JP2003516711A - 正常ヒト皮膚組織由来の不死化した細胞系 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、少なくとも１つのレトロウイルス由来の機能性腫瘍形成性遺伝子により不死化したヒトケラチノサイトの細胞系に関し、（１）非腫瘍形成性であり、（２）組織培養において高次の継代の後でさえも、分化する能力及び分化した正常なケラチノサイトによって発現されるタンパク質及び酵素を発現する能力を維持し、（３）血清及び栄養細胞層を含まない培地を用いた臓器特異的培養において培養される時、オルトケラチンの角質層を含む層状の分極した上皮を形成する、ことを特徴とする。本発明は、また、不死化したケラチノサイトを得るためのヒト皮膚細胞を不死化する改善された方法に関し、少なくとも２つの異なるレトロウイルスの機能性腫瘍形成性遺伝子を用いて、ケラチノサイトを感染させるステップを含むことを特徴とする。本発明は、さらに、免疫学的、薬理学的、光毒物学的及び化学毒物学的皮膚反応のための、異種遺伝子を発現するための、及び人工皮膚を構築するための、該ケラチノサイトの使用に関する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 （技術分野） 本発明は、正常なヒト皮膚組織に由来し改良された分化特性を与える新規な不
死化細胞系、これらの細胞系を生産する方法、及び特に人工皮膚創製の分野にお
けるそれらの種々の使用に関する。

【０００２】 （背景技術） 正常なヒト皮膚組織に由来する不死化細胞系の生産は、すでに公知である。一
般に、この目的のために用いられる方法は、不死化をもたらす薬剤を使用してイ
ンビトロで培養されるヒト皮膚細胞、例えばケラチノサイト及びメラノサイトの
形質転換を含む。不死化は細胞の生産に関連し、長期間にわたってインビトロで
、理論的には無期限に培養可能である。これらの細胞はまた選ばれた連続的な細
胞系である。これに対し、非不死化細胞は、インビトロで限られた回数の細胞分
裂の期間だけ増殖することができる。不死化した細胞は、確定した特性を有する
細胞の安定で潜在的には無限の供給源を提供するので、極めて有益である。不死
化した細胞系及び不死化したヒト皮膚細胞系の生産のための典型的な薬剤は、特
に、例えば不死化の性質をもたらすＤＮＡ配列を含有するウイルス類、組替えウ
イルス類及びプラスミド類を含む。

【０００３】 不死化したヒト細胞系を生産するための最も一般的な方法は、恐らくシミアン
ウイルス４０（ＳＶ４０）、より具体的にはＳＶ４０のラージＴ抗原（Ｔ−Ａｇ
）の配列を不死化の薬剤として使用することを含む。例えば、Ｓｔｅｉｎｂｅｒ
ｇら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓ，１２３，１１７−１２５（１９８５）；米国特
許第４８８５２３８号（Ｒａｄｄｅｌら）；米国特許第４７０７４４８号（Ｍａ
ｊｏｒ）；Ｓｔｏｎｅｒら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，５１，３６５−３７１（
１９９１）；Ｃｈｏｐｒａら，Ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ｃｅｌｌ Ｄｅｖ． Ｂｉｏ
ｌ．，３０Ａ，５３９−５４６（１９９４）；Ｃｈｏｐｒａら，Ｉｎ ｖｉｔｒ
ｏ Ｃｅｌｌ Ｄｅｖ． Ｂｉｏｌ．，２７Ａ，７６３−７６５（１９９１）；
Ｃｈｒｉｓｔｉａｎら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，４７，６０６６−６０７３（
１９８７）；Ｒｈｉｍら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２７，１２５０−１２５２（１９
８５）；及びＧｒｕｂｍａｎら，Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔ．Ｌｉｖｅｒ Ｐｈ
ｙｓｉｏｌ．，２９，Ｇ１０６０−Ｇ１０７０（１９９４）が、不死化ヒト細胞
系の生産のための、ＳＶ４０ベクター及びＳＶ４０のラージＴ抗原の配列を含む
ベクターの使用を報告している。そのような配列の導入は、一般に、ＳＶ４０ウ
イルスまたは１２／ＳＶ４０ハイブリッドアデノウイルスの感染によって、また
はりん酸ストロンチウムの存在下での共沈による、ラウス肉腫ウイルスの長鎖末
端反復（ｌｏｎｇ ｔｅｒｍｉｎａｌ ｒｅｐｅａｔ）及び調節ＳＶ４０のｏｒ
ｉ領域を含む組換えプラスミドを用いた細胞の形質移入によって行われる（Ｂｒ
ａｓｈら，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，７，２０３１−２０３４，１９８７
を参照）。

【０００４】 不死化した細胞系、特に不死化したヒトケラチノサイトを生産するための他の
公知の方法は、ヒト乳頭腫ウイルス（ＨＰＶ）のＤＮＡ配列を細胞に形質移入し
または感染させることを含む。例えば、米国特許第５３７６５４２号（Ｓｃｈｌ
ｅｇｅｌ）は、非腫瘍形成性不死化ヒト細胞系を生産するために、ＨＰＶ−１６
、１８、３１、３３または３５から単離したＥ６及びＥ７遺伝子、またはＥ７遺
伝子単独を用いたヒト上皮細胞の不死化を記載している。さらに、Ｂａｒｂｏｓ
ａら、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ，４，１５２９−１５３２（１９８９）及びＭｕｎｇｅ
ｒら、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６３（１０），４４１７−４４２１（１９８９）は、
不死化したヒトケラチノサイトを生産するために、ＨＰＶ−１６及びＨＰＶ−１
８のＥ６及びＥ７遺伝子を使用することを報告している。さらにはＤｕｒｓｔら
、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ，１，２５１−２５６（１９８７）は、乳頭腫ウイルスタイ
プ１６を用いたケラチノサイトの不死化を記載している。

