RU2633059C2 - Инактивация вирусов с применением каприлата - Google Patents

Инактивация вирусов с применением каприлата Download PDF

Info

Publication number
RU2633059C2
RU2633059C2 RU2013134696A RU2013134696A RU2633059C2 RU 2633059 C2 RU2633059 C2 RU 2633059C2 RU 2013134696 A RU2013134696 A RU 2013134696A RU 2013134696 A RU2013134696 A RU 2013134696A RU 2633059 C2 RU2633059 C2 RU 2633059C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
albumin
concentration
caprylate
viruses
Prior art date
Application number
RU2013134696A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2013134696A (ru
Inventor
Витольд ЛЕБИНГ
Даг БЕРНС
Нейтан РОТ
Джоан ХОТТА
Original Assignee
Грифольс, С.А.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=48795471&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=RU2633059(C2) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Грифольс, С.А. filed Critical Грифольс, С.А.
Publication of RU2013134696A publication Critical patent/RU2013134696A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2633059C2 publication Critical patent/RU2633059C2/ru

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/76—Albumins
    • C07K14/765—Serum albumin, e.g. HSA
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/76—Albumins
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N37/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having three bonds to hetero atoms with at the most two bonds to halogen, e.g. carboxylic acids
    • A01N37/02—Saturated carboxylic acids or thio analogues thereof; Derivatives thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/38—Albumins
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/08—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing oxygen, e.g. ethers, acetals, ketones, quinones, aldehydes, peroxides
    • A61K47/12—Carboxylic acids; Salts or anhydrides thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/08—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing oxygen, e.g. ethers, acetals, ketones, quinones, aldehydes, peroxides
    • A61K47/14—Esters of carboxylic acids, e.g. fatty acid monoglycerides, medium-chain triglycerides, parabens or PEG fatty acid esters
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • C12N7/04—Inactivation or attenuation; Producing viral sub-units
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • C12N7/04—Inactivation or attenuation; Producing viral sub-units
    • C12N7/06—Inactivation or attenuation by chemical treatment
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2121/00—Preparations for use in therapy
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011—Details
    • C12N2760/20011—Rhabdoviridae
    • C12N2760/20211—Vesiculovirus, e.g. vesicular stomatitis Indiana virus
    • C12N2760/20261—Methods of inactivation or attenuation
    • C12N2760/20263—Methods of inactivation or attenuation by chemical treatment
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011—Details
    • C12N2770/24011—Flaviviridae
    • C12N2770/24311—Pestivirus, e.g. bovine viral diarrhea virus
    • C12N2770/24361—Methods of inactivation or attenuation
    • C12N2770/24363—Methods of inactivation or attenuation by chemical treatment

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к фармацевтической промышленности, а именно к способу приготовления альбумина плазмы крови для фармацевтического применения и к способу инактивации вирусов в растворе, содержащем альбумин. Способ приготовления альбумина плазмы крови для фармацевтического применения включает следующие стадии: (i) получение элюата фракции IV-1 или фракции Коэна V; (ii) доведение концентрации раствора альбумина до значения, составляющего меньше чем 5 мас.%; (iii) доведение значения рН раствора до значения рН, составляющего 5 или меньше; (iv) добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия до концентрации 20 мМ; (v) повышение температуры раствора до 27-30°С; (vi) инкубацию раствора на протяжении 30-120 мин, с последующим фильтрованием раствора; выполнением ультрафильтрации и диафильтрации; составлением и увеличением объема раствора; стерилизацией, наполнением емкостей и пастеризацией альбумина. Способ инактивации вирусов в растворе, содержащем альбумин, включает следующие этапы: (i) доведение концентрации раствора альбумина до значения, составляющего меньше чем 5 мас.%; (ii) доведение значения рН раствора до значения рН, составляющего 5 или меньше; (iii) добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия; (iv) повышение температуры раствора до 27-30ºС и (v) инкубацию раствора на протяжении 30-120 мин. Группа изобретений обеспечивает уменьшение риска передачи переносимых кровью вирусов, при этом уменьшается время процесса очистки альбумина. 4 н. и 12 з.п. ф-лы, 7 ил., 4 табл., 4 пр.

