e i n e m P h o s p h a t i d y l c h o l i n m i t e i n e r Hauptumwandlungstemperatur im Bereich von 0 bis 80 °C und mehr als 1 5 bis 70 Gew.-% Phosphatidyloligoglycerin gebildet ist. Gemäß einem älteren Vorschlag war es lediglich möglich, Liposomen mit einem maximalen Phosphatidyloligoglycerin-Gehlt von 15 Gew.-% zu erhalten. Nunmehr wurde jedoch überrschenderweise gefunden, dass es möglich ist, den Phosphatidyloligoglyceringehalt bis zu 70 % zu erhöhen, sodass der Bereich der erzielbaren Freigabetemperaturen der Liposomen noch mehr erweitert wird, aber vor allem die Halbwertszeiten nochmals verbessert werden.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform enthalten die erfindungsgemäßen Liposomen zusätzlich geringere Mengen an Alkylphosphocholinen, vorzugsweise 10 bis 1 5 Gew.-% . Geeignete Substanzen sind z.B. Hexadecylphosphocholin, Oleylphosphocholin sowie Etherlysolecithine. Bei den Etherlysolecithinen kann die Hydroxylgruppe in Position 2 des Glycerins methyliert oder frei vorliegen. Bei dieser Ausführungsform gelingt es, die Freisetzung der im Liposom eingeschlossenen Substanzen von etwa 70 % ohne den Gehalt an Alkylphosphocholin auf praktisch 100 % zu erhöhen, was auf eine Beschleunigung der Liposomenöffnung zurückzuführen ist. Des Weiteren weisen die Alkylphosphocholine einen antitumoralen Effekt durch temperaturabhängige Freisetzung aus den Liposomen auf.
Erfindungsgemäß aufgebaute Liposomen weisen wesentlich verbesserte Halbwertszeiten von bis zu mehr als 25 Stunden im Serum auf und können durch geeignete Wahl der Komponenten und Mengen der Komponenten in Abhängigkeit von deren Hauptumwandlungstemperatur den (oder die) lnhaltsstoff(e) bei einer vorbestimmten Temperatur rasch und vollständig freigeben.
Bevorzugt ist das erfindungsgemäße Liposom aus etwa 20 bis 75 Gew.-% Dipalmitoyllecithin (1 ,2-Dipalmitoylglycero-3-phosphocholin), etwa 10 bis 25 Gew.-% Distearoyllecithin (1 ,2-Distearoylglycero-3-phosphocholin) und mehr als 15 bis etwa 50 Gew.-% Dipalmitoylphosphoglyceroglycerin zusammengesetzt. Eine solche bevorzugte Zusammensetzung ist bei 37 °C im Serum stabil, gibt jedoch den Inhalt bei Überschreiten einer Temperatur von 40 °C rasch frei.
Eine weitere bevorzugte Zusammensetzung mit verbesserter Freigabe der im Liposom eingeschlossenen Substanzen besteht aus etwa 1 5 bis 70 Gew.-% Dipalmitoyllecithin, etwa 10 bis 25 Gew.-% Distearoyllecithin und mehr als 1 5 bis etwa 45 Gew.-% Dipalmitoylphosphoglyceroglycerin. Die vorstehend genannte bevorzugte Zusammensetzung des erfindungsgemäßen Liposoms lässt sich für andere Temperaturbereiche maßschneidern durch Wahl von Komponenten mit der jeweils geeigneten Hauptumwandlungstemperatur. In Tabelle 1 sind die Hauptumwandlungstemperaturen (TM) von Phosphatidylcholinen angegeben, deren Hauptumwandlungstemperaturen im Bereich von 0 bis 80 °C liegen. Die Hauptumwandlungstemperaturen sind wie aus der Tabelle erkennbar, abhängig von der Kettenlänge und der Verteilung über die Positionen 1 und 2 von Glycero-3-phosphocholin oder über die Positionen 1 und 3 von Glycero-2-phosphocholin.
