MD707Z - Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric - Google Patents

Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric Download PDF

Info

Publication number
MD707Z
MD707Z MDS20130005A MDS20130005A MD707Z MD 707 Z MD707 Z MD 707Z MD S20130005 A MDS20130005 A MD S20130005A MD S20130005 A MDS20130005 A MD S20130005A MD 707 Z MD707 Z MD 707Z
Authority
MD
Moldova
Prior art keywords
temperature
nos3
concentration
dna
primers
Prior art date
Application number
MDS20130005A
Other languages
English (en)
Russian (ru)
Inventor
Ион ТОДЕРАШ
Александру МОВИЛЭ
Наталия КАПРОШ
Валериу ИСТРАТИ
Лидия ТОДЕРАШ
Original Assignee
Институт Зоологии Академии Наук Молдовы
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Зоологии Академии Наук Молдовы filed Critical Институт Зоологии Академии Наук Молдовы
Priority to MDS20130005A priority Critical patent/MD707Z/ro
Publication of MD707Y publication Critical patent/MD707Y/ro
Publication of MD707Z publication Critical patent/MD707Z/ro

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Invenţia se referă la genetica medicală moleculară, şi anume la o metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric.Esenţa metodei constă în aceea că se colectează proba integrală de sânge, se extrage ADN cu hidroxid de amoniu 0,7 M, se menţine la temperatura camerei timp de 5 min şi se incubează într-un termostat la temperatura de 100ºC timp de 30 min cu agitare continuă, apoi ADN extras se amplifică cu utilizarea primerilor NOS3 sens: 5´-GCCCTATGGTAGTAGTGCCTTT-3´ şi NOS3 antisens: 5´- CCTCTTAGTGCTGTGGTCA-3´, totodată se efectuează denaturarea iniţială la temperatura de 94°C timp de 3 min, apoi se efectuează 30 de cicluri cu denaturarea la temperatura de 94°C timp de 1 min, la temperatura de 54°C timp de 30 s, la temperatura de 72°C timp de 30 s şi la temperatura de 72°C timp de 5 min, se separă fragmentele amplificate de ADN în gel de agaroză de 1,8%, se colorează cu o soluţie de bromură de etidiu de 0,5 µg/mL şi se identifică secvenţele polimorfe.

