UA77642C2 - Human hybrid cell for expression of gene of mammals, human cell line hkb11, method for producing hybrid human cells suitable for expression of heterologic protein - Google Patents

Human hybrid cell for expression of gene of mammals, human cell line hkb11, method for producing hybrid human cells suitable for expression of heterologic protein Download PDF

Info

Publication number
UA77642C2
UA77642C2 UA2001074776A UA2001074776A UA77642C2 UA 77642 C2 UA77642 C2 UA 77642C2 UA 2001074776 A UA2001074776 A UA 2001074776A UA 2001074776 A UA2001074776 A UA 2001074776A UA 77642 C2 UA77642 C2 UA 77642C2
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
cells
cell
human
protein
cell line
Prior art date
Application number
UA2001074776A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Bayer Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bayer Corp filed Critical Bayer Corp
Publication of UA77642C2 publication Critical patent/UA77642C2/uk

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/02Preparation of hybrid cells by fusion of two or more cells, e.g. protoplast fusion
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/10Cells modified by introduction of foreign genetic material
    • C12N5/12Fused cells, e.g. hybridomas
    • C12N5/16Animal cells
    • C12N5/163Animal cells one of the fusion partners being a B or a T lymphocyte
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00Genetically modified cells
    • C12N2510/02Cells for production

