RU1777951C - Способ получени сорбента дл выделени фибронектина - Google Patents

Способ получени сорбента дл выделени фибронектина

Info

Publication number
RU1777951C
RU1777951C SU904844578A SU4844578A RU1777951C RU 1777951 C RU1777951 C RU 1777951C SU 904844578 A SU904844578 A SU 904844578A SU 4844578 A SU4844578 A SU 4844578A RU 1777951 C RU1777951 C RU 1777951C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sorbent
gelatin
fibronectin
matrix
isolation
Prior art date
Application number
SU904844578A
Other languages
English (en)
Inventor
Михаил Александрович Грин
Александр Евгеньевич Иванов
Георгий Афанасьевич Афанасенко
Виталий Павлович Зубов
Валерий Васильевич Жильцов
Валентин Васильевич Гузеев
Original Assignee
Научно-производственный центр медицинской биотехнологии
Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-производственный центр медицинской биотехнологии, Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина filed Critical Научно-производственный центр медицинской биотехнологии
Priority to SU904844578A priority Critical patent/RU1777951C/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU1777951C publication Critical patent/RU1777951C/ru

Links

Landscapes

  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

Сущность изобретени : сорбент получают путем иммобилизации желатина на активированной пористой кремнеземной матрице, причем в качестве матрицы используют пористое стекло, модифицированное сшитой полиакрилатной оболочкой, содержащей активные п-нитрофенилакри- латные группы в количестве 2-90 мкмоль/г матрицы, а иммобилизацию желатина провод т путем инкубации матрицы в 1-3%- ном растворе желатина в растворе бикарбоната натри  с рН 8-9. 3 табл.

