WO2003056333A1 - Methode de dosage immunologique et trousse de reactif de dosage immunologique destinee a etre utilisee dans ladite methode - Google Patents

Methode de dosage immunologique et trousse de reactif de dosage immunologique destinee a etre utilisee dans ladite methode Download PDF

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measuring
antibody
antigen
reaction
reaction system
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PCT/JP2002/013871
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Akihito Kamei
Noriko Kenjo
Tatsuro Kawamura
Mahito Hirai
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Matsushita Electric Industrial Co., Ltd.
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Definitions

  • the present invention relates to an immunoreaction measurement method capable of measuring the content of an antigen or an antibody as a substance to be measured in a sample and an immunoreaction measurement reagent kit used therefor.
  • an immunoassay method (hereinafter abbreviated as an absorptiometric method), an immunoturbidimetric method (hereinafter abbreviated as an absorptive method) for detecting an aggregate of an antigen-antibody complex generated by an antigen-antibody reaction (hereinafter, referred to as an agglutinated complex)
  • Measurement methods such as the turbidimetric method and the slide agglutination method are well known. Since these measurement methods are performed in a state in which the antigen and the antibody are uniformly dispersed in the solution, they are collectively referred to as “homogeneous immunoreaction measurement method”.
  • the reaction system becomes turbid due to the formation of an aggregation complex.
  • the degree of turbidity generated in the reaction system due to the formation of the aggregated complex depends on the amount of the antigen and the amount of the antibody.
  • the nephelometry and the nephelometry are optical methods for measuring the degree of turbidity occurring in the above-mentioned reaction system, and calculating the amount of antigen or antibody from the measured value.
  • the nephelometry measures the degree of turbidity generated in the reaction system based on the amount of light scattered by the reaction system, and the turbidimetry measures the amount of transmitted light reduced by the scattering in the reaction system.
  • the nephelometric method measures the degree of turbidity generated in the reaction system based on the amount of light scattered by the reaction system
  • the turbidimetry measures the amount of transmitted light reduced by the scattering in the reaction system.
  • it can be measured in the same reaction system.
  • a reaction system that can be measured by either the nephelometry or the nephelometry Can also be measured.
  • the slide agglutination method is a method in which a solution in the reaction system where turbidity has occurred due to the formation of an aggregated complex is collected on a slide glass or the like, and the degree of turbidity generated in the reaction system is visually determined. .
  • the same reaction system as the nephelometry and the nephelometry can be used for the slide aggregation method.
  • a method is widely used in which polyethylene glycol (PEG) having an average molecular weight of 6.0 ° 0 is added to a concentration of 2 to 6% by weight in a reaction system.
  • PEG polyethylene glycol
  • the method in which polyethylene glycol having an average molecular weight of 6,000 is added so as to have a concentration of 4% by weight in the reaction system is said to reduce the non-specific turbidity other than the aggregated complex and to enhance the above effect.
  • the degree of the antigen-antibody reaction ie, the concentration of the antigen
  • Stable measurement can be performed.
  • a water-soluble polymer was used at a higher concentration or a high-molecular weight water-soluble polymer was added to the reaction system, The viscosity of the solution in the reaction system in which the reactive polymer is dissolved increases. This makes it difficult to handle in measurement operations There is a problem that becomes. Therefore, high signal strength (ie, measured value) cannot be obtained, and it may be difficult to perform stable measurement. Disclosure of the invention
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and has as its object to provide an immunoreaction measurement method capable of easily improving measured values and obtaining high measurement sensitivity, and an immunoreaction measurement reagent kit used therefor.
  • An immunoreactivity measurement method of the present invention is an immunoreactivity measurement method for measuring the content of a test substance in a sample, wherein the sample and a specific binding substance that specifically binds to the test substance.
  • the pH of the reaction system Is set to less than 7, and the combination of the substance to be measured and the specific binding substance is a combination of an antigen and an antibody.
  • the immunoreaction measurement method of the present invention it is possible to improve the measured value of the optical characteristics of the reaction system. Further, since the salt of phthalic acid or phthalic acid used in the present invention is a low molecular substance, the viscosity of the reaction system is not increased, and the handling in the measurement operation is easy.
  • the optical characteristic may be scattered light intensity or transmitted light amount.
  • the reaction system may further include a buffer.
  • the pH of the reaction system is set within a range of 4.5 to 5.5.
  • the concentration of the furic acid or the salt of the furic acid in the reaction system is 0.2 M or less.
  • the above-mentioned salt of hydrofluoric acid is a hydrogen fluoride hydrofluoric acid lime.
  • the reaction system may contain 2 to 6% by weight of polyethylene glycol.
  • the analyte may be an antigen having a structure that retains a metal ion therein, and the specific binding substance may be an antibody that specifically binds to the antigen that does not retain the metal ion. Good.
  • the analyte may be a human C-reactive protein.
  • the substance to be measured is an antigen having a structure that retains a metal ion therein, and the specific binding substance is a polyclonal antibody.
  • the reaction system further includes the metal ion. Is also good.
  • the analyte may be a human C-reactive protein.
  • the target substance may be an antigen
  • the specific binding substance may be a monoclonal antibody capable of binding to a plurality of binding sites of the antigen.
  • the analyte may be a human C-reactive protein.
  • the reagent kit for measuring an immunoreaction of the present invention is a reagent kit for measuring the content of a substance to be measured in a sample, and specifically binds to the aforementioned substance to be measured.
  • a reaction system comprising a substance, fluoric acid or a salt of fluoric acid, the sample, the specific binding substance, and the salt of phthalic acid or phthalic acid is constructed,
  • a buffer for setting the pH of the reaction system to less than 7 and the combination of the substance to be measured and the specific binding substance is a combination of an antigen and an antibody.
  • the measured value of the optical property of the reaction system can be improved.
  • furic acid or a salt of furic acid used in the present invention is a low-molecular substance, the viscosity of the reaction system is not increased, and the handling in the measurement operation is easy.
  • the buffer preferably sets the pH of the reaction system in the range of 4.5 to 5.5.
  • the concentration of the phthalic acid or the salt of the phthalic acid in the reaction system be adjusted to 0.2 M or less.
  • the above-mentioned salt of phthalic acid is potassium hydrogen phthalate.
  • It may further contain polyethylene glycol, and may be adjusted so that the concentration of the polyethylene glycol in the reaction system is in the range of 2 to 6% by weight.
  • the target substance may be an antigen having a structure retaining a metal ion therein, and the specific binding substance may be an antibody specifically binding to the antigen not retaining a metal ion.
  • the antibody may be an anti-human C-reactive protein antibody.
  • a metal compound that supplies a metal ion, wherein the substance to be measured is an antigen having a structure for holding the metal ion therein; and the antigen has a structure for holding the metal ion therein.
  • the specific binding substance may be a polyclonal antibody.
  • the antibody may be an anti-human C-reactive protein antibody.
  • the target substance may be an antigen
  • the specific binding substance may be a monoclonal antibody capable of binding to a plurality of binding sites of the antigen.
  • the monoclonal antibody may be an anti-human C-reactive protein antibody.
  • the specific binding substance may be mixed with the phthalic acid or the salt of phthalic acid.
  • FIG. 1 is a flowchart showing each step of the method for measuring an immune reaction according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a schematic diagram for explaining the inference of the present inventors for the reaction mechanism of the present invention.
  • C FIGS. 3 (a) and (b) show the antigen and antibody in the reaction system of the homogeneous immunoreaction measurement method. It is a figure which shows the mode of reaction typically.
  • FIG. 4 shows the results of human albumin measurement by the nephelometric method for an immunoreactivity measurement method using an immunoreactivity measurement reagent kit containing a hydrogen fluoride phosphate rim in one example of the present invention and a comparative example. It is a graph shown.
  • FIG. 5 is a graph showing the results of human albumin measurement by a nephelometry for the immunoreactivity measurement method using the immunoreactivity measurement reagent kit containing fluoric acid and the comparative example in one example of the present invention. is there.
  • FIG. 6 shows the dependence of pH on human aluminin measurement by a nephelometric method for an immunoreactivity measurement method using an immunoreactivity measurement reagent kit containing a hydrogen fluoride phosphate rim in another embodiment of the present invention. It is a graph which shows the result of having investigated.
  • FIG. 7 shows the concentration of potassium hydrogen phthalate in the measurement of human albumin by a nephelometric method for an immunoreactivity measurement method using an immunoreactivity measurement reagent kit containing potassium hydrogen fluorate according to still another embodiment of the present invention. Graph showing the result of examining the dependency It is.
  • FIG. 8 shows an immunological reaction measurement method using an immunological reaction measurement reagent kit containing fluoric acid and another buffer according to still another example of the present invention, and a comparative example. It is a graph which shows the result of having performed albumin measurement.
  • FIG. 9 shows an immunoreactivity measurement method using a reagent kit for immunoreactivity measurement containing a goat anti-human CRP polyclonal antibody and fluoric acid according to still another example of the present invention, and a comparative example. 6 is a graph showing the results of performing human CRP measurement by the method.
  • FIG. 10 shows an immunological reaction measurement method using a mouse anti-human CRP monoclonal antibody and a reagent kit for measuring an immunological reaction containing a hydrogen fluorite rim according to still another example of the present invention, and a comparative example.
  • 4 is a graph showing the results of human CRP measurement by a nephelometry. Best Embodiment
  • an antigen-antibody reaction involving the analyte is caused, and the measured value of the optical property of the reaction system after the reaction is measured. Calculate the amount of the substance.
  • the present inventors have found an immunoreaction measurement method and an immunoreaction measurement reagent kit that can obtain high measured values (that is, have high measurement sensitivity) in the above-described measurement. Furthermore, the inventors have also found that the immunoreaction measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit discovered by the present inventors can alleviate the zone phenomenon (Zone Phenomenon) occurring in the antigen-excess region.
  • FIG. 1 is a flowchart showing each step of the method for measuring an immune reaction according to the present embodiment.
  • the term “measured value” has the same meaning as signal intensity unless otherwise specified.
  • step St 1 shown in FIG. 1 a sample whose content is to be measured, a specific binding substance that specifically binds to the substance to be measured, and fluoric acid or phthalic acid.
  • a reaction system containing a salt is constructed. At this time, set the pH of the above reaction system to less than 7. Set it.
  • the analyte is an antigen
  • the specific binding substance is an antibody
  • the specific binding substance is an antigen.
  • an aggregated complex is generated by the antigen-antibody reaction between the analyte and the specific binding substance.
  • no aggregated complex is produced by the antigen-antibody reaction between the analyte and the specific binding substance.
  • step St2 shown in FIG. 1 the optical characteristics of the reaction system are measured.
  • the reaction system becomes turbid, and the scattered light intensity and the transmitted light amount change. Therefore, the degree of turbidity of the reaction system can be estimated by measuring the intensity of scattered light, the amount of transmitted light, and the like.
  • the optical change amount of the reaction system that is, the change amount of the scattered light intensity or the transmitted light amount, based on the reaction system from which the specific binding substance has been removed.
  • the reaction system from which the sample has been removed may be used as a reference.
  • the method for measuring an immune reaction of the present embodiment By performing the above steps, it is possible to improve the measured value of the optical characteristics of the reaction system due to the aggregation complex generated by the antigen-antibody reaction. Therefore, according to the method for measuring an immune reaction of the present embodiment, the amount of the substance to be measured can be measured with high measurement sensitivity. The reason why such an effect is obtained is unknown at this stage, but the present inventors presume that there are the following reasons. This inference is explained with reference to FIG.
  • both the salts of phthalic acid and phthalic acid are present in aqueous solution as phthalic acid or phthalic acid ions.
  • Both furic acid and furic acid ion have polarity and are considered to have the property of easily attracting water molecules in an aqueous solution. Therefore, it is considered that water molecules are gathered around the furic acid and the furic acid ions by adding the furic acid or the salt of the furic acid to the above reaction system.
  • the number of water molecules existing around the antibody molecule is significantly reduced, and the local abundance ratio of the antibody molecule is increased. Therefore, it is considered that the collision between the antigen and the antibody increases, and the antigen-antibody reaction is promoted. As a result, it is considered that the formation of an aggregated complex is promoted, and the measured value of the optical property of the reaction system is improved.
  • the conventional method of adding a water-soluble polymer improves In order to maintain a favorable S ratio and perform stable measurements, it is necessary to add a higher concentration or a higher molecular weight water-soluble polymer. For this reason, there is a problem that the viscosity of the solution is increased, and the handling in the analytical operation becomes difficult.
  • the salt of fluoric acid or phthalic acid used in the present embodiment is a low molecular substance, the viscosity of the solution is not increased, and the handling in the measurement operation is easy.
  • FIGS. 3 (a) and 3 (b) are diagrams schematically showing the state of the reaction between the antigen and the antibody in the reaction system of the homogeneous immunological reaction measurement method.
  • a phenomenon called a zone phenomenon occurs in a homogeneous immunoreaction measurement method.
  • a zone phenomenon in general, in a homogeneous immunoreactivity measurement method, an aggregated complex, which is a large molecular chain in which antibodies and antigens are alternately bound, is generated.
  • the zone phenomenon refers to the case where an antigen is present in excess of an antibody, as shown in Fig. 3 (b), compared to the equivalent region where the antigen and antibody form the maximum amount of an aggregated complex. Is a phenomenon that makes it difficult to occur.
  • an aggregated complex which is a large molecular chain in which the antibody and the antigen are alternately bound, is generated. If the antibody concentration is constant at this time, the amount and size of the aggregated complex increase depending on the antigen concentration. Therefore, the antigen concentration can be quantitatively measured by measuring the amount and size of the aggregated complex as the amount of optical change. In addition, depending on the concentration of the antibody and the antigen, the aggregated complex can be sufficiently confirmed by the naked eye as turbidity or aggregates in the solution.Therefore, qualitative judgment may be made by visual inspection or the like. it can.
  • an antibody is used to Often the original concentration is measured. Also, measurements are often more important when the antigen concentration is higher than when it is lower.
  • the antigen is present in excess relative to the antibody, as shown in FIG. 3 (b), the amount of the antibody whose binding site of the antibody is saturated with the antigen increases, making it difficult to form an aggregated complex. Therefore, it becomes difficult to distinguish the result of the antigen-antibody reaction between a case where the antigen is at a low concentration and a case where the antigen is in excess.
  • a zone phenomenon that occurs when an antigen is present in excess compared to an antibody can be reduced. This is because, as described above, the addition of hydrofluoric acid or a salt of hydrofluoric acid to the reaction system promotes the formation of an aggregate.
  • the decrease in the measured value at a high concentration of the substance to be measured is reduced by mitigating the zone phenomenon. For this reason, the measurement concentration range in which the content of the substance to be measured can be accurately measured can be expanded.
  • step St1 a reaction system including the analyte, a specific binding substance that specifically binds to the analyte, and fluoric acid or a salt of fluoric acid is constructed. You. At this time, the reaction system may contain both the acid and the salt of the acid. Of course, the reaction system may contain either furic acid or a salt of furic acid.
  • phthalic acid or a salt of phthalic acid contained in the reaction system is provided with a buffering ability and the pH of the reaction system is set to less than 7.
  • the concentration of the furic acid or the salt of furic acid should be 0.01%. It is preferably M or more.
  • the pH of the reaction system in the step St1 is preferably in the range of 4.5 to 5.5, and preferably in the range of 4.5 to 5.3. Is more preferable, and it is still more preferable that it is in the range of 4.5 to 5.0. In the above pH range, the effect of improving the measured value described above is high, and the effect of mitigating the zone phenomenon is also high. In particular, it is most preferable that the pH of the reaction system is adjusted to 4.5.
  • the concentration of the salt of phthalic acid or phthalic acid in the reaction system in step St 1 is preferably 0.2 M or less.
  • the concentration of the phthalic acid or the salt of phthalic acid in the reaction system is more preferably set to 0.1 M or less. More preferably, the concentration of the hydrofluoric acid or the salt of the hydrofluoric acid in the reaction system is approximately 0.1M.
  • step St1 another buffer may be added to the reaction system.
  • Buffers that can be used in the immunological reaction measurement method of the present embodiment are those known in the art.
  • a phosphate buffer comprising monosodium dihydrogen phosphate, disodium hydrogen phosphate, etc., sodium acetate, sodium dycodylate, 2- (N-morpholino) ethanesulfonic acid, succinic acid and the like can be mentioned.
  • the amount of buffer to be included in the reaction system depends on the type of buffer used, the amount of sample (sample) containing the analyte, and the amount of the antigen or It may be appropriately adjusted according to the method of supplying the antibody or antigen to the antibody.
  • fluoric acid or the salt of fluoric acid used in the immunoreactivity measurement method of this embodiment examples include fluoric acid, anhydrous fluoric acid, potassium hydrogen phthalate, potassium phthalate, and phthalic acid.
  • the salt of fumaric acid used in the immunoreaction measurement method and the immunoreaction measurement reagent kit of the present embodiment the solubility in water is high, and the pH of the aqueous solution at the time of dissolution is high. From the viewpoint of being around 4.0, potassium hydrogen fluoride is particularly preferred.
  • o-phthalic acid there are isomers of o-phthalic acid, m-fuuric acid and p-fuuric acid (terephthalic acid).
  • a mixture of 0-phthalic acid, m-phthalic acid and p-phthalic acid may be used.
  • o-phthalic acid having high solubility in water is used alone.
  • a salt of hydrofluoric acid a mixture of a salt of o-fluoric acid, m-fluoric acid, and p-fluoric acid may be used in the same manner as in the case of hydrofluoric acid. . It is most preferable to use a salt of o-fluoric acid alone having high solubility in water.
  • any other components known in the art may be added to the reaction system of the immunoreaction measurement method of the present embodiment within a range in which the above-described effects can be obtained, depending on the use and the like.
  • a homogeneous immunoreaction assay such as a nephelometry, a nephelometry, or a slide agglutination
  • polyethylene glycol (PEG) is added to the reaction system of the immunoassay of the present invention. I can do it.
  • the content is preferably 2 to 6% by weight based on the above reaction system, from the viewpoint that non-specific aggregation is small and the effect of improving measurement sensitivity is high. % Concentration is even more preferred.
  • Tween 20 in order to reduce non-specific turbidity due to self-aggregation of each of the antigen and the antibody, Tween 20, octyl glucoside, sodium lauryl sulfate (SDS), sucrose monolaurate, A surfactant such as CHAPS can be added.
  • the content is preferably 0.3% (w / v) or less with respect to the reaction system, from the viewpoint of less inhibition of the antigen-antibody reaction, and 0.1% (w / v).
  • w / v) is more preferably not more than w / v).
  • the measurement method applied to measure the optical characteristics of the reaction system is not particularly limited.
  • higher effects can be expected by using a homogeneous immunoreaction measurement method such as a turbidimetric method, a turbidimetric method, or a slide agglutination method, which can cause zone phenomena.
  • a homogeneous immunoreaction measurement method such as a turbidimetric method, a turbidimetric method, or a slide agglutination method, which can cause zone phenomena.
  • the antigen-antibody complex is an aggregated complex.
  • the optical change caused by the aggregated complex It is preferable to detect the aggregated complex by measuring the optical density, and it is further preferable that the optical change amount is a change amount of the scattered light intensity or the transmitted light amount.
  • the method of measuring an immune reaction can be typically performed as follows.
  • the acid of phthalic acid or phthalic acid is used to make the pH of the reaction system acidic, preferably so that the pH is maintained at 4.5 to 5.5, and more preferably the pH is maintained at 4.5.
  • the concentration of the hydrofluoric acid or the salt of the hydrofluoric acid is such that the concentration during the antigen-antibody reaction is 0.2 M or less, preferably 0.1 M or less, particularly preferably 0.1 M.
