WO1996004559A1 - Procede de separation et/ou de detection et/ou de quantification de compose(s) infectieux et support pour la mise en ×uvre du procede - Google Patents

Procede de separation et/ou de detection et/ou de quantification de compose(s) infectieux et support pour la mise en ×uvre du procede Download PDF

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Elie Stefas
Marcel Rucheton
Hubert Graafland
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Institut Français De Recherches Scientifiques Pour Le Developpement En Cooperation - Orstom
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Definitions

  • the present invention relates to a method of separation and / or detection and / or quantification of infectious compound (s) in a biological material and a support for carrying out the method.
  • infectious compounds is understood hereinafter generically designated by the abbreviation “CI”, as well compounds, in particular proteinaceous, constitutive of an infectious agent, as structures which comprise infectious compounds.
  • CI infectious compounds
  • structures which comprise infectious compounds.
  • These structures are, in particular, or endogenous or exogenous infectious agents, complete or incomplete, their metabolites or alternatively assemblies containing compounds constituting these infectious agents, assemblies which exhibit certain properties of said infectious agents, in particular the property of being detected by certain antibodies specific for infectious compounds;
  • the CIs can also be compounds specifically induced in the organism by the previously defined CIs, or by the expression of genes expressing themselves in an abnormal manner.
  • CIV a viral infectious compound
  • CInV a non-viral infectious compound
  • biological material is understood here to mean biological tissue, a preparation or an extract derived from biological tissue, liquid or solid, or a natural medium capable of containing an infectious compound in the sense defined above (for example, water of 'flow).
  • the material can also be a mixture of at least two materials as defined above.
  • Such a biological material can therefore be, in particular, either prepared from tissues, organs, stools or biological fluids of a patient suffering from an infection, for example viral, bacterial, parasitic, mycotic or mycoplasmic, or obtained from "in vitro"cultures; such a biological material can also be a serum, plasma, urine, cerebrospinal fluid, synovial fluid, peritoneal fluid, pleural fluid, seminal fluid or ascites fluid.
  • ⁇ 2-glycoprotein I is a plasma glycoprotein, the sequence of which has been indicated in particular in the articles by J. LOZIER et al. Proc. Natl. Acad. Sci. ISA, Vol. 81, pages 3640-3644, July 1984 and by T. KRISTENSEN et al. , FEBS Letters, Vol. 289, 1991, pages 183-186.
  • ⁇ 2GPI is also called Apolipoprotein H. It has been observed that this protein has a polymorphism: the name ⁇ 2GPI will hereinafter be considered as generic for all forms.
  • WO 94/18569 a method for detecting and / or assaying viral compounds in which the viral compounds (VIC) are fixed using ⁇ 2'GPI.
  • the ⁇ 2'GPI is therefore added to the VICs contained in a biological material, so as to separate the VICs thus captured in order to then detect and / or measure them.
  • complex (s) a direct or indirect association, between at least one CI and a ⁇ 2GPI: these complexes will, in general, be designated below by the notation “ ⁇ 2GPI / CI”.
  • the method described in WO 94/18569 detects and / or doses CIV / ⁇ 2'GPI complexes between CIV viral compounds and ⁇ 2'GPI, in the pure state or in a protein composition containing it, ⁇ 2'GPI being added the biological material containing the VICs to be detected and / or measured.
  • ( ⁇ 2GPI) n the (or) form (s) of ⁇ 2GPI naturally present (s) in the biological material before implementing the process described below, and not intentionally added as such.
  • ( ⁇ 2GPI) r the form (s) of r ⁇ 2GPI that we intentionally add to form the CI / ⁇ 2GPI complexes previously defined.
  • complexes ( ⁇ 2GPI) n / CI where the CI part can be of CIV viral OR non-viral CInV type, and the ( ⁇ 2GPI) n part naturally comes from the biological material studied, complexes ( ⁇ 2GPI) r / CInV or the part ( ⁇ 2GPI) r is intentionally added and prepared in different forms for this purpose, pure or as a mixture, and the CInV part comes from non-viral infectious compounds of the biological material studied.
  • the present invention therefore relates to a method of separation and / or detection and / or quantification of infectious compounds (IC) in a biological material, characterized in that one separates and / or detects and / or quantifies a ⁇ 2GPI / CI complex taken from the group formed by: a) the complexes ( ⁇ 2GPI) n / CI b) the complexes ( ⁇ 2GPI) r / CInV
  • ⁇ 2GPI like the CI, can be of animal origin or produced by genetic and / or chemical engineering. The process finds its application both for humans and for animals.
  • the ⁇ 2GPI part of the complexes will be identified by its recognition, using a substance (s) which bind to this part, preferably or not, or specifically, and l '' the CI part will be identified by any suitable means.
  • complexes can be direct or indirect, mediated or favored by certain adjuvants, which can be chemical, biochemical or biological, such as certain lipids or detergents, in particular phospholipids.
  • adjuvants can be chemical, biochemical or biological, such as certain lipids or detergents, in particular phospholipids.
  • Complexes can form during the preparation of the biological material and / or during one or more stages of the process.
  • CIs include CIVs and CInVs.
  • CIVs there may be mentioned in particular those of the group formed by HIV1, HIV2, HBV, HSV, particles or proteins of viral origin
  • CInVs there may be mentioned in particular those of the group formed by bacteria, parasites, fungi and mycoplasmas, and more particularly: for bacteria: Borellia; and for parasites: Leishmania, infantum in particular, Toxoplasma gondii, Entamoeba histolytica.
  • the ⁇ 2GPI retained in the complex (s) may, depending on the modes of implementation of the method, have been marked or not,; this labeling, whether prior or not, can be carried out, for example, using an antibody, an enzyme, a radioactive product, a fluorescent product or a metallic agent.
  • a polyspecific test capable of detecting different infectious agents, in particular by using, simultaneously or successively, a different detection method for each, for example an antibody conjugated to alkaline phosphatase against p26HIV2 then an antibody conjugated to peroxidase against HBsAg.
  • an ( ⁇ 2GPI) r is added to the outside of the biological medium
  • ⁇ 2GPI part of the complex as a form of ⁇ 2GPI, ⁇ 2 'GPI pure or in the form of a protein composition containing, in particular, other glycoproteins; this composition can, in particular, be that obtained by elution of an affinity column on a gel carrying sulphate groups as described in French patent application 2 701 263.
  • ⁇ 2GPI can also be used, for example obtained according to the protocol described by J. Arcreme et Coll in Journal of Immunological Methods (1991), 143 p. 223 - 229.
  • Carbamylated ⁇ 2GPI is capable of forming certain complexes.
  • complexes are formed by adding ( ⁇ 2GPI) r to a biological material to separate and / or measure and / or quantify CInV.
  • the ( ⁇ 2GPI) n is used naturally and / or initially present in a biological material.
  • the method of WO 94/18569 gives satisfactory results when the biological material contains free VICs, that is to say not bound to the ⁇ 2GPI naturally present in the biological material, said free VICs being therefore likely to attach to the ⁇ 2'GPI added according to this process.
  • the response signal therefore increases as a function of the VICs having sites which are still free or, possibly, released by competition from the complexes naturally present in the biological material.
  • WO 94/18569 and a response signal is obtained, which can be an increasing function of the quantities of complex, and therefore of CI, contained in the biological material, even for very small quantities of these CI.
  • the method can possibly detect an initial state of the pathology, while the previous method is more suitable for the study of a declared state of pathology corresponding, for example, to a excess of CI or a defect of ( ⁇ 2GPI) n or the natural existence of a non-functional form of ⁇ 2GPI for the link to (x) CI.
  • the detection and / or quantification is carried out in the medium where the complex is formed, after fixing or not of said medium by a physical, chemical or biochemical method, for example on a surface, or without fixing said medium; in the second case, the support can advantageously be a solid support.
  • the ⁇ 2GPI / CI complex is retained by means of the ⁇ 2GPI part of the complex, by providing a support with a compound which binds to said ⁇ 2GPI part; then, the part of the complex corresponding to the CIs is separated / detected / quantified by any appropriate means.
  • the ⁇ 2GPI / CI complex is retained via the CI part of said complex by fixing the latter to a support provided with a compound which binds to said CI part of the complex; then, the ⁇ 2GPI part of said complex is detected and / or separated and / or quantified by any suitable means, advantageously using specific antibodies for ⁇ 2GPI, in particular conjugates.
  • suitable means advantageously using specific antibodies for ⁇ 2GPI, in particular conjugates.