Description

ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ
Здесь описаны способы инактивации вирусов с применением каприлата, во время очистки альбумина плазмы.
ПРЕДПОСЫЛКИ СОЗДАНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Человеческий сывороточный альбумин (далее - альбумин) является самым распространенным белком в плазме крови человека. Циркулирующий в крови альбумин представляет собой белок с 585 аминокислотами с молекулярной массой, составляющей 67 кДа. Белок имеет время полужизни в сыворотке, составляющее приблизительно 20 дней, и принимает участие в переносе многих гормонов, метаболитов, а также лекарственных средств, так же как и в поддерживании онкотического давления и в буферировании значения pH крови. Альбумин вводят терапевтически, чтобы заменить утерянную жидкость и восстановить объем крови при травме, ожоге и в случае хирургических пациентов.
Коэн первым описал очистку альбумина плазмы крови человека посредством дифференциального фракционирования. См. Cohn и др., J.. Chem. Soc. 68: 459-475 (1946); Cohn и др., J.. Chem. Soc. 69:1753-1761 (1947); патенты США №2390074 и 2469193. Эти способы были улучшены Герлафом (Gerlough). См. патент США №2710293 и 2710294. В указанных способах применяют холодный этанол и осуществляют преобразование значения pH, ионной силы, концентрации белка, а также температуры, для того чтобы осадить белки плазмы крови, такие как альбумины.
Процедура очистки альбумина плазмы крови человека, для применения в фармацевтических продуктах, обычно включает стадию инактивации вирусов, для того чтобы уменьшить риск передачи переносимых кровью вирусов. Указанные стадии инактивации вирусов могут включать пастеризацию с использованием высокой температуры, применение органических растворителей или комбинаций органических растворителей и детергентов (например, три-н-бутилфосфат и полисорбат 80). Кроме того, производное каприловой кислоты, или ее соль (например, каприлат натрия), эффективно применяли в качестве агента инактивации вирусов. См. патент США №4939176; публикации международных заявок на патент № WO 1998/024485 и WO 2000/056768; Lundblad и Seng, Vox Sang. 60: 75-81 (1991); Johnston, Jonstone, & Wu, Biologicals 31: 213-221 (2003). Кроме того, каприлат также применяли в качестве стабилизирующего агента и в качестве агента разделения при очистке человеческого альбумина для терапевтических целей. См. патенты США №5250663 и 5561115.
Человеческий альбумин выделяют из эффлюента фракции Коэна IV-1 или фракции V и указанное включает стадию сушки с использованием ацетона, для того чтобы сконцентрировать альбумин и инактивировать вирусы. Способ с использованием ацетона является дорогим и в нем применяют большое количество ацетона, что создает опасность взрыва или возгорания. Соответственно, имеется потребность в альтернативных способах инактивации вирусов и концентрирования. Способ очистки альбумина плазмы крови человека с применением каприлата для инактивации вирусов в условиях низкого значения pH и повышенной температуры, сопровождаемый ультрафильтрованием/диафильтрованием, описан здесь.
КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Здесь описаны способы инактивации вирусов с применением каприлата во время очистки альбумина плазмы.
Один вариант осуществления изобретения, описанный здесь, представляет собой способ получения альбумина из раствора, содержащего альбумин, который содержит: доведение концентрации белка раствора до значения, составляющего меньше чем приблизительно 5%; доведение значения pH раствора до значения pH, составляющего приблизительно 5 или меньше; добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия; повышение температуры раствора до значения, составляющего больше чем приблизительно 20°C; и инкубацию раствора.
В некоторых аспектах, описанных здесь, температура инкубации составляет 27-30°C.
В некоторых аспектах, описанных здесь, инкубацию проводят на протяжении приблизительно 30 минут - приблизительно 120 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, инкубацию проводят, по крайней мере, на протяжении приблизительно 90 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, концентрация каприлата составляет приблизительно 10 мМ - приблизительно 40 мМ.
В некоторых аспектах, описанных здесь, концентрация каприлата составляет приблизительно 15 мМ - приблизительно 30 мМ.
В некоторых аспектах, описанных здесь, концентрация каприлата составляет приблизительно 20 мМ.
В некоторых аспектах, описанных здесь, значение pH составляет приблизительно 3.8 - приблизительно 5.
В некоторых аспектах, описанных здесь, значение pH составляет приблизительно 5.
В некоторых аспектах, описанных здесь, способ дополнительно содержит: фильтрование раствора; выполнение ультрафильтрования и диафильтрования; составление и увеличение объема раствора; а также стерилизацию, наполнение емкостей, и пастеризацию альбумина.
Другой вариант осуществления изобретения, описанный здесь, представляет собой способ получения альбумина из раствора, содержащего альбумин, который содержит: доведение концентрации белка раствора до значения, составляющего меньше чем приблизительно 5%; доведение значения pH раствора до значения pH, составляющего приблизительно 5 или меньше; добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия до концентрации, составляющей приблизительно 20 мМ; повышение температуры раствора до приблизительно 27-30°C и инкубацию раствора на протяжении, по крайней мере, приблизительно 30 минут - приблизительно 120 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, инкубацию проводят, по крайней мере, на протяжении приблизительно 90 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, значение pH составляет приблизительно 5.
В некоторых аспектах, описанных здесь, способ дополнительно содержит: фильтрование раствора; выполнение ультрафильтрования и диафильтрования; составление и увеличение объема раствора; а также стерилизацию, наполнение емкостей, и пастеризацию альбумина.
Другой вариант осуществления изобретения, описанный здесь, представляет собой способ инактивации вирусов в растворе, содержащем альбумин, при этом способ содержит: доведение концентрации белка раствора до приблизительно 5% белка; доведение значения pH раствора до значения, составляющего меньше чем приблизительно 5; добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия; повышение температуры раствора до значения, составляющего больше чем приблизительно 20°C; и инкубацию раствора.
В некоторых аспектах, описанных здесь, вирусы представляют собой вирусы в липидной оболочке.
В некоторых аспектах, описанных здесь, концентрация каприлата составляет приблизительно 15 мМ - приблизительно 30 мМ.
В некоторых аспектах, описанных здесь, температура составляет приблизительно 27-30°.
В некоторых аспектах, описанных здесь, инкубацию проводят, по крайней мере, на протяжении 90 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, концентрация каприлата составляет 20 мМ.
В некоторых аспектах, описанных здесь, инкубацию проводят на протяжении 90 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, температура составляет 30°C.
В некоторых аспектах, описанных здесь, вирусы представляют собой вирусы в липидной оболочке, поражающие людей.
Другой вариант осуществления изобретения, описанный здесь, представляет собой способ инактивации вирусов в растворе, содержащем альбумин, при этом способ содержит: доведение концентрации белка раствора приблизительно до 5% белка; доведение значения pH раствора до значения, составляющего меньше чем приблизительно 5; добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия до концентрации, составляющей приблизительно 20 мМ; повышение температуры раствора до значения, составляющего приблизительно 27-30°C; и инкубацию раствора, по крайней мере, на протяжении 90 мин.
В некоторых аспектах, описанных здесь, вирусы представляют собой вирусы в липидной оболочке, поражающие людей.
