WO2003004516A1 - Nouveaux substrats chromogenes et leur utilisation pour le dosage de l'activite de carboxypeptidases - Google Patents

Nouveaux substrats chromogenes et leur utilisation pour le dosage de l'activite de carboxypeptidases Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to chromogenic compounds and their use for the assay of enzymes of the family of carboxypeptidases N, and of carboxypeptidases U. It relates more specifically to the use of said compounds for the assay of the activity of TAFI (Thrombin Activatable Fibrinolysis Inhibitor) in a blood sample and the corresponding assay method.
  • TAFI Thrombin Activatable Fibrinolysis Inhibitor
  • Carboxypeptidases are a group of enzymes in the exopeptidase family. These are enzymes which cut the amide bonds of the polypeptide chains at the level of the last COOH-terminal amino acid. They include serine carboxypeptidases, cysteine carboxypeptidases and metallocarboxypeptidases.
  • carboxypeptidases have been isolated and sequenced, in bacteria, yeasts and plants. These enzymes are also found in a large number of tissues in mammals.
  • Carboxypeptidases have in particular been isolated in the pancreas and in mast cells. Other circulating carboxypeptidases in plasma have also been cloned, isolated and sequenced.
  • Carboxypeptidases A have a relatively broad spectrum: they hydrolyze the C-terminal peptide bond of the last amino acid, preferably if it is hydrophobic (Phe, Leu, Val, Ala).
  • Carboxypeptidases B specifically hydrolyze the last basic C-terminal amino acids, such as Arg, Lys. This class of enzymes is subdivided into subclasses consisting of carboxypeptidases H (also called encephalin convertase or carboxypeptidase E), M, N and U.
  • Carboxypeptidase E has been localized in the secretory granules of the pancreatic islets, the adrenal and pituitary glands, and the brain.
  • Carboxypeptidase M is a membrane enzyme found in many tissues and cells in culture.
  • Carboxypeptidase N (sometimes referred to hereinafter as CPN) is an enzyme circulating in plasma. It protects the body against the vasoactive and inflammatory effect of peptides containing a basic C-terminal amino acid (preferably a lysine), released into the circulation. This enzyme exists in its active form in the blood. It is also called ininase because of its natural substrates which are bradykinin, kinins, anaphylatoxins.
  • carboxypeptidases U (unstable) (sometimes referred to hereinafter as CPU) are enzymes which also hydrolyze C-terminal basic amino acids, with a preference for arginines, but which, unlike carboxypeptidases N, are very unstable when they are in their activated form.
  • TAFI is a basic zinc metallocarboxypeptidase (1-4). It is more precisely a carboxypeptidase U, because its activity is unstable at 37 ° C.
  • This enzyme whose cDNA and the corresponding amino acid sequence in humans are for example described in US patent 5,206,161, is a plasma protein whose role in the regulation of fibrinolysis was initially envisaged from IN VITRO observation of a delay in clot lysis in the presence of activated TAFI.
  • the activated TAFI cleaves the arginine and lysine residues exposed in the COOH-terminal position on the fibrin. This hydrolysis leads to a decrease in the number of plasminogen and tPA binding sites on the surface of the fibrin clot, and therefore a decrease in the transformation of plasminogen into plasmin by tPA.
  • the TAFI was successively identified under the name of procarboxypeptidase B (pro-PCPB) then of unstable procarboxypeptidase (proCPU: Unstable ProCarboxypeptidase) and procarboxypeptidase R (CPR), due to a carboxypeptidasic activity on arginine residues.
  • procarboxypeptidase B pro-PCPB
  • proCPU Unstable ProCarboxypeptidase
  • CPR procarboxypeptidase R
  • Cleavage of the zymogen is mainly carried out by thrombin at the arg 92 site.
  • This proteolysis releases an N-terminal peptide of 92 amino acids containing several glycosylation sites.
  • the catalytic action of thrombin on TAFI is considerably increased by thrombomodulin in the presence of divalent ions.
  • the activation speed of TAFI catalyzed by thrombin is thus increased more than 1000 times due to the formation of a ternary complex with thrombomodulin.
  • TAFIa Activated TAFI
  • WOLFF et al. (5) compared the performances of the synthetic substrates Hip-Arg, Hip-Lys, Hip-Orn on pancreatic carboxypeptidases B purified by chromatography by measuring the differences in UV absorption.
  • K. LORENTZ et al. (7) used a reaction for staining the arginine released this time by the action of carboxypeptidases B on a Hip-Arg substrate using p-benzoquinone as reagent. In this way, the colored derivative at a maximum wavelength at 480 nm.
  • GH Fischer et al. 9 used a fluorescent substrate by N-terminal dansylation of a peptide specific for the carboxypeptidase to be assayed. This dosage required a step of extracting the hydrolysis products for good separation of the species before reading.
  • H. SARUTA et al. determined by a colorimetric method, the activity of carboxypeptidase A (10). These used a specific enzyme: 'THippuricase "to hydrolyze the hippuricyl derivative itself obtained by hydrolysis of the hydroxy-hppuricyl-Phg substrate by CPA. This reaction was finally revealed by 4-Aminoantipyrine to give an absorbing quinoneimide dye at 505 nm.
  • NAM JOO HONG et al. used a synthetic substrate with an arginine analog, thiaarginine to assay for CPB (11).
  • the colorimetric methods described above have either never been used to specifically assay the enzymatic activity of CPN or CPU, in particular TAFI, or have certain drawbacks incompatible with a simple and effective assay test for this type of enzyme by colorimetry.
  • WL Mock et al. described a method for assaying an extracellular zinc endoprotease of bacterial origin, thermolysin, using synthetic substrates which become discolored under the action of enzymatic hydrolysis (12). To do this, the authors synthesized dipeptide compounds consisting of a leucine residue carrying an N- (4-methoxyphenylazoformyl) group grafted to level of amino function, and of another neutral amino acid (Leu, Ala, Phe or Gly).
  • the compounds used consisted of a single amino acid known to be cleaved by carboxypeptidase A (Phe, Leu) or carboxypeptidase B (Lys), carrying an N-arazoformyl group.
  • the enzymatic cleavage of these compounds into non-colored products was followed by measuring the decrease in coloration of the medium.
  • the subject of the present invention is therefore new compounds, constituting substrates of carboxypeptidase N or U, and more particularly substrates of activated TAFI. These compounds are chromogenic substrates.
  • the compounds of the invention are characterized in that they are the arazoformyl compounds of general formula (I) below:
  • R1, R2 H, -CH 3 , -CH (CH 3 ) 2 , -OCH 3 , -CI, -CF 3> -OCF 3 , -SCH 2
  • R 3 an amino acid radical hydrolyzable by a carboxypeptidase A.
  • R3 is chosen from radicals of hydrophobic amino acids such as:
  • R 3 -CH 3
  • R 3 -CH 2 -CH- (CH 3 ) 2 isoleucine: R 3
  • R4 is more precisely chosen from amino acid radicals such as
  • R 3 represents an aromatic amino acid residue and in particular phenylalanine or tyrosine, and R4 arginine or lysine.
  • Ri is preferably chosen from:
  • R2 preferably chosen from:
  • a preferred family of compounds according to the invention is represented by the general formula:
  • R 2 -H, -CH 3> (CH 3 ) 2 CH-, CH 3 -0-, CI -, - CF 3
  • R 3 an amino acid radical hydrolyzable by a carboxypeptidase A.
  • R 3 preferably represents phenylalanine, or tyrosine and,
  • R 4 preferably represents arginine or lysine.
  • Ri is preferably chosen from:
  • R 2 preferably chosen from:
  • a particularly preferred compound of the family of the present invention is a compound of formula (I) in which:
  • said compound being chosen from the group consisting of the following compounds, in which:
  • the invention relates in particular, within the framework of the definitions given above, each compound corresponding to formula (I) and resulting from combinations possible groups A, R1, R2, R3 and R4 which have been given a preferred definition above.
  • the subject of the present invention is a method for the colorimetric assay of the activity of a carboxypeptidase N, or preferably of the activity of a CPU, in a biological sample in which:
  • said sample is brought into contact with a chromogenic compound of formula (I) as defined above, and an enzyme of the family of carboxypeptidases A, under conditions allowing the hydrolysis of the sample and,
  • the hydrolysis of said compound of formula (I) is determined by the CPN or the CPU of the sample by measuring the decrease in its coloration (corresponding to a decrease in absorption) at a wavelength selected at from the absorption spectrum of said compound.
  • the decrease in coloration results from the double hydrolysis of the substrate of formula (I) by the carboxypeptidases N or U of the sample on the one hand, by the carboxypeptidase A on the other hand.
  • the method according to the present invention is preferably carried out using a compound of formula (I) in which the hydrophobic amino acid is phenylalanine or preferably tyrosine, and the basic amino acid is arginine or lysine.
  • the method of the invention is preferably carried out using a compound of formula (I) in which Ri is chosen from -H and -CH 3 and R 2 from -CH 3 , -0-CH 3 and -S -CH 3 .
  • Ri is H
  • R 2 is S-CH 3 .
  • the method of the present invention is advantageously carried out with the family of compounds of formula (I) in which:
  • Ri and R 2 having any one of the meanings given above and R2 preferably being -S-CH 3 .
  • the compound of formula (I) used is a phenylazoformyl compound in which:
  • Said compound being chosen from the group consisting of the following compounds, in which:
  • the carboxypeptidase A used can come from different sources, such as, for example, the pancreas or mast cells. It can be of human or animal origin.
  • pancreatic carboxypeptidase A 5 of bovine origin is preferably used in the context of the invention.
  • the principle of the method of the invention is based on a hydrolysis of a colored substrate of formula (I) as described above, by the action of carboxypeptidase N or of carboxypeptidase U possibly present in the sample. analyzed, 0 associated with that of carboxypeptidase A added in the medium. This hydrolysis specific results in an extinction of the coloration of the starting compound, which can be followed using a spectrophotometer.
  • the quantity of active carboxypeptidase N or U initially present in the sample is calculated by comparing the optical density measured with that of a calibration curve which can for example be established from a range of concentrations of carboxypeptidase N or U purified active in solution.
  • the invention relates more particularly to a method for assaying the activity of an CPN or a CPU in a biological sample, in particular a blood sample such as whole blood or pure or diluted plasma, and, preferably, a method of assay the activity of TAFI in a blood sample, especially pure or diluted plasma.
  • the sample to be tested is first put in the presence of a buffer solution with, if necessary, an activator of the carboxypeptidase whose activity it is desired to measure (solution called buffer activator below), and left during incubation, the time necessary to obtain activation of the carboxypeptidase studied.
  • the incubation is preferably carried out at room temperature for 5 to 20 minutes, advantageously 8 to 12 minutes, preferably 10 minutes.
  • the carboxypeptidase activator can be an activator, in particular a coagulation factor, which is left to act so as to activate carboxypeptidase U, in particular TAFI.
  • a serine protease inhibitor is then added to the mixture in order to block the coagulation process.
  • the serine protease inhibitor is for example PPACK (HD-Phe-Pro-Arg-chloromethylketone - Bachem - Ref. N. 1065) used in a final concentration range of 1 to 50 ⁇ M, preferably 30 ⁇ M, corresponding at initial concentrations of 10 to 250 ⁇ M and preferably 150 ⁇ M.
  • Other compounds, such as Pefabloc [4- (2- aminoethyl) -benzenesulfonylfluoridehypochloride - Penthapharm - Ref. 399.01] preferably used at a concentration of 0.1 mM are also suitable.
  • one of the compounds of formula (I) according to the invention is added in aqueous solution.
  • This compound is generally used in a range of final concentrations of between 0.25 and 10 mM, preferably between 0.25 and 2.5 mM, advantageously between 0.25 and 1 mM. It is preferably used at 0.4 mM.
  • l hydrolysis can be stopped by adding HCl, followed immediately by adding a base to readjust the pH to a value between 7 and 8.
  • the optical density of the mixture thus obtained is then measured a first time without the addition of CPA in the medium.
  • the CPA is then added to the medium, and the OD is again measured. Its decrease can be followed with a spectrophotometer. It translates the hydrolysis of the substrate of formula (I) by the joint action of the CPU or N of the sample and the CPA.
