PL201401B1 - Unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra - Google Patents

Unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra

Info

Publication number
PL201401B1
PL201401B1 PL364980A PL36498099A PL201401B1 PL 201401 B1 PL201401 B1 PL 201401B1 PL 364980 A PL364980 A PL 364980A PL 36498099 A PL36498099 A PL 36498099A PL 201401 B1 PL201401 B1 PL 201401B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
keratinocytes
medium
culture
serum
immortalized
Prior art date
Application number
PL364980A
Other languages
English (en)
Other versions
PL364980A1 (pl
Inventor
Markus Baur
Original Assignee
Nestle Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nestle Sa filed Critical Nestle Sa
Publication of PL364980A1 publication Critical patent/PL364980A1/pl
Publication of PL201401B1 publication Critical patent/PL201401B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/10Cells modified by introduction of foreign genetic material
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0625Epidermal cells, skin cells; Cells of the oral mucosa
    • C12N5/0629Keratinocytes; Whole skin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • C12N2500/12Light metals, i.e. alkali, alkaline earth, Be, Al, Mg
    • C12N2500/14Calcium; Ca chelators; Calcitonin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30Organic components
    • C12N2500/38Vitamins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/11Epidermal growth factor [EGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2503/00Use of cells in diagnostics
    • C12N2503/04Screening or testing on artificial tissues
    • C12N2503/06Screening or testing on artificial skin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00Genetically modified cells
    • C12N2510/04Immortalised cells

Abstract

Linia ludzkich keratynocytów unie smiertelniona przy u zyciu przynajmniej jednego funkcjonalnego genu nowotworowego pochodzenia retrowirusowego, charakteryzuj aca si e tym, ze (1) nie tworzy guzów; (2) zachowuje zdolno sc do ró znicowania i ekspresji bia lek i enzymów wyra zanych przez normalnie zró znicowane keratynocyty nawet po zwi ekszonej liczbie pasa zy w hodowli, gdzie zwi ekszona liczba pasa zy obejmuje co najmniej 10 pasa zy; i (3) tworzy warstwowy i spolaryzowany naskórek zawieraj acy orto-keratynocyty stratum corneum po typowej hodowli organicznej w po zywce bez surowicy i bez warstwy komórek zywicielskich (od zywczych). Ulepszony sposób unie smiertelniania komórek skóry ludzkiej w celu otrzymania unie smiertelnionych keratynocytów, charak- teryzuj acy si e tym, ze obejmuje nast epuj ace etapy: (i) wytworzenia próbki otrzymanej z ludzkiej skóry do hodowli in vitro; (ii) otrzymania keratynocytów z tej wytworzonej próbki tkanki skóry i wysianie keratynocytów na po zywk e wzrostow a bez surowicy na p lytkach hodowlanych dostarczonych z pow loczk a fibronektyny, kolagenu typu I i BSA, która u latwia przyleganie i wzrost komórek; (iii) wymiana po zywki w sposób wystarczaj acy do otrzymania optymalnego konfluentnego wzrostu komórek w hodowli, nieprzerwanie utrzymuj ac pow loczk e na p lytce; (iv) przeniesienie powsta lych unie smiertelnionych keratynocytów z po zywki selekcyjnej bez surowicy na p lytki hodow- lane powleczone poprzednio w podobny sposób; (v) zaka zania keratynocytów z zastosowaniem funkcjonalnych genów nowotworowych co najmniej wirusa SV 40 i wirusa ludzkiego brodawczaka 16; (vi) przeniesienie powsta- lych unie smiertelnionych keratynocytów do po zywki proliferacyjnej bez surowicy odpowiedniej do namna zania unie smiertelnionych keratynocytów na p lytkach hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób; i (vii) przeniesienia powsta lych unie smiertelnionych keratynocytów na po zywk e ró znicuj ac a bez surowicy o wysokiej zawarto sci wapnia do pojemników hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób. Zastosowanie keratynocytów do immunologicznych, farmakologicznych, foto- i chemio-toksykologicznych analiz reakcji skóry i do wyra zania genów heterologicznych oraz sztuczna skóra. PL PL PL PL