  • fluoric acid or a salt of fluoric acid may serve also as a buffer.
  • a reaction system is constructed by sequentially adding and mixing a sample (specimen) for which the content of the analyte is to be measured and a solution containing the specific binding substance to the above-mentioned buffer, and mixing the reaction system with the sample. The optical change is measured.
  • a solution containing a specific binding substance may be mixed in advance with fluoric acid or a fluoric acid salt so as to satisfy the above requirements, and further mixed with a buffer. May be.
  • the reagent kit for measuring an immunological reaction includes a specific binding substance that specifically binds to a substance to be measured, a salt of fluoric acid or phthalic acid, a substance to be measured, a specific binding substance, It is prepared to contain a buffer for setting the pH of the reaction system containing phosphoric acid or a salt of phosphoric acid to less than 7.
  • the combination of the analyte and the specific binding substance is a combination of an antigen and an antibody.
  • the content of the analyte is measured in step St1 shown in FIG.
  • a reaction system comprising a sample to be tested, a specific binding substance that specifically binds to a substance to be measured, and hydrofluoric acid or a salt of hydrofluoric acid can be constructed.
  • an agglutinated complex is generated by the antigen antibody reaction between the analyte and the specific binding substance. If the analyte is not contained in the sample In this case, no agglutination complex is produced by the antigen-antibody reaction between the substance to be measured and the specific binding substance.
  • the reagent kit for measuring an immunoreaction of the present embodiment it is possible to improve the measured value of the optical characteristics of the reaction system due to the aggregation complex generated by the antigen-antibody reaction. it can. That is, according to the reagent kit for measuring an immune reaction of the present embodiment, the amount of the substance to be measured can be measured with high measurement sensitivity. Further, since the salt of fluoric acid or phthalic acid used in the present embodiment is a low molecular weight substance, the viscosity of the solution is not increased, and the handling in the measurement operation is facilitated. It can also mitigate zone phenomena that occur when they are present. In addition, the mitigation of zone phenomena reduces the drop in measured values at high concentrations of the analyte. For this reason, the measurement concentration range in which the content of the substance to be measured can be accurately measured can be expanded.
  • the immunoreaction measurement reagent kit of the present embodiment may include both phthalic acid and a salt of phthalic acid. Further, it is preferable that a buffering capacity is given by a salt of phthalic acid or phthalic acid, and the pH of the reaction system in the above-mentioned step St 1 is adjusted to be less than 7. That is, it is preferable that the hydrofluoric acid or the salt of the hydrofluoric acid also functions as a buffer.
  • the immunoreaction measurement reagent kit of the present embodiment may further contain another buffer.
  • the buffer those known in the art can be used.
  • phosphate buffer consisting of phosphate such as sodium dihydrogen phosphate and disodium hydrogen phosphate, sodium acetate, sodium dihydrocodylate, 2- (N-morpholino) ethanesulfonic acid, succinic acid, etc. No.
  • the amount of the buffer is determined by the type of the buffer used, the amount of the sample (analyte) containing the analyte, the method of supplying the antibody or antigen to the antigen or antibody, which is the analyte, to the reaction system, and the like. May be adjusted as appropriate.
  • the reagent kit for measuring an immune reaction of the present embodiment is preferably prepared such that the pH of the reaction system is in the range of 4.5 to 5.5 in the above-mentioned step St1. It is more preferably prepared to be in the range of 5.5 to 5.3, and even more preferably in the range of 4.5 to 5.0. Above pH This is because, within the range, the effect of improving the measured value described above is high, and the effect of alleviating the zone phenomenon is also high. In particular, it is preferable that the pH of the reaction system is adjusted to be approximately 4.5.
  • the reagent kit for measuring an immune reaction is preferably prepared so that the concentration of phthalic acid or a salt of phthalic acid in the reaction system in step St1 is 0.2 M or less. preferable.
  • the concentration of phthalic acid or a salt of phthalic acid in the reaction system in step St1 is 0.2 M or less.
  • the concentration of phthalic acid or a salt of phthalic acid in the reaction system is adjusted to be 0.1 M or less, and in particular, the above effects are markedly enhanced.
  • the concentration of phthalic acid or a salt of phthalic acid in the reaction system is adjusted to be approximately 0.1 M.
  • the salts of fluoric acid or phthalic acid contained in the reagent kit for measurement according to the present embodiment include fluoric acid, anhydrous fluoric acid, potassium hydrogen fluorate, potassium phthalate, and phthalate.
  • the solubility in water is high, and the pH of the aqueous solution at the time of dissolution is 4 From the viewpoint of being around 0.0, potassium hydrogen fluoride is particularly preferred.
  • o-fuuric acid m-fuuric acid and p-phthalic acid
  • a mixture of 0-fluoric acid, m-fluoric acid and p-fluoric acid may be used.
  • o-phthalic acid having high solubility in water is used alone.
  • a salt of hydrofluoric acid a mixture of salts of 0-fluoric acid, m-fluoric acid, and p-fluoric acid may be used in the same manner as in the case of hydrofluoric acid. . It is most preferable to use a salt of o-fluoric acid alone having high solubility in water.
  • the immunoreaction measurement reagent kit of the present embodiment can be added to the immunoreaction measurement reagent kit of the present embodiment within a range in which the above-described effects can be obtained, depending on the use and the like.
  • a homogeneous immunoreactivity measurement method such as turbidimetry, turbidimetry, or slide agglutination
  • PEG poly (ethylene glycol)
  • the added amount is 2 to 6% by weight in the above reaction system from the viewpoint that nonspecific aggregation is small and the effect of improving measurement sensitivity is high. More preferably, the amount is such that the concentration becomes 4% by weight.
  • Tween 20 in order to reduce non-specific turbidity due to self-aggregation of antigen or antibody, Tween 20, octyl glucoside, sodium radium sulfate (SDS), sucrose monolaurate, etc. were added to the reagent kit for immunological reaction measurement of this embodiment. And a surfactant such as CHAPS may be added.
  • the amount of these added is 0.3% (w / v) or less of the reaction system from the viewpoint that the inhibition of the antigen-antibody reaction is small. And more preferably 0.1% (w / V) or less.
  • the measurement system to which the immunoreaction measurement reagent kit of the present embodiment is applied is not particularly limited.
  • higher effects can be expected by using a homogeneous immunoreaction measurement method such as a turbidimetric method, a turbidimetric method, or a slide agglutination method, which can cause zone phenomena.
  • a homogeneous immunoreaction measurement method such as a turbidimetric method, a turbidimetric method, or a slide agglutination method, which can cause zone phenomena.
  • a measurement method similar to the nephelometry or the nephelometry, which is widely used for measurement by an automatic measuring device is applied, it is particularly preferable because the steps required for determining a zone phenomenon can be reduced or simplified.
  • the immunoreaction assay reagent kit can be prepared as follows.
  • a solution containing a specific binding substance (herein, an antibody) that specifically binds to the analyte (herein, an antigen) and a solution containing hydrofluoric acid or a salt of hydrofluoric acid are referred to as a solution. If prepared separately:
  • Solutions containing furic acid or salts of furic acid are prepared with buffers to keep the pH of the reaction system below 7.
  • the pH is preferably adjusted so as to be in the range of 4.5-5.5, more preferably in the range of 4.5-5.3. More preferably, it is adjusted to be in the range of 5 to 5.0. In particular, it is most preferable that the pH of the reaction system is adjusted to 4.5.
  • the concentration in the reaction system of fluoric acid or fluoric acid is 0.2M or less, preferably 0.1M or less, particularly preferably about 0.1M. It is prepared by adjusting the amounts of the hydrofluoric acid or the salt of the hydrofluoric acid and the buffering agent so as to obtain and dissolving them in pure water.
  • the preparation may be carried out by dissolving a buffer, a hydrofluoric acid or a salt of the hydrofluoric acid in separate solutions. If the above pH range is satisfied, a solution in which a salt of fluoric acid or phthalic acid also serves as a buffer may be used without adding a buffer.
  • the solution containing the specific binding substance may have any composition as long as the reaction system satisfies the above requirements when mixed with the solution containing the above-mentioned fluoric acid or phthalic acid salt.o
  • the specific binding substance and the above-mentioned fluoric acid or the above-mentioned salt of fluoric acid may be mixed in advance.
  • the solution containing the specific binding substance should be dialyzed or gel-filtered with the prepared solution containing phthalic acid or a salt of phthalic acid to satisfy the above-mentioned requirements. Should be replaced.
  • the antigen or antibody to be measured in the immunoreaction measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit of the present embodiment is not particularly limited, and may be any substance that can be generally measured using an antigen-antibody reaction.
  • proteins, nucleic acids, lipids, bacteria, viruses, haptens and the like can be mentioned.
  • protein is the main measurement target in clinical tests using antigen-antibody reaction. Therefore, when the substance to be measured is a protein, the immunoreactivity measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit of this embodiment are very important. Suitable for.
  • proteins include hormones such as LH (luteinizing hormone), FSH (follicle stimulating hormone), hCG (chorionic gonadotropin), various immunoglobulin classes and subclasses, complement components, and markers for various infectious diseases. , CRP, albumin, rheumatoid factor, blood group antigen and the like.
  • human CRP human C-reactive protein
  • Furic acid and salts of furic acid have a chelating effect and efficiently deprive the reaction system of divalent and trivalent metal ions such as Ca 2 + and Fe 3 + There is nature. For this reason, if the antigen has a structure that retains metal ions inside it, It is preferable that the antibody that specifically binds also specifically binds to an antigen from which metal ions have been eliminated. In this way, the measurement can be performed even if the antigen is a substance whose molecular structure changes due to elimination of metal ions.
  • the antigen when the antigen has a structure in which the metal ion is retained therein and the molecular structure of the antigen changes due to the desorption of the metal ion, the same metal ion as the metal ion retained by the antigen is used in the reaction system.
  • the metal ions may be added so that the metal ions are present in the reaction system. This suppresses a change in the molecular structure of the antigen due to the elimination of metal ions in the reaction system, and allows the antibody to bind to the antigen, thereby enabling measurement.
  • the amount of the metal ion to be added may be set based on the chelating ability of the used fluoric acid or phthalic acid salt, its concentration, the ability of the antigen to retain the metal ion, and the like.
  • An antigen having a molecular structure capable of retaining a metal ion includes CRP.
  • CRP causes a structural change depending on the presence or absence of Ca2 + . Therefore, for example, the antigen used in the immunoreactivity measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit of the present embodiment is human CRP, and an antibody that does not bind to human CRP that does not retain Ca 2+ is used as an antibody.
  • an antibody that does not bind to human CRP that does not retain Ca 2+ is used as an antibody.
  • goat anti-human CRP polyclonal antibody, and further using fumaric acid as fumaric acid or a phthalic acid salt, with respect to 0.2 M fumaric acid It is preferred to add 0.02 M Ca 2+ to the reaction system.
  • the antibody is preferably a monoclonal antibody that binds to a plurality of binding sites of the antigen.
  • Monoclonal antibodies are produced by the hybridoma cell line.
  • the hybridoma cell line has the antibody-producing ability obtained by fusing antibody-producing B cells with bone marrow tumor cells (myeloma cells) and strong growth ability. It is established by isolating and growing only one cell from the combined cell population. Therefore, the properties of the antibodies produced are the same.
  • hybridoma cell lines have a strong growth ability and can be stored in a frozen state, they are not exhausted if properly managed.Hybridoma cell lines are cultured in a culture solution or peritoneal cavity. By purifying, it is possible to obtain antibodies having the same properties forever.
  • polyclonal antibodies are obtained by administering an antigen to an animal, causing a large amount of an antibody that binds to the antigen to appear in the blood, and collecting or purifying all or part of the blood. For this reason, its properties depend on individual differences among animals, habitats, conditions, and the like. Therefore, it is difficult to continuously obtain antibodies having the same properties.
  • the antibody used in the immunoreaction measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit of the present embodiment is not particularly limited, and may be any of IgG, IgM, IgE, IgA, IgE as long as it specifically binds to the antigen.
  • the antibody may be of any class of gD.
  • IgG antibodies are preferred. This is because IgG antibodies have a property that non-specific reactions hardly occur, and they are relatively commercially available and are easily available.
  • the species of the animal from which the antibody is derived is not particularly limited, but antibodies derived from rabbits, goats, and mice are preferred because they are relatively easily available and have many uses. Example
  • a method of constructing a reagent kit for measuring an immune reaction when human albumin is used as the substance to be measured will be described.
  • an immunoreaction consisting of an antibody solution and a buffer solution containing fluoric acid or a salt of fluoric acid, which can be used for measurement by the slide agglutination method, turbidimetric method, and turbidimetric method.
  • the method for preparing the measurement reagent kit will be described.
  • the protein A-immobilized gel packed in the column was manufactured by Amersham-Pharmacia.c
  • the equilibration buffer used for purification contained 1.5M glycine, 3.OM NaCl, and H8.9.
  • the elution buffer used was 0.1 M citric acid, pH 4.0.
  • the prepared antibody solution can be stored at room temperature, but from the viewpoint of preventing denaturation of the antibody, it is preferably stored at a lower temperature, more preferably at 4 ° C.
  • a buffer containing a salt of phthalic acid or phthalic acid was carried out as follows.
  • a salt of phthalic acid or phthalic acid phthalic acid and a phthalic acid hydrogen hydride were used, respectively, and the buffer solution of each substance was composed.
  • the method of constructing the buffer using a hydrogen fluoride power rim was performed as follows. At the final concentration, potassium hydrogen fluoride was weighed to 0.05M and polyethylene glycol 6,000 to 4% by weight, and each was dissolved in pure water of about 90% of the target volume for preparation. Adjust the pH to 4.5 by adding an aqueous NaOH solution, and prepare with pure water. The volume was adjusted to the target volume. The prepared buffer was stored at room temperature.
  • the method of constructing the buffer using phthalic acid was performed as follows. At the final concentration, phthalic acid was weighed to 0.03M, and polyethylene glycol 6,000 was weighed to 4% by weight, and each was dissolved in pure water of about 90% of the intended volume for preparation. The pH was adjusted to 4.5 by adding an aqueous NaOH solution, and the volume was adjusted to the target volume with pure water. The prepared buffer was stored at room temperature.
  • a reagent kit for measuring an immune reaction can be constituted by combining at least one of the buffer solution containing fluoric acid or a salt of fluoric acid configured as described above with an antibody solution.
  • human CRP has a structure consisting of five subunits with the same structure, it is a substance that has multiple binding sites for one type of antibody. For this reason, even by using one kind of anti-CRP monoclonal antibody, it is possible to produce a reagent kit for measuring an immunoreaction used for a homogeneous immunoreaction measurement.
  • the number of monoclonal antibodies may be two or more.
  • a reagent kit for measuring an immunoreactivity comprising two types of antibody solutions using a polyclonal antibody solution and a monoclonal antibody solution, respectively, and a buffer solution containing fluoric acid or a salt of fluoric acid was prepared.
  • Goat anti-human CRP polyclonal antibody was purified from antisera collected from goats immunized with human CRP using protein G column chromatography.
  • a protein manufactured by Amersham-Pharmacia was used as the protein G-immobilized gel filled in the column.
  • the equilibration buffer used for purification using those compositions of 0. 02M Na 2 HP0 4 -N aH 2 P0 4, p H 7. 0, the elution buffer, 0. 1M glycine, A composition having a pH of 2.7 was used.
  • the same method as in Example 1 was used for the purification method by column chromatography and the buffer replacement method by dialysis.
  • the antibody concentration was estimated by measuring the absorbance at 28 Onm and the same as that used for dialysis.
  • the same buffer was used to adjust the antibody concentration to 1.0 mg / ml, which was used as a polyclonal antibody solution.
  • Human CRP changes its structure depending on the presence or absence of C a 2+ .
  • the antibody solution that constitutes the immunoreaction assay reagent kit contains an antibody that does not bind to human CRP that does not retain Ca 2+ , the chelating action of furic acid or a salt of furic acid will occur.
  • human CRP that does not retain Ca 2+ may increase, and the reaction rate of the antigen-antibody reaction may decrease.
  • a polyclonal antibody solution was prepared, an antibody that does not bind to Ca 2+ -free human CRP is included in the polyclonal antibody solution. Therefore, in the preparation of a buffer solution containing furic acid or a salt of furic acid shown below, Ca 2+ was added to the buffer solution in order to maintain the structure of human CRP.
  • a buffer solution containing hydrofluoric acid or a salt of hydrofluoric acid was prepared as follows.
  • phthalic acid was used as the salt of phthalic acid or phthalic acid.
  • a monoclonal antibody As a monoclonal antibody, the addition of a chelating agent (for example, 0.02M folic acid or ethylenediaminetetraacetic acid) to the reaction system does not cause loss of binding ability to human CRP, that is, retains Ca 2+ An antibody that specifically binds to non-human CRP was used. Specifically, a monoclonal antibody solution was prepared as follows.
  • a chelating agent for example, 0.02M folic acid or ethylenediaminetetraacetic acid
  • the mouse anti-human CRP monoclonal antibody used in this example was obtained as follows. First, hybridoma cells producing mouse anti-human CRP monoclonal antibody (Accession No. FERM BP-6620, Institute of Biotechnology, Institute of Industrial Science and Technology) were injected into the peritoneal cavity of the mouse and grown to obtain ascites. Was. From the ascites fluid obtained, purification was performed using the same column chromatography method as in Example 1. Thus, a mouse anti-human CRP monoclonal antibody sample was obtained.
  • Ascites was obtained specifically as follows. Retired female BAL BZc mice were used for ascites production. 0.5 to 1 ml of pristane was injected into the abdominal cavity of the mouse, and after about 7 days, 0.5 to 1 ml of the following cell suspension was injected, and ascites was collected from the mice in which ascites production was observed in order. .
  • the hybridoma cell suspension injected intraperitoneally was grown by culturing using a medium in which RPMI 1640 medium (manufactured by SI GMA) was mixed with 5 to 15% by volume of fetal bovine serum. and centrifuged washed with RPM 1 1640 medium was obtained by resuspending the RPMI 1 640 medium to a concentration of lxl 0 6 ⁇ 10 7 cell sZml.
  • mice anti-human CRP monoclonal antibody sample purified by column chromatography was placed in a dialysis tube with a molecular weight cut off of 10,000, and a 100-fold volume of PBS buffer containing 0.04% by weight NaN 3 was added. (8 NaCl, 0.2 g
  • the antibody concentration was estimated by measuring the absorbance at 280 nm, and adjusted with the same buffer as used in the dialysis to adjust the antibody concentration to 1. OmgZml, which was used as a monoclonal antibody solution.
  • the preparation of a buffer solution containing furic acid or a salt of furic acid was performed as follows.
  • the buffer was made up using potassium hydrogen furate.
  • the antibodies of the monoclonal antibody solution in this embodiment is not influenced structural changes due to the presence of Ca 2+ retention of human CRP, the buffer was not added C a 2 +.
  • the method of constructing the buffer using a hydrogen fluoride power rim was performed as follows. At the final concentration, potassium hydrogen fluorate was weighed out to 0.05% and polyethylene glycol 6,000 to 4% by weight, and dissolved in about 90% pure water of the target volume for preparation. . An aqueous NaOH solution was added to the resulting solution to adjust the pH to 4.5, and the volume was adjusted to the desired volume with pure water to obtain a buffer. The resulting buffer was stored at room temperature.
  • each antibody solution prepared as described above is not particularly limited to these. Not. Further, each prepared antibody solution can be stored at room temperature, but from the viewpoint of preventing the denaturation of the antibody, it is preferably stored at a lower temperature, more preferably at 4 ° C.