  • the measured delta DO ( ⁇ DO) are compared with the values plotted on a calibration curve which can for example be obtained from a sample deficient in the CPN or the CPU studied, overloaded with this purified enzyme.
  • the assay can be carried out using two aliquots of the same reaction medium, only one of which is treated with CPA. The ⁇ DO is then measured between these two aliquots.
  • activating buffer activates coagulation
  • activation can be carried out according to various routes known to those skilled in the art, and used routinely in coagulation tests.
  • activated factor XI which in this case replaces the thrombin in the activator buffer.
  • activated factor XI which in this case replaces the thrombin in the activator buffer.
  • venoms in particular snake venoms
  • prothrombin and / or thrombomodulin in the medium.
  • the venoms preferably used are the venoms of the "thrombin-like" family such as the venom of Arkistrodon rhodostoma or Bathrops atrox, as well as the venoms of prothrombin activators, such as that of Notechis scutatus or Echis carinatus ( 15 - 18).
  • tissue factor activation pathway in the presence of phospholipids and calcium (activation of the exogenous pathway according to the Quick time principle),
  • the method according to the invention makes it possible to measure for the same sample, on the one hand, the activity of the CPN and / or of the "constitutional" CPU present in it, ie the CPN and / or CPU present under an active form "naturally” (ie without induction of activation by an activating buffer), and on the other hand, the activity of CPN and / or activatable CPU, ie CPN and / or CPU present in the sample in an inactive form, the activity of which will be induced or generated during the activation process linked to the effect of the activating buffer.
  • hydrolysis activity on a substrate of formula (I) of a sample is compared according to the method described above, by placing the sample either in the presence of activating buffer (detection of the total activity of the CPN or the CPU in the sample), either in the presence of a physiological buffer without activator (detection of the activity of the CPN and / or the constitutional CPU).
  • the difference in DO delta between the two measurements makes it possible to obtain the activity of the CPN or of the activatable CPU present in the sample.
  • the subject of the present invention is a method for assaying activated TAFI in a biological sample, in particular a blood sample, said method using one of the compounds or substrates of formula (I) described above.
  • the activity of the constitutional and / or activatable TAFI is measured by treating the sample as has just been described, in the presence and in the absence of a specific TAFI inhibitor.
  • the inhibitor which is preferably used is CPI ("Carboxypeptidase Inhibitor from Potato Tubers), the use of which in in vitro and in vivo studies on the function of TAFI has been widely described in the literature (Ref. 1). It is now well known to those skilled in the art that the CPI specifically inhibits TAFI without altering the activity of other plasma CPs.
  • the CPI can be used in a range of concentrations ranging from 0.10 to 0.50 mM (initial concentrations), or from 2 to 10 ⁇ M expressed in final concentrations, it is preferably used at 7 ⁇ M (final concentration) or 0.38 mM (initial concentration).
  • the sample is activated by the activation buffer of TAFI, for example an activation buffer for coagulation by the thrombin / thrombomodulin complex, and treated according to the method described above either in the presence or in the absence of a TAFI inhibitor.
  • the activation buffer of TAFI for example an activation buffer for coagulation by the thrombin / thrombomodulin complex
  • the difference in coloring of the medium with and without TAFI inhibitor thus makes it possible to determine the enzymatic activity specific to activated TAFI (TAFIa) in the sample.
  • the method of the invention can be carried out according to the following protocol: the sample to be tested is divided into 2 or more aliquots if necessary, depending on whether one wishes to determine the activity of all the TAFI contained in the sample or that one wishes to distinguish between the activity of the constitutional TAFI and that of the activatable TAFI.
  • a first aliquot containing the TAFI inhibitor is activated and treated according to the method described above. This will therefore generate only a slight discoloration of the medium, resulting from a residual hydrolysis of the substrate of formula (I) by other carboxypeptidases present in the sample.
  • a second aliquot is treated identically to the previous one, but in the absence of a TAFI inhibitor. This will result in a strong discoloration of the medium, linked to the hydrolysis of the substrate of formula (I) by the TAFI activated in the sample.
  • the subject of the invention is a diagnostic kit for assaying an CPN or a CPU, said diagnostic kit comprising a substrate of formula (I) as defined above.
  • the diagnostic kit according to the present invention is a kit for measuring the activity of TAFI in a blood sample.
  • Such a diagnostic kit includes in particular:
  • TAFI activator in particular a TAFI activator buffer
  • the kit also optionally includes a serine protease inhibitor.
  • Each of these components is preferably in powder or in lyophilized form.
  • Figure 1 Absorption spectrum of the various compounds of formula (I) synthesized, measured with a UV-visible spectrophotometer.
  • Figure 2 Analysis of AAFFR by acid hydrolysis.
  • Figure 3 Calibration curve established from a plasma deficient in TAFI, overloaded with purified TAFI to obtain a concentration range from 0 to 26 ⁇ g / ml.
  • Figure 4 calibration curve for a concentration range, obtained from a plasma pool. The calibration is carried out using the thrombin generation method. The colorimetric determination is made with the chromogenic substrate 4-MTPAFYR.
  • Table I indicates the chemical formulas of 8 of the preferred compounds among the compounds of formula (I) according to the invention. Their absorption spectra measured with a UV-visible spectrophotometer (UVIKON-KONTRON) are shown in Figure 1.
  • the glassware and magnesium are dried beforehand in an oven at 120 ° C and the other products in a desiccator.
  • Retention time 1 2.68 min Retention time 2: 3.32 min Retention time 3: 5.38 min
  • Step 2 Coupling with di-t-butylazodicarboxylate
  • Step 2 Coupling with di-t-butylazodicarboxylate
  • Step 6 Oxidation; Transition from the form “hydrazo” to the form “azo” 5
  • This particular compound requires an additional step to deprotect the side chain of lysine ( ⁇ -Boc: N- ⁇ -tertiobutoxycarbonyl).
  • N- (4-MethoxyPhenytAzoFormyl) -L-PtenylAlanineLysine Procedure: Take 1 eq of N- (4-MethoxyPhenylAzoformyl) -L- Phenylalanyl-L-Lysine ( ⁇ -Boc) in dichloromethane (3mL / mmoL) in a flask. Place with stirring. Connect a dropping funnel containing trifluoroacetic acid (3mL / mmoL). Add slowly (drop by drop). After 15 min, concentrate the reaction medium and purify it by high performance liquid chromatography. An orange powder is obtained in the end.
  • Step 7 Coupling with Arginine
  • Step 7 Coupling with Arginine
  • the plasma sample tested is divided into two aliquots, one of which is added with
  • TAFI 150 ⁇ l of plasma diluted 1/20 in hepatis buffer or TAFI purified to 13 ⁇ g / ml in hepatis buffer.
  • the dosage can be carried out at a temperature of 37 ° C
  • the substrate can be incorporated from the start, at the same time as the activator buffer - the reading can be done by HPLC
  • Carboxypeptidase A bovine pancreas origin (Sigma - Ref. C 0386). 5.1 ml vial at 5000 units, 21 mg prot / ml, 47 units / mg protein
  • the CPA was filtered with prefilter, 5 ⁇ filter and 0.45 ⁇ m filter, for this was added ml H2O.
  • 1 mg of PCI can inhibit approximately 8 mg of TAFI (50 U / mg) at 50% according to the supplier's instructions (Calbiochem).
  • the concentration of 30 ⁇ M of PPACK would correspond to an initial concentration of 150 ⁇ M.
  • the final concentration of 1 mM of substrate would correspond to an initial concentration of 5 mM.
  • the final concentration of 7 ⁇ M of CPI would correspond to an initial concentration of 0.38 mM.
  • the preferred route of activation of coagulation in the context of the present invention is the route of activation by the thrombin / thrombomodulin complex.
  • the activator buffer used comprises the following constituents:
  • thrombomodulin from 0 to 80 nM and preferably 10 nM (Rabbit lung thrombomodulin - American Diagnostica - Ref. 237).
  • thrombin from 0.2 to 10 NIH / ml and preferably 0.8 NIH / ml (Diagnostica Stago - Research product).
  • the concentrations are given for a final volume of 1498 ⁇ l of activating buffer.
  • the Hepes buffer contains: Hepes 20 mM, KCI 4 mM and BSA 1% other tests have been carried out with Hepes 20 mM and NaC1 150 mM.
  • activator buffer contains the following constituents:
  • thrombin generation method Another way of activating coagulation involves thrombin and requires the use of a contact phase activator.
  • Figure 3 represents a calibration curve established from a TAFI deficient plasma overloaded with purified TAFI to obtain a TAFI concentration range from 0 to 26 ⁇ g / ml.
  • the compound of formula I used is MxPAAFR at a concentration of 5 mM.
  • the ⁇ DOs measured according to the method of the invention are reported in the following Table III: TABLE III:
  • the calibration curve is linear for the concentration ranges studied. This largely covers the normality zone, TAFI being present in the body at concentrations ranging from 5 to 15 ⁇ g / ml.
  • the method of the invention therefore makes it possible to detect both deficits in TAFI and abnormally high rates.
  • the method of the invention was applied to different types of plasmas according to the protocol described in Example No. 2.
  • the assay can be carried out on fresh plasma or frozen plasmas but there is a decrease in OD between the two. This results from a slight degradation of the TAFI during thawing (the protein degrades).
  • Frozen plasma, freeze-dried plasma On lyophilized plasma, the TAFI assay is possible and similar to frozen plasma.
  • the method of the invention was applied to a solution containing purified TAFI, with various compounds described in Example No. 1.
  • the assay is in this case carried out with a substrate of the family of compounds described by Mock in (14).
  • the amino acid chosen is arginine, a basic amino acid normally hydrolyzed by carboxypeptidases B (1).
  • AAFR AnizylAzoFormyArginine
  • MxAFR MxAFR
  • This substrate (0.25 mM) is placed in the presence of either a plasma TAFI sample or a porcine pancreatic carboxypeptidase B solution (Sigma - Ref. C9584) at 5.2 mol / l.
  • the decrease in coloration of each of the two samples is followed with a spectrophotometer.
  • Each of the samples is treated according to the following protocol:
  • Plasma TAFI present in a normal plasma pool - diluted
  • Activated TAFI does not hydrolyze AAFR unlike pancreatic CPB.
  • the method of the invention is then applied to a purified TAFI solution, either with a substrate of formula (I) (MxPAFFK) or with MxAFR to verify that the TAFIa nevertheless hydrolyzes a compound of formula (I).
  • the activation of coagulation is triggered by the thrombin-thrombomodulin-CaCl2 complex (see protocol example 2).
  • the decrease in coloration of each of the two samples is followed with a spectrophotometer.
  • Activated TAFI does not hydrolyze MxAFR while it is active on MxPAFFK.
  • a range is carried out as described in Example 2, procedure b) by dilution of a plasma pool, (FIG. 4)
  • This methodology makes it possible to discriminate plasmas according to their capacity to generate thrombin. It is a better reflection of the patient's hypercoagulability state.
  • BAJZAR L. "Purification and Characterization of TAFI, a Thrombin-activable Fibrinolysis Inhibitor. J. of Biol. Chem., 270, 24: 14477-14484, 1995.
  • NAM-JOO HONG et al. "Development of substrate for carboxypeptidase B by employing Thiaarginine peptides". Bull Korean Chem. Soc, Vol. 19, No. 2, 189-93, 1998.
  • MOCK WL et al. "Arazoformyl Peptide Surrogates as Spectrophotometric Kinetic Assay Substrates for Carboxypeptidase A”. Analytical Biochemistry, 239: 218-222, 1996.

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Abstract

La présente invention est relative à des composés chromogènes et leur utilisation pour le dosage d'enzymes de la famille des carboxypeptidases N, et des carboxypeptidases U. Elle vise plus spécifiquement un composé de formule (I) dans laquelle A = (1) ou (2) ou (3) ou (4) ou (5), R1, R2 = H, -CH3, -CH(CH3)2, -OCH3, -CI,-CF3,-OCF3,-SCH3, R3 = un radical d'acide aminé hydrolysable par une carboxypeptidase A. R4 = un radical d'acide aminé basique.

Description

NOUVEAUX SUBSTRATS CHROMOGENES ET LEUR UTILISATION POUR LE DOSAGE DE L'ACTIVITE DE CARBOXYPEPTIDASES.
