SU943278A1 - Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии - Google Patents

Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии Download PDF

Info

Publication number
SU943278A1
SU943278A1 SU792818836A SU2818836A SU943278A1 SU 943278 A1 SU943278 A1 SU 943278A1 SU 792818836 A SU792818836 A SU 792818836A SU 2818836 A SU2818836 A SU 2818836A SU 943278 A1 SU943278 A1 SU 943278A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
solution
sorbent
enzyme
purification
desorption
Prior art date
Application number
SU792818836A
Other languages
English (en)
Inventor
Нина Николаевна Лестровая
Жанна Даниловна Лебедева
Ирина Михайловна Волкова
Август Карлович Арен
Валда Улдовна Букбарде
Индулис Викторович Грузинь
Евгения Леонгардтовна Рубан
Original Assignee
Научно-производственное объединение "Биохимреактив"
Институт микробиологии АН СССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-производственное объединение "Биохимреактив", Институт микробиологии АН СССР filed Critical Научно-производственное объединение "Биохимреактив"
Priority to SU792818836A priority Critical patent/SU943278A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU943278A1 publication Critical patent/SU943278A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

мента в 2-5 раз, удельна  активность
возрастает до 160 ед. Выход 50-78%
от активности исходного- материала fl
однако способ характеризуетс  невысокой степенью очистки и недоста .точной устойчивостью органической матрищл сорбента к вли нию среды и действию микроорганизмов, что приводит к загр знению выдел емого фермента продуктами разрушени  матричного материала.
Цель изобретени  - повышение степени очистки ферментов.
Поставленна  цель достигаетс  тем что согласно способу очистки микробных липаз путем аффинной хроматографии , включающим сорбцию фермента из раствора на аффинном сорбенте при рН 7-8 и десорбцию фермента органическим растворителем и детергентами, используют сорбент, представл ющий собой- силохром с нанесеннЕдм полимерным покрытием из сополимера 2,2-ди- (4-эпоксипропилоксифенил)-пропана и поливинилового спирта и присоединенных с помощью гексаметилендиизоцианата C5-Cio-алкильных групп.
Используют 0,05-0,2 мг.экв/г сорбента с содержанием С -С д-алкильных групп.
Десорбцию фермента обычно провод т 50%-ным раствором этиленгликол , 0,5%-ным раствором дезоксихолата натри , 0,1-0,6%-ным раствором тритона х-100.
Предлагаемый способ обеспечивает повышение степени очистки ферментов до 13-23 раз.
Повышение степени очистки обусловлено высокой избирательностью адсорбции ферментов на сорбенте, который содержит лиганды - гидрофобные алкильньае группы, а также гидрофобные группировки молекул эпоксидной смолы , поливинилового спирта и гексаметилендиизоцианата , по отношению . к которым липаза про вл ет свою аффинность . Высока  степень гидрофобности сорбента, усиливающа  гидрофобное взаимодействие фермента с сорбентом , увеличивает адсорбцию липазы.
Кроме того, сорбент на основе неорганической Матрицы обладает структурной стабильностью (такие носители мало чувствительны к изменени м рН и других условий среды и не измен ют своих .размеров и конфигураций , т.е.  вл ютс  механически прочными), устойчивостью к действию микроорганизмов, легкостью модификаций, доступностью и сравнительно-низкой себестоимостью.
-Используемый в предлагаемом способе аффинный сорбент представл ет ,собой фактически модифицированный силохром, который получают пропиткой силохрома 1-30%-ной эпоксидной
смолой в растворе ацетона и последующим выпариванием растворител , отверждением смолы 3-5%-ным водным раствором поливинилового спирта в присутствии 1-2% триэтиламина при весовом соотношении силохрома и раствора 1:5-10 и 90-95 0 и последующей активацией .материала 5-20%ным раствором гексаметилендиизоцианата в сухом толуоле при весовом соотношении твердой фазы 1:4-6 и 105-110 с в течение 1 ч и присоединением лиганда обработкой полученного материала алифатическим спиртом с числом углеродных атомов при весовом соотношении матрцы и спирта 1:3-6 и 100-105°С.