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

Опис винаходу
Споріднені заявки: Заявка Чо і Чена "Месіогз Наміпд Тегтіпа! Кереаї бедцепсе ої Ервіеіп-Вагт Мігив", 9 позначена М5В-7254 (ОБ, 09/209,915), і заявка Чо та ін. "Ехргезвіоп вувіет ог Тасіог МІ", позначена
М5В-7255 (05, 09/209,916), містять споріднений об'єкт винаходу. Обидві заявки були подані 10.12.1998.
Цей винахід стосується, в основному, одержаних шляхом генетичної інженерії клітинних ліній ссавців для отримання біологічно активного протеїну. Зокрема, винахід стосується людських гібридних клітинних клонів, отриманих за допомогою процесу злиття людських ембріональних клітин нирки (2935) та клітин лімфоми Беркітта. 70 Ці людські гібридні клітини можуть використовуватися для отримання гетерологічних протеїнів.
До даного часу більшість терапевтичних рекомбінантних протеїнів отримувались з клітин ссавців, окрім людини. Деякими прикладами є: (апіт-) - клітини яєчника китайського хом'яка (СНО) |Опацр еї аїЇ. // Ргос. Май. Асад. Зсі. ОБА. - 1980. - 77. - Р. 4216-4220) з селективним маркером дигідрофолат редуктази, здатним до ампліфікації (Кашїтап еї а). 79 М Мої. Вісі. - 1982. - 159, - Р. 601-621; Савзвзег еї аЇ. / Ргос. Май. Асай. сі ОБА. - 1982. - 79. - р. 6522-6526), використовувались для отримання терапевтичного рекомбінантного протеїну.
Різноманітність рекомбінантних терапевтичних протеїнів, відомі як такі, що одержують у клітинах ссавців, наприклад, рекомбінантний фактор МІ (ТЕМІ) І(Кашйтап ек аї. // 9. Віої. Спет. - 1988. - 263. - Р. 6352-6362), тканинний активатор плазміногену (-РА) (5, 4766075, 1988), еритропоетин (ЕРО) (5, 4703008, 1987) і моноклональні антитіла (монАт) (05, 4816397, 1989). Клітини (ВНК) нирки ембріону хом'яка (ВНК21) використовувалися для отримання гЕМІІ! після селекції 5418 та метотрексатної (МТХ) ампліфікації резистентних клітин 5418 (05, 4965199, 19901.
Клітини мишиної мієломи (МО) використовувались для отримання одержаного шляхом генетичної інженерії людського антитіла анти-ТМЕ (ЕНАТ) (5, 4816397, 1989). Проте, ця клітинна лінія генерує протеїни, які мають с 22 особливі мишині вуглеводні структури, які не є бажаними для застосування на людях. о
Людська клітинна лінія Матама (джерело лімфоми Беркітта) використовувалась для отримання альфа-інтерферону у УУеїЇсот Кезеагсі І арогагу і для отримання проурокінази |Зап еї аї. // Суюіесппоіоду. - 1996. - 18. - Р. 167-185), тканинного активатора плазміногену (І-РА) ІКпап еї аї. // Віоспет. бос. Тгапв. - 1995. - 23. - Р. 99), колонієстимулювального фактора гранулоцитів та макрофагів |ОКатоїо еї аї. // Агсп. сч
Віоспет. Віорпуз. - 1991. - 286. Р. 562-568), інтерферонів та лімфотоксинів (Нової еї аїЇ. // Суїоїесппоіоду. «Ж - 1991.- 5. - Р. 17-34) колонієстимулювального фактора гранулоцитів (Нової еї аї. // СуїюїесппоЇоду. - 1991. -7.- Р. 25-32) у ТоКуо Кезеагсй І арогаюгіев. Проте, ці клітини дуже важко піддавалися трансфекції ДНК. ее,
Уельс та ін. (1989, Сепе 81: 139-149) повідомили про використання стратегії сумісної ант/мтх ча ампліфікації для експресії функціонального протеїну С в ембріональних клітинах людської нирки (клітини 2935) повідомили (Уеллс та ін. // Сепе. - 1989. - 81. - Р. 139-149). Клітини 293 |З(Штап еї аїЇ. // Мої. Сеї). в
Вісі. - 1985. - 5. - Р. 2051-2060) відомі як ті, що утворюють великі агрегати в суспензії, зокрема, при високій концентрації кальцію ("100мМкМ), яка сприяє збільшенню агрегації та зниженню життєздатності клітин (Резпмжа еї аї. // Віоїесп. апа Віоепд. - 1993. - 41. - Р. 179-187). Усі ці відомості наведені у даній заявці « як посилання.
Клони гібридизованих людських клітин на даний момент визначені як такі, що легко піддаються трансфекції - с електропорацією або катіонною ліпосомою і які легко адаптувати до росту в суспензійній культурі.
І» Гетерологічні протеїни можуть експресувати низькі рівні (50-ТООНМ) МТХ ампліфікації в оточуючому середовищі людської клітини. Окрім того, клітини легко адаптуються до росту у вільному від сироватки середовищі.
Ці клітини є продуктом злиття між ембріональними клітинами людської нирки (2935) та клітинами лімфоми
Беркітта. Дивіться Фіг.1 для коментарю. Ці гібридні клони, названі НКВ, містять дефектні ЕВМ-геноми, що це. походять від НН5Б14-16, які є клітинною лінією, що походить з клітин лімфоми Беркітта, РЗНА1 |ІНіпита еї аї. // -І У. Мігої. - 1967. - 1. - Р. 1045-1051). Клітини РЗНК1 несуть неіморталізований ЕВМ. НН514-16 є клоном РЗНК1
ІНіпита еї аї. // 9. МігоЇї. - 1967. - 1. - Р. 1045-1051), який несе неіморталізований ЕВМ. НН514-16 втратив б гетерологічну ДНК, ДНК, яка перериває латентний стан протягом процесу клонування |Карзгоп еї аї.// Ргос. «їз» 20 Май, Асай. Зсі. БА. - 1983. - 87. - Р. 3660-3664. Тому ЕВМ НКВ клони є неморталізованим вірусом і залишається в латентному стані. їз НКВ є людськими гібридними клітинами хазяїна, придатними для рекомбінантного отримання терапевтичних протеїнів. Ці клітини хазяїна отримуються шляхом гібридизації різних батьківських клітинних ліній, кожна з яких має різні корисні характеристики. Клітини хазяїна, які мають корисні характеристики кожної з 22 батьківських клітинних ліній, отримуються з клітин, одержаних в результаті гібридизації.
ГФ) Клітини хазяїна можна одержувати шляхом генетичної інженерії для експресії високих рівнів широко поширених протеїнів. Протеїни, які можуть бути одержані за допомогою клітин хазяїна, отриманих в результаті о генетичної інженерії, включають, але не обмежуються розчинним ІСАМ-1, рекомбінантним інтерлейкіном-4 (ІІ -4),
ІРА, ЕРО, гЕМІП, Її ВОО-ЕМІ (варіанти Фактору МІ з делетованим доменом В) і похідні цих протеїнів. 60 Фактор МІ має структуру домену А1-А2-В-АЗ-С1-С2 і синтезується як одноланцюговий поліпептид з 2351 амінокислот, із яких сигнальний пептид, що має 19 амінокислот, розщеплюється під час транслокації у порожнину ендоплазматичного ретикулюму. Беручи до уваги той факт, що фактор МІІЇ важко глікозилюється, було важко досягнути експресії високого рівня ( 20,2пг/кл/дн.) фактора МІ (іпа ек аї. // Еицг. 9. Віоспет. - 1995. - 232. - Р. 19-27; Кацїтап еї аїЇ. // Мої. СеїЇ. Віої. - 1989. - 9. - Р. 1233-1242). Експресія фактора МІ у бо клітинах ссавців, типово на 2-3 порядки нижча по величині ніж та, що спостерігалась у решті генів з використанням подібних векторів та підходів. Продуктивність отримання клітинних ліній для фактора МИ! знаходилася в інтервалі 0,5-1,0од./кл/дн. (0,1-0,2пг/кл/дн.).
Було продемонстровано, що В-домен фактора Мі є несуттєвим для прокоагулянтної активності.
Використовуючи вкорочені варіанти фактора МІЇЇ, різними групами відзначалася поліпшена експресія фактора МІЇЇ у клітинах ссавців (па еї а/. // Ешг. У. Віоспет. -- 1995. - 232. - Р. 19-27; Тата еї а/. // Ргос. 61 |Іпї. Зутр. Н.Т. - 1990. - Р. 51-63; 5, 5661008, 1997)Ї. Проте, рівень експресії варіантів фактора МІ зі стабільного клітинного клону залишався нижчим Іпг/кл/дн. Також було виявлено, що незважаючи на те, що ендогенний імуноглобулін (Ід) не експресувався, експресія рекомбінантного Ід з клітин хазяїна, отриманих в результаті 70 генетичної інженерії, була високою. Протеїни, отримані з клітин НКВ11, мають специфічний людський профіль глікозилювання. Тому, клони є оптимальними клітинами хазяїна для отримання Ід, одержаного за допомогою генетичної інженерії, та решти протеїнів.