В некоторых аспектах, описанных здесь, способ дополнительно содержит: фильтрование раствора; выполнение ультрафильтрования и диафильтрования; составление и увеличение объема раствора; а также стерилизацию, наполнение емкостей и пастеризацию альбумина.
КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ГРАФИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВ
ФИГУРА 1 иллюстрирует результаты инактивации вирусов с применением каприлата в 25 ОЕ (оптических единиц) суспензий пасты альбумина при температуре 27°C, значении pH 5.1, на протяжении 1 часа. Концентрации каприлата, составляющие 0, 10, 15 и 20 мМ, устанавливали через интервалы времени, составляющие 0, 0,5, и 1 час. Результаты показывают, что 15 мМ каприлата эффективно инактивирует вирус бычьей вирусной диареи и вирус везикулярного стоматита вплоть до предела обнаружения, на протяжении 1 часа при температуре 27°C.
ФИГУРА 2 иллюстрирует результаты инактивации вирусов с применением 20 мМ каприлата при концентрации альбумина 25 или 65 ОЕ, при значение pH, составляющем либо 4.5, либо 5.1, и при трех значениях низких температур, составляющих 5, 12, и 20°C, на протяжении периода в 6 часов. Результаты показывают, что при более низких концентрациях альбумина, 20 мМ каприлата были эффективны в качестве средства, инактивирующего вирусы, при температуре 20°C после 2 часов. Однако инактивация вирусов не была надежной при более низких температурах и зависела от значения pH, времени инкубации, и концентрации альбумина.
ФИГУРА 3 иллюстрирует данные построения опыта (ПО) и расчетные величины логарифмического уменьшения (ВЛУ) для концентрации белка, в зависимости от концентрации каприлата (Блок А), при постоянной температуре (27,5°C) и постоянном значении pH (4.5). Блок В иллюстрирует данные и расчетные ВЛУ для значений pH, в зависимости от концентрации каприлата, при постоянной температуре (27,5°C) и концентрации белка (11,5%).
ФИГУРА 4 иллюстрирует данные ПО и расчетные ВЛУ для значений pH, в зависимости от концентрации белка, при постоянной температуре (27,5°C) и концентрации каприлата (20 мМ).
ФИГУРА 5 показывает диаграмму изолиний, представляющую поверхность отклика для ВЛУ при 95 и более доверительных интервалах для значений pH, в зависимости от концентрации белка, при 30 мМ каприлата и температуре 40°C (Блок А). Блок В показывает трехмерное представление поверхности отклика. ВЛУ была максимальной (т.е., 100%) с наименьшим интервалом предсказания, составляющим 95%, где значение pH составляло 4.4 и концентрация белка составляла 5%, каприлат составлял 30 мМ и температура составляла 40°C.
ФИГУРА 6 показывает диаграммы изолиний, представляющие поверхность отклика для ВЛУ при 95 и более доверительных интервалах для концентрации белка, в зависимости от концентрации каприлата, при значении pH, составляющем 3.96, и температуре 40°C (Блок А) или для значения pH, в зависимости от концентрации каприлата, при 6,6% белка и температуре 36,9°C (Блок В).
ФИГУРА 7 показывает схему последовательности операций модифицированного способа очистки альбумина, который включает стадию инактивации вирусов с применением каприлата.
ДЕТАЛЬНОЕ ОПИСАНИЕ
Существующий способ очистки альбумина включает стадию сушки с использованием ацетона. Стадия сушки с использованием ацетона была признана в качестве стадии инактивации вирусов. Однако стадия с использованием ацетона является сложной, требует дорогого производственного оборудования, а также присутствие большого количества используемого ацетона несет опасность воспламенения и/или взрыва, что вызывает необходимость больших мер предосторожности. Замена стадии сушки с использованием ацетона является желательной. Инкубация с применением каприлата, описанная здесь, может применяться в качестве стадии инактивации вирусов, после чего может быть выполнено концентрирование альбумина с применением стадии ультрафильтрования/диафильтрования.
Каприловая кислота (каприлат; октановая кислота) может представлять собой эффективный агент инактивации вирусов. Кроме того, в настоящее время каприлат применяют в технологии приготовлении альбумина, и, таким образом, инактивация вирусов с применением каприлата может быть просто включена в процесс приготовления альбумина, без применения дополнительных реактивов, таких как растворители или детергенты, и с минимальными изменениями самого процесса.
Каприловую кислоту или каприлат натрия добавляют во время технологического процесса приготовления альбумина в качестве стабилизатора во время стадии увеличения объема. При этом значение pH раствора альбумина в повышенном объеме является слишком высоким (~7) для того, чтобы образовать достаточно свободной каприловой кислоты для инактивации вирусов. Каприлат может быть добавлен во время суспендирования пастообразной фракции V (пастообразный альбумин), которая уже представляет собой раствор с низким значением pH. Поскольку каприлат по существу является стабилизатором альбумина, его действие на альбумин является минимальным. Подходящее фильтрование перед ультрафильтрованием/диафильтрованием удаляет большую часть каприлата в виде неразбавленной каприловой кислоты. Так как обработка альбумина продолжается на стадиях ультрафильтрования/диафильтрования, то значение pH будет повышено, и каприлат натрия будет вымыт диафильтрованием, что даст нормальное увеличение объема альбумина.
В целом, модифицированный способ приготовления альбумина состоит из применения эффлюента фракции IV-1 (или фильтрата) или пастообразной фракции Коэна V в качестве исходного материала. Пастообразную фракцию Коэна V повторно суспендируют в холодной воде для инъекций, или эффлюент фракции IV-1 разбавляют до концентрации белка, составляющей приблизительно 25 ОЕ (А280). Каприлат натрия добавляют к концентрации каприлата, составляющей 20 мМ, и, в случае необходимости, значение pH доводят до значения, составляющего меньше чем pH 5. Затем раствор инкубируют при температуре 27-30°C на протяжении 90 мин, См. Фигуру 7.
Для того чтобы протестировать вироцидную эффективность, выполняли опыты инактивации вирусов с панелью покрытых оболочкой вирусов (а именно, вирусом бычьей вирусной диареи (BVDV), вирусом псевдобешенства (PRV) и вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ)) в суспензии фракции Коэна V и в суспензии альбумина, с применением модели предложенного производственного процесса в уменьшенном масштабе. Пастообразную фракцию V или пастообразный альбумин суспендировали в воде, в которую вводили приблизительно 5% вируса, и pH доводили до соответствующего значения, в случае необходимости. Добавляли каприлат натрия, чтобы достичь заданной концентрации каприлата, проверяли значение pH раствора, и раствор инкубировали при соответствующей температуре. Образцы отбирали в разные моменты времени во время инкубации и титровали с применением клеточных анализов для определения количества инфекционного вируса. Быстрая и эффективная инактивация BVDV, PSV, и ВИЧ наблюдалась при соответствующем значении pH, концентрации каприлата, концентрации белка и соответствующей температуре.
Технологические возможности оценивали отдельно как для суспензии Фракции V, так и для суспензии пастообразного альбумина, с применением уменьшенного масштаба (500 г пастообразной суспензии) предложенного производственного процесса. Добавляли каприлат натрия, и, при необходимости, значение pH доводили до достижения заданной концентрации каприлата и значения pH. После инкубации, материал отфильтровывали, обрабатывали с применением ультрафильтрования/диафильтрования, составляли, увеличивали в объеме, стерилизовали фильтрованием, и пастеризовали. Характеристики промежуточного и конечного продукта, полученные в результате лабораторного исследования модифицированного способа, были сопоставимы с характеристиками, полученными в результате контрольного лабораторного опыта, а также с характеристиками, полученными в результате существующего полномасштабного производственного процесса.
