PL202471B1 - Mieszaniny siarczanowanych polisacharydów, sposób ich wytwarzania oraz kompozycja farmaceutyczna - Google Patents

Mieszaniny siarczanowanych polisacharydów, sposób ich wytwarzania oraz kompozycja farmaceutyczna

Info

Publication number
PL202471B1
PL202471B1 PL365561A PL36556101A PL202471B1 PL 202471 B1 PL202471 B1 PL 202471B1 PL 365561 A PL365561 A PL 365561A PL 36556101 A PL36556101 A PL 36556101A PL 202471 B1 PL202471 B1 PL 202471B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
heparin
activity
benzyl ester
mixtures
salt
Prior art date
Application number
PL365561A
Other languages
English (en)
Other versions
PL365561A1 (pl
Inventor
Jacques Diaz
Christelle Pecquet
Elisabeth Perrin
Christian Viskov
Original Assignee
Aventis Pharma Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8852768&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL202471(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Aventis Pharma Sa filed Critical Aventis Pharma Sa
Publication of PL365561A1 publication Critical patent/PL365561A1/pl
Publication of PL202471B1 publication Critical patent/PL202471B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • C08B37/006Heteroglycans, i.e. polysaccharides having more than one sugar residue in the main chain in either alternating or less regular sequence; Gellans; Succinoglycans; Arabinogalactans; Tragacanth or gum tragacanth or traganth from Astragalus; Gum Karaya from Sterculia urens; Gum Ghatti from Anogeissus latifolia; Derivatives thereof
    • C08B37/0063Glycosaminoglycans or mucopolysaccharides, e.g. keratan sulfate; Derivatives thereof, e.g. fucoidan
    • C08B37/0075Heparin; Heparan sulfate; Derivatives thereof, e.g. heparosan; Purification or extraction methods thereof
    • C08B37/0078Degradation products
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • A61K31/726Glycosaminoglycans, i.e. mucopolysaccharides
    • A61K31/727Heparin; Heparan
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/02Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/14Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • C08B37/006Heteroglycans, i.e. polysaccharides having more than one sugar residue in the main chain in either alternating or less regular sequence; Gellans; Succinoglycans; Arabinogalactans; Tragacanth or gum tragacanth or traganth from Astragalus; Gum Karaya from Sterculia urens; Gum Ghatti from Anogeissus latifolia; Derivatives thereof
    • C08B37/0063Glycosaminoglycans or mucopolysaccharides, e.g. keratan sulfate; Derivatives thereof, e.g. fucoidan
    • C08B37/0075Heparin; Heparan sulfate; Derivatives thereof, e.g. heparosan; Purification or extraction methods thereof

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Abstract

Wynalazek dotyczy mieszaniny siarczanowanych polisacharydów posiadaj acych ogóln a struktu- r e polisacharydów tworz acych heparyn e i wykazuj acych nast epuj ace w la sciwo sci: - maj a one sredni ci ezar cz asteczkowy 1500-3000, aktywno sc anty-Xa wynosz ac a 100-150 IU/mg, aktywnosc anty-IIa wynosz ac a 0-10 IU/mg i stosunek aktywno sc anty-Xa/aktywno sc anty-IIa wi ekszy od 10, - polisacharydy tworz ace mieszanin e zawieraj a 2-26 jednostek sacharydowych i maj a na jed- nym ze swych ko nców ugrupowanie 2-O-siarczan 4,5-nienasyconego kwasu glukuronowego, w po- staci soli metalu alkalicznego lub ziem alkalicznych. Wynalazek dotyczy równie z sposobu wytwarzania takich mieszanin, zawieraj acych je kompozy- cji farmaceutycznych oraz mieszanin do zastosowania jako leki, zw laszcza leki przeciwzakrzepowe. PL PL PL PL