Використовувана тут клітина, що має походження від лімфоми Беркітта, є клітиною лімфоми Беркітта, що походить від клітини лімфоми Беркітта, що має походження від іншої клітини лімфоми Беркітта, або клітиною, 75 яку отримують в результаті мітотичного поділу будь-якої з вищезгаданих. "Походить від" в цьому контексті має намір включати, але не обмежуватися нормальним мітотичним поділом клітин та способами, такими як трансфекція, злиття клітин або іншими способами генетичної інженерії або біології клітин, які використовуються для зміни клітин або отримання клітин з новими властивостями. Подібним чином, клітина людської ембріональної нирки є клітиною людської ембріональної нирки, отриманої від клітини людської ембріональної нирки, отриманої з іншої клітини джерела людської ембріональної нирки, або клітиною, яка отримується в результаті мітотичного поділу будь-якої з вищезгаданих. Також клітина джерела 2935 є клітиною 2935, отриманою з клітини 2935, отриманої з іншої клітини джерела 2935, або клітиною, яка отримується в результаті мітотичного поділу будь-якої з вищезгаданих. Також клітина джерела 288 є клітиною 288, отриманою з клітини 288, отриманої з іншої клітини джерела 288, або клітиною, яка отримується в результаті мітотичного Га поділу будь-якої з вищезгаданих. Гетерологічний протеїн є протеїном, який отримувався в результаті генетичної інженерії клітини. і9)
На Фіг.1 зображено спрощений варіант дериватизації клітин НКВ.
На Фіг.2 зображено фізичні карти векторів експресії, зазначених у тексті. Усі плазміди утворюються на основі рРВКЗ322 та містять одиницю експресії ант. Всі гени, які кодують протеїни, що представляють інтерес, Ге зо знаходяться під регуляційним контролем енхансера СММ/промотора (СММ е/р); 5-й інтрон (МІЗ або СІБ5) розміщувався біля 5-го кінця генів, за виключенням ВА Е1. Полі-А сигнальна область, позначалася рА. Обидві М плазміди реН157 та рСІЗ25ОТЕ містять послідовність ЕВМ-ТЕ (402 п.о.). (Те)
На Фіг.3 зображено порівняння клітинних ліній хазяїна для генної експресії у перехідних аналізах трансфекції. Трансфекції проводилися при тих же умовах: та ж кількість клітин 2935, 288 і НКВ11 - трансфікувалася тією ж кількістю плазмідної ДНК, використовуючи той же трансфекційний агент. Рідкі культури - тканин збиралися через 2 дні після трансфекції. Рівні отримання протеїну визначалися ЕГІЗА (до та ІСАМ-1; виміряні як нг протеїну/105 клітин/2 дні) і комплектом проби Соаїеві? (ТЕМІ; виміряні як міліодиниці/10" клітин/2 дні). «
Особливі варіанти реалізації
Матеріали та способи - с НН514-16 були любязно надані доктором Джорджем Міллером (Єльський Університет). Клітини 2935 були отримані від доктора Бреда Зелера (Моіесціаг ТПегарецшіїс Іпвійше, МУеві Неамеп, СТ). Клітини 2935 є )» клітинами 293 (АТСС СТІ -1573), які були адаптовані для росту в суспензійній культурі (З(ЇШтап еї аї. // Мо).
Сеїї. Вісі. - 1985. - 5. - Р. 2051-2060).
Плазміди -| Всі вектори експресії, які використовувались в цій доповіді, головним чином, були плазмідою на основі - рВКЗ322 з функціональним сегментом генної експресії апіт. Фізичні карти векторів експресії описуються на
Фіг2. Плазміди рЗНІ5/ та рсСІБ25ОТК мають також термінальну повторювану послідовність вірусу (о) Епштейна-Барра (ЕВМ-ТК). Дивіться заявку на патент Чо та Чена "Месюогв Наміпуд Тегтіпа! Кереаї Зедцепсе ої 1» 50 Ерзівїіп-Ваїт Мігив", позначену М5ЗВ-7254 (05, 09/209,915), для послідовності ЕВМ-ТК. Вектор реНІ31, який депонований в Американській Колекції Типових Культур АТСС 98879, можна використовувати з метою генерації що) векторів експресії для вибраного протеїну, як описано у Чо та Чена (М5В-7254).
ЕПЗА
Для вимірювання секреції (САМ-1, моноклонального антитіла для ІСАМ-1, С92.5 |МеСіейНапа еї аї. // Ргос.
Май). Асад. Зсі. ОБА. - 1991. - 88. - Р. 7993-7997| абсорбувався на мікротитрувальних планшетах з круглим дном. Планшети закупорювалися обробкою фосфатно-буферним розчином (РВ5), який містив 195 альбуміну з о коров'ячої сироватки (ВЗА), а потім витримувалися з пробами, які містили ЯСАМ-1. Потім планшети промивалися іме) буферним розчином для промивання (РВ5 плюс 0.005956 Тмееп 20) та інкубувалися з біотинільованим С78.5, другим моноклональним антитілом для іншого епітопу на ЧСАМ-1 |МеСіейапа еї аЇ. // Ргос. Май. Асай. збі. 60 БА. - 1991. - 88. - Р. 7993-7997). Після промивання планшети інкубувалися з НКР-стрептавідином. Потім планшети промивалися буферним розчином для промивання, вводились у взаємодію з тетраметилбензидином (ТМБ) і реакцію зупиняли 1М НСЇ. Концентрація ЧСАМ-1 визначалася зчитуванням ОО при 450/57Онм і порівнювалася зі стандартною кривою очищеного САМ-1.
Для вимірювання секреції імуноглобуліну (Ід) використовувалось антитіло анти-Ід для покриття планшету і 65 біотинільоване антитіло анти-д використовувалось як антитіло детекції. Відома концентрація молекули Ід використовувалась як стандарт. В усьому іншому спосіб залишався тим же.
Для вимірювання секреції інтерлейкіну-4 (І/-4) антитіла анти-І/-4 використовувались для покриття планшету, а біотинільоване антитіло анти-1ІІ-4 використовувалось як антитіло детектування. Молекула очищеного
І--4 використовувалась як стандарт.
Проба для вимірювання секреції гЕМПЇ
Кількісний склад молекули гЕМІІ! визначався за допомогою реагентів з Соаіеві У МП:С/4 Кії (Спготодепіх,
Моїіпаа!, Зул"едеп). Стандартний для США антигемофілічний фактор (фактор МІ), відомий як МЕСА 1 (Ойісе ої
Віоіодіеєз Кезеагсії апа Кеміему, Веїіпезаа, МО) використовувався як стандарт вимірювання для планшетів ЕІА/КІА
А/2 (Сотіпод, Согпіпд, МУ), попередньо нагрітих до 372С на Селективних Нагрівальних Блоках (М/УУК Зсіепіййс, Зап 70 Егапсізсо, СА). Фактор ІХа, фактор Х, фосфоліпід та СасСі» додавалися до кожної проби і витримувалися протягом 10хв. для активування фактора Х. Потім додавався хромогенний субстрат (52222) і інкубувався протягом 1Охв. для виділення хромогенної групи, РМА. Ця реакція зупинялася додаванням 5095 оцтової кислоти. Потім вимірювалась колорометрична абсорбція при 405/450нм на спектрофотометричному зчитувачі для мікропланшетів ЗРЕСТЕАтах? 250 (Моїіесцшіаг Оімісев, Зиппумаіє, СА) і дані обраховувалися за допомогою 75 програмного забезпечення ЗОЕТтах 7 РКО, забезпечуваного Моіесціаг Оемісе.
Модифікація НАТ-чутливої та 0418-резистентної клітинної лінії лімфоми Беркітта
Для отримання клітин чутливих до НАТ, гіпоксантин-гуанін фосфорибозил трансферази (НОРКТ)-дефіцитні клітинні лінії І(З2ураївКа еї аїЇ. // Ргос. Май. Асай. Зсі. ОБА. - 1962. - 48. - Р. 2026-2034; І їШейеїй //
Ргос. Май. Асай. сі. ОБА. - 1963. - 50. - Р. 568-576)| відновлювалися за стандартним прописом, описаним Сядаком та ін. (05, 4834975, 19891.
Клітини НН514-16 (отримані від доктора Дж. Міллера, Єльський Університет), в яких була відсутня ЕВМ гетерологічна ДНК |Кабзоп еї аїЇ. // Ргос. Май. Асад. 5сі. ОБА. - 1983. - 87. - Р. 3660-3664| вводилися у взаємодію протягом 24год. з ЗООмкг/мл етилового складного ефіру метансульфокислоти (СЕМ) (Зідта, 51. І оців,
МО) у середовищі суспензії ВРМІ-1640 (І їе Зсіепсе, Зайпегзриго, МО) з добавкою 1595 ембріональної коров'ячої ЄМ сироватки (ЕВ5) (Нусіопе, І одап, ОТ). Після промивання клітин середовищем, вони висівалися на планшети у Ге) середовищі, яке містило б-тіогуанін (6ТГ) (бЗідта) (Омкг/мл) для селекції на НОРКТ-негативних клітинах.
Концентрація 6ТГ збільшувалась від 5мкг/мл до ЗОмкг/мл протягом шестимісячного періоду відбору. Потім клітини тестувалися на чутливість до середовища, яке містить НАТ. Окремі клітинні клони (5СС) отримувалися з обмежувального клонування розведень (одна клітина на лунку у 96-лункових планшетах) популяції А5, чутливої до с