  • a reagent kit for measuring an immunological reaction can be constituted by combining the buffer solution containing fluoric acid or a salt of phthalic acid constituted as described above with an antibody solution.
  • the method of using the reagents constructed in Examples 1 and 2 is as follows. To construct a reaction system, a sample (sample) containing an antigen, an antibody solution, and a buffer containing a salt of phthalic acid or phthalic acid are mixed. To use. The mixing method may be any method. The mixing ratio can be determined according to the required measurement range of the antigen concentration. In the reaction system constructed by mixing, an antigen-antibody reaction occurs, and an aggregated complex is formed. The degree of turbidity of the reaction system due to the aggregated complex can be estimated by measuring the amount of change in scattered light intensity and the like, and the antigen concentration in the sample can be known based on the result.
  • the antibody may be immobilized on a fine particle carrier such as latex, gold colloid, or magnetic fine particles.
  • the antibody may contain an enzyme, a dye, a fluorescent substance, a luminescent substance, or the like. It may be labeled.
  • the buffer used for preparing the antibody solution and the pH of the antibody solution are not limited to the above composition and pH.
  • the antibody solution when forming a one-part reagent, may contain a salt of fluoric acid or phthalic acid. Therefore, in order to maintain the pH of the reaction system at less than 7, dialysis may be performed with an acidic buffer solution containing hydrofluoric acid or a salt of hydrofluoric acid.
  • NaOH was used for pH adjustment, but a hydroxide such as KOH, LiOH, NH 4 OH, Ca (OH) 2 , and Mg (OH) 2 may be used.
  • Examples 1 and 2 the preparation of a buffer solution containing
  • hydrogen fluoride and phthalic acid were used for the purpose, other salts of phthalic acid or phthalic acid may be used.
  • anhydrous phthalic acid, potassium phthalate, and phthalic acid Any of sodium disodium, ammonium fluorate, copper (II) fluorate and the like may be used. These can also be used in combination.
  • pH adjustment is performed by using HC1 if the pH when dissolved in pure water is more alkaline than the pH to be adjusted.
  • the above-described hydroxide may be used.
  • the mixing may be carried out by adjusting the mixing ratio of the above-mentioned fluoric acid or a salt of phthalic acid.
  • the concentration of furic acid or a salt of furic acid added to the buffer is not particularly limited.
  • the main buffering capacity of the buffer containing phthalic acid or phthalic acid salt may be provided by another buffer, and the phthalic acid or phthalic acid salt is coordinated with another buffer. Then, a buffering capacity may be provided.
  • the effect of the present invention on the measurement of antigen in an acidic reaction system containing fluoric acid or a salt of fluoric acid was measured using a neutral reaction system generally used in an immunoreaction measurement method. The results are shown in comparison with the antigen measurement. The comparison was performed by measuring human albumin by a nephelometric method.
  • the reagent constituted in Example 1 was used as a reagent for constituting an acidic reaction system containing a salt of phthalic acid or phthalic acid.
  • the buffer using potassium hydrogen phthalate prepared in Example 1 is referred to as potassium hydrogen phthalate buffer
  • the buffer using phthalic acid is referred to as phthalate buffer.
  • mops was used as a buffer solution for constituting a neutral reaction system, 0.05 M mobbs, 4% by weight polyethylene glycol 6, 000, and pH 7.0.
  • a composition having a composition of 4 and a composition having a composition of 0.03 M mops, 4% by weight of polyethylene glycol 6, 000, and a pH of 7.4 were prepared.
  • these are referred to as 0.05 M mops buffer and 0.3 M mops buffer, respectively.
  • Each buffer was stored at room temperature.
  • Human albumin (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) used as antigen, 0.05 M MOBS, ⁇ Using a 4% by weight NaN 3 buffer solution with a pH of 7.4, human albumin concentrations of 0, 5, 10, 20, 30, 50, 70, 100, 200, 300, 500 mg / A human albumin solution of d1 was prepared. The human albumin solution was stored at 4 ° C until use.
  • a spectrofluorometer (manufactured by Shimadzu Corporation, Model No. RF-5300PC) was used for the measurement.
  • a constant-temperature cell holder (manufactured by Shimadzu, model number 206-15440) connected to a constant-temperature water tank (manufactured by TAI TEC, trade name: COOL NI T BATH EL-15) is placed in the sample chamber of the spectrofluorometer, and the temperature is set to 25 °.
  • the water kept at C was circulated in the thermostatic water bath so that the temperature inside the quartz cell during measurement could be kept constant.
  • the measurement conditions of the spectrofluorometer were set to 67 Onm for both excitation and emission wavelengths, the band width was set to 3 nm on both the emission and excitation sides, and the sensitivity was set to high sensitivity.
  • the measurement was performed as follows. 2. 0.1 ml of the antibody solution prepared in Example 1 was added to 87 ml of each buffer and mixed by stirring, and then 0.03 ml of each concentration of human albumin solution was added to each mixed solution, followed by stirring and mixing. Egret anti-human albumin polyclonal antibody in the reaction system is about 0.10 mgZml, and the concentration of human albumin is obtained by multiplying the concentration of the human albumin solution used for measurement by 0.01. Transfer this to a quartz cell for fluorescence analysis, install it on a spectrofluorometer, immerse a T-type thermocouple (obtained from RS Components, model number 219-4696) in the quartz cell, and mix with human albumin.
  • a quartz cell for fluorescence analysis install it on a spectrofluorometer, immerse a T-type thermocouple (obtained from RS Components, model number 219-4696) in the quartz cell, and mix with human albumin.
  • the time course measurement was started for 300 minutes at 0.04 second intervals after 2 minutes.
  • the temperature in the quartz cell was monitored by connecting a T-type thermocouple to a digital multi-steam thermometer (manufactured by Advantest, model number TR2114).
  • the value was corrected using pure water in the cell before the measurement of each reaction.
  • the average value of each measured value during 200 to 300 seconds obtained by the measurement was determined, and this was used as the measured value for the human albumin solution at each concentration.
  • the pH of the mixed solution of the reaction system was measured with a pH meter in order to see the effect of the mixing of each buffer, antibody solution, and human albumin solution at each concentration on the pH of the reaction system.
  • the pH of the mixed solution of the reaction system consisting of each buffer, antibody solution, and each concentration of human albumin solution used for each measurement is almost the same as the pH of the buffer. I got it.
  • the temperature inside the cell during each measurement obtained by the thermocouple measurement was kept at 25.5 ° C and 1 ° C.
  • Figure 4 shows the reaction system using 0.05M potassium hydrogen phosphate buffer and the reaction system using 0.05M Mobbs buffer, each containing up to 50 Omg / d1 of each human albumin solution.
  • the measured results are plotted.
  • the vertical axis represents the scattered light intensity
  • the horizontal axis represents the concentration of the human albumin solution used for the measurement.
  • the higher the scattered light intensity the higher the degree of turbidity (turbidity) of the reaction system, indicating that more aggregated complexes were formed by the antigen-antibody reaction.
  • Each plotted value is obtained by subtracting the measured value at a human albumin concentration of 0 mg / d1 from the measured value of the obtained human albumin solution at each concentration for each buffer.
  • Figure 5 shows the human albumin solutions at different concentrations up to 50 Omg / d1 for the reaction system using the 0.03M phosphoric acid buffer and the reaction system using the 0.03M mops buffer.
  • Is a plot of the result of the measurement with the addition of.
  • the vertical axis represents the scattered light intensity
  • the horizontal axis represents the concentration of the human albumin solution used for the measurement.
  • Each plotted value is obtained by subtracting the measured value of the human albumin concentration of Omg / d1 from the measured value of the human albumin solution of each concentration obtained for each buffer.c
  • the measured value using the 0.03M phthalate buffer showed a clearly higher measured value than the measurement using the 0.03M mops buffer.
  • the measured value peaked around 50 mg / d 1, and as the concentration of human albumin increased, the measured value showed a large decrease due to a local phenomenon.
  • 0.03M furic acid buffer When the solution was used, the measured value peaked at around 70 to 10 OmgZd1, and even if the concentration of human albumin was high, the decrease in the measured value due to the zone phenomenon was suppressed.
  • the immunoreaction measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit of the present invention it was confirmed that higher measurement values could be obtained than the conventional immunoreaction measurement method and immunoreactivity measurement reagent kit. . It has also been confirmed that the zone phenomenon can be alleviated as compared with the conventional immunoreaction measurement method and the immunoreactivity measurement reagent kit.
  • the zone phenomenon can be mitigated even when the antibody concentration is low and the antigen concentration is high. For this reason, for example, based on the measurement results in this example, by providing a determination region having a positive value equal to or greater than the measured value of 20 mgZd1 In a reaction system composed of a potassium buffer or a 0.03 M fluoric acid buffer, a wide measurement range of up to 500 mg / d1 can be used as the measurement range. However, in the neutral buffer system of the comparative example, the limit is about 120 to 13 Omg / d1.
  • human albumin in a wider concentration range can be used for the phenomena of zone phenomena as compared with the conventional measurement using a neutral buffer system. It can be measured without considering the effect.
  • the present invention using hydrofluoric acid rim as a furic acid or a salt of the furic acid.
  • the following shows the contents of the measurement of the PH dependence of the measured values by the immune reaction measurement method and the immune reaction measurement reagent kit by the nephelometry.
  • Human albumin was used as the substance to be measured. Preparation of human albumin solution was performed in the same manner as in Example 3, and those having concentrations of 0, 5, 10, 20, 30, 50, 70, 100, 200, 300, and 500 mg / d1 were prepared. . The same antibody solution as in Example 1 was used.
  • a 0.05 M mops buffer in which a solution containing 0.05 M mops and 4% by weight of polyethylene glycol 6,000 was adjusted to pH 7.4 was used.
  • the device and the measuring method are the same as in Example 3.
  • the pH of the mixed solution of the reaction system consisting of each buffer, antibody solution, and each concentration of human albumin solution used for each measurement was the same as the pH of the buffer.
  • the temperature inside the quartz cell during the measurement was kept at 25.5 ⁇ 1 ° C.
  • FIG. Figure 6 is a plot of the results of a reaction system constructed with 0.05 M potassium hydrogen phosphate buffer at each pH, with each human albumin solution up to 50 OmgZd 1 added. .
  • the vertical axis represents the scattered light intensity, and the horizontal axis represents the concentration of the human albumin solution used for the measurement.
  • Each plotted value is obtained by subtracting the measured value of the human albumin concentration of OmgZd1 from the measured value of the obtained human albumin solution of each concentration for each buffer.
  • the way to read the graph is the same as in Fig. 4.
  • the reaction system When the measurement was performed with a 0.05 M potassium hydrogen fluorate buffer solution with a pH of 4.5 to 5.5, the reaction system was composed of a 0.05 M mops buffer solution as a comparative example. The measured values were higher than the measured values, and the effect of mitigating zone phenomena that occurred as the antigen concentration increased was observed. The effect was maximized when the reaction system was composed of 0.05M PH hydrogen phosphate buffer with pH 4.5. In addition, from the results in FIG. 6, the measurement value can be improved if the reaction system is composed of a 0.05 M potassium hydrogen phthalate buffer solution having a pH of 4.5 to 5.3, and more preferably a pH of 4.5 to 5.0. And (4) It was considered that the effect of mitigating the zone phenomenon could be obtained very stably.
  • the measured values were lower than those obtained when the reaction system was constructed with a 0.05 M mops buffer solution.
  • the measured value curve showed the same shape as when a reaction system was constructed using 0.05 M mops buffer, and there was no effect of mitigating zone phenomena occurring as the concentration of antigen increased.
  • the reaction system was composed of a 0.05 M potassium hydrogen phosphate buffer with a pH of 4.0
  • the value measured by adding human albumin up to 10 Omg / d1 to the reaction system was 0
  • the case where the reaction system was composed of .05 M mops buffer was lower.
  • the value measured when more than 20 Omg / d1 of human albumin was added to the reaction system exceeded the case where the reaction system was composed of 0.05 M Mobbs buffer, and as the antigen concentration increased, The effect of mitigating the generated zone phenomenon was observed.
  • the immunoreactivity assay using fumaric acid or a salt of fumaric acid was performed at pH 4.5 to 5.5, more preferably at pH 4.5 to 5.3, and still more preferably at pH 4.5 to 5.3. It was found that it is preferable to set the pH of the reaction system to pH 4.5 to 5.0. c Also, it was found that the maximum effect was obtained by setting the pH of the reaction system to 4.5.
  • the pH is preferably 4.5 to 5.5, more preferably 4.5 to 5.3. More preferably, it was found that the reaction system was preferably adjusted so that the pH of the reaction system was set at pH 4.5 to 5.0. It was also found that the maximum effect was obtained when the pH of the reaction system was adjusted to 4.5.
  • Human albumin was used as the substance to be measured. Preparation of the human albumin solution was carried out in the same manner as in Example 3, except that the concentrations were 0, 5, 10, 20, 30, 50, 70, 100, 200, 300, and 50 mg / d 1 were prepared. The same antibody solution as in Example 1 was used.
  • the concentration of potassium hydrogen fluorate was 0.01, 0.1, and 0.1, respectively.
  • a 0.05 M mops buffer in which the pH of a solution containing 0.05 M mops and 4% by weight polyethylene glycol 6,000 was adjusted to 7.4 was used.
  • the device and the measuring method are the same as in Example 3.
  • the pH of the mixed solution consisting of each buffer, antibody solution, and each concentration of human albumin solution used in each measurement was PH 4.7, 0,0,0,0 when using 0.01 M potassium hydrogen hydrogen phosphate buffer.
  • the pH was 4.6 when a 025 M potassium hydrogen phthalate buffer was used, and PH 4.5 when another concentration of potassium hydrogen phthalate buffer was used.
  • the temperature inside the quartz cell during the measurement was kept at 25.5 ⁇ 1 ° C.
  • FIG. 7 shows the obtained results.
  • Figure 7 shows the results obtained by adding up to 50 Omg / d1 of each human albumin solution to a reaction system constructed with a hydrogen buffer solution at various concentrations of about pH 4.5, and measuring the results. It is a thing that I did.
  • the vertical axis represents the scattered light intensity, and the horizontal axis represents the concentration of the human albumin solution used for the measurement.
  • Each plotted value is obtained by subtracting the measured value of the human albumin concentration of 0 mg / d1 from the measured value of the human albumin solution of each concentration obtained for each buffer.
  • the way to read the graph is the same as in Fig. 4.
  • a reaction system When a reaction system was constructed with a hydrogen hydrogen phosphate buffer having a hydrogen permeate concentration of 0.2 M or less, a reaction system was constructed using a 0.05 M mops buffer as a comparative example. The measured values exceeded the case where the measurement was performed, and the effect of improving the measured values was confirmed. In addition, the effect of mitigating zone phenomena caused by high concentrations of antigen was also observed. The effect of mitigating zone phenomena was particularly high when the reaction system was constructed with a potassium hydrogen fluoride buffer solution at a concentration of 0.1 M or less.
  • the measured values up to a human albumin concentration of 10 Omg / d1 are comparative examples. Configured below the case. However, the measured value of human albumin concentration of 20 Omg / d1 or more was superior to the comparative example, and the effect of mitigating the zone phenomenon that occurred as the concentration of human albumin increased was observed.
  • potassium hydrogen fluorate was used in order to obtain an effect exceeding that of a general neutral buffer. It was found that it was appropriate to set the system concentration to 0.2M or less. In particular, it was found that the concentration of potassium hydrogen fluorate is more preferably 0.1 M or less, and the most preferable concentration of potassium hydrogen fluorate is 0.1 M.
  • the potassium hydrogen fluorate concentration is adjusted to be 0.2 M or less. It has been found that it is preferable to be manufactured. In particular, it is more preferable that the concentration of potassium hydrogen fluorate is adjusted to 0.1M or less, and the concentration of potassium hydrogen fluorate is adjusted to 0.1M. Turned out to be the most favorable.
  • Human albumin was used as the substance to be measured. Preparation of human albumin solution was performed in the same manner as in Example 3, and concentrations of 0, 5, 10, 20, 30, 50, 70, 100, 200, 300, and 50 mg / d1 were prepared. . The same antibody solution as in Example 1 was used.
  • the acid As the acid or the salt of the acid, the acid was used. Coexist with these Succinic acid is used as the buffering agent, and a buffer mixture of succinic acid and phosphoric acid having a composition of 0.1M succinic acid, 0.02M phthalic acid, 4% by weight polyethylene glycol 6,000 and pH 4.5 is used. Was configured. As a comparative example in the case where no salt of phthalic acid or phthalic acid is present, a succinic acid buffer having a composition of 0.12M succinic acid, 4% by weight polyethylene glycol 6,000, pH 4.5 was used. Prepared and used.
  • FIG. 8 shows the obtained results.
  • Figure 8 shows the results obtained by adding up to 50 Omg / d1 of each human albumin solution to the above-mentioned succinate / folic acid mixed buffer and the reaction system composed of the succinate buffer. Is plotted. The vertical axis represents the scattered light intensity, and the horizontal axis represents the concentration of the human albumin solution used for the measurement. Each plotted value is obtained by subtracting the measured value of the human albumin concentration of OmgZd1 from the measured value of the obtained human albumin solution of each concentration for each buffer. The way to read the graph is the same as in Fig. 4.
  • the goat anti-human CRP polyclonal antibody solution prepared in Example 2 was used as the antibody solution.
  • phthalic acid buffer (0. 02M phthalic acid prepared in Example 2, 0. 02MCaC l 2, 4 wt% polyethylene glycol 6, 000, pH 4.5) was used.
  • the measurement equipment used was self-made and was configured as follows.
  • the light source is a 270 Hz modulated output with a wavelength of 68 Onm and a 15 mW semiconductor laser pointer (Kiko Ichigiken, model number MLXS-D-12-680-35).
  • the detector is for visible and infrared precision photometry.
  • Silicon photodiode manufactured by Hamamatsu Photonics, model number S2387-66R.
  • the cell was constructed by bonding optical glass plates with a thickness of 0.1 cm together to form a square prism with a capacity of about 200 ⁇ 1.
  • the cell is placed 0.5 cm from the light source, with one side perpendicular to the light source, and the detector is 5.5 cm from the cell in a direction that forms a 90 ° angle with the light source.
  • a light-shielding cylinder was installed between the detector and the cell so that it was placed at a remote location and stray light did not enter the detector.
  • Current signal depending on the light amount detected by the detector after amplified 100 times the voltage signal through an amplifier circuit according to a current-voltage conversion circuit (10 6 VZA) and an operational amplifier, Rodzukuin'anpu (E Nuefu circuit design blocks made, Phase-sensitive detection through Model No. 5610B), which can be loaded into a computer by GP IB control.
  • the measurement for each concentration of human CRP was performed as follows.
  • the mixing ratio of the reaction system was 178 l for the buffer solution, 91 for the human CRP solution, and 7/1 for the antibody solution.
  • the final concentration of the goat anti-human CRP polyclonal antibody in the reaction system is about 0.036 mg / ml, and the final concentration of human CRP is the concentration of the human CRP solution used for the measurement multiplied by 0.46.
  • the buffer and the human CRP solution were stirred and mixed in the cell at the above volume. continue, The antibody solution was added in the above volume and mixed with stirring to produce an antigen-antibody reaction.
  • the measurement of the scattered light was started 10 seconds before adding the antibody solution, and was continued at 0.5 second intervals for 300 seconds. The measured value was obtained as a voltage value.
  • the effect of cell contamination on the measurement was eliminated by adding pure water to the cell before each reaction and correcting it using the measured value.