【０００５】 しかしながら、多くのグループが不死化したケラチノサイト細胞系及びインビ
トロ分析におけるそれらの使用を発表したにもかかわらず、現在の技術水準での
不死化したケラチノサイト細胞系は、通常それらの使用を不利にするような１つ
以上の性質を示す。例えば、前記の不死化したケラチノサイトは、以下の性質の
１つまたはそれ以上を示す：（ｉ）分化マーカー、例えば分化した正常なケラチ
ノサイトにより発現されるタンパク質の減少または喪失、（ｉｉ）組織培養にお
ける変形成長の性質、及び（ｉｉｉ）角質層パラケラチノサイトを有する層状の
分極した上皮の形成。

【０００６】 これらの不利を取り除くために、欧州特許出願第７８０４９６号（Ｓｏｃｉｅ
ｔｅ ｄｅｓ Ｐｒｏｄｕｉｔｓ Ｎｅｓｔｌｅ）は、新規な培養培地に加えて
、ＳＶ４０ウイルス由来のベクターｐＬＸＳＨＤ＋ＳＶ４０（＃３２８）、また
は同様にヒト乳頭腫ウイルス１６（ＨＰＶ−１６）由来のベクターｐＬＸＳＨＤ
＋Ｅ６／Ｅ７を用いて、ケラチノサイトまたはヒトメラノサイトを不死化するた
めの新規な方法を提案している。この方法で得られる不死化した細胞は、高次の
継代培養の後でさえも、分化の能力及び分化した正常なケラチノサイト及びメラ
ノサイトによって発現されるタンパク質と酵素の発現の能力を保持する。

【０００７】 しかしながら、前記にも拘わらず、実用分野には依然として、より改善された
性質さえも有するヒト不死化ケラチノサイトを必要とする、重要な要求がある。
そのような細胞は、数多くの用途、特に高度に分化した皮膚細胞を必要とする分
析に対して、極めて有利であろう。

【０００８】 （発明の概要） この目的のために、本発明は、少なくとも１つのレトロウイルス起源の腫瘍形
成性機能性遺伝子による、ヒト不死化ケラチノサイト細胞系に関し、それが （１）非腫瘍形成性であり、 （２）組織培養において高次の継代の後で、分化の能力、及び、分化した正常な
ケラチノサイトによって発現されるタンパク質及び酵素を発現する能力を保持し
、そして （３）血清を含まない培地中での、そして栄養細胞層なしでの臓器特異的培養に
おいて培養された時、角質層オルトケラチノサイトを有する層状の分極した上皮
を形成する、 ことに特徴を有する。

【０００９】 本発明の他の目的は、正常な皮膚組織由来の不死化したケラチノサイト細胞系
を生産するための、新規な方法を提供することである。

【００１０】 さらに本発明の他の目的は、本発明記載のこれらのケラチノサイト細胞系を使
用するための、例えば、皮膚反応の免疫学的、薬理学的、及び光及び化学毒物学
的分析のための、及び異種遺伝子の発現のための方法を提供することである。

【００１１】 （発明の詳細な説明） 本発明は、非腫瘍形成性の不死化したケラチノサイト細胞系、即ち、例えば１
回の注射当たり少なくとも２ｘ１０⁶の細胞を用いて動物に皮下注射をした場合
、腫瘍を形成しない細胞系を提供する。

【００１２】 これらの細胞系は、また、高次の継代の後で分化の能力及び正常なケラチノサ
イトにより発現されるタンパク質を発現する能力を保持する。「高次の継代」と
いう表現は、培養において少なくとも１０世代、好ましくは少なくとも２０乃至
３０世代、より好ましくは少なくとも５０世代、そして理論的には無限の世代を
示す。例えば、本発明に従って生産される不死化ケラチノサイトは、ケラチンＫ
１／１０、ケラチンＫ１４、インボルクリン、フィラグリン及びロリクリンから
成る分化タンパク質類を、組織の培養における高次の継代の後でさえも発現する
。

【００１３】 本発明の不死化したケラチノサイトは、正常なケラチノサイトのプロフィル（
ｐｒｏｆｉｌｅ）と同等ではないにしても類似しているシトクロームｐ４５０（
ＣＹＰ４５０）のプロフィルを有する。例えば、本発明の細胞は、ＣＹＰ４５０
１Ａ１、２Ｅ１、２Ｃ１８及び３Ａ５を発現する。さらに、本発明の不死化した
ケラチノサイトは第二相の酵素、例えばグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ
π（ＧＳＴπ）を、正常な非不死化ケラチノサイトに匹敵する程度に発現する。

【００１４】 さらに、本発明の不死化したケラチノサイトは、細胞酸化及び炎症性の反応に
関与しているタンパク質類及び酵素類、例えば、スーパーオキシドジスムターゼ
（ＳＯＤ）、タイプＩのコラゲナーゼ及び腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦα）を
、ホルボールエステルでの処理の後分化した正常なケラチノサイトと類似したま
たは同等の程度に発現する。これらの一定の特性と共に、これらの細胞系は、皮
膚反応の免疫学的、薬理学的、炎症に関する、光及び化学毒物学的研究のための
、極めて興味ある、再現性のある供給源を代表する。