  • the native presence or addition of detergent (s) or lipid (s) can help the binding of these antibodies.
  • the invention it is possible to carry out the detection by visualization and / or counting of a structure characteristic of the IC, in particular by sight, or by microscopy (in particular optical, electronic, UV) by detecting the (B2GPI) n associated with (x ) CI on these structures, in particular using a specific labeled antibody, for example conjugated to an enzymatic or fluorescent molecule.
  • the CI (s), complexed or not, of the biological material can be physically, chemically or biologically attached to a support, or in the liquid phase (in particular acid, ketonic, alcoholic, paraffinic, or aldehyde).
  • the detection or assay of the CIs in the biological material can be done using a signal analysis device such as number, volume, size, shape of particles or structures, for example in cytometry, of flow in particular. .
  • the ⁇ 2GPI / CI complex is retained on a support by means of a compound which binds to one of the B2GPI or CI parts of the complex, the complex attached to said biological material is separated said support and we separate and / or detect and / or quantify and / or dose said complex (CI / ⁇ 2GPI) by recognition of the other part of the complex.
  • the support is advantageously a solid support: it can be a membrane, for example made of nitrocellulose, or a titration microplate, for example an ELISA microplate, or an observation slide.
  • the attachment to the support of the compound which binds to one of the parts of the complex, an antibody for example, is carried out by reaction of reactive groups of the said compound on the reactive sites of the support. This reaction is preferably carried out at a temperature between 0 and 40 ° C; the compound which binds to one of the parts of the complex is advantageously placed in a buffer having a pH of between 4.5 and 10.5, preferably between 6.5 and 7.5; this buffer can advantageously be of the phosphate or acetate type.
  • the support is advantageously kept in contact with the buffer containing the compound at a temperature between 0 and 40 ° C for an incubation time between 30 min and 24 hours. After incubation, the unreacted buffer is separated from the support, and the support is washed, preferably with a buffer identical to the previous one, except that it does not contain the above-mentioned compound. It may be necessary to saturate the active sites of the support, which have not reacted with said compound; in this case, other active groups are reacted on these active sites; advantageously used for this purpose, a solution of serum albumin, bovine for example, or casein and / or polyvinyl pyrrolidone and / or gelatin and / or detergent, simultaneously or successively.
  • the support is preferably rinsed and dried.
  • the support, on which the compound binding to the complex is fixed, is then brought into contact with a biological material, in particular liquid, containing the CI to be sought.
  • this biological material is diluted using a buffer giving a pH of between 4.5 and 10.5, preferably between 5.6 and 7.5.
  • the reaction on the support is preferably carried out at a temperature between 0 and 40 ° C, advantageously close to 37 ° C, for a period whose duration is between 30 minutes and 24 hours.
  • the solution containing the CI, which has not reacted, is advantageously then separated from the support; the support is optionally washed with a saline solution, preferably buffered.
  • the compound binding to ⁇ 2 GP I can be an antibody recognizing ⁇ 2 GP I or another protein, for example of viral or cellular origin, prokaryotic or eukaryotic, such as an albumin or a biological compound, for example a fatty acid or a lipid, such as a phospholipid, or a chemical compound, for example dextran sulfate, heparin sulfate or a detergent.
  • a free or activated radical of the support can bind ⁇ 2GPI, sometimes preferentially.
  • the separation and / or the assay and / or the quantification of the CI of the B2GPI / CI complex linked to the support by B2GPI can be done by any known means, such as infectivity, a specific enzymatic reaction, a tracer, for example fluorescent or radiolabelled, detection of specific nucleic acids by hybridization with a labeled probe, a chain reaction obtained with a polymerase (technique called "PCR” or “polymerase chain reaction”), an assay, a count, a visualization, an optical process , (electro) microscopy.
  • the detection and / or the assay are preferably carried out using an antibody which specifically recognizes the proteins of the ICs to be detected.
  • this antibody can be conjugated to an enzymatic marker, for example peroxidase; excess antibody is washed away; then adding, in a known manner, a specific substrate of the enzyme conjugated to the antibody, substrate which is transformed, under fixed conditions, into a colored product; the formation of said colored product indicates the presence of the desired CI and allows a dosage of this CI. It is also possible to use an antibody against the IC coupled to an isotopic marker and then detected by radio measurement.
  • an enzymatic marker for example peroxidase
  • the attachment to the support is made via the CI part of the complex, specifically if a specific detection is desired, it is revealed with ⁇ 2GPI, advantageously conjugated with a marker.
  • the IC can be fixed, either directly on the support, or indirectly, for example by means of an antibody.
  • the label can advantageously be an enzyme, a radioactive product, or a fluorescent product.
  • the fixation of the CI on the support can be done by reaction of reactive groups of the CI on the reactive sites of the support when the fixing is direct, or by fixing of a compound, for example an antibody, on the reactive sites of the support and fixing CI on said compound previously fixed on the support.
  • the detection of the ⁇ 2 GP I part of the fixed complex by means of a compound binding the CI part can be done by any appropriate means, but advantageously using antibodies specific for ⁇ 2 GP I, for example conjugated .
  • the subject of the invention is also a solid support for the implementation of the process defined above, characterized in that it is capable of fixing one of the elements of the B2GPI / CI complex or a substance capable of fixing one of the elements of said complex.
  • EXAMPLE 1 Visualization of Leishmanias a) Use of fluorescent ⁇ 2'GPI A suspension of Leishmania infantum promastigotes obtained by in vitro culture on blood agar is fixed with acetone at 0 ° C. for 10 min on a slide for object observation under an optical microscope. The blade is then immersed for 5 min in a phosphate buffer, hereinafter referred to as "TP", containing 0.01 M of sodium and disodium phosphates and 0.15 M of sodium chloride at a pH of 7.2 ⁇ 0.1.
  • TP phosphate buffer
  • the ⁇ 2'GPI is coupled to fluorescein; it is then deposited at a concentration of 20 ⁇ g / ml and 2 ⁇ g / m 1 on the fixed suspension of promastigotes, then left for 30 min at 20 ° C in a humid chamber.
  • the elimination of the non-fixed fluorescent ⁇ 2'GPI is done by immersing the slides for 5 min in two successive TP baths. The fluorescence of the parasites, especially around them, testifies to the formation of complexes and makes it possible to visualize and identify them.
  • Example 2 The same manipulation as in Example 1 was carried out with Toxoplasma gondji and the fluorescence of the parasite was observed with at least 20 ⁇ g / ml of fluorescent ⁇ 2'GPI.
  • EXAMPLE 4 Detection of soluble Leishmania infantum antigens
  • the support used is a microtiter plate, of micro-ELISA type, with 96 wells and flat bottom, on which soluble antigens of Leishmania infantum are fixed. This sensitized support is distributed by the company BIOKEMA-Affinity Products (Switzerland).
  • a solution of peroxidase-labeled ⁇ 2'GPI is prepared having a concentration of 10 ⁇ g / ml in an acetate buffer containing 0.05 mol / 1 of acetic acid and sodium acetate, 0.01% bovine serum albumin and 0.05% by weight of "Triton XI 00", this buffer having a pH of 5.6 ⁇ 0.1, 100 ⁇ l are added per well of the preceding solution and left incubate for 1 h 30 at 37 ° C. Following this incubation, the contents of the wells of the plate are aspirated. 300 ⁇ l of phosphate buffer are introduced into each well and after a contact time of 2 minutes, the buffer is aspirated: this washing operation is repeated 3 times.
  • a nitrocellulose membrane was used on which Borrelia antigens (donated by I. Nilsson) are transferred, after electrophoresis.
  • alkaline phosphatase The activity of alkaline phosphatase is revealed in the presence of nitro- blue-tetrazolium (NBT) and debomo 4-chloro 3 ondolyl phosphate (BCIP), in a 50 mM solution of tri (hydroxymethyl) aminomethane, neutralized with hydrochloric acid (TrisHCl) up to pH 8.8 and 0.1 M NaCl.
  • NBT nitro- blue-tetrazolium
  • BCIP debomo 4-chloro 3 ondolyl phosphate
  • TrisHCl hydrochloric acid
  • a solution of recombinant proteins p26-HIV2 ROD provided by the company "TRANSGENE" having a concentration of 2 ⁇ g / ml is prepared, in a phosphate buffer containing 0.01 mol / 1 of sodium and disodium phosphates and 0.15 mol / 1 sodium chloride and having a pH of 7.00 ⁇ . 0.05. 100 ⁇ l of this solution are deposited at the bottom of each well of the microplate. This is then incubated at * + * 4 ° C for 18 hours. The liquid from each well is then aspirated. Then introduced into each well 300 to 400 ⁇ l of phosphate buffer described above containing the detergent sold under the trade name "TX100" at 0.05% by weight. It is left in contact with the support for 3 minutes and the buffer is aspirated; this washing operation is carried out three times.