Description

Opis wynalazku
Wynalazek dotyczy mieszanin siarczanowanych polisacharydów posiadających ogólną strukturę polisacharydów tworzących heparynę, sposobu ich wytwarzania oraz zawierających je kompozycji farmaceutycznych.
Heparyna stanowi mieszaninę siarczanowanych mukopolisacharydów zawierających grupy kwasu siarkowego, pochodzenia zwierzęcego, stosowaną zwłaszcza ze względu na swe właściwości antykoagulacyjne i przeciwzakrzepowe.
Heparyna wykazuje jednak niedogodności, które ograniczają warunki jej stosowania. W szczególności jej wysoka aktywność antykoagulacyjna (aktywność anty-IIa) może powodować krwotoki.
Proponowano heparyny o niskim ciężarze cząsteczkowym, otrzymane przez depolimeryzację zasadową estrów heparyny (EP40144); jednakże te produkty mają jeszcze dużą aktywność anty-IIa.
Przedmiotem wynalazku są mieszaniny siarczanowanych polisacharydów posiadających ogólną strukturę polisacharydów tworzących heparynę i wykazujących następujące właściwości:
- mają one średni ciężar cząsteczkowy 1500-3000, aktywność anty-Xa wynoszącą 100-150 IU/mg, aktywność anty-IIa wynoszącą 0-10 IU/mg i stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa większy od 10,
- polisacharydy tworz ą ce mieszaninę zawierają 2-26 jednostek sacharydowych i mają na jednym ze swych końców ugrupowanie 2-O-siarczan 4,5-nienasyconego kwasu glukuronowego, w postaci soli metalu alkalicznego lub ziem alkalicznych.
Korzystnie mieszaniny wykazują aktywność anty-Xa wynoszącą 125-150 IU/mg.
Korzystnie mieszaniny wykazują aktywność anty-Xa wynoszącą 140-150 IU/mg i mają średni ciężar cząsteczkowy 2000-3000.
Korzystnie mieszaniny mają postać soli sodowej, potasowej, wapniowej lub magnezowej.
Korzystnie mieszaniny wykazują aktywność anty-IIa wynoszącą 0-5 IU/mg.
Korzystnie mieszaniny wykazują stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa większy od 25.
Przedmiot wynalazku stanowi także sposób wytwarzania mieszanin jak określono powyżej polegający na tym, że depolimeryzuje się czwartorzędową sól amonową estru benzylowego heparyny w środowisku organicznym, przy użyciu mocnej zasady organicznej wybranej z rodziny zasad guanidynowych i fosfazenowych lub imidazolanu sodu, przekształca się zdepolimeryzowaną czwartorzędową sól amoniową estru benzylowego heparyny w sól sodową, zmydla się ester i ewentualnie oczyszcza produkt.
Korzystnie czwartorzędowa sól amonowa estru benzylowego heparyny jest solą benzetonium, cetylopirydyniową lub cetylotrimetyloamonową.
Korzystnie zasadą z rodziny guanidyny jest 1,5,7-triazabicyklo[4.4.0]dec-5-en.
Korzystnie zasada z rodziny fosfazenów wybrana jest spośród 2-tert-butyloimino-2-dietyloamino-1,3-dimetyloperhydro-1,3,2-diazafosforyny i 2-tert-butyloimino-tris(dimetyloamino)-fosforanu.
Korzystnie zasady z rodziny guanidyny mają wzór:
w którym R1 oznacza atom wodoru lub alkil, każdy z R2, R3, R4 i R5, jednakowy lub różny, oznacza grupę alkilową zawierającą 1-6 atomów węgla o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym.
Korzystniej R1 oznacza atom wodoru, a R2, R3, R4 i R5 oznaczają grupę metylową.
Korzystnie zasady z rodziny fosfazenów mają wzór:
R3
R2—/ /R4
R1—Ν—P—N—R5
N—R6 /
R7
PL 202 471 B1 w którym grupy R1-R7 są jednakowe lub róż ne i oznaczają grupy alkilowe, zawierają ce 1-6 atomów węgla o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym.
Korzystnie stosunek molowy mocna zasada organiczna/czwartorzędowa sól amonowa estru benzylowego heparyny wynosi 0,2 - 5.
Korzystnie czwartorzędowa sól amonowa estru benzylowego heparyny ma stopień estryfikacji 50 - 100%.
Korzystnie przekształcenie depolimeryzowanej czwartorzędowej soli amonowej estru benzylowego heparyny w sól sodową prowadzi się przez traktowanie środowiska reakcyjnego alkoholowym roztworem octanu sodu.
Korzystnie zmydlanie prowadzi się przy użyciu wodorotlenku metalu alkalicznego.
Korzystnie oczyszczanie prowadzi się przy użyciu nadtlenku wodoru.
Przedmiot wynalazku stanowią również mieszaniny jak określono powyżej do zastosowania jako leki, korzystnie do zastosowania jako leki przeciwzakrzepowe.
Przedmiotem wynalazku jest także kompozycja farmaceutyczna zawierająca substancję czynną i farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, charakteryzująca się tym, ż e jako substancję czynną zawiera mieszaninę jak określono powyżej.
Średni ciężar cząsteczkowy oznacza się za pomocą wysokociśnieniowej chromatografii cieczowej, stosując dwie kolumny ustawione szeregowo np. sprzedawane pod nazwą TSK G3000 XL i TSK G2000 XL. Detekcję wykonuje się przy użyciu refraktometrii. Stosowanym eluentem jest azotan litu i przepł yw wynosi 0,6 ml/minutę . Ukł ad kalibruje się za pomocą wzorców wytwarzanych przez frakcjonowanie enoksaparyny (Aventis) na drodze chromatografii na żelu agaroza-poliakrylamid (IBF). To wytwarzanie prowadzi się według metody opisanej przez Barrowcliffe'a i in., Thromb.Res., 12, 27-36 (1977-78) lub D.A.Lane'a i in., Thromb.Res.,12, 257-271 (1977-78). Wyniki obliczono za pomocą programu GPC6 (Perkin Elmer).
Aktywność anty-Xa zmierzono metodą amidolityczną na substracie chromogenowym opisaną przez Teiena i in., Thromb.Res., 10, 399-410 (1977), stosując jako wzorzec pierwszy wzorzec międzynarodowy heparyn o niskim ciężarze cząsteczkowym.
Aktywność anty-IIa zmierzono metodą opisaną przez L.O.Andersona i in., Thromb.Res., 15, 531-541 (1979), stosując jako wzorzec pierwszy wzorzec międzynarodowy heparyn o niskim ciężarze cząsteczkowym.
Korzystnie mieszaniny, takie jak opisane wyżej, wykazują aktywność anty-Xa, wynoszącą 125150 Ul/mg.
Mieszaniny, takie jak opisane wyżej, wykazują zwłaszcza aktywność anty-Xa, wynoszącą 140150 Ul/mg i mają średni ciężar cząsteczkowy 2000-3000 daltonów.
Korzystnie mieszaniny według wynalazku wykazują aktywność anty-IIa 0-5 Ul/mg.
Jeszcze korzystniej mieszaniny wykazują stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa wyższy od 25.
Mieszaniny oligosacharydów według wynalazku można wytworzyć przez depolimeryzację czwartorzędowej soli amoniowej estru benzylowego heparyny w środowisku organicznym, przy użyciu mocnej zasady organicznej o pKa wyższym od 20 lub imidazolanu sodu, przekształcenie zdepolimeryzowanej czwartorzędowej soli amoniowej estru benzylowego heparyny w sól sodową, zmydlenie estru i ewentualnie oczyszczenie.
Czwartorzędowa sól amoniowa estru benzylowego heparyny jest korzystnie solą benzetonium, cetylopirydyniową lub cetylotrimetyloamoniową.
Depolimeryzację prowadzi się generalnie w obojętnym rozpuszczalniku organicznym, takim jak rozpuszczalnik chlorowany (np. dichlorometan), tetrahydrofuran, anizol, w temperaturze od -20 do 40°C.
Jako mocną zasadę organiczną o pKa wyższym od 20 można stosować 1,5,7-triazabicyklo[4.4.0]dec-5-en, 2-tert-butyloimino-2-dietyloamino-1,3-dimetyloperhydro-1,3,2-diazafosforynę, zasady z rodziny guanidyny i fosfazeny.
Zasadami z rodziny guanidyn są korzystnie zasady o wzorze:
PL 202 471 B1 w którym R1 oznacza atom wodoru lub alkil, każdy z R2, R3, R4 i R5, jednakowy lub różny, oznacza grupę alkilową.
Korzystniej R1 oznacza atom wodoru i R2, R3, R4 i R5 oznaczają grupę metylową.
Mocne zasady obecne w rodzinie fosfazenów są określone np. według R.Schwesingera i in., Angew.Chem.Int. Ed.Engl. 26,1167-1169(1987), R.Schwesingera i in., Angew. Chem.105,1420 (1993).
Wśród zasad z rodziny fosfazenów korzystnie stosuje się zasady o wzorze:
R3
R2—/ /R4
R1—Ν—P—N—R5
N—R6 /
R7 w którym grupy R1-R7 są jednakowe lub różne i oznaczają grupy alkilowe.
W poprzednich wzorach grupy alkilowe zawierają 1-6 atomów wę gla o ł a ń cuchu prostym lub rozgałęzionym.
Korzystnie stosunek molowy mocna zasada organiczna o pKa wyższym od 20 lub imidazolan sodu/czwartorzędowa sól amoniowa estru benzylowego heparyny wynosi 0,2-5 i korzystnie 1-4.
Stopień estryfikacji czwartorzędowej soli amoniowej estru benzylowego heparyny wynosi zwłaszcza 50-100%, korzystnie 70-90%. Ten stopień estryfikacji odpowiada molowemu procentowi estryfikacji kwasów uronowych w heparynie.
Przekształcenie zdepolimeryzowanej czwartorzędowej soli amoniowej estru benzylowego heparyny w sól sodową prowadzi się generalnie przez traktowanie środowiska reakcyjnego alkoholowym roztworem octanu sodu, korzystnie 10% roztworem octanu sodu w metanolu (ciężar/objętość), w temperaturze 15-25°C. Równoważnik wagowy dodanego octanu jest korzystnie 3 razy wyższy od masy czwartorzędowej soli amoniowej estru benzylowego heparyny, poddanej reakcji depolimeryzacji.
Zmydlenie prowadzi się generalnie za pomocą wodorotlenku metalu alkalicznego, jak wodorotlenek sodu, wodorotlenek potasu, wodorotlenek litu, w środowisku wodnym w temperaturze 0-20°C, a korzystnie 0-10°C. Na ogół stosuje się 1-5 równoważ ników molowych wodorotlenku metalu alkalicznego. Zmydlenie wykonuje się korzystnie w obecności 2-3 równoważników molowych wodorotlenku metalu alkalicznego.
Końcowy produkt można ewentualnie oczyścić każdą znaną metodą oczyszczania zdepolimeryzowanych heparyn, a zwłaszcza według metody opisanej w opisie patentowym nr EP 0037319. Korzystnie oczyszcza się przy użyciu nadtlenku wodoru, w środowisku wodnym w temperaturze 10-50°C. Korzystnie tę operację wykonuje się w temperaturze 20-40°C.
Czwartorzędową sól amoniową estru benzylowego heparyny można wytworzyć według następującego schematu reakcyjnego:
