RU2670889C9 - Способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина - Google Patents

Способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина Download PDF

Info

Publication number
RU2670889C9
RU2670889C9 RU2017124160A RU2017124160A RU2670889C9 RU 2670889 C9 RU2670889 C9 RU 2670889C9 RU 2017124160 A RU2017124160 A RU 2017124160A RU 2017124160 A RU2017124160 A RU 2017124160A RU 2670889 C9 RU2670889 C9 RU 2670889C9
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
recombinant glycoprotein
insulin
culture medium
glycoprotein
microorganism
Prior art date
Application number
RU2017124160A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2670889C1 (ru
Inventor
Кю Юн КИМ
Су Хён РЮ
Сам Сок СОЛ
Сун Ён КИМ
Original Assignee
ЭлДжи КЕМ, ЛТД.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=56284687&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=RU2670889(C9) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by ЭлДжи КЕМ, ЛТД. filed Critical ЭлДжи КЕМ, ЛТД.
Publication of RU2670889C1 publication Critical patent/RU2670889C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2670889C9 publication Critical patent/RU2670889C9/ru

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/1703—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • A61K38/1709—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • A61K38/1741—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals alpha-Glycoproteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575—Hormones
    • C07K14/62—Insulins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/705—Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K19/00—Hybrid peptides, i.e. peptides covalently bound to nucleic acids, or non-covalently bound protein-protein complexes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/18—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a glycosyl transferase, e.g. alpha-, beta- or gamma-cyclodextrins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/005—Glycopeptides, glycoproteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/10—Immunoglobulins specific features characterized by their source of isolation or production
    • C07K2317/14—Specific host cells or culture conditions, e.g. components, pH or temperature
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/20—Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin
    • C07K2317/21—Immunoglobulins specific features characterized by taxonomic origin from primates, e.g. man
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/40—Immunoglobulins specific features characterized by post-translational modification
    • C07K2317/41—Glycosylation, sialylation, or fucosylation
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Marine Sciences & Fisheries (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Предложен способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающий культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде, содержащей инсулин. Предложен способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающий (а) культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде для выращивания микроорганизма и (б) добавление инсулина в культуральную среду и культивирование указанного микроорганизма с получением гликопротеина. Группа изобретений позволяет контролировать и снижать содержание N-гликанов или О-гликанов в рекомбинантном гликопротеине по мере повышения концентрации инсулина в культуральной среде, что может быть полезно при получении фармацевтического рекомбинантного гликопротеина. 2 н. и 10 з.п. ф-лы, 2 ил., 2 табл., 5 пр.