Description

Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (22) Data zgłoszenia: 07.04.1999 (86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego:
07.04.1999, PCT/EP99/02347 (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:
28.10.1999, WO99/54435 PCT Gazette nr 43/99 (51) Int.Cl.
C12N 5/10 (2006.01) C12N 5/22 (2006.01) C12N 1/00 (2006.01) C12N 5/08 (2006.01)
Unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra
(30) Pierwszeństwo: 17.04.1998,EP,98201247.8 (73) Uprawniony z patentu: SOCIETE DES PRODUITS NESTLE,Vevey,CH
(43) Zgłoszenie ogłoszono: 27.12.2004 BUP 26/04 (72) Twórca(y) wynalazku: Markus Baur,Epalinges,CH
(45) O udzieleniu patentu ogłoszono: 30.04.2009 WUP 04/09 (74) Pełnomocnik: Janina Kossowska, PATPOL Sp. z o.o.
(57) Linia ludzkich keratynocytów unieśmiertelniona przy użyciu przynajmniej jednego funkcjonalnego genu nowotworowego pochodzenia retrowirusowego, charakteryzująca się tym, że (1) nie tworzy guzów; (2) zachowuje zdolność do różnicowania i ekspresji białek i enzymów wyrażanych przez normalnie zróżnicowane keratynocyty nawet po zwiększonej liczbie pasaży w hodowli, gdzie zwiększona liczba pasaży obejmuje co najmniej 10 pasaży; i (3) tworzy warstwowy i spolaryzowany naskórek zawierający orto-keratynocyty stratum corneum po typowej hodowli organicznej w pożywce bez surowicy i bez warstwy komórek żywicielskich (odżywczych). Ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej w celu otrzymania unieśmiertelnionych keratynocytów, charakteryzujący się tym, że obejmuje następujące etapy: (i) wytworzenia próbki otrzymanej z ludzkiej skóry do hodowli in vitro; (ii) otrzymania keratynocytów z tej wytworzonej próbki tkanki skóry i wysianie keratynocytów na pożywkę wzrostową bez surowicy na płytkach hodowlanych dostarczonych z powłoczką fibronektyny, kolagenu typu I i BSA, która ułatwia przyleganie i wzrost komórek; (iii) wymiana poż ywki w sposób wystarczający do otrzymania optymalnego konfluentnego wzrostu komórek w hodowli, nieprzerwanie utrzymując powłoczkę na płytce; (iv) przeniesienie powstałych unieśmiertelnionych keratynocytów z pożywki selekcyjnej bez surowicy na płytki hodowlane powleczone poprzednio w podobny sposób; (v) zakażania keratynocytów z zastosowaniem funkcjonalnych genów nowotworowych co najmniej wirusa SV 40 i wirusa ludzkiego brodawczaka 16; (vi) przeniesienie powstałych unieśmiertelnionych keratynocytów do pożywki proliferacyjnej bez surowicy odpowiedniej do namnażania unieśmiertelnionych keratynocytów na płytkach hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób; i (vii) przeniesienia powstałych unieśmiertelnionych keratynocytów na pożywkę różnicującą bez surowicy o wysokiej zawartości wapnia do pojemników hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób. Zastosowanie keratynocytów do immunologicznych, farmakologicznych, foto- i chemio-toksykologicznych analiz reakcji skóry i do wyrażania genów heterologicznych oraz sztuczna skóra.
PL 201 401 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra. Wynalazek dotyczy nowych, unieśmiertelnionych linii komórkowych pochodzących z tkanek normalnej ludzkiej skóry, wykazujących ulepszoną charakterystykę różnicowania, nowego sposobu wytwarzania takich linii komórkowych i ich różnych zastosowań, w szczególności w dziedzinie wytwarzania sztucznej skóry.
Wytwarzanie unieśmiertelnionych linii komórkowych pochodzących z normalnych tkanek skóry ludzkiej już uprzednio opisano. Na ogół, sposoby stosowane do takich celów obejmują transformację komórek skóry ludzkiej, np. keratynocytów i melanocytów, które hoduje się in vitro z czynnikami zapewniającymi unieśmiertelnienie. Unieśmiertelnienie dotyczy wytwarzania komórek, które można hodować przez dłuższy czas in vitro z czynnikami, które zapewniają unieśmiertelnienie. Unieśmiertelnienie dotyczy wytwarzania komórek, które mogą być hodowane przez przedłużony czas in vitro, teoretycznie w nieskończoność. Komórki te są również określane jako linie komórkowe ciągłe. Przeciwnie, komórki nieuśmiertelnione są zdolne do wzrostu tylko przez ograniczoną liczbę podziałów komórkowych in vitro. Komórki unieśmiertelnione są niezwykle korzystne, ponieważ zapewniają stabilne, potencjalnie nieograniczone źródło komórek o określonej charakterystyce. Typowe czynniki do wytwarzania unieśmiertelnionych linii komórkowych i linii unieśmiertelnionych komórek skóry ludzkiej w szczególności obejmują, np. wirusy, rekombinowane wirusy i plazmidy zawierające sekwencje DNA zapewniające unieśmiertelnienie.
Najpowszechniejszy sposób wytwarzania unieśmiertelnionych ludzkich linii komórkowych obejmuje prawdopodobnie zastosowanie sekwencji Simian Virus 40 (SV40), zaś bardziej konkretnie DNA wielkiego antygenu T SV40 (T-Ag), jako środka unieśmiertelniającego. Przykładowo, Steinberg i in., J. Cell Phys., 123,117-125 (1985); patent USA nr 4,885,238 (Reddel i in.); patent USA nr 4,707,448 (Major); Stoner i in., Cancer Res., 51:365-371 (1991); Chopra i in., In vitro Cell Dev. Biol., 30A:539-546 (1994); Chopra i in., In vitro Cell Dev. Biol., 27A:763-765 (1991); Christian i in., Cancer Res., 47:60666073 (1987); Rhim i in., Science, 227:1250-1252 (1985); i Grubman i in., Gastrointest. Liver Physiol., 29:G1060-G1070 (1994) opisują zastosowanie wektorów SV40 i wektorów zawierających sekwencje wielkiego antygenu T SV40 do wytwarzania unieśmiertelnionych ludzkich linii komórkowych. Wprowadzanie takich sekwencji przeprowadza się zwykle przez zakażenie z użyciem wirusa SV40 albo hybrydy adenowirusa 12/S%40 albo przez transfekowanie komórek rekombinowany plazmidem zawierającym długie końcowe powtórzenia wirusa mięsaka Rousa i region wczesny Ori-SV 40 metodą koprecypitacji fosforanem strontu (patrz, Brash i in., Mol. Cell Biol., 7:2031-2034 (1987)).
Inny znany sposób wytwarzania unieśmiertelnionych linii komórkowych, a szczególnie unieśmiertelnionych linii keratynocytów, obejmuje transfekcję albo zakażenie komórek sekwencjami DNA wirusa ludzkiego brodawczaka (HPV). Przykładowo, w patencie USA nr 5,376,542 (Schlegel), opisano unieśmiertelnienie ludzkich komórek nabłonkowych genami E6 i E7 wyizolowanymi z HPV-16, 18, 31, albo 35 albo samym genem E7, w celu wytworzenia unieśmiertelnionej linii komórkowej nie tworzącej guzów. Ponadto Barbosa i in., Oncogene, 4:1529-1532 (1989); i Mϋenger i in., J. Virol., 63 (10): 4417-4421 (1989) opisują zastosowanie genów E6 i E7 HPY-16 i HPV-18 do wytwarzania unieśmiertelnionych keratynocytów ludzkich. Ponadto, Dϋrst i in. Oncogene, l, 251-256 (1987) opisują unieśmiertelnione keratynocyty z wirusa brodawczaka typu 16.