a) Przekształcenie heparyny w postaci soli sodowej przy użyciu chlorku benzetonium dla otrzymania heparynianu benzetonium,
b) Estryfikacja otrzymanej poprzednio soli benzetonium za pomocą chlorku benzylu i traktowanie alkoholowym roztworem octanu sodu w celu otrzymania soli sodowej estru benzylowego heparyny,
c) Przekształcenie soli sodowej estru benzylowego heparyny w czwartorzędową sól amoniową, korzystnie w sól benzetonium, cetylopirydyniową lub cetylotrimetylopirydyniową.
Reakcję z etapu a) prowadzi się w środowisku wodnym przez działanie nadmiaru chlorku benzetonium na heparynę w postaci soli sodowej, w temperaturze około 15-25°C. Korzystnie stosunek molowy chlorek benzetonium/heparyna w postaci soli sodowej wynosi 2-3 i korzystniej 2,5.
Stosowaną wyjściową heparyną w postaci soli sodowej jest korzystnie heparyna świńska. Może ona być uprzednio oczyszczona dla zmniejszenia wskaźnika siarczanu dermatanu zgodnie ze sposobem opisanym w opisie patentowym nr FR 2 663 639.
Estryfikację z etapu b) korzystnie prowadzi się w chlorowanym rozpuszczalniku organicznym (np. chloroform, chlorek metylenu), w temperaturze 25-45°C, korzystnie 30-45°C. Następnie otrzymuje się ester w postaci soli sodowej przez wytrącenie 10% (ciężar/objętość) roztworem octanu sodu w alkoholu, takim jak metanol. Generalnie stosuje się 1-1,2 objętości alkoholu na objętość środowiska
PL 202 471 B1 reakcyjnego. Ilość chlorku benzylu i czas reakcji dostosowuje się w celu uzyskania stopnia estryfikacji 50-100%, korzystnie 70-90%. Korzystniej stosuje się 0,5-1,5 części wagowej chlorku benzylu na 1 część wagową soli benzetonium heparyny. Również korzystniej czas reakcji wynosi 10-35 godzin.
Przekształcenie soli z etapu c) prowadzi się za pomocą czwartorzędowego chlorku amoniowego, korzystnie za pomocą chlorku benzetonium, chlorku cetylopirydyniowego lub chlorku cetylotrimetylopirydyniowego, w wodnym środowisku w temperaturze 10-25°C. Korzystnie stosunek molowy czwartorzędowy chlorek amoniowy/sól sodowa estru benzylowego heparyny wynosi 2-3.
Mieszaniny według wynalazku w postaci soli sodowej można przekształcać w inną sól metalu alkalicznego lub ziem alkalicznych. Przechodzi się ewentualnie z jednej soli w inną, stosując metodę opisaną w opisie patentowym nr US 4 168 377.
Mieszaniny według wynalazku nie są toksyczne i można je stosować jako leki.
Mieszaniny według niniejszego wynalazku można stosować jako środki przeciwzakrzepowe. W szczególności są przydatne do zapobiegania zakrzepicy żylnej, przypadkach zakrzepicy tętnic, zwłaszcza w wypadku zawału mięśnia sercowego. Są też przydatne w zapobieganiu i leczeniu rozrostu komórek mięśni gładkich, rozwoju naczyń i jako środek neurochronny w miażdżycy i sklerozie tętnic.
Zgodnie z wynalazkiem kompozycje farmaceutyczne zawierają jako substancję czynną mieszaninę polisacharydów według wynalazku, ewentualnie w połączeniu z jedną lub kilkoma obojętnymi zaróbkami.
Kompozycje farmaceutyczne są np. roztworami do wstrzyknięć drogą podskórną lub dożylną. Są też użyteczne na drodze płucnej (inhalacji).
Dawkowanie może się zmieniać w zależności od wieku, masy i stanu zdrowia pacjenta. Dla dorosłych wynosi zwykle 20-100 mg na dzień drogą domięśniową lub podskórną.
Następujące przykłady ilustrują wynalazek.
P r z y k ł a d A. Wytwarzanie soli benzetonium estru benzylowego heparyny
Heparynian benzetonium
Do roztworu 10 g heparyny w postaci soli sodowej w 100 ml wody w temperaturze około 20°C dodano roztwór 25 g chlorku benzetonium w 125 ml wody. Produkt odsączono, przemyto wodą i wysuszono.
Ester benzylowy heparyny (sól sodowa)
Do roztworu 20 g heparynianu benzetonium w 80 ml chlorku metylenu dodano 16 ml chlorku benzylu. Roztwór ogrzewano w temperaturze 30°C w ciągu 12 godzin. Dodano wtedy 108 ml roztworu 10% octanu sodu w metanolu, odsączono, przemyto metanolem i wysuszono. Otrzymano w ten sposób 7,6 g estru benzylowego heparyny w postaci soli sodowej, w której stopień estryfikacji wynosił 77%.
Ester benzylowy heparyny (sól benzetonium)
Do kolby Erlenmeyera A o pojemności 2 litrów, wprowadzono 36 g (0,0549 mola) estru benzylowego heparyny (sól sodowa) i 540 ml wody destylowanej. Po homogenizacji w temperaturze około 20°C otrzymano jasnożółty roztwór. Mieszając mieszadłem magnetycznym, sporządzono w kolbie Erlenmeyera B o pojemności 1 litra, roztwór 64,45 g (0,1438 mola) chlorku benzetonium i 450 ml wody. Roztwór z kolby Erlenmeyera B wlano w ciągu około 35 minut, mieszając, do roztworu w kolbie Erlenmeyera A. Zauważono tworzenie obfitego białego osadu. Kolbę Erlenmeyera B przemyto 200 ml wody destylowanej i wodę z przemycia wprowadzono do kolby Erlenmeyera A. Mieszanie wtedy przerwano i pozostawiono zawiesinę do osadzenia na 12 godzin. Część przezroczystą supernatantu pobrano i usunięto. Do osadzonego produktu (o wyglądzie zawiesiny), dodano 560 ml wody i mieszano w cią gu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na okoł o 30 minut. Supernatant odebrano i usunięto (560 ml). W osadzonym produkcie powtórzono dwukrotnie operację przemywania z około 560 ml wody destylowanej. W ostatniej operacji przemywania pozostawiono zawieszony osad i odsą czono przez są czek ze spiekanego szkła 3. Placek filtracyjny nastę pnie przemyto 4 razy 200 ml wody destylowanej. Odciśnięto wilgotne białe ciało stałe, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 87,5 g soli benzetonium estru benzylowego heparyny. Uzyskano wydajność 94,9%.
P r z y k ł a d 1
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do kolby Erlenmeyera A o pojemności 50 ml, wprowadzono 28 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu załadowano wolno 4 g (0,00238 mola) estru benzylowego heparyny (stopień estryfikacji: 77%,
PL 202 471 B1 sól benzetonium) otrzymanego, jak opisano w przykładzie A. Po całkowitym rozpuszczeniu dodano 1,32 g (0,00948 mola) 1,5,7-triazabicyklo[4.4.0]dec-5-enu. Mieszano w temperaturze około 20°C przez 3 godziny i 30 minut. W ciągu tego czasu sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 12 g octanu sodowego w 120 ml metanolu. Mieszając mieszadłem magnetycznym, mieszaninę reakcyjną z kolby Erlenmeyera A wlano do metanolowego roztworu octanu sodu. Pojawił się żółty galaretowaty półprzezroczysty osad. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do dekantacji na okres jednej godziny. Przejrzystą część supernatantu pobrano i usunięto (62 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do ponownej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (49 ml). Do osadzonego osadu dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Zawieszony osad następnie odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 4. Otrzymaną złotożółtą masę przemyto potem 2 razy 25 ml metanolu. Odciś nię to wilgotne ciał o stał e, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciś nieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 1,21 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego). Uzyskano wydajność 77,2%.
Zmydlanie:
Do kolby Erlenmeyera o pojemności 25 ml wprowadzono 1,21 g (0,0018 mola) zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego) otrzymanej poprzednio i 11 ml wody. Mieszając mieszadłem magnetycznym, wprowadzono 0,18 ml (0,0018 mola) 30% roztworu wodorotlenku sodowego. Po dodaniu mieszaninę ochłodzono do temperatury 4°C i mieszano w ciągu 2 godzin. Dodano 1,43 g NaCl i zobojętniono roztwór, dodając roztwór HCl 1 mol/litr (14 ml). Mieszaninę przelano do kolby Erlenmeyera o pojemności 100 ml i dodano 52 ml metanolu. Zaobserwowano tworzenie żółtego osadu. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do osadzenia w ciągu 12 godzin w temperaturze około 20°C. Następnie supernatant pobrano, po czym usunięto (44 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 25 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (21 ml). Do osadzonego produktu dodano 25 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Zawieszony osad następnie odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 3. Potem otrzymany jasnożółty placek filtracyjny przemyto 2 razy 10 ml metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 0,66 g surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa). Uzyskano wydajność 60%.
Oczyszczanie:
Do kolby Erlenmeyera o pojemności 10 ml wprowadzono 0,66 g surowej zdepolimeryzowanej heparyny otrzymanej poprzednio i 5,9 ml wody destylowanej. Mieszaninę ogrzano w temperaturze 40°C, mieszając mieszadłem magnetycznym. Dodając roztwór 0,1 mola/litr wodorotlenku sodu, doprowadzono pH do 9-10 i dodano 33 mikrolitry 30% wodnego roztworu nadtlenku wodoru. Po około 2 godzinach mieszania dodano 0,65 g chlorku sodu. Nastę pnie mieszaninę zoboję tniono, dodają c roztwór HCl 0,1 mola/litr. Roztwór potem przesączono i przelano do kolby Erlenmeyera o pojemności 25 ml. Wlano 23,3 ml metanolu. Zaobserwowano tworzenie białego osadu. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do osadzenia na okres 12 godzin w temperaturze około 20°C. Następnie supernatant pobrano, po czym usunięto (5 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie zawiesiny) dodano 5 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (5 ml). Do osadzonego produktu dodano 5 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Następnie zawieszony osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 3. Otrzymany biały placek filtracyjny przemyto potem 2 razy po 5 ml metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 0,51 g oczyszczonej mieszaniny polisacharydów (sól sodowa). Uzyskano wydajność 77,2%.