  • the serum sample is diluted ten, one hundred, or one thousand times in acetate buffer containing 0.05 mol / l. acetic acid and sodium acetate, 0.5% by weight of TX100, 0.01% by weight of bovine serum albumin, having a pH of 5.6 _ + _ 0.1, 100 ⁇ l are deposited of solution at the bottom of each well of the plate prepared as above. The plate is incubated at 37 ° C for a period of 90 minutes.
  • washing is carried out by introducing into each well 300 ⁇ l of phosphate buffer containing TX100 at 0.05% by weight; left in contact for 2 minutes and the buffer solution is aspirated; this washing operation is repeated four times. Then added, per well, 100 ⁇ l of a solution of specific monoclonal antibody against the HBs antigen of the hepatitis B virus conjugated to peroxidase. The plate is left to incubate at 37 ° C for 60 minutes. Following this incubation, the contents of the wells of the plate are aspirated. 300 ⁇ l of phosphate buffer containing 0.05% by weight of TX100 is introduced into each well and, after a contact time of 2 minutes, the buffer is aspirated; this washing operation is repeated five times.
  • Example 6 The same procedure was used as for Example 6, except that, on the support, is fixed a monoclonal antibody directed against ⁇ 2GPI, called "8C3" (gift from J. Arêt). Similar results have been obtained.
  • the fluorescent ⁇ 2GPI is incubated with cells of the "CEM 'line 10 ⁇ / ml) pre-rinsed twice in PBS buffer for 1 h at 37 ° C. After 3 washes in PBS buffer, the cells are fixed by
  • the compound linking part ( ⁇ 2GPI) n is human serum albumin (HSA) purified according to the method described in WO93 / 21228.
  • ELISA plates (Nunc Maxisorb) are preloaded with a solution of 1% HSA in 0.1 M Trisglycin pH 8.8, then washed extensively in PBS pH 7.2.
  • HBsAg - serum or a healthy donor serum are incubated at the dilution of the thousandth in sodium acetate (50 mM, pH 5.6) for 1 hour at 37 ° C and the experiment carried out as in Example 6 but in the absence of TX100.
  • Donor serum or serum-free controls give no significant signal ( ⁇ 0.05 udo).
  • the HBsAg serum gives a significant signal ( ⁇ 1.5 udo). HBsAg is therefore captured.
  • the serum dilution is incubated: a) in the presence of 800 ⁇ g / ml of HSA, the signal is lowered by more than 80% indicating that the link is made to the HSA fixed to the support; b) in the presence of 4 ⁇ g / ml of ⁇ 2GPI, ie only 20 times the quantity of internal ⁇ 2 originating from the serum, the signal is lowered by almost 40%, signifying that a part of the internal complexes is fixed to the support. If a similar experiment is carried out without preloading the plates, it is observed that the HBs is also revealed, inhibited at 97% by preincubation in the presence of HSA and at 65% in the presence of added ⁇ 2GPI.
  • EXAMPLE 1 1 - Formation of a complex of ( ⁇ 2'GPI) r with proteins of Mycoplasma penetrans The procedure was as in Example 5 on nitrocellulose strips containing a few micrograms of CI treated with 2% octyl glucoside, saturated according to the EURIS process - 14, rue du
  • Tetanus toxoid (ELOCORIDE, Behring) was transferred after electrophoresis in 10% acrylamide gel on nitrocellulose, at a rate of approximately 0.5 to 2 ⁇ g / mm 2 •
  • a detergent and / or a lipid in particular a phospholipid, can promote the interaction with viral proteins, if not participate in said interaction, and that the link to albumin is of another nature since it is sensitive to the detergents used.
  • detergent s
  • phospholipid s
  • a detergent or a lipid is necessary for the formation of the ⁇ 2GPI / CI complex.

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Abstract

L'invention concerne un procédé de séparation et/ou de détection et/ou de quantification de composés infectieux (CI) dans un matériau biologique, caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie un complexe beta 2GPI/CI pris dans le groupe formé par: a) les complexes ( beta 2GPI)n/CI, b) les complexes ( beta 2GPI)r/CInV.

Description

PROCÉDÉ DE SÉPARATION ET/OU DE DÉTECTION ET/OU DE QUANTIFICATION DE COMPOSÉ(S) INFECTIEUX ET SUPPORT POUR LA MISE EN OEUVRE DU PROCÉDÉ.
La présente invention concerne un procédé de séparation et/ou de détection et/ou de quantification de composé(s) infectieux dans un matériau biologique et un support pour la mise en oeuvre du procédé.
Selon la présente invention, on entend par composés infectieux, ci-après désignés de façon générique en abrégé par "CI", aussi bien des composés, en particulier protéiniques, constitutifs d'un agent infectieux, que des structures qui comprennent des composés infectieux. Ces structures sont, notamment, ou bien des agents infectieux endogènes ou exogènes, complets ou incomplets, leurs métabolites ou encore des assemblages contenant des composés constitutifs de ces agents infectieux, assemblages qui présentent certaines propriétés desdits agents infectieux, notamment la propriété d'être détectés par certains anticorps spécifiques de composés infectieux ; les CI peuvent être aussi des composés spécifiquement induits dans l'organisme par les CI précédemment définis, ou par l'expression de gènes s 'exprimant de façon anormale. Parmi les CI on peut citer, par exemple, les virus, les bactéries, les champignons, les mycoplasmes, les parasites et des cellules animales anormales. On désignera ci-après par "CIV" un composé infectieux viral et par "CInV" un composé infectieux non-viral, c'est-à-dire de type autre que seulement viral.
On entend ici par "matériau biologique", un tissu biologique, une préparation ou un extrait issu de tissu biologique, liquide ou solide, ou un milieu naturel susceptible de contenir un composé infectieux au sens ci-dessus défini (par exemple, une eau d'écoulement). Le matériau peut aussi être un mélange d'au moins deux matériaux tels que ci-dessus définis. Un tel matériau biologique peut donc être, notamment, soit préparé à partir de tissus, d'organes, de selles ou de liquides biologiques d'un malade atteint d'une infection, par exemple virale, bactérienne, parasitaire, mycosique ou mycoplasmique, soit obtenu à partir de cultures "in vitro" ; un tel matériau biologique peut aussi être un sérum, du plasma, de l'urine, du liquide céphalorachidien, du liquide synovial, du liquide péritonéal, du liquide pleural, du liquide séminal ou du liquide ascitique.
On sait que la β2-glycoprotéine I, ci-après en abrégé "β2GPI" , est une glycoprotéine plasmatique, dont la séquence a été notamment indiquée dans les articles de J. LOZIER et coll. Proc. Natl. Acad. Sci. ISA, Vol. 81 , pages 3640-3644, Juillet 1984 et de T. KRISTENSEN et coll. , FEBS Letters, Vol. 289, 1991 , pages 183-186. La β2GPI est également appelée Apolipoprotéine H. Il a été constaté que cettre protéine présente un polymorphisme : la dénomination β2GPI sera ci-après considérée comme générique pour toutes les formes.
Dans la demande internationale WO 94/18569, on a indiqué que certains composés viraux se fixaient de façon spécifique sur une forme de β2GPI, à savoir celle décrite dans la demande de brevet français 2 701 263, que cette forme de β2GPI soit à l'état pur ou dans une composition protéinique la contenant ; cette forme de β2GPI est isolée à partir du résidu fixé sur la (les) colonne(s) de chromatographie d'affinité utilisée(s) dans le procédé de purification de l'albumine du plasma sanguin décrit dans FR-A-2 690 444 ; elle a un poids moléculaire de 50 000 ± 3 000 daltons ; dans le cadre de la présente demande de brevet, cette forme de β2GPI a été désignée en abrégé par "β2'GPI" . On a donc proposé dans WO 94/18569 un procédé de détection et/ou de dosage de composés viraux dans lequel on fixe les composés viraux (CIV) à l'aide de β2'GPI. Dans un tel procédé, on ajoute donc la β2'GPI sur des CIV contenus dans un matériau biologique, de façon à séparer les CIV ainsi capturés pour ensuite les détecter et/ou les doser.