Jednakże, o ile liczne grupy donoszą o unieśmiertelnionych liniach komórkowych keratynocytów, i ich zastosowaniu w testach in vitro, uprzednio unieśmiertelnione linie komórkowe keratynocytów według stanu techniki wykazywały zwykle jedną albo wiele cech sprawiających, że ich zastosowanie jest niekorzystne. Przykładowo, uprzednio opisywane unieśmiertelnione keratynocyty wykazywały jedną albo więcej z poniższych cech: (i) zmniejszenie albo utratę ekspresji znaczników różnicowania np. białek, które są wyrażane przez normalnie zróżnicowane keratynocyty, i (ii) zmienioną charakterystykę wzrostu w hodowli tkankowej i (iii) tworzenie warstwowego i spolaryzowanego nabłonka, zawierającego parakeratynocyty stratum corneum.
W celu wyeliminowania tych wad w EP 780,469 (Societe des Produits Nestle) zaproponowano nowy sposób unieśmiertelniania keratynocytów albo ludzkich melanocytów przy użyciu en sus nowej pożywki hodowlanej, wektora pLXSHD+SV40 (#328), który pochodzi z wirusa SV40 albo również z wektora pLXSHD+E6/E7, który pochodzi z wirusa brodawczaka ludzkiego 16 (HPV-16). Unieśmiertelnione komórki uzyskane w ten sposób zachowują właściwość różnicowania się i ekspresji białek
PL 201 401 B1 oraz enzymów, które są wyrażane przez normalne zróżnicowane keratynocyty i melanocyty, nawet po znacznej liczbie pasaży w hodowli.
Jednakże, pomimo poprzednich opisów, wciąż istnieje w dziedzinie praktycznej istotna potrzeba ludzkich unieśmiertelnionych keratynocytów mających jeszcze bardziej złagodzone właściwości. Komórki takie byłyby niezwykle korzystne dla wielu zastosowań, w szczególności do analiz, w których potrzebne są wysoko zróżnicowane komórki skóry. Wynalazek dotyczy linii ludzkich keratynocytów unieśmiertelnionej przy użyciu funkcjonalnych genów nowotworowych pochodzących z co najmniej wirusa SV40 i wirusa brodawczaka 16, która (1) nie tworzy guzów;
(2) zachowuje zdolność do różnicowania i ekspresji białek i enzymów wyrażanych przez normalnie zróżnicowane keratynocyty nawet po zwiększonej liczbie pasaży w hodowli, gdzie zwiększona liczba pasaży obejmuje co najmniej 10 pasaży; i (3) tworzy warstwowy i spolaryzowany naskórek zawierający orto-keratynocyty stratum corneum po hodowli w typowej organicznej pożywce bez surowicy i bez warstwy komórek żywicielskich (odżywczych).
Korzystnie każdy funkcjonalny gen nowotworowy jest zawarty w niezależnym konstrukcie retrowirusowym.
Korzystna jest linia DK7-NR o numerze depozytowym CNCM I-1996 zgodnie z Traktatem Budapeszteńskim.
Ponadto wynalazek dotyczy ulepszonego sposobu unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej w celu otrzymania unieśmiertelnionych keratynocytów, który obejmuje następujące etapy:
(i) wytworzenie próbki otrzymanej z tkanki skóry ludzkiej do hodowli in vitro;
(ii) otrzymanie keratynocytów z tej wytworzonej próbki tkanki skóry i wysianie keratynocytów na pożywkę wzrostową bez surowicy na płytkach hodowlanych dostarczonych z powłoczką fibonektyny, kolagenu typu I i BSA, która ułatwia przyleganie i wzrost komórek;
(iii) wymiana pożywki w sposób wystarczający do otrzymania optymalnego konfluentnego wzrostu komórek w hodowli, nieprzerwanie utrzymując powłoczkę na płytce;
(iv) przeniesienie keratynocytów z pożywki selektywnej bez surowicy na płytki hodowlane powleczone poprzednio w podobny sposób;
(v) zakażanie keratynocytów z zastosowaniem funkcjonalnych genów nowotworowych co najmniej wirusa SV 40 i wirusa ludzkiego brodawczaka 16;
(vi) przeniesienie powstałych unieśmiertelnionych keratynocytów do pożywki proliferacyjnej bez surowicy odpowiedniej do namnażania unieśmiertelnionych keratynocytów na płytkach hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób;
(vii) przeniesienie powstałych unieśmiertelnionych keratynocytów na pożywkę różnicującą bez surowicy, o wysokiej zawartości wapnia do pojemników hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób.
Korzystnie każdy funkcjonalny gen nowotworowy jest zawarty w niezależnym konstrukcie retrowirusowym.
Korzystnie zastosowane konstrukty retrowirusowe są wektorami pLXSHD+SV40 (#328) i pLXSHD+E6/E7 zawierają cymi T-Ag SV40, dł ugie sekwencje terminalne 5' i 3' SV40, sekwencje pB322, które umożliwiają replikację E. coli, miejsce wielokrotnego klonowania, sekwencję poliadenylacji SV40 i inne sekwencje, a wektor pLXSHD+E6/E7 zawiera w miejscu genu kodującego antygen T fragment NcoI/CfoI genu E6/E7 pochodzący z wirusa ludzkiego brodawczaka 16.
Korzystnie pożywką bez surowicy w etapie (ii), (iv) lub (vi) jest pożywka NR-3 lub pożywką różnicującą w etapie (vii) jest modyfikowana pożywka NR-2 o stężeniu wapnia co najmniej 1,5 mM.
W zakres wynalazku wchodzi również zastosowanie keratynocytów wedł ug wynalazku do immunologicznych, farmakologicznych, foto i chemio-toksykologicznych analiz reakcji skóry i do wyrażania heterologicznych genów.
Korzystnie stosowana jest linia DK7-NR o numerze depozytu CNCM I-1996 zgodnie z Traktatem Budapeszteńskim.
Wynalazek dotyczy też sztucznej skóry, która obejmuje linię keratynocytów według wynalazku korzystnie linię komórkową DK7-NR o numerze depozytu CNCM I-1996 zgodnie z Traktatem Budapeszteńskim.
PL 201 401 B1
Opis figur
Na Fig. 1 przedstawiono konstrukcję pochodnej poliomawirusa SV40, plazmidu pLXSHD+SV40 (#328) zastosowaną do unieśmiertelnienia keratynocytów według wynalazku.
Fig. 2 przedstawia konstrukcję pochodzącą z wirusa brodawczaków 16, plazmidu pLXSHD+E6/E7 zastosowaną do unieśmiertelnienia keratynocytów według wynalazku.
Wynalazek dotyczy nieonkogennych, unieśmiertelnionych linii komórkowych keratynocytów, tzn. linii komórkowych, które nie tworzą guzów po wstrzyknięciu pod skórę zwierzęcia, przy zastosowaniu na przykład przynajmniej 2x106 komórek na każde wstrzyknięcie.
Te linie komórkowe zachowują zdolność do różnicowania się oraz wyrażania białek różnicowania wyrażanych przez normalne keratynocyty nawet po zwiększonej liczbie pasaży. Wyrażenie „zwiększona liczba pasaży” w znaczeniu tu stosowanym oznacza przynajmniej 10 pasaży w hodowli, korzystnie przynajmniej 20 do 30 pasaży, jeszcze korzystniej przynajmniej 50 pasaży, zaś teoretycznie nieograniczoną liczbę pasaży. Przykładowo, unieśmiertelnione keratynocyty wytworzone według wynalazku zachowują zdolność do wyrażania białek różnicowania składających się z keratyny K1/10, keratyny K14, inwolukryny, filagryny i lorikryny nawet po zwiększonej liczbie pasaży w hodowli tkankowej.
Unieśmiertelnione keratynocyty według wynalazku wykazują profil cytochromu p450 (CYP450), który jest podobny, jeżeli nie identyczny, z profilem normalnych keratynocytów. Przykładowo, komórki te wyrażają CYP450 1A1, 2E1, 2C18 i 3A5. Ponadto, unieśmiertelnione keratynocyty według wynalazku wyrażają enzymy fazy II, np. transferazę π S-glutationu (GSTn) w sposób porównywalny z normalnymi nieunieśmiertelnionymi keratynocytami.