Właściwości tej mieszaniny były następujące:
Średni ciężar cząsteczkowy: 1600
Aktywność anty-Xa: 94 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: < 0,1 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: > 100
P r z y k ł a d 2
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do kolby Erlenmeyera A o pojemności 100 ml wprowadzono 70 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu, załadowano wolno 10 g (0,00595 mola) estru benzylowego heparyny (stopień estryfikacji:
PL 202 471 B1
77%, sól benzetonium) otrzymanego, jak opisano w przykładzie A. Po całkowitym rozpuszczeniu dodano 1,7 ml (0,00587 mola) 2-tert-butyloimino-2--dietyloamino-1,3-dimetyloperhydro-1,3,2-diazafosforyny. W temperaturze około 20°C pozostawiono reakcję do kontynuowania na okres około 3 godzin i 30 minut. W tym czasie sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 30 g octanu sodowego w 300 ml metanolu. Mieszając mieszadłem magnetycznym, mieszaninę reakcyjną z kolby Erlenmeyera A wlano do roztworu metanolowego octanu sodu. Pojawił się galaretowaty półprzezroczysty żółty osad. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do zdekantowania na okres jednej godziny. Przejrzystą część supernatantu pobrano i usunięto (204 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 125 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji przez około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (162 ml). Do osadzonego produktu dodano 125 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Zawieszony galaretowaty osad następnie odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 3. Otrzymany żółty galaretowaty placek filtracyjny przemyto potem 2 porcjami po 63 ml metanolu. Galaretowate ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 3,34 g. Uzyskano wydajność 85,3%.
Zmydlanie:
Zmydlono 1,67 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego) poprzednio otrzymanej według sposobu zmydlania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 0,94 g jasnożółtego proszku. Wydajność surowej zdepolimeryzowanej heparyny (soli sodowej) wyniosła 61%.
Oczyszczanie:
Oczyszczono 0, 94 g surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) poprzednio otrzymanej według sposobu oczyszczania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 0,71 g białego proszku. Wydajność wyniosła 75,5%.
Otrzymana oczyszczona mieszanina polisacharydów (sól sodowa) wykazywała następujące właściwości:
Średni ciężar cząsteczkowy: 2500
Aktywność anty-Xa: 146,6 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: 2,15 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: 68
P r z y k ł a d 3
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do kolby Erlenmeyera A o pojemności 50 ml wprowadzono 28 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu załadowano wolno 4 g (0,00238 mola) estru benzylowego heparyny (stopień estryfikacji: 77%, sól benzetonium) otrzymanego według przykładu A. Po całkowitym rozpuszczeniu i ochłodzeniu do temperatury 2°C dodano 0,333 g (0,00239 mola) 1,5,7-triazabicyklo[4.4.0]dec-5-enu. W temperaturze około 20°C pozostawiono reakcję do kontynuacji na okres około 3 godzin i 30 minut. W tym czasie sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 12 g octanu sodowego w 120 ml metanolu. Mieszając mieszadłem magnetycznym, mieszaninę reakcyjną z kolby Erlenmeyera A wlano do metanolowego roztworu octanu sodowego. Pojawił się żółty osad. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do zdekantowania na okres jednej godziny. Przejrzystą część supernatantu pobrano i usunięto (90 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (61 ml). Do osadzonego produktu dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Następnie zawieszony osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 4. Otrzymany placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 25 ml metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 1,19 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego). Ciało stałe miało intensywną żółtą barwę. Uzyskano wydajność 75,9%.
Zmydlanie:
Zmydlono 1,19 g heparyny zdepolimeryzowanej (sól sodowa estru benzylowego) poprzednio otrzymanej według sposobu zmydlania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 0,78 g jasnożółtego proszku. Wydajność surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) wyniosła 71,5%.
Oczyszczanie:
Oczyszczono 0,78 g poprzednio otrzymanej surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) według metody oczyszczania opisanej w przykładzie 1. Otrzymano 0,58 g białego proszku.
Wydajność wyniosła 72,5%.
PL 202 471 B1
Otrzymana oczyszczona mieszanina polisacharydów (sól sodowa) wykazywała następujące właściwości:
Średni ciężar cząsteczkowy: 2700
Aktywność anty-Xa: 100,1 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: 3,3 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: 27,3
P r z y k ł a d 4
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do kolby Erlenmeyera A o pojemności 50 ml, wprowadzono 28 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu, załadowano wolno 4 g (0,00238 mola) estru benzylowego heparyny (stopień estryfikacji: 77%, sól benzetonium) otrzymanego, jak opisano w przykładzie A. Po całkowitym rozpuszczeniu w temperaturze 2°C dodano 0,6 ml (0,00222 mola) 2-tert-butyloimino-tris(dimetyloamino)fosforanu. W temperaturze około 0°C pozostawiono reakcję do kontynuacji podczas około 3 godzin i 30 minut. W tym czasie sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 12 g octanu sodowego w 120 ml metanolu. Mieszają c mieszadł em magnetycznym, mieszaninę reakcyjną z kolby Erlenmeyera A wlano do metanolowego roztworu octanu sodowego. Pojawił się galaretowaty półprzezroczysty żółty osad. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do zdekantowania na okres jednej godziny. Przejrzystą część supernatantu pobrano i usunięto (108 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtawej zawiesiny) dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (60 ml). Do osadzonego produktu dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Następnie zawieszony białożółtawy osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 4. Otrzymany placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 25 ml metanolu. Odciśnięto ciało stałe, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 1,22 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego). Uzyskano wydajność 77,8%.
Zmydlanie:
Zmydlono 1,22 g poprzednio otrzymanej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego) według protokołu zmydlania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 0,69 g bardzo jasnożółtego proszku. Wydajność surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) wyniosła 61,6%.
Oczyszczanie:
Oczyszczono 0,69 g poprzednio otrzymanej surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) według protokołu oczyszczania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 0,67 g białego proszku. Wydajność wyniosła 97,1%.
Otrzymana oczyszczona mieszanina polisacharydów (sól sodowa) wykazywała następujące właściwości:
Średni ciężar cząsteczkowy: 2900
Aktywność anty-Xa: 145,2 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: 4,5 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: 32,6
P r z y k ł a d 5
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do kolby A o pojemności 50 ml wprowadzono 28 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu, załadowano wolno 4 g (0,00238 mola) heparynianu benzylowego (stopień estryfikacji: 77%, sól benzetonium). Po całkowitym rozpuszczeniu w temperaturze 40°C dodano 0,95 g (0,00949 mola) imidazolanu sodowego. W temperaturze wrzenia wobec powrotu skroplin dichlorometanu pozostawiono reakcję do kontynuacji przez około 4 godziny. W tym czasie sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 12 g octanu sodowego w 120 ml metanolu. Mieszając mieszadłem magnetycznym, mieszaninę reakcyjną z kolby Erlenmeyera A wlano do metanolowego roztworu octanu sodowego. Pojawił się galaretowaty półprzezroczysty żółty osad. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do zdekantowania na okres jednej godziny. Przejrzystą część supernatantu barwy pomarańczowej pobrano i usunięto (88 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie zawiesiny barwy pomarańczowej) dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (51 ml). Do osadzonego produktu dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Zawieszony osad barwy pomarańczowej następnie odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 4. Otrzymany placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 25 ml metanolu. Cia ł o stał e odciś nię to, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciś nieniem
PL 202 471 B1 (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 1,34 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego). Uzyskano wydajność 76,6%.
Zmydlanie:
