RU2492177C2 - СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae - Google Patents

СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae Download PDF

Info

Publication number
RU2492177C2
RU2492177C2 RU2011151229/10A RU2011151229A RU2492177C2 RU 2492177 C2 RU2492177 C2 RU 2492177C2 RU 2011151229/10 A RU2011151229/10 A RU 2011151229/10A RU 2011151229 A RU2011151229 A RU 2011151229A RU 2492177 C2 RU2492177 C2 RU 2492177C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
target protein
purification
growth hormone
human growth
recombinant human
Prior art date
Application number
RU2011151229/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2011151229A (ru
Inventor
Наталья Владимировна Булушова
Анна Владимировна Серкина
Елена Константиновна Котлова
Игорь Арсентьевич Залунин
Надежда Михайловна Иванова
Галина Евгеньевна Константинова
Вера Вилионаровна Янонис
Галина Георгиевна Честухина
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП ГосНИИгенетика)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП ГосНИИгенетика) filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП ГосНИИгенетика)
Priority to RU2011151229/10A priority Critical patent/RU2492177C2/ru
Publication of RU2011151229A publication Critical patent/RU2011151229A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2492177C2 publication Critical patent/RU2492177C2/ru

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биохимии. Предложен способ выделения и очистки рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого дрожжами Saccharomyces cerevisiae в процессе их ферментации в соответствующих условиях. Осаждают целевой белок из освобожденной от биомассы культуральной жидкости путем либо подкисления до pH 2,9-4,0, либо добавлением полиэтиленгликоля 3000-6000 Да. Затем растворяют полученный осадок в подходящем растворителе. Осуществляют предварительную очистку целевого белка либо методом анионообменной хроматографии при pH 5,6, либо методом диафильтрации в присутствии 0,1-0,5 M хлористого натрия. Затем проводят основную очистку целевого белка методом анионообменной хроматографии при pH не менее 7,3 и гель-фильтрацию. Изобретение позволяет получить гормон роста, свободный от родственных белков, белков продуцента-хозяина и других примесей, таких как пигменты, с выходом до 60%. 8 пр.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, медицины и фармакологии и касается способа получения биологического препарата медицинского назначения, а именно способа выделения и очистки рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого дрожжами Saccharomyces cerevisiae.
Гормон роста человека (соматотропин) относится к наиболее изученным гормонам гипофиза. Соматотропин является белком, молекула которого состоит из 191 аминокислотного остатка и содержит два внутримолекулярных дисульфидных мостика. Несмотря на высокую степень гомологии последовательностей гормонов роста различных млекопитающих, в клетках человека активен только собственный гормон или гормон высших приматов. Соматотропин - анаболический гормон, который необходим для постнатального роста, нормализации углеводного, липидного, азотного и минерального обмена, регенерации тканей и выживания клеток. С развитием технологий рекомбинантных ДНК стало возможным создавать микроорганизмы - продуценты биологически-активных веществ, в том числе и гормона роста человека. В настоящее время использование рекомбинантного гормона роста человека является одним из наиболее перспективных и постоянно расширяющихся направлений фармакологии.
Продуценты рекомбинантного гормона роста человека синтезируют его внутриклеточно или секретируют в среду.
Известны многочисленные способы выделения и очистки гормона роста человека, продуцируемого рекомбинантными штаммами микроорганизмов внутриклеточно. В частности, бактерии Escherichia coli образуют его в клетках в виде телец включения (RU 2099348, US 4511503, JP 4112900, CN 101665788), а другие организмы накапливают в периплазме или цитоплазме (US 6436674, EP 0974654, EP 0321940, WO 9419474).
Однако для технологии получения целевого белка использование микроорганизмов-продуцентов, секретирующих гормон предпочтительнее, так как требует меньше трудозатрат.
