RU2311183C2 - Улучшенное разделение - Google Patents

Улучшенное разделение Download PDF

Info

Publication number
RU2311183C2
RU2311183C2 RU2004134345/15A RU2004134345A RU2311183C2 RU 2311183 C2 RU2311183 C2 RU 2311183C2 RU 2004134345/15 A RU2004134345/15 A RU 2004134345/15A RU 2004134345 A RU2004134345 A RU 2004134345A RU 2311183 C2 RU2311183 C2 RU 2311183C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
matrix
specified
body fluid
component
separation
Prior art date
Application number
RU2004134345/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2004134345A (ru
Inventor
Бо ЙОХНСОН (DE)
Бо ЙОХНСОН
Леннарт ЛЬЮНГГРЕН (SE)
Леннарт ЛЬЮНГГРЕН
Original Assignee
Альтеко Медикал Аб
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Альтеко Медикал Аб filed Critical Альтеко Медикал Аб
Publication of RU2004134345A publication Critical patent/RU2004134345A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2311183C2 publication Critical patent/RU2311183C2/ru

Links

Images

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/28—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties
    • B01J20/28054—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof characterised by their form or physical properties characterised by their surface properties or porosity
    • B01J20/28078—Pore diameter
    • B01J20/28085—Pore diameter being more than 50 nm, i.e. macropores
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L2/00—Non-alcoholic beverages; Dry compositions or concentrates therefor; Their preparation
    • A23L2/38—Other non-alcoholic beverages
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/34—Filtering material out of the blood by passing it through a membrane, i.e. hemofiltration or diafiltration
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/36—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
    • A61M1/3679—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits by absorption
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01D—SEPARATION
    • B01D39/00—Filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D39/14—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
    • B01D39/16—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01D—SEPARATION
    • B01D39/00—Filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D39/14—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
    • B01D39/20—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of inorganic material, e.g. asbestos paper, metallic filtering material of non-woven wires
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3202—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the carrier, support or substrate used for impregnation or coating
    • B01J20/3204—Inorganic carriers, supports or substrates
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3202—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the carrier, support or substrate used for impregnation or coating
    • B01J20/3206—Organic carriers, supports or substrates
    • B01J20/3208—Polymeric carriers, supports or substrates
    • B01J20/321—Polymeric carriers, supports or substrates consisting of a polymer obtained by reactions involving only carbon to carbon unsaturated bonds
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3202—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the carrier, support or substrate used for impregnation or coating
    • B01J20/3206—Organic carriers, supports or substrates
    • B01J20/3208—Polymeric carriers, supports or substrates
    • B01J20/3212—Polymeric carriers, supports or substrates consisting of a polymer obtained by reactions otherwise than involving only carbon to carbon unsaturated bonds
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3214—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the method for obtaining this coating or impregnating
    • B01J20/3217—Resulting in a chemical bond between the coating or impregnating layer and the carrier, support or substrate, e.g. a covalent bond
    • B01J20/3219—Resulting in a chemical bond between the coating or impregnating layer and the carrier, support or substrate, e.g. a covalent bond involving a particular spacer or linking group, e.g. for attaching an active group
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3231—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the coating or impregnating layer
    • B01J20/3242—Layers with a functional group, e.g. an affinity material, a ligand, a reactant or a complexing group
    • B01J20/3244—Non-macromolecular compounds
    • B01J20/3246—Non-macromolecular compounds having a well defined chemical structure
    • B01J20/3248—Non-macromolecular compounds having a well defined chemical structure the functional group or the linking, spacer or anchoring group as a whole comprising at least one type of heteroatom selected from a nitrogen, oxygen or sulfur, these atoms not being part of the carrier as such
    • B01J20/3251—Non-macromolecular compounds having a well defined chemical structure the functional group or the linking, spacer or anchoring group as a whole comprising at least one type of heteroatom selected from a nitrogen, oxygen or sulfur, these atoms not being part of the carrier as such comprising at least two different types of heteroatoms selected from nitrogen, oxygen or sulphur
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3231—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the coating or impregnating layer
    • B01J20/3242—Layers with a functional group, e.g. an affinity material, a ligand, a reactant or a complexing group
    • B01J20/3244—Non-macromolecular compounds
    • B01J20/3246—Non-macromolecular compounds having a well defined chemical structure
    • B01J20/3248—Non-macromolecular compounds having a well defined chemical structure the functional group or the linking, spacer or anchoring group as a whole comprising at least one type of heteroatom selected from a nitrogen, oxygen or sulfur, these atoms not being part of the carrier as such
    • B01J20/3255—Non-macromolecular compounds having a well defined chemical structure the functional group or the linking, spacer or anchoring group as a whole comprising at least one type of heteroatom selected from a nitrogen, oxygen or sulfur, these atoms not being part of the carrier as such comprising a cyclic structure containing at least one of the heteroatoms nitrogen, oxygen or sulfur, e.g. heterocyclic or heteroaromatic structures
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3231—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the coating or impregnating layer
    • B01J20/3242—Layers with a functional group, e.g. an affinity material, a ligand, a reactant or a complexing group
    • B01J20/3268—Macromolecular compounds
    • B01J20/3272—Polymers obtained by reactions otherwise than involving only carbon to carbon unsaturated bonds
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J20/00—Solid sorbent compositions or filter aid compositions; Sorbents for chromatography; Processes for preparing, regenerating or reactivating thereof
    • B01J20/30—Processes for preparing, regenerating, or reactivating
    • B01J20/32—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating
    • B01J20/3231—Impregnating or coating ; Solid sorbent compositions obtained from processes involving impregnating or coating characterised by the coating or impregnating layer
    • B01J20/3242—Layers with a functional group, e.g. an affinity material, a ligand, a reactant or a complexing group
    • B01J20/3268—Macromolecular compounds
    • B01J20/3272—Polymers obtained by reactions otherwise than involving only carbon to carbon unsaturated bonds
    • B01J20/3274—Proteins, nucleic acids, polysaccharides, antibodies or antigens
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F1/00—Treatment of water, waste water, or sewage
    • C02F1/38—Treatment of water, waste water, or sewage by centrifugal separation

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Geology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Water Supply & Treatment (AREA)
  • Hydrology & Water Resources (AREA)
  • Environmental & Geological Engineering (AREA)
  • Mechanical Engineering (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)
  • Glass Compositions (AREA)
  • Separation By Low-Temperature Treatments (AREA)

Abstract

Способ для селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из жидкости организма. Предложенный способ включает прохождение жидкости организма, такой как цельная кровь, через жесткую интегральную разделительную матрицу, без исключения компонентов по размерам из указанной матрицы, причем указанная матрица имеет пористую структуру с размером пор в пределах от 5 микрон до 500 микрон, а также активную поверхность в пределах от 0,5 см2 до 10 м2, связывание, по меньшей мере, одного компонента жидкости организма, по меньшей мере, с одной функциональной группой, расположенной в указанной матрице, при этом указанную матрицу получают с помощью способа, выбранного из группы, включающей в себя способы спекания, формования и вспенивания. Предложено применение остатка желчной кислоты, иммобилизованного на подложке, для устранения компонента из содержащего его водного раствора. Предложено устройство для селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из жидкости организма, содержащее корпус, вход, выход и, по меньшей мере, одну разделительную матрицу, причем указанная матрица является жесткой и интегральной при прохождении указанной крови или жидкости организма через нее, и указанная матрица имеет пористую структуру с размерами пор, находящимися в пределах от 5 микрон до 500 микрон, а также активную поверхность, находящуюся в пределах от 0,5 см2 до 10 м2, которая способна связывать указанный, по меньшей мере, один компонент, где указанная разделительная матрица имеет пористую структуру, полученную с помощью способа, выбранного из группы спекания, формования и вспенивания. Группа изобретений обеспечивает селективное связывание и выделение, по меньшей мере, одного компонента из жидкости организма, при этом жидкости дается возможность для прохождения через жесткую интегральную разделительную матрицу без вытеснения из нее. 3 н. и 29 з.п. ф-лы, 2 табл., 4 ил.