Description

Изобретение относитс  к медицинской биотехнологии, в частности к усовершенствованному способу получени  биоспецифического сорбента дл  выделени  и очистки биологически-активного белка - фибронек- тина.
Фибронектин - высокомолекул рный полифункциональный гликопротеин, который принимает участие в различных функци х клеток, включа  адгезию клеток, формирование экстрацеллюл рного мат- рикса и изменени  цитоскелета, клеточную подвижность, фагоцитоз, дифференцировку и онкологическую трансформацию.
Известен способ получени  сорбента дл  выделени  фибронектина путем иммобилизации желатина на СефарозеСЫВ, активированной бромцианом. Полученный таким способом сорбент содержит желатина 3-5. мг на 1 мл гел  и имеет емкость по фибронектину - 1 мг на 1 мл гел . Элюци  буфером, содержащим ЗМ мочевину, приводит к десорбции высокоочищенного фибронектина с 65% выходом.
Однако недостаточно высокий выход белка, низкие механические и гидродинамические характеристики сорбента не позвол ют использовать его в крупномасштабной хроматографии фибронектина.
Известен способ получени  сорбента дл  выделени  фибронектинэ, основанный на иммобилизации желатина на карбокси- метилцеллюлозе, активированной тионилх- лоридом. Элюци  белка с сорбента осуществл етс  4-4,5 М раствором мочевины при рН 7,4-7,5. Использование данного сорбента позволило повысить выход фибронектина в 1,5 раза по сравнению с желатин- Сефарозой и достигнуть 90% чистоты белка. Однако желатин-КМ целлюлоза, представ- . л юща  собой набухающий в воде пористый м гкий органический гель не может быть использована дл  препаративной наработки фибронектина.
сл С
XI xj х| О СЛ
Наиболее близким по технической сущности и достигаемым результатам к насто щему изобретению  вл етс  способ получени  сорбента дл  выделени  фибро- нектина путем иммобилизации желатина на силикагеле, активированном глутаровым диальдегидом и нитритом натри . Иммобилизацию желатина провод т одновременно с активацией силикагел  и последующей сшивкой желатина бисакриламидом. Ука- занный способ позвол ет получить сорбент с повышенной емкостью (1,3-2,2 мг фибро- нектина на 1 мл носител ). Полученный сорбент обладает высокой стабильностью и не тер ет своих свойств при 50-кратном ис- пользовании в течение 3-х мес щев работы. Основным недостатком вышеуказанного способа  вл етс  его двухстадийность и использование целого р да органических реагентов , в том числе высокотоксичного бисакриламида.
К недостаткам указанного способа также можно отнести то, что полученный согласно ему сорбент не предназначен дл  препаративного выделени  фибронектина, а служит лишь дл  аналитического определени  фибронектина в плазме крови. Использование сорбента дл  препаративной очистки фибронектина из плазмы ограничено малой производительностью сорбента при хроматографии (допустима  скорость потока плазм.ы через колонку объемом 2,5 мл составл ет 0,25-0,5 мл/мин). В св зи с этим сорбент по способу-прототипу позвол ет получить биоспецифически сорбиро- ванныйфибронектинс
производительностью 0,043-0,067 мг/мл хмин.
Целью изобретени   вл етс  упрощение способа и повышение производитель- ности Сорбента в процессе выделени  фибронектина.
Поставленна  цель достигаетс  описываемым способом получени  сорбента дл  выделени  фибронектина, заключающимс  втом, что в качестве активированной матрицы дл  св зывани  желатина используют пористое стекло, модифицированное сшитой полиакрилатной оболочкой, содержащей активные п-нитрофенилакрилатные группы в количестве 2-90 мкмодь/г матрицы . Процесс иммобилизации провод т путем инкубации матрицы с 1-3% раствором желатина в растворе бикарбоната натри  при рН 8-9.
Способ осуществл ют следующим образом .
П р и м е р 1. Получение сорбента дл  выделени  фибронектина (желатин-МПС- ПА).
В колбу, содержащую 250 мл 2% раствора желатина в 0,3 М растворе бикарбоната натри  с рН 8,5, внос т 50 г биосорбента МПС-ПА, перемешивают и инкубируют в течение суток при умеренном встр хивании, после чего в реакционную смесь добавл ют 5 мл этаноламина, перемешивают и выдер: живают еще сутки. Полученный сорбент промывают физиологическим раствором, 0,05 М трис-HCI буфером рНГ7,5, содержащим 1 М NaCI и 4 М мочевину дл  удалени  несв завшегос  желатина и уравновешивают в 0,02 М цитратном буфере рН 7,5, содержащем 0,01 М эпсилон-аминокапроновую кислоту и 1 М NaCI и используют дл  выделени  фибронектина из бычьей плазмы. Емкость полученного сорбента составила 2,2 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 2. Синтез сорбента провод т аналогично примеру 1, с тем отличием, что используют 1 % раствор желатина. Получают сорбент, имеющий емкость 2,0 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 3. Синтез сорбента провод т аналогично примеру 1, с тем отличием, что используют 3% раствор желатина. Получают сорбент, имеющий емкость 2,5 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
Используемый диапазон концентраций желатина  вл етс  оптимальным по параметру числа активированных групп, наход щихс  на сорбенте.
П р и м е р 4. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 8,0. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 2,0 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 5. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 9,0. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 2,4 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 6. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 7,5. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 0,8 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
Пример. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 9,5. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 1,0 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
Примере. Хроматографическое выделение фибронектина из бычьей плазмы на желатин-МПС-ПА.
На колонку размером 1x3,2 см (объем 2,5 мл), заполненную сорбентом по примеру 1, нанос т со скоростью 5 мл/мин 25 мл бычьей плазмы. Колонку промывают 0,02 М цитратным буфером рН 7,5, содержащим 1
M NaCI и 0,01 М эпсилон-аминокапроновую кислоту до нулевого значени  поглощени  при 280 нм, и далее злюируют специфически сорбированный фибронектин 0,05 М трис-HCI буфером рН 7,5, содержащим 1 М NaCI и 4 М мочевину. Собирают фракции объемом 3 мл и измер ют их оптическую плотность при 280 нм. Элюат обессоливают на Сефадексе G-25, использу  0.02 М цит- ратный буфер рН 7,0, содержащий 0,05 М NaCI и 0,05 М трилона Б. Производительность сорбента в процессе выделени  фиб- ронектина составила 0,44 мг/мл.мин.
Сравнительные характеристики сорбента , полученного за вленным способом и известным, представлены в табл.1.
Емкость и производительность сорбентов , полученных по примерам 1-8, при пропускании 25 мл бычьей плазмы со скоростью 5 мл/мин через колонку с 2,5 мл сорбента, а также выход фибронектина в данных примерах представлены в табл.2.
Из данных табл.1 и 2 следует, что при сохранении емкости и увеличении производительности сорбента, полученного по описываемому способу, по сравнению с сорбентом, полученным по способу-прототипу в 10-11 раз. выход фибронектина не уменьшаетс  (0,22 мг/мл по описываемому способу против 0,215мг/млпо способу-прототипу ).
П р и м е р 9, Препаративное выделение фибронектина из бычьей плазмы в режиме in batch.
В 1400 мл бычьей плазмы внос т 400 мл биосорбента желатин-МПС-ПА, полученного по примеру 1. Провод т сорбцию в объеме при перемешивании в течение 1 ч. Супернатант удал ют, сорбент промывают 0,02 М цитратным буфером рН 7,5, содержащим 1 М NaCI и 0,01 М зпсилон-аминокап- роновой кислоты дл  удалени  неспецифически сорбированных белков до нулевого поглощени  при 280 нм. Отмытый сорбент внос т в 400 мл 0,1 М трис-HCI буфера рН 7,5, содержащего 8 М мочевины и 2 М NaCI. Элюцию провод т в объеме в течение 15 мин. После удалени  элюата вторично провод т элюцию и так до полной десорбции фибронектина с сорбента. Затем элюат обессоливают на Сефадексе G-25, использу  0,02 М цитратный буфер рН 7,0, содержащий 0,05 М NaCI и 0,05 М трилон Б.
Таким образом, полученный описьпае- мым способом сорбент может быть использован в крупномасштабном производстве фибронектинэ.
5Проведен сравнительный эксперимент
по излучению кинетики сорбции фибронектина на известном (Желатин-Силикагель) и полученном (Желатин-МПС-ПА) сорбентах. Сравнение проводила с использованием
0 100 мл бычьей плазмы и 30 мл указанных сорбентов. Результаты представлены в табл.3.
Как видно из данных табл.3, максимальна  емкость известного сорбента достигает5 с  за 1 ч, тогда как описываемого сорбента - за 10 мин. Таким образом, и в batch - варианте сорбции сорбент Желатин- МПС-ПА оказываетс  в 10 раз производительнее , чем Желатин-Силикагель (дл 
0 Желатин-МПС-ПА производительность равна 2,2/10 0,22 мг/мл-мин, тогда как дл  Желатин-Силикагел  - 1,5/60 0,025 мг/млх Хмин).
Препарат фибронектина, полученный с
5 использованием сорбента по описываемому спосабу, характеризуетс  высокой гомогенностью по данным электрофореза в ПААГ. Сорбент выдерживает непрерывную эксплуатацию в течение 4 мес цев без за0 метных изменений емкости и производительности .
Таким образом, описываемый способ позвол ет упростить процесс получени  сорбента дл  выделени  фибронектина за

