RU2354696C1 - Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи - Google Patents

Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи Download PDF

Info

Publication number
RU2354696C1
RU2354696C1 RU2007129960/13A RU2007129960A RU2354696C1 RU 2354696 C1 RU2354696 C1 RU 2354696C1 RU 2007129960/13 A RU2007129960/13 A RU 2007129960/13A RU 2007129960 A RU2007129960 A RU 2007129960A RU 2354696 C1 RU2354696 C1 RU 2354696C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
carboxypeptidase
chromatography
tris hcl
protein
extraction
Prior art date
Application number
RU2007129960/13A
Other languages
English (en)
Inventor
Сергей Федорович Бикетов (RU)
Сергей Федорович Бикетов
Татьяна Викторовна Решетняк (RU)
Татьяна Викторовна Решетняк
Татьяна Владимировна Реполовская (RU)
Татьяна Владимировна Реполовская
Сергей Иванович Евсегнеев (RU)
Сергей Иванович Евсегнеев
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ) filed Critical Федеральное государственное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ)
Priority to RU2007129960/13A priority Critical patent/RU2354696C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2354696C1 publication Critical patent/RU2354696C1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биохимии и может быть использовано в биотехнологии при получении генно-инженерных продуктов. Для выделения карбоксипептидазы В из поджелудочной железы свиньи экстракцию, осаждение сульфатом аммония и очистку проводят в буферных растворах, содержащих 0,001-0,005 М хлорида цинка. При этом очистку проводят двукратной хроматографией на Q-сефарозе, а в процессе хроматографии используют элюцию 0,07-0,08 М NaCl в 0,005 М трис HCl буфере, рН 7,6. Изобретение обеспечивает упрощение способа получения карбоксипептидазы В при сохранении высокой удельной активности конечного препарата и стабильности карбоксипептидазы В.