Description

Настоящее изобретение относится к усовершенствованиям при выделении компонентов из цельной крови или телесной жидкости. Более конкретно настоящее изобретение относится к способу, где крови или телесной жидкости (или, иначе говоря, жидкости организма) дают возможность проходить через жесткую интегральную разделительную матрицу без вытеснения из нее.
Воспалительные процессы, такие как сепсис, являются основной причиной заболеваемости и смертности у людей. Согласно оценкам, только в США от 400000 до 500000 случаев сепсиса приводят к смерти 100000-175000 людей ежегодно. В Германии отмечены уровни сепсиса, достигающие 19%, у пациентов, госпитализированных в отделениях интенсивной терапии. Сепсис также становится ведущей причиной смерти в отделениях не являющихся отделениями интенсивной терапии, среди пациентов с нетравматическими заболеваниями. Несмотря на большие успехи, достигнутые в последнее десятилетие, при лечении серьезных инфекций несчастные случаи и смертность, связанные с сепсисом, продолжают расти.
Существует три главных типа сепсиса, характеризуемые типом инфицирующего организма. Грамотрицательный сепсис является наиболее распространенным. Большинство этих инфекций вызываются Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae и Pseudomonas aeruginosa. Грамположительные патогены, такие как стафиллококки и стрептококки, являются второй главной причиной сепсиса. Третья главная группа включает в себя грибки. Грибковые инфекции составляют относительно малый процент случаев сепсиса, но они приводят к высокому уровню смертности.
Хорошо установленный механизм при сепсисе связан с токсичными компонентами грамотрицательных бактерий, то есть с липополисахаридной структурой клеточной стенки (LPS, эндотоксин), которая состоит из группы жирной кислоты, фосфатной группы и углеводной цепи.
Идентифицированы несколько откликов хозяев на эндотоксины, таких как высвобождение цитокинов, которые продуцируются локально. Однако в случае экстенсивной стимуляции имеет место выброс в периферийную кровь, и получают потенциально вредные эффекты, такие как индуцированная дисфункция органов.
Ключевыми медиаторами септического шока являются фактор некроза опухоли (TNF-α), Интерлейкин 1 (Il-1) и Интерлейкин 17 (Il-17), которые высвобождаются моноцитами и макрофагами. Они действуют синэргически, вызывая систему физиологических изменений, приводящих к коллапсу кровообращения и к множественному отказу органов. В самом деле, высокие концентрации TNF-α могут давать те же симптомы и результаты, что и сепсис.
Как правило, эндотоксины удерживаются в просвете кишечника. Например, во время кардиопульмонарного шунтирования наличие ишемии (недостатка кровоснабжения) или дизоксии (недостатка кислорода) внутренних органов вызывает разрушение слизистого барьера и транслокацию (то есть перенос эндотоксинов из кишечника в систему кровообращения) эндотоксинов из просвета кишечника в портальное кровообращение.
Антибиотики различных типов широко используются для предотвращения и лечения инфекций. Однако для множества повсеместно используемых антибиотиков среди различных типов бактерий развивается резистентность (устойчивость) к антибиотикам. Это особенно верно для микробной флоры, присутствующей в больницах, где организмы находятся под постоянным селективным давлением среды, развивающим у них резистентность. Кроме того, в больнице большая плотность потенциально инфицированных пациентов и широкие контакты персонала между собой и персонала с пациентами облегчают распространение организмов, устойчивых к антибиотикам. Используемые антибиотики являются наиболее экономичными, наиболее безопасными и наиболее простыми при введении и могут и не иметь спектра действия достаточно широкого для подавления определенных инфекций. Антибиотики могут быть токсичными до разных уровней, вызывая аллергию, взаимодействие с другими лекарственными средствами и вызывая непосредственное повреждение главных органов (например, печени, почек). Многие антибиотики также изменяют нормальную флору кишечника, что может вызвать диарею и недостаточное всасывание пищи.
Определенные антибиотики, как известно, нейтрализуют действия эндотоксинов, такие как полимиксин B. Этот антибиотик связывается с липидной частью A эндотоксина и нейтрализует ее активность. Полимиксин не используется широко из-за его токсичности. Его назначают пациентам только под постоянным наблюдением и при мониторинге функции почек.
Кроме того, для преодоления некоторых ограничений, присущих активной иммунизации против бактериальных компонентов, используются различные методики для продуцирования антител, связывающих эндотоксины. Большое количество антител получают путем иммунизации людей бактериями. Для разработки более совместимых препаратов терапевтических антител были разработаны многочисленные LPS-реактивные моноклональные антитела. К сожалению, клинические испытания не привели к каким-либо преимуществам. Однако необходимо заметить, что эти исследования осуществлялись на людях после наступления симптомов сепсиса. Широко распространено мнение, что лечение антителами против эндотоксинов, назначаемое после возникновения сепсиса, может дать только небольшое преимущество, поскольку эти антитела не могут обратить вспять действие воспалительной системы, инициируемое эндотоксином.
В патенте Японии JP 06022633 описывается адсорбент для антител против липидов, который содержит соединение с анионной функциональной группой, иммобилизованной на водонерастворимом пористом материале. Пористый материал может представлять собой агарозу, целлюлозу, декстран, полиакриламид, стекло, силикагель или твердый полимер, изготовленный из сополимера стирола-дивинилбензола, и пористый материал набивают в виде слоя из отдельных частиц в разделительное устройство.
В попытках удаления компонентов из крови были получены различные материалы адсорбентов. Адсорбент для удаления эндотоксина, содержащий лиганд, иммобилизованный на твердофазной среде подложки, описывается в заявке на Международный патент WO 01/23413. Предпочтительная среда подложки находится в форме шариков. Когда ее набивают в разделительное устройство, твердофазная среда подложки является достаточно пористой для того, чтобы сделать возможным прохождение клеток крови между шариками.
В заявке на Международный патент WO 00/62836, материал адсорбента имеет размер и структуру, адаптированную для удаления микроглобулина β-2 из крови. Материал адсорбента этого документа может представлять собой макропористый синтетический полимер с поверхностью шариков и с порами, модифицированный таким образом, чтобы предотвратить адсорбцию белков и тромбоцитов. Однако отдельные сферические шарики из полимера механически разрушаются при нагрузке примерно 500 г, которую они получают, например, в колонке, набитой шариками. Такая нагрузка приводит к значительному падению давления на колонке.
Для уменьшения падения давления в Европейском патенте EP 464872 получили адсорбент, который содержит пористые твердые частицы геля, нерастворимые в воде, имеющие предел исключения 106-109 Дальтон. Слой геля используют для селективного удаления липопротеинов из крови или плазмы при лечении с помощью экстракорпоральной циркуляции.
Подобным же образом в заявке на Международный патент WO 01/23413 пористый материал подложки для удаления эндотоксина представляет собой шарики, которыми можно наполнять контейнер, причем шарики имеют размер, достаточный для создания между шариками необходимого пространства, когда их набивают в колонку или они присутствуют в виде фильтрующего слоя. Пористый материал подложки может также представлять собой полые волокна для микрофильтрации или плоские листовые мембраны для сведения к минимуму перепадов давления.
В Европейском патенте EP 424698 описывается адсорбент для устранения биологических макромолекул, который состоит из носителя из пористых сферических частиц, имеющих размер частиц 50-150 микрон, и предел исключения, равный, по меньшей мере, 105 Дальтон. Полимиксин B связывается с частицами, которыми впоследствии заполняют картридж, который должен использоваться в системе для экстракорпорального удаления эндотоксина из цельной крови.
В этих традиционных системах для экстракорпорального удаления токсичных компонентов из крови контейнер или картридж сначала заполняют жидкостью, а после этого вводят адсорбирующие пористые шарики. В патенте США № 6408894 описывается способ, который обеспечивает более однородное распределение и более плотную набивку шариков. Способ включает в себя принудительное введение смеси жидкости и шариков в контейнер таким образом, чтобы жидкость выжималась из смеси и из контейнера.
Таким образом, устранение клеток крови облегчает удаление соединений, присутствующих в плазме, как описывается выше, например, в заявке на Международный патент WO 00/62836 или в заявке на Международный патент WO 01/23413. Однако такая методика включают в себя две стадии разделения, которые обе могут вносить вклад в увеличение риска неблагоприятного активирования клеток из-за биологической несовместимости.
Целью настоящего изобретения является создание нового способа для селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из цельной крови или телесных жидкостей, посредством чего устраняются указанные выше проблемы, связанные с воспалительными процессами.
Другой целью является создание такого способа, при котором селективное связывание и разделение может достигаться на цельной крови, без необходимости в разделении крови на плазму и клетки крови.
Еще одной целью настоящего изобретения является создание такого способа, в котором нет зависимости от размеров, то есть компоненты крови не разделяются посредством исключения (по размерам).
Еще одной целью настоящего изобретения является создание такого способа, при котором в разделительном устройстве могут быть получены высокие скорости потока без появления со временем значительного перепада давления.
Еще одной целью является создание такого способа, в котором кровь в разделительном устройстве не подвергается воздействию сил сдвига, даже при очень высоких скоростях потока, в то время как в линии поддерживается низкое давление для предотвращения повреждений кровеносных сосудов.
Эти цели достигаются с помощью настоящего изобретения, имеющего характерные признаки по п.1 формулы изобретения. Другие преимущества настоящего изобретения станут ясны из пункта 21 формулы изобретения и зависимых пунктов формулы изобретения.
В соответствии с настоящим изобретением предусматривается способ селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из цельной крови или телесной жидкости. Крови или телесной жидкости дают возможность для прохождения через жесткую интегральную разделительную матрицу без вытеснения из нее, причем матрица имеет пористую структуру с размерами пор, находящимися в пределах от 5 микрон до 500 микрон, и активную поверхность, находящуюся в пределах от 0,5 см2 до 10 м2, которая способна связывать один или несколько компонентов.
В предпочтительном воплощении настоящего изобретения матрица, кроме того, содержит, по меньшей мере, одну функциональную группу, которую вводят посредством нанесения покрытия на поверхность пористой структуры и/или ее модификации. Это приводит к тому, что полученная активная поверхность сама по себе или в сочетании с ее нефункционализованными участками способна к селективному связыванию, по меньшей мере, одного компонента цельной крови или телесной жидкости. Компоненты, которые должны удаляться, могут быть как природного, так и неприродного происхождения, то есть к этому компоненту может прикрепляться конкретный лиганд, такой как антитело.
Кроме того, функциональные группы, получаемые посредством непосредственного или опосредованного селективного преобразования поверхности пористой структуры, могут впоследствии использоваться для иммобилизации лигандов. Однако могут использоваться и функциональные группы пористой структуры, поскольку они находятся в рамках способа по настоящему изобретению.
Размер пор, а также поверхность скелетообразной пористой структуры адаптируют для использования в разделительной матрице способа по настоящему изобретению в связи с очисткой цельной крови. Однако способ в соответствии с настоящим изобретением может также использоваться для удаления компонентов из других телесных жидкостей, а также из водных растворов. Важным аспектом настоящего изобретения является то, что ни один из компонентов и ни один из растворителей не исключается (не вытесняется) из матрицы в ходе процедуры разделения.
В соответствии с настоящим изобретением, жесткая интегральная матрица должна иметь доступную поверхность от 0,5 см2 до 10 м2, и плотность структуры матрицы не является ограничивающей для осуществления способа по настоящему изобретению.
В этой связи термин "жесткий" означает, что матрица не является гибкой, не изгибается или не является мягкой, но способна противостоять давлению, равному, по меньшей мере, 0,5 бар. Термин "интегральная" обозначает, что матрица с высокой площадью поверхности представляет собой единое целое.
Пористая структура матрицы способа по настоящему изобретению изготавливается из металла, оксида неорганического соединения, углерода, стекла, керамики, синтетического полимера и/или природного полимера, или из их смесей. Пористые твердые металлические структуры с хорошо определенными размерами пор и высокими площадями поверхности могут производиться путем использования строго контролируемых способов спекания, которые дают поры, однородные по размерам.
Получены различные полимеры для матрицы в виде формованного или экструдированного пористого материала с пористой структурой, имеющей желаемый размер пор, а также высокую площадь поверхности. Они также производятся в виде пены. Например, полиуретаны, полученные из изоцианатов и различных других органических соединений, имеют активные атомы водорода, которые используются для получения продуктов полиприсоединения. Этот активный водород может приходить из бифункциональных или полифункциональных соединений, таких как полиспирты, полиамины. Реакции с водой приводят к получению первичных аминов, которые используются для ковалентной иммобилизации конкретных лигандов.
Могут использоваться разнообразные металлы и сплавы, такие как нержавеющая сталь, никель, титан, никелево-медный сплав (монель), инконель, хастеллой и другие специальные материалы на основе металла. Оксиды неорганических соединений с высокой площадью поверхности, в частности оксид алюминия и оксид циркония, также могут использоваться с помощью тех же методик для получения керамических материалов с заданными структурами пор. Подобным же образом такая керамика, а также спеченное стекло, которые имеют адекватные размеры пор, могут приобретаться в продаже.
Другие жесткие природные материалы, такие как аморфная окись кремния, например цеолиты и вулканическая порода, также могут использоваться.
Природные материалы и их гибриды, которые могут использоваться в качестве материала матрицы в способе по настоящему изобретению, представляют собой полисахариды, такие как целлюлоза, и другие полимерные углеводные материалы. Другие пригодные для использования природные полимерные материалы представляют собой полиаминокислоты, также кислоты, включающие в себя синтетические аминокислоты, полимолочную кислоту, полигликолевую кислоту и ее сополимеры с молочной кислотой.