  • the average of the measured values at each obtained time between 200 and 300 seconds was determined, and this was used as the measured value for the human CRP solution at each concentration.
  • the average value thereof is subtracted from the measurement value for the human CRP solution at each concentration obtained above.
  • the measurement was performed at room temperature (about 20 ° C).
  • FIG. 9 is a plot of the results obtained by adding each human CRP solution up to 10 Omg / d1 for each buffer.
  • the vertical axis represents the measured voltage value
  • the horizontal axis represents the concentration of the human CRP solution used for the measurement. The higher the measured voltage value, the more scattered light was incident on the detector, indicating that the turbidity of the reaction system was high, that is, that more aggregated complexes were formed by the antigen-antibody reaction.
  • Each plotted value is obtained by subtracting the measured value of human CRP concentration of OmgZd1 from the measured value of the obtained human CRP solution at each concentration.
  • Example 7 The same method as in Example 7 was used to prepare human CRP solutions of each concentration used for the measurement.
  • concentration of the human CRP solution is 0, 10, 20, 30, 50, 70, l O Omg / d 1 was prepared.
  • the mouse anti-human CRP monoclonal antibody solution prepared in Example 2 was used as the antibody solution.
  • the potassium hydrogen phthalate buffer solution prepared in Example 2 (0.05M potassium hydrogen phthalate, 4% by weight polyethylene glycol 6,000 PH 4.5) was used.
  • the final concentration of mouse anti-human CRP monoclonal antibody in the reaction system is about 0.0 O S SmgZmls
  • the final concentration of human CRP is obtained by multiplying the concentration of the human CRP solution used for measurement by 0.46.
  • FIG. 10 shows a 0.05 M potassium hydrogen phthalate buffer solution prepared in Example 2 using potassium phthalate as phthalic acid or a salt of phthalic acid, and a 0.05 M mops buffer as a comparative example.
  • FIG. 3 is a plot of the results of adding and measuring up to 10 Omg / d1 of each human CRP solution. The vertical axis represents the measured voltage value, and the horizontal axis represents the concentration of the human CRP solution used for the measurement. Each plotted value is obtained by subtracting the measured value of human CRP concentration of OmgZd1 from the measured value of the obtained human CRP solution at each concentration. The way to read the graph is the same as in Fig. 9.
  • the immunoreactivity measurement method of the present invention and the immunoreactivity measurement reagent kit used therefor also have an effect of improving the measured value for human CRP measurement.
  • the reaction system of the immune reaction is caused by the presence of hydrofluoric acid or a salt of hydrofluoric acid.
  • H By setting H to be acidic, it is possible to improve a measured value of an immune reaction due to binding of an antigen-antibody, and to thereby alleviate a zone phenomenon occurring in an antigen-excess region.
  • the phenomena of the zone are alleviated, so that the drop in the measured value at a high concentration of the substance to be measured is reduced. For this reason, the measurement concentration range in which the content of the analyte can be accurately measured can be expanded.
  • an immunoreaction measurement method capable of easily improving a measured value and an immunoreaction measurement reagent kit used therefor. Further, it is possible to provide an immunoreaction measurement method capable of alleviating a zone phenomenon occurring in an antigen-excess region, and an immunoreaction measurement reagent kit used therefor.

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Description

明糸田書 免疫反応測定方法及びそれに用いる免疫反応測定用試薬キヅト 技術分野
本発明は、 試料中の被測定物質である抗原または抗体の含有量を測定すること ができる免疫反応測定方法及びそれに用いる免疫反応測定用試薬キットに関する 背景技術
医療分野では、 様々な疾患の診断及び病状の経過を調べるために、 ヒトの体液 中に存在する各疾患に特徴的な蛋白質の含有量を測定することが広く行なわれて いる。 これらの蛋白質の含有量測定には、 主として、 標的とする蛋白質を抗原と して特異的に認識する抗体を用いた反応 (抗原抗体反応) を利用した免疫反応測 定方法が広く用いられている。 現在では、 免疫反応測定方法にも様々な原理を利 用したものが開発されている。
それらの中でも、 抗原抗体反応によって生じる抗原抗体複合体の凝集体 (以下、 凝集複合体と称する) を検出する、 免疫比朧法 (以下、 比朧法と略す) 、 免疫比 濁法 (以下、 比濁法と略す) 、 スライ ド凝集法などの測定方法はよく知られたも のである。 これらの測定方法は、 溶液中に抗原及び抗体が一様に分散された状態 で行なうものであるため、 「均一系の免疫反応測定方法」 と総称される。
抗原抗体反応では、 凝集複合体の生成により反応系に濁りを生じる。 凝集複合 体の生成により反応系に生じる濁りの程度は、 抗原の量及び抗体の量に依存する。 このことに基づいて、 比朧法および比濁法は、 上述の反応系に生じる濁りの程度 を光学的に測定し、 その測定値から抗原の量または抗体の量を算出する方法であ る。
比朧法は反応系で散乱された光量に基づいて、 比濁法は反応系での散乱により 減少した透過光量に基づいて反応系に生じる濁りの程度を測定する。 一般的に、 比朧法および比濁法のいずれの場合にも、 同一の反応系で測定することができる。 つまり、 比朧法または比濁法のいずれか一方で測定できる反応系は、 他の一方で も測定することができる。 スライ ド凝集法は、 凝集複合体の生成により、 濁りが 生じた反応系中の溶液をスライ ドグラス上などに採取し、 目視などによって、 反 応系に生じた濁りの程度を判定する方法である。 スライ ド凝集法には、 比朧法、 比濁法と同一の反応系を用いることができる。 解決課題
上記従来の均一系の免疫反応測定方法では、 抗原抗体反応を促進させ、 微量成 分を高感度に測定するために様々な添加剤を用いることが試みられている。 よく 知られている例としては、 ポリエチレングリコ一ル、 デキストラン、 ポリビニル ピロリ ドンおよびポリ塩化ビニルなどの水溶性高分子を反応系中に混在させ、 抗 原抗体反応による凝集複合体の形成を促進させることによって、 反応時間を短縮 し、 測定値を向上させることによって、 測定感度を高くする方法が挙げられる。 上記の水溶性高分子の中でもポリエチレングリコールが比較的低濃度で、 反応時 間を短縮し、 測定値を向上させる効果が高いことが知られている。 特に、 平均分 子量 6, 0◦ 0のポリエチレングリコール (PEG) を反応系中で 2〜 6重量% 濃度となるように添加する方法が広く用いられている。 特に、 平均分子量 6, 0 00のポリエチレングリコールを反応系中で 4重量%濃度となるように添加する 方法が、 凝集複合体以外の非特異的な混濁が少なく、 上記効果が高いとされてい る。
水溶性高分子が抗原抗体反応を促進する効果は、 一般に水溶性高分子の分子量 が大きく且つ水溶性高分子が高濃度であるほど大きい傾向がある (Aut oma t ed I mmu n oanalys i s Part 1, Rit chi e編、 第 67— 112頁 (1978) 参照) 。
抗原抗体反応の測定を考えた場合、 抗原抗体反応の程度 (すなわち抗原の濃 度) に依存した信号強度 (すなわち測定値) が高い程、 良好な S/N比を維持す ることができ、 安定した測定を行なうことができる。 しかし、 抗原抗体反応を更 に促進し、 上記効果を得ようとして、 従来通り、 水溶性高分子をより高濃度ある いは、 高分子量の水溶性高分子を反応系中に添加した場合、 水溶性高分子を溶解 した反応系中の溶液の粘性が増大する。 このため、 測定操作上の取り扱いが困難 になるという不具合がある。 従って、 高い信号強度 (すなわち測定値) が得られ ず、 安定した測定を行なうことが困難な場合がある。 発明の開示
本発明は上記事情に鑑み、 容易に測定値の向上が可能で、 高い測定感度が得ら れる免疫反応測定方法及びそれに用いる免疫反応測定用試薬キットを提供するこ とを目的とする。
本発明の免疫反応測定方法は、 試料中の被測定物質の含有量を測定する免疫反 応測定方法であって、 上記試料と、 上記被測定物質に対して特異的に結合する特 異結合物質と、 フタル酸またはフ夕ル酸の塩とを含む反応系を構築する工程 Aと、 上記反応系の光学特性を測定する工程 Bとを含み、 上記工程 Aにおいて、 上記反 応系の p Hが 7未満に設定されており、 上記被測定物質と上記特異結合物質との 組み合わせは、 抗原と抗体との組み合わせである。
本発明の免疫反応測定方法によれば、 反応系の光学特性の測定値を向上させる ことができる。 また、 本発明において用いるフタル酸またはフ夕ル酸の塩は低分 子物質であるため、 反応系の粘性を増大させず、 その測定操作上の取り扱いも容 易となる。
上記光学特性は、 散乱光強度または透過光量であつてもよい。
上記工程 Aでは、 上記反応系がさらに緩衝剤を含む構成としてもよい。
上記工程 Aにおいて、 上記反応系の p Hが 4 . 5 - 5 . 5の範囲内に設定され ていることが好ましい。
上記工程 Aにおいて、 上記反応系におけるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度 が 0 . 2 M以下であることが好ましい。 '
上記フ夕ル酸の塩は、 フ夕ル酸水素力リゥムであることが好ましい。
反応系がポリエチレングリコールを 2〜 6重量%含む構成としてもよい。
上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記特異結合物質は、 上記金属イオンを保持していない上記抗原に特異的に結 合する抗体である構成としてもよい。
上記被測定物質は、 ヒト C反応性蛋白質である構成としてもよい。 上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記特異結合物質はポリクロ一ナル抗体であり、 上記工程 Aでは、 上記反応系が さらに上記金属イオンを含む構成としてもよい。
上記被測定物質は、 ヒト C反応性蛋白質である構成としてもよい。
上記被測定物質は抗原であり、 上記特異結合物質は、 上記抗原の複数の結合部 位に結合することが可能なモノクローナル抗体である構成としてもよい。
上記被測定物質は、 ヒト C反応性蛋白質である構成としてもよい。
本発明の免疫反応測定用試薬キットは、 試料中の被測定物質の含有量を測定す るための免疫反応測定用試薬キットであって、 上記被測定物質に対して特異的に 結合する特異結合物質と、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩と、 上記試料と、 上記特 異結合物質と、 上記フ夕ル酸または上記フタル酸の塩とを含む反応系が構築され たときに、 上記反応系の p Hを 7未満に設定するための緩衝剤とを含み、 上記被 測定物質と上記特異結合物質との組み合わせは、 抗原と抗体との組み合わせであ る。
本発明の免疫反応測定用試薬キッ卜によれば、 反応系の光学特性の測定値を向 上させることができる。 また、 本発明において用いるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の 塩は低分子物質であるため、 反応系の粘性を増大させず、 その測定操作上の取り 扱いも容易となる。
上記緩衝剤は、 上記反応系の p Hを 4 . 5〜5 . 5の範囲内に設定することが 好ましい。
上記反応系での上記フタル酸または上記フタル酸の塩の濃度が 0 . 2 M以下と なるように調製されていることが好ましい。
上記フ夕ル酸の塩は、 フタル酸水素カリウムであることが好ましい。
ポリエチレングリコールをさらに含み、 上記反応系での上記ポリエチレングリ コールの濃度が 2 ~ 6重量%の範囲内となるように調製されていてもよい。
上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記特異結合物質は、 金属イオンを保持していない上記抗原に特異的に結合する 抗体である構成としてもよい。
上記抗体は、 抗ヒト C反応性蛋白質抗体であってもよい。 金属イオンを供給する金属化合物をさらに含み、 上記被測定物質は、 その内部 に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記抗原は、 その内部に上記 金属イオンを保持する構造を有し、 上記特異結合物質は、 ポリクロ一ナル抗体で ある構成としてもよい。
上記抗体は、 抗ヒト C反応性蛋白質抗体であってもよい。
上記被測定物質は、 抗原であり、 上記特異結合物質は、 上記抗原の複数の結合 部位に結合することが可能なモノクローナル抗体である構成としてもよい。
上記モノクローナル抗体は、 抗ヒト C反応性蛋白質抗体であってもよい。
上記特異結合物質と、 上記フタル酸または上記フ夕ル酸の塩とが混合されてい てもよい。 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の 1つの実施形態の免疫反応測定方法の各工程を表すフローチ ヤートである。
図 2は、 本発明の反応機構に対する本発明者らの推察を説明する模式図である c 図 3 ( a ) および (b ) は、 均一系の免疫反応測定方法の反応系における抗原 および抗体の反応の様子を模式的に示す図である。
図 4は、 本発明の一実施例におけるフ夕ル酸水素力リゥムを含む免疫反応測定 用試薬キットを用いた免疫反応測定方法と比較例について、 比朧法によるヒトァ ルプミン測定を行なった結果を示すグラフである。
図 5は、 本発明の一実施例におけるフ夕ル酸を含む免疫反応測定用試薬キット を用いた免疫反応測定方法と比較例について、 比朧法によるヒトアルブミン測定 を行なった結果を示すグラフである。
図 6は、 本発明の他の実施例におけるフ夕ル酸水素力リゥムを含む免疫反応測 定用試薬キットを用いた免疫反応測定方法について、 比朧法によるヒトアルプミ ン測定における p H依存性を調べた結果を示すグラフである。
図 7は、 本発明のさらに他の実施例におけるフ夕ル酸水素力リウムを含む免疫 反応測定用試薬キットを用いた免疫反応測定方法について、 比朧法によるヒトァ ルブミン測定におけるフタル酸水素カリウム濃度依存性を調べた結果を示すグラ フである。
図 8は、 本発明のさらに他の実施例におけるフ夕ル酸と他の緩衝剤とを含む免 疫反応測定用試薬キットを用いた免疫反応測定方法と比較例について、 比朧法に よるヒトアルブミン測定を行なった結果を示すグラフである。
図 9は、 本発明のさらに他の実施例におけるャギ抗ヒト CRPポリクロ一ナル 抗体とフ夕ル酸とを含む免疫反応測定用試薬キットを用いた免疫反応測定方法と 比較例について、 比朧法によるヒト CRP測定を行なった結果を示すグラフであ る。
図 10は、 本発明のさらに他の実施例におけるマウス抗ヒト CRPモノクロ一 ナル抗体とフ夕ル酸水素力リゥムとを含む免疫反応測定用試薬キットを用いた免 疫反応測定方法と比較例について、 比朧法によるヒト CRP測定を行なった結果 を示すグラフである。 最良の実施形態
上述のように、 試料中の被測定物質の含有量を測定する免疫反応測定方法では、 被測定物質を伴う抗原抗体反応を起こし、 反応後の反応系の光学特性の測定値か ら、 被測定物質の量を算出する。
本発明者らは、 上述の測定の際に、 高い測定値が得られる (すなわち、 測定感 度が高い) 免疫反応測定方法および免疫反応測定用試薬キットを見出した。 さら に、 本発明者らが見出したこの免疫反応測定方法および免疫反応測定用試薬キッ トによれば、 抗原過剰領域で生じる地帯現象 (Z o ne Phenomeno n) を緩和できることも見出した。
以下に、 図 1を参照しながら本発明の実施形態を説明する。 図 1は、 本実施形 態の免疫反応測定方法の各工程を表すフローチャートである。 なお、 本明細書中 では、 用語 「測定値」 は、 特に記載がない限り信号強度と同じ意味であるものと する。
まず、 図 1に示す工程 St 1で、 被測定物質の含有量を測定しょうとする試料 と、 被測定物質に対して特異的に結合する特異結合物質と、 フ夕ル酸またはフタ ル酸の塩とを含む反応系を構築する。 このとき、 上記反応系の pHが 7未満に設 定しておく。 なお、 被測定物質が抗原である場合、 特異結合物質は抗体であり、 被測定物質が抗体である場合、 特異結合物質は抗原である。
このことによって、 被測定物質が試料中に含まれているときには、 被測定物質 と特異結合物質との抗原抗体反応による凝集複合体が生じる。 被測定物質が試料 中に含まれていないときには、 被測定物質と特異結合物質との抗原抗体反応によ る凝集複合体が生じない。
次に、 図 1に示す工程 S t 2で、 反応系の光学特性を測定する。 このとき、 上 記工程 S t 1で凝集複合体が生じる場合には、 上記反応系に濁りが生じ、 散乱光 強度および透過光量などに変化が生じる。 従って、 散乱光強度または透過光量な どを測定することによって、 反応系の濁りの程度を見積もることができる。 ここ で上記反応系から特異結合物質が除かれているものを基準にしながら、 上記反応 系の光学的変化量、 つまり散乱光強度または透過光量の変化量を測定することが 好ましい。 また、 反応系から試料が除かれているものを基準としてもよい。 以上の工程を実施することによって、 抗原抗体反応によって生じる凝集複合体 による反応系の光学特性の測定値を向上させることができる。 従って、 本実施形 態の免疫反応測定方法によれば、 高い測定感度で被測定物質の量を測定すること ができる。 このような効果が得られる理由は現段階では不明であるが、 本発明者 らは以下に述べる理由があると推察している。 この推察を図 2を参照しながら説 明する。