Description

ОБЛАСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Настоящее изобретение относится к способу контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина.
ПРЕДШЕСТВУЮЩИЙ УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ
Как слитый белок TNFR-Fc, в котором лиганд-связывающая часть человеческого рецептора TNF-α р75 (TNFR, рецептор TNF-α) связана с Fc-фрагментом человеческого IgG1, этанерцепт был представлен компанией Amgen под торговым названием Энбрел (Enbrel) в 2002 г. Этанерцепт конкурентно ингибирует связывание с рецепторами TNF-α на поверхности клетки in vivo, ингибируя посредством этого связанный с TNF-α иммунный ответ. Соответственно, этанерцепт используют как ингибитор TNF-α при ревматоидном артрите, псориазе, анкилозирующем спондилите и так далее, и в настоящее время проводятся клинические исследования по его применению при васкулите, болезни Альцгеймера и болезни Крона.
В то же время, генный рекомбинантный фармацевтический продукт представляет собой фармацевтический продукт, содержащей в качестве активного ингредиента пептид, белок и так далее, полученный с использованием методики генетических манипуляций. Применение биотехнолоии обеспечивает преимущества, состоящие в возможности получения большого числа высоко чистых рекомбинантных белков, которые трудно получить в естественном состоянии, но сама экспрессионная структура может быть нестабильной, поскольку ген целевого белка вводят в клетку-хозяина извне. Кроме того, белки получают экспрессией гена в микроорганизме или клетке животного или растения, но не в организме человека, рекомбинантные белки могут отличаться от нативных белков по структурным, физико-химическим, иммунохимическим и биологическим свойствам и особенностям (Kwon, et al., FDC Legislation Research V, vol. 1, 2, 13-21, 2010).
В частности, в случае гликопротеина, гликозилирование и структура или форма гликоформы (сахарной цепи) могут различаться в зависимости от условий культивирования. Иными словами, в процессе получения гликопротеинов различия в структурах гликоформ или количествах сахаридов, составляющих структуру гликоформы, ведут к различным типам гликоформ, приводя посредством этого к неоднородности в зависимости от различий в условиях получения. В случае гликопротеинов с отличающимися структурами гликоформ, они отличаются от нативных форм по перемещениям или распределению в тканях in vivo или являются антагонистами нативных форм, приводя к нежелательной реакции. При продолжительном введении в течение длительного периода времени они действуют как антигены и могут приводить к иммунологическим проблемам.
Как описано выше, поскольку гликоформы могут быть важным фактором, который может влиять на фармацевтический эффект и перемещения in vivo, контроль структур гликопротеинов очень важен в области разработки рекомбинантных гликопротеиновых продуктов для лекарственных средств и разработки технологий массового производства.
В этом отношении, в публикации патента Кореи №2011-0139292, в качестве предшествующего уровня техники, раскрыт контроль гликозилирования белка и связанные с этим композиции и способы, и в публикации патента Кореи №2012-0134116 раскрыт способ увеличения числа занятых сайтов N-гликозилирования на терапевтических гликопротеинах.
ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Техническая задача
С учетом описанного выше предшествующего уровня техники, авторы настоящего изобретения приложили значительные усилия, чтобы найти способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, и в результате подтвердили, что гликозилирование рекомбинантного гликопротеина можно контролировать путем использования культуральной среды, содержащей инсулин, завершив посредством этого настоящее изобретение.
Техническое решение
Основной задачей настоящего изобретения является обеспечение способа контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающего культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде, содержащей инсулин.
Другой задачей настоящего изобретения является обеспечение способа контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающего: (а) культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде для выращивания микроорганизма; и (б) добавление инсулина в культуральную среду и культивирование указанного микроорганизма с получением гликопротеина.
Полезный эффект
Способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина по настоящему изобретению позволяет контролировать активность, фолдинг, секрецию, стабильность, период полувыведения рекомбинантого гликопротеина из плазмы и иммунный ответ на него.
ОПИСАНИЕ ГРАФИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВ
На ФИГ. 1 показана карта расщепления pCUCBin-mSig-TNFcept.
На ФИГ. 2 показаны число жизнеспособных клеток (единица измерения: 105 клеток/мл) и жизнеспособность (%) в зависимости от продолжительности культивирования клеток (единица измерения: сутки) в типичном воплощении настоящего изобретения.
НАИЛУЧШИЙ ВАРИАНТ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
В качестве аспекта, направленного на выполнение указанных выше задач, согласно настоящему изобретению предложен способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающий культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде, содержащей инсулин.
Гликопротеин относится к белку, в котором сахарид связан с определенной аминокислотой полипептида, и сахарид может относиться к гликоформе, например, гликоформе, в которой связаны по меньшей мере один или два моносахарида. В качестве примера, гликоформа, как олигосахарид, где с гликопротеином связаны различные моносахариды, может содержать такие моносахариды, как фукоза, N-ацетилглюкозамин, N-ацетилгалактозамин, галактоза, манноза, сиаловая кислота, глюкоза, ксилозы, маннозо-6-фосфат и так далее, их разветвленные формы и так далее.
В качестве примера, рекомбинантный гликопротеин может представлять собой слитый белок иммуноглобулина. Слитый белок иммуноглобулина может содержать Fc-область, представляющую собой часть иммуноглобулина, содержащую константный домен 2 тяжелой цепи (CH2), константный домен 3 тяжелой цепи (CH3) и шарнирную область, без вариабельных доменов тяжелой и легкой цепей, константного домена 1 тяжелой цепи (CH1) и константного домена легкой цепи (CL1) иммуноглобулина (Ig).
В качестве еще одного примера, рекомбинантный гликопротеин может представлять собой слитый белок TNFR-Fc.
Рецептор фактора некроза опухоли (TNFR) относится к рецепторному белку, связывающемуся с TNF-α. Белок TNFR может представлять собой, без ограничения, белок TNFRI(p55) или белок TNFRII(p75), предпочтительно белок TNFRII. Кроме того, TNFRII может быть использован альтернативно с представителем 1 В суперсемейства рецептора фактора некроза опухоли (TNFRSF1B). Белок TNFRII разделяют на 4 домена и трансмембранную область, например, без ограничения, белок TNFRII, состоящий из 235 аминокислот, включая 4 домена и трансмембранную область. Информация о белках TNFRI и TNFRII может быть получена из известных баз данных, таких как GenBank Национальных институтов здравоохранения США. Например, белки TNFRI и TNFRII могут представлять собой, без ограничения, белки с регистрационным номером NP_001056 или Р20333.