В этой связи термин «гибрид» охватывает производные таких природных материалов, например диацетатцеллюлозу, которая представляет собой предпочтительное полисахаридное производное.
Пригодные синтетические полимеры для матрицы, которая должна использоваться в настоящем изобретении, представляют собой полиолефины, такие как полиэтилен, полипропилен, полибутилен, полиметилпентен и сополимеры этилена и винилацетата; виниловые полимеры, такие как поливиниловый спирт, поливинилацетали и поливинилпирролидон; фторсодержащие полимеры, такие как политетрафторэтилен, сополимер фторированного этилена-пропилена, полихлорфторэтилен, поливинилфторид и поливинилиденфторид; полиакрилаты, такие как полиметилметакрилат, цианоакрилат, полиакрилонитрил и полиметакрилаты; полиамиды, такие как полиакриламид; полиимиды, такие как полиэтиленимины; полистирол и его сополимеры, такие как полистирол и полимеры акрилонитрила-бутадиен-стирола; силиконовые каучуки; сложные/простые полиэфиры; поликарбонаты; полиуретаны; полисульфонаты; полигликоли; полиалкиленоксиды, такие как полиэтиленоксид, полипропиленоксид; и их сополимеры или гибриды.
В предпочтительном воплощении в пористую структуру жесткой интегральной разделительной матрицы вводят, по меньшей мере, одну функциональную группу. Функциональные группы могут быть различных видов, то есть анионного, катионного или неионного типа. Функциональные группы пористой структуры используются для ковалентного связывания веществ, подобных пептидам/белкам и желчным кислотам (например, дезоксихолевой кислоты), антител и их фрагментов, а также других биологических молекул и веществ, обладающих способностью к селективному связыванию эндотоксинов и/или провоспалительных медиаторов.
Модификация поверхности, то есть функционализация поверхности опосредованным способом осуществляется посредством электроосаждения, электроиспарения, плазмостимулированного химического осаждения, осаждения из потока ионов плазмы или химического осаждения из паровой фазы (то есть плазмостимулированной полимеризации, плазмохимического поверхностного осаждения полимера). Способы модификации поверхности сами по себе известны и находятся в "Plasma surface modification and plasma polymerization" N. Inagaki, 1996, Technomic Publishing, Lancaster, USA. Различные трехмерные матричные структуры обрабатывают посредством этих способов, причем получают очень гомогенную модификацию активной поверхности.
Полимеризацию бифункциональных мономеров акрильных или аллильных двойных связей полярными группами, такими как OH, NH2, CN и COOH, используют для получения плазменных полимеров с высокой плотностью функциональных групп. Например, поверхностную функционализацию неорганических и органических поверхностей осуществляют в плазменной среде аллильных соединений, таких как аллиламин.
Это также является возможным для органических полимерных поверхностей в плазменных средах NH3, O2 или CO2, в которых образуются либо функциональные группы =NH, -NH2, =CN, -OH либо одинарная связь -COOH. Другие примеры используемых газов хорошо известны в данной области.
Плазмохимическую обработку также объединяют с классическим химическим синтезом, при этом селективность модификации поверхности для полимеров значительно повышается. Один из подходов заключается в применении функционализации поверхности конкретным газом в состоянии плазмы, после чего непосредственно следует химическая унификация сосуществующих с плазмой функциональных групп.
Другой способ введения функциональных групп осуществляют путем непосредственной функционализации, то есть нанесения на поверхность покрытия из полимерного материала. В этой связи синтетический или природный полимер наносят на металл, оксид неорганического соединения, углерод, стекло, керамику с высокой площадью поверхности, а также на другой пригодный для использования синтетический полимер и/или природный полимер, или их смеси.
Многие из указанных выше полимеров, в частности полимеры без функциональных групп, такие как полиэтилен, полипропилен, политетрафторэтилен и тому подобное, требуют дополнительной обработки для изменения их поверхностных свойств. Таким образом, обработка в плазме или коронном разряде поверхности полимера, как указано выше, будет генерировать одни и те же функциональные группы, подобные гидроксильным, карбонильным, карбоксильным, амино- и имино-группам и тому подобное, которые ковалентно присоединены к поверхности.
Нанесение также осуществляется посредством адгезии или адсорбции полимерного вещества, имеющего функциональные группы. Примерами таких веществ являются полилизин, полиаргинин и полиэтиленимин.
Путем использования, например, плазменной технологии получают на пористой поверхности вещества подобные полиэтиленимину. Когда разделительную матрицу используют в способе в соответствии с настоящим изобретением для селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из цельной крови или телесной жидкости, гидрофильные, а также гидрофобные участки белковых компонентов крови могут взаимодействовать с обработанной поверхностью для удаления желаемых компонентов. После функционализации, когда поверхность матрицы для селективного связывания и разделения содержит полиолефин, например полиэтилен или полипропилен, положительные заряды аминогрупп подобным же образом используются для электростатических взаимодействий, а гидрофобные участки используются для гидрофобных взаимодействий. Этот подход используют в способе по настоящему изобретению для селективного связывания различных областей соединений, например липополисахаридов.
Полимеры и металлы, имеющие, например, реакционноспособные гидроксилы, могут также быть функционилизированы посредством силанизации.
В соответствии с этим, разнообразные функциональные группы различных видов ковалентно связаны со структурой пористой матрицы с высокой площадью поверхности. После непосредственной и/или опосредованной функционализации пористая структура может иметь как гидрофильные, так и гидрофобные участки, которые могут взаимодействовать с различными компонентами крови. Таким образом, характерные свойства вещества, представляющего интерес, используются при подготовке поверхности, которая должна использоваться в способе в соответствии с настоящим изобретением.
Предпочтительно функциональные группы активной поверхности представляют собой сульфгидрилы, карбоксилаты, амины, альдегиды, кетоны, гидроксилы, галогены, гидразиды и активный водород.
В другом предпочтительном воплощении лиганд связан, по меньшей мере, с одной функциональной группой пористой структуры с высокой площадью поверхности ковалентным образом. В связи с этим лиганд представляет собой вещество с высоким сродством к компоненту, который должен удаляться из цельной крови или телесной жидкости. Таким образом, лиганд используется для повышения свойств адсорбции и эффективности связывания.
Лиганд может представлять собой белок, предпочтительно рекомбинантный белок, пептид, антитело или его фрагмент, углевод, например полисахарид, гормон, антиоксидант, гликопротеин, липопротеин, липид, жирорастворимый витамин, например витамин E, желчную кислоту, реакционноспособный краситель, аллантоин, мочевую кислоту или полимиксин, или их сочетания.
Соответствующая желчная кислота представляет собой дезоксихолевую кислоту, которая является эндогенным гидрофобным веществом. Такая желчная кислота может присоединяться либо непосредственно к функциональным группам посредством спейсера либо присоединяться через большую молекулу, а затем она используется для удаления эндотоксинов из крови, телесных жидкостей и водных растворов, как в способе в соответствии с настоящим изобретением.
В этой связи спейсер представляет собой молекулу, большую или малую, которая соединяет лиганд с поверхностью пористой структуры.
Например, если в способе по настоящему изобретению пористая структура разделительной матрицы содержит полиолефин, имеющий присоединенную аминовую группу, эта группа может иметь альбумин, присоединенный к ней, и, в свою очередь, по меньшей мере, один остаток желчной кислоты, соединенный с этой большой молекулой.
Таким образом, настоящее изобретение также относится к новому использованию остатка желчной кислоты, иммобилизованного на подложке, для устранения компонента из содержащего его водного раствора. Предпочтительно остаток желчной кислоты представляет собой остаток дезоксихолевой кислоты.
Соответственно твердая подложка, пригодная для иммобилизации остатка желчной кислоты, представляет собой жесткую интегральную разделительную матрицу, имеющую пористую структуру с размером пор в пределах от 5 микрон до 500 микрон, предпочтительно от 70 микрон до 170 микрон, и активную поверхность в пределах от 0,5 см2 до 10 м2.
Является также предпочтительным, чтобы лиганд матрицы в способе по настоящему изобретению представлял собой альбумин или альбумин, полученный посредством рекомбинантной технологии, который может использоваться вместо сывороточного альбумина, полимиксин B (то есть заряженные группы на гидрофобной структуре) или дезоксихолевую кислоту.
Таким образом, в способе по настоящему изобретению лиганд также может действовать в качестве спейсера. Например, является также возможным сначала ковалентное присоединение рекомбинантного белка человека или другой большой молекулы (например, гиалуроновой кислоты) к пористой структуре, что дает возможность для последующего связывания лиганда, специфичного к тому компоненту, который должен быть удален.
Если это необходимо, между одной, по меньшей мере, функциональной группой и лигандом ковалентным образом присоединяют кросслинкер. В связи с этим, кросслинкер представляет собой элемент, который ковалентно связывает лиганд с пористой структурой подложки, причем этот элемент является спейсером при связывании лиганда на некотором расстоянии от самой пористой структуры. Такие молекулярные спейсеры известны в данной области. Они вводятся для повышения сродства к компоненту, который должен связываться и выделяться из цельной крови или телесных жидкостей путем обеспечения лучшей доступности для лигандов. Биологическая совместимость поверхности структуры пористой матрицы также повышается путем введения этих молекулярных спейсеров.
Кросслинкер/спейсер может содержать кросслинкер нулевой длины сам по себе или в сочетании с промежуточным кросслинкером, при этом конечный полученный комплекс связывается вместе посредством химических веществ, которые добавляют структуры к поперечносшитому веществу. Эти промежуточные кросслинкеры могут быть типа гомобифункционального (например, диальдегиды), гетеробифункционального (например, аминокислоты) или трифункционального типа поперечной сшивки.
Главной задачей спейсера является повышение биологической доступности конкретного используемого лиганда.
Спейсер может представлять собой, например, силан, диизоцианат, гликолят, полиэтиленгликоль, сукцинимидиловый реагент, дигидразин, адипиновую кислоту, диамин, аминокислоту, поли- или олигоаминокислоту, полиаминокислоту, пептид или белок. Предпочтительно белок представляет собой рекомбинантный белок человека.
Функциональные группы кросслинкера предназначены для взаимодействия с аминогруппами (Lys, Arg), с сульфгидрилами (Cys) или с карбоксилами (Asp, Glu) и так далее.
В связи с химией реакционноспособных групп можно упомянуть Bioconjugate Techniques, Greg T. Hermanson, Academic Press, USA 1996.
Таким образом, активная поверхность пористой матрицы в способе по настоящему изобретению является способной к удалению, например, эндотоксинов, сама по себе или в сочетании с нефункционилизованными участками доступной поверхности пористой структуры. Активная поверхность также может использоваться в качестве инструмента для ковалентной иммобилизации реагентов, таких как биологические молекулы, подобные аминокислотам, полипетиды и антитела, для селективного улучшения устранения таких конкретных компонентов.
Разделительная матрица, которая предназначается для селективного удаления, по меньшей мере, одного компонента из цельной крови или телесных жидкостей, может быть получена с помощью пористой структуры с определенным размером пор и/или с определенным диапазоном размеров пор в зависимости от предполагаемого применения. Предпочтительно пористая структура должна давать возможность для прохождения клеток крови. Соответственно определенные типы клеток крови также могут удаляться из цельной крови посредством способа по настоящему изобретению. Такие клетки представляют собой больные клетки или клетки со специфическими поверхностными рецепторами, например активированные фагоцитирующие клетки.
Металлическая структура может для особых применений быть магнитной. Магнитная матрица может, например, получаться путем нанесения на спеченный магнетит покрытия из полимера, например полиэтилена. Затем может осуществляться эффективное удаление клеток, давая возможность антителам, имеющим магнитную метку из железа в декстране, прикрепляться к конкретным клеткам в крови.
Размер пор должен находиться в пределах от 5 микрон до 500 микрон, предпочтительно от 70 микрон до 170 микрон, наиболее предпочтительно от 80 микрон до 100 микрон, так чтобы высокие скорости потока могли поддерживаться без повреждения клеток или вытеснения клеток. Таким образом, разделение, которое осуществляют с помощью способа в соответствии с настоящим изобретением, не основывается на каком-либо распределении компонентов по размерам. Практически все компоненты цельной крови или телесной жидкости могут быть устранены посредством способа по настоящему изобретению.
После удаления одного или нескольких первичных токсичных эффекторов, то есть эндотоксинов, могут быть удалены дополнительные вторичные токсичные эффекторы. Вторичные эффекторы могут представлять собой цитокины (например, TNF-α), интерлейкины (например, Il-l), реакционноспособные радикалы кислорода и азота и тому подобное.
Когда осуществляют способ в соответствии с настоящим изобретением, одну или несколько разделительных матриц заключают в корпус, который может иметь различные формы и изменяющиеся и/или различные входы и выходы в зависимости от применения. Затем такое устройство может использоваться для удаления эндотоксина и/или удаления цитокинов, и/или нейтрализации цитокинов. Это осуществляют путем прохождения крови или других телесных жидкостей через устройство, применяемое интра-, пара- или экстракорпорально, без вытеснения жидкости из находящейся в нем жесткой интегральной разделительной матрицы. Затем активная поверхность пористой структуры, функциональные группы и/или конкретные лиганды на ней селективно связывают и выделяют, по меньшей мере, один компонент из жидкости. Устройство также может преимущественно использоваться для удаления эндотоксинов из водных растворов.
Важной особенностью настоящего способа является то, что могут быть предусмотрены все аспекты септического шока, то есть первичные, а также вторичные токсичные эффекторы могут удаляться посредством способа по настоящему изобретению.