フ夕ル酸およびフタル酸の塩は、 水溶液中ではいずれもフ夕ル酸またはフ夕ル 酸イオンとして存在すると考えられる。 フ夕ル酸またはフ夕ル酸イオンはいずれ も極性を有し、 水溶液中で水分子を引きつけやすい性質があると考えられる。 従 つて、 上記反応系中にフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を添加することによって、 水 分子はフ夕ル酸およびフ夕ル酸イオンの周囲に集まると考えられる。 このため、 図 2に示すように、 抗体分子の周りに存在する水分子が著しく減少し、 抗体分子 の局所的な存在比率が増大する。 従って、 抗原と抗体との衝突が増加し、 抗原抗 体反応が促進されると考えられる。 その結果、 凝集複合体の形成も促進され、 反 応系の光学特性の測定値が向上するものと考えられる。
上述のように、 従来の水溶性高分子を添加する方法では、 測定値を向上させ良 好な S 比を維持し安定した測定を行なうために、 より高濃度あるいは高分子 量の水溶性高分子を添加する必要がある。 このため、 溶液の粘性を増大させ、 そ の分析操作上の取り扱いが困難になるという不具合がある。 しかしながら、 本実 施形態において用いるフ夕ル酸またはフタル酸の塩は低分子物質であるため、 溶 液の粘性を増大させず、 その測定操作上の取り扱いも容易となる。
さらに、 本実施形態の免疫反応測定方法によれば、 抗原が過剰量存在する場合 に生じる地帯現象 (Zone Phenomenon) を緩和できる。 このこと を以下に図 3を参照しながら説明する。 図 3 (a) および (b) は、 均一系の免 疫反応測定方法の反応系における抗原および抗体の反応の様子を模式的に示す図 である。
一般に、 均一系の免疫反応測定方法では、 地帯現象と呼ばれる現象が起こるこ とが知られている。 図 3 (a) に示すように、 通常、 均一系の免疫反応測定方法 では、 抗体と抗原とが交互に結合した巨大な分子鎖である凝集複合体が生じる。 地帯現象とは、 抗原と抗体とが最大量の凝集複合体を形成する当量域よりも、 図 3 (b) に示すように、 抗原が抗体に対して過剰に存在する場合に、 凝集複合体 が生じ難くなる現象のことである。 多価抗体と 2価以上の抗原との間の結合反応 は、 H e i d e 1 b e r g e rらの格子説が有名であり、 Fundament a 1 I mmu no l ogy, Wi l l iam E . Paul編、 (1984) (邦訳 基礎免疫学、 多田富雄監訳、 第 714— 716頁 (1987) ) にその 詳細が記載されている。
地帯現象が起こらない抗体および抗原の濃度領域では、 図 3 (a) に示すよう に、 抗体と抗原とが交互に結合した巨大な分子鎖である凝集複合体が生じる。 こ のとき抗体濃度を一定とすると、 この凝集複合体の量および大きさは、 抗原濃度 に依存して増加する。 このため、 この凝集複合体の量や大きさを光学的な変化量 として測定することによって、 抗原濃度を定量的に測定することができる。 また、 凝集複合体は、 抗体及び抗原の濃度によっては、 溶液中の濁りや凝集物として肉 眼でも十分に確認が可能なものとなるため、 目視などにより定性的な判定を行な うこともできる。
しかしながら、 実際の均一系の免疫反応測定方法においては、 抗体を用いて抗 原濃度を測定することが多い。 また、 抗原濃度が低い場合よりも高い場合に、 測 定値が重要な意味を持つことが多い。 ところが、 抗原が抗体に比べて過剰に存在 する場合、 図 3 ( b ) に示すように、 抗体の結合部位が抗原により飽和された抗 体の量が増加し、 凝集複合体が生じ難くなる。 従って、 抗原抗体反応の結果を、 抗原が低濃度の場合と抗原が過剰の場合との間で区別することが困難になる。 こ のため、 抗原濃度に依存した正しい定量および判定が行なえないおそれがある、 あるいは、 抗原濃度に依存した正しい定量および判定を行なうためには、 測定濃 度範囲が制限されるといった不具合が生じる。 このように、 抗原が過剰に存在す ることによって生じる地帯現象は、 均一系の免疫反応測定方法での不具合の一因 となることが多い。
しかし、 本実施形態の免疫反応測定方法によれば、 抗原が抗体に比べて過剰に 存在する場合に生じる地帯現象を緩和できる。 これは、 上述のように、 上記反応 系中にフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を添加することによって、 凝集複合体の形成 が促進されるからである。
また、 本実施形態 φ免疫反応測定方法によれば、 地帯現象が緩和されることに よって、 被測定物質の高濃度での測定値の落ちこみが軽減される。 このため、 被 測定物質の含有量を正確に測定できる測定濃度範囲を広げることができる。 次に、 各工程について詳細に説明する。
工程 S t 1では、 上述のように、 被測定物質と、 被測定物質に対して特異的に 結合する特異結合物質と、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩とを含む反応系を構築す る。 このとき、 反応系にフ夕ル酸およびフ夕ル酸の塩の両方が含まれていてもよ い。 勿論、 反応系にフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩のいずれか一方がまれていても よい。
また、 工程 S t 1では、 反応系に含まれるフタル酸またはフタル酸の塩によつ て緩衝能が与えられ、 反応系の p Hが 7未満に設定されることが好ましい。 この ことによって、 反応系の p Hを 7未満に設定するために他の緩衝剤を添加するこ となく、 上述した測定値向上の効果および地帯現象の緩和効果を効率的に発揮さ せることができる。 なお、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩により反応系に緩衝能が 与えられるようにするためには、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度が 0 . 0 1 M以上であることが好ましい。
本実施形態の免疫反応測定方法において、 工程 S t 1で反応系の p Hが 4 . 5 〜5 . 5の範囲内であることが好ましく、 4 . 5〜5 . 3の範囲内であることが より好ましく、 4 . 5〜5 . 0の範囲内であることがさらに好ましい。 上記 p H 範囲では、 上述の測定値向上効果が高くなり、 また、 地帯現象の緩和効果も高く なる。 特に、 反応系の p Hが 4 . 5に調整されていることが最も好ましい。 本実施形態の免疫反応測定方法において、 工程 S t 1での反応系におけるフタ ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度は、 0 . 2 M以下であることが好ましい。 このこ とによって、 上述の測定値向上効果がより高くなり、 また、 地帯現象の緩和効果 もより高くなる。 これらの効果をさらに高くするためには、 反応系におけるフタ ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度を 0 . 1 M以下とすることがより好ましく、 特に 上記効果を顕著に高くするためには、 反応系におけるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の 塩の濃度をほぼ 0 . 1 Mとすることがさらに好ましい。
また、 工程 S t 1において、 反応系にさらに別の緩衝剤を添加してもよい。 本 実施形態の免疫反応測定方法で用いることが可能な緩衝剤は、 当該分野で公知の ものである。 例えば、 リン酸二水素一ナトリウム、 リン酸水素ニナトリウムなど からなるリン酸系の緩衝剤、 酢酸ナトリウム、 力コジル酸ナトリウム、 2— ( N —モルホリノ) エタンスルホン酸、 コハク酸などが挙げられる。 緩衝剤を添加す る場合、 反応系に含まれるべき緩衝剤の量は、 用いる緩衝剤の種類、 被測定対象 物を含む試料 (検体) の量、 及び反応系に対する被測定物質である抗原または抗 体に対する抗体または抗原の供給方法などに応じて、 適宜調整すればよい。
本実施形態の免疫反応測定方法で用いられるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩とし ては、 フ夕ル酸、 無水フ夕ル酸、 フタル酸水素カリウム、 フ夕ル酸カリウム、 フ タル酸ニナトリウム、 フ夕ル酸アンモニゥム、 フ夕ル酸銅 (I I ) などが挙げら れる。 これらはいずれも市販されているものであり、 容易に入手できる。 これら を単独または組み合わせて使用することもできる。 これらの中でも、 本実施形態 の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キッ トで用いられるフ夕ル酸の塩と しては、 水に対する溶解性が高く、 また溶解時の水溶液の p Hが 4 . 0付近であ るという観点から、 フ夕ル酸水素カリゥムが特に好ましい。 なお、 フ夕ル酸には、 o—フタル酸、 m—フ夕ル酸および p—フ夕ル酸 (テレ フ夕ル酸) の異性体がある。 本実施形態では、 0 —フ夕ル酸、 m—フタル酸およ び p—フタル酸の混合物を用いてもよい。 また、 水に対する溶解性が高い o —フ タル酸を単独で用いることが最も好ましい。 なお、 フ夕ル酸の塩を用いる場合も フ夕ル酸と同様に、 o—フ夕ル酸、 m—フ夕ル酸および p —フ夕ル酸の塩の混合 物を用いてもよい。 また、 水に対する溶解性が高い o—フ夕ル酸の塩を単独で用 いることが最も好ましい。
また、 本実施形態の免疫反応測定方法の反応系には、 その用途などに応じて、 上述の効果が得られる範囲で、 当該分野で公知である他の任意の成分が付加され 得る。 例えば、 比朧法、 比濁法、 スライ ド凝集法などの均一系の免疫反応測定法 に適用する場合には、 本発明の免疫反応測定方法の反応系にポリエチレングリコ —ル (P E G ) を付加し得る。 その含有量は、 非特異的凝集が少なく、 測定感度 向上の効果が高いという観点から、 本実施形態においては、 上記の反応系に対し て 2〜 6重量%濃度であることが好ましく、 4重量%濃度であることがさらに好 ましい。
また、 抗原または抗体のそれぞれの自己凝集による非特異的混濁を低減するた めに、 本実施形態の反応系にトウィーン 2 0、 ォクチルグルコシド、 ラウリル硫 酸ナトリウム (S D S ) 、 スクロースモノラウレート、 C H A P Sなどの界面活 性剤を付加し得る。 その含有量は、 抗原抗体反応の阻害が少ないという観点から、 本実施形態においては、 反応系に対して 0 . 3 % (w/v ) 以下であることが好 ましく、 0 . 1 % (w/v ) 以下であることがさらに好ましい。
本実施形態の免疫反応測定方法の工程 S t 2において、 反応系の光学特性を測 定するために適用される測定方法は特に限定されない。 特に、 地帯現象が起こり うる比朧法、 比濁法、 スライ ド凝集法などの均一系の免疫反応測定方法を用いれ ば、 より高い効果が期待できる。 また、 自動測定機器による測定が普及している 比朧法または比濁法を適用した場合、 地帯現象の判定に要する工程を削減あるい は簡略化できるため特に好ましい。
本実施形態の免疫反応測定方法において、 抗原一抗体複合体が凝集複合体であ ることが好ましい。 また、 工程 Bにおいて、 凝集複合体に起因する光学的変化量 を測定することにより、 前記凝集複合体を検出することが好ましく、 光学的変化 量が、 散乱光強度または透過光量の変化量であることがさらに好ましい。
本実施形態の免疫反応測定方法は、 代表的には、 以下のようにして行なうこと ができる。 フ夕ル酸またはフタル酸の塩を、 反応系の p Hを酸性に、 好ましくは、 p Hが 4 . 5〜5 . 5に、 より好ましくは p Hが 4 . 5に保たれるように緩衝剤 が含まれた緩衝液に付加する。 このとき、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度は、 抗原抗体反応時の濃度が 0 . 2 M以下、 好ましくは 0 . 1 M以下、 特に好ましく は 0 . 1 Mの濃度になるように付加する。 なお、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩が 緩衝剤を兼ねていてもよい。 被測定物質の含有量を測定したい試料 (検体) と、 特異結合物質を含有する溶液とを上記緩衝液に順次添加および混合することによ り反応系を構築し、 試料を基準として反応系の光学的変化量を測定する。
なお、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を添加する方法、 反応系の p Hを酸性に保 つために緩衝剤を添加する方法、 及び反応系の p Hを調整する方法は上記に限定 されない。 例えば、 特異結合物質を含有する溶液中に、 あらかじめ上記要件を満 たすように、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を混合しておいてもよく、 さらに緩衝 剤を混合しておいてもよい。
次に、 本実施形態の免疫反応測定方法で用いる免疫反応測定用試薬キットを説 明する。
本実施形態の免疫反応測定用試薬キツトは、 被測定物質に対して特異的に結合 する特異結合物質と、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩と、 被測定物質と、 特異結合 物質と、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩とを含む反応系の p Hを 7未満に設定する ための緩衝剤とを含むように調製されている。 被測定物質と上記特異結合物質と の組み合わせは、 抗原と抗体との組み合わせである。
本実施形態の免疫反応測定用試薬キットを、 被測定物質の含有量を測定しょう とする試料に添加することによって、 図 1に示す工程 S t 1で、 被測定物質の含 有量を測定しょうとする試料と、 被測定物質に対して特異的に結合する特異結合 物質と、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩とを含む反応系を構築することができる。 被測定物質が試料中に含まれているときには、 被測定物質と特異結合物質との抗 原抗体反応による凝集複合体が生じる。 被測定物質が試料中に含まれていないと きには、 被測定物質と特異結合物質との抗原抗体反応による凝集複合体が生じな い。
従って、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ トを用いて図 1に示す各工程を 実施することによって、 抗原抗体反応によって生じる凝集複合体による反応系の 光学特性の測定値を向上させることができる。 つまり、 本実施形態の免疫反応測 定用試薬キッ トによれば、 高い測定感度で被測定物質の量を測定することができ る。 さらに本実施形態において用いるフ夕ル酸またはフタル酸の塩は低分子物質 であるため、 溶液の粘性を増大させず、 その測定操作上の取り扱いも容易となる また、 抗原が抗体に比べて過剰に存在する場合に生じる地帯現象も緩和できる さらに、 地帯現象が緩和されることによって、 被測定物質の高濃度での測定値の 落ちこみが軽減される。 このため、 被測定物質の含有量を正確に測定できる測定 濃度範囲を広げることができる。
ここで、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ トは、 フタル酸とフタル酸の塩 の両方を含んでいてもよい。 また、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩によって緩衝能 が与えられ、 上記工程 S t 1の反応系の p Hが 7未満になるように調製されてい ることが好ましい。 つまり、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩が緩衝剤としても機能 することが好ましい。
また、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ トは、 さらに別の緩衝剤を含んで いてもよい。 このとき緩衝剤としては、 当該分野で公知のものを用いることがで きる。 例えば、 リン酸ニ水素ーナトリゥム、 リン酸水素ニナトリウムなどのリン 酸塩からなるリン酸系の緩衝剤、 酢酸ナトリウム、 力コジル酸ナトリウム、 2— ( N—モルホリノ) エタンスルホン酸、 コハク酸などが挙げられる。 この場合、 緩衝剤の量は、 用いる緩衝剤の種類、 被測定対象物を含む試料 (検体) の量、 及 び反応系に対する被測定物質である抗原または抗体に対する抗体または抗原の供 給方法などに応じて、 適宜調整すればよい。
また、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ トは、 上記工程 S t 1で反応系の p Hが 4 . 5〜5 . 5の範囲内になるように調製されていることが好ましく、 4 . 5〜5 . 3の範囲内になるように調製されていることがより好ましく、 4 . 5 〜5 . 0の範囲内になるように調製されていることがさらに好ましい。 上記 p H 範囲では、 上述の測定値向上効果が高くなり、 また、 地帯現象の緩和効果も高く なるからである。 特に、 反応系の p Hがほぼ 4 . 5になるように調整されている ことが好ましい。
本実施形態の免疫反応測定用試薬キットは、 工程 S t 1での反応系におけるフ タル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度が 0 . 2 M以下となるように調製されているこ とが好ましい。 このことによって、 上述の測定値向上効果がより高くなり、 また、 地帯現象の緩和効果もより高くなる。 これらの効果をさらに高くするためには、 反応系におけるフタル酸またはフタル酸の塩の濃度が 0 . 1 M以下となるように 調製されていることがより好ましく、 特に上記効果を顕著に高くするためには、 反応系におけるフタル酸またはフタル酸の塩の濃度がほぼ 0 . 1 Mとなるように 調製されていることがさらに好ましい。
本実施形態の測定用試薬キッ トに含まれるフ夕ル酸またはフタル酸の塩として は、 フ夕ル酸、 無水フ夕ル酸、 フ夕ル酸水素カリウム、 フ夕ル酸カリウム、 フタ ル酸ニナトリウム、 フ夕ル酸アンモニゥム、 フ夕ル酸銅 ( I I ) などが挙げられ る。 これらはいずれも市販されているものであり、 容易に入手できる。 これらを 単独または組み合わせて使用することもできる。 これらの中でも、 本実施形態の 免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キッ トで用いられるフ夕ル酸の塩とし ては、 水に対する溶解性が高く、 また溶解時の水溶液の p Hが 4 . 0付近である という観点から、 フ夕ル酸水素カリウムが特に好ましい。
なお、 フ夕ル酸には、 o—フ夕ル酸、 m—フ夕ル酸および p—フタル酸 (テレ フ夕ル酸) の異性体がある。 本実施形態では、 0 —フ夕ル酸、 m—フ夕ル酸およ び p—フ夕ル酸の混合物を用いてもよい。 また、 水に対する溶解性が高い o —フ タル酸を単独で用いることが最も好ましい。 なお、 フ夕ル酸の塩を用いる場合も フ夕ル酸と同様に、 0—フ夕ル酸、 m—フ夕ル酸および p —フ夕ル酸の塩の混合 物を用いてもよい。 また、 水に対する溶解性が高い o—フ夕ル酸の塩を単独で用 いることが最も好ましい。
また、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キットには、 その用途などに応じて、 上述の効果が得られる範囲で、 当該分野で公知である他の任意の成分が付加され 得る。 例えば、 比朧法、 比濁法、 スライ ド凝集法などの均一系の免疫反応測定法 に適用する場合には、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キットにポリエ- リコール (PEG) を付加し得る。 その付加される量は、 非特異的凝集が少なく、 測定感度向上の効果が高いという観点から、 本実施形態では、 上記の反応系にお いて 2〜6重量%濃度となる量であることが好ましく、 4重量%濃度となる量で あることがさらに好ましい。
また、 抗原または抗体の自己凝集による非特異的混濁を低減するために、 本実 施形態の免疫反応測定用試薬キットにトウィーン 20、 ォクチルグルコシド、 ラ ゥリル硫酸ナトリウム (SDS) 、 スクロースモノラウレート、 CHAPSなど の界面活性剤を付加してもよい。 なお、 本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ ト において、 それらが付加される量は、 抗原抗体反応の阻害が少ないという観点か ら、 反応系の 0. 3% (w/v) 以下であることが好ましく、 0. 1% (w/ V) 以下であることがさらに好ましい。
本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ トが適用される測定系は特に限定されな い。 特に、 地帯現象が起こりうる比朧法、 比濁法、 スライ ド凝集法などの均一系 の免疫反応測定方法を用いれば、 より高い効果が期待できる。 また、 自動測定機 器による測定が普及している比朧法または比濁法と同様の測定方法を適用した場 合、 地帯現象の判定に要する工程を削減あるいは簡略化できるため特に好ましい 本実施形態の免疫反応測定用試薬キッ トは、 代表的には、 以下のようにして作 製することができる。
被測定物質 (ここでは抗原とする) に特異的に結合する特異結合物質 (ここで は抗体とする) を含む溶液と、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む溶液とをそれ それ別に調製する場合は、 次のようになる。
フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む溶液は、 反応系の pHが 7未満に保たれる ように緩衝剤を用いて調製する。 特に、 pHが 4. 5-5. 5の範囲内になるよ うに調製されていることが好ましく、 4. 5〜5. 3の範囲内になるように調製 されていることがより好ましく、 4. 5〜5. 0の範囲内になるように調製され ていることがさらに好ましい。 特に、 反応系の pHが 4. 5になるように調整さ れていることが最も好ましい。 また、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の反応系での濃度 が 0. 2M以下、 好ましくは 0. 1M以下、 特に好ましくはほぼ 0. 1Mの濃度 になるように、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩および緩衝剤の量を調整し、 これら を純水に溶解することにより作製する。
