NO344489B1 - Kontinuerlig dyrkingsanordning med bevegelig beholder og tilvirking av en dyrking på en kontinuerlig måte - Google Patents
Kontinuerlig dyrkingsanordning med bevegelig beholder og tilvirking av en dyrking på en kontinuerlig måte Download PDFInfo
- Publication number
- NO344489B1 NO344489B1 NO20090953A NO20090953A NO344489B1 NO 344489 B1 NO344489 B1 NO 344489B1 NO 20090953 A NO20090953 A NO 20090953A NO 20090953 A NO20090953 A NO 20090953A NO 344489 B1 NO344489 B1 NO 344489B1
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- pipeline
- cells
- growth chamber
- area
- growth
- Prior art date
Links
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 11
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 118
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 112
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 44
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 26
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 claims description 26
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 25
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 claims description 25
- 230000033001 locomotion Effects 0.000 claims description 24
- 238000010790 dilution Methods 0.000 claims description 21
- 239000012895 dilution Substances 0.000 claims description 21
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 claims description 15
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 15
- 238000011109 contamination Methods 0.000 claims description 7
- 241000195493 Cryptophyta Species 0.000 claims description 5
- 241000233866 Fungi Species 0.000 claims description 5
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 claims description 5
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 claims description 5
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 4
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 claims description 4
- 210000004504 adult stem cell Anatomy 0.000 claims description 3
- 238000013019 agitation Methods 0.000 claims description 3
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 claims description 3
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 claims description 3
- 230000002285 radioactive effect Effects 0.000 claims description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 3
- 210000001130 astrocyte Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 claims description 2
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 claims description 2
- 230000005672 electromagnetic field Effects 0.000 claims description 2
- 210000000604 fetal stem cell Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 2
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 2
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 claims description 2
- 210000004248 oligodendroglia Anatomy 0.000 claims description 2
- 239000007793 ph indicator Substances 0.000 claims description 2
- 230000003169 placental effect Effects 0.000 claims description 2
- 210000002536 stromal cell Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000003954 umbilical cord Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000005253 yeast cell Anatomy 0.000 claims 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 11
- 230000008569 process Effects 0.000 description 11
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 9
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 description 8
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 7
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 7
- 230000001850 reproductive effect Effects 0.000 description 7
- 241000206602 Eukaryota Species 0.000 description 6
- 230000002572 peristaltic effect Effects 0.000 description 6
- 241000203069 Archaea Species 0.000 description 5
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 5
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 4
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 4
- 230000003252 repetitive effect Effects 0.000 description 4
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 4
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 4
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 4
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 3
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 3
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 3
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 3
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N N-Butanol Chemical compound CCCCO LRHPLDYGYMQRHN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108091005682 Receptor kinases Proteins 0.000 description 2
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 2
- 230000003044 adaptive effect Effects 0.000 description 2
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 2
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 2
- 239000003708 ampul Substances 0.000 description 2
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 2
- 239000003518 caustics Substances 0.000 description 2
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 2
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229940043355 kinase inhibitor Drugs 0.000 description 2
- 239000003757 phosphotransferase inhibitor Substances 0.000 description 2
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 2
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 2
- 230000003449 preventive effect Effects 0.000 description 2
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 2
- 238000013376 serial cultivation Methods 0.000 description 2
- 238000013207 serial dilution Methods 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 229940124597 therapeutic agent Drugs 0.000 description 2
- 241000193401 Clostridium acetobutylicum Species 0.000 description 1
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 description 1
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 241001655322 Streptomycetales Species 0.000 description 1
- 102000009618 Transforming Growth Factors Human genes 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 239000003187 aldehyde dehydrogenase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 230000009604 anaerobic growth Effects 0.000 description 1
- 230000001147 anti-toxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 238000009529 body temperature measurement Methods 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000004891 communication Methods 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 238000004320 controlled atmosphere Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000013461 design Methods 0.000 description 1
- 238000003113 dilution method Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000009123 feedback regulation Effects 0.000 description 1
- 239000002657 fibrous material Substances 0.000 description 1
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 229940125396 insulin Drugs 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000011344 liquid material Substances 0.000 description 1
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 1
- 229920002521 macromolecule Polymers 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000005486 microgravity Effects 0.000 description 1
- 230000000116 mitigating effect Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000002703 mutagenesis Methods 0.000 description 1
- 231100000350 mutagenesis Toxicity 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 239000002935 phosphatidylinositol 3 kinase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 229940043441 phosphoinositide 3-kinase inhibitor Drugs 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 239000012056 semi-solid material Substances 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 210000004927 skin cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 238000013337 sub-cultivation Methods 0.000 description 1
- 230000001360 synchronised effect Effects 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001052 transient effect Effects 0.000 description 1
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0669—Bone marrow stromal cells; Whole bone marrow
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
- C12M1/007—Flexible bags or containers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
- C12M41/26—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of pH
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
- C12M1/02—Apparatus for enzymology or microbiology with agitation means; with heat exchange means
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
- C12M1/24—Apparatus for enzymology or microbiology tube or bottle type
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
- C12M1/34—Measuring or testing with condition measuring or sensing means, e.g. colony counters
- C12M1/3446—Photometry, spectroscopy, laser technology
- C12M1/3453—Opacity, turbidity or light transmission measure; Nephelometry
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
- C12M3/02—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus with means providing suspensions
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
- C12M3/06—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus with filtration, ultrafiltration, inverse osmosis or dialysis means
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
- C12M41/30—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration
- C12M41/36—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration of biomass, e.g. colony counters or by turbidity measurements
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
- C12M41/40—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of pressure
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/04—Plant cells or tissues
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0603—Embryonic cells ; Embryoid bodies
- C12N5/0605—Cells from extra-embryonic tissues, e.g. placenta, amnion, yolk sac, Wharton's jelly
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0603—Embryonic cells ; Embryoid bodies
- C12N5/0606—Pluripotent embryonic cells, e.g. embryonic stem cells [ES]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0618—Cells of the nervous system
- C12N5/0622—Glial cells, e.g. astrocytes, oligodendrocytes; Schwann cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
- C12N5/0647—Haematopoietic stem cells; Uncommitted or multipotent progenitors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/02—Form or structure of the vessel
- C12M23/06—Tubular
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/22—Transparent or translucent parts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/24—Gas permeable parts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/26—Constructional details, e.g. recesses, hinges flexible
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/34—Internal compartments or partitions
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Gynecology & Obstetrics (AREA)
- Reproductive Health (AREA)
- Hematology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Botany (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Pregnancy & Childbirth (AREA)
- Neurology (AREA)
- Neurosurgery (AREA)
- Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- Water Supply & Treatment (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Cultivation Receptacles Or Flower-Pots, Or Pots For Seedlings (AREA)
Description
Område for oppfinnelsen
Den omtalte oppfinnelsen skaffer tilveie en fremgangsmåte og en anordning som tillater utvelgelse av levende celler med økte rater av reproduksjon og spesielle metabolske egenskaper i en væske eller et halvfast medium. For prosessen med utvelgelse (tilpasningsegnet utvikling) oppstår genetiske variantorganismer (mutanter) i en populasjon og konkurrerer med andre varianter av den samme opprinnelsen. De med den hurtigste raten for reproduksjon øker i innbyrdes proporsjon over tid, noe som fører til en populasjon (og individuelle organismer) med økt reproduktiv rate. Denne prosessen kan forbedre ytelsen til organismer brukt i industrielle prosesser eller akademiske formål. Den foreliggende oppfinnelse benytter en kontinuerlig dyrkingsanordning for å oppnå den levedyktige tilvirkningen av levende celler (f.eks. prokaryoter, arkaea, virus, eukaryoter, sopp, alger, gjær, planteceller, dyreceller og stamceller). Den foreliggende oppfinnelse kan brukes for å tilvirke en aktiv ingrediens eller et biologisk stoff som er tilvirket av de levende cellene. Den aktive ingrediensen eller det biologiske stoffet kan i sin tur brukes som et diagnostisk, preventivt eller terapeutisk middel.
Bakgrunn for oppfinnelsen
Dokument JP H0330665A beskriver en automatisk subkultiveringsanordning for mikroskopiske organismer eller celler som omfatter et fleksibelt rør hvor dyrkningsmedium er fylt og mange klemmer som kan stramme eller løsne røret og som forskyves langs det for å skape et nytt vekstkammer.
Dokument WO 9409895 A beskriver et reaktorsystem som egner seg spesielt for en modell av en gastrointestinal kanal, som omfatter minst en enhet bestående av to eller flere trykkamre. Hvert av trykkamrene omfatter en slange laget av fleksibel materiale og som er åpen i begge ender. Slangene er festet med sine ender forseglet på en slik måte at mellomrommene mellom veggen til trykkamrene og slangene er lukket. Forbindelsesanordninger er også til stede for tilførsel av en gass eller væske til og uttapping av den fra mellomrommene mellom veggen til trykkamrene og slangene. Koblingsmidler er tilstede for å kople trykkamrene til hverandre og/eller til endedeler eller mellomdeler.