Description

Изобретение относится к биохимии, точнее к способу получения карбоксипептидазы В (кВ) из поджелудочной железы свиньи, и может быть использовано в биотехнологии при получении генно-инженерного инсулина, а также в научных исследованиях при сиквенировании белков и синтезе пептидов.
Известен способ получения кВ из поджелудочной железы свиньи, включающий механическую гомогенизацию исходного сырья, автолиз, получение ацетонового порошка из автолизата, экстракцию, осаждение сульфатом аммония и последующую очистку целевого продукта двумя последовательными хроматографиями на ДЕАЕ-целлюлозе (А.с. №1551742 МКИ C12N 9/48, 1987).
Недостатком способа является использование на первом этапе органических растворителей (ацетон, диэтиловый эфир) и относительно низкая удельная активность конечного препарата (107-155 ед/мг белка).
Известен способ получения кВ из поджелудочной железы млекопитающих, предлагающий механическую гомогенизацию исходного сырья, автолиз, экстракцию при 50-75°С и дробное осаждение сульфатом аммония 320-416 г/л и диализ (патент RU №1487817, МКИ C12N 9/48, 1989).
Недостатком способа является недостаточно высокий выход конечного препарата.
Известен способ получения кВ из поджелудочной железы северных оленей (патент SU №1833427, МКИ C12N 9/64, 1991), включающий гомогенизацию, экстракцию, двухступенчатое подкисление до рН 5,2-5,5, затем до рН 3,8-4,2, осаждение ацетоном, повторное осаждение этанолом, лиофилизацию.
Недостатком способа является сложность получения исходного сырья.
Известен способ получения кВ из поджелудочной железы свиньи (патент RU №2177997, МПК C12N 9/14, 2002), включающий механическую гомогенизацию исходного сырья, автолиз, экстракцию при 60°С, двухступенчатое осаждение сульфатом аммония, повторную термообработку, хроматографию на оксиапатите, повторное осаждение сульфатом аммония, диализ, хроматографию на ДЕАЕ-сефарозе.
Недостатком способа является многоступенчатость (10 стадий) и длительность процесса.
Задача изобретения - упрощение способа получения карбоксипептидазы В при сохранении удельной активности конечного препарата на уровне от 200 ед/мг белка и выхода не менее 40%.
Поставленная задача решается за счет того, что в способе получения карбоксипептидазы В из свиной поджелудочной железы, включающем гомогенизацию, автолиз, экстракцию исходного сырья, осаждение сульфатом аммония, диализ и очистку целевого продукта двукратной хроматографией на Q-сефарозе, все этапы очистки проводят в буферных растворах, содержащих 0,001-0,005 М хлорида цинка, при этом экстракцию проводят при 65°С в течение 15 минут, а в процессе хроматографии используют ступенчатую элюцию 0,07-0,08 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6 буфере.
Отличием предлагаемого способа является, во-первых, применение экстракции при 65°С в течение 15 минут, позволяющей освободиться от значительного количества термолабильных белков и липидов; во-вторых, использование в процессе хроматографии на Q-сефарозе ступенчатой элюции 0,07-0,08 М хлорида натрия в 0,005 М трис HCl рН 7,6, позволяющей получать белковые пики с высокой концентрацией и, соответственно, высокой удельной активностью при минимальных трудозатратах; в-третьих, использование в качестве стабилизатора активности карбоксипептидазы В хлорида цинка, который добавляют в рабочий буфер до концентрации 0,001-0,005 М на всех этапах процесса.
Пример 1.
1. Гомогенизация и автолиз.
Одну железу (~0,3 кг) дважды гомогенизируют в бытовой мясорубке, помещают в пластиковую емкость и инкубируют в течение ночи на шейкере при комнатной температуре.
2. Экстракция.
К полученному автолизату добавляют 2 объема (600 мл) 0,01 М КН2PO4, рН 6,5, 0,001 М ZnCl2 и экстрагируют в предварительно нагретом до 65°С водном термостате в течение 15 минут при перемешивании механической мешалкой. Полученный экстракт охлаждают в ванне с проточной холодной водой и центрифугируют при 12000 об/мин, 4°С, 30 минут. Супернатант собирают, осадок отбрасывают.
3. Фракционирование сульфатом аммония.
К полученному супернатанту добавляют сульфат аммония из расчета 350 г на литр экстракта, поддерживая рН 6,5 с помощью сухого карбоната натрия.
Осадок формируют при +4°С в течение ночи. Затем осаждают центрифугированием при 8000 об/мин 30 минут и растворяют в 100 мл 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2.
Полученный осадок диализуют против частых смен 0,005 М трис HCl, рН 7,6 до полного удаления сульфата аммония. Не растворившийся осадок осаждают центрифугированием, супернатант используют для хроматографии.
4. Хроматография на Q-сефарозе.
Супернатант, полученный на предыдущем этапе, наносят на колонку с Q-сефарозой объемом 50 мл, предварительно уравновешенную 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2 со скоростью 100 мл/ч. Колонку промывают последовательно тремя объемами стартового буфера, тремя объемами рабочего буфера с 0,005 М NaCl и элюируют целевой белок раствором 0,08 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Собирают белковые фракции с удельной активностью более 100 ед./мг белка, помещают в диализный мешок и диализуют в течение ночи против 2-х смен 10-кратных объемов 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2.
5. Повторная хроматография на Q-сефарозе.
Отдиализованную фракцию целевого фермента наносят на колонку объемом 10 мл, предварительно уравновешенную 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Промывают 3 колоночными объемами рабочего буфера, тремя объемами рабочего буфера с 0,005М NaCl. Элюируют целевой белок 0,08 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Собирают белковые фракции с удельной активностью более 170 ед./мг. Готовый препарат хранят замороженным при - 20°С.