なお、 上記要件が満たされるのであれば、 緩衝剤、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の 塩を、 それそれ別々の溶液中に溶解して調製してもよい。 また、 上記 p H範囲を 満たすのであれば、 緩衝剤を添加せずにフ夕ル酸またはフタル酸の塩が緩衝剤を 兼ねる溶液としてもよい。
特異結合物質を含む溶液は、 上述のフ夕ル酸またはフタル酸の塩を含む溶液と 混合したときに、 反応系が上記要件を満たすのであれば、 任意の組成であってよ い o
また、 特異結合物質と、 上記フ夕ル酸または上記フ夕ル酸の塩とを予め混合し ておいてもよい。 その場合は、 上記で示した要件を満たすように、 調製したフタ ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む溶液で、 特異結合物質を含む溶液を、 透析あるい はゲルろ過して低分子成分を置換すればよい。
本実施形態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キットの被測定物質で ある抗原または抗体は、 特に限定されず、 一般に抗原抗体反応を利用して測定で きる物質であればいずれでもよい。 例えば、 蛋白質、 核酸、 脂質、 細菌、 ウィル ス、 ハプテンなどが挙げられる。 この中で、 蛋白質は抗原抗体反応を用いた臨床 検査上の主たる測定対象であるため、 被測定物質が蛋白質である場合、 本実施形 態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キットは非常に適している。 蛋白 質として例えば、 L H (黄体形成ホルモン) 、 F S H (卵胞刺激ホルモン) 、 h C G (絨毛性性腺刺激ホルモン) などのホルモンや、 各種免疫グロブリンクラス やサブクラス、 補体成分、 各種感染症のマーカ一、 C R P、 アルブミン、 リウマ チ因子、 血液型抗原などが挙げられる。 この中で、 被測定物質としてヒトアルブ ミンまたはヒト C反応性蛋白質 (以下、 ヒト C R Pと略す) を測定する必要があ る場合、 特に本実施形態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キット好適 に利用することができる。
フ夕ル酸及びフ夕ル酸の塩はキレ一ト作用を持っており、 反応系に存在する C a 2 +や F e 3 +などの二価及び三価の金属イオンを効率的に奪う性質がある。 この ため、 抗原がその内部に金属イオンを保持する構造を有している場合、 抗原に特 異的に結合する抗体は、 金属イオンが脱離した状態の抗原にも特異的に結合する ことが好ましい。 このようにすると、 抗原が、 金属イオンの脱離により分子構造 に変化を生じる物質であっても、 測定を行なうことができる。
また、 抗原がその内部に金属イオンを保持する構造を有し、 金属イオンの脱離 により抗原の分子構造に変化が生じる場合、 抗原が保持している金属イオンと同 じ金属イオンを反応系に添加し、 反応系に上記金属イオンが存在するようにして もよい。 このことによって、 反応系において金属イオンの脱離による抗原の分子 構造の変化が抑制され、 抗原に抗体が結合可能となり、 測定を行なうことができ る。
このとき、 添加する金属イオンの量は、 使用するフ夕ル酸またはフタル酸の塩 のキレート能、 その濃度、 抗原が持つ金属イオンの保持能などに基づき設定すれ ばよい。
金属イオンを保持することが可能な分子構造を有する抗原としては、 C R Pが 挙げられる。 C R Pは、 C a 2 +の有無によって構造変化を生じる。 このため、 例 えば、 本実施形態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キッ トで用いる抗 原がヒト C R Pであり、 抗体として C a 2 +を未保持のヒト C R Pに結合しない抗 体を含むャギ抗ヒト C R Pポリクロ一ナル抗体を、 さらに、 フ夕ル酸またはフタ ル酸の塩としてフ夕ル酸を用いた場合には、 0 . 0 2 Mのフ夕ル酸に対して、 0 . 0 2 Mの C a 2 +を反応系に添加することが好ましい。
また、 抗原が、 少なくとも 1種類の抗体に対して複数の結合部位を持つ物質で ある場合、 抗体は抗原の複数の結合部位に結合するモノクローナル抗体であるこ とが好ましい。 モノクローナル抗体は、 ハイプリ ドーマ細胞株により産生される ハイプリ ドーマ細胞株は、 抗体を産生する B細胞と骨髄腫瘍細胞 (ミエローマ細 胞) を細胞融合することにより得られた抗体産生能と強い増殖能を併せ持つ融合 細胞集団より一つの細胞のみを分離し、 増殖させることによって確立されるもの である。 このため、 産生される抗体の性状は同じである。 また、 ハイプリ ド一マ 細胞株は増殖能が強く、 凍結保存が可能であるため、 適切な管理をしていれば尽 きることがなく、 ハイプリ ドーマ細胞株を培養液あるいは腹腔中で培養し、 精製 することにより、 永久に同じ性状の抗体を得続けることができる。 一方、 ポリクローナル抗体は、 動物に抗原を投与し、 血液中に抗原に結合する 抗体を多量に出現させ、 この血液の全部あるいは一部を採取し、 精製することに より得られる。 このため、 その性質は動物の個体差、 生育環境、 状態などに依存 する。 従って、 同一性状の抗体を得続けることが困難である。
つまり、 モノクローナル抗体を使用することにより、 常に同じ性状の抗体を使 用することが可能となり、 試薬としての抗体の供給が安定する。 その結果、 本実 施形態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キットによる免疫反応測定結 果の安定化を図ることができる。
本実施形態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キットに用いられる抗 体は特に限定されず、 抗原と特異結合するものであれば、 I gG、 I gM、 I g E、 I gA、 I gDのいずれのクラスの抗体であってもよい。 この中でも、 I g G抗体が好ましい。 これは、 I gG抗体が非特異的な反応を生じにくい性質があ り、 また比較的市販されているものも多いため入手も容易だからである。 また、 抗体の由来動物種も、 特に限定されないが、 ゥサギ、 ャギ、 マウス由来の抗体が 比較的入手も容易であり、 使用例も多いため好ましい。 実施例
以下、 本発明の実施例を説明するが、 本発明はこれらに限定されるものではな い。
(実施例 1 )
以下で、 ヒトアルブミンを被測定物質とした場合の免疫反応測定用試薬キット の構成方法を示す。 本実施例では、 スライ ド凝集法、 比濁法及び比朧法による測 定に使用することが可能な、 抗体溶液及びフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩 衝液からなる免疫反応測定用試薬キットの作製方法について述べる。
以下に示した緩衝液などの調製には、 Mi l l i— Q SP TOC (Mi l l ip ore製) でろ過した純水を使用した。 また、 以下で特に記載の無い塩、 緩衝剤などの試薬は、 いずれも和光純薬工業製のものを入手し、 ポリエチレング リコール 6, 000、 t r an s—アコニット酸は 1級試薬を、 それ以外のもの は特級試薬を使用した。 まず、 抗体溶液の調製を行なった。 ゥサギ抗ヒトアルブミンポリクローナル抗 体は、 ヒトアルブミン (和光純薬工業製) を免疫したゥサギより採取した抗血清 より、 プロテイン Aカラムクロマトグラフィーを用いて精製した。 カラムに充填 したプロテイン A固定化ゲルは、 アマシャム · フアルマシア製のものを使用した c 精製に用いた平衡化緩衝液には、 1. 5Mグリシン、 3. OM NaC l、 H 8. 9の組成のものを使用し、 溶出緩衝液には、 0. 1Mクェン酸、 pH4. 0 の組成のものを使用した。
精製は次のようにして行なった。 カラムに充填したゲル容量の 5倍の平衡化緩 衝液を流してカラムを平衡化した後、 カラム全結合容量の 10〜20%の抗体を 含む抗血清を平衡化緩衝液で容量を 2倍に希釈してカラムに流し、 血清中の抗体 をプロテイン Aに結合させた。 続いて、 平衡化緩衝液をプロテイン Aに吸着しな い血清成分がカラムより出てこなくなるまで流し、 カラムを洗浄した。 続いて、 カラムに溶出緩衝液を流し、 プロテイン Aに結合した抗体を溶出した。 溶出した 抗体分画を分画分子量 1万の透析チューブに入れ、 約 100倍容量の 0. 05M
3— (N—モルホリノ) プロパンスルホン酸 (D o j i n製、 以下モブスと略 称する) 、 0. 15M NaC l、 0. 04重量% NaN3、 p H 7. 4の組 成の緩衝液で数回透析して、 緩衝液成分を置換した。 続いて、 抗体濃度を 280 n mの吸光度測定により推定し、 透析で用いたものと同じ緩衝液で調整して抗体 濃度を 3. OmgZmlとし、 これを抗体溶液とした。 なお抗体濃度は、 特にこ れに限定されるものではない。 作製した抗体溶液は室温でも保存することができ るが、 抗体の変性防止の点からは、 より低温保存が好ましく、 4°Cで保存するこ とがより好ましい。
フ夕ル酸またはフタル酸の塩を含む緩衝液の調製は次のようにして行なつた。 なお、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩として、 それぞれフ夕ル酸およびフタル酸水 素力リゥムを使用し、 各物質による緩衝液をそれそれ構成した。
フ夕ル酸水素力リゥムを用いた緩衝液の構成方法は次のように行なった。 最終 濃度で、 フ夕ル酸水素カリウムを 0 · 05M、 ポリエチレングリコール 6, 00 0を 4重量%になるように計量し、 それそれを調製目的体積の約 90%の純水に 溶解した。 これに NaOH水溶液を添加して pHを 4. 5に調整し、 純水で調製 目的体積に調整した。 作製した緩衝液は室温保存した。
フタル酸を用いた緩衝液の構成方法は次のように行なった。 最終濃度で、 フタ ル酸を 0. 03M、 ポリエチレングリコール 6 , 000を 4重量%になるように 計量し、 それそれを調製目的体積の約 90%の純水に溶解した。 これに NaOH 水溶液を添加して pHを 4. 5に調整し、 純水で調製目的体積に調整した。 作製 した緩衝液は室温保存した。
以上のように構成したフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液の少なくとも 一方を抗体溶液と組み合わせることにより、 免疫反応測定用試薬キットを構成す ることができる。
(実施例 2)
次に、 ヒト CRPを被測定物質とした場合の免疫反応測定用試薬キットの構成 方法を示す。 ヒト CRPは、 同一の構造を持つ 5個のサブユニットからなる構造 を持っため、 1種類の抗体に対して複数の結合部位を持つ物質である。 このため、 1種類の抗 CRPモノクローナル抗体を使用することによつても、 均一系の免疫 反応測定に使用される免疫反応測定用試薬キットを作製することができる。 モノ クロ一ナル抗体の種類は 2種類以上であってもよい。
このため本実施例では、 ポリクローナル抗体溶液とモノクローナル抗体溶液を それそれ用いた 2種類の抗体溶液と、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液 とからなる免疫反応測定用試薬キットを作製した。
まず、 ポリクロ一ナル抗体溶液の調製方法を示す。
ャギ抗ヒト CRPポリクローナル抗体を、 ヒト CRPを免疫したャギより採取 した抗血清から、 プロテイン Gカラムクロマトグラフィーを用いて精製した。 力 ラムに充填したプロテイン G固定化ゲルには、 アマシャム ·フアルマシア製のも のを使用した。 精製に用いた平衡化緩衝液には、 0. 02M Na2HP04-N aH2P04、 p H 7. 0の組成のものを使用し、 溶出緩衝液には、 0. 1Mグリ シン、 pH2. 7の組成のものを使用した。 カラムクロマトグラフィーによる精 製法、 透析による緩衝液の置換方法については、 実施例 1と同様の方法を用いた。 続いて、 抗体濃度を 28 Onmの吸光度測定により推定し、 透析で用いたものと 同じ緩衝液で調整して抗体濃度を 1. Omg/mlとし、 これをポリクローナル 抗体溶液とした。
ヒト CRPは C a2+の保持の有無によって構造変化を生じる。 このため、 免疫 反応測定用試薬キッ トを構成する抗体溶液に Ca2 +を未保持のヒト CRPに対し て結合しない抗体が含まれる場合、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩によるキレート 作用により、 Ca2 +を未保持のヒト CRPが増加し、 抗原抗体反応の反応率の低 下が生じる可能性がある。 ここでは、 ポリクローナル抗体溶液を調製したため、 Ca2 +を未保持のヒト CRPに対して結合しない抗体がポリク口一ナル抗体溶液 に含まれる。 従って、 以下に示すフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液の調 製では、 ヒト CRPの構造を保っために、 緩衝液に C a 2+を添加した。
具体的には、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液の調製を次のように行 なった。 なお、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩として、 本実施例ではフタル酸を使 用した。
最終濃度で、 フ夕ル酸を 0. 02 M、 CaCl2を 0. 02 M、 ポリエチレン グリコ一ル 6, 000を 4重量%になるように計量し、 それぞれを調製目的体積 の約 90%の純水に溶解した。 得られた溶液に N a 0H水溶液を添加して pHを 4. 5に調整し、 純水で目的体積に調整することにより緩衝液を得た。 得られた 緩衝液を室温保存した。
次に、 モノクローナル抗体溶液の調製方法を示す。
モノクローナル抗体としては、 反応系へのキレート剤 (例えば、 0. 02Mの フ夕ル酸またはエチレンジァミン四酢酸など) の添加によってもヒト CRPに対 する結合能力を喪失しない、 すなわち、 Ca2 +を保持していないヒ ト CRPとも 特異的に結合する抗体を用いた。 具体的には、 モノクローナル抗体溶液を次のよ うに調製した。
本実施例で用いたマウス抗ヒト CRPモノクローナル抗体は、 次のようにして 得られた。 まず、 マウス抗ヒト CRPモノクローナル抗体を産生するハイプリ ド 一マ細胞 (工業技術院生命工学工業技術研究所受託番号 FERM BP- 662 0号) をマウス腹腔内に注入し、 増殖させることにより腹水を得た。 得られた腹 水より、 実施例 1と同様のカラムクロマトグラフィ一法を用いて精製することに よってマウス抗ヒト CRPモノクローナル抗体試料を得た。
腹水は、 具体的には次のようにして得られた。 腹水の産生には、 リタイアした メスの B AL BZcマウスを用いた。 マウスの腹腔内に 0. 5〜lmlのプリス タンを注入し、 約 7日後に下記細胞懸濁液を 0. 5〜 lml注入した後、 腹水産 生の見られたマウスより順に腹水を採取した。 ここで、 腹腔内に注入したハイプ リ ドーマ細胞懸濁液は、 RPMI 1 640培地 (S I GMA製) に 5〜 15体積 %のゥシ胎児血清を混合した培地を用いた培養により増殖させたものを、 RPM 1 1640培地で遠心洗浄し、 l x l 06〜107c e l l sZmlの濃度になる ように RPMI 1 640培地に再懸濁することによって得られた。
次に、 カラムクロマトグラフィーによる精製を終えたマウス抗ヒト CRPモノ クローナル抗体試料を、 分画分子量 1万の透析チューブに入れ、 約 100倍容量 の 0. 04重量%NaN3を含む PB S緩衝液 (8 NaC l、 0. 2 g
/1 KC 1、 1. 15 g/1 Na2HP04 · 12 H20、 0. 2 g/1 K H2P O4, pH 7. 4) で数回透析して、 緩衝液成分を置換した。 続いて、 抗体 濃度を 280 nmの吸光度測定により推定し、 透析で用いたものと同じ緩衝液で 調整して抗体濃度を 1. OmgZmlとし、 これをモノクローナル抗体溶液とし た。
フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液の調製は次のようにして行なつた。 フ夕ル酸またはフタル酸の塩には、 フ夕ル酸水素カリウムを使用して緩衝液を構 成した。 なお、 本実施例のモノクローナル抗体溶液の抗体は、 ヒト CRPの Ca 2+保持の有無による構造変化の影響を受けないため、 緩衝液には C a2 +を添加し なかった。
フ夕ル酸水素力リゥムを用いた緩衝液の構成方法は次のように行なった。 最終 濃度で、 フ夕ル酸水素カリウムを 0 · 05M、 ポリエチレングリコ一ル 6 , 00 0を 4重量%になるように計量し、 それそれを調製目的体積の約 90 %の純水に 溶解した。 得られた溶液に NaOH水溶液を添加して pHを 4. 5に調整し、 純 水で調製目的体積に調整することにより緩衝液を得た。 得られた緩衝液を室温保 存した。
なお、 上述のように作製した各抗体溶液の濃度は、 特にこれらに限定されるも のではない。 また、 作製した各抗体溶液は室温でも保存することができるが、 抗 体の変性防止の点からは、 より低温保存が好ましく、 4°Cで保存することがより 好ましい。
以上のように構成したフ夕ル酸またはフタル酸の塩を含む緩衝液を抗体溶液と 組み合わせることにより、 免疫反応測定用試薬キットを構成することができる。 実施例 1及び 2で構成した試薬の使用方法は、 反応系を構築するために、 抗原 を含む試料 (検体) 、 抗体溶液、 フタル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液を混 合して使用する。 混合方法は任意の方法によればよい。 混合する比率は、 必要と する抗原濃度の測定範囲に応じて決定することができる。 混合により構築された 反応系では抗原抗体反応が生じ、 凝集複合体が生成する。 凝集複合体による反応 系の濁りの程度を、 散乱光強度の変化量などを測定することによって見積もり、 その結果に基づいて検体中の抗原濃度を知ることができる。
混合により、 緩衝剤、 フタル酸またはフ夕ル酸の塩、 ポリエチレングリコール 6 , 000などの添加剤の濃度が初期濃度より希釈されるが、 希釈された濃度と 初期濃度との差が 10%程度までなら、 得られる測定結果は、 初期濃度から予想 される測定結果とは大差がなく多大な影響を受けない。 また、 希釈による濃度変 化を回避するために、 混合時に試薬中の各物質の濃度が目的濃度になるように、 抗体溶液およびフタル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液を調製しておいてもよ い。
なお、 実施例 1及び 2では示さなかったが、 抗体をラテックス、 金コロイ ド、 磁気微粒子などの微粒子担体に固定化してもよく、 また、 抗体に酵素、 色素、 蛍 光物質、 発光物質などを標識してもよい。
抗体溶液の調製に用いる緩衝剤及び抗体溶液の pHは、 上述の組成及び pHに 限定されない。 例えば、 一液系の試薬を構成する場合は、 抗体溶液にフ夕ル酸ま たはフタル酸の塩を含ませる。 このため、 反応系の pHを 7未満に維持するため に、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む酸性緩衝液で透析を行なえばよい。 実施例 1及び 2では、 pH調整に NaOHを使用したが、 KOH、 L iOH、 NH4OH、 C a (OH) 2、 M g (OH) 2などの水酸化物を使用してもよい。 また、 実施例 1及び 2では、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液の調製 にフ夕ル酸水素力リゥムおよびフ夕ル酸を使用したが、 他のフタル酸またはフタ ル酸の塩であってもよく、 例えば、 無水フ夕ル酸、 フ夕ル酸カリウム、 フ夕ル酸 ニナトリウム、 フ夕ル酸アンモニゥム、 フ夕ル酸銅 ( I I ) などのいずれかを用 いてもよい。 また、 これらを組み合わせて使用することもでき、 その場合の p H 調整は、 純水に溶解したときの p Hが、 調整目的とする p Hよりアルカリ側の場 合、 H C 1などを利用し、 調整目的とする p Hより酸性側の場合、 上記で示した 水酸化物などを利用して行えばよい。 また、 上記で例示したフ夕ル酸またはフタ ル酸の塩の混合比を調整して行なってもよい。
また、 実施例 1及び 2では、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液の主た る緩衝能がフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩によって付与された場合の作製方法を示 した。 しかし、 緩衝液に添加されるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度は特に限 定されるものではない。 また、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩を含む緩衝液の主た る緩衝能が他の緩衝剤によって付与されてもよく、 フタル酸またはフ夕ル酸の塩 と他の緩衝剤とを協調させて緩衝能が付与されてもよい。
(実施例 3 )
本実施例では、 本発明によるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む酸性反応系で の抗原測定に対する効果を、 免疫反応測定方法で一般的に使用されている中性反 応系での抗原測定と対比して示す。 対比は、 ヒトアルブミンを比朧法により測定 して行なった。 フタル酸またはフ夕ル酸の塩を含む酸性反応系を構成するための 試薬は、 実施例 1で構成したものを用いた。
以下、 実施例 1で作製したフタル酸水素カリウムを用いた緩衝液をフ夕ル酸水 素カリウム緩衝液と称し、 フタル酸を用いた緩衝液をフタル酸緩衝液と称する。 また、 比較例として、 中性反応系を構成するための緩衝液の構成にはモプスを 使用し、 0 . 0 5 Mモブス、 4重量%ポリエチレングリコ一ル 6, 0 0 0、 p H 7 . 4の組成のものと、 0 . 0 3 Mモプス、 4重量%ポリエチレングリコール 6 , 0 0 0、 p H 7 . 4の組成のものとを用意した。 以下、 それぞれ、 0 . 0 5 M モプス緩衝液及び 0 . 0 3 Mモプス緩衝液と称する。 各緩衝液は室温で保存した。 抗原に用いたヒトアルブミン (和光純薬工業製) と、 0 . 0 5 Mモブス、 0 . ◦ 4重量%NaN3、 pH7. 4の組成の緩衝液とを用いて、 ヒトアルブミン濃 度がそれそれ 0、 5、 10、 20、 30、 50、 70、 100、 200、 300、 500 mg/d 1であるヒトアルブミン溶液を作製した。 ヒトアルブミン溶液は 使用時まで 4°Cで保存した。