Обладая биологической активностью по связыванию с TNF-α, сверхэкспрессия которого in vivo, как известно, приводит к различным заболеваниям, белок TNFR может быть использован для лечения заболеваний, опосредованных TNF-α. Для применения в указанных целях белок TNFR может быть получен и использован в форме слитого белка, период полувыведения которого увеличен слиянием Fc-области иммуноглобулина и белка TNFR.
Слитый белок «рецептор фактора некроза опухоли (TNFR) - Fc» относится к слитому белку, где весь белок TNFR или его часть связаны с Fc-областью иммуноглобулина посредством ферментативной реакции, или к продукту, где эти два полипептида экспрессированы с получением одного полипептида посредством генетических манипуляций. Слитый белок TNFR-Fc может иметь белок TNFR и Fc-область иммуноглобулина, связанные друг с другом, без ограничения, непосредственно или через пептидный линкер. Неограничивающим примером слитого белка TNFR-Fc может быть этанерцепт (патент США 7915225; 5605690; Re. 36755).
Слитый белок TNFR-Fc может быть получен слиянием всего белка TNFR или его части с Fc-областью иммуноглобулина, например, без ограничения, 232 аминокислот Fc-области иммуноглобулина, включая шарнирную область, и аминокислотных сайтов 1-235 TNFRII. Кроме того, кодоны слитого белка TNFR-Fc могут быть оптимизированы в соответствии с клетками-хозяевами для экспрессии, и слитый белок TNFR-Fc может, например, без ограничения, представлять собой слитый белок TNFR-Fc, кодоны которого оптимизированы специально для клеток СНО. Слитый белок TNFR-Fc представляет собой не только какую-либо одну аминокислотную последовательность, но также аминокислотные последовательности, на 70% или более, предпочтительно на 80% или более, более предпочтительно на 90% или более, еще более предпочтительно на 95% или более, наиболее предпочтительно на 98% аналогичны этой аминокислотной последовательностью, и включает все белки, обладающие активностью по существенному связыванию с TNF-α. Очевидно, при условии, что последовательность, обладающая таким сходством, представляет собой аминокислотную последовательность, идентичную слитому белку TNFR-Fc, или аминокислотную последовательность, обладающую соответствующей биологической активностью, объем настоящего изобретения включает белковые мутанты с аминокислотными последовательностями, часть которых удалена, модифицирована, заменена или добавлена.
Fc относится к части иммуноглобулина, содержащей константный домен 2 тяжелой цепи CH2), константный домен 3 тяжелой цепи (CH3) и шарнирную область, без вариабельных доменов тяжелой и легкой цепей, константного домена 1 тяжелой цепи CH1) и константного домена легкой цепи (CL1) иммуноглобулина (Ig). Кроме того, Fc-область по настоящему изобретению включает не только нативную форму аминокислотной последовательности, но также ее производные аминокислотные последовательности. Производная аминокислотная последовательность означает, что один или более чем один аминокислотный остаток нативной формы аминокислотной последовательности отличается в силу делеции, вставки, консервативной или неконсервативной замены или их комбинации. Кроме того, Fc-область иммуноглобулина может представлять собой Fc-область, имеющую происхождение от IgG, IgM, IgE, IgA или IgD, или их комбинаций или гибридов. Кроме того, Fc-область иммуноглобулина предпочтительно имеет происхождение от IgG, который, как известно, увеличивает период полувыведения связывающего белка, и более предпочтительно имеет происхождение от IgG1, но не ограничена этим подклассом и может быть получена из IgG любого подкласса (IgG1, IgG2, IgG3 и IgG4).
Fc-область может быть получена генетически или получением гена, кодирующего Fc-область, с использованием рекомбинантного вектора или расщеплением очищенных поликлональных антител или моноклональных антител подходящим ферментом, таким как папаин, пепсин и так далее, соответственно.
Слитый белок TNFR-Fc может быть получен ведением вектора экспрессии, содержащего полинуклеотид, кодирующий слитый белок, в клетку-хозяина и его экспрессией. В типичном воплощении настоящего изобретения в качестве вектора экспрессии, содержащего полинуклеотид, кодирующий слитый белок TNFR-Fc, использовали вектор pCUCBin-mSig-TNFcept, и трансформировали им клетки СНО для экспрессии слитого белка TNFR-Fc.
В настоящем изобретении микроорганизм может быть использован в том же значении, что клетка-хозяин или трансформант.Неограничивающим примером может быть линия животных клеток, растительная или дрожжевая клетка-хозяин. В типичном воплощении настоящего изобретения в качестве микроорганизма использовали клетки яичника китайского хомячка (клетки СНО), но без ограничения ими, при условии, что микроорганизм может быть трансформирован полинуклеотидом, кодирующим рекомбинантный гликопротеин.
Полинуклеотид, при условии, что его можно экспрессировать в микроорганизме, может быть введен в хромосому и расположен в ней или расположен вне хромосомы. Полинуклеотид включает РНК и ДНК, кодирующие целевой белок. Способ введения полинуклеотида не ограничен, при условии, что его применяют в данной области. В качестве примера, полинуклеотид может быть введен в микроорганизм в форме экспрессионной кассеты, генной конструкции, содержащей все обязательные элементы, необходимые для самостоятельной экспрессии. В качестве еще одного примера, может быть использован способ модификации вектором экспрессии, содержащим последовательность полинуклеотида, кодирующую целевой белок, функционально связанный с подходящей регуляторной последовательностью таким образом, что целевой белок может быть экспрессирован в подходящей клетке-хозяине. Регуляторная последовательность содержит промотор, инициирующий транскрипцию, случайную операторную последовательность для регуляции транскрипции, последовательность, кодирующую подходящий домен связывания с рибосомами на мРНК, и последовательность для регуляции транскрипции и трансляции. После трансформации подходящей клетки-хозяина вектор может быть реплицирован или функционировать независимо от генома хозяина, или может быть интегрирован в сам геном хозяина. Относительно вектора, используемого в настоящем изобретении, может не быть конкретных ограничений, при условии, что вектор может быть реплицирован в клетке-хозяине, и может быть использован любой вектор, известный в данной области.
Паттерн гликозилирования рекомбинантного гликопротеина означает паттерн экспрессии гликоформы, проявляющийся при гликозилировании гликопротеина. Примеры паттерна гликозилирования включают наличие гликозилирования, связывающего сахарид с белком, тип сахарида, тип гликозилирования, содержание сахарида, состав моносахарида (сахаридов), включая молярное соотношение, расположение гликоформы, структуру гликоформы, включая последовательность, место гликозилирования, количество занятых сайтов гликозилирования, число гликоформ и относительное содержание в соответствии со структурой. В зависимости от паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина возможны различия по биологической активности или стабильности in vivo.
В настоящем изобретении инсулин может контролировать N-связанное гликозилирование рекомбинантного гликопротеина. В настоящем изобретении N-связанное гликозилирование может быть использовано в том же значении, что N-гликозилирование. В качестве примера, инсулин может снижать содержание N-гликанов в рекомбинантном гликопротеине. В настоящем изобретении N-гликан может быть использован в том же значении, что N-гликоформа, и может относиться к случаю, когда сахарид связан с аспарагином белка.