Description

Invenţia se referă la genetica medicală moleculară, şi anume la o metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric.
În condiţii fiziologice oxidul de azot (NO) acţionează în calitate de mediator al mai multor funcţii biologice, una dintre cele mai importante fiind adaptarea sistemului vascular la necesităţile metabolice intensificate după efortul fizic. Excesul de NO în condiţii patologice induce vasodilatarea periferică şi sincopă, iar insuficienţa oxidului nitric a fost asociată cu astfel de patologii ca hipertensiunea arterială, ateroscleroza şi cardiopatia ischemică. Este demonstrat că concentraţia de NO în sânge depinde de activitatea enzimei genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric (eNOS), aceasta din urmă depinde de polimorfismul genetic ce o codează.
Elaborarea procedeelor inofensive, şi totodată eficiente, de diagnosticare şi pronosticare genetică a bolilor coronariene cu identificarea polimorfismului genei sintetazei endoteliale de oxid nitric (eNOS) este una dintre problemele actuale în medicina clinică modernă.
Este cunoscut un procedeu de diagnosticare genetică a polimorfismului în intronul 4 al genei care codează sintetaza endotelială a NO, prin reacţia de polimerizare în lanţ, unde ADN se extrage din sângele periferic al pacienţilor cu boli cardiovasculare. În intronul 4 al genei eNOS există polimorfismul 4a/4b, care conţine 4 sau 5 repetări de 27 pb (perechi de bază). Această substituţie facilitează potenţialul clivajului enzimei în acest site, diminuând funcţionalitatea genei eNOS.
Pentru amplificarea porţiunii de ADN, ce conţine secvenţa nucleotidică polimorfă eNOS-4a/4b au fost utilizaţi primerii sens (s) şi antisens (as) cu următoarele secvenţe:
1) NOS3 (s) 5 ́-AGGCCCTATGGTAGTAGTGCCTTTT -3 ́ ;
2) NOS3 (as) 5 ́-TCTCTTAGTGCTGTGGTCAT-3 ́.
Amplificarea fragmentului ADN, ce conţine markerul polimorf minisatelit eNOS-4a/4b, s-a efectuat în 50 µL soluţie: Master Mix (echivalent Fermentas) (2×) - 25 µL, primer sens - 1 pM/µL - 5 µL, primer antisens - 1 pM/µL - 5 µL, ADN genomic - 5 ng/µL - 10 µL, H2O ultrapură - 5 µL.
Compoziţia soluţiei Master Mix este următoarea: soluţie pentru executarea PCR (reacţiei de polimerizare în lanţ) care conţine MgCl2 - în concentraţie de 2,0 mM - 4,0 µL; dezoxinucleozidtrifosfat-5 ́-trifosfat (dNTP) în concentraţie de 0,4 mM - 0,4 µL; Taq polimerază în concentraţie de 0,05 unităţi/µL - 2,0 µL, H2O ultrapură - 18,6 µL.
PCR s-a realizat cu ajutorul termociclerului Crocodil-III (Appligene S.A., Franţa) prin programul automat de amplificare cu regimul următor:
primul ciclu - 94°C/3 min, următoarele 35 cicluri - 94°C/1 min, 60°C/1 min, 72°C/1 min, ultimul ciclu - 72°C/6 min. Identificarea alelelor s-a executat după separarea fragmentelor ADN amplificate în gel de agaroză de 2% şi s-au colorat cu soluţie de bromură de etidiu (0,5 µg/mL).
Ampliconul alelei 4a a avut lungimea de 393 perechi de nucleotide (pn), iar cel al alelei 4b - de 420 pn [1].
Dezavantajele procedeului descris constau în faptul că este costisitor, totodată:
1) implică izolarea ADN prin utilizarea unor kituri de reactivi costisitori; 2) primerii recomandaţi formează un număr mare de dimeri în procesul de amplificare; 3) lungimea primerilor NOS3 este mare (25 pb); PCR se efectuează într-un volum de 50 µL de amestec, utilizând astfel o cantitate mare de reagenţi chimici, şi, de asemenea, de ADN izolat din sângele pacienţilor. Acelaşi program al metodei PCR în termociclu necesită o lungă perioadă de timp - 114 min. Pentru vizualizarea produselor PCR se foloseşte gelul de agaroză de 2%, ceea ce, de asemenea, prezintă un consum excesiv de reactivi, care pot fi periculoşi sănătăţii investigatorilor în cazul lipsei echipamentelor şi techicilor speciale de protecţie. Toate acestea necesită cheltuieli considerabile şi contribuie la tergivesarea analizelor şi stabilirea în termen a diagnosticului clinic.
Problema pe care o rezolvă prezenta invenţie constă în majorarea eficienţei metodei de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric, precum şi în ieftinirea şi accelerarea ei.
Esenţa metodei constă în aceea că se colectează proba integrală de sânge, se extrage ADN cu hidroxid de amoniu 0,7 M, se menţine la temperatura camerei timp de 5 min şi se incubează într-un termostat la temperatura de 100ºC timp de 30 min cu agitare continuă, apoi ADN extras se amplifică cu utilizarea primerilor NOS3 sens: 5 ́-GCCCTATGGTAGTAGTGCCTTT-3 ́ şi NOS3 antisens: 5 ́- CCTCTTAGTGCTGTGGTCA-3 ́, totodată se efectuează denaturarea iniţială la temperatura de 94°C timp de 3 min, apoi se efectuează 30 de cicluri cu denaturarea la temperatura de 94°C timp de 1 min, la temperatura de 54°C timp de 30 s, la temperatura de 72°C timp de 30 s şi la temperatura de 72°C timp de 5 min, se separă fragmentele amplificate de ADN în gel de agaroză de 1,8%, se colorează cu o soluţie de bromură de etidiu de 0,5 µg/mL şi se identifică secvenţele polimorfe.
Modificarea primerilor a fost concepută în scopul reducerii costului şi creşterii eficienţei amplificării fragmentelor ADN. Modelarea pentru modificarea primerilor a fost efectuată cu ajutorul soft-ului Oligo Analyzer 3.1. La toate etapele de modelare au fost respectate legile clasice cunoscute de proiectare a primerilor.
