WO1997032975A1 - Processus de deacylation de lipopeptides cycliques - Google Patents

Processus de deacylation de lipopeptides cycliques Download PDF

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WO1997032975A1
WO1997032975A1 PCT/JP1997/000692 JP9700692W WO9732975A1 WO 1997032975 A1 WO1997032975 A1 WO 1997032975A1 JP 9700692 W JP9700692 W JP 9700692W WO 9732975 A1 WO9732975 A1 WO 9732975A1
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WO
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acylase
streptomyces
substance
group
salt
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PCT/JP1997/000692
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English (en)
French (fr)
Inventor
Satoshi Ueda
Miho Tanaka
Masami Ezaki
Kazutoshi Sakamoto
Seiji Hashimoto
Nobutaka Oohata
Masaru Tsuboi
Michio Yamashita
Original Assignee
Fujisawa Pharmaceutical Co., Ltd.
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Publication date
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K7/00—Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/50—Cyclic peptides containing at least one abnormal peptide link
    • C07K7/54—Cyclic peptides containing at least one abnormal peptide link with at least one abnormal peptide link in the ring
    • C07K7/56—Cyclic peptides containing at least one abnormal peptide link with at least one abnormal peptide link in the ring the cyclisation not occurring through 2,4-diamino-butanoic acid
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/78—Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
    • C12N9/80—Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5) acting on amide bonds in linear amides (3.5.1)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205—Bacterial isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/465—Streptomyces

Definitions

  • the present invention relates to enzyme technology.
  • the present invention relates to a novel acylase for desacylating an acyl side chain of a cyclic lipopeptide substance, and a desacylation method using the same. More specifically, the present invention relates to a FR901379 substance (described in JP-A-3-184921) and an analog of the FR901379 substance produced by the microorganism Coleophoma sp. Strain F-11899 (FERM BP-2635). The present invention relates to a novel acylase for deacylation of an acyl side chain, and a deacylation method using the same.
  • Background art is described in JP-A-3-184921
  • the inventors of the present invention have sought a novel acylase that deacylates the acyl side chain of cyclic lipopeptide substances represented by FR901379 substances and analogs of FR901379 substances such as Echinocand in B and Aculeaci n A. I did intensive research. As a result, they newly found an acylase produced by the microorganism Streptomyces anullatus and succeeded in effectively performing the desired deacylation.
  • novel cyclic lipopeptide acylase-producing bacterium is, for example, St reptomyces anulatus No. 4811, St reptomyces anulatus No. 8703, or St reptomyces sp.
  • St reptomyces anulatus No. 4811 St reptomyces anulatus No. 4811
  • St reptomyces anulatus No. 8703 St reptomyces sp.
  • strain named Streptotnyces anulatus No. 4811 a new cyclic lipopeptide acylase-producing bacterium (hereinafter abbreviated as No. 4811), was newly isolated from a soil sample collected in Fukushima Prefecture. The bacteriological properties of strain No. 4811 are shown below.
  • strain No. 4811 is yeast extract, malt extract agar, oatmeal agar, inorganic salt, starch agar, glycerin 'asparagine agar, peptone ⁇ yeast extract ⁇ U-cultured on iron agar and tyrosine agar at 30 ° C for U days
  • the characteristics of the growth state observed by optical and scanning electron microscopy were summarized.
  • the color name used was Methuen Handbook of Color, Methuen, London. 1978.
  • G Growth A : Aerial mycelium
  • R Color of growth back surface
  • S Soluble pigment
  • the color of the aerial mycelium is yellowish to greenish ash, the color of the growth surface is yellowish to brown, the soluble pigment is pale brown, and the intracellular pigment and soluble pigment are not PH-sensitive. No melanoid pigment was produced.
  • the St. reptomyces anulatus No.4811 strain was submitted to the Ministry of International Trade and Industry, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Institute of Biotechnology and Industrial Technology (1-1-3, Tsukuba, Ibaraki, 305-305) as FERM P-15377 on December 27, 1995. Deposited and transferred to Budapest Treaty on February 3, 1997 as FERM BP-5808.
  • a new cyclic lipopeptide acylase-producing bacterium, Streptomyces anulatus strain No. 8703 (hereinafter abbreviated as No. 8703) was newly isolated from a soil sample collected in Fukushima Prefecture. The bacteriological properties of strain No. 8703 are shown below. Characteristics on various media
  • Table 3 shows that the No. 8703 strain was obtained from yeast extract, Germ-ekisse agar, oatmeal agar, inorganic salt 'starch agar, glycerin' asparagine agar, peptone.Yeast extract 'on iron agar and tyrosine agar at 30 ° C. The characteristics of the growth state after culturing for one day were observed with an optical and scanning electron microscope. The color name used was Methuen Handbook of Color, Methuen. London, 1978.
  • G Growth A: Aerial mycelium K: Color of growth back surface S: Soluble pigment
  • the color of the aerial mycelium is yellowish-green to green-ash, the color of the growth surface is yellowish-brown to brown, the soluble pigment is pale brown, and the intracellular pigment and the soluble pigment are not pH-sensitive.
  • Production of melanoid pigments was observed in tryptone 'yeast extract broth, peptone. Yeast extract, iron agar and tyrosine agar. Physiological features
  • Table 4 summarizes the physiological characteristics of the No. 8703 strain.c
  • This strain did not have access to inositol, sucrose and furinose. Milk could be peptone.
  • the growth temperature range was 4.0-35 ° C.
  • the base hypha of No.8703 strain develops well and branches irregularly but does not break.
  • the aerial hyphae elongating from the underlying hyphae are simply branched and form long spore chains.
  • the shape of the aerial hyphae is straight and curved, and it is Pridham et al. (Appl. Microbiol. 6:54, 1958). Etc. belong to the RF type.
  • One spore chain consists of more than 20 spores. The spores were smooth and cylindrical in shape. The spore size was 0.5-0.8X0.6-1.1 / ini. Sclerotia, spores and zoospores were not observed.
  • the amino acids on the fine lS wall were obtained from Becker, ⁇ ., ⁇ . ⁇ . Lechevalier, R.E.Gordon and H.A. Lechevalier: Rapid differentiation between Nocardia and
  • Table 5 shows that the No. 6907 strain was a yeast extract ⁇ Malt extract agar, oatmeal agar, inorganic salt, starch agar, glycerin, asparagine agar, peptone ⁇ yeast extract14 days at 30 ° C on iron agar and tyrosine agar medium
  • the characteristics of the state of growth during culturing, observed with an optical and scanning electron microscope, are summarized.
  • the color name used was Methuen Handbook of Color, Methuen, London, 1978.
  • the color of the aerial mycelium is yellowish to blueish gray, the color on the back of the growth is light brown to brown, and the intracellular pigment is not PH sensitive. Production of melanoid pigments was observed in tryptone. Yeast extract broth, papton ⁇ yeast extract, iron agar and tyrosine agar. Physiological features
  • Table 6 summarizes the physiological characteristics of strain No. 6907.
  • the basal hypha of strain No. 6907 develops well and branches irregularly but does not break.
  • the aerial hyphae elongating from the underlying hyphae are simply branched and form long spore chains.
  • the shape of aerial hyphae is straight, curved or incompletely looped and belongs to the RF or RA type of the class such as Pridham, TG, et al .: Appl. Microbiol. 6: 54, 1958. .
  • One spore chain consists of more than 20 spores. The spores were smooth and cylindrical in shape. Spore The size was 0.5-0.7X0.7-1.3 m. Sclerotia, sporangia and zoospores were not observed.
  • cyclic lipopeptide substance refers to a substance having a polypeptide ring and having an “acylamino group” as a side chain on the ring, and this substance has another side chain. May be.
  • FR901379 substance which is a typical example of the “cyclic lipopeptide substance”, is a known substance having antifungal activity produced by the microorganism Coleophoma sp. Strain F-11899 (FERM BP-2635) (Japanese Unexamined Patent Publication No. 3-184921). ) And a compound represented by the following structural formula [la].
  • FR901379 substance analog refers to a compound represented by the following general formula [I] or a salt thereof.
  • R 1 is an acyl group
  • R 2 is a hydroxy group or an acyloxy group
  • R 3 is hydrogen or a hydroxy group
  • R 4 is hydrogen or a hydroxy group
  • R 5 is hydrogen or a hydroxysulfonyloxy group
  • R 6 is hydrogen or halvamoyl group
  • the novel cyclic lipopeptide acylase of the present invention is an acylase derived from a bacterium belonging to Streptomyces II, and deacylates the “acylamino group” on the side chain of the cyclic lipopeptide substance to obtain an “amino group”. More specifically, the palmitoyl side chain of the FR901379 substance or a salt thereof or the FR901379 substance analog represented by the above general formula [I] containing the FR901379 substance or the acyl side chain of the salt thereof can be used.
  • Is an acylase that produces Suitable salts of the compounds [I] and [ ⁇ ] are conventional non-toxic mono- or di-salts, such as metal salts such as alkali metal salts (eg sodium salt, potassium salt, etc.), alkaline earth metals.
  • metal salts such as alkali metal salts (eg sodium salt, potassium salt, etc.), alkaline earth metals.
  • Salt eg, calcium salt, magnesium salt, etc.
  • ammonium salt salt with an organic base
  • organic base eg, trimethylamine salt, triethylamine salt, pyriamine
  • Organic acid addition salts for example, formate, sulfate, trifluoroacetate, maleate, etc.
  • gin salt picoline salt, dicyclohexylamine salt, N, N'-dibenzylethylenediamine salt, etc.
  • Tartrate methanesulfonate, benzenesulfonate, toluenesulfonate, etc.
  • Inorganic acid addition salts eg, hydrochloride, hydrobromide, hydroiodide, sulfate, phosphate, etc.
  • salts with amino acids eg, arginine, aspartic acid, glutamic acid, etc.
  • Suitable "lower alkyl” includes straight or branched alkyl having 1 to 6 carbon atoms, such as methyl, ethyl, propyl, isopropyl, butyl, isobutyl, tert-butyl, pentyl, isopentyl and hexyl. And preferably alkyl having 1 to 4 carbon atoms, and more preferably methyl.
  • Preferred "higher alkyls" include heptyl, octyl, 3,5-dimethyloctyl, 3,7-dimethyloctyl, nonyl, decyl, pendecyl, dodecyl, tridecyl, tetradecyl, pentadecyl, hexadecyl, heptadecyl, octadecyl, Examples thereof include linear or branched ones having 7 to 20 carbon atoms, such as nonadecyl and icosyl.
  • Suitable "lower alkoxy” includes straight-chains such as methoxy, ethoxy, propoxy, isopropoxy, butoxy, isobutoxy, tertiary butoxy, pentyloxy, tertiary pentyloxy, neopentyloxy, hexyloxy, isohexyloxy and the like. And branched ones.
  • Preferred "higher alkoxy” include heptyloxy, octyloxy, 3,5-dimethyldimethyloxy, 3,7-dimethyloctyloxy, nonyloxy, decyloxy, pendecyloxy, dodecyloxy, tridecyloxy, tetradecyloxy, hexadesiloxy, Heptadecyloxy, Oktadecillo Straight or branched ones such as xy, nonadecyloxy, and icosyloxy;
  • Suitable "aryl” includes phenyl optionally having lower alkyl (eg, phenyl, mesityl, tolyl, etc.), naphthyl, anthryl and the like.
  • acylamino or “acyl” portions of the “acyl group” include aliphatic acyl, aromatic acyl, heterocyclic acyl, aryl substituted aliphatic derived from carboxylic acid, carbonic acid, sorbamic acid, sulfonic acid and the like. Aliphatic acyl and heterocyclic-substituted aliphatic acyl.
  • acyl include one or more suitable substituents such as halogen (for example, fluoro, chloro, bromo, and alkoxide), hydroxy, higher alkoxy, and aryl. Is 1 to 3) aryl (eg, phenyl, naphthyl, anthryl, etc.); the lower alkoxy; the amino; the protected amino [preferably the acylamino, for example, the lower alkoxycarbonylamino (eg, Methoxycarbonylamino, ethoxycarbonylamino, propoxycarbonylamino, butoxycarbonylamino, t-butoxycarbonylamino, pentyloxycarbonylamino, hexyloxy-power ruponylamino, etc.) etc.]; di (lower) alkyl Amino (for example, di Methylamino, N-methylethylamino, getylamino, N-propyl, etc.
  • suitable substituents for
  • Al (lower) alkoxyimino such as (lower) alkoxymino (for example, benzyloxymino, phenethyloxymino, benzhydryloxymino, etc.); higher alkyl (for example, heptyl, octynole, 2-ethynole) Hexyl, noninole, desinole, 3, 7—di Chinoreokuchinore, ⁇
  • suitable substituents such as ndecinole, dodecinole, tridecinole, tetradecinole, pentadecinole, 3-methinole-10-ethyldedecyl, hexadecyl, heptadecyl, octadecyl, nonadecyl, icosyl, etc.