В настоящем изобретении инсулин может контролировать О-связанное гликозилирование рекомбинантного гликопротеина. В настоящем изобретении N-связанное гликозилирование может быть использовано в том же значении, что О-гликозилирование. В качестве еще одного примера, инсулин может снижать содержание О-гликанов в рекомбинантном гликопротеине. В настоящем изобретении О-гликан может быть использован в том же значении, что О-гликоформа, и может относиться к случаю, когда сахарид связан с серином или треонином белка.
В настоящем изобретении инсулин может контролировать N-связанное гликозилирование и О-связанное гликозилирование рекомбинантного гликопротеина.
В типичном воплощении настоящего изобретения было обнаружено, что добавление инсулина влияет на паттерн гликозилирования гликопротеина (Таблица 2). Конкретно, было подтверждено, что добавление инсулина контролирует и снижает содержание N-гликанов и/или О-гликанов. В частности, было подтверждено, что в процессе культивирования клеток, способных продуцировать гликопротеин, добавление инсулина в фазе продуцирования играет важную роль в контроле паттерна гликозилирования.
Концентрация инсулина может составлять от 0,0001 мг/л до 1 г/л относительно общего объема культуральной среды. В типичном воплощении настоящего изобретения было подтверждено, что содержание N-гликанов и/или О-гликанов можно контролировать и снижать по мере повышения концентрации инсулина (Таблица 2).
Ограничений относительно культуральной среды нет, при условии, что ее используют в данной области для культивирования микроорганизма или клетки-хозяина, содержащих полинуклеотид, кодирующий гликопротеин. Например, культуральная среда может содержать аминокислоту, такую как L-глутамин, тимидин, аланин, моногидрохлорид аргинина, моногидрат аспарагина, аспарагиновую кислоту, цистеин, глицин, гистидин, изолейцин, лейцин, моногидрохлорид лизина, метионин, фенилаланин, пролин, серии, треонин, триптофан, тирозин (динатриевую соль, дигидрат) и валин. В качестве еще одного примера, культуральная среда может содержать глюкозу, бикарбонат натрия, хлорид натрия, безводный хлорид кальция, пентагидрат сульфата меди, нонагидрат нитрата железа, гептагидрат сульфата железа, хлорид калия, безводный сульфат магния, безводный хлорид магния, фосфат натрия (одноосновный или двухосновный, моногидрат), гептагидрат сульфата цинка, гипоксантин, дигидрохлорид путресцина, пируват натрия, биотин, D-пантотенат кальция, хлорид холина, цианкобаламин, фолиевую кислоту, i-инозит, никотинамид, моногидрохлорид пиридоксаля, моногидрохлорид пиридоксина, рибофлавин, моногидрохлорид тиамина, безводную глюкозу, хлорид калия, фосфат натрия (NaH2PO4⋅H2O), гидрокарбонат натрия (NaHCO3), HEPES (свободная кислота), сульфат декстрана, хлорид натрия, аскорбиновую кислоту, D-биотин, Нурер 1510 или комбинацию из двух или более. Исходная культура для посева может также содержать МТХ для повышения уровня экспрессии.
Культивирование может представлять собой метод перфузионного культивирования. Культивирование может представлять собой метод культивирования перфузией культуральной жидкости вокруг микроорганизма. Метод перфузионного культивирования позволяет легко контролировать концентрацию инсулина в соответствии с целевым паттерном гликозилирования.
В качестве еще одного аспекта, согласно настоящему изобретению предложен способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающий: (а) культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде для выращивания микроорганизма; и (б) добавление инсулина в культуральную среду и культивирование указанного микроорганизма с получением гликопротеина.
В качестве примера, рекомбинантный гликопротеин может представлять собой слитый белок иммуноглобулина. В качестве еще одного примера, рекомбинантный гликопротеин может представлять собой слитый белок TNFR-Fc, описанный выше.
Стадия (а), представляющая собой стадию роста, может дополнительно включать культивирование для посева.
Культуральная среда по стадии (а) не может содержать инсулин.
Стадия (б) может представлять собой стадию добавления инсулина в различных концентрациях в соответствии с целевым паттерном гликозилирования. В типичном воплощении настоящего изобретения было обнаружено, что в фазе роста содержание N-гликанов и/или О-гликанов варьировало в зависимости от добавления инсулина. В частности, было подтверждено, что добавление инсулина позволяет контролировать и снижать содержание N-гликанов и/или О-гликанов. В частности, было подтверждено, что в процессе культивирования клеток, способных продуцировать гликопротеин, добавление инсулина в фазе продуцирования играет важную роль в контроле паттерна гликозилирования.
Концентрация инсулина может составлять от 0,0001 мг/л до 1 г/л относительно общего объема культуральной среды. Было подтверждено, что содержание N-гликанов и/или О-гликанов можно контролировать и снижать по мере повышения концентрации инсулина (Таблица 2).
Инсулин может контролировать N-связанное гликозилирование и О-связанное гликозилирование рекомбинантного гликопротеина. В качестве примера, инсулин может снижать содержание N-гликанов в рекомбинантном гликопротеине. В качестве еще одного примера, инсулин может снижать содержание О-гликанов в рекомбинантном гликопротеине.
В качестве еще одного аспекта, согласно настоящему изобретению предложен состав культуральной среды для контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина. Инсулин можно включать в концентрации от 0,0001 мг/л до 1 г/л относительно общего объема культуральной среды.
Например, в процессе культивирования микроорганизма эту культуральную среду можно использовать только в фазе продуцирования.
ВАРИАНТ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Далее настоящее изобретение будет подробно описано следующими типичными воплощениями. Тем не менее, типичные воплощения раскрыты здесь исключительно в иллюстративных целях, и их не следует толковать как ограничение объема настоящего изобретения.
Пример 1: Получение клеточной линии для получения гликопротеина
1-1. Получение вектора
Применяли методы, чаще всего используемые в молекулярной биологии, такие как обработка рестрикционными ферментами, очистка плазмидной ДНК, конъюгация участков ДНК и трансформация Е. coli, с минимальными модификациями способов, описанных в Molecular Cloning (2nd edition), Sambrook etal.
Ген человеческого рецептора TNF р75 (TNFR) клонировали с использованием библиотеки кДНК, где в качестве матрицы была использована мРНК, выделенная из клеточной линии HUVEC, и проводили слияние клонированного гена с Fc-областью человеческого IgGi, получая TNFR-IgGi. С использованием вектора pTOP-BA-RL-pA (публикация патента Кореи №10-2012-0059222; содержит «CMVe», «СВ» и «интрон бета-актина») в качестве матрицы и TNFR-IgG1 получали вектор pCUCBin-mSig-TNFcept.
1-2. Культивирование материнских клеток
В качестве материнских клеток использовали CHO/dhfr- (CHODXB11). CHO/dhfr- представляют собой клетки с дефицитом дигидрофолатредуктазы (DHFR), выделенные из клеток СНО.
1-3. Трансформация и выбор клеточной линии-продуцента
