KR20230074604A - 엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물의 재조합형 아데노 부속 바이러스 전달 - Google Patents

엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물의 재조합형 아데노 부속 바이러스 전달 Download PDF

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케빈 플라니간
아델린 불린-차피올
니콜라스 웨인
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더 리서치 인스티튜트 앳 네이션와이드 칠드런스 하스피탈
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Abstract

본 발명은 DMD 엑손 2의 중복으로 유발되는 듀켄씨 근이영양증을 치료하기 위한, 폴리뉴클레오티드의 재조합형 아데노 부속 바이러스(rAAV) 전달에 관한 것이다. 본 발명은 rAAV 생성물 및 듀켄씨근이영양증의 치료에 rAAV를 사용하는 방법을 제공한다.

Description

엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물의 재조합형 아데노 부속 바이러스 전달{RECOMBINANT ADENO-ASSOCIATED VIRUS DELIVERY OF EXON 2-TARGETED US7NRNA POLYNUCLEOTIDE CONSTRUCTS}
본원은 미국 임시 특허출원 제 61/814,256호(2013년 4월 20일)의 출원일자의 혜택을 주장하며, 상기 출원은 전체가 본원에 참조로 편입되었다.
본 발명은 DMD 엑손 2의 중복(duplication)으로 유발되는 듀켄씨 근이영양증(Duchenne Muscular Dystrophy)을 치료하기 위한, 폴리뉴클레오티드의 재조합형 아데노 부속 바이러스(rAAV) 전달에 관한 것이다. 본 발명은 rAAV 생성물 및 듀켄씨근이영양증의 치료에서의 rAAV의 사용 방법을 제공한다.
서열목록의 참조에 의한 편입
본원은, 개시내용과 별도로, 컴퓨터 판독형태의 서열 목록(파일명: 47699PCT_SeqListing.txt; 10,162 바이트 - ASCII 텍스트파일(2014년 4월 18일 생성)을 포함하고, 이것은 전체가 본원에 참조로 편입되었다.
근이영양증(MD)은 유전병들의 집합체이다. 상기 집합체는 움직임을 제어하는 골격근의 진행성 약화 및 퇴화를 특징으로 한다. 일부 형태의 MD는 유아기 또는 아동기에 발병하는 반면, 다른 형태의 경우는 중년, 또는 그 이후에 나타날 수도 있다. 상기 장애는 근 약화의 분포 및 정도(일부 형태의 MD는 심근에도 영향을 미침), 발병 연령, 진행 속도 및 유전 패턴의 측면에서 달라진다.
MD의 한 형태가 듀켄씨 근이영양증(DMD)이다. 이 질병은 신생남아 5000명 중 1명에게 영향을 미치는 가장 일반적인 중증 소아 근이양증이다. DMD는 골격근 및 심근뿐만 아니라 소화관(GI tract) 및 망막에서의 디스트로핀 단백질(427 KDa)의 부재를 초래하는 DMD 유전자의 돌연변이에 의해 유발된다. 디스트로핀은 비정상적인 수축으로부터 근초를 보호할 뿐만 아니라, 근접한 수 많은 신호전달 단백질을 근초에 고정시킨다. DMD의 여러 임상 사례는 DMD 유전자 중 결실 돌연변이와 연관된다. DMD 유전자의 확인 후 여러 갈래의 연구들이 있었지만, 치료를 위한 방안들은 제한적이다. 코르티코스테로이드류가 분명 이롭긴 하지만, 수년에 걸친 보행에도 불구하고, 상기 혜택들은 장기적 부작용에 의해 상쇄된다. 20여년 전 발표된 원조 제어된, 무작위, 이중맹검 연구는 프레드니손을 사용하여 획득한 혜택을 보여주었다[Mendell et al., N. Engl. J. Med., 320: 1592-1597 (1989)]. 추후 보고서들은 데프라자코르트, 나트륨-절감(sparing) 스테로이드를 사용하여 동등한 효능을 보았음을 나타내었다[Biggar et al., J. Pediatr., 138: 45-50 (2001)]. 또한 최근 연구들은 엑손-스키핑에 의한 효능을 6MWT에서의 연장된 보행 거리로 입증한다. 지금까지, 출판된 임상 연구들은 해독틀이 엑손 51을 스키핑함으로써 복구되는 돌연변이의 경우에만 혜택을 보고한 바 있다[Cirak et al., Lancet, 378: 595-605 (2011) and Goemans et al., New Engl. J. Med. 364: 1513-1522 (2011)]. 이중맹검, 무작위 치료 실험의 유일한 보고서에서, 전도유망한 결과들이 에테플러센, 즉 포스포로디아미데이트 포르폴리노 올리고머(PMO)로 입증되었다. 이와 같은 모든 엑손-스키핑 실험에서, 결과들의 일반적인 공통분모는 초기 완만한 개선 후 보행 능력의 안정기였다.
또는 미국 특허출원 공보 제2012/0077860호(2012년 3월 29일 공개); 제2013/0072541호(2013년 3월 21일 공개); 및 제2013/0045538호(2013년 2월 21일 공개) 참조.