【００１５】 さらに、本発明の不死化したケラチノサイトの系は、血清を含まない培地［例
えば、米国Ｂｉｏｆｌｕｉｄ社のＥＧＦ（５ｎｇ／ｍｌ）、ビタミンＣ（３８μ
ｇ／ｍｌ）及びＣａＣｌ₂（１．５ｍＭ）を強化したＮＲ２培地］中で及び栄養
細胞層なしで（線維芽細胞なしで）、臓器特異的培養で培養された場合、表層に
ケラチン化した層を有する層状の分極した上皮、通常いわゆるオルトケラチノサ
イトの形態を有する角質層、を形成する。このことは、角質層は有核細胞、つま
り核を有する細胞を失うことを意味する。

【００１６】 不死化したケラチノサイトを用いた層状の分極した上皮の形成は、これまでに
古典的な培養条件の下で、つまり子牛の血清を含む培地及び栄養細胞層を用いる
手法によって成功している（Ｌｅｃｈｎｅｒら，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１８５，５
３６−５７１，１９９１）。それにも拘わらず、不死化した細胞は正常な表層の
ケラチン化した層を形成しなかった。例えば、乳頭腫ウイルス１６または１８、
またはＥ６／Ｅ７によって不死化した細胞系は、非常に不規則な上皮細胞を形成
することが知られている（Ｂｌａｎｔｏｎら、Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，１３
８，６７３−６８５，１９９１；Ｈｕｄｓｏｎら、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６４，５
１９−５２６，１９９０；ＭｃＣａｎｅら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓ
ｃｉ．，８５，７１６９−７１７３，１９８８；Ｗｏｏｄｗｏｒｔｈら、Ｏｎｃ
ｏｇｅｎｅ，７，６１９−６２６，１９９２）。

【００１７】 これに対して、欧州特許出願第７８０４９６号（Ｓｏｃｉｅｔｅ ｄｅｓ Ｐ
ｒｏｄｕｉｔｓ Ｎｅｓｔｌｅ）に記載された株は、血清を含まない培地中で栄
養細胞層なしで、臓器特異的培養で培養された場合、正常な表層のケラチン化し
た層を有し、しかしそれにも拘わらずパラケラチノサイトの形態を有する、即ち
、依然核を持った細胞を含む角質層を有する、層状の分極した上皮を形成した。

【００１８】 本発明の不死化したケラチノサイトは、また、外来性の必須脂肪酸（ＡＧＥ）
を吸収し、正常なケラチノサイトの不飽和状態及び鎖長延長と完全に対応するＡ
ＧＥの不飽和状態及び鎖長延長を与える。

【００１９】 一般的に、本発明の不死化したケラチノサイトは、以下の方法で得ることがで
きる： （ｉ）ヒト皮膚のサンプルを入手し； （ｉｉ）培養可能な１次ケラチノサイトを得るために皮膚サンプルを調製し； （ｉｉｉ）血清を含まない培地中で、好ましくは細胞の固定及び成長を促進する
コーティングを施した培養プレート上のＮＲ−３培地（欧州特許出願第７８０４
９６号に記載）中で、これらの１次ケラチノサイトを培養し、ここで、該コーテ
ィングはフィブロネクチン、ＳＡＢ及びタイプＩのコラーゲンを含み； （ｉｖ）培養プレート上のケラチノサイトの最適な集密成長を得るのに十分な程
度に培地を置換し、プレートのコーティングを連続的に維持し； （ｖ）培養物中のケラチノサイトをメラノサイトから分離し、そして感染培地中
に、好ましくはＮＲ−３培地中に、そして好ましくは同様にコーティングを施し
た培養プレートを用いてトリプシン及びＥＤＴＡを含有する組成物で細胞を処理
した後で、分離したケラチノサイトを移し； （ｖｉ）ＳＶ４０ウイルス及びヒト乳頭腫ウイルスのような少なくとも２つの異
なるレトロウイルスの機能性腫瘍形成遺伝子を用いて、ケラチノサイトに感染さ
せ； （ｖｉｉ）不死化したケラチノサイトを、予め同様にコーティングした培養プレ
ート上の血清を含まない増殖培地中に、好ましくはＮＲ−２培地またはＮＲ−３
培地（欧州特許出願第７８０４９６号に記載の培地であり、それらの組成は本明
細書に参照することにより取り込まれている）に移し；そして （ｖｉｉｉ）増殖後不死化したケラチノサイトを、高濃度のカルシウム（１．５
ｍＭ）を含有する簡便な分化培地へ、好ましくはＥＧＦ（５ｎｇ／ｍｌ）及びビ
タミンＣ（３８μｇ／ｍｌ）を強化したＮＲ−２培地へ移す。

【００２０】 詳細には、ステップ（ｉ）は通常正常なヒト供与者のヒト皮膚組織のサンプル
、例えば外科手術的な関与または小児科的な関与の間に得られるサンプル、を得
ることを含む。皮膚細胞の特殊なサンプル、例えば自己由来の皮膚細胞サンプル
の不死化は、確定した特性、例えば特定の供与者の特徴を有する特定の受容者の
プロフィル、を示す不死化したケラチノサイト細胞系の生産を可能にする。

【００２１】 皮膚組織のサンプルは引き続きステップ（ｉｉ）で、インビトロでの培養に好
適なように調製される。この調製は、好ましくは、例えば培養に使用される培地
を用いて、最初に皮膚組織のサンプルを洗浄することにより行われる。この操作
は、血清を含まない培地であるＮＲ−２培地で実施されることが好ましい。この
培地の正確な組成は欧州特許出願第７８０４９６号に記載されており、正常なケ
ラチノサイトの培養に有利であることが示されている。洗浄後、皮膚組織のサン
プルは、例えば皮膚採取器を用いて削ぎとられ、続いて小片に裁断される。