La présente invention est relative à des composés chromogènes et leur utilisation pour le dosage d'enzymes de la famille des carboxypeptidases N, et des carboxypeptidases U. Elle vise plus spécifiquement l'utilisation desdits composés pour le dosage de l'activité du TAFI (Thrombin Activatable Fibrinolysis Inhibitor) dans un échantillon sanguin et la méthode de dosage correspondante.
Les carboxypeptidases (CP) constituent un groupe d'enzymes au sein de la famille des exopeptidases. Ce sont des enzymes qui coupent les liaisons amide des chaînes polypeptidiques au niveau du dernier acide aminé COOH-terminal. Elles comprennent les serine carboxypeptidases, les cystéine carboxypeptidases et les métallocarboxypeptidases.
De nombreuses carboxypeptidases ont été isolées et séquencées, chez les bactéries, les levures et les végétaux. Ces enzymes sont également présentes dans un grand nombre de tissus chez les mammifères.
Des carboxypeptidases ont notamment été isolées au niveau du pancréas et dans des mastocytes. D'autres carboxypeptidases circulantes dans le plasma ont également été clonées, isolées et séquencées.
Toutes ces enzymes ont un rôle IN VIVO dépendant à la fois de leur localisation et de leurs propriétés physiques. Ainsi les carboxypeptidases se classent différemment selon leur spécificité de substrat. Les carboxypeptidases A ont un spectre relativement large : elles hydrolysent la liaison peptidique C-terminale du dernier acide aminé préférentieUement s'il est hydrophobe (Phe, Leu, Val, Ala). Elles hydrolysent plus lentement les acides aminés dicarboxyliques (Asp, Glu) ainsi que la glycine (Gly), et n'hydrolysent pas du tout les acides aminés basiques tels que l'arginine (Arg), la lysine (Lys), l'histidine (His) ou l'omithine (Orn), un homologue inférieur de la lysine, ni les acides aminés secondaires tels que la praline (Pro) ou l'hydroxyproline (Hyp).
Les carboxypeptidases B hydrolysent spécifiquement les derniers acides aminés basiques C-terminaux, tels que Arg, Lys. Cette classe d'enzymes se subdivise en sous-classes constituées par les carboxypeptidases H (également dénommée encéphaline convertase ou carboxypeptidase E), M, N et U.
La carboxypeptidase E a été localisée dans les granules sécretoires des îlots pancréatiques, les glandes surrénales et pituitaires, et le cerveau. La carboxypeptidase M est une enzyme membranaire présente dans de nombreux tissus et cellules en culture.
La carboxypeptidase N (désignée parfois ci-après CPN) est une enzyme circulante dans le plasma. Elle protège l'organisme contre l'effet vasoactif et inflammatoire de peptides contenant un acide aminé basique C-terminal (de préférence une lysine), libérés dans la circulation. Cette enzyme existe sous sa forme active dans le sang. Elle est également dénommée ininase du fait de ses substrats naturels qui sont la bradykinine, les kinines, les anaphylatoxines.
Enfin, les carboxypeptidases U (unstable) (désignés parfois ci-après CPU) sont des enzymes qui hydrolysent également les acides aminés basiques C-terminaux, avec une préférence pour les arginines, mais qui, contrairement aux carboxypeptidases N, sont très instables lorsqu'elles se trouvent sous leur forme activée.
Une revue générale récente sur les enzymes de la famille des carboxypeptidases a été réalisée par BOUMA et al. (1).
Le TAFI est une métallocarboxypeptidase à zinc basique (1-4). C'est plus précisément une carboxypeptidase U, car son activité est instable à 37° C. Cette enzyme, dont l'ADNc et la séquence d'acides aminés correspondante chez l'homme sont par exemple décrits dans le brevet US 5,206,161, est une protéine plasmatique dont le rôle dans la régulation de la fibrinolyse a été initialement envisagé à partir de l'observation IN VITRO d'un retard de la lyse du caillot en présence de TAFI activé.
Le TAFI activé clive les résidus arginine et lysine exposés en position COOH- terminale sur la fibrine. Cette hydrolyse conduit à une diminution du nombre de sites de fixation du plasminogène et du tPA à la surface du caillot de fibrine, et donc une diminution de la transformation du plasminogène en plasmine par le tPA.
Le TAFI a été successivement identifié sous le nom de procarboxypeptidase B (pro-PCPB) puis de procarboxypeptidase instable (proCPU : Unstable ProCarboxypeptidase) et procarboxypeptidase R (CPR), du fait d'une activité carboxypeptidasique sur les résidus arginine. La forme zymogène est une glycoprotéine à chaîne unique de 60 KDa synthétisée dans le foie et circulante dans le plasma.
Le clivage du zymogène est réalisé majoritairement par la thrombine au niveau du site arg 92. Cette protéolyse libère un peptide N-terminal de 92 acides aminés contenant plusieurs sites de glycosylation. L'action catalytique de la thrombine sur le TAFI est considérablement augmentée par la thrombomoduline en présence d'ions divalents. La vitesse d'activation du TAFI catalysée par la thrombine est ainsi accrue plus de 1000 fois du fait de la formation d'un complexe ternaire avec la thrombomoduline.
Le TAFI activé (TAFIa) est constitué par le domaine catalytique C-terminal du zymogène et comporte 309 acides aminés.
Du fait de son rôle clef dans les mécanismes de régulation du processus de la fibrinolyse, il s'est rapidement avéré utile de pouvoir mesurer la quantité de TAFI activé constitutionnel et de TAFI activable présent dans le plasma dans différents états pathologiques.
Plusieurs méthodes de dosage de l'activité de diverses carboxypeptidases utilisant des substrats spécifiques ont été décrites dans l'état de l'art.
Ainsi, WOLFF et al. (5) ont comparé les performances des substrats synthétiques Hip-Arg, Hip-Lys, Hip-Orn sur les carboxypeptidases B pancréatiques purifiées par chromatographie en mesurant les différences d'absorption en UV.
En 1970, S. SUZUKI et al. (6) ont amélioré la détection du produit d'hydrolyse en dérivatisant la benzoylglycine libérée par le réactif TT (2, 4, 6 Trichloro-5-Triazin). Cette dérivation opérait spécifiquement sur le CH2 de la glycine en α d'une fonction acide libre uniquement. Ce dérivé devient jaune vif (longueur d'onde maximale à 382 nm).
Cette méthode de développement de coloration jaune sur les restes Hippuryl a largement été utilisée par de nombreux auteurs par la suite.
En 1972, K. LORENTZ et al. (7) ont utilisé une réaction de coloration de l'arginine libérée cette fois par action des carboxypeptidases B sur un substrat Hip-Arg en utilisant la p-benzoquinone comme réactif. De cette manière, le dérivé coloré à une longueur d'onde maximale à 480 nm.
En 1980, Th. H. Plummer et al. (8) ont utilisé un substrat synthétique : le Furylacryloyl-Ala-Lys pour quantifier les carboxypeptidases N, la lecture se faisant à 324 nm (proche UV mais non visible).
En 1985, G. H. Fischer et al. (9) ont utilisé un substrat fluorescent par dansylation N-terminale d'un peptide spécifique de la carboxypeptidase à doser. Ce dosage nécessitait une étape d'extraction des produits d'hydrolyse pour une bonne séparation des espèces avant lecture.
En 1986, H. SARUTA et al. ont déterminé par une méthode colorimétrique, l'activité de la carboxypeptidase A (10). Ceux-ci ont utilisé une enzyme spécifique : 'THippuricase" pour hydrolyser le dérivé hippuricyl lui-même obtenu par hydrolyse du substrat hydroxy-hîppuricyl-Phg par la CPA. Cette réaction était révélée finalement par le 4-Aminoantipyrine pour donner un colorant quinoneimide absorbant à 505 nm.
En 1998, NAM JOO HONG et al. ont utilisé un substrat synthétique avec un analogue de l'arginine, le thiaarginine pour doser les CPB (11 ). Toutefois, les méthodes colorimétriques décrites ci-dessus soit n'ont jamais été utilisées pour doser spécifiquement l'activité enzymatique de CPN ou CPU, notamment le TAFI, soit présentent certains inconvénients incompatibles avec un test de dosage simple et efficace de ce type d'enzyme par colorimétrie.
En effet, selon les cas considérés :
- soit la réaction de dérivatisation aboutissant à un produit coloré n'est pas spécifique des espèces libérées lors de l'hydrolyse,
- soit les réactifs de dérivatisation sont très toxiques et ne peuvent pas être utilisés à l'échelle industrielle,
- soit la méthode de révélation colorée est trop longue et contraignante et ne peut être automatisée aisément.
En 1996, W.L. Mock et al. ont décrit une méthode de dosage d'une endoprotéase à zinc extracellulaire d'origine bactérienne, la thermolysine, à l'aide de substrats synthétiques se décolorant sous l'action de l'hydrolyse enzymatique (12). Pour ce faire, les auteurs ont synthétisé des composés dipeptidiques constitués d'un résidu leucine portant un groupement N-(4-methoxyphenylazoformyl) greffé au niveau de la fonction aminé, et d'un autre acide aminé neutre (Leu, Ala, Phe ou Gly).
L'incorporation du groupement arazoformyl donne lieu à un composé fortement coloré. En présence de la thermolysine, la molécule de colorant se réarrange pendant la réaction chimique d'hydrolyse selon un mécanisme bien décrit dans (12 - 13), donnant naissance à des produits non colorés (fragment anizole, N2, C02 et acide aminé). Il est donc aisé de suivre la vélocité de l'enzyme par la vitesse de décoloration du milieu.
Les mêmes auteurs ont également décrit une méthode cinétique de dosage par spectrophotométrie basée sur le même principe que la précédente pour la carboxypeptidase A (13) et la carboxypeptidase B porcine pancréatique (14).
Dans ce cas, les composés utilisés étaient constitués d'un seul acide aminé connu pour être clivé par la carboxypeptidase A (Phé, Leu) ou la carboxypeptidase B (Lys), portant un groupement N-arazoformyl. Le clivage enzymatique de ces composés en produits non colorés, était suivi par mesure de la décroissance de coloration du milieu.
Partant de ces enseignements, les auteurs de la présente invention ont synthétisé de nouveaux composés colorés pour doser par méthode colorimétrique l'activité de carboxypeptidases N, ou de carboxypeptidases U, et plus particulièrement, l'activité du TAFI.
Selon un premier aspect, la présente invention a donc pour objet de nouveaux composés, constituant des substrats de carboxypeptidase N ou U, et plus particulièrement des substrats du TAFI activé. Ces composés sont des substrats chromogènes.
Les composés de l'invention sont caractérisés en ce qu'il s'agit des composés arazoformyl de formule générale (I) suivante :
Figure imgf000009_0001
dans laquelle :
Figure imgf000009_0002
- R1 , R2 = H, -CH3, -CH(CH3)2, -OCH3, -CI, -CF3> -OCF3, -SCH2
R3 = un radical d'acide aminé hydrolysable par une carboxypeptidase A.
- R4 = un radical d'acide aminé basique.
Plus particulièrement, R3 est choisi parmi les radicaux d'acides aminés hydrophobes tels que :
la tyrosine :
Figure imgf000009_0003
Figure imgf000009_0004
- l'alanine : R3 = -CH3
la valine : R3 = -CH-(CH3)2
la leucine : R3 = -CH2-CH-(CH3)2 l'isoleucine : R3
Figure imgf000010_0001
- la phenylglycine R3: >
R4 est plus précisément choisi parmi les radicaux d'acides aminés tels que
- l'arginine
Figure imgf000010_0002
- la lysine (R4 = -(CH2)4-NH2)
- l'ornithine R =- (CH2) - NH2
De préférence, R3 représente un reste acide aminé aromatique et en particulier la phenylalanine ou la tyrosine, et R4 l'arginine ou la lysine.
Ri est de préférence choisi parmi :
-H et -CH3) et,
R2 de préférence choisi parmi :
Figure imgf000010_0003
Une famille préférée de composés selon l'invention est représentée par la formule générale :
Figure imgf000011_0001
dans laquelle :
Figure imgf000011_0002
- Ri, R2 = -H, -CH3> (CH3)2 CH-, CH3-0-,CI-,-CF3
- R3 = un radical d'acide aminé hydrolysable par une carboxypeptidase A.
- R4 = un radical d'acide aminé basique.