Dokument CH 552063A beskriver en anordning for dyrking av rene bakteriekulturer, som innbefatter et rør sveiset i begge ender som inneholder et flytende næringsmedium og en ampulle inneholdende sterile lyofiliserte bakteriestammer. Røret er delt inn i celler med klemmer. En første celle inneholder ampullen, som brytes for å begynne dyrkningen, og videre dyrkning utføres i de andre cellene.
Utvelgelse for økt reproduktiv rate (egnethet) krever uavbrutt vekst som er oppnådd gjennom regelmessig fortynning av en voksende dyrking. I den tidligere kjente teknikken er dette blitt utført på tre måter: fast dyrking, seriell fortynning og kontinuerlig dyrking, som skiller seg primært i graden av fortynning.
Fast dyrking innebærer repeterende overføring av en liten mengde med vokst dyrking eller celler fra en petriskål til en beholder med friskt vekstmedium. Seriell dyrking innebærer repeterende overføring av en liten mengde med vokst dyrking til et meget større kar som inneholder friskt vekstmedium. Når de dyrkede cellene har vokst til metning i det nye karet, repeteres prosessen. Denne måten er blitt brukt for å oppnå de lengste demonstrasjonene av mettet dyrking i litteraturen (Lenski & Travisano:
Dynamics of adaptation and diversification: a 10.000-generation experiment with bacterial populations.1994. Proc Natl Acad Sci USA.15:6808-14), i hvilke eksperimenter det var klart demonstrert konsistent forbedring i reproduktiv rate over en periode på år. Denne prosessen gjøres vanligvis manuelt med betraktelig arbeidsinvestering og er utsatt for forurensning gjennom eksponering mot det utvendige miljøet. Seriell dyrking er likeså ineffektiv, slik som omtalt i det følgende avsnittet.
Raten for utvelgelse, eller raten for forbedring i reproduktiv rate, er avhengig av populasjonsstørrelse (Fisher: The Genitical theory of Natural Selection.1930. Oxford University press, London, UK). Enn videre er i en situasjon liknende seriell overføring der populasjonsstørrelse veksler hurtig, utvelgelse proporsjonal med den harmoniske middelverdien (Ñ) til populasjonen (Wright: Size of population and breeding structure in relation to evolution. 1938. Science 87: 430-431), og kan følgelig tilnærmes av den minste populasjonen i løpet av syklusen.
Populasjonsstørrelse kan opprettholdes, og utvelgelse gjøres derfor mer effektiv gjennom kontinuerlig dyrking. Kontinuerlig dyrking innebærer, slik som skjelnet fra seriell fortynning, mindre innbyrdes volum, slik at et lite parti av en voksende dyrking regelmessig erstattes av en lik mengde av friskt vekstmedium. Denne prosessen maksimerer den effektive populasjonsstørrelsen ved økning av dens minimumsstørrelse i løpet av syklisk fortynning. Innretninger som tillater kontinuerlig dyrking betegnes:
”chemostater” dersom fortynninger skjer ved spesifiserte tidsintervaller, og ”turbidostater” dersom fortynning skjer automatisk når dyrkingen vokser til en spesifikk densitet.
For enkelhets skyld vil begge typer av innretninger heretter grupperes under uttrykket ”chemostat”. Chemostater var oppfunnet samtidig av to grupper på 1950-tallet (Novick & Szilard: Description of the chemostat. 1950. Science 112: 715-716) og (Monod: La technique de la culture continue - Théorie et applications. 1950. Ann. Inst. Pasteur 79:390-410). Chemostater er blitt brukt for å demonstrere korte perioder med hurtig forbedring i reproduktiv rate (Dykhuizen DE. Chemostats used for studying natural selection and adaptive evolution.1993. Methods Enzymol. 224:613-31).
Tradisjonelle chemostater er ute av stand til å opprettholde lange perioder av utvelgelse for økt reproduksjonsrate på grunn av den utilsiktede utvelgelsen av fortynningsbestandige (statiske) varianter. Disse variantene er i stand til å motstå fortynning ved klebing til overflaten av chemostaten og utkjemper ved å gjøre således mindre klebende individer, innbefattende de som har høyere reproduktive rater, noe som således er til hinder for det tiltenkte formålet av innretningen (Chao & Ramsdell: The effects of wall populations on coexistence of bacteria in the liquid phase of chemostat cultures.1985. J. Gen. Microbiol.131: 1229-36).
En metode og chemostatisk innretning (den genetiske motoren) er blitt oppfunnet for å unngå fortynningsbestandighet i kontinuerlig dyrking (patent US 6.686.194-B1, innlevert av PASTEUR INSTITUT [FR] & MUTZEL RUPERT [DE]. Denne metoden bruker ventilstyrt fluidoverføring for periodisk å bevege den voksende dyrkingen mellom to chemostater, noe som tillater at hver steriliseres og renses mellom perioder av aktiv dyrkingvekst. De regelmessige sterilisasjonssyklusene forhindrer utvelgelse av fortynningsbestandige varianter ved ødeleggelse av dem. Denne metoden og innretningen oppnår formålet, men krever uavhengige kompliserte håndteringer av atskillige fluider innenfor et sterilt (forseglet) miljø, innbefattende en (NaOH) som både er svært kaustisk og eventuelt meget reaktiv, noe som hurtig ødelegger ventiler samt presenterer problemer med forurensning og avfallsavhending. Chemostatinnretningen er likeså begrenset ved at ingen tildannelser er gjort for å bevirke en understøttelse for celler og gro på. Innretninger, så som den genetiske motoren, og annen kjent teknologi, tillater ikke den kontinuerlige dyrkingen av celler som ikke gror i suspensjon og/eller gror som kohesive celler.
Det finnes noen typer av celler som er vanskelige å dyrke i store mengder på grunn av tilstanden cellene krever for å overleve og vokse. Det er antatt at disse cellene kunne vokse i tilstander besørget med en kontinuerlig dyrkingstilnærming. Dette er spesielt tilfellet for eukaryoter (f.eks. alger, gjær, sopp, planteceller, dyreceller og stamceller).
Det følgende avsnittet, som vedrører menneskeembryostamceller, er tatt med kun for referansehensikt og er ikke en del av oppfinnelsen: For eksempel er menneskeembryostamceller typisk produsert ved isolering og overføring av en stamcellemasse til en plastlaboratoriedyrkingsskål som inneholder en næringsbuljong kjent som dyrkingsmedium. Cellene deler og sprer seg over overflaten av skålen. Den indre overflaten av dyrkingsskålen er typisk belagt med museembryohudceller som er blitt behandlet således at de ikke vil dele seg. Dette belegningslaget av celler er betegnet et matelag. Begrunnelsen for å ha matelaget i bunnen av dyrkingsskålen er for å gi menneskeembryostamcellene en klebrig overflate, til hvilken de kan sette seg fast. Likeså frigir matecellene næringsstoffer inn i dyrkingsmediet. Nylig har vitenskapsfolk begynt å tenke ut måter for produsering av embryostamceller uten musematecellene. Dette er et betydelig vitenskapelig fremskritt fordi det unngår faren at virus eller andre makromolekyler i musecellene kan overføres til menneskecellene.
Over forløpet av atskillige dager formerer cellene i den indre cellemassen seg og begynner å flokke seg på dyrkingsskålen. Når dette skjer fjernes de forsiktig og settes på plate i atskillige friske dyrkingsskåler. Prosessen med ny setting på plate av cellene gjentas mange ganger og i mange måneder og betegnes subdyrking. Hver syklus med subdyrking av cellene betegnes som en passasje. Etter seks måneder eller mer leverer de opprinnelige cellene av cellemassen millioner av embryostamceller. Embryostamceller som har formert seg i celledyrking i seks eller flere måneder er flerpotente og synes genetisk normale, betegnes som en embryostamcellelinje.
Så snart cellelinjer er opprettet, eller endog før dette trinnet, kan batcher av disse fryses og forsendes til andre laboratorier for ytterligere dyrking og eksperimentering. Kontinuerlig dyrking gir imidlertid fordelen med demping av et maksimum av håndteringer som påkjenner de levende cellene og frembringer en potensiell kilde for forurensning. Når en dyrking er startet, tillater kontinuerlige dyrkingstilstander at den erfarne fagpersonen trekker fordel av en kontinuerlig produksjon av celler. Så snart stamceller er produsert, kunne produksjonen av stamceller fortsette uten avbrytelse for å frembringe betydelig flere stamceller enn metoder som typisk brukes i dag.