【００２２】 得られた皮膚の切片は、次いで好ましくは真皮（ｄｅｒｍｉｓ）及び表皮（ｅ
ｐｉｄｅｒｍｉｓ）に分離される。この分離は物理的及び／または酵素的手段を
用いて行うことができる。具体的には、これはトリプシンによる処理により実現
し得る。例えば、ＥＤＴＡ（例えば約０．１％）を含有するトリプシン溶液（例
えば約０．５％）に、細胞分離を引き起こすのに十分な時間、例えば３７℃の温
度で約３０乃至６０分間、または４℃で一夜の間、皮膚組織のサンプルを浮遊さ
せることにより実現し得る。

【００２３】 真皮を分離し、表皮を引き続き培地中に置いて懸濁液にする。好ましくは、懸
濁する培地はダイズトリプシンインヒビター（ＳＢＴＩ）の溶液を含有し、トリ
プシンを不活性化するのに十分な時間、通常約５分間、細胞と接触させて細胞の
分離を引き起こす。引き続いて組織培養培地、好ましくは血清を除いたＮＲ−２
培地（欧州特許出願第７８０４９６号に記載）及びフィルター（例えば１００ｎ
ｍのフィルター）を加え、所望の細胞、即ちケラチノサイトを得る。

【００２４】 ステップ（ｉｉ）で得られた一次ケラチノサイトは、引き続いて予めコーティ
ングした培養プレート上で血清を含まない培地、好ましくはＮＲ−２培地（欧州
特許出願第７８０４９６号に記載）に、好適な細胞濃度、好ましくは約１．２ｘ
１０⁴セル／ｃｍ²で接種するために使用される。しかしながら、この細胞濃度を
広範囲に変えることは可能である。培養プレートは、好ましくはケラチノサイト
の固定及び成長を助長することが分っている組成、より詳細にはフィブロネクチ
ン、ＳＡＢ及びコラーゲンタイプＩの各溶液、を含有するコーティングが施され
る。

【００２５】 ステップ（ｉｖ）においては、培養培地は最適な細胞成長を得るために、必要
に応じた頻度で置換される。培地は約２日毎に一度置換されることが好ましい。
しかしながら、皮膚組織の特殊なサンプルによっては、この頻度は変更可能であ
る。約１０乃至１４日の期間の後で、ほぼ全体の、具体的には約９０％の集合体
が得られた後、ケラチノサイトとメラノサイトを分離する。この分離は、メラノ
サイト及びケラチノサイトに不利益な影響を与えることなしに適切に細胞分離を
起こさせる手段であれば、如何なる手段を選択しても実現できる。例えば、トリ
プシンを用いた差分処理により実施できる。好ましくは、メラノサイトまたはケ
ラチノサイトは、トリプシン／ＥＤＴＡ溶液で処理され、引き続いて選択培地へ
移される。ケラチノサイトの場合は、細胞は、好ましくは約５乃至１０分の間ト
リプシン／ＥＤＴＡ溶液（０．０２５％／０．０１％）で処理され、引き続いて
ステップ（ｖ）において、予めコーティングされたプレート上でＮＲ−３培地に
接種するために使用される。

【００２６】 ケラチノサイトは、引き続いて不死化のための薬剤で処理される。細胞はまた
不死化が進むまで、例えば液体窒素中で凍結することができる。感染及び不死化
は、好ましくはＳＶ４０ウイルスのＴ−Ａｇ及びＨＰＶ１６のＥ６／Ｅ７のよう
な、少なくとも２つの異なるレトロウイルスの機能性腫瘍形成遺伝子を用いて実
施される。これらの各遺伝子は、独立したレトロウイルス構築物、例えば、図１
に示され、Ｓｔｏｃｋｓｈｌａｅｄｅｒら（遺伝子銀行、承認番号Ｍ６４７５３
；Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎ．Ｔｈｅｒａｐｙ，２，３３−３９，１９９１）に記載さ
れているレトロウイルスベクターｐＬＸＳＨＤ＋ＳＶ４０（＃３２８）、及び図
２に示されるレトロウイルスベクターｐＬＸＳＨＤ＋Ｅ６／Ｅ７に存在する。

【００２７】 レトロウイルスベクターｐＬＸＳＨＤ＋ＳＶ４０（＃３２８）は、他の配列の
間に、ＳＶ４０のＴ−Ａｇ配列、ＳＶ４０の５’及び３’長鎖末端反復配列、ｐ
ＢＲ３２２の配列を含み、それらは大腸菌での複製、複数クローン化のサイクル
、ＳＶ４０のポリアデニル化配列を可能にする。

【００２８】 Ｔ抗原をコードする遺伝子の位置に、ベクターｐＬＸＳＨＤ＋Ｅ６／Ｅ７は、
ヒト乳頭腫ウイルス１６由来のＥ６／Ｅ７遺伝子のＮｃｏＩ／ＣｆｏＩ断片を有
する。

【００２９】 不死化した後、細胞は引き続いて培養の間に必要な数の継代に従い、得られた
不死化した細胞は、続いてステップ（ｖｉｉ）の間に増殖培地へ移される。この
移動は、好ましくは第２世代の間に行われる。この増殖培地は血清を含まないも
のでよく、ＮＲ−２またはＮＲ−３培地が好ましい。不死化した細胞は、予め連
続的にコーティングした培養プレート上で培養される。コーティングは、同様に
フィブロネクチン、ＳＡＢ及びコラーゲンタイプＩの各溶液を含む。