Ponadto, unieśmiertelnione keratynocyty według niniejszego wynalazku wyrażają białka i enzymy związane z utlenianiem komórkowym i reakcjami zapalnymi, np. dysmutazę nadtlenkową (SOD) i kolagenazę typu I oraz czynnik martwicy nowotworów alfa (TNF-α) po traktowaniu estrami forbolu, w podobny albo identyczny sposób jak normalne zróżnicowane keratynocyty. W oparciu o te charakterystyki, te linie komórkowe reprezentują niezwykle stabilne i namnażalne źródło komórek dla badań immunologicznych, farmakologicznych, zapalnych, foto- i chemo-toksykologicznych reakcji skórnych.
Ponadto, linie unieśmiertelnionych keratynocytów według wynalazku tworzą, w hodowli organotypowej w pożywce bezsurowiczej (przykładowo, pożywce NR2, Biofluids, Inc., USA wzbogaconej w EGF (5 ng/ml), witaminę C (38 μg/ml) i CaCl2 (1,5 mM) bez warstwy komórek żywicielskich (bez fibroblastów), warstwowy i spolaryzowany nabłonek o powierzchniowych warstwach skeratynizowanych, tzw. stratum corneum o morfologii orto-keratynocytów, co oznacza, że stratum corneum jest pozbawiona komórek jądrzastych, tj. komórek zawierających jądra.
Preparat warstwowego i spolaryzowanego nabłonka z unieśmiertelnionych keratynocytów uprzednio uzyskano w klasycznych warunkach hodowli, tj. techniką wykorzystującą pożywkę zawierającą surowicę bydlęcą i warstwę komórek żywicielskich (Lechner i in., Virology, 185:536-571, 1991). Mimo to, unieśmiertelnione komórki nie tworzą normalnych powierzchniowo zrogowaciałych warstw. Przykładowo, linie komórkowe unieśmiertelnione wirusem brodawczaków 16 albo 18 albo E6/E7 tworzą, jak wiadomo, bardzo zdezorganizowane nabłonki (Blanton i in., Am. J. Pathol., 138:673-685, 1991; Hudson i in., J. Virol., 64:519-526, 1990; McCane i in., Proc. Natl. Acad. Sci. 85:7169-7173, 1988; Woodworth i in., Oncogene 7:619-626, 1992).
W przeciwieństwie do powyższego, linie opisane w EP780496 (Societe des Produits Nestle), hodowane w typowej hodowli organicznej w pożywce bezsurowiczej oraz bez warstwy komórek żywicielskich, wytworzyły warstwowy i spolaryzowany nabłonek o normalnych skeratynizowanych warstwach powierzchniowych, ale jednak o morfologii para-keratynocytów, tzn. stratum corneum zawierała komórki wciąż posiadające jądra.
Unieśmiertelnione keratynocyty według niniejszego wynalazku pochłaniają również egzogenne niezbędne kwasy tłuszczowe (AGE) i prezentują stan nienasycenia i przedłużenia łańcuchów AGE doskonale odpowiadające stanowi nienasycenia i przedłużeniu łańcucha normalnych keratynocytów.
Ogólnie, unieśmiertelnione keratynocyty według wynalazku można otrzymać sposobem według wynalazku.
Konkretnie, etap (i) zwykle obejmuje uzyskanie próbki tkanki skóry ludzkiej od dawców ludzkich, np. próbki otrzymanej podczas zabiegu chirurgicznego albo pediatrycznego. Unieśmiertelnianie pojedynczej próbki komórek skóry, tj. autologicznej próbki komórek skóry umożliwia wytwarzanie unieśmiertelnionych linii komórkowych keratynocytów, które wykazują określone cechy, np. profil konkretnego receptora, który jest charakterystyczny dla konkretnego dawcy.
PL 201 401 B1
Próbkę tkanki skóry preparuje się następnie w etapie (i) w taki sposób, który jest odpowiedni do hodowli in vitro. Dokonuje się tego korzystnie przez wstępne płukanie próbki skóry, np. przy użyciu tej samej pożywki, którą stosuje się do hodowli. Korzystnie dokonuje się tego w pożywce NR-2, bezsurowiczej pożywce, której dokładny skład ujawniono w EP 780,496 i która okazała się korzystna do hodowania normalnych keratynocytów. Po płukaniu, próbkę skóry korzystnie goli się, np. dermatomem, a nastę pnie dzieli na mał e kawał ki.
Powstałe skrawki skóry następnie korzystnie rozdziela się na skórę właściwą i naskórek. Można tego dokonać czynnikami fizycznymi i/lub enzymatycznymi. Przykładowo, można to osiągnąć przez trypsynizację, np. przez flotację próbek tkanki skóry w roztworze trypsyny (np. około 0,5%) zawierającym EDTA (np. około 0,1%) przez czas odpowiednio długi do rozdzielenia komórek, np. około 30-60 minut w 37°C albo przez noc w 4°C.
Skórę właściwą oddziela się, a naskórek umieszcza się następnie w pożywce w celu uzyskania zawiesiny. Korzystnie, pożywka do uzyskania zawiesiny zawiera roztwór inhibitora trypsyny z soi (SBTI) i jest umieszczana w kontakcie z komórkami na czas wystarczający, zwykle około 5 minut, do inaktywacji trypsyny i zapewnienia uwalniania komórek. Następnie dodaje się pożywkę do hodowli komórkowej, korzystnie bezsurowiczą pożywkę NR-2 (opisaną w EP 780 496) i filtruje (np. filtr 100 nm) w celu uzyskania żądanych komórek, tj. keratynocytów.
Uzyskane pierwotne keratynocyty wysiewa się na pożywkę bezsurowiczą, korzystnie pożywkę NR-3 (opisaną szczegółowo w EP 780 496), w odpowiedniej gęstości komórek, korzystnie około 1,2x104 komórek/cm2, na uprzednio powleczone płytki hodowlane. Jednakże, gęstość komórek może być zmieniana w szerokim zakresie. Płytki hodowlane są korzystnie powlekane kompozycją, która zwiększa przyleganie i wzrost keratynocytów, konkretnie roztworem fibronektyny, BSA i kolagenu I.
W etapie (iii) pożywkę hodowlaną zmienia się tak często jak wymaga tego optymalizacja wzrostu komórek. Korzystnie, pożywkę zmienia się co około dwa dni. Jednakże, może się to zmieniać w zależnoś ci od konkretnego rodzaju skóry. Po osią gnię ciu niemal cał kowitej zlewnoś ci, np. okoł o 90% zlewności, co zwykle zachodzi po około 10-14 dniach, rozdziela się keratynocyty i melanocyty. Można to osiągnąć dowolnym sposobem pozwalającym na odpowiednie rozdzielenie komórek bez negatywnego wpływu na keratynocyty i melanocyty. Przykładowo, można to osiągnąć przez różnicową trypsynizację. Korzystnie, melanocyty lub keratynocyty traktuje się roztworem trypsyna/EDTA, a następnie przenosi się do pożywki selekcjonującej. W przypadku keratynocytów, komórki korzystnie traktuje się przez około 5-10 minut roztworem trypsyna/EDTA (0,025%/0,01%), a następnie w etapie (iv) wysiewa się w pożywce NR-3 na wcześniej powleczone płytki.
Następnie, keratynocyty traktuje się czynnikiem unieśmiertelniającym. Komórki można również zamrozić, dopóki się ich nie unieśmiertelni, np. w ciekłym azocie. Zakażenie i unieśmiertelnienie jest korzystnie osiągane przez zastosowanie funkcjonalnych genów nowotworowych przynajmniej dwóch wirusów takich jak T-Ag z wirusa SV40 i E6/E7 z HPV16. Każdy z tych genów może występować na niezależnym konstrukcie, przykładowo w wektorze pLXSHD+SV40 (#328), przedstawionym na Fig. 1 i opisanym został przez Stockshlaedera i in., (GeneBank, nr dostępu M64753; Human Gene Therapy, 2:33-39 (1991)) albo w wektorze pLXSHD+E6/E7, który przedstawiono na Figurze 2.
Wektor pLXSHD+SV40 (#328) zawiera między innymi, sekwencję T-Ag z SV40, długie sekwencje LTR 5' i 3'końcowych powtórzeń SV40, sekwencje pBR322, zapewniające replikację w E. coli, miejsce klonowania, sekwencję poliadenylacji SV40.