Zmydlono 1,2 g poprzednio otrzymanej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego) według protokołu zmydlania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 0,63 g beżowego proszku. Wydajność surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) wyniosła 52,5%.
Oczyszczanie:
Oczyszczono 0,63 g poprzednio otrzymanej surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) według metody oczyszczania opisanej w przykładzie 1. Otrzymano 0,42 g biało-beżowego proszku. Wydajność wyniosła 66,7%.
Otrzymana oczyszczona mieszanina polisacharydów (sól sodowa) wykazywała następujące właściwości:
Średni ciężar cząsteczkowy: 2250
Aktywność anty-Xa: 134,5 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: 1,5 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: 90,5
P r z y k ł a d 6
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do kolby Erlenmeyera A o pojemności 50 ml wprowadzono 28 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu, załadowano wolno 4 g (0,00238 mola) estru benzylowego heparyny (stopień estryfikacji: 77%, sól benzetonium) otrzymanego, jak opisano w przykładzie A. Po całkowitym rozpuszczeniu dodano 1,33 g (0,00956 mola) 1,5,7-triazabicyklo[4.4.0]dec-5-enu. Mieszano w temperaturze około 20°C przez 3 godziny i 30 minut. W tym czasie sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 12 g octanu sodowego w 120 ml metanolu. Mieszając mieszadłem magnetycznym, mieszaninę reakcyjną z kolby Erlenmeyera A wlano do metanolowego roztworu octanu sodowego. Pojawił się galaretowaty półprzezroczysty żółty osad. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do zdekantowania na okres jednej godziny. Przejrzystą część supernatantu pobrano i usunięto (56 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 60 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 30 minut. Supernatant pobrano i usunięto (70 ml). Do osadzonego produktu dodano 50 ml metanolu i mieszano w ciągu 15 minut. Następnie zawieszony osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 4. Otrzymany złotożółty placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 50 ml metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 0,92 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego). Uzyskano wydajność 64%.
Zmydlanie:
Do kolby Erlenmeyera 25 ml wprowadzono 0,92 g (0,0014 mola) otrzymanej poprzednio zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego) i 17,5 ml wody. Mieszając mieszadłem magnetycznym, wprowadzono 0,38 ml (0,00379 mola) 30% roztworu wodorotlenku sodu. Po dodaniu utrzymywano mieszaninę w temperaturze około 20°C i mieszano w ciągu 5 godzin. Dodano 1,8 g NaCl i zoboję tniono roztwór, dodając stężony HCl (końcowa objętość roztworu około 18 ml). Mieszaninę przelano do kolby Erlenmeyera o pojemności 100 ml i dodano 46 ml metanolu. Zaobserwowano tworzenie żółtego osadu. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do osadzenia w ciągu 12 godzin w temperaturze około 20°C. Następnie supernatant pobrano, po czym usunięto (52 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 25 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 1 godzinę. Supernatant pobrano i usunięto (27 ml). Do osadzonego produktu dodano 25 ml metanolu i mieszano w ciągu około 1 godziny. Następnie zawieszony osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 4. Otrzymany placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 10 ml metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 3 godzinach suszenia otrzymano 0,42 g surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa). Uzyskano wydajność 45,6%.
Oczyszczanie:
Do kolby Erlenmeyera o pojemności 10 ml wprowadzono 0,42 g surowej zdepolimeryzowanej heparyny otrzymanej poprzednio i 3,8 ml wody destylowanej. Mieszaninę ogrzano do temperatury
38°C, mieszając mieszadłem magnetycznym. Przez dodanie roztworu 0,1 mola/litr wodorotlenku sodu, doprowadzono pH do 9-10 i dodano 25 mikrolitrów 30% wodnego roztworu nadtlenku wodoru.
Po około 2 godzinach i 30 minutach mieszania dodano 0,5 g chlorku sodu. Następnie mieszaninę
PL 202 471 B1 zobojętniono, dodając roztwór HCl 0,1 mola/litr. Roztwór potem przesączono i przelano do kolby Erlenmeyera o pojemności 25 ml. Wlano 11,3 ml metanolu. 25 Zaobserwowano tworzenie białego osadu. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do osadzenia w ciągu 12 godzin w temperaturze około 20°C. Następnie supernatant pobrano, po czym usunięto (9,8 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie zawiesiny) dodano 5 ml metanolu i mieszano w ciągu 15 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na około 3 godziny. Supernatant pobrano i usunięto (6,2 ml). Do osadzonego produktu dodano 5 ml metanolu i mieszano w ciągu 20 minut. Następnie zawieszony osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 3. Otrzymany biały placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 5 ml metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po około 2 godzinach i 20 minutach suszenia otrzymano 0,39 g czystej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa). Uzyskano wydajność 92,8%.
Właściwości zdepolimeryzowanej heparyny otrzymanej w ten sposób były następujące:
Średni ciężar cząsteczkowy: 1950
Aktywność anty-Xa: 115,6 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: < 2 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: > 57
P r z y k ł a d 7
Depolimeryzacja i przekształcenie w sól sodową:
Do reaktora A o pojemności 400 ml wprowadzono 140 ml dichlorometanu. Przy mieszaniu, załadowano wolno 20 g (0,0119 mola) estru benzylowego heparyny (stopień estryfikacji: 77%, sól benzetonium) otrzymanego, jak opisano w przykładzie A. Po całkowitym rozpuszczeniu zmierzono zawartość wody w środowisku reakcyjnym metodą Karla Fishera. Otrzymana wartość wyniosła 0,1% wody. Dodano wtedy 3,5 ml (0,0121 mola) 2-tert-butyloimino-2-dietylamino-1,3-dimetyloperhydro-1,3,2-diazafosforyny. W temperaturze około 25°C pozostawiono reakcję do kontynuacji na okres około 24 godzin. W tym czasie sporządzono w temperaturze 4°C w kolbie Erlenmeyera B roztwór 30 g octanu sodowego w 300 ml metanolu. Mieszając mieszadłem magnetycznym, połowę mieszaniny reakcyjnej z reaktora A wlano do metanolowego roztworu octanu sodu. Pojawił się galaretowaty pół przezroczysty żółty osad. Mieszanie utrzymywano w ciągu jednej godziny i pozostawiono zawiesinę do zdekantowania przez około 12 godzin w temperaturze 4°C. Przejrzystą część supernatantu pobrano i usunięto (220 ml). Do osadzonego produktu (o wyglądzie żółtej zawiesiny) dodano 220 ml metanolu i mieszano w cią gu 50 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji na okoł o 40 minut. Supernatant pobrano i usunięto (204 ml). Do osadzonego produktu dodano 204 ml metanolu i mieszano w ciągu 40 minut. Zawieszony galaretowaty osad następnie odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 3. Otrzymany żółty galaretowaty placek filtracyjny przemyto potem 2 porcjami 100 ml metanolu. Galaretowate ciało stałe odciśnięto, po czym wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze oko ł o 60°C. Po okoł o 12 godzinach suszenia otrzymano 2,6 g zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego). Uzyskano wydajność 70,6% (obliczoną na podstawie połowy traktowanego środowiska reakcyjnego).
Zmydlanie:
Zmydlono 2,6 g poprzednio otrzymanej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa estru benzylowego) według sposobu zmydlania opisanego w przykładzie 1. Otrzymano 1,48 g jasnożółtego proszku. Wydajność surowej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa) wyniosła 62,9%.
Oczyszczanie:
Do kolby Erlenmeyera o pojemności 50 ml wprowadzono 1,48 g surowej zdepolimeryzowanej heparyny otrzymanej poprzednio i 15 ml wody destylowanej. Mieszaninę ogrzano do temperatury
40°C, mieszając mieszadłem magnetycznym. Dodając roztwór 1 mol/litr wodorotlenku sodu, doprowadzono pH do 9-10. Roztwór odsączono przez membranę sączącą o porowatości 1 μm. Dodano następnie 76 mikrolitrów 30% wodnego roztworu nadtlenku wodoru. Po około 2 godzinach mieszania dodano 1,5 g chlorku sodu. Następnie mieszaninę zobojętniono, dodając roztwór HCl 1 mol/litr. Roztwór odsączono przez membranę sączącą o porowatości 1 μm. Wlano 38 ml metanolu. Zaobserwowano tworzenie białego osadu. Przerwano wtedy mieszanie i pozostawiono zawiesinę do osadzenia w ciągu 1 godziny w temperaturze około 20°C. Następnie supernatant pobrano, po czym usunięto (37 ml). Do osadu dodano 37 ml metanolu i mieszano w ciągu 45 minut. Pozostawiono osad do powtórnej sedymentacji przez około 45 minut. Supernatant pobrano i usunięto (34 ml). Do osadzonego produktu dodano 34 ml metanolu i mieszano w ciągu 15 minut. Następnie zawieszony osad odsączono przez sączek ze spiekanego szkła 3. Otrzymany biały placek filtracyjny przemyto potem 2 razy 25 ml
PL 202 471 B1 metanolu. Wilgotne ciało stałe odciśnięto, po czym suszono pod zmniejszonym ciśnieniem (2,7 kPa) w temperaturze około 60°C. Po 12 godzinach suszenia otrzymano 1,29 g czystej zdepolimeryzowanej heparyny (sól sodowa). Uzyskano wydajność 87,2%.
Otrzymana oczyszczona zdepolimeryzowana heparyna (sól sodowa) wykazywała następujące właściwości:
Średni ciężar cząsteczkowy: 2250
Aktywność anty-Xa: 149,6 Ul/mg
Aktywność anty-IIa: 0,85 Ul/mg
Stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa: 176.