Modificarea primerului NOS3 (s) a fost realizată într-o etapă prin deleţia nucleotidei AG din capătul 5 ́ şi primei nucleotide T din capătul 3':
NOS3 (s) 5 ́-AGGCCCTATGGTAGTAGTGCCTTTT -3 ́ NOS3_modif_s: 5 ́-GCCCTATGGTAGTAGTGCCTT-3 ́
Modificarea primerului NOS3 (as) a fost realizată în 2 etape. În scopul ameliorării topirii nucleotida T la capătul 5' a fost înlocuită cu nucleotida C. La a doua etapă prima nucleotidă T din capătul 3' a fost eliminată în scopul scurtării lungimii şi reducerii costului primerului.
NOS3 (as) 5 ́-TCTCTTAGTGCTGTGGTCAT-3 ́ NOS3_modif_as: 5 ́- CCTCTTAGTGCTGTGGTCA-3 ́
Rezultatul invenţiei constă în ieftinirea metodei date prin utilizarea concentraţiilor mai mici ale componentelor reacţiei, precum şi în accelerarea acesteia prin reducerea ciclurilor de reacţie în termociclul pentru PCR, ceea ce o face mai eficientă.
Exemple de realizare a invenţiei
Exemplul 1
Pentru efectuarea metodei propuse s-au utilizat leucocitele din sângele periferic colectat de la 10 pacienţi cu cardiopatie ischemică. În total s-au efectuat câte 10 teste în 3 repetiţii pentru analiza eficienţei metodei propuse în comparaţie cu cea mai apropiată soluţie.
Prelevarea sângelui venos şi separarea leucocitelor din sângele periferic s-a realizat prin metoda standard.
Metoda propusă s-a realizat în felul următor: ADN-ul a fost extras din leucocitele sângelui integral eliberate prin fierbere cu hidroxid de amoniu (MD 3539).
Programul separării ADN: 10 µL de soluţie conţinând aproape 10 000 de leucocite s-au amestecat cu 100 µL de 0,7 М de soluţie de hidroxid de amoniu în eprubete de tip Eppendorf şi s-au menţinut la temperatura camerei timp de 5 min. Apoi eprubetele închise au fost incubate în termostat la temperatura de 100°C agitând continuu timp de 30 min. Concentraţia ADN-ului izolat s-a verificat utilizând spectrofotometrul.
ADN extras s-a amplificat prin metoda PCR cu utilizarea primerilor NOS3 sens (s) : 5 ́-GCCCTATGGTAGTAGTGCCTTT-3 ́ şi NOS3 antisens (as): 5 ́- CCTCTTAGTGCTGTGGTCA-3 ́.
Pentru realizarea reacţiei s-au utilizat reactivi ai companiei Fermentas Inc. S-au efectuat în paralel 2 experimente testate conform metodei propuse şi celei mai apropiate soluţii.
Amplificarea ADN-ului s-a efectuat într-un volum de soluţie de 25 µL.
Amestecul de PCR pentru amplificare contine, µL:
soluţie Master Mix - 12,5,
primer sens cu concentraţia de 0,75 pM/µL - 1,25,
primer antisens cu concentraţia de 0,75 pM/µL - 1,25,
ADN genomic cu concentraţia de 5 ng/µL - 5,
H2O ultrapură - 5 µL;
totodată compoziţia soluţiei Master Mix conţine, µL:
MgCl2 cu concentraţia de 2,0 mM - 2,0,
dNTP cu concentraţia de 0,4 mM- 0,2,
Taq polimerază cu concentraţia de 0,05 Unităţi/µl - 1,0,
H2O ultrapură - 9,3.
Reacţia PCR s-a realizat cu ajutorul termociclerului prin programul automat de amplificare cu regimul următor:
primul ciclu - 94°C/3 min, următoarele 30 cicluri - 94°C/1 min, 54°C/30 s, 72°C/30 s, ultimul ciclu - 72°C/5 min. Identificarea alelelor s-a executat după separarea fragmentelor ADN amplificate în gel de agaroză de 1,8% care se colorează cu o soluţie de bromură de etidiu (0,5 µg/mL).
La toţi 10 pacienţi ampliconul alelei 4a a avut lungimea de 393 pn, iar cel al alelei 4b - de 420 pn.
Paralel, pentru studii de comparaţie au fost efectuate cercetări în conformitate cu cea mai apropiată soluţie.
Eficienţa metodei de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric a fost evaluată prin compararea numărului (%) de produse PCR pozitive cu cea mai apropiată soluţie (tab. 1).
Caracteristica comparativă a metodei conform invenţiei
şi metodei conform celei mai apropiate soluţii
Tabelul 1
Metoda, invenţia Metoda, cea mai apropiată soluţie PCR Master mix Volumul final 25 µL Volumul final 50 µL • Master Mix11 - 12,5 µL • primer sens NOS3_modif_s (în concentraţie de 0,75 pM/µL) - 1,25 µL • primer antisens NOS3_modif_as (în concentraţie de 0,75 pM / µL) - 1,25 µL • H2O ultrapură - 5 µL • ADN genomic (în concentraţie de 5 ng/ µL) - 5 µL • Master Mix12 - 25 µL • primer sens NOS3 (s) (în concentraţie de 1,0 pM/µL) - 5,0 µL • primer antisens NOS3 (as) (în concentraţie de 1 pM/µL) - 5,0 µL • H2O ultrapură - 5 µL • ADN genomic (în concentraţie de 5 ng/ µL) - 10 µL Regimul de amplificare • primul ciclu - 94°C/3 min • primul ciclu - 94°C/3 min • următoarele 30 cicluri - 94°C/1 min, 54°C/30 s, 72°C/30 s • următoarele 35 cicluri - 94°C/1 min, 60°C/1 min, 72°C/1 min • ultimul ciclu - 72°C/5 min • ultimul ciclu - 72°C/6 min Vizualizarea produselor PCR în gel de agaroză • identificarea alelelor s-a efectuat după separarea fragmentelor ADN amplificate în gel de agaroză de 1,8%, care s-au colorat cu o soluţie de bromură de etidiu (0,5 µg/mL) • identificarea alelelor s-a efectuat după separarea fragmentelor ADN amplificate în gel de agaroză de 2%, care s-au colorat cu o soluţie de bromură de etidiu (0,5 µg/mL) Ampliconul alelei 4a a avut lungimea de 393 pn, iar cel al alelei 4b - de 420 pn.