Wektor pLXSHD+E6/E7 zawiera fragment NcoI/CfoI genu E6/E7 wirusa ludzkiego brodawczaka 16 w miejscu genu kodują cego antygen T.
Po unieśmiertelnieniu, komórki następnie poddaje się koniecznej liczbie pasaży w trakcie hodowli, zaś uzyskane unieśmiertelnione komórki przenosi się do pożywki proliferacyjnej w etapie (vi). Przeniesienie to korzystnie przeprowadza się w trakcie 2 pasażu. Pożywką proliferacyjną może być pożywka bezsurowicza, korzystnie NR-2 albo NR-3. Unieśmiertelnione komórki hoduje się w sposób ciągły na powleczonych wcześniej płytkach hodowlanych, przy czym powleczenie obejmuje znów roztwór fibronektyny, SAB i kolagenu typu I.
Po namnożeniu unieśmiertelnionych komórek w pożywce proliferacyjnej (korzystnie NR-2), przenosi się je w etapie (vii) do pożywki, która zapewnia różnicowanie normalnych i unieśmiertelnionych keratynocytów, korzystnie do pożywki naśladującej warunki występujące powszechnie w skórze, powodując w ten sposób organizowanie się keratynocytów w postaci warstwowego i spolaryzowanego nabłonka o normalnych, powierzchniowych warstwach zrogowaciałych. Korzystnie, komórki można hodować w pożywce bezsurowiczej zawierającej wysokie stężenie wapnia, jak NR-2, korzystnie około
PL 201 401 B1
1,5 mM wapnia, około 5 ng/ml EGF i około 38 ^g/ml witaminy C, przez 2-3 tygodnie na płytkach na granicy cieczy i powietrza, przykładowo na płytkach z 12 studzienkami Falcon Nr. 3043, przy czym każda studzienka posiada wkładkę Falcon Nr. 3180, przy czym keratynocyty rozwijają się na granicy cieczy i powietrza. Powietrze składa się z powietrza atmosferycznego w wewnętrznej przestrzeni wkładki, w której nie ma pożywki odżywczej. Cieczą jest pożywka odżywcza zawarta w studzience i przechodząca przez błonę wkładki, na której rozwijają się keratynocyty.
Unieśmiertelnione keratynocyty mają właściwości, które doskonale nadają się do wykorzystania w badaniach immunologicznych, farmakologicznych, foto- i chemiotoksykologicznych nad reakcjami skórnymi. Przykładowo, unieśmiertelnione linie komórkowe keratynocytów według niniejszego wynalazku można zastosować w testach, które wymagają zróżnicowanych komórek skóry, np. badań nad funkcją barierową (rogowacenie) zrekonstruowanej skóry, badań metabolizmu zróżnicowanych keratynocytów (metabolizm kwasów tłuszczowych, metabolizm środków przeciwutleniających), badań dotyczących wpływu promieniowania ultrafioletowego na komórki skóry, badań dotyczących wpływu potencjalnie drażniących skórę substancji i czynników uczulających skórę, badań metabolizmu lipidów, miejscowego zastosowania ksenobiotyków (np. olejów kosmetycznych, przez poszukiwania potencjalnych związków ochronnych, np. fotoochronnych), badań stanu zapalnego i podrażnienia skóry, itp.
Ponadto, linie komórkowe unieśmiertelnionych keratynocytów wytworzone według wynalazku są przydatne do poszukiwania potencjalnych związków antynowotworowych i potencjalnych związków do leczenia chorób skóry. Obejmuje to zwykle eksponowanie linii komórkowej na taki związek przez pewien czas i ocenę czy wywołuje on jakikolwiek niekorzystny efekt, np. genotoksyczność, tworzenia adduktów DNA, mutagenność, transformację komórek albo cytotoksyczność.
Ponadto, linie komórkowe unieśmiertelnionych keratynocytów według wynalazku mogą mieć zastosowanie w testach mutagenezy DNA, testach przesiewowych na mutageny skórne, testach identyfikujących czynniki uszkadzające chromosomy, badaniach transformacji złośliwej, komórkowych badaniach biochemicznych (np. testach aktywacji CYP450), badaniach przesiewowych związków i kompozycji, np. koktajli niezbędnych kwasów tłuszczowych, związanych ze stanem zapalnym i reakcjami alergicznymi, testach aktywacji kolagenazy (w związku ze stanem zapalnym), obejmujących wykrywanie TNFa i interleukiny.
Ponieważ linie według wynalazku tworzą orto-keratynocyty stratum corneum, szczególnie dobrze nadają się do wytwarzania sztucznej skóry, do badań nad mutagennością, badań immunologicznych, farmakologicznych, foto- i chemio-toksykologicznych, wymienionych powyżej. Taka skóra może składać się tylko z naskórka keratynocytów według wynalazku, ale korzystnie obejmuje również kolagen, fibroblasty, a nawet melanocyty, w celu osiągnięcia większego podobieństwa do skóry ludzkiej.
Ponadto, linie komórkowe keratynocytów według wynalazku są zdolne do wyrażania białek rekombinowanych, np. ludzkich białek i polipeptydów, jak również do wytwarzania RNA i DNA.
Spośród unieśmiertelnionych linii komórkowych keratynocytów według wynalazku zdeponowano jedynie przykładowo linię DK7-NR, na podstawie Traktatu Budapeszteńskiego, 19 marca, 1998 Collection Nationale de Microorganisme (CNCM), 25 rue de Docteur Roux 75724, Paryż, Francja, pod numerem CNCM I-1996. Wszystkie ograniczenia co do dostępności tej linii komórkowej zostaną natychmiast zniesione po wydaniu patentu na niniejsze zgłoszenie albo inne zgłoszenie korzystające z pierwszeństwa tego zgłoszenia.
Inne cechy wynalazku staną się oczywiste na podstawie opisu przykładowych wykonań, które podano w celu zilustrowania wynalazku, nie zaś w celu jego ograniczenia. O ile nie zaznaczono inaczej, manipulowanie komórkami, wytwarzanie wektorów transformowanie komórek i inne procedury techniczne przeprowadzono według protokołów opisanych w publikacji Sambrook i in., (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989).
P r z y k ł a d 1: Wytwarzanie i charakterystyka linii komórkowych
Pobrano tkanki skóry sutka. Po oddzieleniu części obejmującej skórę właściwą od naskórka, skórę właściwą pocięto na małe kawałki 0,2x0,2 mm i przytwierdzono do 6 cm płytki hodowlanej z surowicą. Dodano minimalnej pożywki Dulbecco (DMEM, 10% cielęcej surowicy płodowej) po 2-4 godzinach. Hodowlę eksplantatów inkubowano do momentu, gdy stał się widoczny intensywny wzrost fibroblastów. Hodowlę zlewną fibroblastów oddzielono i namnażano w celu uzyskania zamrożonych rezerwowych hodowli.
Pojemniki hodowlane, które powleczono w sposób ciągły „koktajlem” opisanym uprzednio dla komórek oskrzeli (Lechner i in., J. Tiss. Cult. Meth., 9:43-49 (1985) zasiedlono komórkami pierwotnymi. Po osiągnięciu niemal całkowitej zlewności, przykładowo 90% zlewności, która pojawia się zwykle
PL 201 401 B1 po okresie około 10 do 14 dni, oddzielono keratynocyty od melanocytów. W tym celu hodowlę traktowano przez 5 minut roztworem trypsyna /EDTA (0,025%/0,01%). Podczas tego traktowania, melanocyty odłączyły się od hodowli keratynocytów i zostały zebrane osobno.
Pierwotne keratynocyty hodowano następnie i namnażano do żądanej liczby komórek w bezsurowiczej pożywce NR-3, stosując opisane powleczone pojemniki hodowlane (pożywka NR-3 promuje wzrost keratynocytów w porównaniu z melanocytami).