【００３０】 増殖培地（好ましくはＮＲ−２）における不死化細胞の増殖の後、ステップ（
ｖｉｉｉ）においてケラチノサイトは正常な及び不死化したケラチノサイトの分
化を引き起こす環境、好ましくは実際の皮膚を擬した環境に移される。このよう
にして、ケラチノサイトの組織を、正常な表層のケラチン化した層を有する層状
の分極した上皮にする。最後に細胞は、高濃度のカルシウムを含有する、血清を
含まない培地中で培養することができる。その培地は、例えば約１．５ｍＭのカ
ルシウム、約５ｎｇ／ｍｌのＥＧＦ及び約３８μｇ／ｍｌのビタミンＣを含むＮ
Ｒ−２培地である。培養はプレート上で２乃至３週間の間液体／空気中間相で行
われる。例えば１２キャビティを有するプレートＦａｌｃｏｎ Ｎｏ．３０４３
は、各キャビティがインサート（ｉｎｓｅｒｔ）Ｆａｌｃｏｎ Ｎｏ．３１８０
を有し、そこで液体／空気中間相にてケラチノサイトが生育する。空気はインサ
ート内部に含まれる大気より構成され、インサートから栄養培地は除かれる。液
体はキャビティに含まれる栄養培地であり、培地はインサートの膜を横切って移
動し、膜の上にケラチノサイトが生育する。

【００３１】 本発明の不死化したケラチノサイトの性質に関しては、これらは皮膚反応の免
疫学的、薬理学的、光及び化学毒物学的分析に完全に好適である。例えば、本発
明の不死化したケラチノサイト細胞系は、分化した皮膚細胞を必要とする分析、
例えば、再構成した皮膚組織のバリア機能（角質化）の研究、分化したケラチノ
サイトの代謝（脂肪酸の代謝、抗酸化剤の代謝）の研究、皮膚細胞に対する紫外
線照射の影響に関する研究、皮膚細胞に対する潜在的な皮膚刺激剤及び皮膚感作
剤の影響に関する研究、脂質代謝の、局部処理の及び／または生体異物剤を含む
媒体による（例えば、化粧油、適切な保護剤、例えば光保護剤の選択による）研
究、炎症及び皮膚刺激の研究などに使用することができる。

【００３２】 さらに、本発明に従って生産されるケラチノサイト細胞系は、潜在的な抗がん
性化合物及び皮膚疾病の治療のための潜在的な化合物を選択するために使用され
る。このことは通常、細胞系をそのような化合物と一定の期間接触し、それが何
であれ阻害的な影響の潜在的な誘導を定量することを意味する。阻害的な影響の
例としては、遺伝子毒性、ＤＮＡアダクトの形成、変異原性、細胞形質転換また
は細胞毒性がある。

【００３３】 さらに、本発明の不死化したケラチノサイトの株は、ＤＮＡ変異原性分析、皮
膚変異原性薬剤の選択のための分析、染色体変性薬剤の同定のための分析、悪性
形質転換の研究、細胞生化学（例えばＣＹＰ４５０の活性化の分析）の研究、化
合物の及び組成の、例えば炎症及びアレルギー反応に関与する必須脂肪酸カクテ
ルの選択、（炎症に関連して）ＴＮＦαを含むコラゲナーゼの活性化のための分
析、及びインターロイキンの検出に使用することができる。

【００３４】 本発明の細胞系が角質層オルトケラチノサイトを形成するという事実に関して
、前記した変異原性の研究、免疫学的、薬理学的、光及び化学毒物学的研究のた
めを意図した人工皮膚の調製に関与するように、それらは特によく適合している
。この皮膚は、本発明のケラチノサイトの上皮のみから構成することができるが
、例えば正常なヒト皮膚により似せるために、好ましくはまたコラーゲン、線維
芽細胞、メラノサイトさえも含む。

【００３５】 さらに、本発明のケラチノサイト細胞系は、組換えタンパク質類、例えばヒト
ポリペプチド及びタンパク質を発現することができ、そしてまた、ＲＮＡ及びＤ
ＮＡを生産することもできる。

【００３６】 本発明に従って生産される不死化したケラチノサイトの中で、ＤＫ７−ＮＲ細
胞系のみが１例として、ブダペスト条約の取り決めに基づき、２５，ｒｕｅ ｄ
ｅ Ｄｏｃｔｅｕｒ Ｒｏｕｘ，７５７２４ Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅに住所
を有するＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ Ｎａｔｉｏｎａｌｅ ｄｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ
ｄｅ Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅ（Ｃ．Ｎ．Ｃ．Ｍ．）において、１９９８
年３月１９日に寄託され、寄託番号ＣＮＣＭＩ−１９９６を受けた。この寄託は
ブダペスト条約の取り決めに基づき行われた。この細胞系の利用に関する全ての
制約は、本出願または本出願の優先権を主張する他の出願に対応する特許が授与
された後、最終的に解除されるであろう。

【００３７】 本発明の他の特徴は、以下の実施例の記載から明らかになるであろう。これら
の実施例は、本発明を説明するために与えられるもので、制限するものと解釈す
べきではない。特に断らない限り、細胞の操作、ベクターの調製、細胞の形質転
換及び他の全ての技術的方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋらの著書［「分子クローン化
、実験室マニュアル」（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒ
ａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ），Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂ
ｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，ＵＳＡ，１９８９］に記載されたプロトコルに従
って実施される。