  • Heterocyclic thio (optionally, pyridylthio) which may have 1 or 2 or more (preferably 1 to 3) suitable substituents such as amino, the above protected amino, and the above-mentioned higher alkyl. ) 1 or 2 or more (preferably 1 to 3) suitable substituents such as an optionally substituted heterocyclic group (for example, chenyl, imidazolyl, pyrazolyl, furyl, tetrazolyl, thiazolyl, thiadiazolyl, etc.). ) Lower alkanols (eg formyl, aceti) , Propylene Oniru, butyryl, Lee Sobuchiriru, valeryl, to Kisanoiru, pivaloyl, etc.);
  • Higher alkanols for example, heptanyl, octanoyl, nonanoyl, decanoyl, ndecanoyl, lauroyl, tridecanoyl, myristoyl, pentadecanoyl, palmitoyl, 10,12-dimethyltetradecanol, heptadecanol, heptadecanol, heptadecanol, heptadecanol, heptadecanol, heptadecanol) Such) ;
  • Higher alkenol for example, 4-1 heptenoyl, 3-year old octenoyl, 3, 6 -decadienol, 3.7, 11-trimethyl 2, 6, 6, 10-dodeca trienol, 4, 10-heptadecadienol
  • Lower alkoxycarbonyl eg, methoxycarbonyl, ethoxycarbonyl, propoxycanoleboninole, butoxycarboninole, t-phthoxycarbonyl, pentynoleoxycarbonyl, hexyloxycarbonyl, etc.
  • Higher alkoxycarbonyl eg, heptyloxycarbonyl, octyloxycarbonyl, 2-ethylhexyloxycarbonyl, nonyloxycarbonyl, decyloxycarbonyl, 3,7-dimethyloctyloxycarbonyl, Pentadecyloxycarbonyl, dodecyloxycarbonyl, trite'siloxyca oleboninole, tetradecinoleoxycarbonyl, pentadecyloxycarbonyl, 3-methynole-1 10-ethynoledodecyloxycanolebonyl, hexadeshi Noroxycanolebonyl, heptadecyloxycarbonyl, octadecyloxycarbonyl, nonadecyloxycarbonyl, icosyloxycarbonyl, etc.);
  • Aryloxycarbonyl eg, phenoxycarbonyl, naphthyloxycarbonyl, etc.
  • Aryl dalioxyloyl eg, phenylidalioxyloyl, naphthyl glyoxyloyl, etc.
  • Al (lower) alkoxyl groups optionally having one or more suitable substituents Luponyl, such as phenyl (lower) alkoxycarbonyl optionally having nitro or lower alkoxy (eg, benzyloxycarbonyl) , Phenyleneoxycanoleboninole, p-ditropenoleoxycanolebonyl, p-methoxybenzyloxycarbonyl, etc.);
  • Lower alkylsulfonyl eg, methylsulfonyl, ethylsulfonyl, propylsulfonyl, isopropylsulfonyl, pentylsulfonyl, butylsnorhoninole, etc.
  • Arylsulfonyl optionally having 1 or more (preferably 1 to 3) suitable substituents such as the lower alkyl and the higher alkoxy described above (for example, phenylsnolephonyl, naphthyl) Sulfonyl, etc.);
  • Al (lower) alkylsulfonyl such as phenyl (lower) alkylsulfonyl (eg, benzylsulfonyl, phenethylsulfonyl, benzhydrylsulfonyl, etc.);
  • a lower alkyl for example, methyl, ethyl, propyl, butyl, t-butyl, pentyl, hexyl, etc.
  • a higher alkyl for example, methyl, ethyl, propyl, butyl, t-butyl, pentyl, hexyl, etc.
  • an appropriate substituent such as the lower alkoxy, the halogen, the aryl, Lower alkoxy optionally having 2 or more (preferably 1 to 10) (for example, methoxy, ethoxy, propoxy, butoxy, t-butoxy, pentyloxy, hexyloxy, etc.);
  • One or more substituents preferably Or 1 to 17 higher alkoxy (eg, heptyloxy, octyloxy, 2-ethylhexyloxy, nonyloxy, decyloxy, 3.7—dimethyloctyloxy, pendecyloxy, do
  • An aryl which may have 1 or 2 or more (preferably 1 to 3) suitable substituents such as the lower alkoxy or the higher alkoxy described above (for example, phenoxy, naphthyloxy, ant Arylo (optional) having one or more (preferably 1 to 5) or more suitable substituents such as lyloxy. If, Benzoiru, naphthoyl, Ann preparative like Lil force Ruponiru); and the like. Of the above-mentioned "acyl groups”, preferred are higher alkanols, and particularly preferred is a palmitoyl group. Preferred examples of the “acyl group” in the “acyloxy group” include those exemplified for the aforementioned “acyl group”.
  • Preferred "asyloxy groups” are lower alkanoyloxy (eg, formyloxy, acetyloxy, propionyloxy, butyryloxy, isobutyryloxy, valeryloxy, hexanoyloxy, vivaloyloxy, etc.) or Phosphonoxy and the like.
  • No. 4811 (FERM BP-5808), Streptomyces anulatus No. 8703 (FER BP-5810) or Streptomyces sp. No. 6907 (FERM BP) -5809) can be produced by culturing an acylase-producing strain of Streptomyces II in a medium.
  • the novel acylase is used in an aqueous medium containing a carbon source and a nitrogen source capable of assimilating the novel acylase, preferably under aerobic conditions such as shaking culture and submerged culture. It can be produced by culturing at
  • Preferred carbon sources for the medium include carbohydrates such as glucose, xylose, galactose, glycerin, starch, dextrin and the like.
  • Other carbon sources include maltose, rhamnose, raffinose, arabinose, mannose, salicin, sodium succinate and the like.
  • Preferred sources of nitrogen include yeast extract, peptone, gluten meal, cottonseed flour, soy flour, corn 'stip * liquor, dried yeast, wheat germ, feather flour, peanut flour, etc., and, for example, ammonium nitrate.
  • inorganic or organic nitrogen compounds such as ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium phosphate and the like, urea, amino acids and the like.
  • the carbon and nitrogen sources are preferably used in combination, but less pure substances can be used if they contain the appropriate amounts of growth factors and substantial amounts of mineral nutrients, and must always be used in pure form. No need.
  • an inorganic salt such as sodium carbonate or calcium carbonate, sodium phosphate or potassium phosphate, sodium chloride or potassium chloride, sodium or potassium iodide, magnesium salt, copper salt, cobalt salt or the like is added to the medium. Is also good. If the culture medium foams significantly, an antifoaming agent such as liquid paraffin, fatty oil, vegetable oil, mineral oil or silicone may be added as necessary.
  • the production tank As a condition for mass-producing this novel acylase, deep aerobic culture is preferable. For small-scale production, shaking culture or surface culture is performed in a flask or a bottle. Sa Furthermore, when growing in a large tank, it is preferable to inoculate the production tank with a pre-culture of microorganisms in order to avoid growth delay in the process of producing a novel acylase.
  • a relatively small amount of culture medium is inoculated with spores or hyphae of the microorganism, the inoculation medium is cultured to produce a precultured inoculum of the microorganism, and the cultured precultured inoculum is aseptically stored in a large tank It is desirable to transfer to.
  • the medium that produces this preculture inoculum may be substantially the same as or different from the medium used to produce the novel acylase.
  • Agitation and aeration of the culture mixture can be performed in various ways. Stirring should be carried out using a probe or a similar stirrer, rotating or shaking the fermenter, using various pumping devices, or passing sterile air through the culture medium. Can be. Aeration may be provided by passing sterile air through the yeast mixture.
  • the fermentation is usually carried out in a temperature range of about 20 ° C. to 32 ° C., preferably 25 to 30 ° C., preferably at a pH of 6 to 8, and is carried out for about 50 to 150 hours. It may be changed appropriately according to the scale.
  • the novel acylase thus produced can be recovered from the culture medium by conventional methods commonly used for recovering other known biologically active substances.
  • the new acylase produced is found in the culture mycelium and in the broth, so the new acylase is concentrated under reduced pressure, freeze-dried, and routinely used from the mycelium and the broth obtained by filtration or centrifugation of the culture broth. Extraction with solvents, pH adjustment, treatment with conventional resins such as anion-exchange resin or cation-exchange resin, non-ionic adsorption resin, etc., for example, common adsorbents such as activated carbon, caffeic acid, silica gel, cellulose, and alumina Can be separated and purified by conventional methods such as treatment, crystallization, and recrystallization.
  • Example 1 acylases produced by St reptomyces anulatus No. 4811 ⁇ , St reptomyces anul atus No. 8703 ⁇ , and St rep torayces sp. The present invention is not limited to them.
  • Example 1
  • a 100 ml Erlenmeyer flask into which 30 ml of a seed medium composed of 1% corn starch, 1% glucose, 0.5% peanut flour, 0.5% soybean meal, 0.5% dried yeast, and 0.2% calcium carbonate is dispensed is sterilized for 20 minutes with 120.
  • One or two loops of Streptomyces anulatus No. 4811 strain agar culture were inoculated and shake-cultured at 30 ° C. for 3 days to obtain seed culture.
  • the pH of the production medium consisting of 4% sucrose, 1% peanut flour, 1% dried yeast, 0.05% potassium dihydrogen phosphate, 0.12% dipotassium hydrogen phosphate, 0.025% magnesium sulfate heptahydrate was adjusted to 6.5, a 500 ml Erlenmeyer flask into which 100 ml of this production medium was dispensed was sterilized at 120 ° C for 20 minutes, and 2 ml of the above seed culture was inoculated into the flask and shake-cultured at 30 ° C for 3 days. An enzyme culture solution was used.
  • a 100 ml Erlenmeyer flask into which 30 ml of a seed medium composed of 1% corn starch, 1% glucose, 0.5% peanut flour, 0.5% soybean meal, 0.5% dried yeast, and 0.2% calcium carbonate was dispensed was used.
  • C. The mixture was sterilized with C for 20 minutes, inoculated with one or two platinum loops of the agar culture of Streptomyces anulatus No. 8703, and shake-cultured at 30 for 3 days to obtain a seed culture.
  • a production medium consisting of 4% sucrose, 1% peanut flour, 1% dried yeast, 0.05% potassium dihydrogen phosphate, 0.12% dipotassium hydrogen phosphate, 0.025% magnesium sulfate heptahydrate PH was adjusted to 6.5, and a 500-ml Erlenmeyer flask into which 100 ml of the production medium was dispensed was sterilized at 120 ° C for 20 minutes, and the seed culture was inoculated with 2 id, and incubated at 30 ° C for 3 days. Cultivation was performed to obtain an enzyme culture solution.
  • a 100-ml Erlenmeyer flask into which 30 ml of a seed medium consisting of 6% soluble starch, 4% defatted soy flour, and 0.5% calcium carbonate was dispensed was sterilized at 120 ° C for 20 minutes, and used for the agar culture of Streptomyces sp. Inoculate 1-2 loops of platinum and incubate at 30 ° C for 3 days with shaking. Seed culture was performed.
  • the pH of the production medium consisting of 4% sucrose, 1% peanut flour, 1% dried yeast, and 0.5% calcium carbonate was adjusted to 6.5, and a 500 ml Erlenmeyer flask into which 100 ml of this production medium was dispensed was placed at 120 ° C. After sterilization for 20 minutes, 2 ml of the above seed culture was inoculated into the culture, and shake-cultured at 30 ° C for 4 days to obtain an enzyme culture solution.
  • a Streptomyces anulatus No.4811 strain obtained from the Yeast Research Institute (2-17-85, Jusanhonmachi, Yodogawa-ku, Osaka-shi) belonging to the following genus Streptomyces by the same method as in Example 11-1. As a result, the same enzyme culture solution was obtained.
  • the deacylation of the present invention can be carried out as follows.
  • a suitable production medium is inoculated with a microorganism belonging to the genus Streptomyces and producing a novel acylase, and cultured with shaking at about 25 to 35 ° C for several days to obtain an enzyme culture solution.
  • This culture solution is added to a cyclic lipopeptide substance such as FR901379 substance as a substrate, and the pH is maintained at about 45 to 60 ° C and a pH of about 6.0 to 9, and the cyclic peptide nucleus such as FR179642 substance is subjected to high-performance liquid chromatography (HPLC) and separate.
  • HPLC high-performance liquid chromatography
  • Example 2-1 is provided to specifically explain the deacylation method of the present invention, but the present invention is not limited thereto.
  • Example 2-1 is provided to specifically explain the deacylation method of the present invention, but the present invention is not limited thereto.
  • Example 2-1 is provided to specifically explain the deacylation method of the present invention, but the present invention is not limited thereto.
  • Example 2-1 is provided to specifically explain the deacylation method of the present invention, but the present invention is not limited thereto.
  • FR was added to the culture 7001 of the Streptomyces anulatus No, 4811 strain obtained in Example 1-1.