Następnie komórki „linii pakującej fibroblastów 3T3” transfekowano plazmidami pLXSHD+SV40 (#328) i pLXSHD+E6/E7 według protokołu Pfeifer i in., (Meth. Cell Sci. 17:83-89 (1995); z takim wyjątkiem, że wirusy zebrano po obudowaniu w linię komórkową, która rosła w pożywce DMEM z 10% FCS). Następnie, keratynocyty zakażono wirusem w celu unieśmiertelnienia. Podczas zakażenia, zastosowano również bezsurowiczą pożywkę PC-1 opisaną w artykule Pfeifer i in. Po unieśmiertelnieniu linie komórkowe przeniesiono do pożywki proliferacyjnej NR-2 albo NR-3, stosując powleczone pojemniki hodowlane. Po namnożeniu komórek do żądanej liczby, komórki przeniesiono do pożywki różnicującej odpowiedniej do hodowania normalnych i unieśmiertelnionych keratynocytów (NR-2).
Można wykazać, że unieśmiertelnione keratynocyty wykazują łagodniejszy wzrost komórkowy przy zwiększonej liczbie pasaży w hodowli, co można porównać do opisanych dla linii komórkowych z EP 780496.
Ekspresję CYP450 1A1, 1A2, 3A5, 2E1, 2B6, 2A6 i 2D6 analizowano w liniach komórkowych skóry składających się z normalnych i unieśmiertelnionych keratynocytów metodą łańcuchowej polimerazy DNA w temperaturze pokojowej (ekspresja mRNA). Profil ekspresji CYP450 w unieśmiertelnionych keratynocytach był szczególnie podobny, nawet identyczny, do normalnych keratynocytów.
Linie komórkowe reagowały na czynnik indukujący CYP450, taki jak benz(a)piren w ten sam sposób jak komórki nieuśmiertelnione nawet po większej liczbie pasaży.
Analizowano znaczniki różnicowania przy użyciu swoistych przeciwciał przeciwko T-Ag, inwolukrynie, filagrynie, lorikrynie, wimentynie i keratynom K4, K7, K8, K10/1, K13, K14, K17, K18 i K19. Najwyższą zdolność prezentowania cech różnicowania wykazano dla linii komórkowej DK7-NR.
Transferazę S-glutationu (GST) analizowano techniką Northern i Western blot. Wszystkie linie keratynocytów silnie wyrażały mRNA dla GSTn. Profil ekspozycji na GSTa, GSTμ i GSTn w liniach komórkowych był podobny do profilu dla normalnych keratynocytów.
W celu analizy i porównania desaturacji i wydłużania dodanego AGE do keratynocytów, unieśmiertelnione (oraz normalne) keratynocyty traktowano kwasem linolowym (LA, 15 ^moli) i kwasem linolenowym (LN, 15 nM). Do tych doświadczeń zastosowano pożywkę NR-2 pozbawioną AEG (Biofluids, Inc.). Hodowle komórkowe traktowano po osiągnięciu zlewności i przenoszono z pożywki na NR-2 z wysokim stężeniem wapnia (1,5 mM). Komórki traktowano AGE przez 4 dni (zmiana po 2 dniach). Analizę AGE wykonano przez ekstrakcję i rozdział fosfolipidów przez TLC (chromatografia cienkowarstwowa) i oznaczenie ilościowe estrów metylowych kwasów tłuszczowych przez CGL (chromatografia gaz-ciecz). Można było wykazać tworzenie produktów desaturacji i wydłużania LA (20:4n-6 i 22:4n-6) oraz LN (20:5n-3, 22:5n-3 i 22:6n-3). Ten profil metaboliczny był zgodny z obserwowanym w normalnych keratynocytach.
Wszystkie komórki były hipodiploidalne z większością zliczeń chromosomów w przedziale komórek diploidalnych. Oprócz analizowanych komórek nie stwierdzono innych komórek w hodowli. Wynik ten potwierdza czystość linii komórkowych i brak zanieczyszczeń pochodzących z innych źródeł.
Zdolność do tworzenia guzów przez unieśmiertelnione keratynocyty określa się przez podskórne wstrzyknięcie (1-2x106 keratynocytów) myszom nagim. Linie badanych keratynocytów, zaś szczególnie DK7-NR nie tworzyły guzów u myszy nagich.
P r z y k ł a d 2: Wytwarzanie naskórka
Przygotowano pożywkę NR-2, zawierającą 750000 komórek linii komórkowej według przykładu 1. W tym celu 0,5 ml tej pożywki umieszczono we wkładkach Falcon Nr 3180, które umieszczono w studzienkach płytek Falcon Nr 3043 zawierających już po 2 ml świeżej pożywki NR-2, keratynocyty hodowano przez 2 dni w warunkach preferujących rozwój keratynocytów. Trzeciego dnia, pożywkę zawartą we wkładkach usunięto, zaś komórki pozostawiono na powietrzu. Pożywkę zawartą w studzienkach zmieniano co 2 dni na pożywkę NR-2 z dodatkiem EGF (5 ng/ml), witaminy C (38 μg/ml) i CaCl2 (1,5 mM). Po 2-3 tygodniach hodowli, na granicy powietrza i cieczy zebrano tworzący się w ten sposób naskórek, utrwalano kwasem pikrynowym i analizowano morfologię.
Wyniki pokazują, że linia komórkowa keratynocytów, w szczególności linia DK7-NR tworzy warstwowy i spolaryzowany naskórek, powszechnie zwany warstwą podstawną, zawierającą komórki
PL 201 401 B1 mające morfologię podobną do sześcianu identyczne z normalnymi komórkami. Warstwa stratum corneum przedstawia morfologię orto-keratynocytów, która jest morfologią pozbawioną komórek z jądrami. Tworzenie warstwy orto-keratynocytów nie było możliwe do tej pory przy użyciu innych unieśmiertelnionych linii komórkowych. Przykładowo, w identycznych warunkach, linia DK2-NR (EP 780496) tworzy stratum corneum z para-keratynocytami, w której warstwa zrogowaciałych komórek wciąż zawiera komórki z jądrami. Jedynie morfologia orto-keratynocytów stratum corneum odzwierciedla normalną sytuację w skórze ludzkiej. W rzeczywistości, para-keratynocyty stratum corneum charakteryzują się nieprawidłową hipertrofią nabłonka, co prowadzi do zaburzeń, takich jak np. łuszczyca albo nowotwór.
P r z y k ł a d 3: Test podrażnienia
Linie komórkowe uzyskane w przykładzie 1, w szczególności DK7-NR, hoduje się w pożywce NR-2. Indukcję „stresu genowego” TNFa (czynnik martwicy nowotworu alfa) po traktowaniu czynnikami drażniącymi skórę, w tym PMA (12-mirystynian-13-octan forbolu) i UV-B (promieniowanie ultrafioletowe B), analizuje się metodą Northern oraz testami biologicznymi. Wyniki pokazują, że linie komórkowe, zaś szczególnie linia DK7-NR, reagują na PMA i UV-B i wyrażają białko TNF-α nawet po zwiększonej liczbie pasaży.
P r z y k ł a d 4: Konstruowanie sztucznej skóry
Błona wkładki Falcon Nr 3180 zastępowana jest arkuszem estru benzylowego kwasu hialuronowego (Hyaff 11). Dno wkładki zasiewa się pierwotnymi ludzkimi fibroblastami (0,1x106 komórek w 0,2 ml pożywki), po 30 minutach wkładkę wypełnia się pożywką DMEM zawierającą 10% cielęcą surowicę płodową, inkubację prowadzi się w 37°C w atmosferze zawierającej 5% dwutlenku węgla przez kilka dni, wkładki opróżnia się i dodaje 0,5 ml świeżej pożywki NR-2 zawierającej 750000 komórek linii komórkowej DK7-NR, wkładki umieszcza się w studzienkach płytek Falcon Nr 3043 zawierających już 2 ml świeżej pożywki NR-2 i komórki hoduje się przez 2 dni w warunkach sprzyjających wzrostowi keratynocytów. Trzeciego dnia, pożywkę zawartą we wkładkach usuwa się i pozostawia komórki na świeżym powietrzu. Pożywkę w studzienkach zmienia się co 2 dni na pożywkę NR-2 uzupełnioną EGF (5 ng/ml), witaminą C (38 μg/ml) i CaCl2 (1,5 mM). Po 2-3 tygodniach hodowli na granicy faz powietrza i cieczy można zaobserwować wytworzenie się sztucznej skóry wykazującej charakterystykę normalnej skóry.