Лабораторную демонстрацию модифицированного способа проводили с применением фракции Коэна V или пастообразного альбумина. Приблизительно 500 г пасты сначала разбавляли холодной водой для инъекций. Затем разбавленную пасту нагревали до температуры ~27°C, и добавляли каприлат натрия до концентрации ~20 мМ. Этот разбавленный основной объем раствора подвергали инкубированию на протяжении 90 минут, для того чтобы произошла инактивация вирусов. Очищение раствора альбумина от примесей достигали при помощи фильтрования через ряд фильтров. Затем очищенный раствор альбумина концентрировали до ~12% в отношении массы к объему посредством ультрафильтрования, при этом основной объем белка диафильтровали с применением солевого раствора и холодной воды для инъекций. Концентрация белка, составляющая ~28%, была достигнута при помощи второй стадии ультрафильтрования. Затем ультрафильтрованный/диафильтрованный основной объем раствора белка составляли посредством добавления гидрооксида натрия, триптофана и каприлата натрия. Составленный основной объем раствора стерилизовали фильтрованием, наполняли им флаконы, закупоривали и запаивали. Указанные флаконы затем пастеризовали при температуре 60°C на протяжении 10-11 часов, для того чтобы получить итоговое содержимое флаконов.
Было неожиданным обнаружить, что каприлат может действовать как в качестве средства, инактивирующего вирусы, так и в качестве стабилизатора одновременно, во время процесса с применением определенных концентраций белка и каприлата, а также продолжительности и температуры инкубации. Указанное также было неожиданным, по той причине, что альбумин связывает каприлат, и при этом концентрации каприлата были эффективными для инактивации вирусов при средних концентрациях белка с коротким периодом инкубации при комнатной температуре.
Существующий способ очистки альбумина, который включает стадию сушки с использованием ацетона, описан в Примере 1, и его начинают с эффлюента фракции Коэна IV-1 или фракции V. См. Cohn и др., J. Am. Chem. Soc. 68: 459-475 (1946); Cohn и др., J. Am. Chem. Soc. 69: 1753-1761 (1947); патенты США №2390074 и №2469193.
Пример 1
Подготовка человеческого альбумина
Фракцию Коэна V суспендировали в холодной воде для инъекций. В качестве альтернативы, вместо фракции V может применяться эффлюент IV-1. Для того чтобы получить раствор спирта, составляющий приблизительно 10%, добавляли холодный денатурированный этанол (SDA-3A), охлаждая раствор до температуры, составляющей приблизительно 0°C. Раствор перемешивали на протяжении приблизительно 1 часа при температуре, составляющей приблизительно 0°C, и затем очищали с помощью глубинного фильтрования.
Затем фракцию альбумина осаждали из эффлюента IV-1 или фракции V посредством регулирования значения pH, добавляя холодный денатурированный этанол (SDA-3A), и инкубируя раствор при низкой температуре. После инкубации с применением низкой температуры, фракцию альбумина выделяли при помощи центрифугирования.
Инактивация вирусов с применением ацетона
Фракцию альбумина затем суспендировали в холодном ацетоне и выдерживали на протяжении нескольких минут при температуре приблизительно 0°C. Белок выделяли из суспензии и промывали холодным ацетоном. Сырой порошок альбумина подвергали сушке посредством пропускания сухого азота и/или воздуха через порошок.
Концентрирование и фильтрование
Высушенный порошок альбумина разбавляли холодной водой для инъекций до концентрации белка, составляющей приблизительно 7%. Раствор альбумина очищали при помощи фильтрования через ряд фильтров, расположенных в последовательном порядке, где заключительный абсолютный фильтр имел пористость, составляющую 0,2 мкм (по мере необходимости, для того чтобы способствовать фильтрованию, применяли диатомит). Значение pH раствора альбумина доводили до значения pH, составляющего приблизительного 7, ультрафильтровали, чтобы сконцентрировать раствор приблизительно в два раза, и затем диафильтровали с использованием 3% NaCl, и затем воды для инъекций. Затем раствор альбумина, в случае необходимости, концентрировали посредством применения ультрафильтрования до соответствующей концентрации белка (прибл. 25%).
Увеличение объема, стерилизация, наполнение в емкости и пастеризация
Водный основной объем альбумина составляли посредством регулирования ультрафильтрованного/диафильтрованного раствора альбумина с помощью добавления каприлата натрия, наполнителей, гидрооксида натрия, хлорида натрия, а также воды для инъекций, чтобы достичь 20 мМ каприлата натрия, 25% концентрации белка и значения pH 7. Значение pH доводили с помощью использования 1,0 М карбоната натрия и/или 1,0 М HCl, в случае необходимости.
Раствор альбумина стерилизовали при помощи фильтрования через ряд фильтров, расположенных в последовательном порядке, где заключительный абсолютный фильтр имел пористость, составляющую 0.2 мкм. Стерильным раствором альбумина в стерильных условиях наполняли стерильные емкости и пастеризовали на протяжении приблизительно 10 часов при температуре приблизительно 60°C. Итоговое содержимое емкостей инкубировали при температуре 25°C на протяжении приблизительно двух недель и затем хранили при комнатной температуре.
Пример 2
Опыты инактивации вирусов
Обработка ацетоном пастообразного альбумина является очень эффективной стадией инактивации покрытых оболочкой вирусов, но при этом является острой проблемой указанного процесса, и связана со многими проблемами очистки и безопасности (пожароопасности). По этой причине обработка каприлатом является возможной альтернативой образованию суспензии ацетона и ее сушки. Опыты проводили для того, чтобы определить инактивацию покрытых оболочкой вирусов вследствие обработки пастообразной суспензии альбумина каприлатом. С целью исследования, в пастообразную суспензию альбумина, где концентрация белка составляла 25 ОЕ, вводили вирус бычьей вирусной диареи (BVDV) или вирус везикулярного стоматита (VSV), и инкубировали на протяжении 1 часа при температуре 27°C, значении pH 5.1, с применением 0, 10, 15, или 20 мМ каприлата. Данные показывают инактивацию вирусов до предела обнаружения, после обработки с применением 15 мМ каприлата. См. Таблицу 1 и Фигуру 1.
Таблица 1
Опыты инактивации вирусов
Логарифмический титр вируса
t (ч) SP-BVDV SUPE-BVDV SP-VSV
A B C D E F G Н I J K L
0 10 15 20 0 10 15 20 0 10 15 20
мМ мМ мМ мМ мМ мМ мМ мМ мМ мМ мМ мМ
0,0 6,3 6,3 6,3 5,1 6,3 6,1 6,1 5,2 7,0 6,6 6,4 5,6
0,5 5,9 4,7 1,8 1,8 5,5 1,8 1,8 5,6 3,4 1,8 1,8
1,0 6,0 4,2 0,7* 0,7* 5,9 4,0 0,7* 0,7* 6,3 2,9 0,7* 0,7*
ВЛУ 0,3 2,1 ≥5,6 ≥5,6 0,4 2,1 ≥5,4 ≥5,4 0,7 4,1 ≥6,3 ≥6,3
* Тестирование увеличенного объема; подчеркнутые значения = неопределяемый вирус
Пример 3
Опыты проводили, чтобы определить вироцидную способность каприлата при низких температурах. Пастообразные суспензии альбумина и фракции V разбавляли до 25 и 65 оптических единиц (ОЕ), и каприлат натрия добавляли до конечной концентрации, составляющей 20 мМ. Раствор доводили до значения pH, составляющего 4.5 или 5.1, и вводили BVDV с отрегулированным значением pH, после чего выполняли инкубацию при температуре 5, 12, или 20°C. Образцы для титрования, с отрегулированным значением pH и/или концентрацией белка (т.е., А280), отбирали сразу после введения вируса (0 часов) и по истечении 0,5, 2 и 6 часов.
И для пастообразной суспензии альбумина и для пастообразной суспензии фракции V инактивация вирусов с применением каприлата была большей при более высоких температурах и при более низких концентрациях белка. См. Фигуру 2. Для суспензий фракции V при 25 ОЕ и 65 ОЕ инактивация вирусов была выше при значении pH 4.5, чем при значении pH 5.1. Инактивация вирусов была также выше при значении pH 4.5 для суспензий альбумина при 25 ОЕ. Для суспензий альбумина при 65 ОЕ, тем не менее, инактивация вирусов была больше при значении pH 5.1, чем при значении pH 4.5. Поскольку механизм инактивации вирусов с применением каприлата приписывают неионизированной форме каприлата, и концентрации неионизированной формы должны быть выше при значении pH 4.5, чем при значении pH 5.1, то результаты с 65 ОЕ альбумина были неожиданными.