De façon générale, on appellera ici "complexe(s)" , une association directe ou indirecte, entre au moins un CI et une β2GPI : ces complexes seront, de façon générale, désignés ci-après par la notation "β2GPI/CI" . Le procédé décrit dans WO 94/18569 détecte et/ou dose des complexes CIV/β2'GPI entre des composés viraux CIV et la β2'GPI, à l'état pur ou dans une composition protéinique la contenant, la β2'GPI étant ajoutée au matériau biologique contenant les CIV à détecter et/ou doser. On désignera ici par (β2GPI)n, la (ou les) forme(s) de β2GPI naturellement présente(s) dans le matériau biologique avant mise en oeuvre du procédé ci-après décrit, et non intentionnellement rajoutée en tant que telle. On désignera par (β2GPI)r la (ou les) forme(s) de r β2GPI que l'on rajoute intentionnellement pour former les complexes CI/β2GPI précédemment définis.
Selon la présente invention, on a trouvé, de façon nouvelle, qu'il était possible de séparer, détecter et/ou quantifier à partir d'un matériau biologique des complexes CI/β2GPI, autres que ceux décrits dans WO 94/18569, à savoir : des complexes (β2GPI)n/CI, où la partie CI peut être de type viral CIV OU non viral CInV, et la partie (β2GPI)n provient naturellement du matériau biologique étudié, des complexes (β2GPI)r/CInV ou la partie (β2GPI)r est rajoutée intentionnellement et préparée sous différentes formes à cet effet, pure ou en mélange, et la partie CInV provient des composés infectieux non viraux du matériau biologique étudié.
La présente invention a donc pour objet un procédé de séparation et/ou de détection et/ou de quantification de composés infectieux (CI) dans un matériau biologique, caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie un complexe β2GPI/CI pris dans le groupe formé par : a) les complexes (β2GPI)n/CI b) les complexes (β2GPI)r/CInV De façon générale, pour certaines applications du procédé, la β2GPI, comme les CI, peuvent être d'origine animale ou produits par génie génétique et/ou chimique. Le procédé trouve son application tant pour l'homme que pour l'animal.
Selon l'invention, on procédera à l'identification de la partie β2GPI des complexes par sa reconnaissance, à l'aide d'une (de) substance(s) se liant à cette partie, préférentiellement ou non, ou spécifiquement, et l'on identifiera la partie CI par tout moyen adapté.
La formation des complexes peut être directe ou indirecte, médiée ou favorisée par certains adjuvants, qui peuvent être chimiques, biochimiques ou biologiques, tels que certains lipides ou détergents, notamment des phospholipides. Les complexes peuvent se former pendant la préparation du matériau biologique et/ou durant un (des) stades du procédé.
Comme indiqué précédemment, les CI comprennent les CIV et les CInV. Parmi les CIV, on peut citer notamment ceux du groupe formé par HIV1 , HIV2, HBV, HSV, des particules ou protéines d'origine virale ; parmi les CInV, on peut citer notamment ceux du groupe formé par les bactéries, les parasites, les champignons et les mycoplasmes, et plus particulièrement : pour les bactéries : Borellia ; et pour les parasites : Leishmania, infantum notamment, Toxoplasma gondii, Entamoeba histolytica.
Avantageusement, la β2GPI retenue dans le(s) complexe(s) peut, suivant les modes de mise en oeuvre du procédé, avoir été marquée ou non, ; ce marquage, préalable ou non, peut être effectué, par exemple , au moyen d'un anticorps, d'une enzyme, d'un produit radioactif, d'un produit fluorescent ou d'un agent métallique.
Selon la présente invention, on pourra réaliser un test polyspécifique susceptible de détecter différents agents infectieux, notamment en utilisant, simultanément ou successivement, une méthode de détection différente pour chacun, par exemple un anticorps conjugué à la phosphatase alkaline contre p26HIV2 puis un anticorps conjugué à la peroxydase contre HBsAg.
Dans un premier sous-ensemble de modes de mise en oeuvre de la présente invention, où l'on rajoute une (β2GPI)r extérieure au milieu biologique, on peut utiliser, pour la partie β2GPI du complexe, comme forme de β2GPI, la β2'GPI pure ou sous forme de composition protéinique contenant, en particulier, d'autres glycoprotéines ; cette composition peut, e-n particulier, être celle obtenue par élution d'une colonne d'affinité sur un gel portant des groupes sulfates comme décrit dans la demande de brevet français 2 701 263. Mais on peut aussi utiliser d'autres formes de β2GPI, par exemple obtenue selon le protocole décrit par J. Arvieux et Coll dans Journal of Immunological Methods (1991), 143 p. 223 - 229. La β2GPI carbamylée est susceptible de former certains complexes.
Dans les modes de mise en oeuvre appartenant au premier sous-ensemble précédemment défini, on forme des complexes en rajoutant de la (β2GPI)r à un matériau biologique pour séparer et/ou doser et/ou quantifier des CInV.
Selon un deuxième sous-ensemble de modes de mise en oeuvre du procédé selon l'invention, on utilise la (β2GPI)n naturellement et/ou initialement présente dans un matériau biologique. On sait que le procédé de WO 94/18569 donne des résultats satisfaisants lorsque le matériau biologique renferme des CIV libres, c'est-à-dire non fixés à la β2GPI naturellement présente dans le matériau biologique, lesdits CIV libres étant, par conséquent, susceptibles de se fixer à la β2'GPI rajoutée selon ce procédé. Dans ce procédé, le signal de réponse croît donc en fonction des CIV ayant des sites encore libres ou, éventuellement, libérés par compétition des complexes naturellement présents dans le matériau biologique. En revanche, on peut supposer, dans certains cas, par exemple en début d'infection, que les CIV sont présents en quantité faible par rapport à la (β2GPI)n naturellement présente et que lesdits CIV sont donc majoritairement fixés à la (β2GPI)n sous forme de complexes (β2GPI)n/CI. Le test proposé dans la demande WO 94/18569 peut alors être non significatif, puisque les CIV ainsi complexés peuvent être masqués. Selon ce deuxième sous-ensemble de l'invention, on se propose donc d'observer et/ou de séparer et/ou de détecter et/ou de quantifier des CI se trouvant dans un matériau biologique, notamment dans le cas où ces composés sont en quantité telle, par rapport à la (β2GPI)n habituellement présente, qu'ils soient majoritairement complexés(ables) à au moins une des formes de (B2GPI)n ou encore dans le cas où lesdits CI ne sont pas déplaçables par l'introduction de (β2GPI)r.
Etant donné que, selon ce deuxième sous-ensemble de modes de mise en oeuvre selon l'invention, on n'a ajouté aucune B2GPI, on évite le phénomène de masquage du procédé de
WO 94/18569 et on obtient un signal de réponse, qui peut être fonction croissante des quantités de complexe, et donc de CI, contenues dans le matériau biologique, même pour des quantités très faibles de ces CI. Le procédé peut permettre de détecter éventuellement un état initial de la pathologie, alors que le procédé antérieur est plus approprié à l'étude d'un état de pathologie déclarée correspondant, par exemple, à un excès de CI ou à un défaut de (β2GPI)n ou à l'existence naturelle d'une forme de β2GPI non fonctionnelle pour le lien au(x) CI.
Il est à noter que ces deux sous-ensembles de mise en oeuvre ne s'excluent pas l'un l'autre. Pour mettre en oeuvre le procédé selon l'invention, on peut effectuer la détection des CI sans fixation préalable du complexe β2GPI/CI sur un support ou avec fixation dudit complexe sur un support par un élément constitutif du complexe ; dans le premier cas, la détection et/ou la quantification s'effectue dans le milieu où le complexe s'est formé, après fixation ou non dudit milieu par une méthode physique, chimique ou biochimique, par exemple sur une surface, ou sans fixation dudit milieu ; dans le deuxième cas, le support peut, avantageusement, être un support solide.
Dans la présente description, on utilise le terme de fixation au support sans préjuger du moment où le complexe est formé.
Selon une variante de l'invention, on retient le complexe β2GPI/CI par l'intermédiaire de la partie β2GPI du complexe, en munissant un support d'un composé se liant à ladite partie β2GPI ; ensuite, la partie du complexe correspondant aux CI est séparée/détectée/quantifiée par tout moyen approprié.
Selon une autre variante de l'invention, on retient le complexe β2GPI/CI par l'intermédiaire de la partie CI dudit complexe en fixant cette dernière à un support muni d'un composé se liant à ladite partie CI du complexe ; ensuite, on détecte et/ou sépare et/ou quantifie la partie β2GPI dudit complexe par tout moyen approprié, avantageusement à l'aide d'anticorps spécifιque(s) de la β2GPI, conjugués notamment. La présence native ou le rajout de détergent(s) ou lipide(s) peut aider la fixation de ces anticorps.