Пример. Получение сорбент
В коЛбу загружают 20 г силохрсма и раствор 1 г зпоксидной смолы в 70 мл ацетона. Систему подключают к вакууму на 1-2. мин дл  удалени  воздуха из пор носител . После выпаривани  растворител  добавл ют 200 мг 5%-ного водного раствора поливинилового спирта, 2 мл триэтил амина и нагревают на вод ной бане при 90-95 с в течение 1 ч. Фильтруют , проишвают гор чей водой, ацетоном и сушат.
К полученному продукту добавл ют 80 мл 10%-ного раствора гексаметиледиизоцианата в сухом толуоле и перемешивают при 100-110 С в течение 1 ч. Фильтруют, промывают на фильтре толуолом и сушат в вакуум-сушильном шкафу. Содержание изоцианатных
групп 0,06 МГ-ЭК8/Г.
Активированньй силохром загружают в колбу с 80 мл амилового спирта и перемешивают при 100-1Об С в течение 1 ч. Фильтруют, промывают этано .лом и сушат. Содержание амиловых групп приблизительно 0,05 мг-экв/г.
Так как алкильные группы не поддаютс  пр мому определению, то их содержание определ етс  из расчета, что степень превращени  изоцианатных в алкильные около 80%.
П .р и м е р 2. Очистка липазы на сорбенте с октиловой группой с примнением при десорбции ступенчатого градиента концентрации тритона х-10
Приготовление ис.ходного ферментного препарата.
Исходным материалом дл  очистки служит ферментный препарат, полученный осаждением сульфатом аммони  белков из культуральной жидкости микроскопического гриба Jeotrichum asteroides, выращенного.на питательной среде в течение 48 ч при аэрации и 28°с. Препарат имеет активность 14-21 ед/мг белка. За единицу липолитической активности принимают количество фермента, освобождающее 1 мкмоль олеиновой кислоты за 1 мин при 37°С.
К 400 мг сорбента (октилсилохрома добавл ют 4 мл ферментного раствора 365 ед,) в 0,01 М фосфатном буфере (рН7,2). Смесь оставл ют при на 2 ч, периодически встр хива , после чего частицы сорбента с гщсорбированной липазой помещают на колонку (10 мм в диаметре) и сорбируют фильтру, Сорбент с адсорбированным ферментом промывают фосфатным буфером до изчезновёни  белка в промы--. вных водах. В фильтрате определ ют липолитическую активность по методу Ота и Ямада, а также белок по методу Лбури в модификации Хартри. Количество адсорбированного белка и активности определ ют по разности со держани  белка и активности в исходном материале и в фильтрате, полученном после отделени  частиц но сйтел  с адсорбированным ферментом. Адсорбированный фермент элюируют (фракции по 3 мл) по следующей схеме: 50%-ный раствор этилеигликол  15 мл; 0,5%-ный раствор дезоксихолата натри  15 мл; тритон х-100 :0,1%-ный раствор 9 мл; 0,2%-ный 12 мл; 0,4%-ный 12 мл; 0,6%-ный 12 мл; 0,8%-ньА 12 мл.
Результаты элюировани  представлены в таблице.
Исходный ферментный р-р
Адсорбировано на
носителе
Десорбци f%
Этиленгликоль Дезоксихолат
Белок и активность при десорбции выргикены в процентах от белка и активности исходного материала. Удельна  активность представлена по нгшболее активным фракци м.
Величины активности даны с учетом вли ни  разных концентраций тритона х-100 на активность липазы.
Тритон х-100 в концентрации 0,10 ,2% десорбирует 84% липазы с очисткой в 11 раз, в наиболее активных фракци х в 13 раз.
Тритон х-100, оказывающий на липа ,зу ингибирук цее действие в концентрации 0,013% и выше, удал ют ультра100 ,0
356
21,0 76,4
272
7,5
2,5
фильтргщией через мембрану РИПОР-4 60 (Олайне) при добавлении к фермент . ному раствору глицерина.
Пример 3. Очистка липазы на сорбенте с октиловой группой с применением при десорбции непре{швного 5 градиента концентрации тритона х-100