  • Aqueous solution of 901379 substance (100 mgZml) WO ⁇ 1 (10 mg of FR901379 substance; 8.35 mol), methanol 1001, and buffer (0.5 M potassium dihydrogen phosphate monohydrogen sodium phosphate buffer; PH6.0) 100 1 was added and reacted at 30 ° C. for 30 minutes.
  • 1 ml of 4% drunk acid was added to terminate the reaction, 2 nil of methanol was added, and the mixture was filtered with a membrane filter (0.45; um) to remove high-molecular-weight proteins and the like.
  • the produced FR179642 substance was monitored at 210 nm to measure the acylase activity.
  • the HPLC consists of a tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A), a pump (Shimadzu LC-1 10AD) and an integrator (Shimadzu C-R6A), and the stationary phase is LiChrospher 100RP-18 (e). (250 mm 4 mrai.d., particle size 5; ura) and the FR 179642 substance was flowed at a flow rate of 1 m 1 / min with a mobile phase consisting of 3% acetonitrile and 0.5% ammonium dihydrogen phosphate. Eluted. The retention time of FR179642 substance was about 6.3 minutes. Based on this result, the calculated amount of FR179642 substance was 7308 (0.78 ⁇ ).
  • Example 1 100 ⁇ l of an aqueous solution (100 ⁇ g of FR901379 substance) of FR901379 substance (10 mg; 8.35 mol as FR901379 substance), 1001 of methanol, and a buffer solution (100 ⁇ l) of a culture solution 7001 of Streptomyces anulatus No. 8703 obtained in 1-2 0.5 M potassium dihydrogen phosphate-hydrogen phosphate sodium phosphate buffer ( ⁇ 6.0) 100 1 was added, and the mixture was reacted at 30 ° C. for 30 minutes.
  • the HPLC consists of a tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A), a pump (Shimadzu LC-1 10AD) and an integrator (Shimadzu C-1 R6A).
  • the stationary phase is LiChrospher 100RP-18 (e ) (250 mm X 4 recitation i.d., particle size 5 m), eluting FR179642 substance at a flow rate of 1 ml / min with a mobile phase consisting of 3% acetate nitrile and 0.5% ammonium dihydrogen phosphate I let it.
  • the retention time of FR179642 substance was about 6.3 minutes. Based on this result, the amount of FR179642 substance generated was calculated to be 830 g (0.89 ⁇ mol)
  • Example 13 An aqueous solution (100 mgZml) of FR901379 substance 1001 (10 mg as FR901379 substance; 8.35 raol), methanol 1001 and a buffer solution (0.5%) were added to the culture solution 7001 of Streptomyces sp. M dihydrogen phosphate dibasic phosphate-hydrogen phosphate buffer; PH 6.0) 100 1 was added and reacted at 30 ° C. for 30 minutes. After completion of the reaction, the reaction was terminated by adding 4% acetic acid, 2 ml of methanol was added, and high-molecular proteins were removed by filtration with a membrane filter (0.45 yum). Was monitored at 210 nm to measure the acylase activity.
  • the HPLC consists of a tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A), a pump (Shimadzu LC-1 10AD) and an integrator (Shimadzu C-1 R6A).
  • the stationary phase is LiChrospher 100RP—18 (e). ) (250 mm x 4 mm id, particle size 5 / m), FR179642 material was eluted with a mobile phase consisting of 3% acetate nitrile / 0.5% ammonium dihydrogen phosphate at a flow rate of 1 ml / min. .
  • the retention time of FR179642 substance was about 6.3 minutes.
  • Example 13 Aculeacin A dimethyl sulfoxide solution (100 mg Zml) 100 ⁇ l (100 mg as Aculeacin A) was added to culture solution 100 1 of Streptomyces sp. No. 6907 strain obtained in 13
  • HPLC is tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A) and pump (Shimadzu LC-1 10AD) and integrator
  • Example 13 A dimethyl sulfoxide solution of Echinocandin B (100 mg / ml) 100 1 (10 mg as Echinocandin B; 9.43 mol) and 1.2 MKC1 were added to 100 1 of the culture solution of Streptomyces sp. No. 6907 obtained in 13 A 500 mM potassium dihydrogen phosphate sodium hydrogen phosphate monobasic buffer (PH7.0) 5001 and water 3001 were added and reacted at 40 ° C for 15 minutes. Stop the reaction with 1 ml of 4% acetic acid, add 2 ml of methanol, filter with a membrane filter (0.45 in) to remove high molecular weight proteins, and remove Echinocandin B nuclear material generated by HPLC at 210 nm.
  • Echinocandin B 100 1 (10 mg as Echinocandin B; 9.43 mol) and 1.2 MKC1 were added to 100 1 of the culture solution of Streptomyces sp. No. 6907 obtained in 13 A 500 mM potassium
  • the acylase activity was monitored to measure.
  • the HPLC consists of a tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A), a pump (Shimadzu IX-10AD) and an integer (Shimadzu C-R6A), and the stationary phase is LiChrospher 100RP-18. (e) (4 mm X 250mm id ⁇ particle size 5 m (Merck)) and for the use of 4% ⁇ Se Toni preparative drill water Z1% phosphoric dihydrogen mobile phase thus 1 ml / min flow rate consisting of hydrogen Anmoniumu Eluted Echinocandin B nuclear material. The retention time of Echinocandin B nuclear material was about 8.7 minutes.
  • the calculated amount of Echinocandin B nuclear material was 90 ⁇ g (0.1 lliiraol).
  • the Km value as determined by the Lineweaver-Burk method was and Vmax was 7.85 UZmg-protein.
  • Test Example 11 1 Optimal pH nH anti-Jj ⁇ produced by Streptorayces anulatus No. 4811 strain FR179642 after completion of Jj ⁇ ;
  • Test Example 3-2 Methanol effect when reacted with acylase produced by Streptomyces anulatus No. 8703
  • FR901379 substance analogs such as FR901379 and Echinocandin B Aculeacin A.
  • Methanol activated in a concentration-dependent manner up to a content of 10% in the reaction solution, and inhibited when the content is more than 10%.
  • the amount of purified protein is low and it is not crystallized.
  • Example II A culture solution of Streptoniyces sp. No. 6907 strain obtained in 13 was extracted under stirring at a low temperature with 1.5 M KC1, and the extract obtained in No. 2 paper was subjected to UF membrane (Asahi Kasei; AIP-1010), and salt (replace with 20 mM Tris-HCl buffer (pH 9)) and pass to HP-20 column. I let it. The obtained pass solution was passed through a DEAE-Toyopearl column (C1-type) and eluted with a 20 mM Tris-HCl buffer (pH 9) containing 0.3 M NaCl.
  • the active fraction (NH 4) 2 S0 4 and then 0.5M considerable amount added dissolved was passed through a Phenyl- Toyopearl column were eluted with 50mM preparative squirrel monohydrochloride buffer containing 0.1M NaCl (pH8). The active fraction obtained is transferred to a DF membrane.
  • FR901469 is a known substance having antifungal activity (described in W092 No. 19648) produced by mold No. 11243 (FERM BP-3373), and has the following structural formula ⁇ ]:
  • novel acylase of the present invention does not show catalytic activity for the compound FR901469 or the salt thereof. Examples will be described below.