НАТ. Один з 5СС, АБ/107 трансфікувався роМ2пео, який має ген пео під контролем промотора 5М40 у векторі р. «Е для отримання клітин стійких до 5418. Один з ЗСС, стійких до 5418 (1,5мкг/мл), названий 288 (депонований в
Американській Колекції Типових Культур, Мо. СКІ -12569) використовувався для злиття. ісе)
Приклад 1. Злиття клітин та модифікації одиничних клітинних клонів ча
Злиття клітин спочатку проводилося згідно з поліетиленгліколевим (ПЕГ) способом злиття, описаним ІКеннет
Зо // Ме Епгутої. - 1979. - 58. - Р. 5-359). П'ять мільйонів кожної з клітин 2935 та 288 промивалися РВ5 за - відсутності Са"" та Мд"" у логарифмічній фазі росту (Пе Тесппоіодієз, Коскмійє, МО) та висівалися в одну лунку б-лункового планшету, який попередньо піддавався обробці арахісовим аглютиніном (Зідта) (5мкг/мл). б-лункові планшети, заповнені клітинами, центрифугувалися при 4009 протягом бхв. на центрифузі Бекмана « 3-6М/Е (ВесКтап, Раїо Айо, СА). Після видалення РВ5 з лунки, клітини вводилися у взаємодію з 2мл 4090 50 (вага/об'єм) ПЕГ (Зідта) протягом їхв. Для контролю одна лунка не вводилась у взаємодію з ПЕГ. Клітини З с промивалися три рази 5мл РВ5, який містив 595 ЮМ5О після трьох промивань РВ5. Клітини інкубувалися у 1» свіжому середовищі з добавкою 1595 ЕВЗ протягом 25хв. Клітини висівалися на 96-лункові планшети (1,2х10 5 клітин на планшет) з використанням свіжого середовища, яке містило 5418 (мг/мл) і НАТ (Ге Тесппоіоду) з добавкою 1595 РВ5. Клітини підживлювалися двічі на тиждень з використанням селективного середовища. У цьому прикладі для початкового відбору клітини 2935 мали бажану характеристику відсутності чутливості до це. середовища, яке містить НАТ, і подібним чином, клітини 288 мали бажану характеристику стійкості до (3418. -І В той час як злиті клітини вирощувались при селективних умовах, змішані клітини не росли при тих же умовах. Через три тижні після відбору, початкові популяції переносилися на більші формати. Для отримання 5СС б двадцять початкових популяцій зі стабільним ростом перемішувалися та піддавалися обмежувальному «їз» 20 клонуванню розведень (одна клітина на лунку) з використанням селективного середовища. Дев'ятнадцять СС вибиралися з 15хХ96-лункових планшетів після обережної реєстрації індивідуальних клонів з використанням із мікроскопу. ЗСС, отримані з експерименту по злиттю, називалися клітинами НКВ (Гібридні клітини людської нирки і В-клітин). Сім ЗСС вибиралися з трансфекційного дослідження. Ці сім ЗСС надалі тестувалися для стабільного отримання різних протеїнів. Один з семи СС, НКВ11 вибирався як клітина хазяїна, якій надається перевага у 29 ссавців для отримання гетерологічних протеїнів (Фіг.1).
ГФ) Приклад 2. Характеристика клонів НКВ
Хоча всі гібридні клітини вибиралися при селективних умовах, гібридний статус підтверджувався підрахунком о кількості хромосом у клітинах. Насправді, всі НКВ показали кількість модальних хромосом 90-110. Ці кількості збігалися з сумою кількостей модальних хромосом 2935 та 288 (64 та 47, відповідно, згідно з даними АТСС). 60 2935 (ЗШ танп еї а). // Мої. СеїІ. Віої. - 5.- Р. 2051-2060) є суспензією, адаптованою 293 (АТСС СКІ -1573).
Всі гібридні клітинні клони тестувалися для ендогенної (мю та каппа) експресії Ід за допомогою прямого імунофлюорисцентного аналізу з використанням фіксованих метанолом клітин для визначення того, які клітинні клони секретують ендогенний Ід. У повторних експериментах протягом довшого періоду ці клітини спостерігались як такі, що є негативними для експресії мю- та каппа-ланцюгів на основі імунофлюорисцентного тесту (табл. 1) бо тає ІА (дані не зображені).
клітини 70 Таблиця 1 зображує результати, які спостерігалися в імунофлюорисцентному тестуванні трьох типів клітин.
Клітини повторно суспендувалися у РВ5 та наносилися як мазок на скляне предметне скло. Після просушування клітин предметні скельця фіксували у холодному (-20 22) метанолі протягом бхв. Клітини забарвлювалися протягом 45хв. за допомогою анти-РІТС каппа та мю ланцюгами людини (розведення 1:20) (7утеа І арогаюгіев,
Іпс., 5о. Зап Егапсізсо, СА) у зволоженій камері при 372. Після промивання предметних скелець РВЗ протягом 75 Охв., вони покривалися покрівним склом, використовуючи РВЗ/Гліцерил (1:1). Клітини досліджувалися під флуоресцентним мікроскопом (Сагі 2еївв, Іпс., Ппогпумоой, МУ).
Особлива людська структура зв'язку сиалової кислоти, альфа(2-6б)сиалілтрансфераза підтверджувалася аналізом ЕАСЗ клітин НКВ з використанням РІТС-зв'язаного лектину Затрисиз підга (МА) (5ідта, 5. І оців, МО).
Протеїн, виділений з клітин НКВ (клон 102), відображав альфа(2-3) та альфа(2-6) зв'язок сиалової кислоти профілю глікозилювання, проаналізований олігосахаридним способом "відбитків пальців" (дані не зображені). Це дослідження вказує на те, що клітини НКВ, отримані злиттям клітин 2935 та 288, зберігали особливі людські ферменти глікозилювання.
Для перевірки, чи мають ці гібридні клітини функціональну активність для експресії сторонніх генів, клітини трансфікувалися векторами експресії для ІСАМ-1 та до ( антитіло анти-ТМЕ). Для тестування секреції Га |дО, клітини НКВ (5х1059 клітин) трансфікувалися електропорацією з 1Омкг плазмідної ДНК, як передбачалося для о функціональної експресії важких (гамма) та легких (каппа) ланцюгів. Для тестування рівнів секреції розчинного
ІСАМ-1, клітини НКВ (5х105 клітин) трансфікувалися електропорацією з 1Омкг плазмідної ДНК, як передбачалося для функціональної експресії розчинного ІСАМ-1. Рівні секреції визначалися за допомогою ЕЇІЗА для до або
ІСАМ-1. Усі 19 5СС секретували відносно високі рівні ІСАМ-1 (100-500нг/мл/2дн.) та дО (30-200нг/мл/гдн) у СМ тимчасовій трансфекційній пробі (табл. 2). Ці дані вказують на те, що гібридні клітини підтримують експресію « трансфікованих генів Ід, хоча ендогенна експресія гену Ід припинялася.
Вірус Епштейна-Барра (ЕВУ) існує у вигляді епісом у клітинах 288. Усі БСС були позитивними для експресії іс),
ЕВМА-1 (дані не зображені), що відображає той факт, що вони позитивні для ЕВУ. Тим не менше, було невідомо, чн чи все ще існує весь геном ЕВУ у гібридних клітинах. і - та розчинного ІСАМ з клонів НКВ, які отримуються зразу після « процесу клонування то Клон НКВ що с ї» 47 юю - юю
Ф пили ВИ Но то пили: тн го юр ю 5в ЕЕ ни и и не Ст шили т о т 6 рю ею во вро сю шили ШЕ ПО 65 Тому, статус геному ЕВМ у гібридних клітинах тестувався за допомогою трансфекції клітин фрагментом ВАГ Е1 геному ЕВМ, (гапв-активуючим геномом, що перериває латентний період. Клітини НКВ (5х109 клітин)
трансфікувалися 1Омкг плазмідної ДНК (реН121) для одержання функціональної експресії ВА Е1. Визначення капсидного антигену ЕВМ (ЕВМ-МСА) проводилося непрямою імунофлюорисценцією з використанням людської сироватки, яка містила титр анти ЕВМ-МУСА та зв'язаний РІТС - кон'югований антилюдський Ід. Технічні деталі імунофлюорисцентного тесту описуються вище. Як зображено у табл. 3, фіктивно трансфіковані клітини були негативними для експресії капсидного антигену ЕВМ (ЕВМ-МУСА), що вказує на те, що вони були негативними для реплікації ЕВМ. Тим не менше, незначний процент трансфікованих клітин був позитивним для антигенної експресії. Ці дані вказують на те, що гібридні клітини містять геном ЕВМ у латентній формі. трансфекції ВІ Е1 т ю