Selon l'invention, on peut procéder à la détection par visualisation et/ou numération d'une structure caractéristique du CI notamment à vue, ou en microscopie (notamment optique, électronique, UV) en détectant la (B2GPI)n associée au(x) CI sur ces structures, notamment à l'aide d'un anticorps spécifique marqué, par exemple conjugué à une molécule enzymatique ou fluorescente. Le(s) CI, complexé(s) ou non, du matériau biologique peuvent être physiquement, chimiquement ou biologiquement fιxé(s) à un support, ou en phase liquide (notamment acide, cétonique, alcoolique, paraffinique, ou aldéhydique). On peut aussi utiliser un double marquage spécifique de chaque partie pour détecter le complexe, notamment à l'aide d'anticorps spécifiques de chaque partie, conjugués à 2 traceurs différents, par exemple fluorescents à différentes longueurs d'ondes. Enfin, la détection ou dosage des CI dans le matériau biologique peut se faire à l'aide d'un appareil d'analyse de signaux tels que nombre, volume, taille, forme de particules ou structures, par exemple en cytométrie, de flux notamment. Selon une autre variante de l'invention, on retient sur un support le complexe β2GPI/CI par l'intermédiaire d'un composé se liant à l'une des parties B2GPI ou CI du complexe, on sépare dudit matériau biologique le complexe fixé sur ledit support et l'on sépare et/ou détecte et/ou on quantifie et/ou on dose ledit complexe (CI/β2GPI) par reconnaissance de l'autre partie du complexe.
Le support est avantageusement un support solide : ce peut être une membrane, par exemple en nitrocellulose, ou une microplaque de titration, par exemple une microplaque ELISA, ou une lame d'observation. La fixation sur le support du composé se liant à une des parties du complexe, un anticorps par exemple, se fait par réaction de groupes réactifs dudit composé sur les sites réactifs du support. Cette réaction est, de préférence, effectuée à une température comprise entre 0 et 40°C ; le composé se liant à une des parties du complexe est, avantageusement, mis dans un tampon ayant un pH compris entre 4,5 et 10,5, de préférence entre 6,5 et 7,5 ; ce tampon peut être avantageusement du type phosphate ou acétate. Le support est avantageusement maintenu en contact avec le tampon contenant le composé à une température comprise entre 0 et 40°C pendant un temps d'incubation compris entre 30 mn et 24 heures. Après incubation, on sépare du support le tampon, qui n'a pas réagi, et on effectue un lavage du support, de préférence avec un tampon identique au précédent, à cette différence près qu'il ne contient pas le composé susmentionné. Il peut être nécessaire de saturer les sites actifs du support, qui n'ont pas réagi avec ledit composé ; dans ce cas, on fait réagir sur ces sites actifs d'autres groupes actifs ; on utilise avantageusement dans ce but, une solution d'albumine sérique, bovine par exemple, ou de caséine et/ou de polyvinyl pyrrolidone et/ou de gélatine et/ou de détergent, simultanément ou successivement. Après réaction, le support est, de préférence, rincé et séché. Le support, sur lequel est fixé le composé se liant au complexe, est ensuite mis en contact avec un matériau biologique, liquide notamment, contenant le CI à rechercher. On dilue, avantageusement, ce matériau biologique à l'aide d'un tampon donnant un pH compris entre 4,5 et 10,5, de préférence entre 5,6 et 7,5. La réaction sur le support est, de préférence, effectuée à une température comprise entre 0 et 40°C, avantageusement voisine de 37°C, pendant une période dont la durée est comprise entre 30 minutes et 24 heures. On sépare avantageusement ensuite du support la solution contenant le CI, qui n'a pas réagi ; on effectue éventuellement un lavage du support avec une solution saline, de préférence tamponnée.
Dans le cas où la fixation du complexe sur un support s'effectue par la partie β2 GP I du complexe, le composé se liant à la β2 GP I peut être un anticorps reconnaisant la β2 GP I ou une autre protéine, par exemple d'origine virale ou cellulaire, procaryote ou eucaryote, telle une albumine ou un composé biologique, par exemple un acide gras ou un lipide, tel un phospholipide, ou un composé chimique, par exemple le dextran sulfate, l'héparine sulfate ou un détergent. Un radical libre ou activé du support peut lier la β2GPI, quelquefois préférentiellement. La séparation et/ou le dosage et/ou la quantification du CI du complexe B2GPI/CI lié au support par la B2GPI peut se faire par tout moyen connu, tel que l'infectiosité, une réaction enzymatique spécifique, un traceur par exemple fluorescent ou radiomarqué, la détection d'acides nucléiques spécifiques par hybridation avec une sonde marquée, une réaction en chaîne obtenue avec une polymérase (technique dite "PCR" ou "polymérase chain reaction"), un dosage, une numération, une visualisation, un procédé optique, une (électro)microscopie. Mais la détection et/ou le dosage se font, de préférence, à l'aide d'un anticorps reconnaissant spécifiquement des protéines des CI à détecter. De façon connue, cet anticorps peut être conjugué à un marqueur enzymatique, par exemple la peroxydase ; l'excès d'anticorps est éliminé par lavage ; on ajoute ensuite, de façon connue, un substrat spécifique de l'enzyme conjugué à l'anticorps, substrat qui se transforme, dans des conditions fixées, en un produit coloré ; la formation dudit produit coloré indique la présence du CI recherché et permet un dosage de ce CI. On peut également utiliser un anticorps contre le CI couplé à un marqueur isotopique puis détecté par radio-mesure.
Dans le cas où la fixation au support se fait par l'intermédiaire de la partie CI du complexe, spécifiquement si l'on veut une détection spécifique, on le révèle avec la β2GPI, avantageusement conjuguée à un marqueur. Le CI peut être fixé, soit directement sur le support, soit indirectement, par exemple par l' intermédiaire d'un anticorps. Le marqueur peut, avantageusement, être une enzyme, un produit radioactif, ou un produit fluorescent. La fixation du CI sur le support peut se faire par réaction de groupes réactifs du CI sur les sites réactifs du support lorsque la fixation est directe, ou par fixation d'un composé, par exemple un anticorps, sur les sites réactifs du support et fixation du CI sur ledit composé préalablement fixé sur le support.
La détection de la partie β2 GP I du complexe fixé par l'intermédiaire d'un composé liant la partie CI peut se faire par tout moyen approprié, mais avantageusement à l'aide d'anticorps spécifiques de la β2 GP I, conjugués par exemple.
L'invention a aussi pour objet un support solide pour la mise en oeuvre du procédé ci-dessus défini, caractérisé par le fait qu'il est apte à fixer un des éléments du complexe B2GPI/CI ou une substance apte à fixer un des éléments dudit complexe.
Les exemples ci-après donnés, à titre purement illustratif et non limitatif, permettront de mieux comprendre l'invention. Certains ont été réalisés avec une β2'GPI obtenue selon la demande de brevet français 2 701 263.
EXEMPLE 1 - Visualisation de Leishmanies a) Utilisation de β2'GPI fluorescente Une suspension de promastigotes de Leishmania infantum obtenue par culture in vitro sur gélose au sang est fixée par l'acétone à 0°C pendant 10 mn sur une lame porte-objet pour observation au microscope optique. La lame est ensuite plongée pendant 5 mn dans un tampon phosphate, ci-après désigné par "TP" , contenant 0,01 M de phosphates monosodique et disodique et 0, 15 M de chlorure de sodium à un pH de 7,2 ± 0, 1. La β2'GPI est couplée à la fluorescéine ; elle est ensuite déposée à une concentration de 20 μg/ml et 2 μ g / m 1 sur la suspension fixée de promastigotes, puis laissée pendant 30 mn à 20°C en chambre humide. L'élimination de la β2'GPI fluorescente non fixée se fait en plongeant les lames pendant 5 mn dans deux bains successifs de TP. La fluorescence des parasites, notamment de leur pourtour, témoigne de la formation de complexes et permet de les visualiser et identifier. b) Utilisation d'un autre marquage de la β2'GPI.
Dans une autre expérience, la β2'GPI, couplée à la phosphatase alcaline désignée par "DAP" ci-après, selon Avrameas (Immunochem. (1969) 8, p. 43 - 52), a réagi avec les parasites fixés sur lame par l'acétone. Le tampon phosphate a été remplacé de façon à ne pas inhiber la phosphatase alcaline.