Sammenfatning av oppfinnelsen
Det er derfor et formål med den foreliggende oppfinnelse å skaffe tilveie en forbedret (og fullstendig uavhengig) fremgangsmåte og anordning for kontinuerlig dyrking av celler (som innbefatter prokaryoter, bakterier, arkaea, eukaryoter og virus) uten påvirkning av fortynningsbestandige varianter. Liknende andre chemostater tildanner anordningen et middel for regelmessig fortynning av en vokst dyrking med friskt vekstmedium, et middel for gassutveksling mellom dyrkingen og det utvendige miljøet, Sterilitet og automatisk drift, slik som enten en chemostat eller en turbidostat.
Følgelig er det et formål med oppfinnelsen å skaffe tilveie en forbedret og særskilt fremgangsmåte og anordning for kontinuerlig dyrking av celler som ikke vokser i suspensjon, eller som vokser som kohesive celler, så som eukaryoter (f.eks. planteceller, alger, sopp, gjær, dyreceller eller stamceller), og visse prokaryoter (f.eks. streptomyceter) og eventuelt noen arkaea og virus. Stamceller som kan dyrkes med den foreliggende oppfinnelse innbefatter, men er ikke begrenset til, embryostamceller, fosterstamceller, navlestrengstamceller, placentaavledede stamceller og voksenstamceller.
Voksenstamcellene som kan dyrkes med den foreliggende oppfinnelse innbefatter, men er ikke begrenset til hematopoiestamceller, beinmargsstamceller, stromalceller, astrocytter og oligidendrrocytter (f.eks. hematopoietie stamcelleprotokoller av C. Klug og C. Jordan, Humana Press, Totowa, New Jersey, 2002).
Den foreliggende oppfinnelse er utformet for å oppnå disse målene uten hvilken som helst fluidoverføring, innbefattende sterilisasjons- eller rensingsfunksjoner. Dette utgjør en spesiell fordel for den foreliggende oppfinnelsen med hensyn til tidligere kjent teknikk så langt som den unngår farene og vanskelighetene knyttet til sterilisasjon og rensing, innbefattende inneslutning og kompliserte fluidoverføringer som involverer kaustiske løsemidler, forurensning og forstyrrelsen av vekst på grunn av overføringen av dyrkingen fra et kar til et annet.
Kontinuerlig dyrking er oppnådd inne i et bøyelig, sterilt rør fylt med vekstmedium. Mediet og kammeroverflaten er statiske med hensyn til hverandre, og begge er regelmessig og samtidig byttet ut ved peristaltisk bevegelse av rørledningen gjennom ”porter” eller punkter, ved hvilke røret er sterilt oppdelt med klemmer som forhindrer at de dyrkede cellene beveger seg mellomområder av røret. UV-porter kan likeså (valgfritt) tilføyes oppstrøms eller nedstrøms for dyrkingskaret for ytterligere sikkerhet.
I et aspekt vedrører foreliggende oppfinnelse en anordning for produksjon av levende celler som ikke er i suspensjon på en kontinuerlig måte, kjennetegnet ved at anordningen omfatter:
en bøyelig rørledning som inneholder dyrkingsmedium og en overflate, på hvilken de levende cellene kan vokse, og at rørledningen er gjennomsiktig eller gjennomskinnelig for å måle turbiditet;
et system av porter utført ved klemmer, hver i stand til åpne og lukkede posisjoner, hvori systemet med porter oppdeler rørledningen i:
i) et oppstrømsområde som inneholder ubrukt dyrkingsmedium og en ubrukt overflate på hvilken nevnte celler kan vokse;
ii) et nedstrømsområde som inneholder brukt dyrkingsmedium; og iii) et vekstkammerområde for produksjon av cellene anbrakt mellom oppstrøms- og nedstrømsområder;
og at systemet av porter er konstruert og anordnet for å åpne og lukke seg for å klemme av og definere vekstkammerområdet av rørledningen mellom oppstrøms- og nedstrømsområder av rørledningen, og for syklisk å gjendefinere vekstkammerområdet av rørledningen, slik at et første parti av det tidligere definerte vekstkammerområdet blir et parti av nedstrømsområdet av rørledningen, og et parti av det tidligere definerte oppstrømsområdet av rørledningen blir et parti av vekstkammerområdet av rørledningen og tilveiebringer overflaten for videre vekst av nevnte celler; og
et turbidimeter eller et annet apparat anordnet for å måle optisk densitet av de levende cellene i dyrkingsmediet,
hvori de lukkede portene som definerer vekstkammerområdet, portområdet av rørledningen som utgjør vekstkammerområdet, mediet og dyrkingen inne i vekstkammerområdet er bevegelige sammen gjennom en samtidig bevegelse av systemet av porter slik at hver av portene ikke beveger seg med hensyn til rørledningen når porten er i en lukket posisjon, og hvori nevnte celler ikke vokser i suspensjon.
I et ytterligere aspekt vedrører foreliggende oppfinnelse en fremgangsmåte for produksjon av celler som ikke er i suspensjon på en kontinuerlig måte, kjennetegnet ved at fremgangsmåten omfatter:
a) anvendelse av anordningen som angitt ifølge oppfinnelsen;
b) måling av turbiditeten til dyrkingsmediet med et turbidimeter eller et annet apparat som måler turbiditet;
c) lukking av de utvalgte av portene på rørledningen for å definere vekstkammerområdet av rørledningen mellom oppstrøms- og nedstrømsområdene av rørledningen og innføring av levedyktige celler i vekstkammerområdet;
d) overvåkning av turbiditet i vekstdyrkingsmediet og når en turbiditetsmåling svarer til en ønsket vekst av dyrkingen er oppnådd lukking og åpning av de utvalgte av portene for å gjendefinere vekstkammerområdet av rørledningen, slik at et første parti av det tidligere definerte vekstkammerområdet blir et parti av nedstrømsområdet av rørledningen, og et parti av det tidligere definerte oppstrømsområdet av rørledningen blir et parti av vekstkammerområdet av rørledningen og tilveiebringer overflate for videre vekst av cellene; og e) gjentakelse av trinn d) inntil en tilstrekkelig mengde av celler har vokst, hvori de lukkede portene som definerer vekstkammerområdet, portområdet av rørledningen som utgjør vekstkammerområdet, mediet og dyrkingen inne i vekstkammerområdet beveger seg sammen gjennom en samtidig bevegelse av systemet av porter slik at hver av portene ikke beveger seg med hensyn til rørledningen når porten er i en lukket posisjon, og hvori cellene ikke vokser i suspensjon.
Den foreliggende oppfinnelses fremgangsmåte og anordning er likeså en forbedring med hensyn til tidligere kjent teknikk i det omfang de kontinuerlig, snarere enn periodisk, velger mot hefting av fortynningsbestandige varianter til chemostatoverflatene, ettersom utbytting av de påvirkede overflatene skjer parallelt med prosessen for fortynning. Likeså for celler som vokser i suspensjon, og celler som vokser som kohesive celler, gir rørledningen en kontinuerlig understøttelse for vekst med fordelen uten forstyrrelse av cellene ved overføring av cellene fra karet til et annet kar.
Røret er oppdelt på en transient måte, slik at det finnes områder som inneholder mettet (vokst) dyrking, områder som inneholder friskt medium, og et område mellom disse to, idet ett eller flere kamre betegnes som vekst- eller dyrkingskamre er tilstede for å tilforme et vekstkammerområde, i hvilket vokst dyrking er blandet med friskt medium for å oppnå fortynning. Portene er periodisk frigitt fra ett punkt på røret og erstattet ved et annet punkt, slik at vokst dyrking sammen med dets tilknyttede vekstkammeroverflate og tilknyttede statiske celler er flyttet ved isolasjon fra vekstkammeret og erstattet av både friskt medium og frisk kammeroverflate.
Kortfattet omtale av tegningene
Uten å være uttømmende og begrensende vil én mulig generell konfigurasjon innbefatte atskillige komponenter, slik som omtalt her senere. I det etterfølgende er den foreliggende oppfinnelse eksempelvis forklart på grunnlag av en foretrukket utførelse, for derved å henvise til tegningene, i hvilke:
Figur 1 viser et samlet riss av en mulig konfigurasjon av anordningen, i hvilken: 1 representerer den bøyelige rørledningen som inneholder de ulike områdene av anordningen, og som er: oppstrøms friskt medium 7, vekstkammer 10, prøvekammer 11 og avhendet vokst dyrkingsområde 15
2 utgjør den termostatisk styrte kassen som tillater regulering av temperatur i samsvar med tilstander bestemt av en bruker, og i hvilket det kan lokaliseres:
a. vekstkammeret 10,
b. prøvekammeret 11,
c. en oppstrøms port 3 som definerer begynnelsen av vekstkammeret 10, d. en nedstrøms port 4 som definerer slutten av vekstkammeret 10 og begynnelsen av prøvekammeret 11
e. en andre nedstrøms port 5 som definerer enden av prøvekammeret 11, f. et turbidimeter 6 som tillater brukeren eller et automatisk styresystem å overvåke optisk densitet av voksende dyrking og for å betjene et tilbakemeldingsstyresystem 13 som tillater styrt bevegelse av rørledningen 1 på grunnlaget av dyrkingsdensitet (turbidostatfunksjon),
g. en eller flere agitatorer 9.