  • the HPLC consists of a tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A), a pump (Shimadzu LC-1 10AD) and an integrator (Shimadzu C-1 R6A), and the stationary phase is YMC AM303 (4 mm x 250 mmi.d. Transfer using 12.5% acetate nitrile water ZO.5% ammonium dihydrogen phosphate using a particle size of 5 ⁇ m)
  • the phase eluted the FR181131 material at a flow rate of 1 ralZ. Retention time for FR181131 substance was about 7.3 minutes. Based on this result, the amount of the FR 181131 substance produced was calculated to be 80 mg (68 imol).
  • the HPLC consists of a tunable UV detector (Shimadzu SPD-10A), a pump (Shimadzu LC-10AD) and an integrator (Shimadzu C-1 R6A), and the stationary phase is YMC AM303 (4 nmX 250 mmi.d. / um), the FR181131 material was eluted at a flow rate of 1 ml / min with a mobile phase consisting of 12.5% acetonitrile water / ⁇ .5% ammonium dihydrogen phosphate. The retention time of the FR181131 substance was about 7.3 minutes. Based on these results, the amount of FR 181131 produced was calculated to be 2 mg (l.7 ⁇ mol) or less (below the detection limit).

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Description

明 細 書
環状リポベプチド物質の脱ァシル化法
技術分野
本発明は、 酵素技術に関するものである。
具体的には、 本発明は環状リポぺプチド物質のァシル側鎖を脱ァシル化する新 規なアシラーゼ、 ならびに、 それを用いた脫ァシル化法に関するものである。 さらに具体的には、 本発明は、 微生物 Coleophoma sp. F— 11899株 （FERM BP— 2635 ) によって生産される、 FR901379物質 （特開平 3— 184921号公報に記載） 及 び FR901379物質の類似体のァシル側鎖を脱ァシル化する新規なァシラーゼ、 なら びにそれを用いた脱ァシル化法に関するものである。 背景技術
環状リポペプチド物質、 具体的には、 上記の FR901379物質及びその類似体のァ シル側鎖を効果的に脫ァシル化し得るアシラーゼが求められていた。 発明の開示
本発明の発明者らは、 FR901379物質及び Echi nocand i n B , Aculeaci n A等の FR901379物質類似体に代表される環状リポぺプチド物質のァシル側鎖を脱ァシ ル化する新規なアシラーゼを求めて鋭意研究を行った。 その結果、 微生物 St rept omyces anu l a tusが生産するアシラーゼを新たに見出し、 目的とする脱ァ シル化を効果的に行うことに成功した。
この新規環状リポぺプチドアシラーゼならびに、 これを用いた脱ァシル化法の 特徴を以下の説明で、 明らかにする。 まず、 本発明の環状リポぺプチドアシラーゼ生産菌にっき説明する。
新規環状リポぺプチドアシラーゼ生産菌は具体的には、 例えば St reptomyces属 に すな St reptomyces anulatus No. 4811株、 St reptomyces anulatus No. 8703 かあるいは S t reptomyces sp. 6907株である。 以下、 これらの菌株の特徴を示す。
新規環状リポペプチドアシラーゼ生産菌である Streptotnyces anulatus No. 4811株と名付けた菌株 （以下、 No.4811株と略称する） は、 福島県で採取された 土壌試料から新しく分離されたものである。 以下に No.4811株の菌学的性質を示 す。
種々の培地上での特徴
表 1 に、 No.4811株を酵母エキス ·麦芽エキス寒天、 オートミール寒天、 無機 塩 .でんぷん寒天、 グリセリン 'ァスパラギン寒天、 ペプトン♦酵母エキス ·鉄 寒天およびチロシン寒天培地上、 30°Cで U日間培養した時の発育状態を光学およ び走査型電子顕微鏡で観察した特徴をまとめた。 色名は Methuen Handbook of Colour, Methuen, London.1978を使用した。
表 1 N o 4 8 1 1株の各種培地における培養上の特徴
培 地 培養性状
酵母エキス ·麦芽エキス寒天 G 良好
( I S P - 2 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 B 2 )
R 茶色 （ 7 F 4 )
S 少量、 茶色
オート ミール寒天 G 良好普通
( I S P— 3 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 C 3 )
R 茶色 （ 7 F 4 )
S 微量、 茶色
無機塩 · でんぷん寒天 G 良好
( I S P— 4 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 C 3 )
R 黄味茶色 （ 5 E 4 )
S なし
グリセリ ン . ァスパラギン G 良好
寒天 （ I S P - 5 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 C 3 )
R 茶色 （ 6 E 4 )
S なし
ペプト ン '酵母エキス G 普通
鉄寒天 A 貧弱、 白色
( I S P - 6 ) R 明るい茶色 （ 6 D 5 )
S なし
チ口シン寒天 G 普通
( I S P - 7 ) A 蒈通、 黄味灰色 （ 2 B 2 )
R 茶色 （ 7 F 4 )
S なし
略号 ； G ：生育 A :気菌糸 R ：生育裏面の色 S ：可溶性色素
気菌糸の色は黄味灰から緑灰、 生育裏面の色は黄味茶から茶、 可溶性色素は薄 い茶色、 菌体内色素および可溶性色素は PH感受性ではない。 メラノィ ド色素の産 生は見られなかった。
生理学的特徴 表 2に N o. 4 8 1 1株の生理学的特徴をまとめた c
表 2 N o. 4 8 1 1株の生理学的特徴 条 件 性 質 生育温度範囲 4.0 - 3 5.0 °C
ゼラチン液化 +
ミルク凝固 土
ミルクぺプト ン化 +
澱粉分解 +
メラノィ ド色素産生
炭素源利用性
D -ダルコース +
L—ァラビノース +
Dーキシロース +
イ ノシ ト一ノレ
マンニ ト ーノレ +
D—フラク トース +
L一ラムノース 十
シュクロース
ラフイ ノース
+ ：陽性、 土 ：擬陽性、 一：陰性 No.4811株の基生菌糸はよく発達し、 不規則に分枝するが、 断裂しない。 基生 菌糸から伸長した気菌糸は単純分枝し、 長い胞子鎖を形成する。 気菌糸の形は、 直状、 曲状でプリ ドハムら (Pridham.T.C.et al.： Appl. Microbiol.6：54.1958) 等の分類の R Fタイプに属する。 1つの胞子連鎖は 20個以上の胞子からなる。 胞 子は表面が平滑で、 0.5〜0.7X0.7~1. l mの大きさの円筒型であった。 菌核、 胞子のう、 遊走子は観察されなかった。 細胞壁タイプ
細胞壁のァミノ酸はベッカーら (Becker, B. , M. P. Lecheval ier, R. E. Gordon and H. A. Lecheval ier :Rapid differentiation between Nocardia and Streptomyces by paper chromatography of whole- cell hydrolysates:Appl. Microbiol.12： 421-423, 1964)
山口 (Yamaguchi , T.： Comparison of the cell wall composition of morpho】 ogi cal ly di stinct actinomycetes： J. Bacteriol.89 :444 - 453, 1965) 等の方法に従い、 全菌体分解物の分析の結果、 LL一ジァミノピメリン酸の存在が 確認できた。 従って本菌株の細胞壁タイプは I型と考えられる。 以上の形態観察および化学分析の結果から No.4811株はプリ ドハムら（Pridham, T. G.et al :Appl. Microbiol. §:54, 1958)の分類に従えば、 Streptomyces 属に厲す ると考えられる。 そこで本菌株を文献、 シャーリングら （Shirling.E.B.and D. uot 11 ieb: Cooperative discription of type culture of Streptomyces.2. Spiecies descriptions from first study. Intern. J. Syst. Bacteriol.18：69- 189, 1968；
Shi rl ing, E. B. and D. Got tl ieb: Cooperative discription of type culture of St reptomyces.3. Addi tional spiecies descriptions from first and second studies. Intern. J. Syst. Bacteriol.18:279 - 392, 1968；
Shi rl ing, E. B. and D. Gottl ieb: Cooperative discription of type culture of St reptomyces.4. Spiecies descriptions from second, third and forth studies. Intern. J. Syst. Bacteriol.19 :391-512, 1969) 、 スカーマンら (Skerman, V. B. , V. McGowan and P. H. A. Sneath: Approved list of bacterial names. Amended Edition. American Society for Microbi ology, Washington, D. C. , 1989 および、 ムーアら、 （Moore, W. E.. E. P. Cato and L. V. H. Moore: Index of bacterial and Yeas t Nomencul tural Changes. American Society for Microbiology, Washington, D. C, .1992)
に 5己載された Streptomyces属の種と比較した。 その結果、 Streptomyces anulatus の記載上の性質と本株の性質はほとんど同一であった。 以上のことか ら No.4811株を Streptomyces anul a tusと同定し、 St reptomyces anulatus No.4811と命名した。
この St reptomyces anulatus No.4811株は通商産業省工業技術院生命工学工業 技術研究所、 （〒305 茨城県つくば市東 1— 1 — 3 ) に FERM P— 15377として平 成 7年 12月 27日に寄託され、 さらに FERM BP— 5808として平成 9年 2月 3日にブ ダぺス ト条約に基づく寄託へ移管されている。 新規環状リポペプチドアシラーゼ生産菌である Streptomyces anulatus No. 8703株と名付けた菌株 （以下、 No.8703株と略称する） は、 福島県で採取された 土壌試料から新しく分離されたものである。 以下に No.8703株の菌学的性質を示 す。 種々の培地上での特徴
表 3に、 No.8703株を酵母エキス ·羑芽ェキス寒天、 オート ミール寒天、 無機 塩 'でんぷん寒天、 グリセリン 'ァスパラギン寒天、 ペプトン .酵母エキス '鉄 寒天およびチロシン寒天培地上、 30°Cで 14日間培養した時の発育状態を光学およ び走査型電子顕微鏡で観察した特徴をまとめた。 色名は Methuen Handbook of Colour, Methuen. London, 1978を使用した。
表 3 N o . 8 7 0 3株の各種培地における培養上の特徴
培 地 培養性状
酵母エキス ·麦芽エキス寒天 G 良好
( I S P - 2 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 B 2 )
R 灰茶色 （ 5 F 4 )
S なし
オー ト ミ一ル寒天 G 普通
( I S P - 3 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 C 3 )
R 灰茶色 （ 4 C 4 )
S なし
無機塩 · でんぷん寒天 G 良好
( I S P - 4 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 C 3 )
R 喑灰色 （ 1 F 6 )
S なし
グリセリ ン · ァスパラギン G 良好
寒天 （ I S P - 5 ) A 豊富、 黄味灰色 （ 2 C 3 )
R ォリーブ茶色 （ 4 E 5 )
S なし
ペプト ン ·酵母エキス G 普通
鉄寒天 A 貧弱、 白色
( I S P— 6 ) R 黄味茶色 （ 5 D 5 )
S なし
チロシン寒天 G 普通
( I S P - 7 ) A 普通、 黄味灰色 （ 2 B 2 )
R 茶色 （ 7 F 4 )
S なし
略号 ； G ：生育 A ：気菌糸 K ：生育裏面の色 S ：可溶性色素
気菌糸の色は黄味灰から緑灰、 生育裏面の色は黄味茶から茶、 可溶性色素は薄 い茶色、 菌体内色素および可溶性色素は p H感受性ではない。 メラノイ ド色素の 産生はト リプトン '酵母エキスブロス、 ペプトン .酵母エキス ·鉄寒天及びチロ シン寒天でみられた。 生理学的特徴
表 4に N o. 8 7 0 3株の生理学的特徴をまとめた c
表 4 N o. 8 7 0 3株の生理学的特徴 条 件 性 質 生育温度範囲 4. 0 - 3 5. 0 "C
ゼラチン液化 +
ミルク凝固 土
ミルクぺプト ン化 +
澱粉分解 +
メラノィ ド色素産生
炭素源利用性
D一グルコース +
Lーァラビノース +
D—キシロース +
イノシト一ノレ
マンニ ト ークレ +
D—フラク トース +