Le protocole réalisé à été le suivant, à température du laboratoire : réhydratation des parasites pendant 5 mn en sérum physiologique ; incubation de la β2'GPI sous forme DAP en dilution dans du tampon acétate contenant 0,05 % de détergent commercialisé sous le nom de "Triton XI 00" à 37 °C pendant 30 minutes ; 1 lavage en 50 mM Tris-HCl (pH = 8,2), 50 mM NaCl pendant 10 mn, 1 lavage en sérum physiologique pendant 10 mn, révélation de l'activité phosphatase alcaline par le système vendu sous la dénomination "fast read TR/ naphtol". Dans ces conditions, l'observation au microscope optique montre que la β2'GPI réagit encore significativement à une concentration de 1 μg/ml. c) Essais en fluorescence sur plusieurs souches de Leishmanies. Différentes speciès de Leishmanies ont été utilisées pour mettre en évidence l'interaction entre la B2'GPI fluorescente et les Leishmanies. On a ainsi teste : L. Infantum, L. Marjon, L. Guyanensis , L. Tronicer, L. Donorium, L. Braziliensis. Toutes ont montré une réaction significative avec la β2'GPI fluorescente avec addition de 0,05% TX100 et de 0,25M de NaCl pendant la réaction. EXEMPLE 2
La même manipulation qu'à l'exemple 1 a été effectuée avec Toxoplasma gondji et la fluorescence du parasite a été observée avec au moins 20 μg/ml de β2'GPI fluorescente.
Pour ces exemples 1 et 2, d'autres expériences ont permis d'augmenter la sensibilité de détection des Leishmania et Toxoplasmes par la β2'GPI fluorescente, par l'addition de 0,05 % de TX100 et de 0,25 M NaCl dans le tampon d'incubation. Des mélanges de parasites (Leishmanies) et de GR de lapin ou humain ont été fixés sur lame par l'acétone puis mis en réaction dans les conditions améliorées ci-dessus. L'image observée montre un net contraste entre les parasites fortement fluorescents et les érythocytes très faiblement marqués. A titre de contrôle, un autre réactif fluorescent que la β2'GPI, composé de F(ab')c de lapins immunopurifiés et couplés à la fluorescéine, spécifiques des IgG de chèvres et n'ayant donc à priori aucune spécificité pour les parasites, a été réalisé dans ces conditions améliorées ci-dessus, à des concentrations identiques, en protéines et Fluorescéine à celles de la β2'GPI fluorescente. Ce réactif, ainsi d'ailleurs qu'une solution de Fluorescéine pure de concentration comparable, utilisé dans les mêmes conditions, ne donne qu'une fluorescence très faible sur des parasites, de l'ordre du "bruit de fond" . EXEMPLE 3 La même manipulation qu'à l'exemple 1 a été effectuée sur
Entamoeba histolytica et la fluorescence du parasite a été observée avec au moins 20 μg/ml de β2'GPI fluorescente. EXEMPLE 4 Détection d'antigènes solubles de Leishmania infantum Le support utilisé est une plaque de microtitration, de type micro-ELISA, à 96 puits et à fond plat, sur lequel sont fixés des antigènes solubles de Leishmania infantum. Ce support sensibilisé est distribué par la société BIOKEMA-Affinity Products (Suisse).
On prépare une solution de β2'GPI marquée à la peroxydase ayant une concentration de 10 μg/ml dans un tampon acétate contenant 0,05 mole/1 d'acide acétique et d'acétate de sodium, 0,01 % d'albumine bovine sérique et 0,05 % en poids de "Triton XI 00" , ce tampon ayant un pH de 5,6 ± 0,1 , On ajoute 100 μl par puits de la solution précédente et on laisse incuber pendant 1 h 30 à 37 °C. A la suite de cette incubation, le contenu des puits de la plaque est aspiré. On introduit 300 μl de tampon phosphate dans chaque puits et après un temps de contact de 2 minutes, on aspire le tampon : cette opération de lavage est renouvelée 3 fois.
On ajoute par puits 100 μl d'une solution d'o-phénylène- diamine OPD, 2 HC1 dans un tampon citrate de sodium. On laisse incuber pendant 30 minutes à température ambiante, puis on arrête la réaction en rajoutant à chaque puits 50 μl de H2SO4, 2N. On mesure en unités de densité optique (UDO) l'absorbance à 492 nm obtenue en fin de réaction, cette mesure étant faite à l'aide d'un robot lecteur de plaque. Les résultats obtenus démontrent une reconnaissance des antigènes solubles de Leishmania infantum par la β2'GPI. Les mêmes résultats sont obtenus en utilisant de la β2'GPI non marquée. La liaison ensuite révélée à l'aide d'un anticorps monoclonal anti-β2'GPI marqué à la peroxydase. EXEMPLE 5 Liaison de la β2'GPI sur des antigènes de Borrelia
On a utilisé une membrane de nitrocellulose sur laquelle sont transférés, après électrophorèse, des antigènes de Borrelia (don de I. Nilsson).
On fait réagir pendant 1 h 30 à température ambiante sur ladite membrane environ 40 ng de B2'GPI, couplée à de la phosphatase alcaline, en solution dans 1 ml de tampon acétate (acide acétique/acétate de sodium) à 0,05 mole/1, contenant 0,1 % en poids de gélatine et 0,5 % de "TX100" , ce tampon ayant un pH de 5.6 ± 0, 1. On rince ensuite une fois avec un tampon acétate à 0,05. mole/1, contenant 0,05 % en poids de "TX100" et ayant un pH de 5,6 ± 0, 1. On rince ensuite deux fois avec du tampon phosphate contenant 0,01 mole/1 de phosphates monosodique et disodique, 0, 15 mole/1 de chlorure de sodium, 0,05 % en poids de "TX100" , ce tampon ayant un pH de 7,00 ± 0, 1. On révèle l'activité de la phosphatase alcaline en présence de nitro-blue-tétrazolium (NBT) et debomo 4-chloro 3 ondolyl phosphate (BCIP), dans une solution à 50 mM de tri(hydroxyméthyl) aminométhane, neutralisé par l'acide chlorydrique (TrisHCl) jusqu'à pH 8,8 et à 0, 1 M de NaCl. On voit sur la membrane que la β2'GPI permet de révéler la présence d'antigènes de Borrelia Afzelii, notamment ceux qui pourraient indiquer une pathogénicité, par exemple p39, osp B, osp A, osp C, selon les désignations indiquées dans la publication de Ingrid Nilsson et autres (Serodiagn. Immunother. Infect. Disease, 1993, £, p. 245-250). Dans les mêmes conditions, il n'y a pas de réaction avec la phosphatase alcaline seule. EXEMPLE 6 - Détection de l'antigène HBs du virus de l'hépatite B Le support utilisé est une plaque de microtitration de type micro-ELISA à 96 puits et à fond plat, commercialisée par la société "DYNATECH" . On prépare une solution de protéines recombinantes p26-HIV2 ROD fournies par la société "TRANSGENE" ayant une concentration de 2 μg/ml, dans un tampon phosphate contenant 0,01 mole/1 de phosphates monosodique et disodique et 0, 15 mole/1 de chlorure de sodium et ayant un pH de 7,00 ±. 0,05. On dépose 100 μl de cette solution au fond de chaque puits de la microplaque. Celle-ci est ensuite incubée à *+* 4°C pendant 18 heures. Le liquide de chaque puits est ensuite aspiré. On introduit ensuite dans chaque puits 300 à 400 μl de tampon phosphate décrit ci-dessus contenant le détergent vendu sous la dénommination commerciale "TX100" à 0,05 % en poids. On laisse en contact avec le support pendant 3 minutes et on aspire le tampon ; cette opération de lavage est effectuée trois fois.