Инактивация вирусов зависит от значения pH, времени воздействия, концентрации белка и состава продукта. В отличие от обработки при температуре 27°C на протяжении 30 минут, где происходила инактивация BVDV до значения, ниже предела обнаружения (данные не показаны), обработка при температуре 5°C при оптимальных условиях (25 ОЕ, pH 4.5) требовала 2 часа для полной инактивации BVDV. При температуре 5°С стадия инкубации альбумина/фракции V с применением каприлата для инактивации покрытых оболочкой вирусов была неэффективной.
Пример 4
Построение опыта по исследованию переменных процесса инактивации вирусов
Построение опыта, основанное на полученных вначале результатах инактивации вирусов с применением каприлата в образцах альбумина или фракции V, выполняли для исследования, проводимого с целью определения условий, которые максимально повышают вироцидное действие. Переменные, которые оптимизировали, представляли собой концентрацию альбумина (5%-20%); концентрацию каприлата (10 мМ - 30 мМ); значение pH раствора (3.8-5.5); температуру инкубации (20°С-40°C) и время инкубации (10 минут и 120 минут). Зависимые переменные представляли собой величину логарифмического уменьшения вируса (ВЛУ), концентрацию альбумина, агрегирование (% мономера) и концентрацию гаптоглобулина. Линейное построение опыта было составлено так, чтобы протестировать три уровня каждой переменной (т.е., Низкий, Средний и Высокий; см. Таблицу 2).
Таблица 2:
Переменные построения опыта
Переменная Уровень переменной Начальные параметры Конечные параметры
Концентрация альбумина (±1 ОЕ) Низкая 26,5 ОЕ (5%) 26,5 ОЕ (5%)
Средняя 66,25 ОЕ (12,5%) 60,95 ОЕ (11,5%)
Высокая 106 ОЕ (20%) 95,4 ОЕ (18%)
Концентрация каприлата Низкая 3 мМ 10 мМ
Средняя 16,5 мМ 20 мМ
Высокая 30 мМ 30 мМ
Температура (±1°C) Низкая 20°C 15°C
Средняя 30°C 27,5°C
Высокая 40°C 40°С
Значение pH (±1) Низкое 3,8 3,8
Среднее 4,65 4,50
Высокое 5,50 5,20
В общем, было проведено 28 отдельных опытов. Смотри Таблицу 3.
Таблица 3:
Эксперименты построения опыта
День Эксперимент Конц. каприлата (мМ) Температура (°C) Конц. белка (%) pH
1 1a 10 15 5 3,8
17 20 40 5 3,8
20 10 27,5 5 5,2
13 20 27,5 18 5,2
3a 30 15 18 3,8
2 4a 10 40 18 3,8
7 30 15 18 5,2
19 10 27,5 18 3,8
5a 10 15 5 5,2
6 30 40 5 5,2
3 14 30 27,5 11,5 5,2
15 20 40 11,5 5,2
18 30 15 11,5 3,8
2a 30 40 5 3,8
5b 10 15 5 5,2
4 11 10 40 5 4,5
10 30 15 5 4,5
Таблица 3:
Эксперименты построения опыта
День Эксперимент Конц. каприлата (мМ) Температура (°C) Конц. белка (%) pH
3b 30 15 18 3,8
8 10 40 18 5,2
4b 10 40 18 3,8
5 9 30 40 18 4,5
12 10 15 18 4,5
16 20 15 5 5,2
1b 10 15 5 3,8
2b 30 40 5 3,8
4a 10 40 18 3,8
6 4b 10 40 18 3,8
19 10 27,5 18 3,8
4a 10 40 18 3,8
Опыты проводили следующим образом: пастообразную фракцию V суспендировали в воде для инъекций и выдерживали при температуре 2-8°C на протяжении ночи. Затем температуру повышали до 27-30°C, и концентрацию (основанную на поглощении на длине волны 280 нм) доводили до одного из трех опытных значений, например, 5, 11,5, или 18% (т.е., г альбумина/100 мл; 26,5, 60,95, или 95,4 ОЕ соответственно; ~0.75 М, 1,7 М, или 2,7 М, соответственно). После этого, регулировали значение pH раствора (значения pH составляли 3.8, 4.5, или 5.2). Затем образцы инкубировали, применяя температуры опыта (например, 15, 27,5, или 40°C). Затем добавляли вирус в концентрации, составляющей 1%. Затем добавляли каприлат в одной из трех концентраций: 10, 20, или 30 мМ. Затем образцы инкубировали, применяя температуры опыта, на протяжении 120 мин. Также получали образцы для титрования (перед добавлением каприлата и через 5, 10, 15, 30, 60, 90 и 120 минут), для того чтобы определить кинетику вироцидной активности каприлата. В заключение, определяли ВЛУ для каждого опыта. Результаты опыта показаны в Таблице 4 и на Фигурах 3-6.
Таблица 4:
Результаты построения опыта
День Эсперимент Конц. каприлата (мМ) Температура (°C) Конц. белка (%) pH ВЛУ, 10 мин ВЛУ, 120 мин
1 1a 10 15 5 3,8 <0,2 ВЛУ >1,8 ВЛУ
17 20 40 5 3,8 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
20 10 27,5 5 5,2 >1,8 ВЛУ <0,2 ВЛУ
Таблица 4:
Результаты построения опыта
День Эсперимент Конц. каприлата (мМ) Температура (°C) Конц. белка (%) РН ВЛУ, 10 мин ВЛУ, 120 мин
13 20 27,5 18 5,2 >1,8 ВЛУ 0,2<ВЛУ<1,8
3a 30 15 18 3,8 0,2 ВЛУ<1,8 >1,8 ВЛУ
2 4a 10 40 18 3,8 -* >1,8 ВЛУ
7 30 15 18 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 0,2<ВЛУ<1,8
19 10 27,5 18 3,8 -* -*
5a 10 15 5 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 0,2<ВЛУ<1,8
6 30 40 5 5,2 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
3 14 30 27,5 11.5 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 >1,8 ВЛУ
15 20 40 11.5 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 >1,8 ВЛУ
18 30 15 11.5 3,8 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
2a 30 40 5 3,8 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
5b 10 15 5 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 <0,2 ВЛУ
4 11 10 40 5 4,5 0,2<ВЛУ<1,8 >1,8 ВЛУ
10 30 15 5 4,5 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
3b 30 15 18 3,8 0,2<ВЛУ<1,8 >1,8 ВЛУ
8 10 40 18 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 0,2<ВЛУ<1,8
4b 10 40 18 3,8 -* -*
5 9 30 40 18 4,5 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
12 10 15 18 4,5 0,2<ВЛУ<1,8 0,2<ВЛУ<1,8
16 20 15 5 5,2 0,2<ВЛУ<1,8 0,2<ВЛУ<1,8
1b 10 15 5 3,8 0,2<ВЛУ<1,8 >1,8 ВЛУ
2b 30 40 5 3,8 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
4a 10 40 18 3,8 -* -*
6 4b 10 40 18 3,8 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
19 10 27,5 18 3,8 >1,8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
4a 10 40 18 3,8 >1.8 ВЛУ >1,8 ВЛУ
Таблица 4
Результаты построения опыта
День Эспе-римент Конц. каприлата (мМ) Температура (°C) Конц. белка (%) РН ВЛУ, 10 мин ВЛУ, 120 мин
- *Эти реакции проходили с загущением и данные не были получены. Затененные клетки соответствуют: эффективному вироцидному действию, составляющему >1,8 ВЛУ; небольшому вироцидному действию, составляющему 0,2<ВЛУ<1,8; ограниченному вироцидному действию, составляющему <0,2 ВЛУ.
Выявлен ряд концентраций каприлата, концентраций белка, температур и значений pH, которые были эффективными в отношении вироцидного действия. Исходя из условий, протестированных в исследовании ПО, являются очевидными следующие общие положения:
- Повышенная температура усиливает вироцидное действие;
- Увеличенное время инкубации усиливает вироцидное действие;
- Повышенная концентрация каприлата усиливает вироцидное действие;
- Пониженная концентрация белка (альбумина) усиливает вироцидное действие и
- Пониженное значение pH усиливает вироцидное действие.
Кроме того, расчетная ВЛУ, по шкале от 0 до 100, достигает максимального значения, то есть, равна 100% (что соответствует ВЛУ, составляющей 2.16), с наименьшим доверительным интервалом предсказания, составляющим 95%, при следующих обобщенных переменных параметрах (см. Фигуры 6-7):
- Концентрация каприлата: 30 мМ;
- Концентрация альбумина: 5% (прибл. 26,5 ОЕ; 750 мМ);
- Значение pH: 4.4;
- Температура: 40°C и
- Время инкубации: 120 мин.
Исходя из этих данных, следующие условия были определены как целесообразные для стадии инактивации вирусов, для способа очистки альбумина:
- Концентрация белка: ≤25 ОЕ (A280) (т.е., <5%; <750 мМ)
- Концентрация каприлата: >20 мМ;
- Значение pH: ≤5.0;
- Температура: 27-30°C и
- Время инкубации: ≥90 мин.
Эти условия максимально усиливают вироцидное действие, уменьшая при этом стоимость производства и время процесса очистки альбумина.
Объем условий, способов и процессов, описанных здесь, включает все комбинации вариантов осуществления изобретения, аспектов, примеров, стадий и преимуществ, описанных здесь.