Обратимся к фиг.1 в связи с осуществлением способа в соответствии с настоящим изобретением. Устройство 1 содержит корпус 2, причем корпус (или картридж) устройства интегрирован в замкнутую систему циркуляции, в которой цельная кровь или телесные жидкости циркулируют посредством насоса. В корпусе 2 расположена, по меньшей мере, одна из разделительных матриц 5a, 5b,..., каждая из которых предназначена для селективного удаления одного из компонентов из цельной крови или телесных жидкостей. Корпус 2 снабжают входом 3 и выходом 4, положения которых не являются важными постольку, поскольку получается адекватный поток в разделительной матрице (матрицах) и корпусе. Предпочтительно насос располагается перед входом 3.
Таким образом, получают устройство, которое может поддерживать скорости потока от 5 мл/час до 6000 мл/мин без значительных перепадов давления. Когда его применяют экстракорпорально, получают давление в линии не больше чем 300 мм рт.ст. от насоса до канюли, даже при очень высоких скоростях потока.
Жесткая интегральная разделительная матрица для использования в способе по настоящему изобретению может быть произведена в различных формах. Например, она может быть сконструирована в виде диска, стержня, цилиндра, кольца, сферы, трубки, полой трубки, плоского листа или другой формованной формы.
Поскольку поток в каждой разделительной матрице зависит от ее пористости, время контакта компонентов в крови или телесной жидкости с активной поверхностью может контролироваться. Кроме того, желаемый градиент потока может создаваться в разделительном устройстве путем изменения пористости и конфигурации индивидуальных разделительных матриц в ней.
На фиг.2 и 3 изображены различные схематические воплощения устройств, которые могут быть использованы, когда осуществляется способ в соответствии с настоящим изобретением. Стрелки показывают поток крови или телесной жидкости в индивидуальных разделительных матрицах и их корпусах, стрелки большего размера указывают на более высокую скорость потока, чем малые стрелки. В этих примерах различных конфигураций разделительные матрицы могут иметь или одинаковую или различную пористость с одними и теми же или различными типами функциональных групп или лигандов для удаления одного или нескольких компонентов из крови или телесной жидкости, или без них.
Разделительные матрицы предпочтительно составляют единое целое с корпусами (каждый имеет вход 3 и выход 4) для предотвращения того, что какая-либо жидкость или компоненты в ней не могут поступать в матрицу или матрицы, то есть исключаются из нее. На фиг.2(a) и (b) приведены примеры разделительной матрицы 5 внутри корпуса 2, при этом матрица имеет различные конфигурации. Примеры двух разделительных матриц 5a, 5b внутри корпуса 2 изображены на фиг.2 (c) и (d). В устройстве на фиг.2(c) непроницаемое покрытие 6, такое как нанесенная пленка, на наружной периферии разделительной матрицы 5a обеспечивает то, что весь материал, поступивший в устройство, будет проходить через всю матрицу. В устройстве на фиг.2(d), с другой стороны, некоторая часть поступающего материала будет иметь более короткое время пребывания в разделительной матрице 5a, чем в разделительной матрице 5b, и наоборот.
На фиг.3 каждое устройство содержит несколько разделительных матриц 5a-5g. На фиг.3(a) разделительная стенка 7 обеспечивает поток через все матрицы. Разделительные матрицы могут располагаться продольным или поперечным образом по отношению к их продольным направлениям, как на фиг.3(b) и (c) соответственно. На фиг.3(d) устройство содержит разделительные матрицы различных размеров.
В итоге способ по настоящему изобретению может быть использован вместе с устройством, применяемым интра-, пара- или экстракорпорально, или вместе с отдельно расположенным устройством, которое при этом является способным к уменьшению количества циркулирующих эндотоксинов и потенциально вредных провоспалительных медиаторов, в частности TNF-α, IL-1 и IL-17, предпочтительно в крови. Является также возможным селективное удаление эндотоксинов из других водных растворов. Компоненты, как считают, связываются с активной поверхностью жесткой интегральной разделительной матрицы посредством адгезии.
ПРИМЕРЫ
Настоящее изобретение теперь будет дополнительно описываться и иллюстрироваться путем ссылок на следующие далее примеры, которые были тщательно отобраны для того, чтобы они охватывали настоящее изобретение. Соответственно они не должны рассматриваться как ограничивающие настоящее изобретение каким-либо образом.
Способы модификации поверхности
Пример 1
Поверхность матрицы из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 350 микрон и активную поверхность 10 см2, модифицируют посредством плазмостимулированного химического осаждения из паровой фазы с использованием O2 (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System).
Формирование гидроксильных групп на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют с помощью исследования с использованием красителя, при этом ее гидрофильность подтверждается.
Пример 2
Поверхность матрицы из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 100 микрон и активную поверхность 20 см2, модифицируют посредством плазмостимулированного химического осаждения из паровой фазы с использованием CO2 (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System).
Формирование карбоксильных групп и их количество на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют путем преобразования в гидроксамовые кислоты. В этой связи все гидроксамовые кислоты дают красный или фиолетовый цвет с хлоридом железа (III) в кислотном растворе, как описывается в Feigel et al.; Microchemie 15:18, 1934.
Пример 3
Поверхность матрицы из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 170 микрон и активную поверхность 0,04 м2, модифицируют посредством плазмостимулированной полимеризации с использованием аллиламина (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System).
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют посредством анализа с использованием тринитробензолсульфоновой кислоты (TNBS).
Пример 4
Поверхность матрицы из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 70 микрон и активную поверхность 0,26 м2, модифицируют посредством плазмостимулированной полимеризации с использованием акриловой кислоты (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Science Treatment System).
Количество карбоксильных групп на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 2.
Пример 5
Поверхность матрицы из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 5 микрон и активную поверхность 0,9 м2, модифицируют посредством плазмостимулированной полимеризации с использованием NH3 (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System).
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Пример 6
Поверхность матрицы из пористого политетрафторэтилена, PTFE (W.L. Gore & Associates Inc., USA), имеющего пористость 10 микрон и активную поверхность 100 см2, модифицируют посредством плазмостимулированного химического осаждения из паровой фазы с использованием NH3 (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System).
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Пример 7
Поверхность матрицы из пористого полистирола (Dow Chemical, USA), имеющего пористость 10 микрон и активную поверхность 300 см2, модифицируют посредством плазмостимулированного химического осаждения из паровой фазы с использованием CO2 (Plasma Science, USA, Type PS 0350 Plasma Surface Treatment System).
Количество карбоксильных групп на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 2.
Пример 8
Поверхность матрицы из пористого полиуретана (Polymers Unlimited, Sweden), имеющего пористость 80 микрон и активную поверхность 100 см2, модифицируют посредством 2% раствора Aldehydic Alkoxy Silane, Art No. (PSX 1050, United Chemical Technologies Inc., USA) в 95% этаноле. pH раствора доводится до pH 5,5 с помощью уксусной кислоты и раствор заливают в матрицу, которую инкубируют в течение ночи при комнатной температуре, а затем промывают 0,9% физиологическим солевым раствором.
Функциональную группу альдегида полученной матрицы оценивают путем использования каталитического ускорения окисления п-фенилендиамина с помощью перекиси водорода, п-фенилендиамин окисляется под действием перекиси водорода в кислотном растворе, который известен как основание Бандровского.
Пример 9
Поверхность матрицы из пористого силикона (Nusil, France), имеющего пористость 200 микрон и активную поверхность 0,5 м2, модифицируют посредством 2% раствора Amine-Silane (Art No. 0750, United Chemical Technologies Inc., USA) в 95% этаноле. Раствор заливают в матрицу, которую инкубируют в течение ночи при комнатной температуре и, наконец, промывают 0,9% физиологическим солевым раствором.
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Нанесение покрытия посредством ковалентного связывания
Пример 10
Poly-Lysine (полилизин) (200 мг) растворяют в 10 мл 50 мМ раствора карбоната натрия, а затем матрицу из пористого поликарбоната с пористостью 100 микрон (MicroPore Plastics, USA) погружают в раствор и поддерживают при 4°C в течение 24 часов для получения ковалентного связывания между полилизином и поликарбонатной матрицей. Наконец, пористую матрицу промывают избытком дистиллированной воды.
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Пример 11
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 4, заливают водным раствором 1-циклогексил-3-(2-морфолиноэтил)карбодиимид-мета-п-толуолсульфоната (WCCM) (Aldrich) при скорости потока 5 мл/мин в замкнутом контуре при комнатной температуре в течение 6 часов. Затем ее промывают водой и, наконец, добавляют раствор полиэтиленимина (Sigma) (10 мг/мл, pH 7,0) и матрицу инкубируют в течение ночи.
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Пример 12
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 3, конъюгируют с использованием 1,0% глутарового диальдегида в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,5, и заливают со скоростью потока 1 мл/мин в течение 6 часов при комнатной температуре. Затем матрицу промывают буфером перед инкубированием с раствором гиалуроновой кислоты (2 мг/мл) в течение 16 часов при комнатной температуре. Наконец, избыток гиалуроновой кислоты отмывают.
Содержание гиалуроновой кислоты на поверхности пористой структуры полученной матрицы проверяют и определяют с помощью Alcian Blue (Sigma).
Нанесение покрытия посредством адгезии
Пример 13
Матрицу из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 70 микрон и активную поверхность 0,18 м2, заливают при скорости потока 1 мл/мин в замкнутом контуре в течение 16 часов при комнатной температуре 2 мг/мл раствором гиалуроновой кислоты (BioHyos, Sweden, 12-106 Да) при pH, равном 3,3, которую устанавливают с помощью 0,1 M HCl.
Содержание гиалуроновой кислоты на поверхности пористой структуры полученной матрицы проверяют как в примере 12.
Пример 14
Матрицу из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 70 микрон и активную поверхность 7,0 м2, помещают в стеклянную пробирку. Пробирку с пористой матрицей внутри заполняют раствором 0,13% полилизина Poly-lysine (Sigma) в 350 мл воды и pH доводят до pH 3,3 с помощью 0,1 M HCl. Затем раствор полилизина рециркулируют через пробирку с ее фильтрующей матрицей в течение 16 часов при комнатной температуре при скорости потока <5 мл/мин. Наконец пористую матрицу промывают водой, очищенной с помощью обратного осмоса.
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Пример 15
Матрицу из пористого полиэтилена (Porex Technologies, Germany), имеющего пористость 70 микрон и активную поверхность 3,4 м2, помещают в стеклянную пробирку. Пробирку с пористой матрицей внутри заполняют раствором 0,2% Recombumin™ (рекомбинантный сывороточный альбумин человека, Hoechst-Pharma, USA) в 350 мл воды, очищенной с помощью обратного осмоса, а затем доводят до pH 3,3 с помощью 0,1 M HC1.
Затем раствор Recombumin™ рециркулируют через пробирку с ее фильтрующей матрицей в течение 16 часов, при комнатной температуре с использованием насоса, при скорости потока <5 мл/мин. Наконец пористую матрицу промывают водой, очищенной с помощью обратного осмоса.
Содержание белка на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют с использованием Coomassie Brilliant Blue (BioRad, USA).
Пример 16
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 4, заливают раствором полиэтиленимина (Sigma), 10 мг/мл, в течение ночи, при скорости потока 5 мл/мин, в замкнутом контуре. Затем пористую матрицу промывают водой.
Количество первичных аминов на поверхности пористой структуры полученной матрицы анализируют, как описывается в примере 3.
Непосредственное конъюгирование лигандов
Пример 17
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 5, конъюгируют дезоксихолатом (DOC) путем использования водного раствора WCCM. Раствор из 300 мл 40% диметилформамида (DMF) (Sigma) в воде, который содержит 1 ммоль дезоксихолата натрия, добавляют к пористому поликарбонату при перемешивании, при этом доводят pH с помощью 0,3 M HCl до pH 4,8. Затем раствор 6 мМ WCCM в DMF:воде (1:1,8) добавляют в течение 10 минут. Суспензию выдерживают при pH 4,8 в течение 3 часов путем добавления 0,3 M HCl.
Содержание DOC на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют путем использования набора Bile Acid Kit (Sigma).
Пример 18
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 3, конъюгируют с использованием 12% глутарового диальдегида в 0,15 M фосфатном буфере, pH 7,0, в течение 24 часов, при комнатной температуре. Матрицу промывают 0,15 M фосфатным буфером, а затем добавляют антитела против CD14 (DAKO, Denmark) при концентрации 1 мг/мл и инкубируют при 8°C в течение 24 часов. Следующее далее восстановление цианоборгидридом натрия осуществляют для получения стабильных связей вторичных аминов.
Содержание антител на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют опосредованно, посредством УФ-спектроскопии буферного раствора антител, до и после инкубирования с пористой матрицей.
Пример 19
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 8, промывают 0,15 M фосфатным буфером, а затем добавляют рекомбинантный рецептор IL-1 (Kineret, Amgen, USA) при концентрации 1 мг/мл и инкубируют при 8°C, в течение 24 часов. Следующее далее восстановление цианоборгидридом натрия осуществляют для получения стабильных связей вторичных аминов.
Содержание рецепторов IL-1 на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют опосредованно посредством УФ-спектроскопии буферного раствора рецепторов IL-1 до и после инкубирования вместе с пористой матрицей.
Пример 20
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 5, конъюгируют с использованием 1,0% глутарового диальдегида и 0,2 M фосфатного буфера, pH 7,5. Матрицу инкубируют с этим раствором в течение 3 часов. После промывки фосфатным буфером матрицу инкубируют в растворе сульфата Polymyxin B (Sigma), 1 мг/мл, в течение ночи, при рециркулировании. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Пример 21