Tabelle 1
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Die in der Tabelle 1 aufgeführten Werte zeigen, dass durch Verwendung von Fettsäuren mit ungerader Kettenlänge und geeigneter Verteilung über das Glyceringrundgerüst praktisch jede gewünschte Temperatur im angegebenen Bereich von 0 bis 80 °C eingestellt werden kann. Der Gehalt an Phosphatidyloligoglycerinen im erfindungsgemäßen Liposom ist essenziell für die erforderliche lange Zirkulationszeit im Serum. Phosphatidyloligoglycerine und ihre Herstellung sind bekannt aus der DE 1 96 22 224. Bevorzugt wird Dipalmitoylphosphoglyceroglycerin (DPPG2) verwendet.
Die erfindungsgemäßen thermolabilen Liposomen eignen sich hervorragend für die Anwendung auf verschiedenen Gebieten, insbesondere aber im Rahmen der regionalen Tiefenhyperthermie . Die regionale Tiefenhyperthermie, die in Kombination mit systemischer Chemotherapie an spezialisierten klinischen Zentren angewendet wird, bietet sich als ideale Technik für den tumorspezifischen liposomalen Transport und die anschließende Freisetzung eines Arzneistoffs aus der liposomalen Hülle an. So fördert die Hyperthermie zum einen die Extravasation von Liposomen aus Tumorkapillaren in das Interstitium (Gaber et al., 1 996) . Zum anderen kann durch die Erwärmung eine Freisetzung des Arzneistoffs aus speziellen thermosensitiven Liposomen induziert werden (Magin und Niesman, 1 984) . Zusätzlich gibt es zahlreiche Hinweise für einen gesteigerten zytotoxischen Effekt von Zytostatika (Hahn et al., 1 975) sowie einer Immunmodulation (Aktivierung von NK-Zellen; Multhoff et al., 1 999) durch regionale Tiefenhyperthermie.
Die Thermolabilität der erfindungsgemäßen Liposomen wird durch die Phasenumwandlung der Phospholipide innerhalb der Liposomenmembran bedingt. Wird die Phasenumwandlungstemperatur durchlaufen, so kommt es zu einer kurzzeitigen Membraninstabilität und anschließenden Freisetzung des liposomalen Inhalts.
Bei der oben erwähnten regionalen Hyperthermie wird der Tumor regional spezifisch überwärmt, sodass die Temperatur über der Grenztemperatur zur
Freisetzung des Liposomeninhalts ansteigt. Als Liposomeninhalt kommen hierbei insbesondere in der Onkologie anwendbare Wirkstoffe, wie z.B. Zytostatika, in Betracht. Jedoch können auch Kontrastmittel, beispielsweise Gadolinium, z.B. Magnevist®, Multihance® oder Omniscan®, Carboxyfluorescein, jodhaltige Kontrastmittel, die sfch von Pyridinen oder aromatischen Carbonsäuren ableiten, o.dgl. allein oder zusammen mit einem Wirkstoff zur Freisetzung gebracht werden. Die temperaturabhängige Freisetzung von Gadolinium aus den Liposomen lässt sich durch eine veränderte T1 -Zeit mit Hilfe eines MRT darstellen (0,2 bzw. 1 ,5 Teslar). Durch Verwendung von Kontrastmitteln, wie Gadolinium, wird eine nicht invasive Thermometrie möglich gemacht, bei der die erreichte Temperatur durch MRC bestimmt werden kann, die das freigesetzte Gadolinium misst. Bei dieser Anwendung der erfindungsgemäßen Liposomen wird zweckmäßig ein Hyperthermiegerät mit einem MRC-Gerät gekoppelt angewendet. Eine Verwendung von Liposomen mit jodhaltigem Kontrastmittel für die Darstellung in der Computertomographie (beispielsweise für die Thermoablation von Lebermetastasen) ist auch denkbar.
Eine weitere Anwendungsart für die erfindungsgemäßen Liposomen findet sich in der Augenheilkunde. Bei Einkapselung einer fluoreszierenden Markierungssubstanz lässt sich z.B. bei einer Laserbehandlung durch Freisetzung des fluoreszierenden Wirkstoffes, wie z.B. Carboxyfluorescein, nachweisen, wo die angestrebte Überwärmung tatsächlich aufgetreten ist.