Способ выделения секретируемого рекомбинантного соматотропина разработан для бактерий Bacillus subtilis (Franchi E, Maisano 1991; Teresa M, Ribela 2000), а для дрожжей Pichia pastoris предложен способ очистки секретируемого рекомбинантного полигистидин-содержащего соматотропина (Calik P, Orman 2008).
Известен способ выделения из культуральной жидкости и очистки рекомбинантного соматотропина, секретируемого дрожжами Pichia pastoris (WO 2010134084), включающий двухстадийную ионообменную хроматографию на сорбентах типа SP-Sepharose FF и Toyopearl SuperQ, гидрофобную хроматографию на Toyopearl Super Butyl, фильтрацию на Сефадексе G-25 и анионную хроматографию на Toyopearl SuperQ. Суммарный выход составляет 16,8%, а чистота полученного белка - 97,8% (по данным офВЭЖХ на С4).
В качестве ближайшего аналога выбран способ выделения и очистки рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого дрожжами Saccharomyces cerevisiae (KR 960013572), включающий спиртовое осаждение целевого белка, растворение осадка в буфере с мочевиной, ионообменную хроматографию на ДЭАЭ-Сефарозе при pH 8, гель-фильтрацию на Сефакриле S-200 или S-300 и повторную анионообменную хроматографию на ДЭАЭ-Сефарозе при pH 7,5 (чистота препарата ≥90%).
Задача настоящего изобретения заключается в расширении арсенала способов выделения и очистки рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого дрожжами S. cerevisiae.
Задачу решают путем разработки способа выделения и очистки рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого дрожжами S.cerevisiae в процессе их ферментации в соответствующих условиях, включающего выделение целевого белка осаждением его из освобожденной от биомассы культуральной жидкости путем либо подкисления до pH 2,9-4,0, либо добавления полиэтиленгликоля, растворение полученного осадка в подходящем растворителе и предварительную очистку целевого белка либо методом анионообменной хроматографии при pH 5,6, либо методом диафильтрации в присутствии 0,1-0,5 M хлористого натрия, а также основную очистку методами анионообменной хроматографии при рН не менее 7,3 и гель-фильтрации.
Способ в общем виде
Используют штамм дрожжей S.cerevisiae, секретирующий рекомбинантный гормон роста человека в процессе ферментации в подходящих условиях. Культуральную жидкость, полученную в результате процесса ферментации, освобождают от биомассы и используют для выделения целевого белка.
Выделение целевого белка
Вариант А
Осаждение целевого белка осуществляют путем подкисления освобожденной от биомассы культуральной жидкости до рН 2,9-4,0. Осадок отделяют центрифугированием при 20 тыс. об/мин в течение 30 мин.
Вариант В
Осаждение целевого белка осуществляют путем добавления к освобожденной от биомассы культуральной жидкости раствора полиэтиленгликоля 3000-6000 Да до конечной концентрации 12-25%. Осадок отделяют центрифугированием при 20 тыс. об/мин в течение 30 мин.
Предварительная очистка
Вариант 1
Осадок, полученный по варианту А или варианту В растворяют в 50 мМ буфере Трис-HCl (pH 7,3), содержащем 0,025%-ный детергент Твин 20 (далее Буфер A), и доводят pH этого раствора до значения 5,6. Затем повторно центрифугируют при 20 тыс.об/мин в течение 30 мин для дополнительного осветления.
Очистку целевого белка осуществляют методом анионообменной хроматографии при pH 5,6. Для этого полученный раствор наносят на колонку с Q-Сефарозой (GE Healthcare Bio-Sciences AB, Швеция), уравновешенную 10 мМ Трис-HCl буфером pH 5,6, содержащим 0,025%-ный детергент Твин 20, собирают фракцию, не адсорбировавшуюся на колонке, и доводят pH до 7,4-8,0. Выход целевого белка, который здесь и далее определяют методом офВЭЖХ на С18 (KR 100274191), составляет до 65% от взятого на осаждение.
Вариант 2
Осадок, полученный по варианту A или варианту B, растворяют в буфере 10 мМ Трис-HCl (pH 7,3), содержащем 0,025%-ный детергент Твин 20 (далее Буфер B).
Очистку целевого белка осуществляют методом диафильтрации. Для этого к раствору целевого белка прибавляют равный объем 0,4 М раствора хлористого натрия в 50 мМ Трис-HCl буфера, pH 7,4 и концентрируют в 2 раза, используя мембрану с порогом отсечения 10 кДа. Затем в режиме диафильтрации против 10 мМ Трис-HCl буфера, pH 7,4, снижают концентрацию соли в 8 раз. Выход целевого белка до 85% от взятого на осаждение.