R3 représente preférentiellement la phenylalanine, ou la tyrosine et,
R4 représente preférentiellement l'arginine ou la lysine.
Ri est de préférence choisi parmi :
-H et -CH3, et,
R2 de préférence choisi parmi :
Figure imgf000011_0003
Un composé particulièrement préféré de la famille de la présente invention est un composé de formule (I) dans laquelle :
Figure imgf000012_0001
ledit composé étant choisi au sein du groupe constitué par les composés suivants, dans lesquels :
Figure imgf000013_0001
NH R1=— CI R2=-CH3 Ra 3=— CH?-// ) R4=- (CH2)3-NH-c
\=J ~ Nr H2
R1
Figure imgf000013_0002
Figure imgf000013_0003
* les chiffres entre parenthèses déterminant la position des groupements methyl sur le radical phényl.
L'invention concerne en particulier, dans le cadre des définitions données ci- dessus, chaque composé répondant à la formule (I) et résultant des combinaisons possibles des groupements A, R1 , R2, R3 et R4 dont il a été donné une définition préférée ci-dessus.
Dans ce qui suit, les composés ainsi définis seront indifféremment dénommés "composés de formule (I)" ou "substrats de formule (I)".
Selon un deuxième aspect, la présente invention a pour objet une méthode de dosage colorimétrique de l'activité d'une carboxypeptidase N, ou de préférence de l'activité d'une CPU, dans un échantillon biologique dans laquelle :
- on met en contact ledit échantillon avec un composé chromogène de formule (I) tel que défini ci-dessus, et une enzyme de la famille des carboxypeptidases A, dans des conditions permettant l'hydrolyse de l'échantillon et,
- on détermine l'hydrolyse dudit composé de formule (I) par la CPN ou la CPU de l'échantillon par la mesure de la décroissance de sa coloration (correspondant à une diminution de l'absorption ) à une longueur d'onde sélectionnée à partir du spectre d'absorption dudit composé.
La diminution de la coloration résulte de la double hydrolyse du substrat de formule (I) par les carboxypeptidases N ou U de l'échantillon d'une part, par la carboxypeptidase A d'autre part.
La méthode selon la présente invention est de préférence réalisée à l'aide d'un composé de formule (I) dans lequel l'acide aminé hydrophobe est la phénylalanine ou de préférence la tyrosine, et l'acide aminé basique est l'arginine ou la lysine.
La méthode de l'invention est preférentiellement réalisée à l'aide d'un composé de formule (I) dans laquelle Ri est choisi parmi -H et -CH3 et R2 parmi -CH3, -0-CH3 et -S-CH3. Avantageusement, lorsque dans le composé de formule (I), R-i est H, R2 est S-CH3. La méthode de la présente invention est avantageusement réalisée avec la famille de composés de formule (I) dans laquelle :
Figure imgf000015_0001
R-i et R2 ayant l'une quelconque des significations donnée ci-dessus et R2 étant de préférence -S-CH3. 10 Plus particulièrement le composé de formule (I) utilisé est un composé phenylazoformyl dans lequel :
Figure imgf000015_0002
15 ledit composé étant choisi au sein du groupe constitué par les composés suivants, dans lesquels :
Figure imgf000015_0003
(CH2)4- H2
Figure imgf000016_0001
R1≈— CI
Figure imgf000016_0002
Figure imgf000016_0003
Figure imgf000016_0004
Les chiffres entre parenthèses déterminant fa position des groupements methyl sur le radical phényl.
0 La carboxypeptidase A utilisée peut provenir de différentes sources, telles que, par exemple, le pancréas ou des cellules mastocytaires. Elle peut être d'origine humaine ou animale.
On utilise preférentiellement dans le cadre de l'invention de la carboxypeptidase A 5 pancréatique d'origine bovine.
Le principe de la méthode de l'invention est basé sur une hydrolyse d'un substrat coloré de formule (I) tel que décrit ci-dessus, par l'action de la carboxypeptidase N ou de la carboxypeptidase U éventuellement présente dans l'échantillon analysé, 0 associée à celle de la carboxypeptidase A ajoutée dans le milieu. Cette hydrolyse spécifique conduit à une extinction de la coloration du composé de départ, qui peut être suivie à l'aide d'un spectrophotomètre.
Plus précisément, compte tenu des spécificités d'hydrolyse des carboxypeptidases N ou U et A exposées précédemment, et des caractéristiques structurales des composés de formule (I) décrits ci-dessus, la mise en contact d'une carboxypeptidase A et d'une carboxypeptidase N ou U activée avec un tel composé va générer une coupure au niveau de la liaison entre le premier et le second acide aminé dudit composé du fait de l'action de la carboxypeptidase N ou U, suivie quasi simultanément d'une coupure au niveau de la liaison entre le groupement azoformyl et le premier acide aminé, du fait de l'action de la carboxypeptidase A.
La résultante de ces deux réactions sera une décoloration du milieu de départ. Il sera alors aisé de suivre en fonction du temps cette décroissance de coloration en se plaçant à une longueur d'onde d'absorption du colorant [composé formule (I)], de préférence à la longueur d'onde correspondant à son maximum (pic) d'absorption.
Cette décroissance est représentative de la cinétique d'hydrolyse. La quantité de carboxypeptidase N ou U active présente initialement dans l'échantillon est calculée en comparant la densité optique mesurée à celle d'une courbe d'étalonnage qui peut par exemple être établie à partir d'une gamme de concentrations de carboxypeptidase N ou U purifiée active en solution.
Inversement, si l'échantillon ne contient pas de carboxypeptidase N ou U ou si celle-ci est inactive, il n'y aura pas de coupure entre le premier et second acide aminé du composé de formule (I), et donc, la carboxypeptidase A ne pourra pas agir au niveau de la liaison du groupement coloré sur le premier acide aminé. De ce fait, on n'observera pas de diminution de la coloration de la solution de départ. L'invention vise plus particulièrement une méthode de dosage de l'activité d'une CPN ou une CPU dans un échantillon biologique, notamment un échantillon sanguin tel que du sang total ou du plasma pur ou dilué, et, preférentiellement, une méthode de dosage de l'activité du TAFI dans un échantillon sanguin, notamment du plasma pur ou dilué.
Dans ce cas, l'échantillon à tester est d'abord mis en présence d'une solution tampon avec, si nécessaire, un activateur de la carboxypeptidase dont on souhaite mesurer l'activité (solution nommée tampon activateur ci-après), et laissé en incubation, le temps nécessaire pour obtenir l'activation de la carboxypeptidase étudiée. L'incubation est de préférence réalisée à température ambiante pendant 5 à 20 minutes,avantageusement 8 à 12 minutes, de préférence 10 minutes.
Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, l'activateur de carboxypeptidase peut être un activateur, notamment un facteur de la coagulation, que l'on laisse agir de façon à activer la carboxypeptidase U, en particulier le TAFI.
Dans ce cas, on ajoute ensuite dans le mélange un inhibiteur des serine protéases pour aboutir à un blocage du processus de coagulation. L'inhibiteur de serine protéases est par exemple le PPACK (H-D-Phe-Pro-Arg-chloromethylkétone - Bachem - Réf. N.1065) utilisé dans une gamme de concentration finale de 1 à 50 μM, de préférence de 30 μM, correspondant à des concentrations initiales de 10 à 250 μM et de préférence 150 μM. D'autres composés, tels que le Péfabloc [4-(2- aminoethyl)-benzènesulfonylfluoridehypochloride - Penthapharm - Réf. 399.01] utilisé préféren-tiellement à une concentration de 0,1 mM conviennent également.
Simultanément ou immédiatement après l'addition de l'inhibiteur, on ajoute l'un des composés de formule (I) selon l'invention en solution aqueuse. Ce composé est en général utilisé dans une gamme de concentrations finales comprises entre 0,25 et 10 mM, de préférence entre 0,25 et 2,5 mM, avantageusement entre 0,25 et 1mM. Il est de préférence utilisé à 0,4 mM. Après une nouvelle phase d'incubation, de préférence à température ambiante, durant laquelle le substrat de formule (I) aura été coupé au niveau de son second acide aminé par la CPN ou CPU de l'échantillon dont on recherche l'activité, l'hydrolyse peut être arrêtée par addition d'HCI, suivie immédiatement par l'ajout d'une base pour réajuster le pH à une valeur comprise entre 7 et 8.
La densité optique du mélange ainsi obtenu est alors mesurée une première fois sans addition de CPA dans le milieu. La CPA est ensuite ajoutée dans le milieu, et la DO est à nouveau mesurée. Sa décroissance peut être suivie au spectrophotomètre. Elle traduit l'hydrolyse du substrat de formule (I) par l'action conjointe de la CPU ou N de l'échantillon et de la CPA.
Les delta DO (Δ DO) mesurés sont comparés avec les valeurs portées sur une courbe d'étalonnage qui peut par exemple être obtenue à partir d'un échantillon déficient en la CPN ou la CPU étudiée, surchargé avec cette enzyme purifiée.
Le protocole décrit ci-dessus constitue un mode de réalisation préféré de l'invention. Toutefois, plusieurs variantes de celui-ci sont envisageables, tant en ce qui concerne les séquences d'addition des différents composés utilisés, que la nature de ces composés. Elles entrent également dans la définition de la présente invention.
Ainsi, il est par exemple possible d'incorporer le substrat de formule (I) dès le début de la méthode, en même temps que le tampon activateur de la coagulation.
De même, on peut réaliser le dosage à partir de deux aliquots du même milieu réactionnel, dont un seul est traité avec de la CPA. On mesure ensuite le ΔDO entre ces deux aliquots. Dans le cas où le tampon activateur active la coagulation, l'activation peut être réalisée selon différentes voies connues de l'homme du métier, et utilisées en routine dans les tests de coagulation.
Ces voies d'activation sont notamment :
- la voie d'activation par le complexe thrombine/thrombomoduline. Cette première possibilité constitue un mode de réalisation préféré de la présente invention.
- la voie d'activation par le facteur XI activé, qui dans ce cas remplace la thrombine dans le tampon activateur. Pour accélérer la réaction, il peut être avantageux de rajouter également de la thrombomoduline dans le milieu.
- la voie d'activation par des venins, notamment des venins de serpent, avec également l'ajout éventuel de prothrombine et/ou thrombomoduline dans le milieu. Les venins preférentiellement utilisés sont les venins de la famille des "thrombin-like" tels que le venin d'Arkistrodon rhodostoma ou Bathrops atrox, ainsi que les venins d'activateurs de prothrombine, tels que celui de Notechis scutatus ou d'Echis carinatus (15 - 18 ).
la voie d'activation par le facteur tissulaire, en présence de phospholipides et de calcium (activation de la voie exogène selon le principe d'un temps de Quick),
la voie d'activation de la phase contact,
- la voie d'activation par la plasmine.
Avantageusement, la méthode selon l'invention permet de mesurer pour un même échantillon, d'une part l'activité de la CPN et/ou de la CPU "constitutionnelle" présente dans celui-ci, i.e. la CPN et/ou CPU présente sous une forme active "naturellement" (i.e. sans induction de l'activation par un tampon activateur), et d'autre part, l'activité de la CPN et/ou CPU activable, i.e. la CPN et/ou la CPU présente dans l'échantillon sous une forme inactive, dont l'activité sera induite ou générée durant le processus d'activation lié à l'effet du tampon activateur.
Pour cela, on compare l'activité d'hydrolyse sur un substrat de formule (I) d'un échantillon selon la méthode décrite ci-dessus, en mettant l'échantillon soit en présence de tampon activateur (détection de l'activité totale de la CPN ou la CPU dans l'échantillon), soit en présence d'un tampon physiologique sans activateur (détection de l'activité de la CPN et/ou la CPU constitutionnelle).
La différence de delta de DO entre les deux mesures permet d'obtenir l'activité de la CPN ou de la CPU activable présente dans l'échantillon.
Selon une variante préférée, la présente invention a pour objet une méthode de dosage du TAFI activé dans un échantillon biologique, notamment un échantillon sanguin, ladite méthode utilisant l'un des composés ou substrats de formule (I) décrits précédemment.
L'activité du TAFI constitutionnel et/ou activable est mesurée en traitant l'échantillon tel que cela vient d'être décrit, en présence et en absence d'un inhibiteur spécifique du TAFI.