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 2, конъюгируют рекомбинантным рецептором TNF-α (Enbrel, Wyeth, UK) при концентрации 5 мг/мл, в 0,1 M буфере с 2-(N-морфолино)этансульфоновой кислотой (MES) (Sigma), pH 4,8. Добавляют тридцать мг/мл водного раствора WCCM, и матрицу инкубируют в течение ночи, при 8°C. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание рецептора TNF-α на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют опосредованно, посредством УФ-спектроскопии буферного раствора рецептора TNF-α, до и после инкубирования с пористой матрицей.
Пример 22
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 3, конъюгируют с антителом против TNF-α человека (Sigma) с использованием 1,0% глутарового диальдегида в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,5. Матрицу инкубируют вместе с буферным раствором с антителом к TNF-α в течение 3 часов. После промывки пористой матрицы фосфатным буфером добавляют антитело против TNF-α человека (1 мг/мл) в фосфатном буфере и инкубируют при комнатной температуре в течение 6 часов, при рециркулировании, при скорости потока 1 мл/мин. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание антитела TNF-α на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют опосредованно, посредством УФ-спектроскопии буферного раствора антитела TNF-α, до и после инкубирования с пористой матрицей.
Пример 23
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 5, конъюгируют с белком человека, усиливающим бактерицидную проницаемость (BPI) (Wieslab, Sweden), при концентрации 2 мг/мл, в 0,1 M буфере MES, pH 4,8. К этой матрице добавляют водный раствор WCCM при концентрации 15 мг/мл, и матрицу инкубируют в течение ночи при 8°C. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание BPI на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют опосредованно, посредством УФ-спектроскопии буферного раствора BPI, до и после инкубирования с пористой матрицей.
Пример 24
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 15, инкубируют в растворе DOC, в 0,1 M буфере MES, pH 4,8, при концентрации 1 мг/мл. Затем добавляют водный раствор WCCM, и матрицу инкубируют в течение ночи при 8°C. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание DOC на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют, как в примере 17.
Конъюгирование лигандов со спейсером
Пример 25
Пористую полиэтиленовую матрицу получают в соответствии с примером 3 и активируют 1,2% глутаровым диальдегидом в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,0, в течение 24 часов при комнатной температуре. Матрицу промывают буфером, а затем инкубируют в течение 24 часов в 1,6-диаминогексане (DAH) (Sigma), 50 мг/мл, в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,0. После этого к раствору добавляют 10 мг/мл цианоборгидрида натрия (Sigma). Пористую матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, а затем инкубируют в растворе DOC (1 мг/мл), в 0,1 M буфере MES, pH 4,8. Затем добавляют водный раствор WCCM и матрицу инкубируют в течение ночи при 8°C. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание DOC на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют как в примере 17.
Пример 26
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 5, активируют в течение 24 часов, при комнатной температуре 1,2% глутаровым диальдегидом в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,0. Матрицу промывают буфером, а затем инкубируют в течение 24 часов с дигидразидом адипиновой кислоты (Aldrich) при концентрации 10 мг/мл, в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,4. Затем в раствор добавляют 10 мг/мл цианоборгидрида натрия (Sigma).
Пористую матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, а затем инкубируют с раствором DOC, при концентрации 1 мг/мл, в 0,1 M буфере MES, pH 4,8. Затем добавляют водный раствор WCCM и матрицу инкубируют в течение ночи при 8°C. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание DOC на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют как в примере 17.
Пример 27
Матрицу, полученную в соответствии с примером 10, конъюгируют с DOC путем использования водного раствора WCCM. Водный раствор 300 мл 40% DMF (Sigma), содержащий 1 ммоль дезоксихолата натрия, добавляют к пористой поликарбонатной матрице при перемешивании. pH суспензии доводят до 4,8 с помощью 0,3 M HCl. Добавляют 6 мМ раствор WCCM в DMF:воде (1:1,8), в течение 10 минут, и суспензию выдерживают при pH 4,8, в течение 3 часов путем периодического добавления 0,3 M HCl. Затем ее выдерживают при комнатной температуре в течение 24 часов.
Содержание DOC на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют как в примере 17.
Пример 28
Матрицу, полученную в соответствии с примером 14, активируют в течение 10 часов при комнатной температуре 1,2% глутаровым диальдегидом в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,0, а затем промывают избыточными количествами буфера. Полиэтиленимин (Sigma) при концентрации 10 мг/мл в 0,1 M бикарбонатном буфере, pH 8,0, вводят в пористую матрицу, и матрицу инкубируют раствором в течение 16 часов.
Затем матрицу промывают буфером и конъюгируют с DOC с использованием водного раствора WCCM. Раствор 300 мл 40% DMF в воде, содержащий 1 ммоль дезоксихолата натрия, добавляют к пористой матрице при перемешивании. pH доводят до 4,8 с помощью 0,3 M HCl. Затем добавляют 6 мМ раствор WCCM в DMF:воде (1:1,8) в течение 10 минут. Суспензию выдерживают при pH 4,8 в течение 3 часов путем периодического добавления 0,3 M HCl. Затем ее выдерживают при комнатной температуре в течение 24 часов.
Содержание DOC на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют как в примере 17.
Пример 29
Пористую полиэтиленовую матрицу, полученную в соответствии с примером 3, активируют в течение 24 часов при комнатной температуре 1,2% глутаровым диальдегидом в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,0. Затем матрицу промывают буфером и инкубируют в течение 24 часов с 1,6-диаминогексаном (DAH) (Sigma) при концентрации 50 мг/мл в 0,2 M фосфатном буфере, pH 7,0. Затем пористую матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером и инкубируют в течение 12 часов при 8°C в виде суспензии в растворе рецептора TNF-α (Enbrel, Wyeth, UK) с концентрацией 10 мг/мл, в 0,1 M фосфатном буфере, pH 7,4. Затем к суспензии добавляют раствор цианоборгидрида натрия (Sigma) при концентрации 10 мг/мл. Наконец матрицу промывают 0,1 M фосфатным буфером, pH 7,4.
Содержание рецептора TNF-α на поверхности пористой структуры полученной матрицы определяют опосредованно, посредством УФ-спектроскопии буферного раствора рецептора TNF-α до и после инкубирования с пористой матрицей.
Селективное связывание и разделение компонентов крови
Разделение клеток осуществляют, давая возможность цельной крови проходить через фильтр из матрицы, имеющей форму диска и имеющей активную поверхность 0,02 м2.
Удаление эндотоксинов и цитокинов осуществляют с помощью исследовательской системы, изображенной на фиг.4. Контейнер 8, заполненный цельной кровью или плазмой в объеме вплоть до 2 л, соединяют с насосом 9, монитором давления 10 и фильтрующим устройством 1, содержащим до 40 пластинок матрицы, то есть обеспечивается активная поверхность до 7 м2, имеющая пористость, находящуюся в пределах между 70 и 130 микронами.
Разделение клеток
Пример 30
Пористую магнитную матрицу, содержащую смесь полиэтилена и магнитного феррита (80% FeO, 20% BaO2, Porex Technologies, Germany), которая имеет пористость 100 микрон, используют для выделения лейкоцитов из цельной крови путем использования специфично меченых антител против CD45+ (MACS Antibody Microbeads; Miltenyi Biotec, Germany). После магнитного мечения лейкоцитов такими антителами крови дают возможность для прохождения через пористую матрицу.
Счет клеток лейкоцитов осуществляют путем использования автоматического цитометра, который после проведения разделения показывает уменьшение содержания лейкоцитов в крови на 90%.
Пример 31
Поверхность матрицы из пористой диацетат целлюлозы (Tenite, Eastman Chemicals, USA), имеющей пористость 200 микрон и активную поверхность 0,2 м2, используют для выделения фагоцитирующих клеток крови человека в качестве нейтрофилов и моноцитов. Цельную кровь человека собирают в пробирках EDTA vacutainer (B&D, UK) и крови дают возможность для прохождения через пористую матрицу.
Уменьшение количество нейтрофилов и моноцитов в собранной крови составляет 50% и 35% соответственно, что определяется микроскопически путем дифференциального подсчета клеток в гемоцитометре Бюркнера, путем использования Turks Reagent.
Удаление цитокинов
Пример 32
Матрицу, полученную в соответствии с примером 22, которая имеет покрытие с группами для удаления эндотоксинов, используют в виде пористых дисков в исследовательской системе, изображенной на фиг.4.
Устранение TNF-α из цельной крови исследуют после иммобилизации поликлональных антител против TNF-α на аминогруппах на пористой полимерной структуре с помощью глутарового диальдегида. Выработку TNF-α индуцируют путем добавления в кровь LPS, и активированную цельную кровь заливают на иммобилизованный фильтр в устройстве.
Количества TNF-α в цельной крови (фиг.5) определяют до (◆) и после (■) иммуноферментного анализа (Enzymimmuno-assay, Milenia Biotec GmbH, Germany) в устройстве для исследования поглощения TNF-α фильтрующими дисками. Как видно, может быть получено значительное понижение патологических концентраций TNF-α в цельной крови.
Удаление эндотоксинов
Пример 33
Матрица, полученная в соответствии с примером 25, то есть модифицированная с помощью плазмы полиэтиленовая матрица имеет на себе DOC, иммобилизованный на ней посредством спейсера из диаминогексана, который сначала связывают с матрицей посредством глутарового диальдегида, а затем с дезоксихолатом с использованием карбодиимида. Полученную матрицу используют в виде пористых дисков в фильтрующем устройстве системы, изображенной на фиг.4.
Устранение LPS из плазмы осуществляется способом, подобным примеру 32.
Количество LPS в плазме определяют посредством средств Limulus Amebocyte Lysate assay (Endochrome-K, Charles River Laboratories Inc. USA) в объеме через различные интервалы времени, во время рециркулирования через фильтрующее устройство.
На фиг.6 изображено уменьшение количества эндотоксина (пг/мл) со временем. После рециркулирования в течение 2 часов нагрузка эндотоксина уменьшается от 75 пг/мл в начале до 15 пг/мл, что представляет собой предел детектирования.
Пример 34
Матрицы, полученные в соответствии с примером 3 (неиммобилизованные аминогруппы) и примером 17 (иммобилизованный DOC), соответственно используют в виде пористых дисков и сравнивают в отношении их способности к устранению LPS. Исследования с рециркулированием, подобные примеру 33, осуществляют с тем различием, что LPS растворяют в дистиллированной воде.
Устранение LPS из водного раствора определяют как показано на фиг.4, при рециркулировании со скоростью потока 0,22 мл/мин по 10 мл через каждый фильтр в устройстве.
В таблице 1 ниже значения для устранения LPS с помощью двух матриц из примера 3 и примера 17 соответственно приводят как процент от начальной концентрации LPS после рециркулирования в течение 120 мин.
Таблица 1
  Пример 3 Пример 17
Устранение LPS (%) 81 96
Различия в степени устранения между плазмой (пример 34) и водой (пример 35) могут объясняться конкурентными взаимодействиями белков, LPS и лиганда.
Комбинированное удаление
Пример 35
Матрицы, полученные в соответствии с примером 19 и примером 29, используют для комбинированного удаления TNF-α и IL-1 соответственно.
Две матрицы с различной специфичностью объединяют последовательно в тестовую систему из двух фильтрующих устройств типа замкнутой петли, как показано на фиг.4. Цельную кровь в контейнере, выдерживаемом при 37°C, активируют путем добавления LPS и вводят в систему. Отбор образцов для анализа цитокинов осуществляют через различные интервалы времени одновременно из выходов контейнера и фильтра.
Результаты демонстрируют понижение концентраций цитокинов для обеих матриц на 70% и 55% для TNF-α и IL-β соответственно.
Таблица 2 ниже демонстрирует сводку многосторонней применимости и значительной эффективности способа по настоящему изобретению для селективного связывания и выделения различных компонентов из цельной крови или телесной жидкости. Для этой цели различные пористые матрицы используют в качестве подложек для присоединения лигандов либо со спейсером либо без него. Таким образом, способы иммобилизации осуществляют с глутаровым диальдегидом, используя две конечных группы -NH2, и с 1-этил-3-(3-диметиламинопропил)карбодиимидом, с одной конечной группой -NH2 и одной конечной группой -OH или -COOH соответственно. Также используется силанизация посредством связывающих реагентов на основе альдегида или аминофункциональных силанов для специфичного связывания аминогрупп, антител, ферментов, пептидов, белков, причем альдегидные группы спонтанно взаимодействуют с аминами, пептидами и белками.
Таблица 2
Пористая матрица Способ Спейсер Лиганд Компонент Эффективность
Полиэтилен - HA DOC LPS 80,1
Полиэтилен - Poly-Lys DOC LPS 12,8
Полиэтилен -NH2 DAH DOC LPS 29,6
Полиэтилен -NH2 - DOC LPS 12,5
Полиэтилен -NH2 DAH Полимиксин B LPS 16,3
Полиэтилен -NH2 DAH Аргинин LPS 14,3
Полиэтилен -NH2 DAH Recombumin LPS 18,3
Полиэтилен -NH2 - Anti-TNF-α Ab TNF-α 63,2
Полиэтилен Аллил-амин PEI DOC LPS 33,4
Полиэтилен Аллил-амин Poly-Lys DOC LPS 85,5
Полиэтилен -COOH - Рецептор TNF-α TNF-α 59,2
Полиэтилен -COOH - Рецептор Интерлейкина-1 IL-l 64,0
Полиэтилен -COOH - Тромбомодулин Тромбин 70,8
Полиэтилен -COOH - BPI LPS 91,2
Полиэтилен -OH Sil.ald Рецептор TNF-α TNF-α 61,8
Полиэтилен -OH Sil.ald. Рецептор Интерлейкина-1 IL-1 62,0
Полиэтилен -OH Sil.ald. Тромбомодулин Тромбин 73,7
Полиэтилен -OH Sil.ald. BPI LPS 89,3
Полиэтилен HA DAH DOC LPS 29,6
Полиэтилен Poly-Lys DAH DOC LPS 73,3
Полиэтилен Recom-bumin - DOC LPS 20,8
Полиэтилен -NH2 GDA Anti CD 11b Ab Гранулоциты и моноциты 50,2
Полиэтилен -OH Sil.ald. Anti CD lib Ab Гранулоциты и моноциты 56,1
Поликарбонат - Poly-Lys DOC LPS 44,4
Поликарбонат -OH Sil.Ald Рецептор TNF-α TNF-α 75,9
Поликарбонат -COOH - Тромбомодулин Тромбин 72,0
Полиуретан - DAH DOC LPS 30,2
Полиуретан - DAH Recombumin LPS 18,5
Полиуретан - Poly-Lys DOC LPS 14,8
Полиуретан - Sil.Ald Рецептор TNF-α TNF-α 56,7
Полиуретан - Sil.Ald BPI LPS 88,0
Силикон - Sil.Ald Рецептор TNF-α TNF-α 55,3
Силикон - Sil.Ald Тромбомодулин Тромбин 68,2
Цеолит - Sil.Ald Рецептор TNF-α TNF-α 63,9
Цеолит - Sil.-NH2 DOC LPS 48,3
Цеолит   Sil.Ald Рецептор Интерлейкина-1 IL-1 60,1
Целлюлоза CNBr DAH DOC LPS 28,5
Целлюлоза CNBr Poly-Lys DOC LPS 39,2
PTFE Аллил-амин DAH Рецептор TNF-α TNF-α 73,0
PTFE -COOH - Рецептор Интерлейкина-1 IL-1 77,7
Аббревиатуры: BPI = белок, повышающий бактерицидную проницаемость; DAH = 1,6-диамино-гексан; DOC = дезоксихолат; EDC = 1-этил-3(3-диметиламинопропил)карбодиимид; GDA = глутаровый диальдегид; HA = гиалуроновая кислота; IL-1 = Интерлейкин-1; PEI = полиэтиленимин; Recombumin = рекомбинантный альбумин человека; Sil.ald. = связывающий реагент с альдегид-функциональным силаном; Sil.-NH2 = связывающий реагент с аминофункциональным силаном; TNF-α = фактор некроза опухоли - α.