La aprecierea rezultatelor reacţiei, amplificarea pozitivă s-a notat cu punctajul 1, iar cea negativă - cu 0. Datele din tab. 2 demonstrează că rezultatele experimentului sunt absolut identice, prin urmare, metoda solicitată nu numai nu cedează metodei-prototip în eficienţă, dar este superioară în ceea ce priveşte economia financiară şi a timpului.
Tabelul 2
Analiza comparativă a rezultatelor amplificării genei de codare a sintetazei endoteliale
a oxidului nitric
Nr. amplifi-cării Rata de succes a reacţiei PCR, efectuată prin metoda propusă Rata de succes a reacţiei PCR, efectuată prin cea mai apropiată metodă Prezenţa produsului PCR Absenţa produsului PCR Prezenţa produsului PCR Absenţa produsului PCR I 1 0 1 0 II 1 0 1 0 III 1 0 1 0 IV 1 0 1 0 V 1 0 1 0 VI 1 0 1 0 VII 0 1 0 1 VIII 1 0 1 0 IX 1 0 1 0 X 1 0 1 0 Total 9 1 9 1
Exemplul 2
Pentru testarea primerilor perfecţionaţi în raport cu primerii cunocuţi conform cele mai apropiate soluţii s-a utilizat soft-ul Oligo Analyzer 3.1 şi baza internaţională de date genetice GenBank.
А. Comparaţia primerilor sens: NOS3 (s) 5 ́-TCTCTTAGTGCTGTGGTCAT-3 ́şi NOS3_modif_s ́-GCCCTATGGTAGTAGTGCCTTT-3 ́.
Comparaţia parametrilor molecular-biologici ai primerilor s-a realizat utilizând datele genetice din baza internaţională GenBank prin metoda de analiză BLAST.
Rezultatele demonstrează identitatea ambilor primeri de 100% cu ADN genomic uman şi acoperire de 77% (primeri omologi cu secvenţa de ADN depozitat în baza de date sub numărul AL110203). Astfel, ambii primeri pot fi utilizaţi în reacţia PCR ca primeri sens.
Comparaţia parametrilor fizici ai ambilor primeri este prezentată în tab 3.
Tabelul 3
Parametrii/primerii NOS3 (s) NOS3_modif_s Lungimea primerului, bp 25 22 Temperatura de topire 59,6ºC 56,4ºC Mărimea coeficientului termodinamic al structurii stabile secundare -1,37ºC -0,22ºC Cantitatea de dimeri 13 12
Comparaţia parametrilor primerilor relevă lungimea mai scurtă a primerului NOS3_modif_s în raport cu NOS3 (s). Astfel, sinteza primerului perfecţionat cu lungimea mai scurtă cu 3 nucleotide prin metoda propusă permite o economie financiară. Un punct de topire mai jos comparativ cu originalul economiseşte cheltuielile de energie necesară în reacţie. Primerul perfecţionat are un număr mai mic de dimeri, precum şi structuri secundare instabile, reducând numărul de amplificări non-specifice în timpul PCR.
В. Comparaţia primerilor antisens: NOS3 (as) 5 ́-TCTCTTAGTGCTGTGGTCAT-3 ́ şi NOS3_modif_as: 5 ́- CCTCTTAGTGCTGTGGTCA-3 ́
Rezultatele demonstrează identitatea de 100% a ambilor primeri NOS3 (as) şi NOS3_modif_as cu ADN genomic uman, ce codifică intronul 4 al genei NOS3, şi acoperirea de 95...100% (primeri omologi cu secvenţa de ADN depozitată în baza de date sub numărul NOS3). Astfel, ambii primeri pot fi utilizaţi în reacţia PCR ca primeri antisens. În plus, primerul perfecţionat are afinitate cu 5% mai mare pentru intronul 4 al genei NOS3.
Comparaţia parametrilor fizici ai ambilor primeri este prezentată în tab 4.
Tabelul 4
Parametrii/primerii NOS3 (as) NOS3_modif_as Lungimea primerului, bp 20 19 Temperatura de topire 53,1ºC 54,0ºC Mărimea coeficientului termodinamic al structurii stabile secundare +1,44ºC +0,8ºC Cantitatea de dimeri 9 9
Comparaţia parametrilor primerilor relevă dimensiunea mai mare a primerului NOS3_modif_as în raport cu NOS3 (as). Astfel, sinteza primerului perfecţionat cu lungimea mai scurtă cu o nucleotidă permite o economie financiară. Primerul perfecţionat are structuri secundare mai instabile, ce reduce numărul de amplificări non-specifice în PCR.
С. Modelarea PCR cu utilizarea perechilor de primeri modificaţi NOS3_modif_s / NOS3_modif_as şi primerii cunosuţi NOS3 (s) / NOS3 (as).
Conform regulilor cunoscute pentru PCR, diferenţa dintre temperaturile de topire a primerilor sens-antisens trebuie să fie minimă. Astfel, primerii modificaţi satisfac cel mai bine această cerinţă. Perechea de primeri modificaţi necesită o temperatură de topire mai mică, economisind costurile energetice la încălzirea amplificatorului (tab. 5).
Considerând că dimensiunea produselor de amplificare presupuse va fi de 420 pb, în corespundere cu regulile generale de amplificare, timpul topirii şi elongării poate fi scurtat, ceea ce va reduce durata reacţiei.
Tabelul 5
Parametrii/primerii NOS3 (s) / NOS3 (as) NOS3_modif_s / NOS3_modif_as Diferenţa dintre temperaturile de topire a primerilor 6,5ºC (59,6ºC - 53,1ºC) 2,4ºC (56,4ºC - 54,0ºC) Temperatura de topire a primerilor 60°C 54°C Modelarea programului de amplificare PCR primul ciclu - 94°C/3 min, următoarele 35 cicluri - 94°C/1 min, 60°C/1 min, 72°C/1 min, ultimul ciclu - 72°C / 6 min. primul ciclu - 94°C/3 min, următoarele 30 cicluri - 94°C/1 min, 54°C/30 s, 72°C/30 s, ultimul ciclu - 72°C/5 min.
Astfel, metoda de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric este mai eficientă, mai ieftină şi de o durată mai scurtă.
1. Caproş N., Istrati V., Popescu V., Butovscaia C., Popovici I. Polimorfismul genei sintetazei endoteliale de oxid nitric la pacienţii cu sindrom coronarian acut. Anale Ştiinţifice ale Universităţii de Stat de Medicină şi Farmacie "N.Testemiţanu". Probleme actuale în medicina internă. Zilele Universităţii 21-23 octombrie, ed. a X-a, Chişinău, 2009, vol. III, p. 57-62