Claims (3)

  1. Формула изобретения
    1. Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии, включающий сорбцию фермента из раствора на аффинном сорбенте при pH 7-8 и десорбцию фермента органическим растворителем и детергентами, отличающий с я тем, что, с целью повышения степени . очистки липаз, используют сорбент, представляющий собой силохром с нанесенным полимерным покрытием из сополимера 2,2-ди-(4-эпоксипропилоксифенил)-пропана и поливинилового спирта и присоединенных с помощью гексаметилендииэоцианата С5~С -алкильных групп.
  2. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют 0,050,2 мг-экв/г сорбента с содержанием с5 10 -алкильных групп *
  3. 3. Способ поп.1, отличающийся тем, что десорбцию фермента проводят 50%-ным раствором этиленгликоля, 0,5%-ным раствором дезоксихолата натрия, 0,1-0,6%-ным: раствором тритона х-100.
SU792818836A 1979-08-16 1979-08-16 Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии SU943278A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792818836A SU943278A1 (ru) 1979-08-16 1979-08-16 Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792818836A SU943278A1 (ru) 1979-08-16 1979-08-16 Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU943278A1 true SU943278A1 (ru) 1982-07-15

Family

ID=20850283

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU792818836A SU943278A1 (ru) 1979-08-16 1979-08-16 Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU943278A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4923810A (en) * 1988-08-24 1990-05-08 Genzyme Corporation Resolution of glycidyl esters to high enantiomeric excess

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4923810A (en) * 1988-08-24 1990-05-08 Genzyme Corporation Resolution of glycidyl esters to high enantiomeric excess

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4245005A (en) Pellicular coated support and method
Kaçar et al. Biosorption of Hg (II) and Cd (II) from aqueous solutions: comparison of biosorptive capacity of alginate and immobilized live and heat inactivated Phanerochaete chrysosporium
US4264738A (en) Process for purification of proteolytic enzymes
US4138287A (en) Purifying and isolating method for hepatitis virus to use in preparing vaccine
Boeden et al. Bead cellulose derivatives as supports for immobilization and chromatographic purification of proteins
US6074555A (en) Modified chromatographic support materials
GB1589620A (en) Carrier material for enzymes consisting of an inorganic porous material and a polymer and a method for its preparation
US5085779A (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
CA1082625A (en) Pressure-driven affinity sorption membranes
JPH0290943A (ja) 生物物質を固定することのできる材料と、そのアフィニティークロマトグラフィーの担体としての応用
CN103055832A (zh) 一种用于分离水溶性聚合物和蛋白用色谱填料及其制备方法
JP2678341B2 (ja) 固定化リパーゼ
CN104277111B (zh) 用于制备固定化蛋白质、多肽或寡肽的复合载体、制法及用途
JPH0427504B2 (ru)
SU943278A1 (ru) Способ очистки микробных липаз методом аффинной хроматографии
Gao et al. Immobilized lipase on porous ceramic monoliths for the production of sugar-derived oil gelling agent
US9505850B2 (en) Endotoxin adsorbent
Şenel et al. Comparison of adsorption performances of metal–chelated polyamide hollow fibre membranes in lysozyme separation
US5736259A (en) Packing material for high-performance liquid chromatography and process for producing the same
US4013512A (en) Method for adsorption and elution of lipid hydrolyzing enzymes
EP0186347B1 (en) Method for producing high-active biologically efficient compounds immobilized on a carrier
SU935121A1 (ru) Способ получени сорбента дл аффинной хроматографии микробных липаз
CH626402A5 (en) Process for immobilising proteins on a solid support
JP3018277B2 (ja) エステルの転移反応方法
KR20150028245A (ko) 고리형 매크로라이드계 화합물의 분리 방법