Analog zu der am Auge erläuterten Einsatzmöglichkeit können daher erfindungsgemäße Liposomen generell dazu verwendet werden, erreichte Temperaturen nachträglich bestimmbar zu machen, z.B. wenn bestimmte Erhitzungstemperaturen o.dgl. festgestellt werden sollen.
Die erfindungsgemäßen Liposomen bestehen im Wesentlichen aus den oben angegebenen Substanzen, die bevorzugt in reiner Form vorliegen.
Verunreinigungen sollten möglichst gering gehalten werden, insbesondere sollte ein möglichst geringer Cholesteringehalt vorliegen. Bevorzugt werden Liposomen, die völlig frei von Cholesterin sind, da Cholesterin zu einer Verschmierung der Phasenumwandlungstemperatur führt und damit zu einem zu breiten thermischen Übergangsbereich.
Die Herstellung der erfindungsgemäßen thermolabilen Liposomen erfolgt in üblicher Weise durch Auflösen der Lipide, z.B. in Chloroform oder Chloroform/Wasser/Isopropanol, Abziehen des Lösungsmittels, zweckmäßig im Vakuum im Rotationsverdampfer, Tempern der Lipide mit wässrigen Lösungen der einzukapselnden Inhaltsstoffe bei Temperaturen, die über der Phasenumwandlungstemperatur liegen. Die Dauer dieser Temperungsbehandlung beträgt zweckmäßig 30 bis 60 Minuten, kann jedoch aber auch kürzer oder länger sein. Durch mehrfach wiederholte Einfrier-Auftau-Vorgänge, beispielsweise 2- bis 5-faches Einfrieren und wieder Auftauen, erfolgt eine Homogenisierung. Schließlich wird die erhaltene Lipidsuspension durch eine Membran definierter Porengröße bei einer Temperatur über der Phasenumwandlungstemperatur extrudiert, um die angestrebte Liposomengröße zu erreichen. Als Membran eignen sich beispielsweise Polycarbonatmembranen definierter Porengröße, wie 100 bis 200 nm. Schließlich kann gegebenenfalls nicht eingekapselter I n h a lts sto f f a b g etre n nt we rd e n , b e is p i e l s we i s e d u rc h Säulenchromatographie o.dgl.
Die folgenden Abbildungen und Beispiele erläutern die Erfindung weiter.
Abbildung 1 zeigt die erhaltenen Werte der in vitro CF-Freisetzung aus thermolabilen Liposomen.
Liposomenzusammensetzung:
DPPG:DSOC:DPPG2 = 3:2:5
Große Stabilität in Gegenwart von Serum bei 37 C (CF-Freisetzung nach 18 Stunden < 7 %) . Abbildung 2 zeigt die Beeinflussung der Freisetzungstemperatur von DDPG2/DSPC/DPPC-Liposomen durch Variation des Anteils des DSPC auf Kosten von DPPC.
Abbildung 3 zeigt die Verbesserung der CF-Freisetzung aus DPDG2/DSPC/DPPC-Liposomen durch Erhöhung des Anteils an DPPG2 auf Kosten von DPPC (konstanter Anteil an DSPC mit 20 %).
Abbildung 4 zeigt die Photonenkorrelationsspektroskopie (PCS) von Liposomen aus 30 Gew.-% DPPG2, 20 Gew.-% DSPC und 50 Gew.-% DPPC (mittlere Größe: 175 nm).
Beispiel 1 a) In der oben beschriebenen Weise werden die in der Tabelle 2 aufgeführten Liposomen hergestellt.