Гібридні клітини адаптувалися до середовища, що не містить сироватки, двократним зменшенням ЕВ5 у колбах для струшування. Після двох тижнів клітини вирощувались у середовищі без ЕВ5. Клітини вирощувалися як невеликі агрегати у колбах для струшування. На противагу до клітин 2935, гібридні клітини легше с 29 пристосовувалися до росту суспензійних культур без сироватки. Гібридні клітини у середовищі без сироватки та (У альбуміну з добавкою трансферину та інсуліну могли зберігатися протягом більше, ніж року в суспензійній культурі з використанням колб для струшування.
Для порівняння рівнів секреції трансфікованих генних продуктів, один з клонів, НКВ11 та батьківські клітини 2935 та 288 трансфікували р5Ме98 (розчинний ІСАМ-1), реМ125 (Ід анти-ТМЕ) ії рСІБЕ8 (ТЕМІ). Як сч 30 зображено на Фіг.3, рівні секреції ІСАМ-1 та до були набагато вищими (приблизно у 10 разів) у клітин НКВІЯЇ, «Ж ніж у клітин 2935. Рівні секреції обох протеїнів з 288 були такими, що не піддавались детекції. Рівні секреції ТЕМІ у клітинах НКВІ11 були подібними до тих, що спостерігалися у клітин 2935. Ці дані вказують на шо те, що ефективність трансфекції клітин НКВ11 набагато краща, ніж у батьківських клітинах. їч-
Приклад 3. Модифікація стабільних клонів НКВ, які секретують гетерологічні протеїни
Зо Гібридні клони тестувалися на стабільність експресії протеїнів у генній системі, здатній до ампліфікації - (ант/мтх). Клітини спочатку трансфікували прийнятним вектором експресії, а потім трансфіковані клітини (зазвичай 105 клітин на Об-лунковий планшет) висівалися та відбиралися/ампліфікувалися селективним середовищем, в якому були відсутні гіпоксантин та тимідин, але з добавкою ЕВЗ та МТХ (5ОНМ). Після першого « відбору планшетів, клітини з лунок з високою секрецією відбиралися та переносилися до б-лункових планшетів. шо
Клітини у б-лункових планшетах надалі ампліфікувалися зі зростаючими концентраціями МТХ (100, 200, та 40ОнНМ) с у середовищі. Початкові популяції б-лункових планшетів надалі відбиралися для одержання найкращої популяції. 1» Накінець, ці популяції використовувалися для клонування окремих виділених клітинних клонів. Як зображено в табл. 4, клітини НКВ11 були оптимальними для отримання високих рівнів гетерологічних людських протеїнів. Для отримання ІСАМ-1, Ід та похідної ІІ -4, клітини НКВ11 були такими ж придатними, як і клітини СНО (дані не -1 що показані). Проте, клони НКВ росли швидше, ніж клони СНО і могли легше пристосовуватися до суспензійної культури та до умов відсутності сироватки. У випадку отримання ВОО-ЕМІИЇ, клони НКВ11 показали наближено в -і десять раз більшу продуктивність, ніж клони СНО. Вищенаведені результати вказують на те, що клітини НКВ11 є
Фу оптимальною людською клітиною хазяїна, придатною для експресії людських терапевтичних протеїнів. то
Отримання гетеролопчного протеїна о 56000800 855 о ю
Примітки: бо 1). рівень отримання ІСАМ-1 з клонів НКВ був подібним до того, що мав місце для клітин 2935. Клон НКВ, який секретував ІСАМ-1, легше адаптувався до суспензійної культури, в той час як клони 2935 дуже важко пристосовувалися до суспензійної культури. 2) - Особлива продуктивність в од./к/дн. Рівень секреції ВОО-ЕМІЇЇ був в десять раз вищим, ніж той, що мав місце для клонів, виділених з клітин СНО, трансфікованих тим же вектором експресії. 3) - Грам-кількість отримуваного 1І-45А(Т130/К121ЄЕ) була можливою через 6 місяців після трансфекції з використанням НКВ11, і в той же час забирало на декілька місяців більше з використанням клітин СНО в одночасних експериментах з використанням того ж вектору експресії бо та подібного способу.
Клітинні лінії, отримані вищезгаданими способами, містили ( див. Фіг.2 для фізичної карти векторів експресії): (ї) клони, що секретують розчинний ІСАМ-1 (1Опг/кл./дн.), отриманих з клітин НКВ11, трансфікованих ремов8 після ампліфікації у ї00нНМ МТХ; (її) окремі клітинні клони, що секретують моноклональне антитіло (анти-ТМЕ) (12пг/кл./дн.), отримані з
НКВІ13, трансфікованих ре5125 після ампліфікації у ХОНМ МТХ та обмежувального клонування розведень без
МтХ; (її) окремих клітинних клонів, що секретують вкорочений гм (В00О-ЕМІ) (5-1Омкод./кл./дн., за умов відсутності сироватки), отримані з клітин НКВ11, трансфікованих рСІЗ25ОТК після ампліфікації (40О0НМ МТУ) та 70 обмежувального клонування розведень без МТХ; (ім) клонів, які секретують ко-похідну 1/-4 (селективний агоніст 1/-4, 1/-45А; мутовані по двох положеннях амінокислот Т13О0 та К121Е) (5пг/кл./дн.), отримані з НКВ11, трансфікованих реН157 після МТХ ампліфікації. Клон НКВ, що секретує ІІЇ-45А, 152 використовувався для відносно швидкого отримання малих кількостей протеїну (грамкількості).
Обговорення
Гібридні людські клітинні лінії, описані тут, відображують бажані характеристики, якими володіють їх батьківські клітинні лінії. Клітинні лінії НКВ, які отримані злиттям людських ембріональних клітин нирки (або клітин, отриманих з людських ембріональних клітин нирки) з клітинами лімфоми Беркітта (або клітинами, отриманими з клітин лімфоми Беркітта), придатні для одержані клітинних ліній з метою експресії гетерологічних протеїнів.
Початковою метою одержання гібридних клітинних ліній 2935 та 288 було повторне вирішення проблеми, пов'язаної з клітинами 2935, які мають тенденцію до агрегації при вирощуванні у суспензійній культурі (небажана характеристика). Клітини НКВ, що отримувалися в процесі гібридизації, вирощуються у вигляді моношару при культивуванні у Т-колбах. Проте, ці клітини вирощуються у вигляді клітин суспензії (не утворюють сч ов Великих скупчень) при культивуванні у вигляді суспензії. Клітини НКВ дуже легко піддаються трансфекції і продуктивність набагато вища ніж у клітин 2935. о);
Хоча явище трансформації або гібридизації, необхідне у більшості випадків для отримання стабільної клітинної лінії може приводити до змінених профілів глікозилювання |Матазийа // У. Віої. Спет. - 1989. - 264. - Р. 2415-2423), було виявлено, що НКВІ11, який є соматичною гібридною клітинною лінією, має типово с зо людські ферменти глікозилювання, наприклад, альфа(2-3) та альфа(2-6) сиаліл трансферази. Більше того, протеїни, отримані з трансфікованих клітин НКВ мають нормальні людські моделі глікозилювання альфа(2-3) та - альфа(2-6) зв'язків сиалових кислот. Ге
На довершення клітини НКВ та гібридні людські клітини, які мають бажані характеристики з кожної з батьківських клітинних ліній; а саме, які легко вирощуються у суспензійній культурі без агрегації (що ї- спостерігалося у клітин 288) і полегшують трансфекцію та бажані характеристики секреції (що спостерігалося у ї- клітин 2935). Гібридна клітинна лінія, якій надавалась перевага, НКВІ11 є негативною для іммуноглобулінової генної експресії, як і клітини 2935. Ця риса є корисною у випадках, коли бажаним є отримання рекомбінантним способом моноклональних антитіл з людських клітин. Відкриття того, що злиття людських клітин давало в результаті клітини, які мали корисні характеристики, слугує для заохочення подальших вивчень злиття з « використанням 2935 та інших клітинних ліній В-клітинного джерела, наприклад, Мата/ма та 6Е11 для отримання шв с нових комбінацій рис у гібридних клітин зі злиттям різних батьківських клітинних ліній.
Вищенаведені приклади мають намір проілюструвати винахід, як гадають, для фахівців у цій галузі будуть )» очевидними варіантами цього винаходу. Відповідно, вважається, що мета винаходу повинна обмежуватися тільки приведеною нижче формулою.
Ше

