RU1777951C - Способ получени сорбента дл выделени фибронектина - Google Patents
Способ получени сорбента дл выделени фибронектинаInfo
- Publication number
- RU1777951C RU1777951C SU904844578A SU4844578A RU1777951C RU 1777951 C RU1777951 C RU 1777951C SU 904844578 A SU904844578 A SU 904844578A SU 4844578 A SU4844578 A SU 4844578A RU 1777951 C RU1777951 C RU 1777951C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sorbent
- gelatin
- fibronectin
- matrix
- isolation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
Сущность изобретени : сорбент получают путем иммобилизации желатина на активированной пористой кремнеземной матрице, причем в качестве матрицы используют пористое стекло, модифицированное сшитой полиакрилатной оболочкой, содержащей активные п-нитрофенилакри- латные группы в количестве 2-90 мкмоль/г матрицы, а иммобилизацию желатина провод т путем инкубации матрицы в 1-3%- ном растворе желатина в растворе бикарбоната натри с рН 8-9. 3 табл.
Description
Изобретение относитс к медицинской биотехнологии, в частности к усовершенствованному способу получени биоспецифического сорбента дл выделени и очистки биологически-активного белка - фибронек- тина.
Фибронектин - высокомолекул рный полифункциональный гликопротеин, который принимает участие в различных функци х клеток, включа адгезию клеток, формирование экстрацеллюл рного мат- рикса и изменени цитоскелета, клеточную подвижность, фагоцитоз, дифференцировку и онкологическую трансформацию.
Известен способ получени сорбента дл выделени фибронектина путем иммобилизации желатина на СефарозеСЫВ, активированной бромцианом. Полученный таким способом сорбент содержит желатина 3-5. мг на 1 мл гел и имеет емкость по фибронектину - 1 мг на 1 мл гел . Элюци буфером, содержащим ЗМ мочевину, приводит к десорбции высокоочищенного фибронектина с 65% выходом.
Однако недостаточно высокий выход белка, низкие механические и гидродинамические характеристики сорбента не позвол ют использовать его в крупномасштабной хроматографии фибронектина.
Известен способ получени сорбента дл выделени фибронектинэ, основанный на иммобилизации желатина на карбокси- метилцеллюлозе, активированной тионилх- лоридом. Элюци белка с сорбента осуществл етс 4-4,5 М раствором мочевины при рН 7,4-7,5. Использование данного сорбента позволило повысить выход фибронектина в 1,5 раза по сравнению с желатин- Сефарозой и достигнуть 90% чистоты белка. Однако желатин-КМ целлюлоза, представ- . л юща собой набухающий в воде пористый м гкий органический гель не может быть использована дл препаративной наработки фибронектина.
сл С
XI xj х| О СЛ
Наиболее близким по технической сущности и достигаемым результатам к насто щему изобретению вл етс способ получени сорбента дл выделени фибро- нектина путем иммобилизации желатина на силикагеле, активированном глутаровым диальдегидом и нитритом натри . Иммобилизацию желатина провод т одновременно с активацией силикагел и последующей сшивкой желатина бисакриламидом. Ука- занный способ позвол ет получить сорбент с повышенной емкостью (1,3-2,2 мг фибро- нектина на 1 мл носител ). Полученный сорбент обладает высокой стабильностью и не тер ет своих свойств при 50-кратном ис- пользовании в течение 3-х мес щев работы. Основным недостатком вышеуказанного способа вл етс его двухстадийность и использование целого р да органических реагентов , в том числе высокотоксичного бисакриламида.
К недостаткам указанного способа также можно отнести то, что полученный согласно ему сорбент не предназначен дл препаративного выделени фибронектина, а служит лишь дл аналитического определени фибронектина в плазме крови. Использование сорбента дл препаративной очистки фибронектина из плазмы ограничено малой производительностью сорбента при хроматографии (допустима скорость потока плазм.ы через колонку объемом 2,5 мл составл ет 0,25-0,5 мл/мин). В св зи с этим сорбент по способу-прототипу позвол ет получить биоспецифически сорбиро- ванныйфибронектинс
производительностью 0,043-0,067 мг/мл хмин.
Целью изобретени вл етс упрощение способа и повышение производитель- ности Сорбента в процессе выделени фибронектина.
Поставленна цель достигаетс описываемым способом получени сорбента дл выделени фибронектина, заключающимс втом, что в качестве активированной матрицы дл св зывани желатина используют пористое стекло, модифицированное сшитой полиакрилатной оболочкой, содержащей активные п-нитрофенилакрилатные группы в количестве 2-90 мкмодь/г матрицы . Процесс иммобилизации провод т путем инкубации матрицы с 1-3% раствором желатина в растворе бикарбоната натри при рН 8-9.
Способ осуществл ют следующим образом .
П р и м е р 1. Получение сорбента дл выделени фибронектина (желатин-МПС- ПА).