Tabelle 2
DPPG230 % DSPC 0 % DPPC 70 %
DPPG230 % DSPC 10 % DPPC 60 %
DPPG230 % DSPC 20 % DPPC 50 %
DPPG230 % DSPC 30 % DPPC 40 %
DPPG210 % DSPC 0 % DPPC 90 %
DPPG210 % DSPC 10 % DPPC 80 %
DPPG210 % DSPC 20 % DPPC 70 %
DPPG210 % DSPC 30 % DPPC 60 %
DPPG20 % DSPC 20 % DPPC 80 %
DPPG210 % DSPC 20 % DPPC 70 %
DPPG220 % DSPC 20 % DPPC 60 %
DPPG230 % DSPC 20 % DPPC 50 %
DPPG240 % DSPC 20 % DPPC 40 %
DPPG250 % DSPC 20 % DPPC 30 %
DPPG280 % DSPC 20 % DPPC 0 °/b
DSPG210 % DPPC 90 %
DSPG220 % DPPC 80 %
DSPG230 % DPPC 70 %
DSPG310 % DPPC 90 %
DSPG320 % DPPC 80 %
DPPG230 % DSPC 20 % DPPC 40 % 1 PPC 10 %
DPPG230 % DSPC 20 % DPPC 30 % 1 PPC 20 %
DSPG220 % DPPC 70 % 1SPC 10 %
DSPG220 % DPPC 60 % 1SPC 20 %
DSPG220 % DPPC 70 % Hexadecyl-PC 10 %
DSPG220 % DPPC 60 % Hexadecyl-PC 20 %
DSPG220 % DPPC 70 % Octadecyl-PC 10 %
DSPG220 % DPPC 60 % Octadecyl-PC 20 %
DSPG210 % DPPC 80 % Et-18 OCH3PC 10 %
DSPG210 % DPPC 70 % EM 8 OCH3PC 20 %
DSPG210 % DPPC 60 % Et-18 OCH,PC30 % Abkürzungen: DDPC = 1 ,2-Dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholin DSPC = 1 ,2-Distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholin DPPG2 = 1 ,2-DipalmitoyI-sn-glycero-3-p ospho-diglycerin DSPG2 = 1 ,2-Distearoyl-sn-glycero-3-p ospho-diglycerin DSPG3 = 1 ,2-Distearoyl-sn-glycero-3-phospho-triglycerin 1 PPC = 1 -Palmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholin 1 SPC = 1 -Stearoyl-sn-glycero-3-phosphocholin
EM 8 OCH3PC 1 -Octadecyl-2-methyl-glycero-3-phosphocholin
Sie enthalten eingekapseltes Carboxyfluorescein. Freies Carboxyfluorescein wurde vorher durch Säulenchromatographie mit Sephadex G75 abgetrennt.
b) Chamber Modell: Zur intravitalmikroskopischen Detektion der Caroxyfluorescein (CF)- Freisetzung aus thermolabilen Liposomen im Hyperthermiefeld eignet sich das Chambermodell des syrischen Hamsters (A-Mel-3-Melanom des syrischen Hamsters) . Hierbei wird einem syrischen Goldhamster eine transparente, dorsale Hautkammer implantiert. Nach Implantation der Hautkammer erfolgt die Implantation von Zellen des A-Mel-3-Melanoms des Hamsters auf das in der Kammer befindliche Subkutangewebe. Innerhalb von wenigen Tagen wächst innerhalb der Rückenhaut des Hamsters ein Tumor von mehreren Millimeter Größe. Die MikroZirkulation sowie die Fluoreszenzanreicherung innerhalb des Tumors kann mit einem modifizierten Vitalmikroskop beobachtet werden. Die Tiere erhalten zusätzlich einen zentralen Venenkatheter. Mit Hilfe eines unter der Hautkammer befindlichen Wärmetauschers kann lokal eine Erwärmung des Tumors auf 42 °C erreicht werden. Die Tumortemperatur kann mit Hilfe einer Temperatursonde direkt gemessen werden (Endrich, 1 988) .
Neben der Vitalmikroskopie ist auch das Verfahren der MRT-Messung am Chamber-Modell etabliert (Pahernik et al., 1 999). Hierbei können analog zur Mikroskopie MRT-Bilder aufgenommen werden. Die erhaltenen Werte der in vitro CF-Freisetzung sind in Abbildung 1 gezeigt. Ferner ist die Beeinflussung der Freisetzungstemperatur von DPPG2/DSPC/DPPC-Liposomen durch Variation des Anteils an DSPC auf Kosten von DPPC in Abbildung 2 gezeigt. Die Verbesserung der CF- Freisetzung aus DPPG2/DSPC/DPPC-Liposomen durch Erhöhung des Anteils an DPPG2 auf Kosten von DPPC (konstanter Anteil an DSPC mit 20 %) ist in Abbi ld un g 3 g ezeigt. Ü berd ies ist eine Photonenkorrelationsspektroskopie von DPPG2/DSPC/DPPC-Liposomen in Abbildung 4 gezeigt.