Claims (1)

  1. Формула винаходу -І ФО 1. Клітина, отримана злиттям клітини людської ембріональної нирки , що має походження від 293 та клітини, що має походження від лімфоми Беркітта і є клітиною 288 (депозитний номер АТСС: СНІ -12569).
    ї 2. Клітина за п. 1, в якій клітина людської ембріональної нирки є клітиною, що має походження від 2935. ГЕ 3. Клітина за п. 1, яка експресує гетерологічний протеїн.
    4. Клітина за п. З, в якій гетерологічний протеїн вибрано з групи, яка складається з ЕМ, ВОБ-ЕМІ, моноклонального антитіла, антитіла анти- ГМЕ, пі 4, «РА та ЕРО.
    5. Клітинна лінія людини, позначена НКВ11 (депозитний номер АТСС: СКІ-12568), придатна для рекомбінантного отримання терапевтичних протеїнів. ІФ, 6. Клітинна лінія людини, позначена НКВ11 (депозитний номер АТСС: СКІ -12568), модифікована шляхом ГІ введення гетерологічного гена і здатна експресувати гетерологічний протеїн.
    17. Клітинна лінія за п. б, в якій протеїном є ІСАМ-1. во 8. Клітинна лінія за п. б, в якій протеїном є ВОО-ЕМІІЇ.
    9. Клітинна лінія за п. б, в якій протеїном є моноклональне антитіло.
    10. Клітинна лінія за п. 9, в якій моноклональним антитілом є анти-ТМЕ.
    11. Клітинна лінія за п. б, в якій протеїном є гі! 4.
    12. Клітинна лінія за п. 6, в якій протеїном є ЕМП. 65 13. Клітинна лінія за п. 6, в якій протеїном є ІРА.
    14. Клітинна лінія за п. 6, в якій протеїном є ЕРО.
    15. Клітинна лінія за п. б, в якій протеїном є І/-45А (Т130/К121Е), клітинна лінія позначена 152 (депозитний номер АТСС: РТА-87).
    16. Клітинна лінія за п. б, в якій протеїном є людський протеїн, який має людський профіль глікозилювання.
    17. Спосіб отримання гібридних людських клітин, придатних для експресії гетерологічного протеїну, який містить наступні стадії: а) отримання клітин людської ембріональної нирки, що має походження від 293, які мають першу бажану характеристику, р) отримання клітин, що мають походження від лімфоми Беркітта і є клітиною 288 ((депозитний номер АТСС: 7/0 ЄтІ-12569), які мають другу бажану характеристику, с) введення в контакт клітин, отриманих на стадії а) з клітинами, отриманими на стадії Б) при умовах, за яких відбувається злиття клітин, а) відбір клітин, які отримують на стадії с) для одержання клітин, які виявляють щонайменше одну бажану характеристику кожної з клітин, отриманих на стадіях а) та б).
    18. Спосіб за п. 17, в якому клітинами людської ембріональної нирки є клітини 2935. с щі о с « (Се) ча і - - с і» -І -І (о) щ» Ко) Ф) іме) 60 б5
UA2001074776A 1998-12-10 1999-08-12 Human hybrid cell for expression of gene of mammals, human cell line hkb11, method for producing hybrid human cells suitable for expression of heterologic protein UA77642C2 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US09/209,920 US6136599A (en) 1998-12-10 1998-12-10 Human hybrid host cell for mammalian gene expression
PCT/US1999/029332 WO2000034462A1 (en) 1998-12-10 1999-12-08 Human hybrid host cell for mammalian gene expression