В колбу, содержащую 250 мл 2% раствора желатина в 0,3 М растворе бикарбоната натри с рН 8,5, внос т 50 г биосорбента МПС-ПА, перемешивают и инкубируют в течение суток при умеренном встр хивании, после чего в реакционную смесь добавл ют 5 мл этаноламина, перемешивают и выдер: живают еще сутки. Полученный сорбент промывают физиологическим раствором, 0,05 М трис-HCI буфером рНГ7,5, содержащим 1 М NaCI и 4 М мочевину дл удалени несв завшегос желатина и уравновешивают в 0,02 М цитратном буфере рН 7,5, содержащем 0,01 М эпсилон-аминокапроновую кислоту и 1 М NaCI и используют дл выделени фибронектина из бычьей плазмы. Емкость полученного сорбента составила 2,2 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 2. Синтез сорбента провод т аналогично примеру 1, с тем отличием, что используют 1 % раствор желатина. Получают сорбент, имеющий емкость 2,0 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 3. Синтез сорбента провод т аналогично примеру 1, с тем отличием, что используют 3% раствор желатина. Получают сорбент, имеющий емкость 2,5 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
Используемый диапазон концентраций желатина вл етс оптимальным по параметру числа активированных групп, наход щихс на сорбенте.
П р и м е р 4. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 8,0. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 2,0 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 5. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 9,0. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 2,4 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
П р и м е р 6. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 7,5. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 0,8 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
Пример. Инкубацию раствора желатина с биосорбентом МПС-ПА провод т при рН 9,5. Полученный сорбент обрабатывают по примеру 1. Он имеет емкость 1,0 мг фибронектина на 1 мл сорбента.
Примере. Хроматографическое выделение фибронектина из бычьей плазмы на желатин-МПС-ПА.
На колонку размером 1x3,2 см (объем 2,5 мл), заполненную сорбентом по примеру 1, нанос т со скоростью 5 мл/мин 25 мл бычьей плазмы. Колонку промывают 0,02 М цитратным буфером рН 7,5, содержащим 1
M NaCI и 0,01 М эпсилон-аминокапроновую кислоту до нулевого значени поглощени при 280 нм, и далее злюируют специфически сорбированный фибронектин 0,05 М трис-HCI буфером рН 7,5, содержащим 1 М NaCI и 4 М мочевину. Собирают фракции объемом 3 мл и измер ют их оптическую плотность при 280 нм. Элюат обессоливают на Сефадексе G-25, использу 0.02 М цит- ратный буфер рН 7,0, содержащий 0,05 М NaCI и 0,05 М трилона Б. Производительность сорбента в процессе выделени фиб- ронектина составила 0,44 мг/мл.мин.
Сравнительные характеристики сорбента , полученного за вленным способом и известным, представлены в табл.1.
Емкость и производительность сорбентов , полученных по примерам 1-8, при пропускании 25 мл бычьей плазмы со скоростью 5 мл/мин через колонку с 2,5 мл сорбента, а также выход фибронектина в данных примерах представлены в табл.2.
Из данных табл.1 и 2 следует, что при сохранении емкости и увеличении производительности сорбента, полученного по описываемому способу, по сравнению с сорбентом, полученным по способу-прототипу в 10-11 раз. выход фибронектина не уменьшаетс (0,22 мг/мл по описываемому способу против 0,215мг/млпо способу-прототипу ).
П р и м е р 9, Препаративное выделение фибронектина из бычьей плазмы в режиме in batch.
В 1400 мл бычьей плазмы внос т 400 мл биосорбента желатин-МПС-ПА, полученного по примеру 1. Провод т сорбцию в объеме при перемешивании в течение 1 ч. Супернатант удал ют, сорбент промывают 0,02 М цитратным буфером рН 7,5, содержащим 1 М NaCI и 0,01 М зпсилон-аминокап- роновой кислоты дл удалени неспецифически сорбированных белков до нулевого поглощени при 280 нм. Отмытый сорбент внос т в 400 мл 0,1 М трис-HCI буфера рН 7,5, содержащего 8 М мочевины и 2 М NaCI. Элюцию провод т в объеме в течение 15 мин. После удалени элюата вторично провод т элюцию и так до полной десорбции фибронектина с сорбента. Затем элюат обессоливают на Сефадексе G-25, использу 0,02 М цитратный буфер рН 7,0, содержащий 0,05 М NaCI и 0,05 М трилон Б.
Таким образом, полученный описьпае- мым способом сорбент может быть использован в крупномасштабном производстве фибронектинэ.
5Проведен сравнительный эксперимент
по излучению кинетики сорбции фибронектина на известном (Желатин-Силикагель) и полученном (Желатин-МПС-ПА) сорбентах. Сравнение проводила с использованием
0 100 мл бычьей плазмы и 30 мл указанных сорбентов. Результаты представлены в табл.3.