L一ラムノース +
シュクロース
ラフイ ノ一ス
+ ：陽性、 士 ：擬陽性、 ― ：陰性
この菌株はィノシトール、 シュクロースおよびフラィノースを利用できなかつ た。 ミルクをペプト ン化できた。 生育温度範囲については、 4.0— 35°Cであつ た。
No.8703株の基生菌糸はよく発達し、 不規則に分枝するが断裂しない。 基生菌 糸から伸長した気菌糸は単純分枝し、 長い胞子鎖を形成する。 気菌糸の形は、 直 状、 曲状でプリ ドハムら （Pridham.T.G. ,et al.： Appl . Mi crobiol .6：54, 1958) 等の分類の RFタイプに属する。 1つの胞子連鎖は 20個以上の胞子からなる。 胞 子は表面が平滑で、 円筒型であった。 胞子の大きさは 0.5— 0.8X0.6— 1.1/iniで あった。 菌核、 胞子橐、 遊走子は観察されなかった。 細胞壁タイプ
細lS壁のァミノ酸はベッカーら （Becker, Β.,Μ.Ρ. Lechevalier, R.E.Gordon and H. A. Lecheval ier:Rapid differentiation between Nocardia and
St reptomyces by paper chromatography of whole-cel 1 hydrolysates:Appl. Microbiol.12:421-423, 1964)
山口 ( Yamaguchi , T.： Comparison of the cell wall composition of morphological ly distinct ac t inomyce tes： J . Bacteriol .89 :444 - 453, 1965) 等の方法に従い、 全菌体分解物の分析の結果、 LLージアミノピメリン酸の存在が 確認できた。 従って本菌株の細胞壁タイプは I型と考えられる。 以上の形態観察および化学分析の結果から No.8703株はプリ ドハムら（Pddhanu T.G. et al :Appl. Microbiol. §:54, 1958)の分類に従えば、 Streptomyces 厲に厲す ると考えられる。 そこで本菌株を文献、 シャーリングら （Shirling.E. B.and D. uott 1 ieb:Cooperative discription of type culture of Streptomyces.2.
Spiecies descriptions from first study. Intern. J. Syst. Bacteriol.18：69- 189, 1968；
Shi rl ing, E. B. and D. Gottl ieb: Cooperative discription of type culture of Stre tomyces.3. Addi tional spiecies descriptions from first and second studies. Intern. J. Syst. Bacteriol.18：279-392, 1968；
Sni rl ing, E. B. and D. Gottl ieb: Cooperative discription of type culture of Streptomyces.4. Spiecies descriptions from second, thi rd and forth studies. Intern. J. Syst. Bacteriol.19： 391-512, 1969) 、 スカ一マンら（Skerman, V. B. , V. McGowan and P. H. A. Sneath:Approved list of bacterial names. Amended Edition. American Society for Microbiology, Washington, D. C. , 1989, および、 ムーアら、 (Moore, W. E. , E. P. Cato and L. V. H. Moore: Index of bacterial and Yeas t Nomencul tura 1 Changes. American Society for Microbiology, Washington, D. C.， 1992)
に記載された Streptomyces厲の種と比較した。 その結果、 Streptomyces anulatus の記載上の性質と本株の性質はほとんど同一であった。 以上のことか ら No.8703标を Streptomyces anulatusと同定し、 Streptomyces anulatus No.8703 と命名した。
この Streptomyces anulatus No.8703株は通商産業省工業技術院生命工学工業 技術研究所、 （〒305 茨城県つくば市東 1一 1一 3 ) に FERM P - 15507として平 成 8年 3月 8 日に寄託され、 さらに FERM BP— 5810として平成 9年 2月 3日にブ ダぺス ト条約に基づく寄託へ移管されている。 新規環状リポぺプチドアシラーゼ生産菌である Streptomyces sp. No.6907株と 名付けた菌株 （以下 No.6907株と略称する） は、 福島県で採取された土壌試料か ら新しく分離されたものである。 以下に No.6907株の菌学的性質を示す。 種々の培地上での特徴
表 5に、 No.6907株を酵母エキス ♦麦芽エキス寒天、 オート ミール寒天、 無機 塩 .でんぷん寒天、 グリセリン .ァスパラギン寒天、 ペプトン♦酵母エキス ·鉄 寒天およびチロシン寒天培地上、 30°Cで 14日間培養した時の発育状態を光学およ び走査型電子顕微鏡で観察した特徴をまとめた。 色名は Methuen Handbook of Colour, Methuen, London, 1978を使用した。
表 5 N o. 6 9 07株の各種培地における培養上の特徴 培 地 培養性状 酵母エキス ·麦芽エキス寒天 G 良好
( I S P— 2 ) A 豊富、 黄味灰色 （白 4 A 2 )
R 灰味橙色 （ 5 B 6 )
S なし
ォート ミ一ル寒天 G ：蒈通
( I S P - 3 ) A ：豊富、 青味灰色 （22C 2 )
R ：明るい茶色 （ 4 D 4 )
S ：なし
無機塩 · でんぷん寒天 G 良好
( I S P - 4 ) A 豊富、 青味灰色 （19C 2 )
R 茶色 （ 6 F 4 )
S なし
グリセ リ ン . ァスパラギン G 良好
寒天 （ I S P— 5 ) A 豊富、 青味灰色 （22B 2 )
R 赤味茶色 （ 8 E 4 )
S なし
ぺプトン ·酵母エキス G 蒈通
鉄寒天 A なし
( I S P - 6 ) R 灰味茶色 （ 9 F 3 )
S 褐色
チ口シン寒天 G 良好
( I S P— 7 ) A 普通、 黄味白色 （ 4 A 2 )
R 喑ぃマジヱンダ色 （13F 3 )
S 褐色 略号； G ：生育 A ：気菌糸 R ：生育裏面の色 S ：可溶性色素
気菌糸の色は黄味灰から青味灰、 生育裏面の色は明るい茶から茶、 菌体内色素 は P H感受性ではない。 メラノィ ド色素の産生はト リプトン .酵母エキスブロ ス、 ぺプトン ♦酵母エキス ·鉄寒天及びチロシン寒天でみられた。 生理学的特徴
表 6に No.6907株の生理学的特徴をまとめた。
表 6 N o. 690 7株の生理学的特徴 条 件 性 質 生育温度範囲 9. 0 - 4 0. 0
ゼラチン液化 +
ミルク凝固 +
ミルクぺプト ン化
澱粉分解 +
メラノィ ド色素産生 +
炭素源利用性
D -グノレコース +
Lーァラビノース +
D—キシロ一ス +
イ ノシ トール +
マンニ ト ーノレ +
D—フラク トース +
L一ラムノース +
シュクロース +
ラフイ ノース +
+ ：陽性、 土 ：擬陽性、 一：陰性
この菌株は試験したすべての炭素源を利用できた。 ミルクのペプトン化はでき なかった。 生育温度範囲については、 9.0— 40.0'Cであった。
No.6907株の基生菌糸はよく発達し、 不規則に分枝するが断裂しない。 基生菌 糸から伸長した気菌糸は単純分枝し、 長い胞子鎖を形成する。 気菌糸の形は、 直 状、 曲状または不完全なループ状でプリ ドハムら （Pridham,T.G.，et al.： Appl. Microbiol.6：54, 1958) 等の分類の R Fまたは R Aタイプに属する。 1つの胞子 連鎖は 20個以上の胞子からなる。 胞子は表面が平滑で、 円筒型であった。 胞子の 大きさは 0.5— 0.7X0.7— 1.3 mであった。 菌核、 胞子嚢、 遊走子は観察されな かった。 細胞壁タイプ
細胞壁のァミノ酸はベッカーら (Becker, B. , M. P. Lecheval ier, R. E. Gordon and H. A. Lecheval ier = Rapid differentiation between Nocardi a and Streptomyces by paper chromatography of whole - cell hydrolysates: Appl. Microbiol.12:421-423, 1964)
山口 ( Yamaguch i , T.： Comparison of the cell wall composition of morphological ly distinct actinomycetes: J. Bacteriol.89:444 - 453, 1965) 等の方法に従い、 全菌体分解物の分析の結果、 LL一ジァミノピメリン酸の存在が 確認できた。 従って本菌株の細胞壁タイプは I型と考えられる。 以上の形態観察および化学分析の結果から No.6907株はプリ ドハムら（Pridham, T. G.et al： Appl. Microbiol.6： 54, 1958) の分類に従えば、 Streptomyces 属に属 すると考えられる。 そこで本菌株を文献、 シャーリングら （Shirling.E.B.and D. Gottl ieb:し ooperative discription of type culture of Streptomyces.2. Spiecies descriptions from first study. Intern. J. Syst. Bacteriol.18 = 69- 189, 1968；
Shi rl ing, E. B. and D. Gottl ieb: Cooperative discription of type culture of St re tomyces.3. Addi tional spiecies descriptions from first and second studies. Intern. J. Syst. Bacteriol.18：279-392, 1968；
Shi rl ing, E. B. and D. Gottl ieb: Cooperative discription of type culture of St reptomyces.4. Spiecies descriptions from second, third and forth studies. Intern. J. Syst. Bacteriol.19：391-512, 1969) 、 スカーマンら（Skerman, V. B. , V. McGowan and P. H. A. Sneath:Approved list of bacterial names. Amended Edition. American Society for Microbiology, Washington, D. C. , 1989, および、 ムーアら、 （Moore, W. E. , Ε· P. Cato and L. V. H. Moore: Index of bacterial and Yeast Nomencul tura 1 Changes. American Society for Microbiology, Washington, D. C. , 1992)
に記載された Streptomyces厲の種と比較した。 その結果、 同種と判定できる種を 見い出すことができなかったので、 この菌株を Streptomyces sp. No.6907と命名 した。
この Streptomyces sp. No.6907株は通商産業省工業技術院生命工学工業技術研 究所、 （〒305 茨城県つくば市東 1 — 1一 3 ) に FERM P— 15506として平成 8年 3月 8 日に寄託され、 さらに FERM BP— 5809として平成 9年 2月 3日にブダぺス ト条約に基づく寄託へ移管されている。 この発明でいう 「環状リポペプチド物質」 とは、 ポリペプチド環を有し、 該環 上に側鎖として、 「ァシルァミノ基」 を有する物質をいい、 この物質は、 さらに 他の側鎖を有していてもよい。
該 「環状リポペプチド物質」 の代表例である FR901379物質は微生物 Coleophoma sp. F— 11899株 （FERM BP -2635) によって生産される抗真菌活性を持った既知 物質 （特開平 3— 184921号公報に記載） であり、 下記構造式 [ l a] で示される 化合物である。
Figure imgf000016_0001
また、 FR901379物質類似体とは、 下記一般式 [ I ] で示される化合物またはそ の塩をいう。
Figure imgf000017_0001
[式中、 R 1 はァシル基、
R 2 はヒドロキシ基またはァシルォキシ基、
R 3 は水素またはヒドロキシ基、
R 4 は水素またはヒ ドロキシ基、
R 5 は水素またはヒドロキシスルホニルォキシ基、 および
R 6 は水素または力ルバモイル基
を意味する] この発明の新規環状リポぺプチドアシラーゼは、 Streptomyces厲に属する菌由 来のアシラーゼであって、 環状リポペプチド物質の側鎖の 「ァシルァミノ基」 を 脱ァシル化して、 「ァミノ基」 へと導く ものであり、 具体的には FR901379物質ま たはその塩のパルミ トイル側鎖あるいは FR901379物質を含む前記一般式 [ I ] で 示される FR901379物質類似体またはその塩のァシル側鎖を脫ァシル化して環状べ プチ ド物質、 具体的には、 下記構造式 [ Il a] で示される化合物 （FR179642物質 ) またはその塩
Figure imgf000018_0001
あるいは FR179642物質を含む下記一般式 [II] で示される FR179642類似体または その塩
Figure imgf000018_0002
[式中、 R2 、 Rs 、 R' 、 R5 および R6 は前記と同じ基を意味する:！ を生産させるアシラーゼである。 化合物 [ I ] および [Π] の好適な塩は慣用の無毒性のモノまたはジ塩であつ て、 金厲塩、 例えばアルカリ金属塩 （例えばナトリウム塩、 カリウム塩等） 、 ァ ルカ リ土類金属塩 （例えばカルシウム塩、 マグネシウム塩等） 、 アンモニゥム 塩、 有機塩基との塩 （例えば、 トリメチルァミ ン塩、 ト リェチルァミ ン塩、 ピリ ジン塩、 ピコ リ ン塩、 ジシクロへキシルァミ ン塩、 N , N ' —ジベンジルェチレ ンジァミ ン塩等） 等、 有機酸付加塩 （例えばギ酸塩、 齚酸塩、 ト リフルォロ酢酸 だ塩、 マレイ ン酸塩、 酒石酸塩、 メタンスルホン酸塩、 ベンゼンスルホン酸塩、 トルエンスルホン酸塩等）