L'inhibiteur qui est de préférence utilisé est le CPI ("Carboxypeptidase Inhibitor from Potato Tubers) dont l'utilisation dans des études in vitro et in vivo sur la fonction du TAFI a été largement décrite dans la littérature (Réf. 1). Il est aujourd'hui bien connu de l'homme du métier que le CPI inhibe spécifiquement le TAFI sans altérer l'activité d'autres CP plasmatiques. Dans le cadre de la méthode de l'invention, le CPI peut être utilisé dans une gamme de concentrations allant de 0,10 à 0,50 mM (concentrations initiales), ou de 2 à 10 μM exprimés en concentrations finales. Il est de préférence utilisé à 7μM (concentration finale) ou 0,38 mM (concentration initiale). Selon le principe de cette variante préférée, l'échantillon est activé par le tampon d'activation du TAFI, par exemple un tampon d'activation de la coagulation par le complexe thrombine/thrombomoduline, et traité selon la méthode décrite précédemment soit en présence soit en l'absence d'inhibiteur du TAFI.
La différence de coloration du milieu avec et sans inhibiteur du TAFI permet ainsi de déterminer l'activité enzymatique propre au TAFI activé (TAFIa) dans l'échantillon.
Plus précisément, la méthode de l'invention peut être réalisée selon le protocole suivant : l'échantillon à tester est divisé en 2 aliquotes ou plus si nécessaire, selon que l'on souhaite déterminer l'activité de tout le TAFI contenu dans l'échantillon ou que l'on souhaite faire la distinction entre l'activité du TAFI constitutionnel et celle du TAFI activable.
Un premier aliquote contenant l'inhibiteur du TAFI est activé et traité selon la méthode décrite précédemment. Celui-ci ne va donc générer qu'une faible décoloration du milieu, résultant d'une hydrolyse résiduelle du substrat de formule (I) par d'autres carboxypeptidases présentes dans l'échantillon.
Un second aliquote est traité de manière identique au précédent, mais en l'absence d'inhibiteur du TAFI. Il va en résulter une forte décoloration du milieu, liée à l'hydrolyse du substrat de formule (I) par le TAFI activé dans l'échantillon.
- On mesure la différence de coloration (Δ DO) entre le premier et le second aliquote.
Celle-ci est ainsi représentative de l'activité spécifique du TAFI activé dans l'échantillon.
Si l'on souhaite faire la distinction entre l'activité spécifique du TAFI activable et celle du TAFI constitutionnel, on utilise un troisième aliquote du même échantillon dont on mesure également l'activité d'hydrolyse sur le substrat de formule (I), mais dans lequel on n'aura pas déclenché l'activation, en n'ajoutant pas de tampon activateur dans le milieu.
Les Δ DO entre ces différents aliquotes permettent d'obtenir soit l'activité du TAFI total de l'échantillon, soit celle du seul TAFI constitutionnel, et donc d'en déduire celle du TAFI activable.
Selon un troisième aspect, l'invention a pour objet un kit de diagnostic pour le dosage d'une CPN ou une CPU, ledit kit de diagnostic comprenant un substrat de formule (I) tel que défini précédemment.
Preférentiellement, le kit de diagnostic selon la présente invention est un kit pour mesurer l'activité du TAFI dans un échantillon sanguin.
Un tel kit de diagnostic comprend notamment :
- un activateur du TAFI, notamment un tampon activateur du TAFI,
- de la carboxypeptidase A,
- un substrat de formule (I), - un inhibiteur du TAFI.
Le kit comprend également optionnellement un inhibiteur des serine protéases.
Chacun de ces composants se présentent preférentiellement en poudre ou sous forme lyophilisée.
Les exemples ci-après et les figures illustrent la présente invention.
Figure 1 : Spectre d'absorption des différents composés de formule (I) synthétisés, mesuré avec un spectrophotomètre UV-visible.
Figure 2 : Analyse du AAFFR effectuée par hydrolyse acide. Figure 3 : Courbe d'étalonnage établie à partir d'un plasma déficient en TAFI, surchargé avec du TAFI purifié pour obtenir une gamme de concentration allant de 0 à 26 μg/ml.
Figure 4: courbe d'étalonnage pour une gamme de concentration, obtenue à partir d'un plasma pool. La calibration est réalisée en méthode génération de thrombine. Le dosage colorimétrique est fait avec le substrat chromogène 4-MTPAFYR.
EXEMPLE N° 1 :
Synthèse d'un groupe de composés azolformyl selon l'invention.
Le tableau I ci-après indique les formules chimiques de 8 des composés préférés parmi les composés de formule (I) selon l'invention. Leurs spectres d'absorption mesurés avec un spectrophotomètre UV-visible (UVIKON-KONTRON) sont reportés sur la figure 1.
On décrit ci-après en détail la synthèse de l'un d'eux, le composé n° 4 (MxPAFFR). Les étapes décrites ci-dessous pour ce composé sont identiques pour chacun des autres, excepté pour le composé n° 5 (MxPAFFK) pour lequel une étape supplémentaire de déprotection de la lysine est nécessaire (voir schéma réactionnel et explications ci-après).
TABLEAU 1
Figure imgf000025_0001
4-methoxyphenylazoformylp enyialanyiargιrnne
Composé 5 : MxPAFFK
Figure imgf000026_0001
4-met oxyphenylazoformylphenylalaπyllysine
Composé 6 : C1TAFFR
Figure imgf000026_0002
3-chloro-p-tolylazoformylphenylalanylarginine
Figure imgf000026_0003
4-(trifluoromethoxy)azoformylphenylalanylarginine
Figure imgf000027_0001
4-Met ylthiop enylazoformylphenylalanylarginine
Figure imgf000027_0002
4- ethylt iophenylazoformyltyrosylarglnine
A/ Synthèse du 4-methoxyphenylazoformylphenylalanylarginine (Composé 4) :
Introduction : Toutes les étapes décrites ci-dessous sont identiques pour chaque colorant. Chaque étape est suivie par Chromatographie Liquide Haute Performance et par Analyse d'Acides Aminés pour les couplages avec la Phenylalanine et PArginine.
1ere étape : Réactif de Griqnard Schéma réactionnel
H3C-( Λ Λ Br + Mg (tourna )
Figure imgf000027_0003
4-bromoanisole Magnésium Réactif de Grigna d Mode opératoire : Préparer 1 éq. de 4-bromoanisole et 1 éq. de magnésium. Introduire le magnésium et 20 % en masse du 4- bromoanisole dans un tricol, reprendre dans du tétrahydrofuranne anhydre (2mL/mmol) et placer le montage sous azote. Initier la réaction en chauffant le tricol en un point avec un décapeur thermique, le milieu réactionnel devient marron. Quand la réaction démarre (effervescence à la surface du magnésium), placer à reflux à 90 °C puis additionner lentement le reste du 4-bromoanisole repris dans du THF anhydre (2mL/mmol). Arrêter le reflux après 1 h. Le bromure de 4- methoxyphenylmagnesium est utilisé tel quel pour l'étape suivante (couleur marron).
Remarque : La verrerie et le magnésium sont préalablement séchés à l'étuve à 120 °C et les autres produits au dessiccateur.
Temps de rétention : Le réactif de Grignard étant un composé très instable et sensible à l'eau, on obtient donc trois temps de rétention caractéristiques des produits de dégradation formés lors de l'analyse HPLC :
Temps de rétention 1 : 2.68 min Temps de rétention 2 : 3.32 min Temps de rétention 3 : 5.38 min
2eme étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Schéma réactionnel
Figure imgf000028_0001
Figure imgf000029_0001
Mode opératoire : Reprendre à part 1 eq. de di-t-butylazodicarboxylate et 1 eq. de 4-methoxyphenylmagnesiumbromide (réactif de Grignard) dans du THF anhydre (2 mL/mmol). Refroidir chacun entre 0-5°C. Additionner le réactif de Grignard sur le di-t-butylazodicarboxylate. Agiter 10 min, ajouter 1.02 eq. d'acide acétique puis laisser revenir à température ambiante. Effectuer une extraction eau/éther. Sécher la phase éthérée, évaporer à sec. On obtient une huile jaune. Temps de rétention : 7.85 min
3eme étape : Péprotection Schéma réactionnel
Figure imgf000029_0002
H3C-0 "— ('= \? \\-_NH— NH.
4-(methoxy)pheπyt ydιazmehydrac lori((e Mode opératoire : Reprendre 1 eq. De N, N'-bis-(t-butoxycarbonyl)-4- (methoxy)phenylhydrazine dans de l'isopropanol (10.2mL/mmol) puis ajouter du HCI dans le dioxane à 4.8 M (2mL/mmol). Porter à reflux (80°C). Après 15 min, refroidir, ajouter de l'ether (5mL/mmol). La 4- methoxyphenylhydrazinehydrochloride précipite. Filtrer et sécher. Reprendre la poudre dans de l'eau puis amener à pH 7. Effectuer une extraction eau / dichloromethane et évaporer la phase dichloromethane à sec. On obtient la 4- methoxyphenylhydrazine (poudre jaune) qui est séchée.
10 Temps de rétention : 2.20 min
4eme étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Schéma réactionnel
15
Figure imgf000030_0001
Figure imgf000030_0002
30 Mode opératoire : Reprendre 1.4 eq. de diphenylcarbonate dans du benzène (0.25 mL/mmol) et porter à reflux à 120 °C. Additionner lentement 1eq. de 4- methoxyphenylhydrazine repris dans du benzène (0.7 mL/mmol). Arrêter le reflux après 6h. Concentrer le milieu réactionnel puis effectuer une cristallisation hexane/benzène (4/1). Filtrer et sécher les cristaux blanchâtres au dessiccateur. Temps de rétention : 6.74 min
5e e étape : Couplage avec la phenylalanine Schéma réactionnel
feHC j0r H <Hθ>
4-MethoxyPhen lHydrazofbrmate
Figure imgf000031_0001
(cristaux blanchâtre) Sel de triethylam oπάim de la Phenylalanine
Figure imgf000031_0002
Mode opératoire : Porter à reflux (95°C) 1.2 eq. de sel de triethylammonium de la phenylalanine repris dans de la dimethylformamide (3.33mL/mmol). Additionner lentement 1 éq. de 4-methoxyphenylhydrazoformate repris dans de la dimethylformamide (2mL/mmol). Arrêter le reflux après 1h30, laisser revenir à température ambiante, concentrer. Acidifier (pH =2).Purifier par chromatographie (cristaux blanchâtre). Temps de rétention : 6.12 min geme éta e : Oxydation : Passage de la forme "hvdrazo" à la forme "azo"
Schéma réactionnel
Figure imgf000031_0003
Figure imgf000032_0001
Mode opératoire : Reprendre 1 éq. de N-(4-methoxyphenylhydrazoformyl)-L- Phenylalanine dans de l'eau ultra-pure (20.8 mL/mmol) contenant 1éq. d' hydroxyde de sodium et 1éq. d'acétate d'ammonium. Additionner 1 éq. de metaperiodate de sodium repris dans de l'eau ultra-pure (4.2 mL/mmol). Après 20 min le milieu réactionnel est acidifié (pH=2) puis purifié par chromatographie (cristaux orange). Temps de rétention : 6.86 min
7ème étape : Couplage avec l'Arginine
Schéma réactionnel
Figure imgf000032_0002
Figure imgf000033_0001
Mode opératoire : Reprendre 1 éq. d'Argininemethylester.hydrochloride dans de la dimethylformamide (3ml_/mmol). Ajouter 1.1 éq. de DIAE (Diisopropylethylamine), 1éq. de N-(4-methoxyphenylazoformyl)-L-Phenylalanine puis 1.1 éq. de TBTU (O- (Benzotriazol-1-yl)-N,N,N',N'-tetramethyluronium tetrafluoroborate). Ajouter la quantité nécessaire de DIAE pour avoir un pH à 7-8. Après 5 min, évaporer à sec et purifier par chromatographie (cristaux orange). Temps de rétention : 6.06 min
8e e étape : Saponification Schéma réactionnel
Figure imgf000033_0002
Figure imgf000034_0001
N-{4-MethoxyPheπylAzaFoιmyl)-L-PhenylAlanineAηjiπine AnisyiAzoFormylPhenylalaninθArginine : AAFFR
Mode opératoire : reprendre 1éq. de N-(4-methoxyphenylazoformyl)-L- PhenylalanineArgininemethylester dans un mélange eau/methanol (Ratio : 1/2 ; 3 mL/mmol). Additionner 3 éq. d'hydroxyde de sodium 1 N. Après 1 h, acidifier le MR, concentrer puis effectuer une extraction eau/dichloromethane. La phase dichloromethane est évaporée puis séchée. On obtient le N-(4- methoxyphenylazoformyl)-L-PhenylalanylArginine qui est une poudre orange. Temps de rétention : 5.5 min
Une analyse d'acide aminé du produit final est effectuée après hydrolyse acide pour contrôler l'homogénéité de la séquence. Les résultats de cette analyse sont reportés sur le chromatogramme de la figure 2.