Claims (12)

Zastrzeżenia patentowe
1. Linia ludzkich kertynocytów unieśmiertelniona przy użyciu funkcjonalnych genów nowotworowych pochodzących z co najmniej wirusa SV40 i wirusa brodawczaka 16, która (1) nie tworzy guzów;
2. Linia komórkowa keratynocytów ludzkich według zastrz. 1, znamienna tym, że każdy funkcjonalny gen nowotworowy jest zawarty w niezależnym konstrukcie retrowirusowym.
(2) zachowuje zdolność do różnicowania i ekspresji białek i enzymów wyrażanych przez normalnie zróżnicowane keratynocyty nawet po zwiększonej liczbie pasaży w hodowli, gdzie zwiększona liczba pasaży obejmuje co najmniej 10 pasaży; i (3) tworzy warstwowy i spolaryzowany naskórek zawierający orto-keratynocyty stratum coroneum po hodowli w typowej ograniczonej pożywce bez surowicy i bez warstwy komórek żywicielskich (odżywczych).
3. Linia komórkowa keratynocytów ludzkich według zastrz. 1, znamienna tym, że jest linią DK7-NR o numerze depozytowym CNCM I-1996 zgodnie z Traktatem Budapeszteńskim.
4. Ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej w celu otrzymania unieśmiertelnionych keratynocytów, znamienny tym, że obejmuje następujące etapy:
(i) wytworzenie próbki otrzymanej z tkanki skóry ludzkiej do hodowli in vitro;
(ii) otrzymanie keratynocytów z tej wytworzonej próbki tkanki skóry i wysianie keratynocytów na pożywkę wzrostową bez surowicy na płytkach hodowlanych dostarczonych z powłoczką fibonektyny, kolagenu typu I i BSA, która ułatwia przyleganie i wzrost komórek;
(iii) wymiana pożywki w sposób wystarczający do otrzymania optymalnego konfluentnego wzrostu komórek w hodowli, nieprzerwanie utrzymując powłoczkę na płytce;
(iv) przeniesienie keratynocytów z pożywki selekcyjnej bez surowicy na płytki hodowlane powleczone poprzednio w podobny sposób;
PL 201 401 B1 (v) zakaż anie keratynocytów z zastosowaniem funkcjonalnych genów nowotworowych co najmniej wirusa SV 40 i wirusa ludzkiego brodawczaka 16;
(vi) przeniesienie powstał ych unieś miertelnionych keratynocytów do po ż ywki proliferacyjnej bez surowicy odpowiedniej do namnażania unieśmiertelnionych keratynocytów na płytkach hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób;
(vii) przeniesienie powstałych unieś miertelnionych keratynocytów na pożywkę różnicującą bez surowicy, o wysokiej zawartości wapnia do pojemników hodowlanych powleczonych poprzednio w podobny sposób.
5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że każdy funkcjonalny gen nowotworowy jest zawarty w niezależnym konstrukcie retrowirusowym.
6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że zastosowane konstrukty retrowirusowe są wektorami pLXSHD+SV40(#328) i pLXSHD+E6/E7 zawierającymi T-Ag SV40, długie sekwencje terminalne 5' i 3'SV40, sekwencje pBR322, które umożliwiają replikację E. coli, miejsce wielokrotnego klonowania, sekwencję poliadenylacji SV40 i inne sekwencje, a wektor pLXSHD+E6/E7 zawiera w miejscu genu kodują cego antygen T fragment NcoI/CfoI genu E6/E7 pochodzącego z wirusa ludzkiego brodawczaka 16.
7. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że pożywką bez surowicy w etapie (ii), (iv) lub (vi) jest pożywka NR-3.
8. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że pożywką różnicującą w etapie (vii) jest modyfikowana pożywka NR-2 o stężeniu wapnia co najmniej 1,5 mM.
9. Zastosowanie keratynocytów określonych w zastrz. 1 do immunologicznych, farmakologicznych, foto- i chemio-toksykologicznych analiz reakcji skóry i do wyrażania heterologicznych genów.
10. Zastosowanie według zastrz. 9, znamienne tym, że stosowana jest linia DK7-NR o numerze depozytu CNCM I-1996 zgodnie z Traktatem Budapeszteńskim.
11. Sztuczna skóra, znamienna tym, że obejmuje linię keratynocytów określoną w zastrz. 1.
12. Sztuczna skóra według zastrz. 11, znamienna tym, że obejmuje linię komórkową DK7-NR o numerze depozytu CNCM I-1996 zgodnie z Traktatem Budapeszteń skim.
PL364980A 1998-04-17 1999-04-07 Unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra PL201401B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP98201247 1998-04-17
PCT/EP1999/002347 WO1999054435A2 (fr) 1998-04-17 1999-04-07 Lignee de cellules immortalisees derivees de tissus cutanes humains normaux