【００３８】 実施例１：細胞系の調製及び性格付け 胸の皮膚組織を採取する。真皮部及び表皮部を分離した後、真皮を０．２ｘ０
．２ｍｍの小片に裁断し、血清を含む６ｃｍの培養プレートに固定する。２乃至
４時間後最少量の必須培地のダルベッコ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ）（ＤＭＥＭ，１０
％のウシ胎児血清）を加える。この外植培養物を、線維芽細胞の過剰生育が目視
できるようになるまで引き続き培養する。集合した線維芽細胞の培養物を分離し
、増殖して凍結保存培養物を得る。

【００３９】 気管支細胞について前記した「カクテル」コーティングで連続的にコーティン
グした培養箱に、一次細胞を接種する［Ｌｅｃｈｎｅｒら、Ｊ．Ｔｉｓｓ．Ｃｕ
ｌｔ．Ｍｅｔｈ．，９： ４３−４９（１９８５）］。通常約１０乃至１４日の
期間の後見られるように、ほぼ全体の、例えば約９０％の集密（コンフルーエン
ス）が形成された後、ケラチノサイト及びメラノサイトを分離する。最後に、培
養物をトリプシン／ＥＤＴＡ（０．０２５％／０．０１％）溶液で５分間処理し
、続いてメラノサイトを先ずケラチノサイトから分離して収穫する。引き続いて
一次ケラチノサイトを、血清を含まないＮＲ−３培地中で、前記のコーティング
を施した培養箱を用いて、所望の細胞数に至るまで培養する（ＮＲ−３培地は、
メラノサイトに比較してケラチノサイトの生育により適する）。

【００４０】 引き続いて、カプセル封じの細胞「パッケージング細胞系３Ｔ３−線維芽細胞
」を、Ｐｆｅｉｆｅｒら（Ｍｅｔｈ．Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ．，１７，８３−８９，
１９９５）のプロトコルに従い、プラスミドｐＬＸＳＨＤ＋ＳＶ４０（＃３２８
）及びｐＬＸＳＨＤ＋Ｅ６／Ｅ７を用いて形質移入する。但し、ウイルスは細胞
系内にカプセル封じした後収集され、ウシ胎児血清１０％を含むＤＭＥＭ培地中
で生育する。次いで、ケラチノサイトにウイルスを感染させ、不死化をもたらす
。感染の間、Ｐｆｅｉｆｅｒらの文献に記載されている血清を含まないＰＣ−１
培地を同様に用いる。

【００４１】 不死化の後、不死化したケラチノサイトを、前記のコーティングした培養箱を
用いて増殖培地ＮＲ−２またはＮＲ−３に移す。細胞を所望する細胞数に至るま
で増殖した後、細胞を正常な及び不死化したケラチノサイトの培養に好適な分化
培地（ＮＲ−２）に移す。

【００４２】 不死化したケラチノサイトは、高次の継代培養の後で改善された細胞成長を与
えることを示すことができ、それは欧州特許出願第７８０４９６号の細胞系につ
いて記載された細胞成長に匹敵し得る。

【００４３】 ＣＹＰ４５０、１Ａ１、１Ａ２、３Ａ５、２Ｅ１、２Ｂ６、２Ａ６及び２Ｄ６
の発現を、正常な及び不死化したケラチノサイトで構成される皮膚細胞中で、室
温でのＤＮＡポリメラーゼ連鎖反応により分析する（ｍＲＮＡの発現）。不死化
したケラチノサイトにより発現したＣＹＰ４５０のプロフィルは、正常なケラチ
ノサイトによるプロフィルに特に類似しているか、同一でさえある。

【００４４】 細胞系は、高次の継代の後においてさえも、非不死化細胞と同じように、ベン
ツピレンより成るＣＹＰ４５０の誘導剤に反応する。

【００４５】 分化マーカーは、Ｔ−Ａｇ、インボルクリン（ｉｎｖｏｌｕｃｒｉｎｅ）、フ
ィラグリン（ｆｉｌａｇｇｒｉｎｅ）、ロリクリン（ｌｏｒｉｃｒｉｎｅ）、ビ
メンチン（ｖｉｍｅｎｔｉｎｅ）及びケラチン類Ｋ４、Ｋ７、Ｋ８、Ｋ１０／１
、Ｋ１３、Ｋ１４、Ｋ１７、Ｋ１８及びＫ１９に対する特異的な抗体により分析
される。分化能力を示すための最大能力は、ＤＫ７−ＮＲ細胞系に対して示され
得る。

【００４６】 グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）を、ウエスタンブロット及
びノーザンブロットにより分析する。ケラチノサイトの全ての株は、ＧＳＴπに
対するメッセンジャーＲＮＡを強く発現する。該細胞系におけるＧＳＴα、ＧＳ
Ｔμ及びＧＳＴπへの露出のプロフィルは、正常なケラチノサイトのそれと類似
している。

【００４７】 ケラチノサイトに添加した必須脂肪酸（ＡＧＥ）の不飽和化及び鎖長延長を分
析及び比較するために、不死化したケラチノサイト（及び正常なケラチノサイト
）をリノール酸（ＬＡ、１５μモル）及びリノレン酸（ＬＮ、１５μモル）で処
理する。これらの実験には、ＡＥＧが不足しているＮＲ−２培地（Ｂｉｏｆｌｕ
ｉｄｓ社）を用いる。細胞培養物が集合体を形成した後前記処理を行い、それま
での培地から高濃度のカルシウム（１．５ｍＭ）を含有するＮＲ−２培地へ移す
。細胞を４日間ＡＧＥ類（２日後更新する）で処理する。ＡＧＥの分析は、抽出
し、薄層クロマトグラフィー（ＣＣＭ）によりリン脂質を分離して行い、脂肪酸
メチルエステルの定量は、ガス−液体クロマトグラフィー（ＣＧＬ）で行う。Ｌ
Ａ（２０：４ｎ−６及び２２：４ｎ−６）及びＬＮ（２０：５ｎ−３、２２：５
ｎ−３及び２２：６ｎ−３）の不飽和化及び鎖長延長の形成を示すことができる
。代謝のプロフィルは、正常なケラチノサイトで観察されるプロフィルと一致す
る。