Трансформированные клетки получали с использованием CHO/dhfr- (CHODXB11) и вектора pCUCBin-mSig-TNFcept, содержащего ген рецептора TNF р75 (TNFR), и ген амплифицировали, используя концентрацию МТХ. Клетки идентифицировали как трансформированные клетки и отбирали отдельные клоны в качестве клеточной линии-продуцента. Затем клеточные линии помещали в стеклянную емкость и хранили в жидком азоте.
Пример 2: Культивирование клеточной линии для получения гликопротеина и сбор белка
Использовали разные культуральные среды в зависимости от фазы культивирования. Для получения основной культуральной среды инсулин, 5,8 г/л, добавляли в среду X011SB (Merck Millipore, номер по каталогу 102443). В фазе культивирования для посева использовали среду (Media EC-SI), где в основную культуральную среду были добавлены Юг/л безводной глюкозы (Sigma) и 0,584 г/л глутамина, глицина и серина (Sigma). В фазе роста использовали среду (EC-GM), где в основную культуральную среду были добавлены 5 г/л безводной глюкозы и 0,584 г/л L-глутамина, глицина и серина. В фазе продукции использовали среду (ЕС-РМ), где в основную культуральную среду были добавлены 15 г/л безводной глюкозы и 0,584 г/л L-глутамина, глицина и серина.
Стеклянную емкость с клеточной линией, полученной в Примере 1, быстро размораживали на водяной бане и содержащиеся в ней клетки перемещали в пробирку Falcon, содержащую 10 мл культуральной среды. Полученные клетки центрифугировали и удаляли супернатант. Затем клетки ресуспендировали в 10 мл среды ЕС-SI и высевали их в колбу Эрленмейера до конечного объема 50 мл. Клетки культивировали с использованием биореактора для клеточных культур CelliGen310 объемом 5 л, получая 2 л по рабочему объему. По достижении числа жизнеспособных клеток 2×106 клеток/мл после пятикратного культивирования инокулята, культуральную среду начинали заменять на EC-GM посредством перфузионного культивирования. По мере роста числа жизнеспособных клеток повышали скорость смены культуральной среды для эффективного разделения клеток. Когда число жизнеспособных клеток достигало 1,5×107 клеток/мл (Фиг. 2), культуральную среду меняли на ЕС-РМ, переходя от фазы роста к фазе продуцирования. Сбор повторяли в общей сложности четыре раза и собранный белок очищали. Полученное значение представляло собой среднее значение четырех сборов.
Пример 3: Анализ содержания гликанов 3-1. Анализ содержания О-гликанов Образец, очищенный в Примере 2, разбавляли буфером с 25 мМ фосфатом натрия и рН 6,3 до 100 мкл и концентрации 1,0 мг/мл. К каждому образцу добавляли по 4 мкл N-гликозидазы F (1 ЕД/мкл Roche), 2 мкл нейраминидазы (1 ЕД/100 мкл) и 2 мкл трипсина (1 мг/мл, Promega) и проводили взаимодействие при 37°С в течение 18 часов. Затем проводили LC-MS-анализ.
Вносили 80 мкл образца и триптические пептиды затем анализировали с использованием C18RP (4,6 мм × 250 мм, 5 мкм, 300 A; Vydac, номер по каталогу 218ТР54). В качестве подвижной фазы А использовали 0,1% TFA в воде и в качестве подвижной фазы В использовали 0,1% TFA в 80%-м холодном CAN. Анализ проводили в условиях градиента на протяжении 150 минут.Используя UV-детектор, пептид выявляли на 215 нм, и исследуемый материал, разделенный посредством LC, соединяли с масс-спектрометром (LTQXL, Thermo) для MS-анализа и расчета относительной площади (%) О-гликопептидов.
3-2. Анализ содержания N-гликанов
Образец, очищенный в Примере 2, и стандартный образец (этанерцепт, Pfizer) разбавляли разбавителем для образцов (25 мМ фосфат натрия (буфер с рН 6,3)) до 3,0 мг/мл. Смешивали по 100 мкл каждого образца и 6 мкл раствора N-гликозидазы F и проводили взаимодействие при 37°С в течение 20 часов.
После взаимодействия в раствор добавляли 400 мкл этанола и перемешивали на вихревой мешалке. Полученный раствор центрифугировали, после чего супернатант переносили в пробирку типа Эппендорф и полностью высушивали с использованием концентратора SpeedVac. После добавления 10 мкл агента для мечения 2-АА к высушенному образцу и их перемешивания смесь подвергали взаимодействию при 45°С и охлаждали до комнатной температуры.
На одноразовую пробирку для культивирования помещали картридж GlycoClean S, после чего последовательно пропускали дистиллированную воду, 30%-й ацетат и ацетонитрил. Охлажденный образец вносили в центр мембраны картриджа и пропускали с ацетонитрилом. Для элюирования N-гликанов в картридж вносили дистиллированную воду, собирая элюат в пробирку типа Эппендорф. Полученный раствор гликанов лиофилизировали и хранили до анализа.
Анализ проводили, используя колонку для HPLC (AsahiPak NH2P-50 4Е, 4,6×250 мм) в условиях градиента в течение 130 минут с использованием 0,5 мМ ацетата аммония (рН 6,7) и 250 мМ ацетата аммония (рН 5,6) в качестве подвижных фаз А и В, соответственно. Для выявления использовали флуорометрический детектор и рассчитывали суммарную площадь пиков по числу сиаловых кислот, присутствующих на конце N-гликана. В случае отсутствия сиаловой кислоты его отмечали как нейтральный. В случае одной (моносиалил) и двух (дисиалил) их отмечали как -1 и -2, соответственно.
Экспериментальный пример 1. Культивирование клеточной линии с использованием культуральной среды без инсулина, добавляемого в фазе продуцирования
Для культивирования клеточной линии использовали такую же культуральную среду, как в фазе продукции в Примере 2, но без инсулина. Анализировали содержание N-гликанов (%) и долю относительной площади (%) О-гликопептидов при разной температуре, и они показаны в Таблице 1 ниже.
Figure 00000001
Figure 00000002
Экспериментальный пример 2. Сравнение изменений в паттернах гликозилирования в зависимости от добавления инсулина в фазе продукции
Сравнивали паттерны гликозилирования в зависимости от добавления инсулина, и они показаны в Таблице 2 ниже.
Figure 00000003
В результате было показано, что в процессе культивирования клеток, способных продуцировать гликопротеин, добавление инсулина в фазе продукции влияло на паттерн гликозилирования. В частности, было показано, что содержание N-гликанов и/или О-гликанов изменялось в зависимости от добавления инсулина. Конкретно, было подтверждено, что добавление инсулина позволяет контролировать и снижать содержание N-гликанов и/или О-гликанов.
Несмотря на то, что настоящее изобретение было описано со ссылкой на конкретные иллюстративные воплощения, специалистам в области, к которой относится настоящее изобретение, будет ясно, что настоящее изобретение может быть воплощено в других конкретных формах без выхода за рамки технической сущности или существенных характеристик настоящего изобретения. Таким образом, описанные выше воплощения во всех отношениях являются иллюстративными и не являются ограничивающими. Кроме того, объем настоящего изобретения определен приложенной формулой изобретения, но не подробным описанием, и следует понимать, что все модификации или варианты, имеющие происхождение от значений и объема настоящего изобретения и его эквивалентов, включены в объем приложенной формулы изобретения.
ПРОМЫШЛЕННАЯ ПРИМЕНИМОСТЬ
Поскольку он позволяет изменять содержание N-гликанов и/или О-гликанов в зависимости от добавления инсулина, особенно в фазе роста, способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина по настоящему изобретению может быть очень полезен при получении фармацевтического рекомбинантного гликопротеина, где единообразие связывания сахаридных молекул играет важную роль.