Claims (40)

1. Способ приготовления альбумина плазмы крови для фармацевтического применения, который включает следующие стадии:
(i) получение элюата фракции IV-1 или фракции Коэна V;
(ii) доведение концентрации раствора альбумина до значения, составляющего меньше чем 5 мас.%;
(iii) доведение значения рН раствора до значения рН, составляющего 5 или меньше;
(iv) добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия;
(v) повышение температуры раствора до 27-30°С;
(vi) инкубацию раствора на протяжении 30-120 мин, и
с последующим фильтрованием раствора; выполнением ультрафильтрации и диафильтрации; составлением и увеличением объема раствора; стерилизацией, наполнением емкостей и пастеризацией альбумина.
2. Способ по п. 1, где инкубацию проводят на протяжении по меньшей мере 90 мин.
3. Способ по п. 1, где концентрация каприлата составляет 10-40 мМ.
4. Способ по п. 1, где концентрация каприлата составляет 15-30 мМ.
5. Способ по п. 1, где концентрация каприлата составляет 20 мМ.
6. Способ по п. 1, где значение рН составляет 3.8-5.
7. Способ по п. 1, где значение рН составляет 5.
8. Способ приготовления альбумина плазмы крови для фармацевтического применения, который включает следующие стадии:
(i) получение элюата фракции IV-1 или фракции Коэна V;
(ii) доведение концентрации раствора альбумина до значения, составляющего меньше чем 5 мас.%;
(iii) доведение значения рН раствора до значения рН, составляющего 5 или меньше;
(iv) добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия до концентрации 20 мМ;
(v) повышение температуры раствора до 27-30°С;
(vi) инкубацию раствора на протяжении 30-120 мин, и
с последующим фильтрованием раствора; выполнением ультрафильтрации и диафильтрации; составлением и увеличением объема раствора; стерилизацией, наполнением емкостей и пастеризацию альбумина
9. Способ инактивации вирусов в растворе, содержащем альбумин, включающий следующие этапы:
(i) доведение концентрации раствора альбумина до значения, составляющего меньше чем 5 мас.%;
(ii) доведение значения рН раствора до значения рН, составляющего 5 или меньше;
(iii) добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия;
(iv) повышение температуры раствора до 27-30°С и
(v) инкубацию раствора на протяжении 30-120 мин.
10. Способ по п. 9, где вирусы представляют собой вирусы в липидной оболочке.
11. Способ по п. 9, где инкубацию проводят на протяжении по меньшей мере 90 мин.
12. Способ по п. 9, где инкубацию проводят на протяжении 90 мин.
13. Способ по п. 9, где температура составляет 30°С.
14. Способ по п. 10, где вирусы представляют собой вирусы в липидной оболочке, поражающие людей.
15. Способ инактивации вирусов в растворе, содержащем альбумин, включающий следующие этапы:
(i) доведение концентрации раствора альбумина до значения, составляющего меньше чем 5 мас.%;
(ii) доведение значения рН раствора до значения рН, составляющего 5 или меньше;
(iii) добавление каприловой кислоты (октановой кислоты) или каприлата натрия до концентрации 20 мМ;
(iv) повышение температуры раствора до 27-30°С и
(v) инкубацию раствора на протяжении 30-120 мин.
16. Способ по п. 15, где вирусы представляют собой вирусы в липидной оболочке, поражающие людей.
RU2013134696A 2012-08-09 2013-07-24 Инактивация вирусов с применением каприлата RU2633059C2 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201261681265P 2012-08-09 2012-08-09
US61/681,265 2012-08-09