Det bør legges merke til at anordningselementene opplistet i a-g likeså kan lokaliseres utenfor eller i fraværet av en termostatisk styrt kasse.
7 utgjør det friske mediet i en ubrukt bøyelig rørledning,
8 utgjør en tønne lastet med fersk mediumsfylt rørledning for å utlevere det ferske mediet og rørledningen under drift.
12 representerer valgfrie ultrafiolette strålingsporter,
13 representerer styresystemet som kan bestå av en computer koplet med midler for kommunikasjon med ulike overvåknings- eller betjeningsgrensesnitt, liknende optiske densitetsturbidimålere, temperaturmålings- og reguleringsinnretninger, agitatorer og vippemotorer etc., som tillater automatisering og styring av drift,
14 representerer den valgfrie avhendingstønnen på hvilken det vikles opp en rørledning som inneholder avhendet vokst dyrkingsfylt rørledning,
15 representerer avhendet vokst dyrking lokalisert nedstrøms for prøvekammeret.
Figur 2 viser to mulige posisjoner av anordningen, og som eksemplifiserer faktumet at den termisk styrte kassen 2 og andre stykker av anordningen knyttet til dyrkingskammeret kan vippes til ulik grad for rørformål, gassirkulasjons- og fjerningsformål og formål for sikring av fjerningen av granulerte (rørte) celler som kunne unnslippe fortynning ved avsetting på bunnen. Anordningen kunne likeså stå i den samme posisjonen (f.eks. flat posisjon eller med en vinkel) i tilfellet at cellene ikke trenger røring for vekst.
Figur 3 til 9 utgjør den bøyelige rørledningen 1 på plass i den termisk styrte kassen 2 og innført gjennom portene 3, 4 og 5, gjennom hvilke rørledningen vil forbli under alle trinn av prosessen, og gjennom hvilke rørledningen vil bevege seg i samsvar med den peristaltiske bevegelse.
Figur 3 symboliserer status T0 av anordningen i hvilken alle områder av den bøyelige rørledningen er fylt med friskt medium før injeksjon av cellen tiltenkt for kontinuerlig dyrking.
Figur 4 symboliserer status T1 av den bøyelige rørledningen like etter injeksjon av cellestamme.
Figur 5 symboliserer status T2 av anordningen, og som er en vekstperiode i løpet av hvilken dyrkingen vokser i området avgrenset som vekstkammeret 10 begrenset av slusene 3 og 4.
Figur 6 symboliserer status T3 av anordningen like etter den første peristaltiske bevegelsen av rørledningen og det tilknyttede mediet, og som bestemmer begynnelsen av den andre vekstsyklusen, noe som introduserer frisk rørledning og medium gjennom bevegelse av porten 3 samtidig med en overføring av et ekvivalent volum av rørledning, medium og vokst dyrking ut av vekstkammerområdet 10 og inn i prøvekammerområdet 11 ved bevegelse av porten 4. Det er kritisk å anerkjenne at rørledningen, mediet som er inne i rørledningen, og hvilken som helst dyrking som har vokst i dette mediet, alle beveger seg sammen. Fluidoverføring kan skje i det omfang friskt medium og vokst dyrking blander seg sammen gjennom røring inne i vekstkammerområdet.
Figur 7 symboliserer status T4 av anordningen, og som er den andre voksesyklusen; i løpet av denne syklusen kan celler som forblir i vekstkammeret etter en peristaltisk bevegelse av rørledningen nå vokse ved bruk av næringsstoffer levert i det friske mediet og som er blandet med den resterende dyrkingen under dette trinnet.
Figur 8 symboliserer status T5 av anordningen like etter den andre peristaltiske bevegelsen av rørledningen, samt det opptatte mediet, og som bestemmer begynnelsen av den tredje voksesyklusen, og som introduserer den ferske rørledningen og mediet gjennom bevegelse av porten 3 samtidig med en overføring av en ekvivalent mengde av rørledning, medium og vokst dyrking ut av vekstkammerområdet 10 og inn i prøvekammerområdet 11 ved bevegelse av porten 4.
Figur 9 symboliserer status T6 av anordningen, og som er den tredje voksesyklusen; dette trinnet er ekvivalent med status T4 og angir den gjentakende beskaffenheten av ytterligere prosedyrer. Prøver av valgte celler kan fjernes ved hvilket som helst tidspunkt fra prøvekammerområdet 11 ved bruk av en sprøyte eller en annen gjenhenteinnretning.
Figur 10 viser en mulig profil av tenner som bestemmer en port i konfigurasjonen som består av to stablingstenner, som sammentrykker den bøyelige rørledningen. Portene kunne likeså bestemmes av enkeltvise tenner som presser mot et bevegelig bånd, fjernbare klemmer eller andre mekanismer som forhindrer bevegelse av celler gjennom porten, og som vekslende kan plasseres og fjernes i variable posisjoner langs rørledningen.
Detaljert omtale av oppfinnelsen
Den grunnleggende driften for anordningen er skildret på figur 3 til 9.
En mulig konfigurasjon for den foreliggende anordning er vist på figur 1, slik som den kommer til syne etter å ha blitt lastet med et friskt rør av sterilt medium (vist oppdelt i områder A-H av portene 3, 4 og 5).
Inokulering av anordningen med den valgte cellen kunne oppnås ved introduksjon av cellen i vekstkammeret (fig.3) gjennom injeksjon (figur 4, område B). Dyrkingen kunne deretter tillates for å vokse til den ønskede densiteten og en kontinuerlig dyrking ville begynne (fig.5).
En kontinuerlig dyrking ville gå fremover med gjentakende bevegelser av portområdene på rørledningen. Dette innebærer samtidige bevegelser av portene, rørledningen, mediet og hvilken som helst dyrking inne i rørledningen. Rørledningen ville alltid bevege seg i den samme retningen; den ubrukte rørledningen som inneholder friskt medium (og heretter sagt å være ”oppstrøms” for vekstkammeret 7) vil bevege seg inn i vekstkammeret og blande seg med dyrkingen som forblir der, noe som tildanner substratet for ytterligere vekst av cellene opptatt der. Før en introduksjon i vekstkammerområdet vil dette mediet og dets tilknyttede rørledning opprettholdes i en steril tilstand ved en atskillelse fra vekstkammeret med oppstrømsporten 3. Brukt rørledning som inneholder vokst dyrking vil samtidig beveges ”nedstrøms” og skilles fra vekstkammeret av nedstrømsporten 4.
Når ett eller flere vekstkamre er tilstede kan vekstkamrene brukes for det samme eller avvikende formål. For eksempel kunne levende celler produseres i et første vekstkammer og et andre vekstkammer med den samme eller avvikende tilstander. I en utførelse kan det første vekstkammeret brukes for å produsere celler, og det andre vekstkammeret kan da brukes for å behandle de levende cellene under forskjellige tilstander. Cellene kan for eksempel behandles for å foranledige inntrykket av et ønsket produkt. Komponenter eller tilsetningsstoffer til selve dyrkingsmediet kan tilsettes før eller etter dyrkingen begynner. For eksempel kunne alle komponenter eller tilsetningsstoffer inkluderes i mediet før en begynnelse av dyrkingen, eller komponenter kan injiseres inn i ett eller flere av vekstkamrene etter at dyrkingen er blitt innledet.
Portkonfigurasjonen er ikke et spesielt punkt for den foreliggende oppfinnelsen. I en gitt konfigurasjon kan portene utformes for eksempel gjennom en kjede av mangfoldige tenner samtidig beveget eller i en annen konfigurasjon skilt i atskilte synkroniserte kjeder, slik som skildret på figur 1. Portene kan bestå av et system utført av to tenner som sammenklemmer rørledningen på en stablende måte, slik som omtalt på figur 10, noe som forhindrer forurensning mellom områdene G og H av rørledningen gjennom nøyaktigheten til grenseflaten mellom tennene. I en annen konfigurasjon kan sterile porter oppnås ved pressing av én tann mot én side av rørledningen og derved pressing av rørledningen stramt mot et fast understell, langs hvilket rørledningen glis under dens peristaltiske bevegelse, slik som skissert på figur 3 til 9, med henvisningstall 3, 4 ot 5. I enda en annen konfigurasjon er en mekanisme, i hvilken klemmer rotert rundt en fast akse med hensyn til anordningen, brukt for å bevege rørledningen.