【００４８】 全ての細胞系は、２倍体細胞の間に大部分の染色体を有する亜２倍体（ｈｙｐ
ｏｄｉｐｌｏｉｄ）であった。分析した細胞以外に、培養物の中に他の細胞は検
出されなかった。この結果は、細胞系が純粋であり、他の系を起源とする雑菌混
入がないことを裏付けている。

【００４９】 不死化したケラチノサイトの腫瘍形成性は、ヌードマウスに皮下注射（１−２
ｘ１０⁶ケラチノサイト）をすることにより定量した。テストしたケラチノサイ
ト、特にＤＫ７−ＮＲの株は、ヌードマウスにおいて腫瘍形成性ではない。

【００５０】 実施例２：上皮の調製 実施例１記載の細胞を７５０，０００細胞含有するＮＲ−２培地を調製し、こ
の培地の０．５ｍｌをインサート（Ｆａｌｃｏｎ Ｎｏ．３１８０）に取り、予
め新鮮なＮＲ−２培地を含むプレート（Ｆａｌｃｏｎ Ｎｏ．３０４３）のキャ
ビティにこれらのインサートを配し、ケラチノサイトの成長に好適な条件下で２
日間ケラチノサイトを培養する。第３日目にインサート中の培地を除去し、細胞
を自由空気に曝す。キャビティに含まれる培地は２日毎に、ＥＧＦ（５ｎｇ／ｍ
ｌ）、ビタミンＣ（３８μｇ／ｍｌ）及びＣａＣｌ₂（１．５ｍＭ）を添加した
ＮＲ−２培地で交換する。空気−液体中間相で２乃至３週間培養した後、このよ
うにして形成した上皮を収集し、ピクリン酸で固定し、その形態を分析する。

【００５１】 結果は、ケラチノサイト細胞系、特にＤＫ７−ＮＲ細胞系は、一般にいわゆる
基底層と呼ばれる層状の分極した上皮を形成し、正常な細胞の形態と同一の立方
体様の形態を有する細胞を含む。角質層は、核を有する細胞を失ったオルトケラ
チノサイトの形態を与える。オルトケラチノサイト細胞層の形成は、今日まで他
の公知の不死化した細胞系では不可能であった。例えば、同一の条件下で、ＤＫ
２−ＮＲ株（欧州特許出願第７８０４９６号）はパラケラチノサイトの角質層を
形成するが、これは依然有核細胞を含む角質化した細胞層である。オルトケラチ
ノサイトの形態の角質層のみが、ヒト皮膚の正常な状態を反映している。実際、
パラケラチノサイトの角質層は、例えば乾癬または新形成のような疾病に至る上
皮の異常な肥大によって特徴付けられる。

【００５２】 実施例３：刺激テスト 実施例１で得られた細胞系、特にＤＫ７−ＮＲ系を、ＮＲ−２培地中で培養す
る。ホルボール−１２−ミリステート−１３−アセテート（ＰＭＡ）及び紫外線
Ｂ照射（ＵＶ−Ｂ）から成る刺激剤で処理した後、「ストレス遺伝子」ＴＮＦα
（腫瘍壊死因子アルファ）の誘導を、ノーザン法及び生化学的検査により分析し
た。その結果は、細胞系、特にＤＫ７−ＮＲ細胞系は、ＰＭＡ及びＵＶ−Ｂに反
応し、高次の継代の後においてもタンパク質ＴＮＦαを発現する。

【００５３】 実施例４：人工皮膚の構築 インサートＦａｌｃｏｎ Ｎｏ．３１８０の膜をヒアルロン酸ベンジルエステ
ルのシート（Ｈｙａｆｆ１１）と交換する。インサートの底に一次ヒト線維芽細
胞（０．２ｍｌ培地中０．１ｘ１０⁶細胞）を接種し、３０分反応後インサート
に１０％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培地を満たす。５％の二酸化炭素を含む
大気下３７℃で数日間培養を進めた後、インサートを空にし、７５０，０００細
胞のＤＫ７−ＮＲ細胞系を含む新鮮なＮＲ−２培地０．５ｍｌを供給する。予め
新鮮なＮＲ−２培地２ｍｌを含むプレートＦａｌｃｏｎ Ｎｏ．３０４３のキャ
ビティにインサートを納め、ケラチノサイトの成長に好適な条件下で２日間細胞
を培養する。第３日目にインサートに含まれる培地を除去し、細胞を自由空気に
曝す。キャビティ中の培地は、２日毎に定期的に、ＥＧＦ（５ｎｇ／ｍｌ）、ビ
タミンＣ（３８μｇ／ｍｌ）及びＣａＣｌ₂（１．５ｍＭ）を添加したＮＲ−２
培地で交換する。空気−液体中間相で２乃至３週間培養した後、正常な皮膚の特
性を与える人工皮膚の形成を認めることができる。

【図面の簡単な説明】

【図１】 図１は、得られたレトロウイルスＳＶ４０、つまり本発明のケラチノサイトを
不死化するために用いられる、プラスミドｐＬＸＳＨＤ＋ＳＶ４０（＃３２８）
を示す。