Как видно из данных табл.3, максимальна емкость известного сорбента достигает5 с за 1 ч, тогда как описываемого сорбента - за 10 мин. Таким образом, и в batch - варианте сорбции сорбент Желатин- МПС-ПА оказываетс в 10 раз производительнее , чем Желатин-Силикагель (дл
0 Желатин-МПС-ПА производительность равна 2,2/10 0,22 мг/мл-мин, тогда как дл Желатин-Силикагел - 1,5/60 0,025 мг/млх Хмин).
Препарат фибронектина, полученный с
5 использованием сорбента по описываемому спосабу, характеризуетс высокой гомогенностью по данным электрофореза в ПААГ. Сорбент выдерживает непрерывную эксплуатацию в течение 4 мес цев без за0 метных изменений емкости и производительности .
Таким образом, описываемый способ позвол ет упростить процесс получени сорбента дл выделени фибронектина за
Claims (1)
- 5 счет одностадийности и исключени использовани токсичных соединений и повысить производительность сорбента при сохранении его специфической емкости. Формула изобретени0Способ получени сорбента дл выделени фибронектина путем иммобилизации желатина на активированной пористой кремнеземной матрице, отличающийс тем, что, с целью упрощени5 способа и повышени производительности сорбента в процессе выделени фибронектина , в качестве матрицы используют пористое стекло, модифицированное сшитой полиакрилатной оболочкой, содержащей0 активные n-нитрофенилакрилатные группы, в количестве 2-90 мкмоль/г матрицы, а иммобилизацию желатина провод т путем инкубации матрицы, в 1-3%-ном растворе желатина в растворе бикарбоната натри с5 рН 8-9.Таблица 1Параметры хроматографической очистки фибронектина на сорбенте по предлагаемомуспособу и по способу-прототипуТаблица 2Таблица 3
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904844578A RU1777951C (ru) | 1990-06-29 | 1990-06-29 | Способ получени сорбента дл выделени фибронектина |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904844578A RU1777951C (ru) | 1990-06-29 | 1990-06-29 | Способ получени сорбента дл выделени фибронектина |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1777951C true RU1777951C (ru) | 1992-11-30 |
Family
ID=21523890
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904844578A RU1777951C (ru) | 1990-06-29 | 1990-06-29 | Способ получени сорбента дл выделени фибронектина |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1777951C (ru) |
-
1990
- 1990-06-29 RU SU904844578A patent/RU1777951C/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Regnault V., Rlvat С., Sfoltz J. Affinity purification of human plasma flbronecfln on immobilized gelatin - J.Chrom. 1988, v.432, p.93-102. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4138287A (en) | Purifying and isolating method for hepatitis virus to use in preparing vaccine | |
Labrou et al. | Biomimetic‐dye affinity adsorbents for enzyme purification: Application to the one‐step purification of Candida boidinii formate dehydrogenase | |
JPH10500615A (ja) | メルカプト複素環式リガンドを用いるクロマトグラフィ吸着剤 | |
US5085779A (en) | Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography | |
US4119774A (en) | Heparin purification method | |
JPS5821691A (ja) | α−及びβ−インタ−フェロンの精製方法 | |
JPH0427504B2 (ru) | ||
JPS5832591B2 (ja) | ウロキナ−ゼの精製法 | |
Sasaki et al. | Improved method for the immobilization of heparin | |
RU1777951C (ru) | Способ получени сорбента дл выделени фибронектина | |
JPH0489500A (ja) | アフィニティクロマトグラフィーによる物質の精製法および精製装置 | |
AU610734B2 (en) | Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography | |
SU1419717A1 (ru) | Способ получени биоспецифических адсорбентов дл выделени фибронектина и коллагеназ | |
SU1286268A1 (ru) | Способ получени сорбента дл очистки ферментов и белков | |
JP2739232B2 (ja) | 生物学的親和性を有するセルロースゲルの使用方法 | |
CN111957073B (zh) | 一种纯化尿激酶的亲和层析填料及制备方法和应用 | |
SU1479511A1 (ru) | Способ получени афинного сорбента | |
JPH01250331A (ja) | グリセリンの精製法 | |
DK171394B1 (da) | Understøtning eller bærer i fast fase, immobiliseret enzym i fast fase på en sådan understøtning, ligandbundet chromatografiaffinitetsmatrix samt fremgangsmåde til adskillelse eller rensning af et stof fra opløsning under anvendelse af understøtningen | |
JPS62227446A (ja) | アフイニテイ・クロマトグラフイ−用吸着体 | |
SU943278A1 (ru) | Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии | |
SU671385A1 (ru) | Способ приготовлени сорбента" | |
SU1454846A1 (ru) | Способ получени L-лизин- @ -оксидазы | |
CN116535457A (zh) | 一种蛋白分子的分离方法 | |
SU1054353A1 (ru) | Способ получени адсорбентов,содержащих аминогруппы |