無機酸付加塩 （例えば塩酸塩、 臭化水素酸塩、 ヨウ化水素酸塩、 硫酸塩、 りん酸 塩等） 、 アミノ酸 （例えばアルギニン、 ァスパラギン酸、 グルタミン酸等） との 塩等が挙げられる。 好適な 「低級アルキル」 としては 1 〜 6個の炭素原子を有する直鎖または分岐 状アルキル、 例えばメチル、 ェチル、 プロピル、 イソプロピル、 ブチル、 イソブ チル、 tert—ブチル、 ペンチル、 イソペンチルおよびへキシルが挙げられ、 好ま しくは 1 ~ 4個の炭素原子を有するアルキルであり、 さらに好ましくはメチルで ある。 好適な 「高級アルキル」 としては、 ヘプチル、 ォクチル、 3 , 5—ジメチルォ クチル、 3 , 7 —ジメチルォクチル、 ノニル、 デシル、 ゥンデシル、 ドデシル、 ト リデシル、 テトラデシル、 ペンタデシル、 へキサデシル、 ヘプタデシル、 ォク タデシル、 ノナデシル、 ィコシルなどの、 炭素原子数 7 ~ 20の直鎖状または分枝 鎖状のものが挙げられる。 好適な 「低級アルコキシ」 としては、 メ トキシ、 エトキシ、 プロボキシ、 イソ プロボキシ、 ブトキシ、 イソブトキシ、 第三級ブトキシ、 ペンチルォキシ、 第三 級ペンチルォキシ、 ネオペンチルォキシ、 へキシルォキシ、 イソへキシルォキシ などの直鎖状または分枝鎖状のものが挙げられる。 好適な 「高級アルコキシ」 としては、 ヘプチルォキシ、 ォクチルォキシ、 3 , 5 —ジメチルォクチルォキシ、 3 , 7—ジメチルォクチルォキシ、 ノニルォキ シ、 デシルォキシ、 ゥンデシルォキシ、 ドデシルォキシ、 トリデシルォキシ、 テ トラデシルォキシ、 へキサデシルォキシ、 ヘプタデシルォキシ、 ォクタデシルォ キシ、 ノナデシルォキシ、 ィコシルォキシなどの直鎖状または分枝鎖状のものが 挙げられる。 好適な 「ァリール」 としては、 低級アルキルを有していてもよいフヱニル （た とえばフエニル、 メシチル、 トリルなど） 、 ナフチル、 アント リルなどが挙げら れる。 好適な 「ァシルァミノ基」 あるいは 「ァシル基」 の 「ァシル」 部分としては、 カルボン酸、 炭酸、 力ルバミン酸、 スルホン酸などから誘導される脂肪族ァシル 、 芳香族ァシル、 複素環ァシル、 ァリール置換脂肪族ァシルおよび複素環置換脂 肪族ァシルを挙げることができる。
上記 「ァシル」 の好適な例としては、 ハロゲン （たとえばフルォロ、 クロ口、 ブロモ、 ョ一ド） 、 ヒドロキシ、 上記高級アルコキシ、 上記ァリールなどのの適 当な置換基を 1 または 2個以上 （好ましくは 1ないし 3個） 有していてもよいァ リール （たとえばフヱニル、 ナフチル、 アントリルなど） ；上記低級アルコキシ ；ァミノ ；保護されたァミノ [好ましくはァシルァミノ、 たとえば、 低級アルコ キシカルボニルァミノ （たとえば、 メ トキシカルボニルァミノ、 エトキシカルボ ニルァミノ、 プロポキシカルボニルァミノ、 ブトキシカルボニルァミノ、 t ーブ トキシカルボニルァミノ、 ペンチルォキシカルボニルァミノ、 へキシルォキシ力 ルポニルァミノ、 など） など] ； ジ （低級） アルキルアミノ （たとえば、 ジメチ ルァミノ、 N —メチルェチルァミノ、 ジェチルァミノ、 N—プロピルブチルアミ ノ、 ジペンチルァミノ、 ジへキシルァミノなど） ；低級アルコキシィミノ （たと えば、 メ トキシィ ミノ、 エトキシィミノ、 プロボキシィ ミノ、 ブトキシィミノ、 t —ブトキシィ ミノ、 ペンチルォキシィミノ、 へキシルォキシィミノなど） ；上 記高級アルコキシなどの適当な置換基を 1 または 2個以上 （好ましくは 1ないし 3個） 有していてもよいフユニル （低級） アルコキシィ ミノなどのアル （低級） アルコキシィ ミノ （たとえば、 ベンジルォキシィ ミノ、 フエネチルォキシィ ミノ 、 ベンズヒドリルォキシィミノなど） ；高級アルキル （たとえば、 ヘプチル、 ォ クチノレ、 2 —ェチノレへキシル、 ノニノレ、 デシノレ、 3 , 7 —ジメチノレオクチノレ、 ゥ ンデシノレ、 ドデシノレ、 トリデシノレ、 テトラデシノレ、 ペンタデシノレ、 3—メチノレ一 10—ェチルドデシル、 へキサデシル、 ヘプタデシル、 ォクタデシル、 ノナデシル 、 ィコ シルなど） などの適当な置換基を 1または 2個以上 （好ましくは 1ないし 3個） 有していてもよい複素環チォ （好ましくは、 ピリジルチオ） ；ァミノ、 上 記保護されたァミノ、 上記高級アルキルなどの適当な置換基を 1または 2個以上 (好ましくは、 1ないし 3個） 有していてもよい複素環基 （たとえば、 チェニル 、 イ ミダゾリル、 ピラゾリル、 フリル、 テトラゾリル、 チアゾリル、 チアジアゾ リルなど） などの適当な置換基を 1 または 2個以上 （好ましくは、 1ないし 3個 ) 有していてもよい低級アルカノィル （たとえば、 ホルミル、 ァセチル、 プロピ ォニル、 ブチリル、 イ ソブチリル、 バレリル、 へキサノィル、 ビバロイル、 など ) ；
高級アルカノィル （例えば、 ヘプタノィル、 ォクタノィル、 ノナノィル、 デカ ノィル、 ゥンデカノィル、 ラウロイル、 ト リデカノィル、 ミ リス トイル、 ペンタ デカノィル、 パルミ トイル、 10, 12—ジメチルテトラデカノィル、 ヘプタデカノ ィル、 ステアロイル、 ノナデカノィル、 ィコサノィルなど） ；
上記高級アルコキシなどの適当な置換基を 1または 2個以上 （好ましくは 1な いし 3個） 有していてもよい上記ァリールなどの適当な置換基を 1または 2個以 上 （好ましくは 1ないし 3個） 有していてもよい低級アルケノィル （たとえば、 ァク リ ロイル、 メタクリロイル、 クロ トノィル、 3—ペンテノィル、 5 —へキセ ノィルなど） ；
高級アルケノィル （たとえば、 4 一へプテノィル、 3—才クテノィル、 3 , 6 ーデカジエノィル、 3 . 7 , 11— ト リメチルー 2 , 6 , 10 - ドデカ ト リエノィル、 4 , 10—へプタデカジエノィルなど） ；
低級アルコキシカルボニル （たとえば、 メ トキシカルボニル、 エトキシカルボ ニル、 プロポキシカノレボニノレ、 ブトキシカルボ二ノレ、 t —フ'トキシカルボニル、 ペンチノレォキシカルボニル、 へキシルォキシカルボニルなど） ；
高級アルコキシカルボニル （たとえば、 ヘプチルォキシカルボニル、 ォクチル ォキシカルボニル、 2—ェチルへキシルォキシカルボニル、 ノニルォキシカルボ ニル、 デシルォキシカルボニル、 3， 7—ジメチルォクチルォキシカルボニル、 ゥンデシルォキシカルボニル、 ドデシルォキシカルボニル、 ト リテ'シルォキシカ ノレボニノレ、 テ トラデシノレォキシカルボニル、 ペンタデシルォキシカルボニル、 3 ーメチノレ一 10—ェチノレドデシクレオキシカノレボニル、 へキサデシノレォキシカノレボニ ル、 ヘプタデシルォキシカルボニル、 ォクタデシルォキシカルボニル、 ノナデシ ルォキシカルボニル、 ィコシルォキシカルボニルなど） ；
ァリールォキシカルボニル （たとえば、 フエノキシカルボニル、 ナフチルォキ シカルボニルなど） ；
ァリールダリオキシロイル （たとえば、 フヱニルダリオキシロイル、 ナフチル グリオキシロイルなど） ；
適当な置換基を 1 または 2個以上有していてもよいアル （低級） アルコキシ力 ルポニル、 たとえば、 ニトロまたは低級アルコキシを有していてもよいフエニル (低級） アルコキシカルボニル （たとえば、 ベンジルォキシカルボニル、 フエネ チノレオキシカノレボニノレ、 p—二トロペンジノレオキシカノレボニル、 p—メ トキシべ ンジルォキシカルボニルなど） ；
低級アルキルスルホニル （たとえば、 メチルスルホニル、 ェチルスルホニノレ、 プロピルスルホニル、 イソプロピルスルホニル、 ペンチルスルホニル、 ブチルス ノレホニノレなど） ；
上記低級アルキル、 上記高級アルコキシなどの適当な置換基を 1 または 2個以 上 （好ましく は 1ないし 3個） 有していてもよいァリ一ルスルホニル （たとえ ば、 フエニルスノレホニル、 ナフチルスルホニルなど） ；
フエニル （低級） アルキルスルホニルなどのアル （低級） アルキルスルホニル (たとえば、 ベンジルスルホニル、 フヱネチルスルホニル、 ベンズヒ ドリルスル ホニルなど） ；
上記ハロゲン ； 低級アルキル （たとえば、 メチル、 ェチル、 プロピル、 ブチ ル、 t ーブチル、 ペンチル、 へキシルなど） ；上記高級アルキル；上記低級アル コキシ、 上記ハロゲン、 上記ァリールなどの適当な置換基を 1 または 2個以上 (好ましくは 1ないし 10個） 有していてもよい低級アルコキシ （たとえば、 メ ト キシ、 エトキシ、 プロボキシ、 ブトキシ、 t一ブトキシ、 ペンチルォキシ、 へキ シルォキシなど） ；上記ハロゲンなどの適当な置換基を 1 または 2個以上 （好ま しくは 1ないし 17個） 有していてもよい高級アルコキシ （たとえば、 ヘプチルォ キシ、 ォクチルォキシ、 2—ェチルへキシルォキシ、 ノニルォキシ、 デシルォキ シ、 3 . 7 —ジメチルォクチルォキシ、 ゥンデシルォキシ、 ドデシルォキシ、 ト リデシルォキシ、 テトラデシルォキシ、 ペンタデシルォキシ、 3—メチルー 10— ェチルドデシルォキシ、 へキサデシルォキシ、 ヘプタデシルォキシ、 ォクタデシ ルォキシ、 ノナデシルォキシ、 ィコシルォキシなど） ；高級アルケニルォキシ (たとえば、 3 —へプテニルォキシ、 7—ォクテニルォキシ、 2， 6—才クタジ ェニルォキシ、 5—ノネニルォキシ、 1—デセニルォキシ、 3 , 7—ジメチルー 6—ォクテニルォキシ、 3 , 7—ジメチルー 2 , 6—才クタジェニルォキシ、 8— ゥンデセニルォキシ、 3， 6 , 8—ドデカトリェニルォキシ、 5—ト リデセニルォ キシ、 7 —テ トラデセニルオシ、 1 , 8 -ペンタデカジエニルォキシ、 15—へキ サデセニルォキシ、 11一ヘプタデセニルォキシ、 7—才クタデセニルォキシ、 10 ーノナデセニルォキシ、 18—ィコセニルォキシなど） ； カルボキシ；上記高級ァ ルコキシなどの適当な置換基を 1または 2個以上 （好ましくは 1ないし 3個） 有 していてもよい上記ァリール；上記低級アルコキシもしくは上記高級アルコキシ などの適当な置換基を 1 または 2個以上 （好ましくは 1ないし 3個） 有していて もよぃァリールォキシ （たとえば、 フエノキシ、 ナフチルォキシ、 アント リルォ キシなど） などの適当な置換基を 1 または 2個以上 （好ましくは 1ないし 5個） 有していてもよいァロイル （たとえば、 ベンゾィル、 ナフトイル、 アン ト リル力 ルポニルなど） ； などを挙げることができる。 前記 「ァシル基」 中、 好ましいものは、 高級アルカノィルであり、 特に好まし いものはパルミ トイル基である。 好適な 「ァシルォキシ基」 中の 「ァシル基」 は前記 「ァシル基」 に対して例示 したものを挙げることができる。
好適な 「ァシルォキシ基」 は低級アルカノィルォキシ （たとえば、 ホルミルォ キシ、 ァセチルォキシ、 プロピオニルォキシ、 ブチリルォキシ、 イソブチリルォ キシ、 バレリルォキシ、 へキサノィルォキシ、 ビバロイルォキシなど） あるいは ホスホノォキシなどが挙げられる。 この発明の新規な環状リポぺプチドアシラーゼは、 例えば Streptomyces anulatus No.4811株（FERM BP - 5808)、 Streptomyces anulatus Νο·8703株 (FER BP- 5810) あるいは、 Streptomyces sp. No.6907株 （FERM BP -5809) のような St reptomyces厲に厲するァシラーゼ生産菌株を培地中で培養することにより生産 できる。
一般的には、 この新規アシラーゼは、 この新規アシラーゼ生産菌株が、 同化し う る炭素源および窒素源を含有する水性培地中で、 好ましくは例えば振とう培 養、 深部培養等の好気性条件下で培養することにより生産できる。
培地の好ましい炭素源としては、 グルコース、 キシロース、 ガラク トース、 グ リセリン、 スターチ、 デキスト リン等のような炭水化物が挙げられる。 他の炭素 源と してはマルト一ス、 ラムノース、 ラフイ ノ一ス、 ァラビノース、 マンノー ス、 サリシン、 コハク酸ナト リウム等が挙げられる。
好ましい窒素源としてはイースト ♦エキストラク ト、 ペプトン、 グルテンミー ル、 綿実粉、 大豆粉、 コーン ' スティ一プ * リカー、 乾燥イース ト、 小麦胚芽、 羽毛粉、 落花生粉等、 ならびに例えば硝酸アンモニゥム、 硫酸アンモニゥム、 燐 酸アンモニゥム等のアンモニゥム塩、 尿素、 アミノ酸等のような無機または有機 窒素化合物が挙げられる。
炭素源および窒素源は好ましくはそれらの組合わせで使用されるが、 適量の生 育因子および相当量の無機栄養素を含有していれば純度の低い物質も使用でき、 必ずしも純粋な形で使用する必要はない。 所望により培地に炭酸ナトリウムまた は炭酸カルシウム、 燐酸ナト リウムまたは燐酸カリウム、 塩化ナトリウムまたは 塩化カリウム、 沃化ナト リウムまたは沃化カリウム、 マグネシウム塩、 銅塩、 コ バルト塩等の無機塩を添加してもよい。 特に培養培地が著しく発泡する場合に は、 必要により液状パラフィ ン、 脂肪油、 植物油、 鉱油またはシリコンのような 消泡剤を添加してもよい。
この新規アシラーゼを大量生産する条件としては、 深部好気培養が好ましい。 少量生産にはフラスコまたはびん中で振とう培養または表面培養が行われる。 さ らにまた、 大型タンク内で生育を実施する場合には、 新規アシラーゼの生産工程 における生育遅延を回避するために、 微生物の前培養を用いて生産タンク中に菌 を接種するのが好ましい。 すなわち、 比較的少量の培養培地に微生物の胞子また は菌糸を接種し、 その接種培地を培養して微生物の前培養接種物をまず生産し、 次いで培養した前培養接種物を無菌的に大型タンクに移すのが望ましい。 この前 培養接種物を生産する培地は、 新規ァシラーゼの生産に使用される培地と実質的 に同じであってもよく、 また異なってもよい。
培養混合物の撹拌および通気は種々の方法で行うことができる。 撹拌はプロべ ラまたはこれに準ずる撹拌装置を用いるか、 酹酵器を回転させるかまたは振とう するか、 種々のポンプ装置を用いるか、 または培地中に滅菌空気を通すことに よっても行う ことができる。 通気は滅菌空気を 酵混合物中を通過させることに より行ってもよい。
醱酵は通常、 約 20°C ~ 32°Cの温度範囲、 好ましくは 25〜30°Cで、 pHは 6〜 8が 好ま しく、 約 50~ 150時間行われるが、 酴酵条件および酖酵規模によって適宜変 化させればよい。