Den termostatisk styrte kassen 2 er oppnådd med allerede kjente midler, så som et termometer koplet med en oppvarmings- og avkjølingsinnretning.
Lufting (gassutveksling) er, når påkrevd for vekst av den dyrkede cellen eller av utformingen til eksperimentet, oppnådd direkte og uten mekanisk bistand ved bruken av en gassgjennomslippelig rørledning. For eksempel, og uten å være begrensende, kan den bøyelige gassgjennomslippelige rørledningen utføres av silikon. Lufting kunne oppnås gjennom utveksling med den omgivende atmosfæren eller gjennom utveksling med en kunstig definert atmosfære (væske eller gass) som berører vekstkammeret eller hele chemostaten. Når et eksperiment krever anaerobiose kan den bøyelige rørledningen være gassugjennomslippelig. For eksempel, og uten å være begrensende, kan den bøyelige gassugjennomslippelige rørledningen utføres av belagt eller behandlet silikon.
For anaerobe utviklingstilstander kan områder av rørledningen likeså begrenses i et spesifikt og styrt atmosfæreområde for å styre gassutvekslingsdynamikk. Dette kan oppnås enten ved å gjøre den termostatisk styrte kassen gasstett og deretter injisere nøytral gass inn i den eller ved å plassere hele anordningen i et atmosfærestyrt rom.
Telleutvelgelse av statiske varianter er oppnådd ved utbytting av vekstkammeroverflaten sammen med vekstmediet.
Anordningen er videre utformet for å være drivbar i et mangfold av orienteringer med hensyn til tyngdekraften, det vil si for å vippes, slik som vist på figur 2, langs et spekter på inntil 360o.
Fortynningsbestandige varianter kan unngå fortynning ved hefting til hverandre snarere enn til kammerveggen, dersom rørte celler kan falle oppstrøms og derved unngå fjerning fra kammeret. Følgelig er det ønskelig at rørledningen generelt vippes nedover, slik at rørte celler vil falle mot området som vil fjernes fra vekstkammeret i løpet av en syklus for rørbevegelse. Denne konfigurasjonen involverer slik vipping av anordningen at nedstrømsportene er under oppstrømsportene med hensyn til tyngdekraften.
Voksekammeret kan trykkavlastes eller trykkforhøyes i samsvar med tilstander valgt av eksperimentatoren. Forskjellige måter for justering av trykk kan brukes, for eksempel påføring av vakuum eller trykkluft mot det friske mediet og rørledningen gjennom dens oppstrøms ytterkant og over vekstkammeret; en annen måte for trykkavlasting eller trykkforhøying av rørledningen kan gjøres ved vekslende sammenklemming og låsing av rørledningen oppstrøms for eller inne i vekstkammeret.
Når mediet er opptatt i den gassgjennomslippelige rørledningen kan luftbobler tilformes innenfor mediet. Disse vil heve seg til toppen av et forseglet område av rørledningen og bli innfanget der, inntil bevegelsen av området (og portene som avgrenser det) frigir området i hvert enkelt vekstkammer, prøvekammeret eller sluttpunktet av chemostaten (figur 6, henholdsvis områdene D-C, B eller A). Dersom anordningen er vippet nedover vil slike bobler samle seg i vekstkammeret eller prøvekammeret og fortrenge dyrkingen.
Anordningen er utformet for periodisk å vippe oppover for en syklus av rørbevegelsen, noe som besørger fjerningen av oppsamlet gass fra kamrene.
Vippebevegelser av anordningen og/eller risting av vekstkammeret med en utvendig innretning 9 kan brukes for å minske agitering av celler innenfor vekstkammeret.
Alternativt kan én eller atskillige rørstenger inkluderes i rørledningen fylt med friskt medium før sterilisasjon og agiteres magnetisk under dyrkingsprosedyrer. I tilfelle av celler som ikke trenger agitering for å vokse kunne maskinen stå i den samme posisjonen.
Den proporsjonale lengden til områder med friskt medium definert av oppstrømsportene, slik som sammenliknet med lengden av dyrkingskammeret, vil definere omfanget av fortynning oppnådd i løpet av en syklus.
Frekvensen for fortynning kan bestemmes ved tidsinnstilling (f.eks. chemostatfunksjon). Stamceller kan for eksempel høstes i en begrenset tidsramme, slik at stamcellene er samlet før differensieringen av cellene begynner. Alternativt kan frekvensen for fortynning bestemmes med en tilbakemeldingsregulasjon, slik at densiteten av dyrkingen i vekstkammeret er målt med en turbidimåler (figur 1 – henvisningstall 6) og fortynningssyklusen forekommer når turbiditeten når en terskelverdi (turbidostatfunksjon). Rørledningen kan være gjennomsiktig eller gjennomskinnelig for å måle turbiditet.
Prøvekammeret tillater tilbaketrekking av vokst dyrking for å analysere resultatet av et eksperiment, samle celler med en forbedret vekstrate for ytterligere dyrking, lagring eller funksjonell implementering eller andre formål, så som helling av populasjonen, kontroll av den kjemiske sammensetningen til mediet eller testing av pH i vokst dyrking, eller tilvirkning av celler i mengde (f.eks. eukaryoter, så som stamceller, prokaryoter, Arkaea og virus). For å oppnå varig overvåkning av pH inni vekstkammeret kan rørledningen innbefatte ved konstruksjon en pH-indikatorledning innleiret/overtrukket i veggen av rørledningen.
Hvilken som helst form av flytende eller halvfast materiale kan brukes som et vekstmedium i den foreliggende oppfinnelse. Evnen til å benytte halvfaste vekstsubstrater er et merkbart fremskritt med hensyn til tidligere kjent teknikk. Vekstmediet som vil definere de metabolske prosessene forbedret med utvelgelsesprosessen kan velges og defineres av brukeren.
Om nødvendig kan denne anordningen inneholde mangfoldige vekstkamre, slik at nedstrømsportene til ett vekstkammer blir oppstrømsportene til et annet. Dette kunne tillate at for eksempel en celle vokser alene i det første kammeret og deretter virke som kilden for ernæring for en andre celle (eller virus) i det andre kammeret.
Oppfinnelsen kan brukes for å tilvirke en preparering, så som et biologisk stoff for et legemiddel, en vaksine eller et antitoksin, som er syntetisert av celler vokst med oppfinnelsen eller deres produkter. Det biologiske stoffet kan brukes som et diagnostisk, preventivt eller terapeutisk middel. Oppfinnelsen kan brukes for eksempel for å tilvirke terapeutiske proteiner, så som insulin.
I en foretrukket utførelse kan anordningen og/eller fremgangsmåten settes i syklus på en måte for kontinuerlig å samle stamceller i deres udifferensierte tilstand. Enn videre kan dyrkingstilstandene modifiseres for å hemme differensieringen av stamcellene. For eksempel kan stamcelledifferensierende inhibitorer (f.eks. inhibitorer av aldehyddehydrogenase, inhibitorer av fosfoinositide 3-kinase, TGF-reseptorkinaseinhibitorer, TGF-B-reseptorkinaseinhibitorer etc.) tilsettes dyrkingsmediet. Alternativt kan prosesstilstander, så som mengden av oksygen avgitt til dyrkingsmediet, økes eller minskes for å forbedre veksten av bestemte stamceller og/eller senke eller forbedre differensiering av stamcellene.
Ettersom visse celler krever et substrat for å vokse, kan en fysisk understøttelse eller struktur tilsettes kardyrkingskammeret. I en foretrukket utførelse kunne kontinuerlig understøttelse tilsettes inne i rørledningen, liknende kan et kontinuerlig fiberlag, dannet av en kontinuerlig fiberliknende understøttelsesstruktur, tilsettes kardyrkingskammeret, noe som kunne la celler vokse i 3 dimensjoner. For eksempel kunne understøttelsen være et fiberlag som bevirker understøttelse for veksten av celler, så som stamceller, planteceller og andre typer av celler som foretrekker en slik understøttelsesstruktur, eller ikke kan vokse i suspensjon eller vokse som kohesive celler, og i noen spesifikke tilstander eller endringer av tilstander for å prosessere den naturlige utvelgelsen for målrettede mutasjoner.
I en foretrukket utførelse innlemmes et fiberaktig materiale, slik som omtalt i ”Huang et al., Continuous Production of butanol by Clostridium acetobutylicum immobilized in a fibrous bed reactor, Appl Biochem Biotechnol.2004 Spring; 113-116:887-98”.