Основная очистка целевого белка
Основную очистку целевого белка осуществляют в два этапа.
ЭТАП 1
Для основной очистки целевого белка, подвергнутого предварительной очистке по варианту 1 или 2, используют метод анионообменной хроматографии при pH не менее 7,3. Для этого раствор целевого белка наносят на колонку с Q-Сефарозой, уравновешенную буфером В. Колонку промывают исходным буфером, затем 70 мМ раствором хлористого натрия в буфере В и элюируют целевой белок 0,25 М раствором хлористого натрия в этом же буфере. Выход целевого белка на этой стадии составляет до 90% для каждого из вариантов.
ЭТАП 2
Заключительную стадию основной очистки осуществляют методом гель-фильтрации. Для этого раствор целевого белка, полученный на ЭТАПЕ 1, подвергают гель-фильтрации на колонке Супердекс G75 (GE Healthcare Bio-Sciences AB, Швеция), уравновешенной буфером В, содержащим 0,2 М хлористый натрий. Выход целевого белка в мажорной фракции на этой стадии составляет до 82% для любого из вариантов.
Суммарный выход целевого белка после завершения всех стадий очистки достигает 60%.
Пример 1. Выделение (вариант A) и очистка (вариант 1) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3506
После окончания процесса ферментации клетки дрожжей отделяют центрифугированием (30 мин при 10 об/мин). К 100 мл освобожденной от биомассы культуральной жидкости (супернатанта), добавляют 20 мл 1 M лимонной кислоты до достижения рН 2,9 и выдерживают 1 ч при 5°С. Осадок отделяют центрифугированием (30 мин при 20 об/мин), растворяют при 5°С в 100 мл Буфера A и доводят до pH 5,6 с помощью 0,1 M раствора едкого натра. Затем повторно центрифугируют в тех же условиях для дополнительного осветления раствора.
Полученный раствор подвергают предварительной очистке. Для этого его наносят на колонку с Q-Сефарозой (10 мл), уравновешенную 10 мМ Трис-HCl буфером pH 5,6, содержащим 0,025%-ный детергент Твин 20. Собирают фракцию, не адсорбировавшуюся на колонке, и доводят pH до 7,4. Выход целевого белка составляет 58% от взятого на осаждение.
Основную очистку целевого белка осуществляют методом анионообменной хроматографии при pH 7,3 (ЭТАП 1). Для этого раствор белка наносят на колонку с Q-Сефарозой, уравновешенную Буфером В. Колонку промывают исходным буфером, затем 70 мМ раствором хлористого натрия в буфере В и элюируют целевой белок 0,25 M раствором хлористого натрия в этом же буфере. Выход целевого белка на этой стадии составляет 85%.
Заключительную стадию основной очистки осуществляют методом гель-фильтрации (ЭТАП 2). Для этого элюат, полученный после анионообменной хроматографии, подвергают гель-фильтрации на колонке Супердекс G75, уравновешенной буфером В, содержащим 0,2 M хлористый натрий. Выход целевого белка на этой стадии составляет 82%.
Суммарный выход целевого белка после завершения всех стадий очистки составляет 40%.
Пример 2. Выделение (вариант A) и очистка (вариант 1) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3580
Выделение и очистку осуществляют как в примере 1, но в качестве продуцента целевого белка используют штамм S.cerevisiae ВКПМ Y-3580. Суммарный выход рекомбинантного гормона роста человека после завершения всех стадий очистки составляет 38%.
Пример 3. Выделение (вариант A) и очистка (вариант 2) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3506
Осаждение целевого белка осуществляют как в примере 1, но образовавшийся осадок растворяют в 100 мл буфера A. Предварительную очистку осуществляют методом диафильтрации. Для этого к раствору целевого белка прибавляют равный объем 0,4 M раствора хлористого натрия в 50 мМ Трис-HCl буфера, pH 7,4 и концентрируют в 2 раза в ячейке Amicon (MIllipore, США) на мембране DIAFLO РМ 10 (Amicon Corporation, США). Затем в режиме диафильтрации против 10 мМ Трис-HCl буфера, pH 7,4, снижают концентрацию соли в 8 раз. Выход целевого белка в концентрате составляет 75% от взятого на осаждение. Далее осуществляют основную очистку целевого белка методом анионообменной хроматографии как описано в примере 1. Выход целевого белка на этой стадии составляет 87%. Заключительную стадию основной очистки осуществляют методом гель-фильтрации, как описано в примере 1. Выход целевого белка на этой стадии составляет 82%.