Conditions analytiques :
> Chaîne HPLC AAA ; Dérivatisation précolonne au PITC (phénylisocyanate)
> Colonne C18 ; 100A ; 5μ ; 250 x 4.6 mm > Détection à 254 nm ; Débit = 1 mL/min
> Eluants :
A : Tampon acétate pH 5.74 B: Tampon 70% CH3CN, 30% AcONa ; 32mM ; pH = 6.10
C : CH3CN
Les protocoles de synthèse pour les autres composés sont basés sur les mêmes étapes que celles qui viennent d'être décrites ci-dessus. Ceux-ci sont résumés dans les schémas réactionnels ci-après.
Les temps de rétention obtenus à chaque étape de synthèse de ces composés sont reportés dans le tableau II ci-dessous :
TABLEAU II : Temps de rétention obtenus sur HPLC à chaque étape pour les autres colorants synthétisés
Figure imgf000035_0001
Conditions analytiques
> Colonne C18 ; 5μ ; 100x4.6mm
> Détection à 254 nm ; Débit = 1 mL/min
> Gradient : 0' → 10%B 10'→ 90%B
> Avec A : Eau à 0.1 % d'acide trifluoroacétique B : Acétonitrile à 0.1 % d'acide trifluoroacétique
B/ Synthèse du 2.3-dimethylphenylazoformylphenylalanylarginine (Composé 1)
1ère étape : Réactif de Grignard
Figure imgf000036_0001
2ême étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Figure imgf000036_0002
{Réactif de Grignard αW-butyl azαdfcarboxylate
Figure imgf000036_0003
3 étape : Déprotection
Figure imgf000036_0004
m étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Figure imgf000037_0001
étape : Couplage avec la phenylalanine
Figure imgf000037_0002
ge e éta e . Oxydation : Passage de la forme "hydrazo" à la forme ""a —z —o — H
Figure imgf000038_0001
N^2,3^imethy1PhenylHydrazoFQmyQ-L-PheayiAlanmβ (cristaux blanchâtre)
Figure imgf000038_0002
7ème étape : Couplage avec l'Arginine
Figure imgf000038_0003
Figure imgf000039_0001
N-(2.3-dlmethylP henylAzoFormyl)-L-PhenylAlanylArginineMethylester (couleur orange)
8eme étape : Saponification
Figure imgf000039_0002
Figure imgf000039_0003
N-(2,3-di ethylP henylAzoFormyl)-L-PhenylAlanlneArginine
Cl Synthèse du 2,4-dimethylphenylazoformylphenylalanylarαinine (Composé 2) : 1ere étape : Réactif de Grignard
Figure imgf000040_0001
2eme étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate 5
Figure imgf000040_0002
0 4 étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Figure imgf000040_0003
Figure imgf000041_0001
2.4-(όmϋιVi)Qimvihydnzotaπnti&
geme éta e . çOU ia e avec la phenylalanine
Figure imgf000041_0002
geme ^tape . Oxydation : Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo'
Figure imgf000041_0003
Figure imgf000042_0001
étape : Couplage avec l'Arαinine
N-(2,4-d imethylPhenylAzoFor yl)-L-PhenylAlanineArgininemethylesterhydrochloride (couleur orange)
Figure imgf000042_0003
N-(2.4-dι'methylP henylAzoFormyl)-L-PhenylAlanylArginiπeMe (couleur orange)
étape : Saponification
Figure imgf000043_0001
N-(2.4-dimethylP hènylAzoFormyl)-L-PhenylAlanylArginineMethylester (couleur orange)
Figure imgf000043_0002
N-(2,4~dimethylP henylAzαFormyt)-L-PhenylAlanineArginine
D/ Synthèse du 2,5-dimethylphenylazoformylphenylalanylarginine (Composé 3} :
1ere étape : Réactif de Grignard
Figure imgf000043_0003
2 >ème étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Figure imgf000044_0001
geme ^tape : Péprotection
Figure imgf000044_0002
4 étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Figure imgf000044_0003
5eme étape : Couplage avec la phenylalanine
35
Figure imgf000044_0004
Figure imgf000045_0001
geme éta e . Oxydation : Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo
Figure imgf000045_0002
»eme étape : Couplage avec l'Arginine
Figure imgf000045_0003
Figure imgf000046_0001
N~(2. thdlmethylP henylAzoFormyl) .-PhenylAlanylAη inineMet ytester (couleur orange)
geme éta e : Saponification
Figure imgf000046_0002
N-(2, 4-dimethylP enylAzoFormyl)-L-PhenylA!anineArginine
E/ Synthèse du 4-methoxyphenylazoformylphenylalanyllvsine : 1ère étape : Réactif de Grignard HaC-O-Q-Br + Mg [towmm) * .
Figure imgf000047_0001
-HMwπuπîso e Magnésium Réactif de Grignard
ème ^ape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Figure imgf000047_0002
étape : Déprotection
Figure imgf000047_0003
e étape : Couplage avec le diphenylcarbonate Reflux benzène a 120 *C
CHa— ' -NH-NH2 + ( -0-C-O— / j
CristaBisation hexanβ/beπzaπe
4-(ιnethoxy)pnen mydιazinw diphenytcarbonate
Figure imgf000048_0001
5 gème éta e : Couplage avec la phenylalanine
Figure imgf000048_0002
6 e étape : Oxydation ; Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo" 5
Figure imgf000048_0003
5
7 étape : Couplage avec la Lysine
Figure imgf000049_0001
Figure imgf000049_0002
me étape : Saponification
Figure imgf000049_0003
Figure imgf000050_0001
9 étape : Péprotectîon
Ce composé particulier nécessite une étape supplémentaire pour déprotéger la chaîne latérale de la lysine (ε-Boc :N-ε-tertiobutoxycarbonyl).
Figure imgf000050_0002
N-(4-MethoxyPhenytAzoFormyl)-L-PtenylAlanineLysine Mode opératoire : Reprendre 1 eq de N-(4-MethoxyPhenylAzoformyl)-L- Phenylalanyl-L-Lysine(ε-Boc) dans du dichloromethane (3mL/mmoL)dans un ballon. Placer sous agitation. Connecter une ampoule à brome contenant de l'acide trifluoroacétique (3mL/mmoL).Additionner lentement (goutte à goutte).Après 15 min, concentrer le milieu réactionnel et le purifier par chromatographie liquide haute performance. On obtient en finale une poudre orangée.
F/ Synthèse du 3-chloro-p-tolylazoformylphenylalanylarginine (Composé 6) : 0 1ere étape : Réactif de Grignard
Schéma réactionnel
Figure imgf000051_0001
5 2eme étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Schéma réactionnel
Figure imgf000051_0002
3 ιèm ee étape : Déprotection 0 Schéma réactionnel
Figure imgf000052_0001
4eme étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
10
Schéma réactionnel
Figure imgf000052_0002
20
Reflux benzène a 120 *C -n„Λ Λ. Crisiallisatiαn hexane benzeπe H3C «-©
3 h xo-p-tolyttιydrazotoπτ te
25 geme étape : Couplage avec la phenylalanine
Figure imgf000052_0003
6ème étape : Oxydation : Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo"
Schéma réactionnel
Figure imgf000053_0001
15 7ème étape : Couplage avec l'Arginine
Schéma réactionnel
Figure imgf000053_0002
8ème étape : Saponification 45 Schéma réactionnel
Figure imgf000054_0001
G/ Synthèse du 3-chloro-p-tolylazoformylphenylalanylarginine (Composé 7)
1ere étape : Réactif de Grignard Schéma réactionnel
Figure imgf000054_0002
2e e étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Schéma réactionnel
Figure imgf000054_0003
Figure imgf000055_0001
10
3ème étape : Déprotection
15
Schéma réactionnel
Figure imgf000055_0002
25 4eme étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Schéma réactionnel
Figure imgf000055_0003
45 5e e étape : Couplage avec la phenylalanine Schéma réactionnel
Figure imgf000056_0001
Figure imgf000056_0002
6e e étape : Oxydation ; Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo"
Schéma réactionnel
Figure imgf000056_0003
γeme ^ ape : Couplage avec l'Arginine
Schéma réactionnel
Figure imgf000057_0001
5
8eme étape : Saponification Schéma réactionnel 0
Figure imgf000058_0001
Figure imgf000058_0002
H/ Synthèse du 4-Methylthiophenylazoformylphenylalanylarginine (Composé 81 :
1 è Rrree étape : Réactif de Grignard
Figure imgf000058_0003
2 e étape : Couplage avec le di-t-butviazodicarboxylate
Figure imgf000059_0001
3βme étape : Péprotection
Figure imgf000059_0002
46me étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Reflux benzène à 120 *C
H3CS— / V-NH-NHz + ( V-O-C-0— / j • ».
Cristallisation hexane eπzène
4-(methylthio)phenylhydrazine diphenylcarbonate
Figure imgf000059_0003
5eme étape : Couplage avec la phenylalanine
Figure imgf000059_0004
N-(4-methylthioPhenyiHydrazoFormyl)-L-PhenylAtanine
me étape : Oxydation : Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo'
Figure imgf000060_0001
7 étape : Couplage avec l'Arginine
Figure imgf000060_0002
N-(4-methylthioPhenylazoFormyl)-L-PhenylAlanine
Argininemethylesterhydrachloride
Figure imgf000060_0003
N^4- ethylthioFhenylAzoFormyl)-L-PhenylAlany1ArginineMethylester
geme étape : Saponification
Figure imgf000061_0001
N-(4-methyHhioRιeπylA2oFormyl)4.-PhenylAlany1ArginineMethytester couleur orange
Figure imgf000061_0002
/ Synthèse du 4-Methylthiophenylazoformyltyrosylarginine (Composé 9) ére étape : Réactif de Grignard
Figure imgf000061_0003
ème étape : Couplage avec le di-t-butylazodicarboxylate
Figure imgf000062_0001
3eme étape : Déprotection
Figure imgf000062_0002
4ème étape : Couplage avec le diphenylcarbonate
Figure imgf000062_0003
5è e étape : Couplage avec la Tyrosine
Figure imgf000062_0004
éme étape : Oxydation : Passage de la forme "hydrazo" à la forme "azo'
Figure imgf000063_0001
7 eme ^tape : Couplage avec l'Arginine
Figure imgf000063_0002
N-(4-methylthioPhenylazoFormyl)-L-Tyrosine
Argininemethylesterhydrochloride
Figure imgf000063_0003
N-(4-methylthioP henylAzoFormyl)-L-TyrosylArginineMethylester 8eme étape : Saponification
Figure imgf000064_0001
EXEMPLE N° 2 :
1- Principe du dosage et principaux réactifs mis en oeuvre
Principe du dosage d'activité enzymatique TAFIa
Figure imgf000065_0001
espèce colorée V
Figure imgf000065_0002
extraction de la coloration 2. Exemple de protocole de dosage de l'activité du TAFI selon la méthode de l'invention.
a) 1er mode opératoire : méthode thrombine - thrombomoduline
L'échantillon de plasma testé est divisé en deux aliquotes, l'un étant additionné de
PIC (Calbiochem - Réf. 217359), l'autre de tampon hépès.
Les deux aliquotes sont ensuite traités de manière identique selon le principe suivant :
Activation du TAFI 150 μl de plasma dilué au 1/20 en tampon hépès (ou TAFI purifié à 13 μg/ml en tampon hépès.