Claims (14)

1. Способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающий культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде, содержащей инсулин, где инсулин снижает содержание N-гликана или О-гликана в рекомбинантном гликопротеине.
2. Способ по п.1, где рекомбинантный гликопротеин представляет собой слитый белок иммуноглобулина.
3. Способ по п.1, где рекомбинантный гликопротеин представляет собой слитый белок TNFR (рецептор фактора некроза опухоли)-Fc.
4. Способ по п.1, где концентрация инсулина составляет от 0,0001 до 0,03 мг/л относительно общего объема культуральной среды.
5. Способ по п.1, где инсулин контролирует N-связанное гликозилирование и О-связанное гликозилирование.
6. Способ по п.1, где культивирование представляет собой метод перфузионного культивирования.
7. Способ контроля паттерна гликозилирования рекомбинантного гликопротеина, включающий:
(а) культивирование микроорганизма, содержащего полинуклеотид, кодирующий рекомбинантный гликопротеин, в культуральной среде для выращивания микроорганизма; и
(б) добавление инсулина в культуральную среду и культивирование указанного микроорганизма с получением гликопротеина, где инсулин снижает содержание N-гликана или О-гликана в рекомбинантном гликопротеине.
8. Способ по п.7, где стадия (б) представляет собой стадию добавления инсулина в различных концентрациях в соответствии с заданным паттерном гликозилирования.
9. Способ по п.7, где рекомбинантный гликопротеин представляет собой слитый белок иммуноглобулина.
10. Способ по п.7, где рекомбинантный гликопротеин представляет собой слитый белок TNFR-Fc.
11. Способ по п.7, где концентрация инсулина составляет от 0,0001 до 0,03 мг/л относительно общего объема культуральной среды.
12. Способ по п.7, где культивирование представляет собой метод перфузионного культивирования.
RU2017124160A 2014-12-31 2015-12-30 Способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина RU2670889C9 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020140195976A KR102007930B1 (ko) 2014-12-31 2014-12-31 재조합 당단백질의 글리코실화 조절 방법
KR10-2014-0195976 2014-12-31
PCT/KR2015/014512 WO2016108638A1 (ko) 2014-12-31 2015-12-30 재조합 당단백질의 글리코실화 조절 방법