Суммарный выход целевого белка после завершения всех стадий очистки составляет 54%.
Пример 4. Выделение (вариант A) и очистка (вариант 2) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3580
Выделение и очистку осуществляют как в примере 3, но в качестве продуцента целевого белка используют штамм S.cerevisiae ВКПМ Y-3580. Суммарный выход рекомбинантного гормона роста человека после завершения всех стадий очистки составляет 57%.
Пример 5. Выделение (вариант B) и очистка (вариант 1) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3506
После окончания процесса ферментации клетки дрожжей отделяют центрифугированием (30 мин при 12 об/мин). Осаждение целевого белка осуществляют путем добавления раствора полиэтиленгликоля (ПЭГ) 3000 до конечной концентрации 25%. Для этого к 100 мл супернатанта добавляют 100 мл 50%-ного раствора ПЭГ 3000 и выдерживают 30 мин при 5°С. Образовавшийся осадок отделяют центрифугированием (30 мин при 20 об/мин) и растворяют в 100 мл буфера А. Дальнейшую очистку осуществляют как в примере 1.
Суммарный выход целевого белка после завершения всех стадий очистки составляет 44%.
Пример 6. Выделение (вариант B) и очистка (вариант 1) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3580
Выделение и очистку осуществляют как в примере 5, но в качестве продуцента целевого белка используют штамм S.cerevisiae ВКПМ Y-3580. Суммарный выход рекомбинантного гормона роста человека после завершения всех стадий очистки составляет 42%.
Пример 7. Выделение (вариант B) и очистка (вариант 2) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3506
После окончания процесса ферментации клетки дрожжей отделяют центрифугированием (30 мин при 12 об/мин). Осаждение целевого белка осуществляют путем добавления раствора ПЭГ 6000 до конечной концентрации 17%. Для этого к 100 мл супернатанта добавляют 50 мл 50%-ного раствора ПЭГ 6000 и выдерживают 30 мин при 5°С. Образовавшийся осадок отделяют центрифугированием (30 мин при 20 об/мин) и растворяют в 100 мл буфера A.
Очистку осуществляют как в примере 3. Суммарный выход рекомбинантного гормона роста человека после завершения всех стадий очистки составляет 60%.
Пример 8. Выделение (вариант B) и очистка (вариант 2) рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого штаммом дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-3580
Выделение и очистку осуществляют как в примере 7, но в качестве продуцента целевого белка используют штамм S. cerevisiae ВКПМ Y-3580. Суммарный выход рекомбинантного гормона роста человека после завершения всех стадий очистки составляет 58%.
Таким образом, заявляемый способ позволяет получить рекомбинантный гормон роста человека с выходом до 60%, что существенно выше выхода (17%), известного для дрожжевого продуцента Pichia pastoris.
При этом чистота препарата целевого белка, полученного заявляемым способом (до 100% по методу офВЭЖХ на колонке C18) соответствует чистоте (до 100%, по методу офВЭЖХ на колонке C4) препарата, полученного с использованием дрожжевого продуцента Pichia pastoris (WO 2010134084) и превосходит чистоту продукта, полученного по способу - ближайшему аналогу (KR 960013572).
Источники информации
1. RU 2099348.
2. US 4511503.
3. JP 4112900.
4. CN 101665788.
5. US 6436674.
6. ЕР 0974654.
7. ЕР 0321940.
8. WO 9419474.
9. A new human growth hormone production process using a recombinant Bacillus subtilis strain. Elisabetta Franchi, Federico Maisano, Silvia Astrua Testori, Giuliano Galli, Salvatore Toma, Luca Parente, Francesca de Ferra, Guido Grandi, J. Biotechnology, V.18, Issues 1-2, April 1991, pages 41-54.
10. Synthesis and chromatographic purification of recombinant human pituitary hormones. Maria Teresa C.P. Ribela, Peter W. Gout, Paolo Bartolini; J. Chromatography B, V.790, Issues 1-2, pages 285-316.
11. Expression system for synthesis and purification of recombinant human growth hormone in Pichia pastoris and structural analysis by MALDI-ToF Mass Spectrometry. Calik P., Orman M.A., Celik E., Halloran S.M., Calik G., Ozdamar Т.Н., Biotechnol. Prog.; 2008 Jan-Feb; 24(1):221-6. Epub 2008 Jan 11.
12. WO 2010134084.
13. KR 960013572.
14. KR 100274191.