Claims (32)

1. Способ селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из жидкости организма, включающий в себя
прохождение жидкости организма, такой как цельная кровь, через жесткую интегральную разделительную матрицу, без исключения компонентов по размерам указанной матрицей, причем указанная матрица имеет пористую структуру с размером пор в пределах от 5 до 500 мкм, а также активную поверхность в пределах от 0,5 см2 до 10 м2,
связывание, по меньшей мере, одного компонента жидкости организма, по меньшей мере, с одной функциональной группой, расположенной в указанной матрице, где указанная функциональная группа размещена на указанной матрице путем покрытия или поверхностной модификации указанной пористой структуры указанной матрицы, для размещения указанной, по меньшей мере, одной функциональной группы на указанной матрице,
при этом указанную матрицу получают с помощью способа, выбранного из группы, включающей в себя способы спекания, формования и вспенивания.
2. Способ по п.1, где, по меньшей мере, одна функциональная группа, сама по себе или в сочетании с нефункционализованными участками указанной пористой структуры, способна связывать указанный, по меньшей мере, один компонент.
3. Способ по п.1, где указанную матрицу изготавливают из материала, выбранного из группы, включающей в себя металл, оксид неорганического соединения, углерод, стекло, керамику, синтетический полимер и природный полимер, и их сочетания.
4. Способ по п.3, где указанную матрицу изготавливают из ферромагнитного металла.
5. Способ по п.3, где синтетический или природный полимер наносят в виде покрытия на указанный материал.
6. Способ по п.3 или 5, где указанный синтетический полимер выбирают из группы, включающей в себя полиолефин, виниловый полимер, фторсодержащий полимер, полиакрилат, полиамид, полиимид, полиимин, полистирол и его сополимеры, силиконовый каучук, сложный полиэфир, поликарбонат, полиуретан, полисульфонат, полигликоль, простой полиэфир и полиалкиленоксид и их сополимеры и гибриды.
7. Способ по п.3 или 5, где указанный природный полимер выбирают из группы, включающей в себя полисахарид, полиуглевод, полиаминокислоту, полимолочную кислоту или полигликолевую кислоту и их сополимеры и гибриды.
8. Способ по п.2, где указанную модификацию поверхности выбирают из группы, включающей в себя электроосаждение, электроиспарение, плазмостимулированное химическое осаждение, осаждение из потока ионов плазмы, плазменную полимеризацию, осаждение полимера на поверхность, улучшенную обработкой плазмой, и химическое осаждение из паровой фазы.
9. Способ по п.2, где указанную, по меньшей мере, одну функциональную группу выбирают из группы, включающей в себя сульфгидрил, карбоксилат, амин, альдегид, кетон, гидроксил, галоген, гидразид или активный водород.
10. Способ по п.2, где лиганд связан с указанной, по меньшей мере, одной функциональной группой ковалентным образом.
11. Способ по п.10, где указанный лиганд выбирают из группы, включающей в себя белок, пептид, антитело или его фрагмент, углевод, полисахарид, гормон, антиоксидант, гликопротеин, липопротеин, липид, жирорастворимый витамин, желчную кислоту, реакционноспособный краситель, аллантоин, мочевую кислоту или полимиксин и их сочетания.
12. Способ по п.10, где кросслинкер ковалентно связан между указанной, по меньшей мере, одной функциональной группой и указанным лигандом.
13. Способ по п.12, где указанный кросслинкер выбирают из группы, включающей в себя гомобифункциональный, гетеробифункциональный и трифункциональный кросслинкер.
14. Способ по п.12, где указанный кросслинкер ковалентно связан в качестве спейсера между указанной, по меньшей мере, одной функциональной группой и указанным лигандом.
15. Способ по п.14, где указанный спейсер выбирают из группы, включающей в себя силан, диизоцианат, гликолят, полиэтиленгликоль, сукцинимидиловый реагент, дигидразин, адипиновую кислоту, диамин, аминокислоту, олигоаминокислоту, полиаминокислоту, пептид и белок.
16. Способ по п.1, где указанная разделительная матрица имеет форму, выбранную из группы, включающей в себя диск, стержень, цилиндр, кольцо, сферу, трубку и полую трубку.
17. Способ по п.1, где указанный размер пор составляет от 50 до 500 мкм.
18. Способ по п.1, который осуществляется в устройстве (1), содержащем корпус (2), вход (3), выход (4) и указанную, по меньшей мере, одну разделительную матрицу (5а, 5b, ...).
19. Способ по п.18, где указанное устройство имеет, по меньшей мере, две разделительных матрицы (5а, 5b, ...), каждая из которых селективно и отдельно от других удаляет, по меньшей мере, один компонент из жидкости организма.
20. Способ по п.19, где указанные, по меньшей мере, две разделительные матрицы (5а, 5b, ...) удаляют, по меньшей мере, два компонента из жидкости организма.
21. Способ по п.20, где первая разделительная матрица удаляет первый компонент, а вторая разделительная матрица удаляет второй компонент из жидкости организма.
22. Способ по п.19, 20 или 21, в котором, по меньшей мере, одна из указанных разделительных матриц имеет размер пор от 50 до 500 мкм.
23. Способ по п.16, где скорость потока через указанное устройство составляет от 5 мл/час до 6000 мл/мин.
24. Применение остатка желчной кислоты, иммобилизованного на подложке, для устранения компонента из жидкости организма с помощью способа по п.1.
25. Применение по п.24, где указанный остаток желчной кислоты представляет собой остаток дезоксихолевой кислоты.
26. Устройство для селективного связывания и выделения, по меньшей мере, одного компонента из жидкости организма в соответствии со способом по любому из пп.1-21, содержащее корпус (2), вход (3), выход (4) и, по меньшей мере, одну разделительную матрицу (5а, 5b, ...), причем указанная матрица является жесткой и интегральной при прохождении указанной крови или жидкости организма через нее, и указанная матрица имеет пористую структуру с размерами пор, находящимися в пределах от 5 до 500 мкм, а также активную поверхность, находящуюся в пределах от 0,5 см2 до 10 м2, которая способна связывать указанный, по меньшей мере, один компонент, где указанная разделительная матрица имеет пористую структуру, полученную с помощью способа, выбранного из группы спекания, формования и вспенивания.
27. Устройство по п.26, где указанная матрица имеет размер пор от 50 до 500 мкм.
28. Устройство по п.26, где указанное устройство имеет, по меньшей мере, две разделительные матрицы (5а, 5b, ...), каждая из которых селективно и отдельно от других удаляет, по меньшей мере, один компонент из цельной крови или жидкости организма.
29. Устройство по п.28, где указанные, по меньшей мере, две разделительные матрицы (5а, 5b, ...) удаляют, по меньшей мере, два компонента из жидкости организма.
30. Устройство по пп.28 или 29, где, по меньшей мере, одна из указанных матриц имеет размер пор от 50 до 500 мкм.
31. Устройство по любому из пп.26-29, где указанная разделительная матрица имеет форму диска, стержня, цилиндра, кольца, сферы, трубки или полой трубки.
32. Устройство по любому из пп.26-29, где модификацию поверхности осуществляют с помощью способа, выбранного из группы, состоящей из электроосаждения, электроиспарения, плазмостимулированного химического осаждения, осаждения из потоков ионов плазмы, плазменной полимеризации, осаждения полимера на поверхность, улучшенную обработкой плазмой, и химического осаждения из паровой фазы.
RU2004134345/15A 2002-04-25 2003-04-04 Улучшенное разделение RU2311183C2 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE0201257A SE0201257D0 (sv) 2002-04-25 2002-04-25 Improved Separation
SE0201257-3 2002-04-25