このようにして生産された新規ァシラーゼは、 他の既知の生物学的活性物質の 回収に通常使用される慣用の方法で培養培地から回収することができる。 生産さ れた新規アシラーゼは、 培養菌糸中および 液中に見出され、 従って新規ァシ ラーゼは、 培養ブロスの浐過または遠心分離によって得られる菌糸および 液か ら、 減圧濃縮、 凍結乾燥、 常用の溶媒による抽出、 PH調整、 例えば陰イオン交換 樹脂または陽ィォン交換樹脂、 非ィォン性吸着樹脂等の常用の樹脂による処理、 例えば活性炭、 ケィ酸、 シリカゲル、 セルロース、 アルミナ等の常用の吸着剤に よる処理、 結晶化、 再結晶化等の慣用の方法によって分離、 精製することができ る。
St reptomyces anulatus No. 4811标、 St reptomyces anul atus No. 8703标、 およ び S t rep torayces sp. No. 6907株によって生産されるアシラーゼについて具体的に 説明するために以下実施例を挙げるが、 この発明がそれらに限定されるものでは ない。 実施例 1 一 1
Streptomyces anulatus No.4811株が生産するアシラーゼの製造
コーンスターチ 1 %、 グルコース 1 %、 落花生粉 0.5%、 大豆粕 0.5%、 乾燥酵 母 0.5%、 炭酸カルシウム 0.2%の組成からなる種培地 30mlを分注した 100ml三角 フラスコを 120でで 20間滅菌し、 Streptomyces anulatus No.4811株の斜面寒天培 養の 1〜 2白金耳を接種し、 30°Cで 3日間振とう培養して種培養とした。
次いでシユークロース 4 %、 落花生粉 1 %、 乾燥酵母 1 %、 リン酸二水素カリ ゥム 0.05%、 リ ン酸水素二カリウム 0.12%、 硫酸マグネシウム 7水和物 0.025% の組成からなる生産培地の pHを 6.5に調整し、 この生産培地 100mlを分注した 500 ml三角フラスコを 120°Cで 20分間滅菌し、 これに前記種培養を 2 ml接種して、 30 °Cで 3 日間振とう培養し酵素培養液とした。 実施例 1 一 2
Streptomyces anulatus No.8703株が生産するアシラーゼの製造
コーンスターチ 1 %、 グルコース 1 %、 落花生粉 0.5%、 大豆粕 0.5%、 乾燥酵 母 0.5%、 炭酸カルシゥム 0.2%の組成からなる種培地 30mlを分注した 100ml三角 フラスコを 120。Cで 20分間滅菌し、 Streptomyces anulatus No.8703株の斜面寒天 培養の 1 ~ 2白金耳を接種し、 30でで 3日間振とう培養して種培養とした。
次いでシュ一クロース 4 %、 落花生粉 1 %、 乾燥酵母 1 %、 リン酸二水素カリ ゥム 0.05%、 リ ン酸水素二カリウム 0.12%、 硫酸マグネシウム 7水和物 0.025% の組成からなる生産培地の pHを 6.5に調整し、 この生産培地 100mlを分注した 500m 1三角フラスコを 120°Cで 20分間滅菌し、 これに前記種培養を 2 id接種して、 30°C で 3 日問振とう培養し酵素培養液とした。 実施例 1 一 3
Streptomyces sp. No.6907株が生産するァシラ一ゼの製造
可溶性澱粉 6 %、 脱脂大豆粉 4 %、 炭酸カルシウム 0.5%の組成からなる種培 地 30mlを分注した 100ml三角フラスコを 120°Cで 20分間滅菌し、 Streptomyces sp. No6907株の斜面寒天培養の 1〜 2白金耳を接種し、 30°Cで 3日間振とう培養して 種培養と した。
次いでシユークロース 4 %、 落花生粉 1 %、 乾燥酵母 1 %、 炭酸カルシウム 0.5%の組成からなる生産培地の pHを 6.5に調整し、 この生産培地 100mlを分注し た 500ml三角フラスコを 120°Cで 20分間滅菌し、 これに前記種培養を 2 ml接種し て、 30°Cで 4 日間振とう培養し酵素培養液とした。 実施例 1一 4
S t reptomyces厲に属する保存株が生産するァシラーゼの製造
(財） 醱酵研究所 （大阪市淀川区十三本町 2 - 17— 85) から分譲された下記 Streptomyces属に属する保存株についても実施例 1一 1 と同様の方法により Streptomyces anulatus No.4811株と同様の酵素培養液を得ることができた。
St reptomyces gri seus subsp. gri seus IF0 13189 次にこの発明の新規環状リポベプチドアシラーゼを用いた環状リポベプチド抗 真菌性物質 （例えば FR901379物質及びその類似体） のァシル側鎖の脱ァシル化法 について詳しく説明する。
本発明の脱ァシル化の実施は以下のようにして行うことができる。
適当な生産培地に Streptomyces属に属し、 新規アシラーゼを生産する微生物を 接種し、 約 25~35°Cで数日間振とう培養し、 これを酵素培養液とする。 この培 養液を、 基質としての FR901379物質等の環状リポペプチド物質に添加し、 45〜60 °C， pHを約 6.0~ 9に保ち、 FR179642物質等の環状ペプチド核を高速液体クロマ トグラフィー （HPLC) によって検出し、 分離する。
本発明の脱ァシル化法について具体的に説明するために以下実施例を挙げる が、 この発明がそれらに限定されるものではない。 実施例 2 - 1
実施例 1 ― 1 で得た Streptomyces anulatus No, 4811株の培養液 700 1に FR 901379物質の水溶液 （lOOmgZml) WO μ 1 ( FR901379物質として lOmg； 8.35 mol) 、 メタノール 100 1および緩衝液 （0.5Mリ ン酸二水素カリウム一リ ン酸水 素ニナト リゥム緩衝液； PH6.0) 100 1を加え、 30°Cで 30分間反応させた。 反応 終了後、 4 %醉酸 1 mlを添加して反応を終了させ、 メタノール 2 nilを加え、 メン ブランフィ ルター （0.45;u m) で浐過して高分子蛋白などを除去後、 HPLCによつ て生成した FR179642物質を 210nmでモニターしてアシラーゼ活性を測定した。
HPLCは波長可変 U V検出器 （島津 SPD— 10A) およびポンプ （島津 LC一 10AD) およびイ ンテグレータ （島津 C— R6A) で構成し、 固定相には、 リクロスファー (LiChrospher) 100RP-18 ( e ) ( 250mm 4 mrai.d., 粒径 5 ;ura) を使用し、 3 %ァセ トニ ト リル 0.5%リン酸ニ水素アンモニゥ厶からなる移動相によって 1 m 1 /分の流速で FR 179642物質を溶離させた。 FR179642物質の保持時間は約 6.3分 であった。 この結果に基づき FR179642物質の生成量を計算すると 730 8 (0.78 μ πιοΐ ) であった。 実施例 2 - 2
実施例 1 一 2で得た Streptomyces anulatus No.8703株の培養液 700 1に FR 901379物質の水溶液 （lOOtngZml ) 100 μ 1 ( FR901379物質と して 10mg； 8.35 mol) 、 メタノール 100 1および緩衝液 （0.5Mリン酸二水素カリウム—リン酸 水素ニナト リゥム緩衝液； ρΗ6.0) 100 1を加え、 30°Cで 30分間反応させた。 反 応終了後、 4 %酢酸 1 mlを添加して反応を終了させ、 メタノール 2 mlを加え、 メ ンブランフィルター （0.45μπι) で f戸過して高分子蛋白などを除去後、 HPLCに よつて生成した FR179642物質を 210ππιでモニターしてアシラーゼ活性を測定し た。
HPLCは波長可変 UV検出器 （島津 SPD— 10A) およびポンプ （島津 LC一 10AD) お よびイ ンテグレータ （島津 C一 R6A) で構成し、 固定相には、 リクロスファー (LiChrospher) 100RP - 18 ( e ) (250mm X 4誦 i · d.、 粒径 5 m ) を使用し、 3 %ァセ トニ ト リル 0.5%リン酸ニ水素アンモニゥムからなる移動相によって 1 ml/分の流速で FR179642物質を溶離させた。 FR179642物質の保持時間は約 6.3分 であった。 この結果に基づき FR179642物質の生成量を計算すると 830 g (0.89 μ mol ) て'あった。 実施例 2 - 3
実施例 1一 3で得た Streptomyces sp. No.6907株の培養液 700 1に FR901379物 質の水溶液 （lOOmgZml) 100 1 (FR901379物質として 10mg； 8.35 raol ) 、 メタ ノール 100 1および緩衝液 （0.5Mリン酸ニ水素力リウムーリン酸水素ニナトリ ゥム緩衝液 ； PH6.0) 100 1を加え、 30°Cで 30分間反応させた。 反応終了後、 4 %酢酸を添加して反応を終了させ、 メタノール 2 mlを加え、 メンブランフィル ター （0.45yu m) で沪過して高分子蛋白などを除去後、 HPLCによって生成した FR 179642物質を 210nmでモニタ一してアシラーゼ活性を測定した。
HPLCは波長可変 UV検出器 （島津 SPD-10A) およびポンプ （島津 LC一 10AD) お よびイ ンテグレータ （島津 C一 R6A) で構成し、 固定相には、 リクロスファー (LiChrospher) 100RP— 18 ( e ) (250mm x 4mm i. d. , 粒径 5 /m) を使用し、 3 %ァセ トニ ト リル /0.5%リン酸ニ水素アンモニゥムからなる移動相によって 1 ml/分の流速で FR179642物質を溶離させた。 FR179642物質の保持時間は約 6.3分 であった。 この結果に基づき FR179642物質の生成量を計算すると 560/ug (0.60 μ mol ) であった。 Lineweaver— Burk法によって決定した時の Km値は であ り、 Vmaxは 14.3U /mg— proteinであった。 実施例 2 - 4
実施例 1一 3で得た Streptomyces sp. No.6907株の培養液 100 1に Aculeacin Aのジメチルスルホキシ ド溶液 （lOOmgZml) 100 μ 1 (Aculeacin Aと して lOmg
； 9.65/ mol) 、 1.2MKC1を含む 500mMリン酸二水素カリウム一リン酸水素ニナト リウム緩衝液 （PH7.0) 500^ K 水 300μ 1を加え、 40°Cで 15分間反応させた。 4 %酢酸 1 mlで反応を停止し、 メタノール 2 mlを添加後、 メンブランフィルター (0.45 m)で沪過して高分子蛋白などを除去後、 HPLCによつて生成した Aculeacin
A核物質を 210nmでモニターしてァシラーゼ活性を測定した。 HPLCは波長可変 UV 検出器 （島津 SPD— 10A ) およびポンプ （島津 LC一 10AD) およびインテグレータ
(島津 C一 R6A) で構成し、 固定相にはリクロスファー （LiChrospher) 100RP- 18 (e) ( 4 mmX 250mmi.d.、 粒径 5 m (Merck) ) を使用し、 4 %ァセトニト リ ル水 Z 1 %リ ン酸ニ水素アンモニゥムからなる移動相によって 1 ml,分の流速 で Aculeacin A核物質を溶離させた。 Aculeacin A核物質の保持時間は約 8.7分 であった。 この結果に基づき Aculeacin A核物質の生成量を計算すると 370μ g (0. Μ β mol ) であった。 Lineweaver— Burk法によって決定した時の Km値は 279 μ Μであり、 Vmaxは 16.8UZmg— proteinであった。 実施例 2 - 5
実施例 1 一 3で得た Streptomyces sp. No.6907株の培養液に 100 1に Echinocan din Bのジメチルスルホキシド溶液 （lOOmg/ml) 100 1 (Echinocandin Bとし て 10mg； 9.43 mol ) 、 1.2MKC1を含む 500mMリン酸二水素カリウム一リン酸水 素ニナ ト リウム緩衝液 （PH7.0) 500 1、 水 300 1を加え、 40°Cで 15分間反応さ せた。 4 %酢酸 1 mlで反応を停止し、 メタノール 2 mlを添加後、 メンブランフィ ルター （0.45 in) で沪過して高分子蛋白などを除去後、 HPLCによって生成し た Echinocandin B核物質を 210nmでモニターしてアシラーゼ活性を測定した。 HPLCは波長可変 UV検出器 （島津 SPD— 10A ) およびポンプ （島津 IX— 10AD) お よびィ ンテグレ一タ （島津 C -R6A) で構成し、 固定相にはリ クロスファー (LiChrospher) 100RP- 18( e ) ( 4 mm X 250mm i. d. Λ 粒径 5 m (Merck) ) を使 用し、 4 %ァセ トニ ト リル水 Z1 %リン酸ニ水素アンモニゥムからなる移動相に よって 1 ml/分の流速で Echinocandin B核物質を溶離させた。 Echinocandin B 核物質の保持時間は約 8.7分であった。 この結果に基づき Echinocandin B核物質 の生成量を計算すると 90 ^g (0. lliiraol) であった。 Lineweaver— Burk法によつ て決定した時の Km値は であり、 Vmaxは 7.85UZmg— proteinであった。
St reptomyces厲に厲するこの発明の新規ァシラーゼ生産菌が生産するアシラー ゼによる環状リポぺプチド抗真菌性物質 （例えば FR901379物質） のァシル側鎖を 脫ァシル化する過程における特徴を以下に述べる。 なお、 これらのデータは上の実施例 2 — 1、 実施例 2 — 2または実施例 2 — 3 で述べた実験方法を用いて、 緩衝液の種類 （0. 5Mクェン酸ナト リウム緩衝液、 0. 5Mリ ン酸ニ水素力リゥムーリン酸水素ニナト リゥム緩衝液およびトリス '塩 酸緩衝液を適宜組み合わせて使用） 、 反応温度、 メタノールの添加濃度などを 変更して得たものである。 なお、 それぞれのアシラーゼの活性は反応終了時の FR 179642物質の濃度 （HPLCで測定） で示してある。 反応時の至適 p H
試験例 1一 1 Streptorayces anulatus No.4811株 の生産するァシラ一ゼの至適 pH n H 反 Jj^終了後の FR179642物暫の； ^度
(^g/ml)
3 0
4 9 0
5 4 4 0
6 6 3 0
6. 5 7 1 0
7 7 7 0
8 8 1 0
9 7 4 0 試験例 1 - 2 Streptomyces anulatus Νο·8703株 の生産するアシラーゼの至適 pH
Ρ Η 反応終了
Figure imgf000032_0001
3 0
4 2 4 0
5 5 9 0
6 8 1 0
7 1 , 0 7 0
8 1. 3 0 0
9 1 , 2 7 0 試験例 1 ― 3 Streptorayces sp.6907株の
生産するァシラ一ゼの至適 pH
Figure imgf000033_0001
以上の結果は、 本発明の実施にあたっては、 いずれのアシラーゼについても反 応は弱酸性 （PH4付近） 以上で反応が進行し、 pHが高くなるほど反応速度が上昇 することを示している。 反応時の至適温度