Claims (1)

  1. Способ выделения и очистки рекомбинантного гормона роста человека, секретируемого дрожжами Saccharomyces cerevisiae в процессе их ферментации в соответствующих условиях, включающий выделение целевого белка из освобожденной от биомассы культуральной жидкости путем осаждения его, растворения полученного осадка в подходящем растворителе и основную очистку целевого белка методами анионообменной хроматографии путем сорбции его при pH не менее 7,3 с последующей элюцией и гель-фильтрации, отличающийся тем, что осаждение проводят либо путем подкисления до pH 2,9-4,0, либо добавлением полиэтиленгликоля 3000-6000 Да, а осажденный целевой белок перед основной очисткой подвергают предварительной очистке либо путем пропускания при pH 5,6 через колонку с анионообменным сорбентом, либо методом диафильтрации против 0,1-0,5 М хлористого натрия.
RU2011151229/10A 2011-12-15 2011-12-15 СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae RU2492177C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011151229/10A RU2492177C2 (ru) 2011-12-15 2011-12-15 СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2011151229/10A RU2492177C2 (ru) 2011-12-15 2011-12-15 СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2011151229A RU2011151229A (ru) 2013-06-20
RU2492177C2 true RU2492177C2 (ru) 2013-09-10

Family

ID=48785202

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2011151229/10A RU2492177C2 (ru) 2011-12-15 2011-12-15 СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2492177C2 (ru)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4115375A (en) * 1976-07-30 1978-09-19 Nordisk Insulinlaboratorium Method of isolation and recovery of protein hormones, deriving from pituitary tissues using polyethylene glycol
RU2099348C1 (ru) * 1990-01-22 1997-12-20 Питман-Мур, Инк. Способ выделения рекомбинантного полипептида с последовательностью соматотропина
KR100251285B1 (ko) * 1998-02-09 2000-04-15 허영섭 재조합 인간성장호르몬의 정제방법
WO2008008975A2 (en) * 2006-07-14 2008-01-17 Genentech, Inc. Refolding of recombinant proteins
WO2010134084A1 (en) * 2009-05-22 2010-11-25 Biocon Limited A method of purifying human growth hormone and purified growth hormone thereof

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4115375A (en) * 1976-07-30 1978-09-19 Nordisk Insulinlaboratorium Method of isolation and recovery of protein hormones, deriving from pituitary tissues using polyethylene glycol
RU2099348C1 (ru) * 1990-01-22 1997-12-20 Питман-Мур, Инк. Способ выделения рекомбинантного полипептида с последовательностью соматотропина
KR100251285B1 (ko) * 1998-02-09 2000-04-15 허영섭 재조합 인간성장호르몬의 정제방법
WO2008008975A2 (en) * 2006-07-14 2008-01-17 Genentech, Inc. Refolding of recombinant proteins
WO2010134084A1 (en) * 2009-05-22 2010-11-25 Biocon Limited A method of purifying human growth hormone and purified growth hormone thereof

Also Published As

Publication number Publication date
RU2011151229A (ru) 2013-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101831300B1 (ko) 재조합 대장균으로부터 인간 과립구 콜로니 자극인자를 정제하는 방법
US20200277591A1 (en) Methods and Systems for Purifying Non-Complexed Botulinum Neurotoxin
JP2012521408A (ja) 生物学的に活性な藻類毒素の工業的精製法
EP3957648A1 (en) Method for purifying botulinum toxin
EP1458757B1 (en) Process for the purification and/or isolation of biologically active granulocyte colony stimulating factor
CN100402646C (zh) 一种生产重组人骨形态发生蛋白的方法
RU2492177C2 (ru) СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ И ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО ГОРМОНА РОСТА ЧЕЛОВЕКА, СЕКРЕТИРУЕМОГО ДРОЖЖАМИ Saccharomyces cerevisiae
CN101747409A (zh) 一种眼镜蛇毒因子和眼镜蛇毒神经毒素的组合分离纯化方法
CN113845565B (zh) 一种地龙生物活性小肽及其制备方法和应用
JP7454507B2 (ja) ボツリヌス毒素の製造方法
CN112457377B (zh) 美洲大蠊多肽及其应用
CN112280816B (zh) 一种海洋源i型胶原亚基的规模化制备方法
CN110387380B (zh) 一种基因重组蛋白Tat-hMsrA的生产方法
Surovtsev et al. Purification of bacteriocins by chromatographic methods
CN104854239A (zh) 蛋白质纯化
KR100531670B1 (ko) 인체 인터페론 알파의 제조방법
RU2354696C1 (ru) Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи
Janakiraman et al. Production and purification of recombinant human hepcidin-25 with authentic N and C-termini
RU2473556C1 (ru) Промышленный способ получения и очистки рекомбинантного гормона роста человека из телец включения
KR20240038789A (ko) 재조합 보툴리눔 신경독소 a형 및 이의 제조 방법
RU2634408C1 (ru) Способ получения активной фармацевтической субстанции рекомбинантного бисметионилгистона Н1.3
JPWO2004099406A1 (ja) 改変ダニ主要アレルゲンの精製方法
TW202219055A (zh) 重組似胰島素生長因子ⅰ的製造方法
KR101814048B1 (ko) 대량 생산이 가능하도록 개선된 경구투여용 트롬보포이에틴 및 이의 대량 생산공정
CN118006718A (zh) 一种具有抗炎功能的活性肽组合物及其制备方法和应用

Legal Events

Date Code Title Description
PC43 Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions

Effective date: 20170327

PD4A Correction of name of patent owner