Claims (21)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Mieszaniny siarczanowanych polisacharydów posiadających ogólną strukturę polisacharydów tworzących heparynę i wykazujących następujące właściwości:
    - mają one średni ciężar cząsteczkowy 1500-3000, aktywność anty-Xa wynoszącą 100-150 IU/mg, aktywność anty-IIa wynoszącą 0-10 IU/mg i stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa większy od 10,
    - polisacharydy tworz ą ce mieszaninę zawierają 2-26 jednostek sacharydowych i mają na jednym ze swych końców ugrupowanie 2-O-siarczan 4,5-nienasyconego kwasu glukuronowego, w postaci soli metalu alkalicznego lub ziem alkalicznych.
  2. 2. Mieszaniny według zastrz. 1, znamienne tym, że wykazują aktywność anty-Xa wynoszą c ą 125-150 IU/mg.
  3. 3. Mieszaniny według zastrz. 1 albo 2, znamienne tym, ż e wykazują aktywność anty-Xa wynoszącą 140-150 IU/mg i mają średni ciężar cząsteczkowy 2000-3000.
  4. 4. Mieszaniny według któregokolwiek z zastrz. 1-3, znamienne tym, ż e mają postać soli sodowej, potasowej, wapniowej lub magnezowej.
  5. 5. Mieszaniny według któregokolwiek z zastrz. 1-4, znamienne tym, że wykazują aktywność anty-IIa wynoszącą 0-5 IU/mg.
  6. 6. Mieszaniny według któregokolwiek z zastrz. 1-5, znamienne tym, że wykazują stosunek aktywność anty-Xa/aktywność anty-IIa większy od 25.
  7. 7. Sposób wytwarzania mieszanin jak określono w zastrz. 1, znamienny tym, że depolimeryzuje się czwartorzędową sól amonową estru benzylowego heparyny w środowisku organicznym, przy użyciu mocnej zasady organicznej wybranej z rodziny zasad guanidynowych i fosfazenowych lub imidazolanu sodu, przekształca się zdepolimeryzowaną czwartorzędową sól amoniową estru benzylowego heparyny w sól sodową, zmydla się ester i ewentualnie oczyszcza produkt.
  8. 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że czwartorzędowa sól amonowa estru benzylowego heparyny jest solą benzetonium, cetylopirydyniową lub cetylotrimetyloamonową.
  9. 9. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, ż e zasadą z rodziny guanidyny jest 1,5,7-triazabicyklo[4.4.0]dec-5-en.
  10. 10. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że zasada z rodziny fosfazenów wybrana jest spośród 2-tert-butyloimino-2-dietyloamino-1,3-dimetyloperhydro-1,3,2-diazafosforyny i 2-tert-butyloimino-tris(dimetyloamino)-fosforanu.
  11. 11. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że zasady z rodziny guanidyny mają wzór:
    w którym R1 oznacza atom wodoru lub alkil, ka żdy z R2, R3, R4 i R5, jednakowy lub ró ż ny, oznacza grupę alkilową zawierającą 1-6 atomów węgla o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym.
    PL 202 471 B1
  12. 12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że R1 oznacza atom wodoru, a R2, R3, R4 i R5 oznaczają grupę metylową.
  13. 13. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że zasady z rodziny fosfazenów mają wzór:
    R3
    R2—/ /R4
    R1—N—P—N—R5
    N—R6 /
    R7 w którym grupy R1-R7 są jednakowe lub róż ne i oznaczają grupy alkilowe, zawierają ce 1-6 atomów węgla o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym.
  14. 14. Sposób według jednego z zastrz. 7-13, znamienny tym, że stosunek molowy mocna zasada organiczna/czwartorzędowa sól amonowa estru benzylowego heparyny wynosi 0,2 - 5.
  15. 15. Sposób według jednego z zastrz. 7-14, znamienny tym, że czwartorzędowa sól amonowa estru benzylowego heparyny ma stopień estryfikacji 50 - 100%.
  16. 16. Sposób według jednego z zastrz. 7-15, znamienny tym, że przekształcenie zdepolimeryzowanej czwartorzędowej soli amonowej estru benzylowego heparyny w sól sodową prowadzi się przez traktowanie środowiska reakcyjnego alkoholowym roztworem octanu sodu.
  17. 17. Sposób według jednego z zastrz. 7-15, znamienny tym, że zmydlanie prowadzi się przy użyciu wodorotlenku metalu alkalicznego.
  18. 18. Sposób według jednego z zastrz. 7-16, znamienny tym, że oczyszczanie prowadzi się przy użyciu nadtlenku wodoru.
  19. 19. Mieszaniny jak określono w zastrz. 1-6, do zastosowania jako leki.
  20. 20. Mieszaniny według zastrz. 19, do zastosowania jako leki przeciwzakrzepowe.
  21. 21. Kompozycja farmaceutyczna zawierająca substancję czynną i farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, znamienna tym, że jako substancję czynną zawiera mieszaninę jak określono w zastrz. 1-6.
PL365561A 2000-07-21 2001-07-18 Mieszaniny siarczanowanych polisacharydów, sposób ich wytwarzania oraz kompozycja farmaceutyczna PL202471B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR0009572A FR2811992B1 (fr) 2000-07-21 2000-07-21 Melanges de polysaccharides derives d'heparine, leur preparation et les compositions pharmaceutiques les contenant
PCT/FR2001/002332 WO2002008295A1 (fr) 2000-07-21 2001-07-18 Melanges de polysaccharides derives d'heparine, leur preparation et les compositions pharmaceutiques les contenant