Strukturen og størrelsen til rørledningen kan likeså varieres for å unngå behovet for inkludering av en understøttelsesstruktur i det bevegelige kardyrkingskammeret. I en foretrukket utførelse er en rørledning med en mindre diameter brukt, således kan cellene hefte seg på en mer naturlig måte, eller rørledningen er brukt som en naturlig understøttelse uten behovet for hefting for noen kohesive celler.
Denne anordningen og fremgangsmåten tillater at forskere og produktutviklere skiller ut hvilken som helst stamme av dyrkbare levende celler i suspensjon eller hvilken som helst stamme av dyrkbare levende celler som ikke er i suspensjon, og som gror på veggen av rørledningen eller på en understøttelse, som kunne være et fiberlag i rørledningen gjennom uavbrutt vekst (kontinuerlig dyrking); den resulterende forbedrede cellen kan utgjøre en ny stamme eller arter. Disse nye cellene kan identifiseres av mutasjoner ervervet under forløpet av dyrkingen, og disse mutasjonene kan tillate at de nye cellene skjelnes fra deres forgjengeres genotype egenskaper. Denne anordningen og fremgangsmåten tillater at forskeren velger nye stammer av hvilken som helst levende celle ved segregering av individer med forbedrede rater av reproduksjon gjennom prosessen av naturlig utvelgelse. Oppfinnelsen kan likeså gi en forbedret og fullstendig atskilt fremgangsmåte og anordning for kontinuerlig dyrking av celler, så som eukaryoter (f.eks. gjær, sopp, planteceller, alger, dyreceller eller stamceller), prokaryoter, arkaea og virus.
I en ytterligere utførelse kan en emitter brukes for å utsette cellene, permanent eller midlertidig, for minst ett av radiobølger, lysbølger, røntgenstråler, lydbølger, et elektromagnetisk felt, et radioaktivt felt, radioaktive medier eller kombinasjoner av dette. Biofizika. 2005 jul.-aug., 50(4):689-92; Bioelectromagnetics.2005 sept., 26(6):431-9; Chem Commun (Camb).2005 jan. 14, (2):174-6; Biophys J.2005 feb., 88(2):1496-9; Bioelectromagnetics. 1981, 2(3):285-9; Sb Lek.1998, 99(4):455-64; Antimicrob Agents Chemother. 2004 des., 48(12):4662-4; J Food Prot.2003 sept., 66(9):1712-5;
Astrobiology. 2006 apr., 6(2):332-47; Life Sci Space Res.1970, 8:33-8; Adv Space Res. 1995 mar., 15(3):211-4; Radiat Res.2006 mai, 165(5):532-7; Mutagenesis. 2004 sept., 19(5):349-54; Cancer Si.2006 jun., 97(6):535-9; Appl Environ Microbiol.2006 mai, 72(5):3608-14 og Pol J Microbiol.2005, 54 Suppl:7-11.
I en annen utførelse kunne vekstkammerområdet av anordningen utsettes for, permanent eller midlertidig, påføring av cellene med en ulik gravitasjonskraft. For eksempel kan cellene vokse i et mikrogravitasjonsmiljø. J Gravit Physiol.2004 mar., 11(1):75-80; Immunol Rev. 2005 des.; 208:267-80 og J Gravit Physiol. Jul.; 11(2):P181-3.
Claims (20)
1.
Anordning for produksjon av levende celler som ikke er i suspensjon på en kontinuerlig måte, k a r a k t e r i s e r t v e d at anordningen omfatter: en bøyelig rørledning (1) som inneholder dyrkingsmedium og en overflate, på hvilken de levende cellene kan vokse, og at rørledningen (1) er gjennomsiktig eller gjennomskinnelig for å måle turbiditet;
et system av porter (3, 4, 5) utført ved klemmer, hver i stand til åpne og lukkede posisjoner, hvori systemet med porter oppdeler rørledningen (1) i:
i) et oppstrømsområde som inneholder ubrukt dyrkingsmedium (7) og en ubrukt overflate på hvilken nevnte celler kan vokse;
ii) et nedstrømsområde som inneholder brukt dyrkingsmedium (15); og iii) et vekstkammerområde (10) for produksjon av cellene anbrakt mellom oppstrøms- og nedstrømsområder;
og at systemet av porter (3, 4, 5) er konstruert og anordnet for å åpne og lukke seg for å klemme av og definere vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1) mellom oppstrøms- og nedstrømsområder av rørledningen (1), og for syklisk å gjendefinere vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1), slik at et første parti av det tidligere definerte vekstkammerområdet (10) blir et parti av nedstrømsområdet av rørledningen (1), og et parti av det tidligere definerte oppstrømsområdet av rørledningen (1) blir et parti av vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1) og tilveiebringer overflaten for videre vekst av nevnte celler; og
et turbidimeter (6) eller et annet apparat anordnet for å måle optisk densitet av de levende cellene i dyrkingsmediet,
hvori de lukkede portene som definerer vekstkammerområdet (10), portområdet av rørledningen (1) som utgjør vekstkammerområdet (10), mediet og dyrkingen inne i vekstkammerområdet (10) er bevegelige sammen gjennom en samtidig bevegelse av systemet av porter (3, 4, 5) slik at hver av portene ikke beveger seg med hensyn til rørledningen (1) når porten er i en lukket posisjon, og hvori nevnte celler ikke vokser i suspensjon.
2.
Anordning ifølge krav 1, k a r a k t e r i s e r t v e d at turbidimeteret (6) eller det andre apparatet som måler optisk densitet er anordnet for å virke som en del av et tilbakemeldingsstyresystem som tillater kontrollert bevegelse av rørledningen (1) basert på dyrkningsdensiteten.
3.
Anordning ifølge ett av kravene 1-2, k a r a k t e r i s e r t v e d at portene (3, 4, 5) omfatter en syklisk kjede av tenner anordnet for å sammenklemme rørledningen (1) for å definere oppstrømsområdet, nedstrømsområdet og vekstkammerområdet (10).
4.
Anordning ifølge ett av kravene 1-3, k a r a k t e r i s e r t v e d at overflaten er en innvendig overflate av rørledningen (1), eller en kontinuerlig understøttelse satt inn inne i rørledningen (1), eller en kontinuerlig fiber.
5.
Anordning ifølge ett av kravene 1-4, k a r a k t e r i s e r t v e d at anordningen videre omfatter en trykkregulator konstruert for å endre et trykk i vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1) med hensyn til et omgivende trykk og/eller en temperaturregulator konstruert for å tillate styring av en temperatur i vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1).
6.
Anordning ifølge ett av kravene 1-5, k a r a k t e r i s e r t v e d at rørledningen (1) omfatter en pH-indikator som kan være i rørledningens sammensetning eller kledning.
7.
Anordning ifølge ett av kravene 1-6, k a r a k t e r i s e r t v e d at anordningen videre omfatter en agitator som kan være i form av en rørestang (9) konstruert for å tillate agitasjon av vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1).
8.
Anordning ifølge ett av kravene 1-7, k a r a k t e r i s e r t v e d at anordningen videre omfatter en emitter konstruert for å utsette vekstdyrkingskammerområdet for minst ett av radiobølger, lysbølger, røntgenstråler, lydbølger, et elektromagnetisk felt og et radioaktivt felt, og en avvikende gravitasjonskraft.
9.
Anordning ifølge ett av kravene 1-8, k a r a k t e r i s e r t v e d at portene (3, 4, 5) omfatter en eller flere kjeder av mangfoldige tenner beveget samtidig i form av to tenner som sammentrykker rørledningen (1) på en stablende måte for å unngå forurensning mellom områder (G, H) av rørledningen (1) gjennom nøyaktigheten av grenseflaten mellom tennene.
10.
Anordning ifølge ett av kravene 1-9, k a r a k t e r i s e r t v e d at anordningen videre omfatter en vippemekanisme for å vippe vekstkammerrørledningen (1) enten nedover for å fjerne oppsamlede celler eller oppover for å fjerne luft.
11.
Anordning ifølge ett av kravene 1-10, k a r a k t e r i s e r t v e d at vekstkammerområdet (10) omfatter ett eller flere vekstkamre som inneholder dyrkingsmedium.
12.