Выход составляет 143 мг фермента с удельной активностью 235 ед./мг белка.
Пример 2.
1. Гомогенизация и автолиз.
Одну железу (~0,3 кг) дважды гомогенизируют в бытовой мясорубке, помещают в пластиковую емкость и инкубируют в течение ночи на шейкере при комнатной температуре.
2. Экстракция.
К полученному автолизату добавляют 2 объема (600 мл) 0,01 М КН2PO4, рН 6,5, 0,001 М ZnCl2 и экстрагируют в предварительно нагретом до 65°С водном термостате в течение 15 минут при перемешивании механической мешалкой. Полученный экстракт охлаждают в ванне с проточной холодной водой и центрифугируют при 12000 об/мин, 4°С, 30 минут. Супернатант собирают, осадок отбрасывают.
3. Фракционирование сульфатом аммония.
К полученному супернатанту добавляют сульфат аммония из расчета 350 г на литр экстракта, поддерживая рН 6,5 с помощью сухого карбоната натрия.
Осадок формируют при +4°С в течение ночи. Затем осаждают центрифугированием при 8000 об/мин 30 минут и растворяют в 100 мл 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Полученный осадок диализуют против частых смен 0,005 М трис HCl, рН 7,6 до полного удаления сульфата аммония. Нерастворившийся осадок осаждают центрифугированием, супернатант используют для хроматографии.
4. Хроматография на Q-сефарозе.
Супернатант, полученный на предыдущем этапе, наносят на колонку с Q-сефарозой объемом 50 мл, предварительно уравновешенную 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2 со скоростью 100 мл/ч. Колонку последовательно промывают тремя объемами стартового буфера, тремя объемами рабочего буфера с 0,005 М NaCl и элюируют целевой белок 0,08 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Собирают белковые фракции с удельной активностью более 100 ед./мг белка, помещают в диализный мешок и диализуют в течение ночи против двух смен 10-кратных объемов 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2.
5. Повторная хроматография на Q-сефарозе.
Отдиализованную фракцию целевого фермента наносят на колонку объемом 10 мл, предварительно уравновешенную 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Промывают тремя колоночными объемами рабочего буфера, тремя объемами рабочего буфера с 0,005М NaCl. Элюируют целевой белок 0,07 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Собирают белковые фракции с удельной активностью более 170 ед./мг. Готовый препарат хранят замороженным на - 20°С.
Выход составляет 133 мг фермента с удельной активностью 245 ед./мг белка.
Пример 3.
1. Гомогенизация и автолиз.
Одну железу (~0,3 кг) дважды гомогенизируют в бытовой мясорубке, помещают в пластиковую емкость и инкубируют в течение ночи на шейкере при комнатной температуре.
2. Экстракция.
К полученному автолизату добавляют 2 объема (600 мл) 0,01 М КН2PO4, рН 6,5, 0,001 М ZnCl2 и экстрагируют в предварительно нагретом до 65°С водном термостате в течение 15 минут при перемешивании механической мешалкой. Полученный экстракт охлаждают в ванне с проточной холодной водой и центрифугируют при 12000 об/мин, 4°С, 30 минут. Супернатант собирают, осадок отбрасывают.
3. Фракционирование сульфатом аммония.
К полученному супернатанту добавляют сульфат аммония из расчета 350 г на литр экстракта, поддерживая рН 6,5 с помощью сухого карбоната натрия.
Осадок формируют при +4°С в течение ночи. Затем осаждают центрифугированием при 8000 об/мин 30 минут и растворяют в 100 мл 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Полученный осадок диализуют против частых смен 0,005 М трис HCl, рН 7,6 до полного удаления сульфата аммония. Не растворившийся осадок осаждают центрифугированием, супернатант используют для хроматографии.
4. Хроматография на Q-сефарозе.
Супернатант, полученный на предыдущем этапе, наносят на колонку с Q-сефарозой объемом 50 мл, предварительно уравновешенную 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2 со скоростью 100 мл/ч. Колонку последовательно промывают тремя объемами стартового буфера, тремя объемами рабочего буфера с 0,005 М NaCl и элюируют целевой белок 0,07 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Собирают белковые фракции с удельной активностью более 100 ед./мг белка, помещают в диализный мешок и диализуют в течение ночи против 2-х смен 10-кратных объемов 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2.
5. Повторная хроматография на Q-сефарозе.
Отдиализованную фракцию целевого фермента наносят на колонку объемом 10 мл, предварительно уравновешенную 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2.
Промывают 3-колоночными объемами рабочего буфера, тремя объемами рабочего буфера с 0,005М NaCl. Элюируют целевой белок 0,07 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6, 0,001 М ZnCl2. Собирают белковые фракции с удельной активностью более 170 ед./мг белка. Готовый препарат хранят замороженным при - 20°С.
Выход составляет 123 мг фермента с удельной активностью 250 ед./мг белка.
Пример 4.
Все делают как в примере 3, но хлорид цинка добавляют до концентрации 0,005 М.
Выход целевого белка составляет 120 мг с удельной активностью 242 ед./мг белка.
Пример 5.
Все делают как в примере 3, но хлорид цинка не добавляют.
Выход целевого белка составляет 123 мг с удельной активностью 193 ед./мг белка.
Таким образом, предлагаемый способ позволяет получать 410-476 мг препарата карбоксипептидазы В с удельной активностью 235-250 ед/мг (в прототипе 220 ед./мг) или 111860-102500 единиц с 1 кг исходного сырья при сокращении числа стадий очистки до 7 по сравнению с 10 в прототипе. Это достигается за счет применения ступенчатой элюции в процессе хроматографии на Q-сефарозе и использования 0,001-0,005 М хлорида цинка в качестве стабилизатора.