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL365561A1 PL365561A1 (pl) 2005-01-10
PL202471B1 true PL202471B1 (pl) 2009-06-30

Family

ID=8852768

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL365561A PL202471B1 (pl) 2000-07-21 2001-07-18 Mieszaniny siarczanowanych polisacharydów, sposób ich wytwarzania oraz kompozycja farmaceutyczna

Country Status (36)

Country Link
EP (1) EP1307491B2 (pl)
JP (1) JP5279160B2 (pl)
KR (1) KR100853585B1 (pl)
CN (1) CN1230449C (pl)
AP (1) AP1703A (pl)
AR (1) AR029865A1 (pl)
AT (1) ATE470679T1 (pl)
AU (2) AU2001277602B2 (pl)
BR (1) BR0112612B1 (pl)
CA (1) CA2416673C (pl)
CL (1) CL2004001154A1 (pl)
CY (1) CY1110774T1 (pl)
DE (1) DE60142340D1 (pl)
DK (1) DK1307491T3 (pl)
DZ (1) DZ3411A1 (pl)
EA (1) EA005995B1 (pl)
EC (1) ECSP034442A (pl)
ES (1) ES2347134T5 (pl)
FR (1) FR2811992B1 (pl)
HK (1) HK1059273A1 (pl)
HR (1) HRP20030019A2 (pl)
HU (1) HUP0300755A3 (pl)
IL (2) IL153922A0 (pl)
MA (1) MA26928A1 (pl)
MX (1) MXPA03000579A (pl)
NO (1) NO20030296L (pl)
NZ (1) NZ524028A (pl)
OA (1) OA12340A (pl)
PL (1) PL202471B1 (pl)
PT (1) PT1307491E (pl)
SI (1) SI1307491T1 (pl)
TW (1) TWI307278B (pl)
UA (1) UA74836C2 (pl)
WO (1) WO2002008295A1 (pl)
YU (1) YU2903A (pl)
ZA (1) ZA200300898B (pl)