Claims (1)

  1. 5 счет одностадийности и исключени  использовани  токсичных соединений и повысить производительность сорбента при сохранении его специфической емкости. Формула изобретени 
    0Способ получени  сорбента дл  выделени  фибронектина путем иммобилизации желатина на активированной пористой кремнеземной матрице, отличающийс  тем, что, с целью упрощени 
    5 способа и повышени  производительности сорбента в процессе выделени  фибронектина , в качестве матрицы используют пористое стекло, модифицированное сшитой полиакрилатной оболочкой, содержащей
    0 активные n-нитрофенилакрилатные группы, в количестве 2-90 мкмоль/г матрицы, а иммобилизацию желатина провод т путем инкубации матрицы, в 1-3%-ном растворе желатина в растворе бикарбоната натри  с
    5 рН 8-9.
    Таблица 1
    Параметры хроматографической очистки фибронектина на сорбенте по предлагаемому
    способу и по способу-прототипу
    Таблица 2
    Таблица 3
SU904844578A 1990-06-29 1990-06-29 Способ получени сорбента дл выделени фибронектина RU1777951C (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904844578A RU1777951C (ru) 1990-06-29 1990-06-29 Способ получени сорбента дл выделени фибронектина

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904844578A RU1777951C (ru) 1990-06-29 1990-06-29 Способ получени сорбента дл выделени фибронектина

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1777951C true RU1777951C (ru) 1992-11-30

Family

ID=21523890

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU904844578A RU1777951C (ru) 1990-06-29 1990-06-29 Способ получени сорбента дл выделени фибронектина

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1777951C (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Regnault V., Rlvat С., Sfoltz J. Affinity purification of human plasma flbronecfln on immobilized gelatin - J.Chrom. 1988, v.432, p.93-102. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4138287A (en) Purifying and isolating method for hepatitis virus to use in preparing vaccine
Labrou et al. Biomimetic‐dye affinity adsorbents for enzyme purification: Application to the one‐step purification of Candida boidinii formate dehydrogenase
JPH10500615A (ja) メルカプト複素環式リガンドを用いるクロマトグラフィ吸着剤
US5085779A (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
US4119774A (en) Heparin purification method
JPS5821691A (ja) α−及びβ−インタ−フェロンの精製方法
JPH0427504B2 (ru)
JPS5832591B2 (ja) ウロキナ−ゼの精製法
Sasaki et al. Improved method for the immobilization of heparin
RU1777951C (ru) Способ получени сорбента дл выделени фибронектина
JPH0489500A (ja) アフィニティクロマトグラフィーによる物質の精製法および精製装置
AU610734B2 (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
SU1419717A1 (ru) Способ получени биоспецифических адсорбентов дл выделени фибронектина и коллагеназ
SU1286268A1 (ru) Способ получени сорбента дл очистки ферментов и белков
JP2739232B2 (ja) 生物学的親和性を有するセルロースゲルの使用方法
CN111957073B (zh) 一种纯化尿激酶的亲和层析填料及制备方法和应用
SU1479511A1 (ru) Способ получени афинного сорбента
JPH01250331A (ja) グリセリンの精製法
DK171394B1 (da) Understøtning eller bærer i fast fase, immobiliseret enzym i fast fase på en sådan understøtning, ligandbundet chromatografiaffinitetsmatrix samt fremgangsmåde til adskillelse eller rensning af et stof fra opløsning under anvendelse af understøtningen
JPS62227446A (ja) アフイニテイ・クロマトグラフイ−用吸着体
SU943278A1 (ru) Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии
SU671385A1 (ru) Способ приготовлени сорбента"
SU1454846A1 (ru) Способ получени L-лизин- @ -оксидазы
CN116535457A (zh) 一种蛋白分子的分离方法
SU1054353A1 (ru) Способ получени адсорбентов,содержащих аминогруппы