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2670889C1 RU2670889C1 (ru) 2018-10-25
RU2670889C9 true RU2670889C9 (ru) 2018-12-11

Family

ID=56284687

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017124160A RU2670889C9 (ru) 2014-12-31 2015-12-30 Способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина

Country Status (11)

Country Link
US (1) US10131891B2 (ru)
EP (1) EP3241908B1 (ru)
JP (1) JP6502505B2 (ru)
KR (1) KR102007930B1 (ru)
AU (1) AU2015372704B2 (ru)
BR (1) BR112017014252A2 (ru)
IL (1) IL253217B (ru)
MX (1) MX2017008634A (ru)
RU (1) RU2670889C9 (ru)
SA (1) SA517381863B1 (ru)
WO (1) WO2016108638A1 (ru)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999061650A1 (en) * 1998-05-29 1999-12-02 Genentech, Inc. Cell culture process for producing glycoproteins
KR20090029841A (ko) * 2006-07-13 2009-03-23 와이어쓰 당단백질의 생산
KR20110139292A (ko) * 2009-04-20 2011-12-28 화이자 인코포레이티드 단백질 글리코실화의 제어 및 그와 관련된 조성물 및 방법
US20120276631A1 (en) * 2011-04-27 2012-11-01 Abbott Laboratories Methods for controlling the galactosylation profile of recombinantly-expressed proteins