測定には、 分光蛍光光度計 (島津製作所製、 型番 RF— 5300 P C) を使用 した。 分光蛍光光度計の試料室に、 恒温水槽 (TAI TEC製、 商品名 COOL NI T BATH EL- 15) に接続された恒温セルホルダ (島津製作所製、 型番 206 - 15440) を配置し、 温度を 25 °Cに保った水を恒温水槽内で循 環させて、 測定時の石英セル内の温度を一定に保てるようにした。 分光蛍光光度 計の測定条件は、 励起、 蛍光波長を共に 67 Onmとし、 蛍光側、 励起側共にバ ンド幅を 3 nmに、 感度は高感度に設定した。
測定は次のようにして行なった。 2. 87mlの各緩衝液に 0. 1mlの実施 例 1で調製した抗体溶液を添加して攪拌混合した後、 各混合液に各濃度のヒトァ ルブミン溶液 0. 03mlをそれそれ加え攪拌混合した。 反応系におけるゥサギ 抗ヒトアルブミンポリクローナル抗体は約 0. 10mgZml、 ヒトアルブミン 濃度は測定に使用したヒトアルブミン溶液の濃度に 0. 01を乗じたものになる。 これを蛍光分析用の石英セルに移し、 分光蛍光光度計に設置し、 T型熱電対 (R Sコンポ一ネンッより入手、 型番 219 -4696) を石英セル内に浸潰し、 ヒ トアルブミンを混合後 2分間経過した時点からタイムコース測定で、 0. 04秒 間隔で 300秒間測定した。 測定中の石英セル内の温度は、 T型熱電対をデジ夕 ルマルチサ一モメ一夕 (ァドバンテスト製、 型番 TR 21 14) に接続してモニ 夕した。 石英セルの汚れが測定に与える影響を除くために、 各反応の測定前にセ ル中に純水を入れて測定した値を用いて補正した。 測定により得られた 200〜 300秒の間の各測定値の平均値を求め、 これを各濃度のヒトアルブミン溶液に 対する測定値とした。 各緩衝液、 抗体溶液、 各濃度のヒトアルブミン溶液の混合 による反応系の pHへの影響を見るために、 測定終了後、 pH計で、 反応系の混 合液の pH測定を行なった。
次に測定結果を述べる。 各測定に使用した各緩衝液、 抗体溶液、 各濃度のヒト アルプミン溶液からなる反応系の混合液の pHは、 緩衝液の p Hとほぼ同じであ つた。 また、 熱電対測定によって得られた各測定中のセル内の温度は 25. 5士 1 °Cに保たれていた。
図 4は 0. 05 Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液による反応系と、 0. 05Mモ ブス緩衝液による反応系に対して、 それそれ 50 Omg/d 1までの各ヒトアル ブミン溶液を加えて測定した結果をプロットしたものである。 縦軸は散乱光強度 を表し、 横軸は測定に使用したヒトアルブミン溶液の濃度で示す。 散乱光強度が 大きいほど、 反応系の濁りの程度 (濁度) が高いことを示し、 抗原抗体反応によ る凝集複合体が多く形成されたことを示している。 なお、 プロットされた各値は、 各緩衝液について、 得られた各濃度のヒトアルブミン溶液の測定値からヒトアル プミン濃度が 0 m g/d 1の測定値を差し引いたものである。
図 4に示すように、 0. 05 Mモプス緩衝液を用いて測定した場合よりも、 0 . 05 Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液を用いて測定した場合の方が明らかに高い 測定値を示した。 また、 0. 05 Mモプス緩衝液を用いた場合は、 50mgZd 1付近に測定値のピークが現れ、 ヒトアルブミンが高濃度となるにつれて地帯現 象により、 測定値は大きく減少を示した。 しかし、 0. 05Mフ夕ル酸水素カリ ゥム緩衝液を用いた場合は、 70〜10 Omg/d 1付近に測定値のピークを持 ち、 ヒトアルブミンが高濃度となっても、 地帯現象による測定値の減少が抑えら. れていた。
図 5は 0. 03Mフ夕ル酸緩衝液を用いた反応系と、 0. 03Mモプス緩衝液 を用いた反応系とに対して、 それそれ 50 Omg/d 1までの各濃度のヒトアル ブミン溶液を加えて測定した結果をプロットしたものである。 縦軸は散乱光強度 を表し、 横軸は測定に使用したヒトアルブミン溶液の濃度で示す。 なお、 プロッ トされた各値は、 各緩衝液について、 得られた各濃度のヒトアルブミン溶液の測 定値から、 ヒトアルブミン濃度が Omg/d 1の測定値を差し引いたものである c 図 5に示すように、 0. 03 Mモプス緩衝液を用いて抗原抗体反応を測定した 場合よりも、 0. 03Mフタル酸緩衝液を用いて測定した場合の方が、 明らかに 高い測定値を示した。 また、 0. 03 Mモプス緩衝液を用いた場合は、 50mg /d 1付近を測定値のピークとして、 ヒトアルブミンが高濃度となるにつれて地 帯現象により、 測定値は大きく減少を示した。 しかし、 0. 03Mフ夕ル酸緩衝 液を用いた場合は、 7 0〜 1 0 O m gZd 1付近に測定値のピークを持ち、 ヒト アルブミンが高濃度となっても、 地帯現象による測定値の減少が抑えられていた 以上の結果からわかるように、 本発明の免疫反応測定方法および免疫反応測定 用試薬キットによれば、 従来の免疫反応測定方法および免疫反応測定用試薬キッ 卜よりも高い測定値が得られることが確認できた。 また、 従来の免疫反応測定方 法および免疫反応測定用試薬キットよりも地帯現象を緩和させ得ることも確認で きた。
臨床検査では、 糖尿病性腎症の早期診断マーカーとして、 尿中に排泄される微 量なヒトアルブミンが測定対象となっており、 0 . 1〜2 O m g/ d 1の範囲を 定量領域としている免疫反応測定方法および免疫反応測定用試薬キットが多い (新 ·糖尿病性腎症 発症予防と進展防止のために、 繁田幸雄、 海津嘉蔵 編集、 第 1 3 1頁 ( 1, 9 9 2 ) 参照のこと) 。 比朧法による従来の測定方法及びそれに 用いられる試薬キットによれば、 地帯現象を緩和するためには、 均一系の免疫反 応が平衡反応であることを利用し、 反応系として構築される中性緩衝液中の抗体 濃度を増すか、 あるいは、 中性緩衝液の希釈などにより抗原濃度を低下させるこ とにより解決する必要がある。
しかし、 本発明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キットを適用すれ ば、 抗体濃度が低く、 且つ、 抗原濃度が高い場合にも地帯現象を緩和できる。 こ のため、 例えば、 本実施例での測定結果をもとにすると、 2 0 m gZd lの測定 値以上を陽性値とする判定領域を設けることにより、 0 . 0 5 Mフ夕ル酸水素力 リウム緩衝液あるいは、 0 . 0 3 Mフ夕ル酸緩衝液により構成した反応系では、 5 0 O m g/ d 1までの広範囲を測定範囲とすることが可能である。 しかし、 比 較例の中性緩衝液系では、 1 2 0〜1 3 O m g/d 1程度までが限界である。 以上示したように、 本発明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キット によれば、 従来の中性緩衝液系での測定に比べても、 より広い濃度範囲のヒトァ ルブミンを地帯現象の影響を考えることなく測定することができる。
(実施例 4 )
次に、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩としてフ夕ル酸水素力リゥムを用いた本発 明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キットによる測定値の P H依存性 を、 比朧法により調べた内容について示す。 被測定物質としてはヒトアルブミン を用いた。 ヒトアルブミン溶液の調製は、 実施例 3と同様の方法により行い、 濃 度が 0、 5、 10、 20、 30、 50、 70、 100、 200、 300、 500 mg/d 1のものを用意した。 抗体溶液は、 実施例 1と同じのものを用いた。 測定値の pH依存性を調べるための反応系を構成する緩衝液として、 0. 05 Mフ夕ル酸水素力リゥム及び 4重量%ポリエチレングリコール 6, 000を含む 溶液の pHを 4. 0、 4. 5、 5. 0、 5. 5、 6. 0にそれそれ調整した 0. 05 Mフ夕ル酸水素力リゥム緩衝液を用意した。
比較例としては、 0. 05 Mモプス及び 4重量%ポリエチレングリコール 6, 000を含む溶液の pHを 7. 4に調整した 0. 05 Mモプス緩衝液を用いた。 装置及び測定法は、 実施例 3と同様である。
結果について述べる。 各測定に使用した各緩衝液、 抗体溶液、 各濃度のヒトァ ルプミン溶液からなる反応系の混合液の p Hは、 緩衝液の p Hと同一であった。 また、 測定中の石英セル内の温度は 25. 5 ± 1°Cに保たれていた。
得られた結果を図 6に示す。 図 6は各 pHの 0. 05 Mフ夕ル酸水素カリウム 緩衝液により構築した反応系に対して、 それそれ 50 OmgZd 1までの各ヒト アルブミン溶液を加えて測定した結果をプロットしたものである。 縦軸は散乱光 強度を表し、 横軸は測定に使用したヒトアルブミン溶液の濃度で示す。 なお、 プ ロットされた各値は、 各緩衝液について、 得られた各濃度のヒトアルブミン溶液 の測定値からヒトアルブミン濃度が OmgZd 1の測定値を差し引いたものであ る。 グラフの見方は図 4と同様である。
pH 4. 5〜5. 5までの 0. 05 Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液で反応系を 構成して測定した場合、 比較例である 0. 05 Mモプス緩衝液で反応系を構成し て測定した結果を上まわる測定値を示し、 さらに、 抗原が高濃度となるにつれて 生じる地帯現象を緩和する効果が見られた。 その効果は PH4. 5の 0. 05M フ夕ル酸水素カリウム緩衝液で反応系を構成した場合に最大となった。 また、 図 6の結果から、 pH4. 5~5. 3、 さらに好ましくは pH 4. 5〜5. 0の 0 . 05 Mフタル酸水素カリウム緩衝液で反応系を構成すれば、 測定値の向上およ ぴ地帯現象の緩和の効果が非常に安定して得られると考えられた。
pHが 6. 0の 0. 05 Mフタル酸水素カリウム緩衝液で反応系を構築した場 合には、 測定値は 0. 05Mモプス緩衝液により反応系を構築した場合を下まわ つた。 また、 測定値曲線は 0. 05 Mモプス緩衝液により反応系を構築した場合 と同様の形状を示し、 抗原が高濃度となるにつれて生じる地帯現象を緩和する効 果は見られなかった。
pHが 4. 0の 0. 05 Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液で反応系を構成した場 合には、 10 Omg/d 1までのヒトアルブミンを反応系に加えて測定した値は、 0. 05 Mモプス緩衝液により反応系を構成した場合を下まわった。 しかし、 2 0 Omg/d 1以上のヒトアルブミンを反応系に加えて測定した値は、 0. 05 Mモブス緩衝液により反応系を構成した場合を上まわり、 抗原が高濃度となるに つれて生じる地帯現象を緩和する効果が見られた。
以上の結果より、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を用いた免疫反応測定法では、 pH4. 5~5. 5に、 より好ましくは pH 4. 5〜5. 3に、 さらに好ましく は pH4. 5〜5. 0に反応系の pHを設定することが好ましいことがわかった c また、 反応系の pHを 4. 5に設定することにより、 最大の効果を得られること がわかった。
また同様に、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を用いた免疫反応測定用試薬キッ ト では、 pH4. 5〜5. 5に、 より好ましくは pH4. 5-5. 3に、 さらに好 ましくは pH4. 5〜5. 0に反応系の pHが設定されるように調製されている ことが好ましいことがわかった。 また、 反応系の pHが 4. 5に設定されるよう に調製されているときに、 最大の効果が得られることがわかった。
(実施例 5)
次に.、 フタル酸またはフ夕ル酸の塩としてフ夕ル酸水素力リゥムを用いた本発 明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キッ トによる測定値のフ夕ル酸ま たはフ夕ル酸の塩の濃度に対する依存性を、 比朧法により調べた内容について示 す。 被測定物質としてはヒトアルブミンを用いた。 ヒトアルブミン溶液の調製は、 実施例 3と同様の方法により行ない、 濃度が 0、 5、 10、 20、 30、 50、 70、 100、 200、 300、 50◦ mg/d 1のものを用意した。 抗体溶液 は、 実施例 1と同様のものを用いた。
測定値のフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度に対する依存性を調べるための反 応系を構築する緩衝液として、 フ夕ル酸水素カリウム濃度がそれそれ、 0. 01、 0. 025、 0. 05、 0. 1、 0. 2、 0. 3 Mで、 4重量%ポリエチレング リコール 6, 000を含む 114. 5の各フ夕ル酸水素カリウム緩衝液を用意し た。
比較例としては、 0. 05 Mモプス及び 4重量%ポリエチレングリコール 6 , 000を含む溶液の pHを 7. 4に調整した 0. 05 Mモプス緩衝液を用いた。 装置及び測定法は、 実施例 3と同様である。
結果について述べる。 各測定に使用した各緩衝液、 抗体溶液、 各濃度のヒトァ ルプミン溶液からなる混合液の p Hは、 0. 01 Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液 を使用した場合が PH4. 7、 0. 025 Mフタル酸水素カリウム緩衝液を使用 した場合が pH4. 6であり、 他の濃度のフ夕ル酸水素カリウム緩衝液を使用し た場合は PH4. 5であった。 また、 測定中の石英セル内の温度は 25. 5± 1 °Cに保たれていた。
得られた結果を図 7に示す。 図 7は、 約 pH4. 5の各濃度のフ夕ル酸水素力 リゥム緩衝液により構築した反応系に対して、 それぞれ 50 Omg/d 1までの 各ヒトアルブミン溶液を加えて測定した結果をプロッ トしたものである。 縦軸は 散乱光強度を表し、 横軸は測定に使用したヒトアルブミン溶液の濃度で示す。 な お、 プロッ トされた各値は、 各緩衝液について、 得られた各濃度のヒトアルブミ ン溶液の測定値からヒトアルブミン濃度が 0 m g / d 1の測定値を差し引いたも のである。 グラフの見方は図 4と同様である。
フ夕ル酸水素力リゥム濃度が 0. 2 M以下のフ夕ル酸水素力リウム緩衝液によ り反応系を構築した場合、 比較例である 0. 05 Mモプス緩衝液により反応系を 構築した場合を上まわる測定値を示し、 測定値の向上効果が確認できた。 また、 抗原が高濃度となるにつれて生じる地帯現象を緩和する効果も見られた。 地帯現 象を緩和する効果は、 0. 1 M以下の濃度のフ夕ル酸水素カリウム緩衝液で反応 系を構築した場合に特に高かった。 0. 1M以下の濃度のフ夕ル酸水素カリウム 緩衝液で反応系を構築した場合、 測定値向上効果は大差無かったが、 地帯現象を 緩和する効果は、 0. 1Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液により反応系を構築した 場合で最大となった。
0. 3Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液により反応系を構成した場合は、 ヒトァ ルプミン濃度が 10 Omg/d 1までの測定値は、 比較例である 0. 05Mモプ ス緩衝液により反応系を構成した場合を下まわった。 しかし、 ヒトアルブミン濃 度が 20 Omg/d 1以上の測定値では、 比較例を上まわり、 ヒトアルブミンが 高濃度となるにつれて生じる地帯現象を緩和する効果が見られた。
以上の結果から、 本発明のフ夕ル酸またはフタル酸の塩を用いた免疫反応測定 法では、 一般的な中性緩衝液を上まわる効果を得るためには、 フ夕ル酸水素カリ ゥム濃度が 0. 2M以下に設定されることが適していることがわかった。 特に、 フ夕ル酸水素カリウム濃度を 0. 1M以下とすることがより好ましく、 フ夕ル酸 水素力リウム濃度を 0. 1 Mとすることが最も好ましいことがわかった。
また同様に、 本発明のフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を用いた免疫反応測定用試 薬キッ トでは、 フ夕ル酸水素カリウム濃度が 0. 2M以下に設定されるように調 製されていることが好ましいことがわかった。 特に、 フ夕ル酸水素カリウム濃度 を 0. 1M以下に設定されるように調製されていることがより好ましく、 フ夕ル 酸水素力リウム濃度を 0. 1Mに設定されるように調製されていることが最も好 ましいことがわかった。
(実施例 6 )
次に、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩を他の緩衝剤と混合して使用した場合の本 発明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キッ トによる測定値を、 比朧法 により調べた内容について示す。
被測定物質としてはヒトアルブミンを用いた。 ヒトアルブミン溶液の調製は、 実施例 3と同様の方法により行い、 濃度が 0、 5、 10、 20、 30、 50、 7 0、 100、 200、 300、 50 Omg/d 1のものを用意した。 抗体溶液は、 実施例 1と同様のものを用いた。
フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩としては、 フ夕ル酸を用いた。 これらと共存させ る緩衝剤には、 コハク酸を使用し、 0. 1Mコハク酸、 0. 02Mフタル酸、 4 重量%ポリエチレングリコール 6 , 000、 p H 4. 5の組成のコハク酸フ夕ル 酸混合緩衝液を構成した。 また、 フタル酸またはフ夕ル酸の塩が存在しない場合 の比較例として、 0. 12Mコハク酸、 4重量%ポリエチレングリコ一ル 6 , 0 00、 pH 4. 5の組成のコハク酸緩衝液を調製して用いた。
結果について述べる。 各測定に使用した各緩衝液、 抗体溶液、 各濃度のヒトァ ルブミン溶液からなる混合液の pHは、 緩衝液の pHとほぼ同じであった。 また、 測定中の石英セル内の温度は 25 · 5土 1°Cに保たれていた。
得られた結果を図 8に示す。 図 8は上記コハク酸フ夕ル酸混合緩衝液及ぴコハ ク酸緩衝液によりそれそれ構成した反応系に対して、 それそれ 50 Omg/d 1 までの各ヒトアルブミン溶液を加えて測定した結果をプロットしたものである。 縦軸は散乱光強度を表し、 横軸は測定に使用したヒトアルブミン溶液の濃度を示 す。 なお、 プロットされた各値は、 各緩衝液について、 得られた各濃度のヒトァ ルブミン溶液の測定値からヒトアルブミン濃度が OmgZd 1の測定値を差し引 いたものである。 グラフの見方は図 4と同様である。
結果は、 コハク酸フ夕ル酸混合緩衝液を用いた場合、 比較例であるコハク酸緩 衝液を用いた場合よりも、 測定値が向上しており、 効果があることが確認できた また、 抗原が高濃度となるにつれて生じる地帯現象を緩和する効果も見られた。 以上の結果により、 本発明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キット において、 フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を他の緩衝剤と共存させて使用した場合 でも、 測定値向上効果および地帯現象を緩和する効果を奏することが確認できた。
(実施例 7 )
次に、 実施例 2で作製したャギ抗ヒト CRPポリクロ一ナル抗体溶液を用いて、 本発明によるヒト CRP測定に対する効果を、 従来の免疫反応測定方法で一般的 に使用されている中性反応系でのヒト CRP測定と対比した結果について示す。 測定に用いた各濃度のヒト CRP溶液の調製は、 精製ヒト CRP (Chemi c on Int ernat i onal製、 Lo t No. 2 1042246) を、 0. 05Mモブス、 0. 04重量% & 3、 pH 7. 4の組成の緩衝液で希釈 して調製した。 ヒト CRP溶液の濃度は、 0、 10、 20、 30、 50、 70、 100、 200 mgZd 1のものを用意した。
抗体溶液としては、 実施例 2で作製したャギ抗ヒト CRPポリクローナル抗体 溶液を使用した。
フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を含む緩衝液として、 実施例 2で作製したフタル 酸緩衝液 (0. 02Mフタル酸、 0. 02MCaC l2、 4重量%ポリエチレン グリコール 6, 000、 pH 4. 5) を用いた。
また、 フ夕ル酸またはフタル酸の塩が存在しない場合の比較例として、 0. 0 5 Mモプス及び 4重量%ポリエチレングリコール 6, 000を含む溶液の pHを 7. 4に調整した 0. 05 Mモプス緩衝液を用いた。
測定装置は自作のものを使用し、 次のように構成した。 光源は 270 Hzで変 調した波長 68 Onmの出射出力 15 mW半導体レーザ一ポインタ (キコ一技研 製、 型番 MLXS— D— 12-680-35) とし、 検出器は、 可視赤外精密測 光用シリコンフォトダイォード (浜松フォトニクス製、 型番 S 2387 - 66 R) とした。 セルは厚さ 0. 1 cmの光学ガラス板を張り合わせ、 容量約 200 〃 1の正四角柱形に構成した。 各配置は、 光源より 0. 5 cmのところに、 その 一面が光源と垂直になるようにセルを配置し、 検出器は、 光源と 90° の角度を 成す方向で、 セルより 5. 5 cm離れた場所に配置し、 検出器に迷光が入射しな いように、 検出器とセルとの間には遮光筒を設けた。 検出器により検知された光 量に依存した電流信号は、 電流電圧変換回路 (106VZA) およびオペアンプ による増幅回路を経て 100倍の電圧信号に増幅した後、 ロヅクインアンプ (ェ ヌエフ回路設計ブロック製、 型番 5610B) を通して位相敏感検波し、 GP I B制御によりコンピュータに取り込めるようにした。