Claims (1)

  1. Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric, care constă în aceea că se colectează proba integrală de sânge, se extrage ADN cu hidroxid de amoniu 0,7 M, se menţine la temperatura camerei timp de 5 min şi se incubează într-un termostat la temperatura de 100ºC timp de 30 min cu agitare continuă, apoi ADN extras se amplifică cu utilizarea primerilor NOS3 sens: 5 ́-GCCCTATGGTAGTAGTGCCTTT-3 ́ şi NOS3 antisens: 5 ́- CCTCTTAGTGCTGTGGTCA-3 ́ într-un amestec ce conţine, în µL:
    soluţie Master Mix 12,5 primer sens în concentraţie de 0,75 pM/µL 1,25 primer antisens în concentraţie de 0,75 pM/µL 1,25 ADN genomic în concentraţie de 5 ng/µL 5 H2O ultrapură 5, totodată soluţia Master Mix conţine, în µL:
    MgCl2 în concentraţie de 2,0 mM 2,0 dNTP în concentraţie de 0,4 mM 0,2 Taq polimerază în concentraţie de 0,05 unităţi/µL 1,0 H2O ultrapură 9,3, totodată se efectuează denaturarea iniţială la temperatura de 94°C timp de 3 min, apoi se efectuează 30 de cicluri cu denaturarea la temperatura de 94°C timp de 1 min, la temperatura de 54°C timp de 30 s, la temperatura de 72°C timp de 30 s şi la temperatura de 72°C timp de 5 min, se separă fragmentele amplificate de ADN în gel de agaroză de 1,8%, se colorează cu o soluţie de bromură de etidiu de 0,5 µg/mL şi se identifică secvenţele polimorfe.
MDS20130005A 2013-01-18 2013-01-18 Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric MD707Z (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
MDS20130005A MD707Z (ro) 2013-01-18 2013-01-18 Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
MDS20130005A MD707Z (ro) 2013-01-18 2013-01-18 Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric

Publications (2)

Publication Number Publication Date
MD707Y MD707Y (ro) 2013-12-31
MD707Z true MD707Z (ro) 2014-07-31

Family

ID=49912590

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
MDS20130005A MD707Z (ro) 2013-01-18 2013-01-18 Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric

Country Status (1)

Country Link
MD (1) MD707Z (ro)

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2002110275A (ru) * 2000-08-22 2004-03-27 Дзе Брихэм Энд Уимен'З Хоспитал, Инк. (Us) Диагностика и лечение сердечно-сосудистых состояний
EA007014B1 (ru) * 2000-05-05 2006-06-30 Апплайд Резеч Системз Арс Холдинг Н.В. Применение il-18 в качестве диагностического маркера
RU2304775C2 (ru) * 2005-07-27 2007-08-20 Олег Сергеевич Глотов Способ диагностики сердечно-сосудистых заболеваний и диагностический набор для его осуществления
RU2322193C1 (ru) * 2006-12-04 2008-04-20 Федеральное государственное учреждение "Учебно-научный медицинский центр" Управления делами Президента Российской Федерации Способ оценки генетического риска сердечно-сосудистых заболеваний у спортсменов
RU2007112316A (ru) * 2007-04-03 2008-10-10 Государственное учреждение Научно-исследовательский институт медицинской генетики Томского научногоцентра Сибирского отделени Российской академии медицинских наук (RU) Способ генетической диагностики подверженности к сердечно-сосудистым заболеваниям
EA200970781A1 (ru) * 2007-02-21 2010-04-30 Декоуд Дженетикс Ехф Варианты генетической предрасположенности, связанные с сердечно-сосудистыми заболеваниями
RU2010141594A (ru) * 2010-10-11 2012-04-20 Российская Федерация в лице Министерства образования и науки Российской Федерации (RU) Способ генодиагностики сердечно-сосудистых заболеваний
  • 2013