Family Cites Families (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5705364A (en) 1995-06-06 1998-01-06 Genentech, Inc. Mammalian cell culture process
JPH0947284A (ja) * 1995-08-07 1997-02-18 Sumitomo Pharmaceut Co Ltd 動物細胞の培養方法
US7294481B1 (en) * 1999-01-05 2007-11-13 Immunex Corporation Method for producing recombinant proteins
IL161541A0 (en) * 2001-10-22 2004-09-27 Applied Research Systems Mutant glycoproteins
US7300773B2 (en) 2004-08-27 2007-11-27 Wyeth Research Ireland Limited Production of TNFR-Ig
US20100203584A1 (en) * 2005-09-20 2010-08-12 Hideharu Taira Host Cells Used For Production of Recombinant Protein
EP3026109B1 (en) 2005-12-08 2022-03-09 Amgen Inc. Improved production of glycoproteins using manganese
MY161866A (en) * 2006-09-13 2017-05-15 Abbvie Inc Cell culture improvements
DK2115126T3 (en) 2007-03-02 2015-05-04 Wyeth Llc Use of copper and glutamate in cell culture for the preparation of polypeptides
KR20150126739A (ko) * 2008-09-15 2015-11-12 제넨테크, 인크. 세포 오스몰농도를 조절하기 위한 조성물 및 방법
US20120329709A1 (en) 2009-05-26 2012-12-27 Brian Edward Collins Production of glycoproteins
CN103003438B (zh) 2010-02-10 2016-01-20 拜康有限公司 减少蛋白质糖基化的方法和过程及其蛋白质
CN102858949B (zh) 2010-02-24 2016-07-06 默沙东公司 用于增加在巴氏毕赤酵母中生产的治疗性糖蛋白上的n-糖基化位点占据的方法
KR101868139B1 (ko) 2010-11-30 2018-06-15 주식회사 엘지화학 새로운 융합 프로모터 및 이를 포함하는 재조합 벡터
PL2726600T3 (pl) 2011-07-01 2017-08-31 Amgen Inc. Hodowla ssaczych komórek
KR102202476B1 (ko) 2013-03-15 2021-01-12 제넨테크, 인크. 세포 배양 배지 및 항체 생산 방법
JP2016521701A (ja) 2013-06-07 2016-07-25 ノヴォ ノルディスク アー／エス 成熟インスリンポリペプチドを作製するための方法
US20160237399A1 (en) * 2015-02-18 2016-08-18 Biogen Ma Inc. Control of Protein Glycosylation by Culture Medium Supplementation and Cell Culture Process Parameters
PL3036320T3 (pl) * 2013-08-19 2021-11-02 Biogen Ma Inc. Kontrola glikozylacji białka poprzez parametry procesu suplementacji pożywki hodowlanej i hodowli komórkowej

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999061650A1 (en) * 1998-05-29 1999-12-02 Genentech, Inc. Cell culture process for producing glycoproteins
KR20090029841A (ko) * 2006-07-13 2009-03-23 와이어쓰 당단백질의 생산
RU2463345C2 (ru) * 2006-07-13 2012-10-10 Вайет Получение гликопротеинов
KR20110139292A (ko) * 2009-04-20 2011-12-28 화이자 인코포레이티드 단백질 글리코실화의 제어 및 그와 관련된 조성물 및 방법
US20120276631A1 (en) * 2011-04-27 2012-11-01 Abbott Laboratories Methods for controlling the galactosylation profile of recombinantly-expressed proteins

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MARIE-CLAIRE BIOL-N’GARAGBA et al., Regulation of the intestinal glycoprotein glycosylation during postnatal development: role of hormonal and nutritional factors, Biochimie Vol. 85, pp. 331-352, 2003. *

Also Published As

Publication number Publication date
JP6502505B2 (ja) 2019-04-17
IL253217B (en) 2022-08-01
AU2015372704A1 (en) 2017-07-20
US20170342392A1 (en) 2017-11-30
AU2015372704B2 (en) 2018-09-20
BR112017014252A2 (pt) 2018-01-02
EP3241908B1 (en) 2020-08-05
MX2017008634A (es) 2018-04-26
WO2016108638A1 (ko) 2016-07-07
JP2018500041A (ja) 2018-01-11
KR20160081699A (ko) 2016-07-08
IL253217A0 (en) 2017-08-31
KR102007930B1 (ko) 2019-08-06
SA517381863B1 (ar) 2020-06-23
US10131891B2 (en) 2018-11-20
RU2670889C1 (ru) 2018-10-25
EP3241908A1 (en) 2017-11-08
EP3241908A4 (en) 2018-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2324046T5 (es) Procedimiento para controlar la sialilación de proteínas producidas por un cultivo de células de mamíferos
AU2002255600B2 (en) Efficient recovery of correctly refolded proteins
US20220348636A1 (en) Method for producing fusion protein having igg fc domain
JP2007500016A (ja) 培養においてタンパク質生成を増大させるための方法
US20070099266A1 (en) Process for the production of tumor necrosis factor-binding proteins
Ozgur et al. Therapeutic proteins: A to Z
RU2698671C2 (ru) КОЛИЧЕСТВЕННАЯ ОЦЕНКА НЕПРАВИЛЬНО СВЕРНУТОГО TNFR2:Fc
RU2670889C9 (ru) Способ контроля гликозилирования рекомбинантного гликопротеина
CN115023422A (zh) 糖基化多肽
NZ733430A (en) A method for controlling glycosylation of recombinant glycoprotein
NZ752502B2 (en) A Method For Controlling Glycosylation Of Recombinant Glycoprotein
NZ752502A (en) A Method For Controlling Glycosylation Of Recombinant Glycoprotein

Legal Events

Date Code Title Description
TH4A Reissue of patent specification