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013134696A RU2013134696A (ru) 2015-01-27
RU2633059C2 true RU2633059C2 (ru) 2017-10-11

Family

ID=48795471

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013134696A RU2633059C2 (ru) 2012-08-09 2013-07-24 Инактивация вирусов с применением каприлата

Country Status (24)

Country Link
US (1) US9023797B2 (ru)
EP (1) EP2695620B1 (ru)
JP (1) JP5926218B2 (ru)
KR (1) KR101798386B1 (ru)
CN (1) CN103570823A (ru)
AR (1) AR091850A1 (ru)
AU (1) AU2013205138B2 (ru)
BR (1) BR102013018882A2 (ru)
CA (1) CA2822229C (ru)
CL (1) CL2013002073A1 (ru)
ES (1) ES2590150T3 (ru)
HK (1) HK1194679A1 (ru)
HU (1) HUE029160T2 (ru)
IL (1) IL227638A (ru)
MX (1) MX340056B (ru)
MY (1) MY161287A (ru)
NZ (1) NZ613554A (ru)
PL (1) PL2695620T3 (ru)
PT (1) PT2695620T (ru)
RU (1) RU2633059C2 (ru)
SG (1) SG2013056387A (ru)
TW (1) TWI560196B (ru)
UY (1) UY34949A (ru)
ZA (1) ZA201305639B (ru)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10435670B2 (en) 2014-04-15 2019-10-08 Boehringer Ingelheim International Gmbh Methods, apparatuses, and systems for continuously inactivating a virus during manufacture of a biological product
WO2015166072A1 (en) * 2014-04-30 2015-11-05 Novo Nordisk A/S Methods for the purification of proteins using caprylic acid
GB201611365D0 (en) 2016-06-30 2016-08-17 Devenish Nutrition Ltd A composition for use in treating rotavirus infection
CN111973582A (zh) * 2020-06-29 2020-11-24 浙江大学 一种正辛酸或正辛酸钠在杀灭冠状病毒中的应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0696595A1 (en) * 1994-08-10 1996-02-14 Bayer Corporation Low temperature albumin fractionation using sodium caprylate as a partitioning agent
WO2000056768A2 (en) * 1999-03-19 2000-09-28 Bayer Corporation Chromatographic albumin process
EP1479393A1 (en) * 2002-02-28 2004-11-24 Nipro Corporation Stabilized albumin preparations