Fremgangsmåte for produksjon av celler som ikke er i suspensjon på en kontinuerlig måte, k a r a k t e r i s e r t v e d at fremgangsmåten omfatter:
a) anvendelse av anordningen ifølge et hvilket som helst av kravene 1-11;
b) måling av turbiditeten til dyrkingsmediet med et turbidimeter (6) eller et annet apparat som måler turbiditet;
c) lukking av de utvalgte av portene (3, 4, 5) på rørledningen (1) for å definere vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1) mellom oppstrøms- og nedstrømsområdene av rørledningen (1) og innføring av levedyktige celler i vekstkammerområdet (10);
d) overvåkning av turbiditet i vekstdyrkingsmediet og når en turbiditetsmåling svarer til en ønsket vekst av dyrkingen er oppnådd lukking og åpning av de utvalgte av portene (3, 4, 5) for å gjendefinere vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1), slik at et første parti av det tidligere definerte vekstkammerområdet (10) blir et parti av nedstrømsområdet av rørledningen (1), og et parti av det tidligere definerte oppstrømsområdet av rørledningen (1) blir et parti av vekstkammerområdet (10) av rørledningen (1) og tilveiebringer overflate for videre vekst av cellene; og
e) gjentakelse av trinn d) inntil en tilstrekkelig mengde av celler har vokst, hvori de lukkede portene som definerer vekstkammerområdet (10), portområdet av rørledningen (1) som utgjør vekstkammerområdet (10), mediet og dyrkingen inne i vekstkammerområdet (10) beveger seg sammen gjennom en samtidig bevegelse av systemet av porter (3, 4, 5) slik at hver av portene ikke beveger seg med hensyn til rørledningen (1) når porten er i en lukket posisjon, og hvori cellene ikke vokser i suspensjon.
13.
Fremgangsmåte ifølge krav 12, k a r a k t e r i s e r t v e d at fremgangsmåten omfatter det ytterligere trinnet med tilbaketrekking av noen levende celler fra dyrkingsmediet fra nedstrømsområdet og isolering av de levende cellene fra nedstrømsområdet.
14.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-13, k a r a k t e r i s e r t v e d at de levende cellene velges fra gruppen bestående av alger, sopp, gjærceller, dyreceller, planteceller og stamceller.
15.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-13, k a r a k t e r i s e r t v e d at de levende cellene utgjøres av stamceller som kan være hematopoetiske stamceller, beinmargsstamceller, stromalceller, astrocytter, oligidendrocytter, embryostamceller, fosterstamceller, navlestrengstamceller, placentaavledede stamceller og voksenstamceller.
16.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-15, k a r a k t e r i s e r t v e d at fremgangsmåten videre omfatter dyrking av én eller flere typer celler i vekstkammerområdet (10).
17.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-16, k a r a k t e r i s e r t v e d at fremgangsmåten videre omfatter at cellene ikke vokser i suspensjon eller vokser som kohesive celler.
18.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-17, k a r a k t e r i s e r t v e d at trinn d) tillater fortynning ved anbringelse av en bestemt mengde med friskt medium fra oppstrømsområdet i vekstkammeret, mens en lik mengde av dyrkning isoleres og fjernes fra vekstkammeret til nedstrømsområdet gjennom den andre ytterkanten av vekstkammeret.
19.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-17, k a r a k t e r i s e r t v e d at trinn d) videre omfatter bevegelse av rørledningen (1) mellom hver vekstsyklus slik at vekstkammerområdet fornyes sammen med innføringen av ubrukt dyrkingsmedium (7), noe som således forhindrer en mulig formering av en fortynningsbestandig populasjon mens eventuell forurensning av det isolerte voksekammeret unngås.
20.
Fremgangsmåte ifølge ett av kravene 12-19, k a r a k t e r i s e r t v e d at fremgangsmåten videre omfatter dyrking av celler under tilstander som begunstiger den naturlige utvelgelsen av de levende cellene, slik at de levende cellene oppviser en økt rate av reproduksjon og/eller spesifikke metabolske egenskaper.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US83382106P | 2006-07-28 | 2006-07-28 | |
US11/508,286 US20070037276A1 (en) | 2004-02-23 | 2006-08-23 | Continuous culture apparatus with mobile vessel, allowing selection of fitter cell variants and producing a culture in a continuous manner |
PCT/US2007/016960 WO2008013967A2 (en) | 2006-07-28 | 2007-07-30 | Continuous culture apparatus with mobile vessel and producing a culture in a continuous manner |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO20090953L NO20090953L (no) | 2009-04-28 |
NO344489B1 true NO344489B1 (no) | 2020-01-13 |
Family
ID=38738923
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO20090953A NO344489B1 (no) | 2006-07-28 | 2009-03-02 | Kontinuerlig dyrkingsanordning med bevegelig beholder og tilvirking av en dyrking på en kontinuerlig måte |
Country Status (14)
Country | Link |
---|---|
US (3) | US20070037276A1 (no) |
EP (1) | EP2049653B1 (no) |
JP (3) | JP2009544323A (no) |
KR (1) | KR101507621B1 (no) |
CN (1) | CN103725611A (no) |
AU (1) | AU2007277105B2 (no) |
BR (1) | BRPI0714707B1 (no) |
CA (1) | CA2658126C (no) |
IL (1) | IL196620A (no) |
MX (1) | MX2009000913A (no) |
NO (1) | NO344489B1 (no) |
NZ (1) | NZ597527A (no) |
RU (1) | RU2009107209A (no) |
WO (1) | WO2008013967A2 (no) |
Families Citing this family (20)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20090209031A1 (en) * | 2006-01-26 | 2009-08-20 | Tyco Healthcare Group Lp | Medical device package |
JP5023795B2 (ja) | 2007-04-27 | 2012-09-12 | 東洋製罐株式会社 | 細胞培養方法、細胞培養システム、及び培地調整装置 |
WO2008136371A1 (ja) * | 2007-04-27 | 2008-11-13 | Toyo Seikan Kaisha, Ltd. | 細胞培養装置、細胞培養システム及び細胞培養方法 |
FR2927906B1 (fr) * | 2008-02-21 | 2010-04-02 | Eco Solution | Procede et dispositif de culture cellulaire en mode continu ouvert. |
FR2937455B1 (fr) * | 2008-10-20 | 2010-12-03 | Gen Biscuit | Methode in vitro modelisant la consistance generee in vivo par un aliment au cours de sa digestion |
AU2010242915A1 (en) * | 2009-04-29 | 2011-12-15 | Eudes De Crecy | Adapting microorganisms for agricultural products |
EP2467023A2 (en) * | 2009-08-17 | 2012-06-27 | Eudes De Crecy | Biocontrol microorganisms |
JP5633919B2 (ja) * | 2009-11-24 | 2014-12-03 | 株式会社 バイオミメティクスシンパシーズ | 幹細胞の培養装置及び培養方法 |
WO2011153364A1 (en) | 2010-06-02 | 2011-12-08 | Eudes De Crecy | Evolving microorganisms on complex hydrocarbons |
KR101292265B1 (ko) | 2011-04-15 | 2013-08-01 | 메디칸(주) | 세포 배양 및 탈리 장치 및 방법 |
KR102121003B1 (ko) * | 2012-04-23 | 2020-06-10 | 시에이치알. 한센 에이/에스 | 앰피실린 내성 조직화 젖산 박테리아 균주 |
JP6051730B2 (ja) | 2012-09-24 | 2016-12-27 | 東洋製罐グループホールディングス株式会社 | 気泡除去方法、及び気泡除去装置 |
JP6147619B2 (ja) * | 2013-09-09 | 2017-06-14 | 株式会社日立製作所 | 細胞培養装置及び細胞培養方法 |
EP3239290A1 (en) * | 2014-12-25 | 2017-11-01 | Olympus Corporation | Cell culture apparatus and cell culture bag |
KR102427457B1 (ko) | 2015-03-24 | 2022-08-01 | 메디칸(주) | 연속 세포 배양 증식장치 및 방법 |
WO2018007157A1 (en) * | 2016-07-05 | 2018-01-11 | General Electric Company | Apparatus and methods for adjustable volume cell culture |
KR101901672B1 (ko) | 2017-01-25 | 2018-10-25 | 주식회사 디오스템스 | 줄기세포 배양기 및 배양 방법, 줄기세포 연속 배양, 추출 및 분리 시스템 및 방법 |