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA77642C2 true UA77642C2 (en) 2007-01-15

Family

ID=22780882

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA2001074776A UA77642C2 (en) 1998-12-10 1999-08-12 Human hybrid cell for expression of gene of mammals, human cell line hkb11, method for producing hybrid human cells suitable for expression of heterologic protein

Country Status (27)

Country Link
US (1) US6136599A (uk)
EP (1) EP1137768B1 (uk)
JP (3) JP4332300B2 (uk)
KR (1) KR100627753B1 (uk)
CN (1) CN1230532C (uk)
AT (1) ATE306547T1 (uk)
AU (1) AU757188B2 (uk)
BG (1) BG65263B1 (uk)
BR (1) BRPI9916095B8 (uk)
CA (1) CA2353698C (uk)
CU (2) CU23382A3 (uk)
CZ (1) CZ302677B6 (uk)
DE (1) DE69927707T2 (uk)
DK (1) DK1137768T3 (uk)
ES (1) ES2249929T3 (uk)
HU (1) HU229775B1 (uk)
ID (1) ID30448A (uk)
IL (2) IL143351A0 (uk)
NO (1) NO330548B1 (uk)
PL (1) PL205549B1 (uk)
RO (1) RO121563B1 (uk)
RU (1) RU2228355C2 (uk)
SI (1) SI20693B (uk)
SK (1) SK287888B6 (uk)
TR (1) TR200101642T2 (uk)
UA (1) UA77642C2 (uk)
WO (1) WO2000034462A1 (uk)