10 μl PIC ou H20
5 minutes à température ambiante
150 μl tampon activateur de la coagulation 10 minutes à température ambiante
100 μl PPACK + 100 μl MxPAFFR (substrat) (5 mM)
Test d'activité du TAFI 30 minutes à température ambiante 100 μl HCI 1M + 100 μl NaOH 1M
Révélation
Dilution au 1/3 en tampon hépès Lecture de la DO à 382 nm 25 μl Carboxypeptidase A
Lecture de la DO à 382 nm sur 1 minute
Variantes possibles du premier mode opératoire: - on peut effectuer le dosage à une température de 37° C
- le substrat peut être incorporé dès le départ, en même temps que le tampon activateur - la lecture peut être faite par HPLC
Concentrations finales préférées des différents produits :
- PPACK : H-D-Phe-Pro-Arg-chloromethyl etone PM = 451 30 μM (Bachem - Réf. N. 1065).
- Péfabloc : il peut être utilisé à la place du PPACK : 0.1 mM (Pentapharm - Réf. 399.01).
- substrat (MxPAFFR) : 1 mM
- Carboxypeptidase A : origine pancréas bovin (Sigma - Réf. C 0386). Flacon de 5.1 ml à 5000 unités, 21 mg prot/ml, 47 unités/mg protéine
La CPA a été filtrée avec préfiltre, filtre 5 μ et filtre 0.45 μm, pour cela on a ajouté ml H20.
- PIC : utilisé à 7 μM
1 mg de PCI peut inhiber environ 8 mg de TAFI (50 U/mg) à 50 % selon indications du fournisseur (Calbiochem).
La concentration de 30 μM de PPACK correspondrait à une concentration initiale de 150 μM. La concentration finale de 1 mM de substrat correspondrait à une concentration initiale de 5 mM. La concentration finale de 7 μM de CPI correspondrait à une concentration initiale de 0,38 mM.
Les inventeurs ont observé que les concentrations indiquées ci-dessus peuvent être modifiées pour utiliser une concentration finale en PPACK diminuée jusqu'à 4μM et une concentration finale en substrat diminuée. Tampon activateur :
• La voie d'activation préférée de la coagulation dans le cadre de la présente invention est la voie d'activation par le complexe thrombine/thrombomoduline. Dans ce cas, le tampon activateur utilisé comprend les constituants suivants :
37 μl thrombomoduline de 0 à 80 nM et preférentiellement à 10 nM (Rabbit lung thrombomodulin - American Diagnostica - Réf. 237).
6 μl thrombine de 0,2 à 10 NIH/ml et preférentiellement à 0,8 NIH/ml (Diagnostica Stago - Produit de recherche).
750 μl chlorure de calcium de 0 à 80 nm et preférentiellement à 40 nM 705 μl tampon hépès 9.4 mM pH = 7.6
Les concentrations sont données pour un volume final de 1498 μl de tampon activateur.
N.B. : Le tampon hépès contient : Hépès 20 mM, KCI 4 mM et BSA 1% d'autres essais ont été réalisés avec Hépès 20 mM et NaC1 150 mM.
• Comme cela l'a été indiqué dans la description, d'autres voies d'activation sont possibles dont notamment la voie d'activation par le facteur Xla.
Dans ce cas un exemple de tampon activateur contient les constituants suivants :
5 μl thrombomoduline à 30 U/ml 30 μl Facteur Xla pur (Calbiochem - Réf. 233483).
88 μl tampon hépès pH = 7.4 (Hépès 20 mM et NaC1 150 mM).
Les concentrations sont données à titre d'exemple et peuvent être réajustées par l'homme du métier.
b) 2ème mode opératoire: méthode génération de thrombine Une autre voie d'activation de la coagulation fait intervenir la thrombine et requiert la mise en œuvre d'un activateur de la phase contact.
Génération de thrombine
100μl échantillon +10 μl CPI
100μl tampon activateur composé de
1 ) Activation du TAFI - 30 μl thrombomoduline à 30U/ml,
- 165 μl d'activateur de la phase contact,
- - 800 μl de CaCI2 à 20 mM.
Incubation 10 min. TA
100μl PPACK
100μl substrat
incubation 30 min. TA
2) test d'activité TAFIa
100μl HCI 1N 100μl NaOH 1N
dilution de 250μl du milieu réactionnel par
500μl de tampon + 50μl H2S04 lecture DOi
3) révélation ou
250μl tampon+250μl CPa incubation 5 minutes TA
50μl H2S04 lecture D02 405nm
Exemple n° 3 :
Etablissement d'une gamme d'étalonnage en méthode thrombine/thrombomoduline.
La figure 3 ci-après représente une courbe d'étalonnage établie à partir d'un plasma déficient en TAFI surchargé avec du TAFI purifié pour obtenir une gamme de concentration en TAFI allant de 0 à 26 μg/ml.
Le composé de formule I utilisé est le MxPAAFR à une concentration de 5 mM. Les Δ DO mesurés selon la méthode de l'invention sont reportés dans le tableau III suivant : TABLEAU III :
Figure imgf000071_0001
Comme cela apparaît sur la figure 3, la courbe d'étalonnage est linéaire pour les gammes de concentrations étudiée. Celle-ci couvre largement la zone de normalité, le TAFI étant présent dans l'organisme à des concentrations allant de 5 à 15 μg/ml.
La méthode de l'invention permet donc de déceller aussi bien des déficits en TAFI que des taux anormalement élevés.
Exemple n" 4 :
Résultats obtenus sur différents types de plasmas.
La méthode de l'invention a été appliquée sur différents types de plasmas selon le protocole décrit dans l'exemple n° 2.
Plasmas frais, plasmas congelés :
On peut effectuer le dosage sur plasma frais ou plasmas congelés mais on observe une diminution de DO entre les deux. Celle-ci résulte d'une légère dégradation du TAFI lors de la décongélation (la protéine se dégrade).
Plasmas frais Plasmas congelés 9.4 μg/ml 6.0 μg/ml 11.2 μg/ml 6.5 μg/ml 10.7 μg/ml 5.6 μg/ml
Plasma congelé, plasma lyophilisé : Sur un plasma lyophilisé, le dosage de TAFI est possible et similaire à un plasma congelé.
Plasma congelé Plasma lyophilisé
Δ DO : 0.302 0.354
Plasma d'origine diverse congelés
Thrombolytique 2.9 μg/ml
CIVD 2.8 μg/ml
Cirhhose 1.4 μg/ml Maternité 7.1 μg/ml Hyperfibrinogénémie 4.6 μg/ml
HNF 6.1 μg/ml (héparines non fractionnées)
AVK 5.8 - 8.2 - - 6.5 - - 7.1 μg/ml (anti-vitamine K).
Exemple n° 5 :
Dosaqe réalisés avec différents substrats de l'invention.
La méthode de l'invention a été appliquée sur une solution contenant du TAFI purifié, avec différents composés décrits dans l'Exemple n° 1.
Le test est réalisé sur une solution à 6,5 μg/ml de TAFI purifié dans du tampon hépès. Les résultats sont reportés sur le tableau IV ci-après. TABLEAU IV :
Figure imgf000073_0001
EXEMPLE N° 6 :
Spécificité du TAFIa pour les composés de formule (\) de l'invention :
L'exemple ci-après vise à démontrer la nécessité d'utiliser la méthode et les composés de formule (I) de l'invention pour doser spécifiquement l'activité des CPN ou U, en particulier le TAFI, par rapport à d'autres carboxypeptidases basiques.
1. Le dosage est dans ce cas réalisé avec un substrat de la famille de composés décrites par Mock dans (14). Ce substrat est constitué d'un seul acide aminé porteur du radical chromophore anizylazoformyl (portion CH3OC6H4-N = N-CO- ). L'acide aminé choisi est l'arginine, un acide aminé basique normalement hydrolyse par les carboxypeptidases B (1 ).
Ce substrat est dénommé ci-après AAFR (AnizylAzoFormyArginine) ou MxAFR (4-MethoxyphenylAzoformylarginine).
Ce substrat (0,25 mM) est mis en présence soit d'un échantillon de TAFI plasmatique, soit d'une solution de carboxypeptidase B pancréatique porcine (Sigma - Réf. C9584) à 5,2 mol/l. La diminution de coloration de chacun des deux échantillons est suivie au spectrophotomètre. Chacun des échantillons est traité selon le protocole suivant :
a) échantillon de départ :
•TAFI plasmatique (présent dans un pool normal de plasmas - dilué au
1/20) ou • Carboxypeptidase B pancréatique porcine 5,2 mol/l (dans tampon hépès)
b) activation avec complexe thrombine-thrombomoduline-CaCI2 (voir exemple 2) pour l'échantillon de TAFI plasmatique.
c) addition de AAFR à 5 mM.
d) lecture DO à 382 nm.
Résultats :
Figure imgf000074_0001
Conclusion
Le TAFI activé n'hydrolyse pas le AAFR contrairement à la CPB pancréatique.
2. La méthode de l'invention est ensuite appliquée sur une solution de TAFI purifiée, soit avec un substrat de formule (I) (MxPAFFK), soit avec le MxAFR pour vérifier que le TAFIa hydrolyse néanmoins un composé de formule (I). L'activation de la coagulation est déclenchée par le complexe thrombine- thrombomoduline-CaCI2 (voir protocole exemple 2). La diminution de coloration de chacun des deux échantillons est suivie au spectrophotomètre. a) échantillons de départ : solution de TAFI purifié à18 μg/ml (dilué dans tampon hépès).
b) activation de la coagulation.
c) addition de MxAFR 27 mM ou MxPAFFK (témoin) concentration du MxAFFK.
d) addition de CPA dans l'échantillon contenant le MxPAFFK.
e) lecture DO à 382 nm.
Résultats :
Figure imgf000075_0001
Conclusion :
Le TAFI activé n'hydrolyse pas le MxAFR alors qu'il est actif sur le MxPAFFK.
EXEMPLE N° 7 : METHODOLOGIE GENERATION DE THROMBINE
Une gamme est réalisée comme décrit dans l'exemple 2 le mode opératoire b) par dilution d'un plasma pool, (figure 4)
Figure imgf000076_0001
Cette méthodologie permet de discriminer les plasmas en fonction de leur capacité à générer la thrombine. Elle est un meilleur reflet de l'état d'hypercoagulabilité du patient.
BIBLIOGRAPHIE :
1. BOUMA. B.N. et al : "Thrombin-Activatable Fibrinolysis Inhibitor (TAFI, Plasma Procarboxypeptidase B, Procarboxypeptidase R, Procarboxypeptidase U)". Thromb. Research, 101 :329-354, 2001.
2. BAJZAR L. : "Purification and Characterization of TAFI, a Thrombin-activable Fibrinolysis Inhibitor". J. of Biol. Chem., 270, 24:14477-14484, 1995.
3. JUHAN-VAGUE I., ALESSI M.-C. : "TAFI : lien moléculaire entre les processus de coagulation et de fibrinolyse". Sang Thrombose Veineuse, 5, 10:314-6, 1998.
4. SCHATTEMAN K. et al. : "Carboxypeptidase U at the interface between coagulation and fibrinolysis". Clin. Appl. Thrombosis/Hemostasis, 7(2):93- 101, 2001.
5. WOLF M. et al. : "The kinetics of carboxypeptidase B activity". J. of Biol. Chem., 237, n° 10, Octobre 1962.
6. SUZUKI S. et al. : "Spectrophotometric détermination of glycine with 2,4,6- Trichloro-s-Triazine". Analytical Chemistry, Vol. 42, N° 1, January 1970.
7. LORENTZ K. et al. : "Détermination of carboxypeptidase B in duodenal contents". Clinica Chimica Acta, 37:515-517, 1972. 8. PLUMMER Th. H. et al. : "An improved spectrophotometric assay for human plasma carboxypeptidase N". Analytical Biochemistry, 108:348-353, 1980.
9. FISCHER G.H. et al. : "Synthetic inhibitors of carboxypeptidase N". Adv. Expérimental Med. Biol., 198, Part A, 405-410, 1986.
10. SARUTA H. et al. : "Colorimetric détermination of carboxypeptidase A activity in sérum". Clin. Chem. 32:5, 748-751 , 1986.
11. NAM-JOO HONG et al. : "Development of substrate for carboxypeptidase B by employing Thiaarginine peptides". Bull Korean Chem. Soc, Vol. 19, N° 2, 189-93, 1998.