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007110420/05A Division RU2429902C2 (ru) 2002-04-25 2007-03-21 Способ селективного удаления компонента из водной жидкости

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2004134345A RU2004134345A (ru) 2005-05-27
RU2311183C2 true RU2311183C2 (ru) 2007-11-27

Family

ID=20287687

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2004134345/15A RU2311183C2 (ru) 2002-04-25 2003-04-04 Улучшенное разделение
RU2007110420/05A RU2429902C2 (ru) 2002-04-25 2007-03-21 Способ селективного удаления компонента из водной жидкости

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007110420/05A RU2429902C2 (ru) 2002-04-25 2007-03-21 Способ селективного удаления компонента из водной жидкости

Country Status (16)

Country Link
US (3) US20030231981A1 (ru)
EP (2) EP1497025B1 (ru)
JP (4) JP2006508703A (ru)
KR (2) KR100950432B1 (ru)
CN (2) CN1308068C (ru)
AT (1) ATE329687T1 (ru)
AU (1) AU2003217134C1 (ru)
BR (1) BR0309349A (ru)
CA (2) CA2481711C (ru)
DE (2) DE60328541D1 (ru)
ES (2) ES2266797T3 (ru)
HK (2) HK1081138A1 (ru)
MX (1) MXPA04010543A (ru)
RU (2) RU2311183C2 (ru)
SE (1) SE0201257D0 (ru)
WO (1) WO2003090924A1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012154218A3 (en) * 2011-05-09 2013-01-03 The University Of Miami Reducing soluble urokinase receptor in the circulation
WO2014059323A1 (en) * 2012-10-12 2014-04-17 Advantageous Systems Llc Immobilization of particles on a matrix

Families Citing this family (47)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK1723233T3 (da) * 2004-03-05 2012-07-23 Sirs Lab Gmbh Fremgangsmåde til berigelse og/eller adskillelse prokaryotisk DNA ved hjælp af et protein, som specifikt binder DNA indeholdende ikke-methylerede CPG-motiver
JP4925829B2 (ja) * 2004-08-30 2012-05-09 株式会社カネカ 顆粒球吸着材
WO2006025556A1 (en) * 2004-08-31 2006-03-09 Showa Denko K.K. Surface-modified packing material for liquid chromatography and production method thereof
GB2420976B (en) * 2004-11-19 2006-12-20 Zvi Finkelstein Therapeutic implant
DE102004062535A1 (de) * 2004-12-24 2006-07-06 Forschungszentrum Karlsruhe Gmbh Semipermeables Membransystem für magnetische Partikelfraktionen
JP4821466B2 (ja) * 2006-07-03 2011-11-24 富士ゼロックス株式会社 液滴吐出ヘッド
US8165663B2 (en) * 2007-10-03 2012-04-24 The Invention Science Fund I, Llc Vasculature and lymphatic system imaging and ablation
ES2639183T3 (es) 2007-09-19 2017-10-25 The Charles Stark Draper Laboratory, Inc. Estructuras microfluídicas con sección transversal circular
US8285367B2 (en) * 2007-10-05 2012-10-09 The Invention Science Fund I, Llc Vasculature and lymphatic system imaging and ablation associated with a reservoir
US8285366B2 (en) * 2007-10-04 2012-10-09 The Invention Science Fund I, Llc Vasculature and lymphatic system imaging and ablation associated with a local bypass
US7790803B2 (en) * 2008-06-02 2010-09-07 Uop Llc Crosslinked organic-inorganic hybrid membranes and their use in gas separation
US8317737B2 (en) 2009-02-25 2012-11-27 The Invention Science Fund I, Llc Device for actively removing a target component from blood or lymph of a vertebrate subject
US8430831B2 (en) 2009-02-25 2013-04-30 The Invention Science Fund I, Llc Device, system, and method for controllably reducing inflammatory mediators in a subject
US8758324B2 (en) 2010-03-05 2014-06-24 The Invention Science Fund I, Llc Device for actively removing a target cell from blood or lymph of a vertebrate subject
US8246565B2 (en) * 2009-02-25 2012-08-21 The Invention Science Fund I, Llc Device for passively removing a target component from blood or lymph of a vertebrate subject
DE102009034150A1 (de) * 2009-07-20 2011-01-27 Fresenius Medical Care Deutschland Gmbh Adsorbens zur Adsorption von Hepcidin
AT509192B1 (de) * 2010-06-24 2011-07-15 Zentrum Fuer Biomedizinische Technologie Der Donau Uni Krems Sorptionsmittel für endotoxine
CN102441363A (zh) * 2011-09-28 2012-05-09 南开大学 一种用于清除血液中癌细胞的吸附剂
GB201203546D0 (en) 2012-02-29 2012-04-11 Whatman Gmbh Membrane filter and a method of manufacturing the same
CN104507953B (zh) * 2012-05-31 2018-05-18 新加坡科技研究局 通过用正电性有机添加剂处理来降低蛋白质制剂中蛋白质-污染物复合物和聚集物水平的方法
JP6200949B2 (ja) * 2012-05-31 2017-09-20 エイジェンシー フォー サイエンス，テクノロジー アンド リサーチ 固相ウレイドに対する生物学的標的物の選択的結合
EP2679302A1 (de) 2012-06-28 2014-01-01 Zentrum für biomedizinische Technologie der Donau- Universität Krems Selektives Sorptionsmittel für die extrakorporale Blutreinigung
KR101427700B1 (ko) * 2012-06-29 2014-08-07 주식회사 아모그린텍 사이토카인 흡착시트, 그 제조방법 및 이를 이용한 혈액 필터
JP2014061284A (ja) * 2012-08-31 2014-04-10 Asahi Kasei Medical Co Ltd 臓器炎症抑制用基材及びデバイス
JP5592450B2 (ja) * 2012-09-18 2014-09-17 大日精化工業株式会社 自走細胞捕捉具
DE102012020615A1 (de) * 2012-10-19 2014-04-24 Hydac Filtertechnik Gmbh Verfahren zur Oberflächenbehandlung eines Filtermediums
RU2537860C2 (ru) * 2013-01-09 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук (ИМХ РАН) Фотополимеризующаяся композиция для одностадийного получения полимерного нанопористого материала с гидрофобной поверхностью пор, нанопористый полимерный материал с селективными сорбирующими свойствами, способ его получения, способ одностадийного формирования на его основе водоотделяющих фильтрующих элементов и способ очистки органических жидкостей от воды
CN103303997B (zh) * 2013-06-14 2015-04-22 湖北大学 一种磁固相萃取剂在处理染料废水中的用途
WO2014209782A1 (en) * 2013-06-24 2014-12-31 Exthera Medical Corporation Blood filtration system containing mannose coated substrate
EP3117208A4 (en) * 2014-03-13 2018-01-24 Folim G. Halaka Purification columns and methods
US11680080B2 (en) 2014-03-13 2023-06-20 Folim G. Halaka Purification columns and methods
JP6728536B2 (ja) * 2014-03-31 2020-07-22 ゾール メディカル コーポレイションＺＯＬＬ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ 蘇生後症候群を治療するための炎症性バイオマーカーの血液濾過
WO2016040850A1 (en) * 2014-09-11 2016-03-17 Oregon State University Microfluidic device for removal of constituents from blood
MY186987A (en) * 2014-09-29 2021-08-26 Asahi Kasei Medical Co Ltd Hollow-fiber membrane blood purification device
US11911551B2 (en) 2016-03-02 2024-02-27 Exthera Medical Corporation Method for treating drug intoxication
WO2017151797A1 (en) * 2016-03-02 2017-09-08 Exthera Medical Corporation Method for treating drug intoxication
WO2018034213A1 (ja) * 2016-08-18 2018-02-22 旭化成メディカル株式会社 血液処理フィルター用フィルター要素、血液処理フィルター及び白血球除去方法
WO2020009008A1 (ja) * 2018-07-02 2020-01-09 旭化成メディカル株式会社 血液処理用ビーズ
JP7312030B2 (ja) * 2018-07-02 2023-07-20 旭化成メディカル株式会社 血液処理用ビーズ
WO2020018005A1 (en) * 2018-07-17 2020-01-23 Limited Liability Company "Gero" Devices, methods, compositions and systems for the treatment of aging and age- related disorders
DE102018121552A1 (de) * 2018-09-04 2020-03-05 Karl Leibinger Medizintechnik Gmbh & Co. Kg Lasergesinterter Filter, Verfahren zum Herstellen des Filters sowie Verfahren zum Flüssigkeitstransport
JP2022534191A (ja) 2019-05-16 2022-07-28 エクスセラ メディカル コーポレイション 内皮糖衣構造を調節するための方法
CN110824157B (zh) * 2019-11-14 2023-03-31 广州科方生物技术股份有限公司 一种用于免疫层析检测试剂盒的快速分离红细胞的方法
WO2022071849A1 (en) 2020-10-01 2022-04-07 Alteco Medical Ab Matrices for selective binding of at least one component from a body fluid
RU2765188C1 (ru) * 2020-11-03 2022-01-26 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ получения селективного сорбента для твердофазной экстракции
JP2023550942A (ja) * 2020-11-30 2023-12-06 アルテコ メディカル アクティエボラーグ 体液から少なくとも１つの成分を結合及び分離するための装置
CN112755973B (zh) * 2020-12-16 2023-03-10 重庆天外天生物技术有限公司 一种应用于血液净化领域的复合型吸附材料及其制备方法