On a utilisé trois échantillons de sérum de donneurs sains et quatre échantillons de sérum de malades infectés par le virus de l'hépatite B. L'échantillon sérique est dilué dix, cent ou mille fois dans du tampon acétate contenant 0,05 mole/1 d'acide acétiqu et d'acétate de sodium, 0,5 % en poids de TX100, 0,01 % en poids d'albumine sérique bovine, ayant un pH de 5,6 _+_ 0, 1. On dépose 100 μl de solution au fond de chaque puits de la plaque préparée comme ci- dessus. La plaque est incubée à 37°C pendant une période de 90 minutes. Après cette incubation, on effectue un lavage en introduisant dans chaque puits 300 μl de tampon phosphate contenant du TX100 à 0,05 % en poids ; on laisse en contact pendant 2 minutes et on aspire la solution de tampon ; on renouvelle quatre fois cette opération de lavage. On ajoute ensuite, par puits, 100 μl d'une solution d'anticorps monoclonal spécifique contre l'antigène HBs du virus de l'hépatite B conjugué à la peroxydase. On laisse la plaque incuber à 37 °C pendant 60 minutes. A la suite de cette incubation, le contenu des puits de la plaque est aspiré. On introduit dans chaque puits 300 μl de tampon phosphate, contenant 0,05 % en poids de TX100 et, après un temps de contact de 2 minutes, on aspire le tampon ; cette opération de lavage est renouvelée cinq fois.
On ajoute, par puits, 100 μl d'une solution de d'o-phénylène diamine, 2HCL dans un tampon de citrate de sodium.
On laisse incuber pendant 30 minutes à température ambiante, puis on arrête la réaction en rajoutant à chaque puits 50 μl de H2SO4, 2N. On mesure l'absorbance à 492 nm obtenue en fin de réaction à l'aide d'un robot lecteur de plaque. La moyenne des absorbances obtenues pour chaque malade ou donneur est donnée dans le tableau 1 (en unités de densité optique multipliées par 1 000). Pour les quatre sujets malades et non pour les trois sujets sains, l'AgHBs a été efficacement révélé.
TABLEAU 1 Valeurs de densité optique (UDO x 1 000)
Dilution du sérum 10 100 1 000 Origine du sérum
Donneurs sains 81 72 81 (3 sujets) 89 64 87 82 66 89
Malades hépatite B 2 530 2 493 1 645 (4 sujets) 696 667 250
2 488 2 555 2 298
1 910 1 280 435
EXEMPLE 7
On a utilisé la même procédure que pour l'exemple 6, à cette différence près que, sur le support, est fixé un anticorps monoclonal dirigé contre la β2GPI, appelé "8C3 " (don de J. Arvieux). Des résultats similaires ont été obtenus.
Pour ces deux exemples 6 et 7, d'une part, on a montré que de la B2 GP I s'était fixée au support en la révélant par des anticorps spécifiques, d'autre part, on a pu inhiber la fixation d'un complexe (B2 GP I/AgHBs) présent dans un sérum de malade atteint d'hépatite B en bloquant sa fixation à un support préparé pour fixer la β2 GP I grâce à une pré-incubation du sérum de malade à 37°C pendant 30 minutes avec des anticorps dirigés contre la β2 GP I. Ces résultats indiquent que l'AgHBs du virus de l'hépatite B peut être reconnu par l'intermédiaire de la β2 GP I présente dans le plasma, celle-ci étant, dans ces essais, fixée par la p26-HIV2 ROD ou un anticorps spécifique. EXEMPLE 8
Avec la même procédure que celle utilisée pour l'exemple 6, les résultats ont été positifs pour la détection d'antigènes de surface portés par le parasite LEISHMANIE, extrait d'un tissu infecté. EXEMPLE 9 - Formation d'un complexe β2GPI/cellule de lignées lymphocytaires immortalisées
La β2GPI fluorescente est incubée avec des cellules de la lignée "CEM' lO^/ml) prérincées 2 fois en tampon PBS pendant 1 h à 37 °C. Après 3 lavages en en tampon PBS, les cellules sont fixées par
2 % de paraformaldéhyde puis analysées en cytofluoromètrie de flux.
L'analyse des spectres de fixation montre la présence de la β2GPI sur la majorité des cellules de manière dose dépendante, de 10 à
100 μg /ml initial. Cette fixation a été observée pour d'autres lignées immortalisées telles des lignées T SVPT1 , MOLT4, ou monocytaires : THPI, U937, au contraire des lymphocytes normaux du sang périphérique de donneurs sains, isolés par centrifugation sur un coussin d'une solution commerciale "Ficoll" , puis rincés en PBS. EXEMPLE 10 - Fixation d'un complexe (β2GPI)n/HBsAg.
Dans cet exemple, le composé liant la partie (β2GPI)n est de l'albumine sérique humaine (HSA) purifiée selon le procédé décrit dans W093/21228. Des plaques ELISA (Nunc Maxisorb) sont préchargées avec une solution de 1 % de HSA en 0, 1 M Trisglycin pH 8,8, puis lavées extensivement en PBS pH 7,2.
Un sérum HBsAg - ou un sérum de donneur sain sont incubés à la dilution du millième en acétate de sodium (50 mM, pH 5,6) pendant 1 heure à 37 °C et l'expérience conduite comme dans l'exemple 6 mais en l'absence de TX100. Le sérum de donneur ou les contrôles sans sérum ne donnent aucun signal notable ( < 0,05 udo). Le sérum HBsAg donne un signal significatif ( ≈ 1 ,5 udo). HBsAg est donc capturé. Si la dilution sérique est incubée : a) en présence de 800 μg/ml de HSA, le signal est abaissé de plus de 80 % indiquant que le lien se fait bien à la HSA fixée au support ; b) en présence de 4 μg/ml de β2GPI, soit seulement 20 fois la quantité de β2 interne provenant du sérum, le signal est abaissé de près de 40 % , signifiant qu'une partie des complexes internes se fixe au support. Si une expérience similaire est faite sans préchargement des plaques, on observe que l'HBs est révélé aussi, inhibé à 97 % par une préincubation en présence de HSA et à 65 % en présence de β2GPI rajoutée.
EXEMPLE 1 1 - Formation d'un complexe de (β2'GPI)r avec des protéines de Mycoplasma penetrans On a procédé comme dans l'exemple 5 sur des bandes de nitrocellulose contenant quelques microgrammes de CI traité par 2 % d'octyl glucoside, saturées selon le procédé EURIS - 14, rue du
Chapeau Rouge - 34500 BEZIERS (France). La β2GPI marquée sous forme de DAP est nettement fixée à certains antigènes détectés par un sérum immunospécifique ou par un sérum spécifique de la p 35, notamment donc fortement les antigènes à 35, 40 et 45 Kd et légèrement l'antigène 65 Kd.
EXEMPLE 12 - Fixation à l'anatoxine tétanique de (β'2GPI)r
De l'anatoxine tétanique (ELOCORIDE, Behring) a été transférée après électrophorèse en gel d'acrylamide à 10 % sur nitrocellulose, à raison d'environ 0,5 à 2 μg/mm2 •
Après saturation des membranes selon EURIS, puis
4 rinçages avec une solution à 50 mM de Tris HC1 (pH = 8,2),
50 mM NaCl, et 1 rinçage en 50 mM Hepes - NaOH (pH 6,8 ± 0, 1), 100 ng de DAP dans 1 ml de ce dernier tampon ont été ajoutés sur les membranes et incubés pendant une heure à 25 °C en présence ou non de 10 μg de cardiolipine, désignée par "CL" . Les membranes ont été rincées 4 fois par 1 ml de 50 mM Tris-HCl (pH = 7,2), 150 mM NaCl. Après révélation comme dans l'exemple 5, la zone contenant l'antigène tétanique est la seule colorée en présence de CL. En l'absence de CL, la réaction n'a pas lieu, ce qui indique la nécessité de la présence de CL pour former le complexe dans ces conditions.
Le rôle des détergents et/ou lipides dans la formation du complexe β2GPI/CI a été plus amplement illustré par les expériences ci-après rapportées.
100 à 200 ng de protéines virales, en solution dans de l'eau contenant 7,5 g de Tris et 14,4 g de glycine par litre et20 % de méthanol, sont filtrés lentement à travers 2 à 4 mmz d'une membrane de nitrocellulose (BA84 commercialisée par "Schleicher et Schull"). Les membranes sont saturées par le même tampon sans méthanol contenant 1 % de HSA obtenu comme indiqué dans l'exemple 10. Le support est ensuite rincé extensivement avec quatre brefs prélavages en 50 mM Tris-HCl (pH = 8,2), 50 mM NaCl puis incubé de 1 à 4 heures avec de la β2GPI dans un milieu de réaction, enfin lavé par des postrinçages; la β2GPI est révélée, comme indiqué ci-après.