12. MOCK W. L. et al. : "Arazoformyl Dipeptide Substrates for Thermolysin. Confirmation of a Reverse Protonation Catalytic Mechanism". Biochemistry,
35: 7369-7377, 1996. 13. MOCK W. L. et al. : "Arazoformyl Peptide Surrogates as Spectrophotometric Kinetic Assay Substrates for Carboxypeptidase A". Analytical Biochemistry, 239:218-222, 1996.
14. MOCK W. L. et al. : "Catalytic activity of carboxypeptidase B and of carboxypeptidase Y with anisylazoformyl substrates". Bioorganic & Médicinal
Chemistry Letters, 9:187-192, 1999.
15. HATTON M.W. : "Studies on the coagulant enzyme from Agkistrodon rhodostoma venom. Isolation and some properties of the enzyme". Biochem. J., 131 (4):799-807, 1973.
16. STOCKER K. et al. : "The coagulant enzyme from Bothrops atrox venom (batroxobin)". Methods Enzymol.45:214-223, 1976.
17. DENSON K.W.E. : "Clot-inducing substances prevent in such venoms with particular référence to Echis carinatus venom". Thromb. Res., 8:351-360, 1976.
18. ROSING J. et al. : "Structural and functional properties of snake venom prothrombin activators". Toxicon, 30(12): 1515-1527, 1992.

Claims

REVENDICATIONS
1. Composé de formule (I) suivante :
Figure imgf000079_0001
dans laquelle :
Figure imgf000079_0002
- R1 , R2 = H, -CH3, -CH(CH3)2, -OCH3l -CI, -CF3, -OCF3, -SCH3
- R3 = un radical d'acide aminé hydrolysable par une carboxypeptidase A. - R4 = un radical d'acide aminé basique.
2. Composé selon la revendication 1 de formule (I) suivante
Figure imgf000079_0003
dans laquelle :
Figure imgf000079_0004
Figure imgf000080_0001
- R1, R2 = H, -CH3) -CH(CH3)2, -OCH3> -Cl, -CF3, -OCF3> -SCH3
- R3 = un radical d'acide aminé hydrophobe. - R4 = un radical arginine ou lysine.
3. Composé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que R1=H et R2= — S-CH3.
4. Composé selon la revendication 1 ou la revendication 3, caractérisé en ce que R3 est choisi parmi les radicaux d'acides aminés suivants :
- la tyrosine,
- la phenylalanine,
- l'alanine, - la valine,
- la leucine,
- l'isoleucine,
- la phénylglycine.
5. Composé selon la revendication 1 ou la revendication 3, caractérisé en ce que R3 représente la phenylalanine.
6. Composé selon la revendication 1 ou la revendication 3, caractérisé en ce que R3 représente la phenylalanine ou la tyrosine et R4 l'arginine ou la lysine.
7. Composé selon la revendication 1 ou la revendication 3, caractérisé en ce que R3 représente la tyrosine.
8. Composé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que Ri est choisi parmi : -H et - CH3, et, R2 est choisi parmi CH3, 0-CH3 et -S-CH3.
9. Composé selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que A est
Figure imgf000081_0001
10. Composé selon la revendication 1 de formule (I), dans laquelle
Figure imgf000081_0002
ledit composé étant choisi au sein du groupe constitué par les composés suivants dans lesquels :
Figure imgf000081_0003
NH
R1=-H R2 =— 0~CH3 3≈_CH2→ R4=- (CH2)3-NH-C =J V H2 R^-H R2 =-0-CH3 R3≈_CH2- R^≈- (CH2)4-NH2
Figure imgf000082_0001
Figure imgf000082_0002
* les chiffres entre parenthèses déterminant la position des groupements methyl 20 sur le radical phényl.
11. Composé selon la revendication 1 caractérisé en ce qu'il s'agit du 4- MTPAFYR (4-methylthiophénylazoformyltyrosine arginine).
25
12. Méthode de dosage de l'activité d'une carboxypeptidase N ou une carboxypeptidase U dans un échantillon biologique, dans laquelle :
- on met en contact ledit échantillon avec un composé de formule (I) selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 , et une carboxypeptidase A, dans des on conditions permettant l'hydrolyse de l'échantillon et, - on mesure la diminution de coloration de l'échantillon contenant le substrat de formule (I) et la carboxypeptidase A, résultant de la double hydrolyse du substrat de formule (I) par la CPN ou la CPU de l'échantillon et par la CPA.
13. Méthode selon la revendication 12, caractérisée en ce que R1 = H et
R2=— S-CH3.
14. Méthode selon la revendication 12 ou 13, caractérisée en ce que R4 est un radical arginine ou lysine.
15. Méthode selon l'une des revendications 12 ou 13, caractérisée en ce que le substrat est un composé de formule (I) dans lequel R3 est choisi parmi les radicaux d'acides aminés suivants :
- la tyrosine, - la phenylalanine,
- l'alanine,
- la valine,
- la leucine,
- l'isoleucine, - la phénylglycine.
16. Méthode selon l'une des revendications 12 à 15, caractérisée en ce que R3 est la tyrosine.
17. Méthode selon la revendication 12 à 15, caractérisée en ce que le substrat est un composé de formule (I) dans lequel R3 représente la phenylalanine.
18. Méthode selon les revendications 12 à 15, caractérisée en ce que le substrat est un composé de formule (I) dans lequel R3 représente la phenylalanine et R4 l'arginine ou la lysine.
19. Méthode selon l'une quelconque des revendications 21 à 18, caractérisée en ce que le substrat est un composé de formule (I) dans lequel Ri est choisi parmi -H et -CH3, et, R2 est choisi parmi CH3, 0-CH3 et -S-CH3.
20. Méthode selon la revendication 12, caractérisée en ce que le substrat est un composé de formule (I) dans lequel :
Figure imgf000084_0001
dans lequel - R1 , R2 = H, -CH3, -CH(CH3)2, -OCH3, -CI, -CF3, -OCF3, -SCH3
- R3 = un radical d'acide aminé hydrolysable par une carboxypeptidase A.
- R4 = un radical d'acide aminé basique.
21. Méthode selon la revendication 21, caractérisée en ce que le substrat est un composé de formule (I) dans laquelle :
Figure imgf000084_0002
ledit composé étant choisi au sein du groupe constitué par les composés suivants, dans lesquels :
CH3 (2r R2=-CH3 (3r
Figure imgf000084_0003
Figure imgf000085_0001
Ri≈-CHs
Figure imgf000085_0002
Figure imgf000085_0003
Figure imgf000085_0004
5
* les chiffres entre parenthèses déterminant la position des groupements methyl sur le radical phényl.
22. Méthode selon l'une quelconque des revendications 12, 13, 15, 20 ou 21, dans laquelle le composé de formule (I) est le 4-MTPAFYR (4- méthylthiophénylazoformyltyrosinearginine).
23. Méthode selon l'une quelconque des revendications 12 à 22, caractérisée en ce que la densité optique du mélange est mesurée sans addition de CPA, puis après addition de CPA.
24. Méthode selon l'une quelconque des revendications 12 à 23, caractérisée en ce que la diminution de coloration mesurée est comparée avec des valeurs portées sur une courbe d'étalonnage.
25. Méthode selon l'une quelconque des revendications 12 à 24, caractérisée en ce que l'échantillon est un échantillon sanguin.
26. Méthode selon la revendication 25, caractérisée en ce que l'échantillon est du plasma.
27. Méthode selon l'une quelconque des revendications 12 à 26, caractérisée en ce que la CPA est de la CPA pancréatique.
28. Méthode selon l'une quelconque des revendications 12 à 27, caractérisée en ce que l'échantillon à tester est mis en présence d'un tampon activateur le temps nécessaire pour obtenir l'activation de la carboxypeptidase U dont on veut mesurer l'activité, puis en présence d'un inhibiteur des serine protéases.
29. Méthode selon la revendication 28, caractérisée en ce que le substrat de formule (I) est ajouté en même temps que le tampon activateur, ou simultanément ou immédiatement après l'inhibiteur des serine protéases.
30. Méthode selon la revendication 28, caractérisée en ce que l'activation est réalisée par la voie du complexe thrombine/thrombomoduline.
31. Méthode pour doser l'activité de la CPN ou la CPU constitutionnelle d'un échantillon et celle de la CPN ou la CPU activable du même échantillon, caractérisée en ce qu'on compare l'activité d'hydrolyse de l'échantillon sur un substrat de formule (I) après mise en présence de l'échantillon avec un tampon activateur, le cas échéant le temps nécessaire pour obtenir l'activation de la carboxypeptidase U dont on veut mesurer l'activité, puis en présence d'un inhibiteur des serine protéases, l'activité d'hydrolyse observée étant comparée avec l'activité d'hydrolyse de l'échantillon sur un substrat de formule (I) en l'absence de tampon activateur selon la revendication 21.
32. Méthode selon l'une quelconque des revendications 21 à 28, caractérisée en ce que la carboxypeptidase est une CPU.
33. Méthode selon la revendication 32, caractérisée en ce que la CPU est le TAFI.
34. Méthode selon l'une quelconque des revendications 28 à 33, caractérisée en ce que l'échantillon est traité en présence et en absence d'un inhibiteur spécifique du TAFI.
35. Méthode selon l'une quelconque des revendications 28 à 34, caractérisée en ce que l'inhibiteur spécifique du TAFI est le CPI.
36. Méthode de dosage du TAFI activé dans un échantillon sanguin, comprenant les étapes suivantes :
a) mise en présence d'un aliquote n° 1 de l'échantillon avec un inhibiteur spécifique du TAFI, et traitement de celui-ci selon la méthode de la revendication 28, b) traitement d'un aliquote n° 2 de l'échantillon selon la méthode de la revendication 28, en l'absence d'inhibiteur spécifique du TAFI, c) mesure du Δ DO entre l'aliquote n° 1 et l'aliquote n° 2, représentatif de l'activité du TAFI activé dans l'échantillon.
37. Méthode selon la revendication 36 pour différencier l'activité du TAFI constitutionnel et celle du TAFI activable du même échantillon, caractérisée en ce que l'on mesure l'activité d'hydrolyse d'un troisième aliquote de l'échantillon sur un substrat de formule (I) en l'absence de tampon activateur.
38. Utilisation d'un composé de formule (I) selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 pour doser l'activité enzymatique d'une carboxypeptidase N ou U dans un échantillon.
39. Utilisation selon la revendication 38 caractérisée en ce que la carboxypeptidase est le TAFI.
40. Kit pour doser l'activité d'une CPN ou une CPU dans un échantillon comprenant un substrat chromogène constitué par un composé selon l'une quelconque des revendications 1 à 11.
41. Kit pour doser l'activité du TAFI dans un échantillon biologique, comprenant
- un tampon activateur du TAFI, - de la carboxypeptidase A,
- un substrat de formule (I), selon l'une quelconque des revendications 1 à
11 ,
- un inhibiteur du TAFI,
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
K A SCHATTEMAN ET AL.: "Assay of procarboxypeptidase U, a novel determinant of fibrinolytic cascade, in human plasma", CLINICAL CHEMISTRY., vol. 45, no. 6, June 1999 (1999-06-01), AMERICAN ASSOCIATION FOR CLINICAL CHEMISTRY. WINSTON., US, pages 807 - 813, XP002196536, ISSN: 0009-9147 *
W L MOCK & D J STANFORD: "Arazoformyl dipeptide substrates for thermolysin. Confirmation of a reverse protonation catalytic mechanism", BIOCHEMISTRY., vol. 35, no. 23, 1996, AMERICAN CHEMICAL SOCIETY. EASTON, PA., US, pages 7369 - 7377, XP002196535, ISSN: 0006-2960 *
W L MOCK ET AL.: "Arazoformyl peptide surrogates as spectrophotometric kinetic assay substrates for carboxypeptidase A", ANALYTICAL BIOCHEMISTRY., vol. 239, 1996, ACADEMIC PRESS INC. NEW YORK., US, pages 218 - 222, XP002196534, ISSN: 0003-2697 *
W L MOCK ET AL.: "Catalytic activity of carboxypeptidase B and of carboxypeptidase Y with anisylazoformyl substrates", BIOORGANIC & MEDICINAL CHEMISTRY LETTERS, vol. 9, 1999, OXFORD, GB, pages 187 - 192, XP004152597, ISSN: 0960-894X *

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