JP6502593B2 (ja) * | 2017-04-07 | 2019-04-17 | オリンパス株式会社 | 培地交換装置および培養システム |
KR20210109264A (ko) | 2020-02-27 | 2021-09-06 | 메디칸(주) | 세포를 배양하는 장치 및 방법 |
WO2023122224A2 (en) * | 2021-12-21 | 2023-06-29 | Pow Genetic Solutions, Inc. | Methods and systems for optimizing culture conditions in a culture process |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CH552063A (de) * | 1971-04-29 | 1974-07-31 | Bieri Otto | Verfahren und vorrichtung zur anzuechtung lyophilisierter anaerober bakterien auf sterilen naehrmedien zu aktiven kulturen. |
JPH0330665A (ja) * | 1989-06-28 | 1991-02-08 | Mitsubishi Heavy Ind Ltd | 自動植え継ぎ装置 |
WO1994009895A1 (en) * | 1992-11-02 | 1994-05-11 | Nederlandse Organisatie Voor Toegepast-Natuurwetenschappelijk Onderzoek Tno | Reactor system |
Family Cites Families (21)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4734372A (en) * | 1983-02-04 | 1988-03-29 | Brown University Research Foundation | Cell culturing methods and apparatus |
SU1252334A1 (ru) * | 1983-09-21 | 1986-08-23 | Институт Биохимии И Физиологии Микроорганизмов Ан Ссср | Установка дл твердофазной ферментации |
US4703010A (en) * | 1986-05-02 | 1987-10-27 | The Board Of Regents For The University Of Oklahoma | Electrolytic bioreactor assembly and method |
EP0258795B1 (en) * | 1986-08-27 | 1993-11-03 | Kawasumi Laboratories, Inc. | A method for cultivating cells and an instrument therefor |
US5786215A (en) * | 1987-05-20 | 1998-07-28 | Baxter International Inc. | Method for culturing animal cells |
US5399493A (en) * | 1989-06-15 | 1995-03-21 | The Regents Of The University Of Michigan | Methods and compositions for the optimization of human hematopoietic progenitor cell cultures |
JPH0622753A (ja) * | 1992-07-08 | 1994-02-01 | Hitachi Ltd | 細胞培養方法及びその装置 |
JPH06237754A (ja) * | 1992-12-25 | 1994-08-30 | Mitsui Toatsu Chem Inc | 細胞分離装置及びそれを用いる細胞の分離方法並びに細胞培養装置及びそれを用いる細胞の培養方法 |
JP3412364B2 (ja) * | 1995-10-04 | 2003-06-03 | 富士レビオ株式会社 | 細胞培養装置及び細胞培養方法 |
CN1125172C (zh) * | 1997-04-18 | 2003-10-22 | 国家科学研究中心 | 用于微生物学诊断的设备,套件和方法 |
DE19856136C2 (de) * | 1998-12-04 | 2002-10-24 | Pasteur Institut | Verfahren und Vorrichtung zur Selektion beschleunigter Proliferation lebender Zellen in Suspension |
JP2000287672A (ja) | 1999-04-06 | 2000-10-17 | Canon Inc | チューブ状培養槽による微生物の連続培養方法及び装置 |
JP4434416B2 (ja) | 2000-03-23 | 2010-03-17 | エイブル株式会社 | 高圧培養装置及びこれを用いた深水生物の育成方法 |
JP2002112763A (ja) * | 2000-10-10 | 2002-04-16 | Nipro Corp | 細胞培養容器 |
US6403369B1 (en) * | 2001-01-19 | 2002-06-11 | Gary W. Wood | Cell culture vessel |
US7033823B2 (en) * | 2002-01-31 | 2006-04-25 | Cesco Bioengineering, Inc. | Cell-cultivating device |
US7498171B2 (en) * | 2002-04-12 | 2009-03-03 | Anthrogenesis Corporation | Modulation of stem and progenitor cell differentiation, assays, and uses thereof |
JP2004208663A (ja) | 2003-01-09 | 2004-07-29 | Ochiyanomizu Jiyoshi Univ | 細胞培養システム |
BRPI0507983B1 (pt) * | 2004-02-23 | 2015-04-22 | Eudes François Marie De Crecy | Dispositivo e método que aumentam a taxa de reprodução de células vivas em suspensão ou de quaisquer organismos cultiváveis, incluíndo bactérias, archea, eucariotos, e vírus, pelo processo de seleção natural pela maior velocidade de reprodução e/ou maior rendimento reprodutivo |
JP2005253305A (ja) * | 2004-03-09 | 2005-09-22 | Masataka Murahara | 3次元細胞培養素子の製作方法 |
WO2005095577A1 (ja) * | 2004-03-31 | 2005-10-13 | Japan Tissue Engineering Co., Ltd. | 培養容器、軟骨細胞培養方法および軟骨細胞評価方法 |
-
2006
- 2006-08-23 US US11/508,286 patent/US20070037276A1/en not_active Abandoned
-
2007
- 2007-07-30 EP EP07810870.1A patent/EP2049653B1/en not_active Not-in-force
- 2007-07-30 CN CN201310470441.3A patent/CN103725611A/zh active Pending
- 2007-07-30 JP JP2009521860A patent/JP2009544323A/ja active Pending
- 2007-07-30 AU AU2007277105A patent/AU2007277105B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2007-07-30 BR BRPI0714707A patent/BRPI0714707B1/pt not_active IP Right Cessation
- 2007-07-30 NZ NZ597527A patent/NZ597527A/xx not_active IP Right Cessation
- 2007-07-30 CA CA2658126A patent/CA2658126C/en not_active Expired - Fee Related
- 2007-07-30 KR KR1020097003910A patent/KR101507621B1/ko active IP Right Grant
- 2007-07-30 RU RU2009107209/10A patent/RU2009107209A/ru unknown
- 2007-07-30 MX MX2009000913A patent/MX2009000913A/es active IP Right Grant
- 2007-07-30 WO PCT/US2007/016960 patent/WO2008013967A2/en active Application Filing
-
2009
- 2009-01-20 IL IL196620A patent/IL196620A/en active IP Right Grant
- 2009-03-02 NO NO20090953A patent/NO344489B1/no not_active IP Right Cessation
-
2012
- 2012-03-26 US US13/430,220 patent/US20120184009A1/en not_active Abandoned
-
2013
- 2013-03-11 JP JP2013047713A patent/JP2013135692A/ja active Pending
-
2014
- 2014-03-18 US US14/218,294 patent/US9428734B2/en active Active
-
2015
- 2015-07-24 JP JP2015147247A patent/JP6154439B2/ja not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CH552063A (de) * | 1971-04-29 | 1974-07-31 | Bieri Otto | Verfahren und vorrichtung zur anzuechtung lyophilisierter anaerober bakterien auf sterilen naehrmedien zu aktiven kulturen. |
JPH0330665A (ja) * | 1989-06-28 | 1991-02-08 | Mitsubishi Heavy Ind Ltd | 自動植え継ぎ装置 |
WO1994009895A1 (en) * | 1992-11-02 | 1994-05-11 | Nederlandse Organisatie Voor Toegepast-Natuurwetenschappelijk Onderzoek Tno | Reactor system |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CA2658126A1 (en) | 2008-01-31 |
JP2013135692A (ja) | 2013-07-11 |
AU2007277105A1 (en) | 2008-01-31 |
JP2009544323A (ja) | 2009-12-17 |
NZ597527A (en) | 2013-08-30 |
JP6154439B2 (ja) | 2017-06-28 |
WO2008013967A3 (en) | 2008-03-20 |
CA2658126C (en) | 2016-05-03 |
IL196620A0 (en) | 2009-11-18 |
JP2015213515A (ja) | 2015-12-03 |
US20150056644A1 (en) | 2015-02-26 |
KR20090050060A (ko) | 2009-05-19 |
CN103725611A (zh) | 2014-04-16 |
US9428734B2 (en) | 2016-08-30 |
US20120184009A1 (en) | 2012-07-19 |
WO2008013967A2 (en) | 2008-01-31 |
BRPI0714707A2 (pt) | 2013-05-14 |
BRPI0714707B1 (pt) | 2017-01-31 |
NO20090953L (no) | 2009-04-28 |
RU2009107209A (ru) | 2010-09-10 |
AU2007277105B2 (en) | 2011-03-31 |
KR101507621B1 (ko) | 2015-03-31 |
US20070037276A1 (en) | 2007-02-15 |
EP2049653B1 (en) | 2017-06-21 |
IL196620A (en) | 2013-10-31 |
WO2008013967A8 (en) | 2008-06-05 |
MX2009000913A (es) | 2009-03-03 |
EP2049653A2 (en) | 2009-04-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
NO344489B1 (no) | Kontinuerlig dyrkingsanordning med bevegelig beholder og tilvirking av en dyrking på en kontinuerlig måte | |
RU2373273C2 (ru) | Устройство для непрерывной культуры с мобильным сосудом, позволяющим выполнять отбор наиболее подходящих вариантов клеток | |
WO2015048712A2 (en) | Independent ports in automated bioreactor system | |
ZA200900434B (en) | Continuous culture apparatus with mobile vessel and producing a culture in a continuous manner | |
AU2011203125B2 (en) | Continuous culture Apparatus With Mobile Vessel and Producing a Culture in a Continuous Manner | |
KR101203766B1 (ko) | 필터 세포 변형체를 선발할 수 있는, 이동성 용기를 구비한연속 배양 장치 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM1K | Lapsed by not paying the annual fees |