Claims

Ansprüche
1. Thermolabiles Liposom mit geregelter Freigabetemperatur für den Liposomeninhalt, d a d u rc h g e ke n n ze i c h n et, dass es im Wesentlichen aus mindestens einem Phosphatidylcholin mit einer Hauptumwandlungstemperatur im Bereich von 0 bis 80 °C und mehr als 15 bis 70 Gew.-% Phosphatidyloligoglycerin gebildet ist.
2. Liposom nach Anspruch 1, d a d u rc h g e ke n n ze i c h n et , dass es mindestens ein Phosphatidylcholin, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus 1 -Palmitoyl-2-olioylglycero-3-phosphocholin,
1 -Stearoyl-2-olioyl-3-phosphocholin, 1 -Palmitoyl-2-lauroylglycero-3- phosphocholin, 1-Behenoyl-2-olioyIglycero-3-phosphocholin, 1- Stearoyl-2-lauroylgIycero-3-phosphochoIin, 1 ,3-Dimyristoylglycero-2- phosphocholin, 1 ,2-Dimyristoylglycero-3-phosphocholin, 1 -Palmitoyl- 2-myristoylgIycero-3-phosphocholin, 1 -Stearoyl-2-myristoylglycero-
3-phosphocholin, 1-Myristoyl-2-palmitoylglycero-3-phosphochoIin, 1 ,3-Palmitoylglycero-2-phosphocholin, 1 ,2-DipaImitoylglycero-3- phosphocholin, 1 -MyristoyI-2-stearoylglycero-3-phosphocholin, 1 - Stearoyl-3-myristoyIgIycero-2-phosphocholin, 1 -Stearoyl-2- palmitoylglycero-3-phosphocholin, 1 -PaImitoyl-2-stearoylglycero-3- phosphocholin, 1 ,3-DistearoylgIycero-2-phoshocholin, 1,2- DistearoyIgIycero-3-phosphocholin, 1 ,2-Diarachinoylglycero-3- phosphocholin, 1,2-Dibehenoylglycero-3-phosphocholin und 1,2- DiIignoceroylglycero-3-phosphocholin, enthält.
3. Liposom nach Anspruch 1 oder 2, d a d u rc h g e ke n n ze i c h n et , d a s s e s a l s P h o s p h a t i d y l o l i g o g l y c e r i n Dipalmitoylphosphoglyceroglycerin enthält.
4. Liposom nach einem der vorhergehenden Ansprüche, d a d u rc h g e ke n n zei c h n et , dass es im Wesentlichen aus 20 bis 75 % Dipalmitoyllecithin (DPPC), 10 bis 25 % Distearoyllecithin (DSPC) und mehr als 15 bis 50 % Dipalmitoylphosphoglyceroglycerin (DPPG2) besteht.
5. Liposom nach einem der vorhergehenden Ansprüche, d a d u rc h g e ke n n z e i c h n et, dass es zusätzlich bis 15 % mindestens eines Alkylphosphocholins enthält.
6. Liposom nach Anspruch 5, d a d u rc h g e ke n n z e i c h n et , dass es 10 bis 15 % mindestens einer der Verbindungen
Hexadecylphosphocholin, Oleoylphosphocholin oder Etherlysolecithin enthält.
7. Liposom nach einem der vorhergehenden Ansprüche, d a d u rc h g e ke n n z e i c h n et , dass es kein Cholesterin enthält.
8. Liposom nach einem der vorhergehenden Ansprüche, d a d u rc h g e ke n n ze i c h n et , dass es einen Wirkstoff oder/und eine Markierungssubstanz enthält.
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