【図２】 図２は、乳頭腫ウイルス１６のレトロウイルス由来の構築、即ち本発明のケラ
チノサイトを不死化するために用いられる、プラスミドｐＬＸＳＨＤ＋Ｅ６／Ｅ
７を表す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，Ａ Ｍ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ， ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，Ｋ Ｚ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ， ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＴ，Ｕ Ａ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ Ｆターム(参考） 4B024 AA01 CA01 DA03 EA02 EA04 GA11 GA18 4B065 AA93X AA97Y AB01 AC20 BA02 CA44 4C081 AA01 AA12 AB19 CD34 DA02 EA02

Claims (15)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 少なくとも１つのレトロウイルス起源の機能性腫瘍遺伝子に
   よって不死化したヒトケラチノサイト細胞系であって、 （４）非腫瘍形成性であり； （５）高次の継代培養の後においてさえも、分化の能力、及び、分化した正常
   なケラチノサイトにより発現されるタンパク質及び酵素を発現する能力を保持し
   ；そして （６）血清及び栄養細胞層を含まない培地中での臓器特異的培養において培養
   される時、角質層オルトケラチノサイトを有する層状の分極した上皮を形成する
   ； ことを特徴とする、ヒトケラチノサイト細胞系。
2. 【請求項２】 少なくとも２つの異なるレトロウイルスのレトロウイルス起
   源の機能性腫瘍遺伝子によって不死化される、請求項１記載のヒトケラチノサイ
   ト細胞系。
3. 【請求項３】 機能性腫瘍遺伝子がＳＶ４０ウイルス及びヒト乳頭腫ウイル
   ス１６に由来することを特徴とする、請求項２記載のヒトケラチノサイト細胞系
   。
4. 【請求項４】 各機能性腫瘍遺伝子が独立したレトロウイルス構築物に含ま
   れることを特徴とする、請求項３記載のヒトケラチノサイト細胞系。
5. 【請求項５】 それがブダペスト条約に基づく寄託番号ＣＮＣＭＩ−１９９
   ６を有するＤＫ７−ＮＲ細胞系であることを特徴とする、請求項４記載のヒトケ
   ラチノサイト細胞系。
6. 【請求項６】 不死化したケラチノサイトを得るためにヒト皮膚細胞を不死
   化するための改良された方法であって： （ｉ）ヒト皮膚のサンプルを単離し； （ｉｉ）皮膚サンプルをインビトロ培養用に調製し； （ｉｉｉ）この皮膚組織の調製サンプルからケラチノサイトを得て、細胞の固
   着と成長を促進するためのフィブロネクチン、コラーゲンタイプI及びＳＡＢを
   含むコーティングを施した培養プレート上で、血清を含まない成長培地に該ケラ
   チノサイトを接種し； （ｉｖ）プレートのコーティングを連続的に維持しながら、培養中の細胞の最
   適な集密成長を得るのに十分なように培地を置換し、； （ｖ）予め同様にコーティングされた培養プレート上の血清を含まない選択培
   地にケラチノサイトを移し； （ｖｉ）少なくとも２つの異なるレトロウイルスの機能性腫瘍遺伝子を用いて
   、ケラチノサイトに感染させ； （ｖｉｉ）得られた不死化したケラチノサイトを、予め同様にコーティングし
   た培養プレート上の、不死化ケラチノサイトの増殖に好適な血清を含まない増殖
   培地に移し；そして （ｖｉｉｉ）得られた増殖ケラチノサイトを、予め同様にコーティングした培
   養箱上の、血清を含まずカルシウムを高濃度に含有する分化培地へ移す； ステップを含むことを特徴とする方法。
7. 【請求項７】 機能性腫瘍遺伝子がＳＶ４０ウイルス及びヒト乳頭腫ウイル
   ス１６に由来することを特徴とする、請求項６記載の方法。
8. 【請求項８】 各機能性腫瘍遺伝子が独立したレトロウイルス構築物に含ま
   れることを特徴とする、請求項７記載の方法。
9. 【請求項９】 使用されるレトロウイルス構築物がベクターｐＬＸＳＨＤ＋
   ＳＶ４０（＃３２８）及びｐＬＸＳＨＤ＋Ｅ６／Ｅ７であることを特徴とする、
   請求項８記載の方法。
10. 【請求項１０】 ステップ（ｉｉｉ）、（ｖ）または（ｖｉｉ）における血
    清を含まない培地がＮＲ−３培地であることを特徴とする、請求項６記載の方法
    。
11. 【請求項１１】 ステップ（ｖｉｉｉ）における分化培地が少なくとも１．
    ５ｍＭのカルシウムを含有する修正したＮＲ−２培地であることを特徴とする、
    請求項６記載の方法。
12. 【請求項１２】 皮膚反応の免疫学的、薬理学的、光及び化学毒物学的分析
    のための、及び異種遺伝子の発現のための、請求項１記載のケラチノサイトの使
    用。
13. 【請求項１３】 ブダペスト条約に基づく寄託番号ＣＮＣＭＩ−１９９６を
    有するＤＫ７−ＮＲ系を使用することを特徴とする、請求項１２記載の使用。
14. 【請求項１４】 請求項１記載のケラチノサイト細胞系を含むことを特徴と
    する人工皮膚。
15. 【請求項１５】 ブダペスト条約に基づく寄託番号ＣＮＣＭＩ−１９９６を
    有するＤＫ７−ＮＲ細胞系を含むことを特徴とする、請求項１４記載の人工皮膚
    。