De façon générale, on constate, qu'en l'absence de lipide et/ou de détergent, la β2GPI est fixée à l'albumine utilisée pour saturation et non sur certaines des protéines virales, cependant qu'en présence de détergent, l'inverse est observé, à savoir que la β2GPI n'est plus fixée sur l'albumine mais sur certaines protéines virales. Un phospholipide tel que la cardiolipine provoque une telle fixation. Plus précisément, on a constaté les résultats suivants : A) - On effectue les étapes suivantes : réaction avec 50 ng par ml de DAP; 4 postrinçages en 50 mM Tris HCI (pH = 8,2), NaCl 50 mM; révélation de la DAP en 0,1 M Tris HCI (pH = 8,8), NBT et BCIP selon les conditions recommandées par Merck.
En l'absence de détergent dans le milieu de réaction (acétate de Na, 50 mM, pH = 5,6), les recombinants pl8 et p25 HIV, , p26 HrV2 (TRANSGENE) ne réagissent pas (zone blanche du support), alors que le recombinant gpl60 de HIV fixe légèrement DAP et que l'albumine humaine réagit aussi (fond coloré). Par contre, en présence de 0,5 % de TX100 ou de "Triton 405" ou de 0,2 % de "Tween 20", l'albumine ne montre plus de réaction, cependant que p26 HIV2, plδ HIV! montrent une forte réaction, gpl60 HIVj une réaction supérieure à celle sans détergent et p25 HIV! une faible réaction.
B) Dans les mêmes conditions, mais en milieu de réaction différent 50 mM Tris HCI (pH = 8,2), seule la pi 8 HIV! réagit faiblement en présence de détergent.
C) - On effectue les étapes suivantes : 1 prélavage en Hepes 50mM, NaOH, (pH = 6,8); réaction pendant 1 Heure dans ce même tampon avec 100 ng/ml de DAP, en présence ou non de 10 μg/ml de cardiolipine ; 4 postrinçages en 0, 15 M NaCl 50 mM Tris HCI (pH = 7,2), 150 mM NaCl et un postrinçage en 0, 15 M NaCl et révélation comme en A.
Aucune des 4 protéines de HIV ne réagit sans cardiolipine et les 4 réagissent en sa présence. D) On effectue les étapes suivantes : 1 heure de réaction 50 mM
Tris HCI (pH = 7,6) en présence de 1 μg/ml de β2'GPI, et 20 μg/ml de CL, 4 lavages dans le tampon de réaction, révélation de la β2'GPI par 1 heure d'incubation en présence de 54 μg/ml d'anticorps monoclonal 8C3, couplé à la phosphatase alcaline, en solution dans le même tampon additionné de 0, 15 M de NaCI et 0,05 % de
"Tween 20" ; puis 4 rinçages par la même solution et 1 rinçage par
0, 15 M NaCp 0, 15 M et révélation comme en A.
Les 4 protéines virales réagissent et la p25 HIVj réagit fortement, alors que les contrôles sans β2'GPI ou sans CL ne montrent aucune réaction visible.
Ces exemples, entre autres, indiquent qu'un détergent et/ou un lipide, notamment un phospholipide, peuvent favoriser l'interaction avec les protéines virales, si ce n'est participer à ladite interaction, et que le lien à l'albumine est d'une autre nature puisque sensible aux détergents utilisés.
On a noté aussi que détergent(s) ou phospholipide(s) peuvent être ajoutés dans un stade préalable à la présence de β2GPI. On notera que le taux de phospholipides sur les protéines virales de HIV, est connu pour être élevé et qu'on a décrit un lien entre B2GPI et HBsAg recombinant en présence de détergent. Il en résulte que, pour certains CI et dans certaines conditions de milieu, un détergent ou un lipide est nécessaire pour la formation du complexe β2GPI/CI.

Claims

REVENDICATIONS
1 - Procédé de séparation et/ou de détection et/ou de quantification de composés infectieux (CI) dans un matériau biologique, caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie un complexe B2GPI/CI pris dans le groupe formé par : a) les complexes (β2GPI)n/CI b) les complexes (β2GPI)r/CInV
2 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie les CI par la reconnaissance, à l'aide d'une substance se liant à la β2GPI, du complexe β2GPI/CI.
3 - Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie le complexe β2GPI/CI dans le milieu où il s'est formé, sans fixation préalable du complexe sur un support, avec ou sans fixation dudit milieu.
4 - Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé par le fait que l'on retient l'un des éléments constitutifs du complexe β2GPI/CI sur un support. 5 - Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait que le support est un support solide.
6 - Procédé selon la revendication 5, caractérisé par le fait que le support solide utilisé est une membrane, une microplaque de titration ou une lame d'observation. 7 - Procédé selon l'une des revendications 4 à 6, caractérisé par le fait que l'on retient le complexe β2GPI/CI sur le support par l'intermédiaire de l'élément β2GPI du complexe.
8 - Procédé selon l'une des revendications 4 à 6, caractérisé par le fait que l'on retient le complexe β2GPI/CI sur le support par l'élément CI du complexe.
9 - Procédé selon la revendication 8, caractérisé par le fait que l'on réalise la fixation de l'élément CI sur le support avant formation du complexe β2GPI/CI, que l'on forme ensuite ledit complexe, puis que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie l'élément B2GPI du complexe. 10 - Procédé selon l'une des revendications 8 ou 9, caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie, à l'aide d'une substance se liant à la β2GPI du complexe, le(s) CI du matériau biologique, physiquement, chimiquement ou biochimiquement fιxé(s) à un support.
11 - Procédé selon la revendication 1 ou 4, caractérisé par le fait que l'on retient sur un support le complexe β2GPI/CI par l'intermédiaire d'un composé se liant à l'une des parties β2GPI ou CI du complexe, que l'on sépare dudit matériau biologique le complexe fixé sur ledit support et que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie ledit complexe par reconnaissance de l'autre partie du complexe.
12 - Procédé selon la revendication 1 1 , caractérisé par le fait que l'on retient le complexe sur le support par l'intermédiaire d'un composé se liant à la partie β2GPI du complexe. 13 - Procédé selon la revendication 1 1 , caractérisé par le fait que l'on retient le complexe sur le support par l'intermédiaire d'un composé se liant à la partie CI du complexe.
14 - Procédé selon la revendication 2, caractérisé par le fait que le composé se liant à la B2GPI est choisi dans le groupe formé par un anticorps dirigé contre la β2GPI, une autre protéine, un composé biologique ou chimique se fixant à la β2GPI.
15 - Procédé selon la revendication 14, caractérisé par le fait que la protéine reconnaissant la β2GPI est la protéine p26-HIV2 ROD. 16 - Procédé selon la revendication 1 , caractérisé par le fait que le CI du complexe fait partie du groupe formé par HIV1 , HIV2, HSV, HBV et des particules ou protéines d'origine virale.
17 - Procédé selon la revendication 1 , caractérisé par le fait que le CI du complexe fait partie du groupe formé par les bactéries, les parasites, les mycoplasmes et les champignons, les cellules animales anormales.
18 - Procédé selon la revendication 7, caractérisé par le fait que l'on sépare et/ou détecte et/ou quantifie le CI du complexe β2GPI/CI, fixé sur le support, par infectiosité, par une réaction enzymatique spécifique, par un traceur fluorescent ou radiomarqué, par la détection d'acides nucléiques par hybridation avec une sonde marquée ou par une réaction de polymérase en chaîne (PCR) ou encore à l'aide d'anticorps spécifιque(s) du CI.
19 - Procédé selon l'une des revendications 1 à 18, caractérisé par le fait que l'on utilise, comme forme de β2GPI, la β2'GPI sous forme pure ou non.
20 - Procédé selon l'une des revendications 1 à 19, caractérisé par le fait que la β2GPI utilisée pour constituer le complexe avec le(s) CI est marquée, la détection et/ou quantification du complexe s 'effectuant grâce audit marquage. 21 - Procédé selon la revendication 20, caractérisé par le fait que le marquage de la β2GPI est réalisé au moyen d'une enzyme, d'un produit radioactif ou d'un produit fluorescent.
22 - Procédé selon la revendication 6, caractérisé par le fait que l'on réalise la fixation de l'élément β2GPI sur le support avant formation du complexe β2GPI/CI, que l'on forme ensuite ledit complexe, puis que l'on détecte et/ou quantifie l'élément CI du complexe.
23 - Procédé selon l'une des revendication 1 à 22, caractérisé par le fait que l'un au moins des éléments du complexe est d'origine animale ou produit par génie génétique et/ou chimique.
24 - Support solide pour la mise en oeuvre du procédé selon l'une des revendications 4 ou 1 1 , caractérisé par le fait qu'il est apte à retenir un (des) complexe(s) (β2GPI)n/CI par au moins l'un de ses éléments constitutifs, directement ou non, spécifiquement ou non.
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