Family Cites Families (35)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3994799A (en) * 1973-04-17 1976-11-30 Yao Shang J Blood and tissue detoxification apparatus
JPS5434341U (ru) * 1977-08-10 1979-03-06
JPS5714357A (en) * 1980-06-30 1982-01-25 Asahi Chemical Ind Catching material for lymphocyte
US4433059A (en) * 1981-09-08 1984-02-21 Ortho Diagnostic Systems Inc. Double antibody conjugate
CA1221307A (en) 1982-12-02 1987-05-05 Nobutaka Tani Adsorbent and process for preparing the same
US4656254A (en) * 1985-12-02 1987-04-07 Miles Laboratories, Inc. Method of preparing alpha-1-proteinase inhibitor and antithrombin III
DE3617672C2 (de) * 1986-05-26 2000-02-17 Claus Heuck Verfahren zur Herstellung eines Reagenz, ein danach hergestelltes Reagenz sowie dessen Verwendung zur Bindung von Polymeren und Mikroorganismen aus wäßrigen Lösungen
WO1989003885A1 (en) * 1987-10-27 1989-05-05 Centocor, Inc. Method of removing endotoxin contaminants
JPH0622633B2 (ja) 1987-10-30 1994-03-30 鐘淵化学工業株式会社 吸着体およびそれを用いた除去装置
JPH0246858A (ja) * 1988-08-08 1990-02-16 Terumo Corp 体液処理装置
US5153166A (en) * 1988-08-18 1992-10-06 Trustees Of At Biochem Chromatographic stationary supports
US5476715A (en) * 1989-10-03 1995-12-19 Fresenius Ag Particulate adsorbent for the removal of biomacromolecules such as LDL and endotoxins from whole blood in extracorporeal circuits
DE3932971C2 (de) * 1989-10-03 2003-03-13 Fresenius Ag Zur Eliminierung von Biomakromolekülen, insbesondere LDL und Endotoxinen, aus Vollblut in extrakorporalem Kreislauf geeignetes Adsorbens
EP0640351A1 (en) * 1993-07-26 1995-03-01 Duphar International Research B.V Method for the separtion of bacterial lipopolysaccharides from protein-containing solutions
ATA159993A (de) * 1993-08-10 1995-09-15 Dieter Dr Falkenhagen Anordnung zur elimination von substanzen aus flüssigkeiten
CA2127605A1 (en) * 1993-12-23 1995-06-24 Peter J. Degen Affinity separation method
JP3615785B2 (ja) * 1994-04-28 2005-02-02 テルモ株式会社 Ｈｉｖ及びその関連物質除去材料
EP0747106A4 (en) * 1994-12-27 1999-07-07 Yuugengaisya Mikazuki Bunkakai POROUS CERAMIC FILTER, METHOD FOR MANUFACTURING SAID FILTER, EXTRUSION MOLDING DIE FOR MANUFACTURING SAID FILTER, AND EXTRUSION MOLDING MACHINE USING SAID FILTER
JPH1076004A (ja) * 1996-09-05 1998-03-24 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd 体液処理用吸着材及び体液処理用吸着器
US6616623B1 (en) * 1997-07-02 2003-09-09 Idializa Ltd. System for correction of a biological fluid
US6416487B1 (en) 1997-07-30 2002-07-09 Renal Tech International Llc Method of removing beta-2 microglobulin from blood
US6022477A (en) * 1997-11-14 2000-02-08 New Jersey Institute Of Technology Method and apparatus for isolation purification of biomolecules
JP3635654B2 (ja) * 1997-12-26 2005-04-06 ニプロ株式会社 血液成分採取器具
US6576478B1 (en) * 1998-07-14 2003-06-10 Zyomyx, Inc. Microdevices for high-throughput screening of biomolecules
SE9901825D0 (sv) * 1999-05-20 1999-05-20 Amersham Pharm Biotech Ab Foamed material filled with inner material
CN2385290Y (zh) * 1999-07-07 2000-06-28 海尔集团公司 板式空气换热器
US6774102B1 (en) * 1999-09-29 2004-08-10 Gambro Dialysatoren Gmbh & Co. Kg Extracorporeal endotoxin removal method
WO2001066237A1 (de) * 2000-03-07 2001-09-13 Mat Adsorption Technologies Gmbh & Co. Kg Modul mit membranelementen in cross-flow und in dead-end anordnung
JP2001276212A (ja) * 2000-03-30 2001-10-09 Terumo Corp 血液成分採取方法および血液成分採取回路
US6497675B1 (en) * 2000-04-17 2002-12-24 Renal Tech International Llc Device for extracorporeal treatment of physiological fluids of organism
JP2001321365A (ja) * 2000-05-16 2001-11-20 Fuji Photo Film Co Ltd 血漿又は血清採取具
JP2001347116A (ja) * 2000-06-09 2001-12-18 Asahi Medical Co Ltd 白血球除去フィルター装置
JP2002173433A (ja) * 2000-12-04 2002-06-21 Terumo Corp 白血球除去血液製剤の調製方法および血液セット
US6408894B1 (en) 2001-04-25 2002-06-25 Renaltech International, Llc Method of producing devices for blood purification
WO2007145579A1 (en) * 2006-06-16 2007-12-21 Biotech Igg Ab An adsorption device

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012154218A3 (en) * 2011-05-09 2013-01-03 The University Of Miami Reducing soluble urokinase receptor in the circulation
US9867923B2 (en) 2011-05-09 2018-01-16 University Of Miami Reducing soluble urokinase receptor in the circulation
WO2014059323A1 (en) * 2012-10-12 2014-04-17 Advantageous Systems Llc Immobilization of particles on a matrix

Also Published As

Publication number Publication date
JP2016120333A (ja) 2016-07-07
HK1081138A1 (en) 2006-05-12
DE60306135D1 (de) 2006-07-27
KR20040104615A (ko) 2004-12-10
EP1497025A1 (en) 2005-01-19
EP1704880B1 (en) 2009-07-22
US7601134B2 (en) 2009-10-13
RU2007110420A (ru) 2008-09-27
ES2266797T3 (es) 2007-03-01
CA2680643A1 (en) 2003-11-06
BR0309349A (pt) 2005-03-01
MXPA04010543A (es) 2005-01-25
DE60328541D1 (de) 2009-09-03
HK1111369A1 (zh) 2008-08-08
AU2003217134B2 (en) 2007-12-13
RU2004134345A (ru) 2005-05-27
CN101049522B (zh) 2016-02-03
CN1649667A (zh) 2005-08-03
EP1497025B1 (en) 2006-06-14
DE60306135T2 (de) 2007-04-19
CA2481711A1 (en) 2003-11-06
CA2481711C (en) 2011-09-20
KR100950432B1 (ko) 2010-04-02
US20070068870A1 (en) 2007-03-29
CN1308068C (zh) 2007-04-04
JP2011083632A (ja) 2011-04-28
ATE329687T1 (de) 2006-07-15
CN101049522A (zh) 2007-10-10
JP2006508703A (ja) 2006-03-16
ES2328386T3 (es) 2009-11-12
EP1704880A2 (en) 2006-09-27
KR20080044359A (ko) 2008-05-20
US20080203021A1 (en) 2008-08-28
RU2429902C2 (ru) 2011-09-27
WO2003090924A1 (en) 2003-11-06
US7910002B2 (en) 2011-03-22
US20030231981A1 (en) 2003-12-18
EP1704880A3 (en) 2006-10-04
AU2003217134A1 (en) 2003-11-10
SE0201257D0 (sv) 2002-04-25
AU2003217134C1 (en) 2008-07-03
JP2014111203A (ja) 2014-06-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2311183C2 (ru) Улучшенное разделение
KR101036995B1 (ko) 중합체 친화성 기질과 이의 제조 방법 및 용도
FR2480606A1 (ru)
JP2004516896A (ja) 細胞外体液からの特異的生体高分子物質の体外捕獲
US20200378948A1 (en) Device for the capture and removal of disease material from fluids
JPH0256104B2 (ru)
AU2008201015B2 (en) Improved separation
JPH01171638A (ja) 血清アミロイドａ蛋白用吸着体
RU2448897C1 (ru) Способ комплексной очистки физиологических жидкостей
JPS59169532A (ja) Ｃ反応性蛋白の吸着材
US6803183B2 (en) Method for removing pyrogens from plasma and blood for treatment of septic shock
JPS6253669A (ja) 免疫グロブリン物質の吸着材および吸着装置
RU2684639C1 (ru) Способ удаления эндотоксинов из биологических жидкостей с помощью ковалентно иммобилизованного лизоцима в качестве лиганда
JPH10328565A (ja) 免疫複合体の除去装置
JPS59168858A (ja) 糖含有物質の吸着浄化器
JPS63200770A (ja) 免疫グロブリン吸着剤
JPS59141524A (ja) 抗体吸着剤