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2469193A (en) 1942-02-09 1949-05-03 Research Corp Protein fractionation
US2390074A (en) 1942-02-09 1945-12-04 Research Corp Protein product and process
US2710293A (en) 1953-10-30 1955-06-07 Olin Mathieson Blood fractionation
US2710294A (en) 1953-11-02 1955-06-07 Olin Mathieson Blood fractionation
US4939176A (en) 1988-12-20 1990-07-03 Miles Inc. Viral inactivation process
US5250663A (en) 1990-04-19 1993-10-05 Miles Inc. Preparing essentially monomeric normal human serum albumin
US5440018A (en) 1992-05-20 1995-08-08 The Green Cross Corporation Recombinant human serum albumin, process for producing the same and pharmaceutical preparation containing the same
US5521287A (en) * 1992-05-20 1996-05-28 The Green Cross Corporation Recombinant human serum albumin, process for producing the same and pharmaceutical preparation containing the same
AUPO410696A0 (en) 1996-12-06 1997-01-09 Csl Limited Inactivation of viruses by incubation with caprylate
US5886154A (en) * 1997-06-20 1999-03-23 Lebing; Wytold R. Chromatographic method for high yield purification and viral inactivation of antibodies
RS20060077A (en) * 2003-08-12 2008-08-07 Octapharma Ag., Process for preparing an alpha-1-antitrypsin solution
KR101206788B1 (ko) * 2004-02-27 2012-11-30 옥타파르마 아게 정제된, 바이러스 안전한 항체 제제를 제공하는 방법
ES2294976B1 (es) * 2007-11-12 2008-12-16 Grifols, S.A. "procedimiento de obtencion de albumina humana de alta eficacia para su uso en terapia de detoxificacion".

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0696595A1 (en) * 1994-08-10 1996-02-14 Bayer Corporation Low temperature albumin fractionation using sodium caprylate as a partitioning agent
WO2000056768A2 (en) * 1999-03-19 2000-09-28 Bayer Corporation Chromatographic albumin process
EP1479393A1 (en) * 2002-02-28 2004-11-24 Nipro Corporation Stabilized albumin preparations

Also Published As

Publication number Publication date
JP5926218B2 (ja) 2016-05-25
KR101798386B1 (ko) 2017-11-16
RU2013134696A (ru) 2015-01-27
UY34949A (es) 2014-03-31
MY161287A (en) 2017-04-14
EP2695620A1 (en) 2014-02-12
CL2013002073A1 (es) 2014-02-07
PT2695620T (pt) 2016-07-15
CA2822229A1 (en) 2014-02-09
KR20140020746A (ko) 2014-02-19
MX2013008365A (es) 2014-03-05
SG2013056387A (en) 2014-03-28
AU2013205138A1 (en) 2014-02-27
ZA201305639B (en) 2017-08-30
NZ613554A (en) 2015-01-30
US20140163101A1 (en) 2014-06-12
JP2014034575A (ja) 2014-02-24
CA2822229C (en) 2018-10-30
ES2590150T3 (es) 2016-11-18
MX340056B (es) 2016-06-22
EP2695620B1 (en) 2016-06-15
AR091850A1 (es) 2015-03-04
TW201416372A (zh) 2014-05-01
US9023797B2 (en) 2015-05-05
AU2013205138B2 (en) 2015-06-25
CN103570823A (zh) 2014-02-12
PL2695620T3 (pl) 2016-12-30
IL227638A (en) 2017-06-29
HK1194679A1 (zh) 2014-10-24
TWI560196B (en) 2016-12-01
HUE029160T2 (hu) 2017-02-28
BR102013018882A2 (pt) 2014-10-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6612182B2 (ja) 免疫グロブリン組成物を調製するためのプロセス
KR0152256B1 (ko) 면역글로불린을 함유하는 정맥내투여용 폴리클로날 면역글로불린 제제 및 이의 제조방법
RU2236237C2 (ru) Способ продуцирования в высокой степени вирусобезопасных компонентов для получения фибринового клея из пула плазмы человека
US5118794A (en) Process for stabilizing human albumin solutions and the solution obtained
US5011695A (en) Sterilization of blood and its derivatives with vitamins
EP1958626B1 (en) Method for inactivating viruses by addition of slightly acidic arginine
RU2633059C2 (ru) Инактивация вирусов с применением каприлата
RU2144081C1 (ru) Способ крупномасштабного производства устойчивой при хранении композиции тромбина терапевтической степени чистоты
JPS63192724A (ja) ｒ−グロブリンの液状製剤
AU709608B2 (en) Preparation of virally inactivated intravenously injectable immune serum globulin
RU2411959C2 (ru) Способ получения безопасных в вирусном отношении биологических текучих сред
JP3024073B2 (ja) タンパク質中のウイルスを不活性化する方法
US10583179B2 (en) Method of manufacturing and purifying prothrombin complex concentrate from Fraction III for intravenous injection and a method of curing and preventing Hemophilia A with inhibitors or Hemophilia B in patients infected with HIV-1 and HIV-2
JPS63188391A (ja) 細菌破壊に及び／又は免疫調節に有効な物質の製造方法並びにこれを使用する方法
RU2445974C2 (ru) Способ получения концентрата фактора viii из плазмы крови человека
US10266561B2 (en) Method for separating proteins from animal or human plasma, or plants, using a pH gradient method
JP2002518462A (ja) 保護剤を添加しない二重失活処理による静脈内注射用の免疫グロブリンの調製法。
KR20000057410A (ko) 카프릴산염으로 배양하여 바이러스를 불활성화하는 방법
WO2000040703A1 (en) Virus inactivation process
AU5111598A (en) Inactivation of viruses by incubation with caprylate