Families Citing this family (24)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6969705B2 (en) 2000-07-21 2005-11-29 Aventis Pharma S.A. Compositions of polysaccharides derived from heparin, their preparation and pharmaceutical compositions containing them
DE60218642T2 (de) * 2002-06-20 2007-11-29 Chemi S.P.A., Cinisello Balsamo Verfahren zur Herstellung von Heparinestern
FR2845686B1 (fr) * 2002-10-10 2013-08-30 Aventis Pharma Sa Melanges de polysaccharides derives d'heparine, leur preparation et les compositions pharmaceutiques les contenant
AR041555A1 (es) 2002-10-10 2005-05-18 Aventis Pharma Sa Mezclas de polisacaridos derivados de heparina, su preparacion y las composiciones farmaceuticas que las contienen
US20040171819A1 (en) 2002-10-10 2004-09-02 Aventis Pharma S.A. Mixtures of polysaccharides derived from heparin, their preparation and pharmaceutical compositions containing them
FR2857971B1 (fr) * 2003-07-24 2005-08-26 Aventis Pharma Sa Melanges d'oligosaccharides derives d'heparine, leur preparation et les compositions pharmaceutiques les contenant
US7956046B2 (en) * 2003-07-24 2011-06-07 Aventis Pharma S.A. Oligosaccharide mixtures derived from heparin, preparation thereof and pharmaceutical compositions containing them
DE102004059134B4 (de) 2004-12-08 2011-12-15 Siemens Ag Expansionsvorrichtung für ein Röntgengerät und Röntgenstrahler
CA2652205A1 (en) * 2006-05-25 2007-12-06 Mallik Sundaram Low molecular weight heparin composition and uses thereof
CN101824099B (zh) * 2010-02-12 2011-11-30 淮安麦德森化学有限公司 一种粗品肝素钠的纯化方法
CN101824446B (zh) * 2010-02-24 2012-12-12 淮安麦德森化学有限公司 反向沉淀生产硫酸软骨素的方法
EP2399592A1 (en) 2010-06-25 2011-12-28 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for use as an antithrombotic treatment in hip replacement surgery with improved safety in terms of clinically relevant bleedings and major bleedings
EP2399590A1 (en) 2010-06-25 2011-12-28 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for the prevention of a mortality and/or morbidity event in a patient undergoing major orthopaedic surgery
EP2399591A1 (en) 2010-06-25 2011-12-28 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for the extended prevention of a mortality and/or morbidity event in a patient having undergone hip fracture surgery
EP2399593A1 (en) 2010-06-28 2011-12-28 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for use as an antithrombotic treatment in orthopaedic surgery with improved benefit-risk profile
CN102399379B (zh) * 2010-09-09 2016-08-31 上海喜恩医药科技发展有限公司 一种肝素衍生的多糖混合物及其制备方法和药物组合物
CN103209997B (zh) * 2010-09-14 2016-03-16 国立大学法人宫崎大学 高纯度肝素及其制备方法
WO2012055843A1 (en) 2010-10-28 2012-05-03 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for the prevention of major venous thromboembolism in a patient undergoing major abdominal surgery
EP2446891A1 (en) 2010-10-28 2012-05-02 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for use as an antithrombotic treatment in major abdominal surgery with improved safety in terms of clinically relevant bleedings and major bleedings
EP2548561A1 (en) 2011-07-22 2013-01-23 Aventis Pharma S.A. Semuloparin for improving the survival of patients with locally advanced cancer
ES2445494B1 (es) * 2012-08-02 2015-03-06 Rovi Lab Farmaceut Sa Procedimiento de obtención de heparinas de bajo y muy bajo peso molecular
CN103175925B (zh) * 2013-03-20 2014-12-03 山东辰中生物制药有限公司 依诺肝素钠生产过程中肝素苄基酯的酯化率的检测方法
FR3016632A1 (fr) * 2014-01-21 2015-07-24 IFP Energies Nouvelles Procede de transformation de polysaccharides en molecules oxygenees en presence de superbases organiques neutres
CZ306662B6 (cs) * 2015-06-26 2017-04-26 Contipro A.S. Deriváty sulfatovaných polysacharidů, způsob jejich přípravy, způsob jejich modifikace a použití

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2478646A2 (fr) * 1980-03-20 1981-09-25 Choay Sa Composition mucopolysaccharidique ayant une activite regulatrice de la coagulation, medicament la contenant et procede pour l'obtenir
IL61201A (en) * 1979-10-05 1984-09-30 Choay Sa Oligosaccharides having no more than 8 saccharide moieties,their obtention from heparin and pharmaceutical compositions containing them
FR2482611B1 (fr) * 1980-05-14 1986-03-07 Pharmindustrie Nouveaux polysaccharides sulfates, procedes pour leur preparation et leur utilisation comme medicaments
US4916219A (en) * 1985-03-28 1990-04-10 University Of Iowa Research Foundation Oligosaccharide heparin fragments as inhibitors of complement cascade
EP0337327A1 (en) * 1988-04-09 1989-10-18 Bioiberica, S.A. Process for the preparation of new oligosaccharide fractions by controlled chemical depolimerization of heparin
ES2077533B1 (es) * 1994-02-28 1996-07-01 Bioiberica Procedimiento de obtencion de fracciones de oligosacaridos por despolimerizacion quimica de heparina.
JP4897991B2 (ja) * 1999-07-23 2012-03-14 ラボラトリオス ファルマセウティコス ロビ ソシエダッド アノニマ 超低分子量ヘパリン組成物
ES2161615B1 (es) * 1999-07-23 2003-03-16 Rovi Lab Farmaceut Sa Composiciones de heparinas de muy bajo peso molecular.

Also Published As

Publication number Publication date
EA005995B1 (ru) 2005-08-25
BR0112612B1 (pt) 2011-07-12
FR2811992B1 (fr) 2003-07-04
ES2347134T3 (es) 2010-10-26
KR20030040364A (ko) 2003-05-22
CN1447820A (zh) 2003-10-08
FR2811992A1 (fr) 2002-01-25
CA2416673C (fr) 2011-06-14
UA74836C2 (en) 2006-02-15
EP1307491A1 (fr) 2003-05-07
MXPA03000579A (es) 2003-06-06
JP2004504451A (ja) 2004-02-12
AR029865A1 (es) 2003-07-16
CY1110774T1 (el) 2015-06-10
HUP0300755A2 (hu) 2003-12-29
AU7760201A (en) 2002-02-05
AP2003002744A0 (en) 2003-03-31
WO2002008295A1 (fr) 2002-01-31
KR100853585B1 (ko) 2008-08-21
CN1230449C (zh) 2005-12-07
ATE470679T1 (de) 2010-06-15
PL365561A1 (pl) 2005-01-10
DK1307491T3 (da) 2010-10-11
PT1307491E (pt) 2010-09-10
TWI307278B (en) 2009-03-11
ECSP034442A (es) 2003-03-10
OA12340A (fr) 2006-05-15
DE60142340D1 (de) 2010-07-22
ES2347134T5 (es) 2014-06-24
BR0112612A (pt) 2003-07-29
CA2416673A1 (fr) 2002-01-31
MA26928A1 (fr) 2004-12-20
IL153922A0 (en) 2003-07-31
EA200300178A1 (ru) 2003-06-26
NO20030296D0 (no) 2003-01-20
HK1059273A1 (en) 2004-06-25
YU2903A (sh) 2006-03-03
HUP0300755A3 (en) 2004-03-01
SI1307491T1 (sl) 2010-10-29
JP5279160B2 (ja) 2013-09-04
EP1307491B1 (fr) 2010-06-09
CL2004001154A1 (es) 2005-05-27
IL153922A (en) 2010-05-17
EP1307491B2 (fr) 2014-05-07
NO20030296L (no) 2003-01-20
ZA200300898B (en) 2004-04-30
AP1703A (en) 2007-02-26
DZ3411A1 (fr) 2002-01-31
NZ524028A (en) 2004-12-24
AU2001277602B2 (en) 2007-07-19
HRP20030019A2 (en) 2005-10-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL202471B1 (pl) Mieszaniny siarczanowanych polisacharydów, sposób ich wytwarzania oraz kompozycja farmaceutyczna
US7812007B2 (en) Compositions of polysaccharides derived from heparin, their preparation and pharmaceutical compositions containing them
JP5389140B2 (ja) ヘパリン誘導多糖類混合物、その製造およびそれを含有する医薬組成物
US8003623B2 (en) Mixtures of sulfated oligosaccharides
JP4865552B2 (ja) ヘパリン−誘導オリゴ糖混合物、その製造およびその混合物を含有する医薬組成物
KR101104107B1 (ko) 헤파린으로부터 유도된 다당류의 혼합물, 이의 제조방법 및이를 함유하는 약제학적 조성물
NZ537411A (en) Heparin-derived polysaccharide mixtures and preparation method

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130718