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA007014B1 (ru) * 2000-05-05 2006-06-30 Апплайд Резеч Системз Арс Холдинг Н.В. Применение il-18 в качестве диагностического маркера
RU2002110275A (ru) * 2000-08-22 2004-03-27 Дзе Брихэм Энд Уимен'З Хоспитал, Инк. (Us) Диагностика и лечение сердечно-сосудистых состояний
RU2304775C2 (ru) * 2005-07-27 2007-08-20 Олег Сергеевич Глотов Способ диагностики сердечно-сосудистых заболеваний и диагностический набор для его осуществления
RU2322193C1 (ru) * 2006-12-04 2008-04-20 Федеральное государственное учреждение "Учебно-научный медицинский центр" Управления делами Президента Российской Федерации Способ оценки генетического риска сердечно-сосудистых заболеваний у спортсменов
EA200970781A1 (ru) * 2007-02-21 2010-04-30 Декоуд Дженетикс Ехф Варианты генетической предрасположенности, связанные с сердечно-сосудистыми заболеваниями
RU2007112316A (ru) * 2007-04-03 2008-10-10 Государственное учреждение Научно-исследовательский институт медицинской генетики Томского научногоцентра Сибирского отделени Российской академии медицинских наук (RU) Способ генетической диагностики подверженности к сердечно-сосудистым заболеваниям
RU2376372C2 (ru) * 2007-04-03 2009-12-20 Государственное учреждение Научно-исследовательский институт медицинской генетики Томского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук Способ генетической диагностики подверженности к сердечно-сосудистым заболеваниям
RU2010141594A (ru) * 2010-10-11 2012-04-20 Российская Федерация в лице Министерства образования и науки Российской Федерации (RU) Способ генодиагностики сердечно-сосудистых заболеваний

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Caproş N., Istrati V., Popescu V., Butovscaia C., Popovici I. Polimorfismul genei sintetazei endoteliale de oxid nitric la pacienţii cu sindrom coronarian acut. Anale Ştiinţifice ale Universităţii de Stat de Medicină şi Farmacie "N.Testemiţanu". Probleme actuale în medicina internă. Zilele Universităţii 21-23 octombrie, ed. a X-a, Chişinău, 2009, vol. III, p. 57-62 *

Also Published As

Publication number Publication date
MD707Y (ro) 2013-12-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Old et al. Fetal DNA analysis
KR101550489B1 (ko) 기준 차단 서열을 이용한 완전 cold-pcr 풍부화
EP2825675B1 (en) Measurement of nucleic acid variants using highly-multiplexed error-suppressed deep sequencing
EP1468114B1 (en) Late-pcr
KR102245110B1 (ko) 박테리아 오염을 검출하기 위한 방법 및 조성물
JP5637850B2 (ja) 標的核酸配列の増幅方法、それを用いた変異の検出方法、および、それに用いる試薬
CA2677517A1 (en) Nucleic acid-based tests for rhd typing, gender determination and nucleic acid quantification
HK1220737A1 (zh) 短端粒丰度的量度
CA2888720A1 (en) Methods, compositions and devices for amplification of nucleic acids
WO2011066467A2 (en) Allelic ladder loci
He et al. Genotyping of human neutrophil antigens by polymerase chain reaction sequence-based typing
KR20160106040A (ko) cMET 핵산의 멀티모달 분석을 위한 조성물 및 방법
WO2016165591A1 (zh) 基于焦磷酸测序技术的mgmt基因启动子甲基化检测
JPWO2008066163A1 (ja) Cyp2c9遺伝子増幅用プライマーセット、それを含むcyp2c9遺伝子増幅用試薬およびその用途
MD707Z (ro) Metodă de identificare a secvenţelor polimorfe 4a/4b ale genei sintetazei endoteliale a oxidului nitric
Fakruddin et al. Competitiveness of polymerase chain reaction to alternate amplification methods
EP1942196B1 (en) Late-PCR
CN104789673B (zh) rs1800818在检测新布尼亚病毒引起的发热伴血小板减少综合征中的应用
CN102605089B (zh) 一种检测高原红细胞过度增多易感性的试剂盒
RU2455364C2 (ru) Способ идентификации микобактерий с помощью полимеразной цепной реакции
JP7335871B2 (ja) 短い核酸の多重検出
JP4111481B2 (ja) 心筋梗塞の遺伝的要因を判定するための方法及びこれに使用されるオリゴヌクレオチド
RU2804111C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров для определения метилирования промотора гена человека CCR5 в образах биологического материала, подвергшегося предварительной бисульфитной конверсии, методом пиросеквенирования
Nischalke et al. Rapid Determination of the Δ32 Deletion in the Human CC-Chemokine Receptor 5 (CCR5) Gene without DNA Extraction by LightCycler Real-Time Polymerase Chain Reaction
WO2011068610A1 (en) Methods for detecting risk of myelodysplastic syndrome by genotypic analysis

Legal Events

Date Code Title Description
TK4Y Erratum in official gazette with regard to short term patent

Free format text: RECTIFICATION IN INID 72

FG9Y Short term patent issued
MK4Y Short term patent expired