Families Citing this family (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6358703B1 (en) 1998-12-10 2002-03-19 Bayer Corporation Expression system for factor VIII
US6136599A (en) * 1998-12-10 2000-10-24 Bayer Corporation Human hybrid host cell for mammalian gene expression
US6348192B1 (en) * 1999-05-11 2002-02-19 Bayer Corporation Interleukin-2 mutein expressed from mammalian cells
US20040235715A1 (en) * 1999-11-12 2004-11-25 Bayer Corporation Method of producing glycosylated bikunin
US6569657B1 (en) * 2000-06-27 2003-05-27 Millennium Pharmaceuticals, Inc. 32140, a novel human aldehyde dehydrogenase and uses therefor
US7094587B2 (en) * 2000-06-27 2006-08-22 Millennium Pharmaceuticals, Inc. 16002 Molecules and uses therefor
US7723102B2 (en) * 2000-09-28 2010-05-25 Bayer Corporation Enhanced transfection system
MY139948A (en) * 2000-09-28 2009-11-30 Bayer Corp Enhanced transfection system
US20060073141A1 (en) * 2001-06-28 2006-04-06 Domantis Limited Compositions and methods for treating inflammatory disorders
KR100496861B1 (ko) 2002-09-26 2005-06-22 삼성전자주식회사 하나의 핸들러에 2개 이상의 테스트 보드를 갖는 테스트장비 및 그 테스트 방법
WO2004050683A2 (en) 2002-12-02 2004-06-17 Abgenix, Inc. Antibodies directed to tumor necrosis factor and uses thereof
US7244616B2 (en) 2003-06-27 2007-07-17 Bayer Pharmaceuticals Corporation Use of molecular chaperones for the enhanced production of secreted, recombinant proteins in mammalian cells
WO2006053299A2 (en) 2004-11-12 2006-05-18 Bayer Healthcare Llc Site-directed modification of fviii
NZ580530A (en) 2007-06-06 2012-04-27 Domantis Ltd Anti vegf polypeptides, antibody variable domains and antagonists
WO2009126564A1 (en) 2008-04-07 2009-10-15 Bayer Healthcare Llc Methods of recombinant production of glycoproteins
KR101005967B1 (ko) * 2008-04-12 2011-01-05 (주)셀트리온 우수한 재조합 단백질을 생산하기 위한 인간 숙주 세포
US9090948B2 (en) 2008-09-30 2015-07-28 Abbott Molecular Inc. Primers and probes for detecting human papillomavirus and human beta globin sequences in test samples
MY155287A (en) * 2009-06-10 2015-09-30 B T S Res Internat Pty Ltd Methods of generating hybrid/chimeric cells, and uses thereof
US11401514B2 (en) 2016-07-19 2022-08-02 Brandeis University Compositions and methods for identifying RNA binding polypeptide targets
EP3793596A1 (en) 2018-05-16 2021-03-24 MorphoSys AG Antibodies targeting glycoprotein vi
JP2022524449A (ja) 2019-03-14 2022-05-02 モルフォシス・アーゲー C5aRを標的とする抗体
EP4217391A1 (en) 2020-09-24 2023-08-02 MorphoSys AG Novel human antibodies binding to human cd3 epsilon
CN113604425B (zh) * 2021-06-22 2022-10-18 中山康天晟合生物技术有限公司 一种适应无血清培养基环境的wayne293 lvpro细胞及其应用

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6045849B2 (ja) * 1980-08-25 1985-10-12 林原 健 ヒトエリトロポエチンの製造方法
US6136599A (en) * 1998-12-10 2000-10-24 Bayer Corporation Human hybrid host cell for mammalian gene expression

Also Published As

Publication number Publication date
RU2228355C2 (ru) 2004-05-10
CZ302677B6 (cs) 2011-08-31
SK287888B6 (sk) 2012-03-02
AU757188B2 (en) 2003-02-06
AU1938300A (en) 2000-06-26
SI20693B (sl) 2008-12-31
JP5826311B2 (ja) 2015-12-02
BR9916095A (pt) 2001-09-04
RO121563B1 (ro) 2007-11-30
DK1137768T3 (da) 2005-12-19
DE69927707D1 (de) 2006-02-23
CA2353698A1 (en) 2000-06-15
DE69927707T2 (de) 2006-07-13
CU23238A1 (es) 2007-09-26
EP1137768A1 (en) 2001-10-04
EP1137768B1 (en) 2005-10-12
WO2000034462A1 (en) 2000-06-15
JP2002531125A (ja) 2002-09-24
HU229775B1 (en) 2014-07-28
TR200101642T2 (tr) 2001-11-21
IL143351A0 (en) 2002-04-21
KR20020002360A (ko) 2002-01-09
SK7912001A3 (en) 2002-03-05
HUP0104681A2 (hu) 2002-04-29
US6136599A (en) 2000-10-24
PL205549B1 (pl) 2010-04-30
NO330548B1 (no) 2011-05-16
SI20693A (sl) 2002-04-30
ATE306547T1 (de) 2005-10-15
BG105566A (en) 2002-03-29
IL143351A (en) 2009-12-24
HUP0104681A3 (en) 2005-10-28
NO20012806D0 (no) 2001-06-07
JP2014131513A (ja) 2014-07-17
KR100627753B1 (ko) 2006-09-26
CN1230532C (zh) 2005-12-07
BRPI9916095B8 (pt) 2021-05-25
JP4332300B2 (ja) 2009-09-16
JP5508740B2 (ja) 2014-06-04
CU23382A3 (es) 2009-06-25
BRPI9916095B1 (pt) 2015-10-13
CZ20012023A3 (cs) 2001-10-17
BG65263B1 (bg) 2007-10-31
EP1137768A4 (en) 2002-09-18
ID30448A (id) 2001-12-06
NO20012806L (no) 2001-06-07
JP2009148295A (ja) 2009-07-09
CN1339063A (zh) 2002-03-06
ES2249929T3 (es) 2006-04-01
CA2353698C (en) 2012-02-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
UA77642C2 (en) Human hybrid cell for expression of gene of mammals, human cell line hkb11, method for producing hybrid human cells suitable for expression of heterologic protein
RU2266325C2 (ru) Среда для культивирования клеток без белков и без сыворотки
US8361790B2 (en) Human host cell for producing recombinant proteins with high quality and quantity
AU600481B2 (en) Method of producing peptides, recombinant plasmid for use in the same and animal cells transformed with the same
JP3415840B2 (ja) 外来蛋白質の産生方法
MXPA01005783A (es) Celula huesped hibrida de humano para expresion de gen de mamifero
Kreuzburg-Duffy et al. Establishment and characterization of murine macrophage-like cell lines following transformation with simian virus 40 DNA deleted at the origin of replication
JP2960552B2 (ja) 動物細胞の育種方法
JP3084030B2 (ja) 新規ハイブリドーマ
SU1495375A1 (ru) Штамм культивируемых клеток гепатокарциномы человека, дефектный по тимидинкиназе дл гибридизации и трансфекции
KR20220024478A (ko) 단백질 기반 의약들 (protein-based pharmaceuticals) 의 고 수준 생산을 위한 세포주들 (cell lines)
Hosoi et al. A human-mouse hybrid cell line expressing both human leukocyte and histocompatibility-2 antigens
MXPA98003051A (en) Preparation of recombinant factor viii in a protei free medium