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL364980A1 PL364980A1 (pl) 2004-12-27
PL201401B1 true PL201401B1 (pl) 2009-04-30

Family

ID=8233616

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL364980A PL201401B1 (pl) 1998-04-17 1999-04-07 Unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra

Country Status (22)

Country Link
US (1) US6566136B2 (pl)
EP (1) EP1071747B1 (pl)
JP (1) JP4671504B2 (pl)
KR (1) KR20010074488A (pl)
CN (1) CN1299409A (pl)
AT (1) ATE274050T1 (pl)
AU (1) AU756151B2 (pl)
BR (1) BR9909699A (pl)
CA (1) CA2324479C (pl)
CZ (1) CZ20003842A3 (pl)
DE (1) DE69919531T2 (pl)
DK (1) DK1071747T3 (pl)
ES (1) ES2226383T3 (pl)
HU (1) HUP0101913A3 (pl)
IL (1) IL138417A0 (pl)
NO (1) NO325588B1 (pl)
NZ (1) NZ506944A (pl)
PL (1) PL201401B1 (pl)
PT (1) PT1071747E (pl)
RU (1) RU2244005C2 (pl)
SK (1) SK286870B6 (pl)
WO (1) WO1999054435A2 (pl)

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6368815B1 (en) * 1999-03-29 2002-04-09 Warner-Lambert Company Screening of molecules that inhibit human phosphodiesterase 4A produced by non-recombinant cell lines
EP1130086A1 (en) * 2000-02-18 2001-09-05 Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des öffentlichen Rechts Genetically engineered keratinocytes and toxicity assay using said keratinocytes
IT1316995B1 (it) * 2000-02-25 2003-05-26 Idi Irccs Procedimento per ottenere da colture primarie di cheratinociti umanilinee cellulari immortalizzate.
WO2002091999A2 (en) 2001-05-09 2002-11-21 Geron Corporation Treatment for wounds
DE10255285A1 (de) * 2002-11-26 2004-06-03 Mcs Micro Carrier Systems Gmbh Selbst formende Phospholipid-Gele
US8669109B2 (en) 2003-08-19 2014-03-11 Boehringer Ingelheim Pharma Gmbh & Co. Kg Methods of producing proteins in Chinese hamster ovary (CHO) cells
DE10338531A1 (de) 2003-08-19 2005-04-07 Boehringer Ingelheim Pharma Gmbh & Co. Kg Verfahren zur Reklonierung von Produktionszellen
EP1557085A1 (en) 2004-01-21 2005-07-27 Boehringer Ingelheim International GmbH Mouse model for human psoriasis
WO2006047426A2 (en) * 2004-10-22 2006-05-04 The Regents Of The University Of Michigan Compositions, methods and systems for preparation of a stem cell-enriched cell population
ATE547511T1 (de) * 2004-12-23 2012-03-15 Medimmune Llc Nichttumorbildende mdck-zellinie zur vermehrung von viren
EP1739179A1 (en) * 2005-06-30 2007-01-03 Octapharma AG Serum-free stable transfection and production of recombinant human proteins in human cell lines
CN105219697A (zh) * 2014-07-04 2016-01-06 赫柏慧康生物科技无锡有限公司 一种人原代角质细胞分离制备的方法
RU2573938C1 (ru) * 2014-12-11 2016-01-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии гена Российской академии наук Клеточная линия рака почки человека ibgvat r 27
RU2573940C1 (ru) * 2014-12-11 2016-01-27 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии гена Российской академии наук Клеточная линия рака почки человека ibgvat r 6
WO2023123299A1 (en) * 2021-12-31 2023-07-06 Beijing Theraxyte Bioscience Co., Ltd. Compositions and methods for culturing stem cells

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2217285T3 (es) * 1994-11-08 2004-11-01 Cellfactors Plc Metodo para producir una linea celular neural humana.
AU730222B2 (en) * 1995-12-21 2001-03-01 Societe Des Produits Nestle S.A. Improved immortalized human skin cell lines and novel serum-free medium useful for the production thereof
US5811297A (en) * 1996-03-07 1998-09-22 Amba Biosciences, Llc Immortalized hematopoietic cell lines, cell system thereof with stromal cells, in vitro, ex vivo and in vivo uses, & in vitro generation of dendritic cells and macrophages

Also Published As

Publication number Publication date
DK1071747T3 (da) 2004-11-29
HUP0101913A3 (en) 2002-06-28
ATE274050T1 (de) 2004-09-15
NO325588B1 (no) 2008-06-23
US20020042133A1 (en) 2002-04-11
SK286870B6 (sk) 2009-06-05
IL138417A0 (en) 2001-10-31
ES2226383T3 (es) 2005-03-16
PT1071747E (pt) 2004-12-31
EP1071747A2 (fr) 2001-01-31
JP2003516711A (ja) 2003-05-20
CZ20003842A3 (cs) 2001-08-15
SK15492000A3 (sk) 2001-03-12
AU756151B2 (en) 2003-01-02
EP1071747B1 (fr) 2004-08-18
CA2324479C (en) 2007-12-04
HUP0101913A2 (hu) 2001-09-28
NO20005053L (no) 2000-11-29
AU3813599A (en) 1999-11-08
PL364980A1 (pl) 2004-12-27
DE69919531T2 (de) 2005-09-15
WO1999054435A3 (fr) 1999-12-09
WO1999054435A2 (fr) 1999-10-28
BR9909699A (pt) 2002-04-30
DE69919531D1 (de) 2004-09-23
KR20010074488A (ko) 2001-08-04
NO20005053D0 (no) 2000-10-06
CN1299409A (zh) 2001-06-13
RU2244005C2 (ru) 2005-01-10
CA2324479A1 (en) 1999-10-28
NZ506944A (en) 2003-10-31
JP4671504B2 (ja) 2011-04-20
US6566136B2 (en) 2003-05-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6423540B2 (en) Immortalized human skin cell lines and novel serum-free medium useful for the production thereof
PL201401B1 (pl) Unieśmiertelniona linia ludzkich keratynocytów, ulepszony sposób unieśmiertelniania komórek skóry ludzkiej, zastosowanie keratynocytów oraz sztuczna skóra
JP3557172B2 (ja) 不死化ヒトケラチノサイト細胞系統
JP2000506374A5 (pl)
Steinberg et al. Transformation and immortalization of human keratinocytes by SV40
JP2010500878A (ja) ポリマー膜を用いた幹細胞とフィーダー細胞の共培養方法
Deveney et al. Establishment of human colonic epithelial cells in long-term culture
US20040229355A1 (en) Culture medium for long-term culture of hepatocytes
CA2237391A1 (en) Novel method of culturing human epithelial cells for the identification of cancer therapeutics and diagnostics
Price et al. Approaches to enhance proliferation of human epidermal keratinocytes in mass culture
Salas-Prato et al. Attachment and multiplication, morphology and protein production of human fetal primary liver cells cultured in hormonally defined media
MXPA00009558A (en) Immortalised cell lines derived from normal human skin tissues

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20100407