各緩衝液について、 各濃度のヒト CRPに対する測定は次のようにして行なつ た。 反応系の混合比は、 緩衝液が 178 l、 ヒト CRP溶液が 9 1、 抗体溶 液が 7 / 1とした。 反応系におけるャギ抗ヒト CRPポリクローナル抗体の最終 濃度は約 0. 036 mg/ml、 ヒト CRPの最終濃度は、 測定に使用したヒト CRP溶液の濃度に 0. 046を乗じたものになる。
まず、 セル内に緩衝液とヒト CRP溶液とを上記容量で攪拌混合した。 続いて、 抗体溶液を上記容量で加えて攪拌混合し、 抗原抗体反応を生じさせた。 散乱光の 測定は、 抗体溶液を加える 10秒前から開始し、 0. 5秒間隔で 300秒間継続 した。 測定値は電圧値として得られた。 セルの汚れが測定に与える影響は、 各反 応の測定前にセル中に純水を入れて測定した値を用いて補正することにより除い た。 得られた各時間における測定値の 200〜300秒の間の平均値を求め、 こ れを各濃度のヒト CRP溶液における測定値とした。 また、 抗体溶液を加えるま での 10秒間の測定値より、 抗原による自己凝集が生じたと判断できた場合は、 それらの平均値を上記で求めた各濃度のヒト CRP溶液における測定値から差し 引いた。 測定は室温 (約 20°C) で行なった。
結果について示す。 図 9は各緩衝液について 10 Omg/d 1までの各ヒト C RP溶液を加えて測^した結果をプロッ卜したものである。 縦軸は測定された電 圧値を表し、 横軸は測定に使用したヒト CRP溶液の濃度で示した。 測定電圧値 が高い程、 検出器に入射した散乱光が多いことを表しており、 反応系の濁度が高 い、 すなわち、 抗原抗体反応による凝集複合体が多く形成されたことを示してい る。 なお、 プロットされた各値は、 得られた各濃度のヒト CRP溶液の測定値か らヒト CRP濃度が OmgZd 1の測定値を差し引いたものである。
図 9に示すように、 比較例であるモプス緩衝液を用いて測定した場合に比べて、 実施例 2で作製した、 ャギ抗ヒト CRPポリクローナル抗体溶液、 並びに 0. 0 2 MC a C 12及びフ夕ル酸を含む緩衝液から構成される試薬を用いて測定した 場合の方が、 各濃度のヒト CRP溶液の測定において高い測定値を示すことが確 認できた。
(実施例 8)
次に、 実施例 2で作製したマウス抗ヒト CRPモノクローナル抗体溶液を用い て、 本発明によるヒト CRP測定に対する効果を、 従来の免疫反応測定方法で一 般的に使用されている中性反応系でのヒト CRP測定と対比した結果について示 す。
測定に用いた各濃度のヒト CRP溶液の調製は、 実施例 7と同様の方法を用い た。 ヒト CRP溶液の濃度は 0、 10、 20、 30、 50、 70、 l O Omg/ d 1のものを用意した。
抗体溶液としては、 実施例 2で作製したマウス抗ヒト CRPモノクローナル抗 体溶液を使用した。
フ夕ル酸またはフタル酸の塩を含む緩衝液として、 実施例 2で作製したフ夕ル 酸水素カリウム緩衝液 (0. 05Mフ夕ル酸水素カリウム、 4重量%ポリエチレ ングリコ一ル 6, 000、 p H 4. 5) を用いた。
フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩が存在しない場合の比較例として、 0. 05Mモ プス及び 4重量%ポリエチレングリコール 6 , 000を含む溶液の pHを 7. 4 に調整した 0. 05 Mモプス緩衝液を用いた。
測定には、 実施例 7で述べたものと同じ構成の装置および測定条件を用いた。 また、 測定方法および測定データの処理方法などに関してもすべて実施例 7で述 ベたものと同じ方法を用いた。 従って、 反応系におけるマウス抗ヒト CRPモノ クロ一ナル抗体の最終濃度は約 0. O S SmgZmls ヒト CRPの最終濃度は、 測定に使用したヒト CRP溶液の濃度に 0. 046を乗じたものになる。
結果について示す。 図 10は、 フタル酸またはフタル酸の塩にフタル酸水素力 リウムを用いて実施例 2で構成した 0. 05 Mフ夕ル酸水素カリウム緩衝液と、 比較例である 0. 05 Mモプス緩衝液について、 10 Omg/d 1までの各ヒト CRP溶液を加えて測定した結果をプロットしたものである。 縦軸は測定された 電圧値を表し、 横軸は測定に使用したヒト CRP溶液の濃度を示す。 なお、 プロ ットされた各値は、 得られた各濃度のヒト CRP溶液の測定値からヒト CRP濃 度が OmgZd 1の測定値を差し引いたものである。 グラフの見方は図 9と同様 である。
図 10から、 比較例である 0. 05Mモプス緩衝液を用いてヒト CRP測定を 行なった場合には、 1 Omg/d 1のヒト CRP溶液の測定では、 OmgZd l のヒト CRP溶液の測定値との間に十分な測定値差が得られず、 実質的にヒト C RPの濃度差を測定することができなかった。 一方、 0. 05Mフ夕ル酸水素力 リゥム緩衝液で測定した場合、 各濃度のヒト CRP溶液測定において明らかに高 い測定値を示し、 1 Omg/d 1のヒト CRP溶液の測定においても、 Omg/ d 1のヒト CRP溶液の測定値との間に十分な測定値差を得ることができた。 つ まり、 ヒト C R Pの濃度差を測定することが可能となった。
以上の実施例 7及び 8で示したように、 本発明の免疫反応測定方法及びそれに 用いる免疫反応測定用試薬キットが、 ヒト C R P測定に対しても測定値の向上効 果を持つことが確認できた。 以上説明したように、 本発明の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試薬キッ トによれば、 免疫反応の反応系にフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩を存在させ、 反応 系の p Hを酸性に設定したことにより、 抗原抗体の結合による免疫反応の測定値 を向上させることができ、 また、 これにより抗原過剰領域で生じる地帯現象を緩 和することができる。
従来の水溶性高分子を添加する方法では、 測定値を向上させ良好な S /N比を 維持し安定した測定を行なうために、 より高濃度あるいは高分子量の水溶性高分 子を添加する必要がある。 このため、 溶液の粘性を増大させ、 その分析操作上の 取り扱いが困難になるという不具合がある。 しかしながら、 本発明において用い るフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩は低分子物質であるため、 溶液の粘性を増大させ ず、 その分析操作上の取り扱いも容易となる。
また、 本実施形態の免疫反応測定方法及び免疫反応測定用試桀キッ 卜によれば、 地帯現象が緩和されることによって、 被測定物質の高濃度での測定値の落ちこみ が軽減される。 このため、 被測定物質の含有量を正確に測定できる測定濃度範囲 を広げることができる。 産業上の利用可能性
以上説明したように、 本発明により、 容易に測定値の向上が可能な免疫反応測 定方法及びそれに用いる免疫反応測定用試薬キットを提供することができる。 さ らに、 抗原過剰領域で生じる地帯現象を緩和することが可能な免疫反応測定方法 及びそれに用いる免疫反応測定用試薬キットも提供することができる。

Claims

請求の範囲
1 . 試料中の被測定物質の含有量を測定する免疫反応測定方法であって、 上記試料と、 上記被測定物質に対して特異的に結合する特異結合物質と、 フタ ル酸またはフ夕ル酸の塩とを含む反応系を構築する工程 Aと、
上記反応系の光学特性を測定する工程 Bとを含み、
上記工程 Aにおいて、 上記反応系の p Hが 7未満に設定されており、 上記被測定物質と上記特異結合物質との組み合わせは、 抗原と抗体との組み合 わせであることを特徴とする免疫反応測定方法。
2 . 請求項 1に記載の免疫反応測定方法において、
上記光学特性は、' 散乱光強度または透過光量であることを特徴とする免疫反応 測定方法。
3 . 請求項 1または 2に記載の免疫反応測定方法において、
上記工程 Aでは、 上記反応系がさらに緩衝剤を含むことを特徴とする免疫反応 測定方法。
4 . 請求項 1から 3のいずれか 1つに記載の免疫反応測定方法において、 上記工程 Aにおいて、 上記反応系の p Hが 4 . 5〜5 . 5の範囲内に設定され ていることを特徴とする免疫反応測定方法。
5 . 請求項 1から 4のいずれか 1つに記載の免疫反応測定方法において、 上記工程 Aにおいて、 上記反応系におけるフ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩の濃度 が 0 . 2 M以下であることを特徴とする免疫反応測定方法。
6 . 請求項 1から 5のいずれか 1つに記載の免疫反応測定方法において、 上記フ夕ル酸の塩は、 フタル酸水素力リゥムであることを特徴とする免疫反応 測定方法。
7 . 請求項 1から 6のいずれか 1つに記載の免疫反応測定方法において、 反応系がポリエチレングリコールを 2〜 6重量%含むことを特徴とする免疫反 応測定方法。
8 . 請求項 1に記載の免疫反応測定方法において、
上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記特異結合物質は、 上記金属イオンを保持していない上記抗原に特異的に結 合する抗体であることを特徴とする免疫反応測定方法。
9 . 請求項 8に記載の免疫反応測定方法において、
上記被測定物質は、 ヒト C反応性蛋白質であることを特徴とする免疫反応測定 方法。
1 0 . 請求項 1に記載の免疫反応測定方法において、
上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記特異結合物質は、 ポリクローナル抗体であり、
上記工程 Aでは、 上記反応系がさらに上記金属イオンを含むことを特徴とする 免疫反応測定方法。
1 1 . 請求項 1 0に記載の免疫反応測定方法において、
上記被測定物質は、 ヒト C反応性蛋白質であることを特徴とする免疫反応測定 方法。
1 2 . 請求項 1に記載の免疫反応測定方法において、
上記被測定物質は抗原であり、
上記特異結合物質は、 上記抗原の複数の結合部位に結合することが可能なモノ ク fcf—ナル抗体であることを特徴とする免疫反応測定方法。
1 3 . 請求項 1 2に記載の免疫反応測定方法において、
上記被測定物質は、 ヒト C反応性蛋白質であることを特徴とする免疫反応測定 方法。
1 4 . 試料中の被測定物質の含有量を測定するための免疫反応測定用試薬キッ 卜であって、
上記被測定物質に対して特異的に結合する特異結合物質と、
フ夕ル酸またはフ夕ル酸の塩と、
上記試料と、 上記特異結合物質と、 上記フ夕ル酸または上記フ夕ル酸の塩とを 含む反応系が構築されたときに、 上記反応系の p Hを 7未満に設定するための緩 衝剤とを含み、
上記被測定物質と上記特異結合物質との組み合わせは、 抗原と抗体との組み合 わせであることを特徴とする免疫反応測定用試薬キット。
1 5 . 請求項 1 4に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、
上記緩衝剤は、 上記反応系の p Hを 4 . 5〜5 . 5の範囲内に設定することを 特徴とする免疫反応測定用試薬キット。
1 6 . 請求項 1 4または 1 5に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、 上記反応系での上記フ夕ル酸または上記フ夕ル酸の塩の濃度が 0 . 2 M以下と なるように調製されていることを特徴とする免疫反応測定用試薬キット。
1 7 . 請求項 1 4から 1 6のいずれか 1つに記載の免疫反応測定用試薬キット において、
上記フ夕ル酸の塩は、 フタル酸水素カリウムであることを特徴とする免疫反応 測定用試薬キット。
1 8 . 請求項 1 4から 1 7のいずれか 1つに記載の免疫反応測定用試薬キット において、 ポリエチレングリコ一ルをさらに含み、
上記反応系での上記ポリエチレングリコールの濃度が 2〜 6重量%の範囲内と なるように調製されているを特徴とする免疫反応測定用試薬キット。
1 9 . 請求項 1 4に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、
上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記特異結合物質は、 金属イオンを保持していない上記抗原に特異的に結合す る抗体であることを特徴とする免疫反応測定用試薬キッ ト。
2 0 . 請求項 1 9に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、
上記抗体は、 抗ヒト C反応性蛋白質抗体であることを特徴とする免疫反応測定 用試薬キット。
2 1 . 請求項 1 4に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、
金属イオンを供給する金属化合物をさらに含み、
上記被測定物質は、 その内部に金属イオンを保持する構造を有する抗原であり、 上記抗原は、 その内部に上記金属イオンを保持する構造を有し、
上記特異結合物質は、 ポリクロ一ナル抗体であることを特徴とする免疫反応測 定方法。
2 2 . 請求項 2 1に記載の免疫反応測定用試薬キッ卜において、
上記抗体は、 抗ヒト C反応性蛋白質抗体であることを特徴とする免疫反応測定 用試薬キット。
2 3 . 請求項 1 4に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、
上記被測定物質は、 抗原であり、
上記特異結合物質は、 上記抗原の複数の結合部位に結合することが可能なモノ ク口一ナル抗体であることを特徴とする免疫反応測定方法。
2 4 . 請求項 2 3に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、 上記モノクローナル抗体は、 抗ヒト C反応性蛋白質抗体であることを特徴とす る免疫反応測定用試薬キット。
2 5 . 請求項 1 4に記載の免疫反応測定用試薬キットにおいて、
上記特異結合物質と、 上記フ夕ル酸または上記フ夕ル酸の塩とが混合されてい ることを特徴とする免疫反応測定用試薬キット。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008038597A1 (fr) * 2006-09-26 2008-04-03 Panasonic Corporation Immunodétecteur et procédé de dosage utilisant celui-ci

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9425138D0 (en) * 1994-12-12 1995-02-08 Dynal As Isolation of nucleic acid
US20030087324A1 (en) * 1998-02-26 2003-05-08 Yukio Toyoda Monoclonal antibody for immunologically analyzing or concentrating endocrine disruptor or its degradation product and utilization of the same
US8110351B2 (en) 2002-01-16 2012-02-07 Invitrogen Dynal As Method for isolating nucleic acids and protein from a single sample
GB0229287D0 (en) * 2002-12-16 2003-01-22 Dna Res Innovations Ltd Polyfunctional reagents
US7314893B2 (en) 2005-06-06 2008-01-01 Arkema Inc. Acrylic copolymers with improved low temperature performance
CN101957363A (zh) * 2010-09-13 2011-01-26 南京卡博生物科技有限公司 胶乳免疫比浊检测用样本处理液
CN104155456B (zh) * 2014-08-22 2016-11-02 山东博科生物产业有限公司 一种稳定性强的肌钙蛋白检测试剂盒
LU100795B1 (en) * 2018-05-14 2019-11-14 Diatron MI PLC Immunoassay for whole blood samples
CN109738348A (zh) * 2019-01-28 2019-05-10 大连医科大学 基于颗粒计数的免疫凝集反应强度定量分析方法
CN111323574A (zh) * 2020-02-26 2020-06-23 量准(上海)医疗器械有限公司 一种基于等离子光学纳米孔增强免疫比浊的含量测定方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04505857A (ja) * 1989-06-27 1992-10-15 ラッシュ―プレズビティリアン―セント ルークス メディカル センター C反応性蛋白質に対するモノクローナル抗体
JPH0682450A (ja) * 1992-09-04 1994-03-22 Eiken Chem Co Ltd 免疫学的測定試薬
JPH06213890A (ja) * 1993-01-14 1994-08-05 Kyowa Medex Co Ltd 免疫測定方法

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS57182169A (en) * 1981-05-02 1982-11-09 Mitsubishi Chem Ind Ltd Measuring method for antigen-antibody reaction
JP2691575B2 (ja) 1988-08-26 1997-12-17 第一化学薬品株式会社 免疫反応の測定方法
US5272258A (en) * 1989-06-29 1993-12-21 Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center Monoclonal antibodies to C-reactive protein
US5314804A (en) * 1992-03-24 1994-05-24 Serim Research Corporation Test for Helicobacter pylori
US5358852A (en) * 1992-12-21 1994-10-25 Eastman Kodak Company Use of calcium in immunoassay for measurement of C-reactive protein
WO1998028623A1 (en) * 1996-12-20 1998-07-02 Gamera Bioscience Corporation An affinity binding-based system for detecting particulates in a fluid
JP3334558B2 (ja) * 1997-04-23 2002-10-15 富士レビオ株式会社 酵素免疫測定方法及び試験片
JPH10332694A (ja) 1997-06-03 1998-12-18 Sanyo Chem Ind Ltd 免疫学的測定法
JP3886639B2 (ja) 1998-06-01 2007-02-28 栄研化学株式会社 免疫学的凝集反応試薬およびこれを用いたプロゾーン現象の抑制方法
US6617123B1 (en) * 2000-06-29 2003-09-09 Jack V. Smith Method for detection of 4-hydroxybutyric acid and its precursor(s) in fluids
US7172804B2 (en) * 2001-07-17 2007-02-06 Northwestern University Film-immobilized capture particles
US7939283B2 (en) * 2001-11-01 2011-05-10 Fisher Scientific Company L.L.C. Analyte binding turbidity assay

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04505857A (ja) * 1989-06-27 1992-10-15 ラッシュ―プレズビティリアン―セント ルークス メディカル センター C反応性蛋白質に対するモノクローナル抗体
JPH0682450A (ja) * 1992-09-04 1994-03-22 Eiken Chem Co Ltd 免疫学的測定試薬
JPH06213890A (ja) * 1993-01-14 1994-08-05 Kyowa Medex Co Ltd 免疫測定方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
TAKAHIRO HAMASAKI: "EDTA sonzaiji no shihan kokessei no CRP eno ketsugo kassei no teika", THE JAPANESE JOURNAL OF CLINICAL PHATHOLOGY, vol. 32, no. 2, 23 February 1984 (1984-02-23), pages 223 - 224, XP002966893 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008038597A1 (fr) * 2006-09-26 2008-04-03 Panasonic Corporation Immunodétecteur et procédé de dosage utilisant celui-ci

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Publication number Publication date
CN1507564A (zh) 2004-06-23
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EP1369689A4 (en) 2005-09-28
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DE60225788D1 (de) 2008-05-08
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US7056682B2 (en) 2006-06-06
DE60225788T2 (de) 2008-07-17
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