Claims (1)

  1. Способ получения карбоксипептидазы В из поджелудочной железы свиньи, включающий гомогенизацию животного сырья, автолиз и экстракцию в присутствии буферного раствора, осаждение сульфатом аммония и последующую очистку целевого продукта двукратной хроматографией, отличающийся тем, что экстракцию, осаждение и очистку проводят в буферных растворах, содержащих 0,001-0,005 М хлорида цинка, при этом экстракцию проводят при 65°С, а очистку проводят хроматографией в два этапа на Q-сефарозе, применяя элюцию 0,07-0,08 М NaCl в 0,005 М трис HCl, рН 7,6 буфере.
RU2007129960/13A 2007-08-07 2007-08-07 Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи RU2354696C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007129960/13A RU2354696C1 (ru) 2007-08-07 2007-08-07 Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007129960/13A RU2354696C1 (ru) 2007-08-07 2007-08-07 Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2354696C1 true RU2354696C1 (ru) 2009-05-10

Family

ID=41019964

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007129960/13A RU2354696C1 (ru) 2007-08-07 2007-08-07 Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2354696C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011088383A1 (en) * 2010-01-14 2011-07-21 Colgate-Palmolive Company Dentifrice compositions comprising carboxypeptidase
RU2658757C1 (ru) * 2017-04-10 2018-06-22 Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ПМБ) Способ получения карбоксипептидазы В из поджелудочной железы свиньи

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КУПЕНКО О.Г. и др. Карбоксипептидаза гепатопанкреаса камчатского краба-аналог карбоксипептидазы В. Тезисы докладов III симпозиума «Химия протеолитических ферментов». - М., 26-28 апреля 1993, с.46. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011088383A1 (en) * 2010-01-14 2011-07-21 Colgate-Palmolive Company Dentifrice compositions comprising carboxypeptidase
AU2011205692B2 (en) * 2010-01-14 2013-07-04 Colgate-Palmolive Company Dentifrice compositions comprising carboxypeptidase
RU2658757C1 (ru) * 2017-04-10 2018-06-22 Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ПМБ) Способ получения карбоксипептидазы В из поджелудочной железы свиньи

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lau et al. Novel angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides derived from an edible mushroom, Pleurotus cystidiosus OK Miller identified by LC-MS/MS
CN101182495B (zh) 以猪小肠为原料联产生产碱性磷酸酶和肝素钠的联产工艺
CN103772734A (zh) 高纯度胶原蛋白海绵的制备方法
CN103882083B (zh) 一种抗氧化胶原肽的制备方法
CN104357522B (zh) 一种利用大鲵的蜕皮提取胶原蛋白的方法
CN105087728A (zh) 一种金枪鱼鱼骨胶原蛋白源硒螯合胶原肽的制备方法
CN1946290A (zh) 对镍和铜的亲和力下降了的改良血清白蛋白
RU2354696C1 (ru) Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи
CN105420325A (zh) 一种胎盘多肽的制备方法
KR101700927B1 (ko) 고순도 마린콜라겐의 제조 방법
PL140807B1 (en) Method of obtaining a protein capable of lovering cholesterol level in blood
CN108396047A (zh) 一种小公鱼免疫调节肽的制备方法
CN107496465A (zh) 基于球藻提取物的复配物及其制备方法
CN101768582B (zh) 一种sod修饰生产方法
CN103981245A (zh) 利用螺旋藻泥制备高活性小肽的方法
JP2011050350A (ja) エルゴチオネインの製造方法
CN112457377A (zh) 美洲大蠊多肽及其应用
CN101085814A (zh) 一种工业化提取纯化兔肝锌金属硫蛋白的方法
CN107011464A (zh) 一种高效的粗品肝素钠生产工艺
CN108117589B (zh) 一种低值鱼抗氧化肽的分离纯化方法
US2663668A (en) Process for producing arginase
CN111418700A (zh) 一种金枪鱼肽、其提取方法及作为降压剂的应用
CN104628889A (zh) 一种肝素钠的提取方法
EP2511288B1 (en) Method of obtaining inhibitors of cysteine peptidases with an electrophoretic purity from biological materials
CN101704887A (zh) 基于珠母贝外套膜分泌物的珍珠质基质蛋白及其制备方法