試験例 2— 1 Streptomyces anulatus No.4811株
の生産するァシラ一ゼの至適温度 温度 反応終了後の FR179642物質の濃度
( g ml)
25 3 6 0
30 6 3 0
40 1 , 4 9 0
50 3, 1 2 0
60 1 , 1 1 0
70 6 0 試験例 2一 2 Streptomyces anulatus No.8703株
の生産するァシラ一ゼの至適温度
Figure imgf000034_0001
以上の結果は、 本発明の実施にあたっては、 いずれのアシラーゼについても反 応時の至適温度は 40ないし 60°Cであることを示している。
反応時のメタノール添加の効果 試験例 3 - Streptomyces anulatus No.4811株 の生産するアシラーゼで反応させた 場合のメタノール効果
Figure imgf000035_0002
試験例 3 - 2 Streptomyces anulatus No.8703株 の生産するァシラ一ゼで反応させた 場合のメタノール効果
Figure imgf000035_0001
試験例 3 - 3 Streptomyces sp. No.6907株の生産
するァシラーゼで反応させた場合の
メタノール効果
Figure imgf000036_0001
以上の結果は、 本発明の実施にあたっては、 いずれのアシラーゼについても、
5ないし 20%のメタノールが反応液中に存在すると活性は 1.6ないし 2.2倍に上昇 することを示している。 次に Streptomyces厲に属するアシラーゼ生産菌を培養して得られる環状リポベ プチドアシラーゼについて具体的に説明する。
• Streptomyces sp.6907株由来のアシラーゼの特徴 1 ) 作用 ：
FR901379及び Echinocandin B Aculeacin A等の FR901379物質類似体に代 表される環状リポベプチド物質の脂質ァシル部分の脫ァシル化を触媒する。
2 ) 至適 pH： pH8 9
3 ) 作用適温の範囲 ： 50°C付近 4 ) 阻害、 活性化及び安定化：
メタノール：反応液中の含量が 10%までは濃度依存的に活性化され、 それ以 上は阻害される。
5 ) 分子量：
精製した本酵素を SDS— PAGEにかけたところ 2つのバンドに別れた。
ラージペプチド ； 61kD
スモ一ルぺプチド ； 19kD
6 ) 結晶構造 ：
精製されたタンパク量が少なく、 結晶になっていない。
7 ) アミノ酸分析：
N末端ァミノ酸配列
ラージべプチド ；
Se r-Asn-A 1 a-Va 1 -A 1 a-Phe-Asp-G 1 y-Se r-Th r-Th r-Va 1 -Asn-G 1 y-A rg- G 1 y-Leu-Leu-Leu-Gl y- - - ·
スモ一ルぺプチド ；
Gly-Ser-Gly-Leu-Ser-Ala-Val-I le-Arg-Tyr-Thr-Glu-Tyr-Gly-I le- Pro-His-His-Val-Ala——
8 ) 基質特異性：
FR901379、 Echinocandin B及び Aculeacin Aに対しては触媒作用を持って いる。 しかし FR901469に対しては作用を持たない。 本発明のアシラーゼについて具体的に説明するために以下実施例を挙げるが、 この発明がそれらに限定されるものではない。 アシラーゼの精製：
実施例 3
実施例〗 一 3で得た Streptoniyces sp. No.6907株の培養液を、 低温下、 1.5M KC1で撹拌抽出し、 No. 2沪紙にて得られた抽出浐液を UF膜 （旭化成； AIP-1010) にて脫塩 （20mM ト リス一塩酸緩衝液 （pH9 ) に置換） し、 HP— 20カラムにパス させた。 得られたパス液を DEAE— Toyopearlカラム （C1—型） に通液し、 0.3M NaClを含む 20mM ト リス—塩酸緩衝液 （pH9 ) で溶出した。 活性画分に （NH4) 2 S04 を 0.5M相当量添加溶解して Phenyl— Toyopearlカラムに通液し、 0.1M NaCl を含む 50mM ト リス一塩酸緩衝液 （pH8 ) で溶出した。 得られた活性画分を DF膜
(旭化成 ； SIP— 0013) で脱塩潘縮 （20raM トリス一塩酸緩衝液（pH 9 )に置換） し、 YMC—Diolカラムにてゲル 過を行い （移動相； 0.2M NaClを含む 0.1Mリ ン酸ニ水素力リウムーリン酸水素ニナト リウム緩衝液 PH7.0) 、 さらに活性画分 を逆相系の Cosmosil 5 C 4— AR— 300カラムにて分取精製を行った （移動相；
(A液） 0.5% ト リフルォロ醉酸、 （B液） 0.5% ト リフルォロ醉酸一 80%ァセ トニト リル、 A ： B =60： 40—40： 60 (直線グラジェント） ） 。 この精製したァ シラーゼを SDS-PAGEにかけたところ、 2つのバン ドに分かれた。 これより分子量 61kDと 19kDの 2種類のぺプチドを取得した。 基質特異性：
FR901469物質はカビ No.11243株 （FERM BP— 3373) によって生産される抗真菌 活性を持った既知物質 （W092ノ 19648号公報に記載） であり、 下記構造式 ΠΙΙ] ：
Figure imgf000038_0001
で示される化合物である, この発明の新規ァシラーゼと同様な脫ァシル作用を持つ Act i nop lanes utahensis由来のアシラーゼ （特開平 4一 228072号公報に記載） は前記化合物 FR901469物質またはその塩に対して触媒活性を示し、 下記構造式 [IV] ：
Figure imgf000039_0001
で示される FR181131物質 （W096Z30399号公報に記載） を生産させる。
それに対して、 この発明の新規ァシラーゼは上記化合物 FR901469物質またはそ の塩に対して触媒活性を示さない。 以下実施例を挙げる。
実施例 4一 1
Actinoplanes utahensis IFO 13244を J. Antibiotics, Vol.41, pl085-1092 ('88)の記載に準じ培養した液 20mlに FR901469物質の水溶液 （200mgZml) 1 ml
(FR901469物質として 0.2g ； 130^ mol) 、 リン酸ニナト リゥム 2.9g、 水 60mlを 加え、 60°Cで 24時間反応させた。 反応終了後、 反応液をメンブランフィルター
(0.45/im) で浐過して高分子蛋白などを除去後、 HPLCによって生成し FR181131 物質を 210nmでモニタ一してアシラーゼ活性を測定した。 HPLCは波長可変 UV検出 器 （島津 SPD— 10A) およびポンプ （島津 LC一 10AD) およびインテグレ一タ （島 津 C一 R6A) で構成し、 固定相には YMC AM303 ( 4 mm x 250mmi . d.粒径 5 μ m) を使 用し、 12.5%ァセ ト二ト リル水 ZO.5%リン酸ニ水素アンモニゥムからなる移動 相によって 1 ralZ分の流速で FR181131物質を溶離させた。 FR181131物質の保持時 間は約 7.3分であった。 この結果に基づき FR 181131物質の生成量を計算すると 80 mg (68 i mol ) であつた。 実施例 4一 2
実施例 1 - 3で得られた Streptomyces sp. No.6907株の培養液 20mlに FR901469 物質の水溶液 （200mgZml) 1 ml (FR901469物質として 0.2 g ； 130umol) 、 リ ン 酸ニナ ト リウム 2.9g、 水 60nilを加え、 60°Cで 24時間反応させた。 反応終了後、 反応液をメ ンブランフィルター （0.45 ΠΙ) で沪過して高分子蛋白などを除去 後、 HPLCによつて生成した FR181131物質を 210nmでモニターしてアシラーゼ活性 を測定した。 HPLCは波長可変 UV検出器 （島津 SPD— 10A) およびポンプ （島津 LC -10AD) およびイ ンテグレータ （島津 C一 R6A) で構成し、 固定相には YMC AM303 ( 4 nmX 250mmi.d.粒径 5 /u m) を使用し、 12.5%ァセトニ ト リル水 Ζθ.5%リ ン 酸二水素アンモニゥムからなる移動相によって 1 ml/分の流速で FR181131物質を 溶離させた。 FR181131物質の保持時間は約 7.3分であった。 この結果に基づき FR 181131物質の生成量を計算すると 2 mg (l.7^mol) 以下 （検出限界以下） であつ た。
FR901379物質を生産する Coleophoma sp. F - 11899株および本発明のァシラーゼ を生産する Streptomyces anulatus No.4811株、 Streptomyces anulatus No.8703 株および Streptomyces sp. No.6907株は通商産業省工業技術院生命工学工業技術 研究所 （茨城県つくば市東 1一 1— 3 ) に寄託されている。
微生物 寄託番号
Coleophoma sp. F-11899株 FERM BP-2635
Streptomyces anulatus No.4811标 FERM BP-5808
Streptomyces anulatus No.8703株 FERM BP-5810
Streptomyces sp. No.6907株 FERM BP-5809
No.11243株 FERM BP-3373

Claims

請求の範囲
1. Streptomyces属に属する菌由来の環状リポぺプチドアシラーゼ。
2. —般式 [ I ] ：
Figure imgf000041_0001
[式中、 R1 はァシル基、
R 1 はヒ ドロキシ基またはァシルォキシ基、
R 3 は水素またはヒ ドロキシ基、
R は水素またはヒ ドロキシ基、
R 5 は水素またはヒドロキシスルホニルォキシ基、 および
R6 は水素または力ルバモイル基
を意味する]
で示される環状リポベプチド物質またはその塩の R1 のァシル基の脱ァシル化を 触媒し、 一般式 [II] ：
Figure imgf000042_0001
[式中、 R2 、 R3 、 、 R5 および R6 は前記と同じ基を意味する] で示される環状べプチド物質またはその塩を生産させる請求の範囲第 1項のァシ ラーゼ。
3. 請求の範囲第 2項の式中において
R5 はヒ ドロキシスルホニルォキシ基、 および
R 6 は力ルバモイル基
であることを特徴とする請求の範囲第 2項のアシラーゼ。
4. アシラーゼ生産菌が Streptomyces anulatusであることを特徴とする請求の 範囲第 1項のアシラーゼ。
5. アシラーゼ生産菌が Streptomyces anulatus No.4811株であることを特徴と する請求の範囲第 1項のアシラーゼ。
6. アシラーゼ生産菌が Streptomyces anulatus No.8703株であることを特徴と する請求の範囲第 1項のアシラーゼ。
7. アシラーゼ生産菌が Streptomyces sp. No.6907株であることを特徴とする請 求の範囲第 1項のアシラーゼ。
8. 次の性質を有する請求の範囲第 1項のアシラーゼ
1 ) 作用 ：
FR901379及び Echinocandin B, Aculeacin A等の FR901379物質類似体に代表 される請求の範囲第 1項の環状リポベプチド物質の脂質ァシル部分の脱ァシル化 を触媒する。
2 ) 至適 pH： pH8〜 9
3 ) 作用適温の範囲 ： 50°C付近
4 ) 阻害、 活性化及び安定化：
メタノール：反応液中の含量が 10%までは濃度依存的に活性化され、 それ以 上は阻害される。
5 ) 分子量：
ラージペプチド ； 61kD
スモ一ルぺプチド ； 19kD
6 ) アミノ酸分析：
N末端ァミノ酸配列
ラージべプチド ；
Ser-Asn-Ala-Val-Ala-Phe-Asp-Gly-Ser-Thr-Thr-Val-Asn-Gly-Arg- G 1 y-Leu-Leu-Leu-G 1 y- - · - スモーノレぺプチド ；
Gly-Ser-Gl y-Leu-Se r-A 1 a-Va 1-Ile-A rg-Ty r-Th r-G 1 u-Ty r-Gly-Ile- P ro-H i s-H i s-V 1 -A 1 a- · · '
7 ) 基質特異性：
FR901379, Echinocandin B及び Aculeacin Aに対しては触媒作用を持って いる。 しかし FR901469に対しては作用を持たない。
9. アシラーゼ生産菌が Streptomyces sp. No.6907株であることを特徴とする請 求の範囲第 8項のアシラーゼ。
10. 請求の範囲第 1項のアシラーゼを生産する Streptomyces厲に厲するアシラー ゼ生産菌。
11. 請求の範囲第 1項のアシラーゼを生産する Streptorayces anulatusに厲する 生産菌。
12. St reptomyces anulatus No.48110
13. Streptomyces anulatus No.8703o
14. St reptomyces sp. No.6907。
15. 環状リポぺプチ ド物質またはその塩を生産菌が Streptorayces属であるァシ ラーゼの粗または精製酵素液と接触させて、 脂質ァシル部分を脱ァシル化するこ とによる環状ぺプチド物質またはその塩の製造法。
16. 一般式 [ I ] ：
Figure imgf000044_0001
[式中、 R1 はァシル基、
R2 はヒ ドロキシ基またはァシルォキシ基、 R3 は水素またはヒドロキシ基、
R 4 は水素またはヒ ドロキシ基、
R 5 は水素またはヒ ドロキシスルホニルォキシ基、 および
R 6 は水素または力ルバモイル基
を意味する]
で示される環状リポぺプチド物質またはその塩を水性溶媒中、 Streptomyces厲に 属するアシラーゼ生産菌を培養して得られるアシラーゼの粗または精製酵素液と 接触させることを特徴とする一般式 [Π] ：
Figure imgf000045_0001
[式中、 R2 、 R3 、 R4 、 R5 および R6 は前記と同じ基を意味する] で示される環状べプチド物質またはその塩の製造法。
17. 請求の範囲第 16項の式中において
R5 はヒ ドロキシスルホニルォキシ基、 および
R 6 は力ルバモイル基
であることを特徴とする請求の範囲第 16項の製造法。
18. アシラーゼ生産菌が Streptomyces anulatusであることを特徴とする請求の 範囲第 15項の製造法。
19. アシラーゼ生産菌が Streptomyces anulatus No.4811であることを特徴とす る請求の範囲第 15項の製造法。
20. アシラーゼ生産菌が Streptomyces anulatus No.8703であることを特徴とす る請求の範囲第 15項の製造法。
21. アシラーゼ生産菌が Streptomyces sp. No.6907であることを特徴とする請求 の範囲第 15項の製造法。
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