결실 돌연변이와는 달리, DMD 엑손 중복은 디스트로핀병증 환자의 비편협적(unbiased) 샘플에서 질병-유발 돌연변이의 약 5%를 차지하는데 [Dent et al., Am. J. Med. Genet., 134(3): 295-298 (2005)], 돌연변이의 일부 카탈로그의 경우, 중복의 수가 훨씬 많다[United Dystrophinopathy Project in Flanigan et al., Hum. Mutat., 30(12): 1657-1666 (2009)에서 출판된 것을 포함(여기서는 11%)].
아데노-부속 바이러스(AAV)는 복제-결핍(replication-deficient) 파보바이러스로, 이것의 단일가닥 DNA 게놈는 길이가 약 4.7 kb로, 145개 뉴클레오티드 역전 말단 반복부(ITR)를 포함한다. 다수개의 AAV 혈청형이 존재한다. 상기 AAV 혈청형의 게놈의 뉴클레오티드 서열이 알려져 있다. 예를 들어, AAV-1의 완전한 게놈이 GenBank 승인번호 NC_002077으로 제공되고; AAV-2의 완전한 게놈이 GenBank 승인 번호 NC_001401 및 Srivastava et al., J. Virol., 45: 555-564 {1983)에서 제공되었고; AAV-3의 완전한 게놈이 GenBank 승인번호 NC_1829로 제공되고; AAV-4의 완전한 게놈이 GenBank 승인번호 NC_001829으로 제공되고; 상기 AAV-5 게놈이 GenBank 승인 번호 AF085716으로 제공되고; AAV-6의 완전한 게놈이 GenBank 승인 번호 NC_00 1862로 제공되고; AAV-7 및 AAV-8 게놈의 최소한 일부분이 각각 GenBank 승인 번호 AX753246 및 AX753249으로 제공되고(또한 AAV-8과 관련하여, 미국 특허 제 7,282,199호 및 제7,790,449호 참조); 상기 AAV-9 게놈이 Gao et al., J. Virol., 78: 6381-6388 (2004)에 제공되고; 상기 AAV-10 게놈이 Mol. Ther., 13(1): 67-76 (2006)에 제공되고; 그리고 상기 AAV-11 게놈이 Virology, 330(2): 375-383 (2004)에 제공된다. 바이러스 DNA 복제(rep), 단백질 캡슐화(encapsidation)/포장 및 숙주 세포 염색체 통합을 지시하는 시스-작용(Cis-acting) 염기서열들이 AAV ITRs 내에 함유되었다. 세 가지 AAV 프로모터(각자의 상대적 맵 위치에 따라 p5, p19 및 p40이라 명명)는 rep 및 cap 유전자들을 인코딩하는 두 가지 AAV 내부 개방형 해독틀(reading frame)의 발현을 추진한다. 상기의 두 가지 rep 프로모터(p5 및 p19)는 단일 AAV 인트론의 차등적 스플라이싱(splicing)(뉴클레오티드 2107 및 2227에서)과 결합하여, 상기 rep 유전자에서 네 가지 rep 단백질(rep 78, rep 68, rep 52 및 rep 40)의 생산을 초래한다. Rep 단백질은 궁극적으로 상기 바이러스 게놈의 복제를 책임지는 다수의 효소적 특성들을 소유한다. 상기 cap 유전자는 상기 p40 프로모터에서 발현되고, 이것은 세 가지 캡시드 단백질 VP1, VP2 및 VP3을 인코딩한다. 선택적 스플라이싱 및 비공통(non-consensus) 번역 출발 부위들은 세 가지 관련 캡시드 단백질의 생산을 책임진다. 단일 공통(consensus) 폴리아데닐화 부위는 상기 AAV 게놈의 맵 위치 95에 위치한다. AAV의 생명 주기 및 유전적 속성은 Muzyczka, Current Topics in Microbiology and Immunology, 158: 97-129 (1992)에서 검토되었다.
AAV는 예를 들어, 유전자 치료에서 외부 DNA을 세포에 전달하기 위한 벡터로서 매력적이게 만드는 독특한 특성들을 갖는다. 배양 중 세포의 AAV 감염은 비세포변성형(noncytopathic)이고, 인간 및 기타 동물의 자연적인 감염은 묵시적이고 무증상적이다. 게다가, AAV는 여러 포유류의 세포를 감염시키기 때문에, 체내의 상이한 여러 조직들이 표적이 될 수 있다. 뿐만 아니라, AAV는 천천히 분열하는 및 분열하지 않는 세포들에 형질도입되어, 전사적으로 활성인 핵 에피솜(염색체외 유전인자)으로서, 이들 세포의 전 생애 동안 반드시 버틸 수 있다. 상기 AAV 프로바이러스 게놈은 재조합형 게놈의 구성을 가능하게 하는 플라스미드에서 복제된 DNA로서 감염성이 있다. 추가로, AAV 복제, 게놈 단백질 캡슐화 및 통합을 지시하는 신호들이 AAV 게놈의 ITRs 내부에 함유되기 때문에, 내부의 약 4.3 kb의 게놈(복제 및 구조적 캡시드 단백질, rep-cap을 인코딩함)의 일부 또는 전부가 외부 DNA로 교체될 수도 있다. 상기 rep 및 cap 단백질은 트랜스(trans)로 제공될 수 있다. AAV의 또 다른 중요한 특징은 이것이 극도로 안정적이며 원기왕성한(hearty) 바이러스라는 점이다. AAV는 아데노바이러스를 불활성화하기 위해 사용되는 환경들(여러 시간 동안 56o 내지 65oC)을 쉽게 견디기 때문에, AAV의 냉장 보존이 그리 중요한 일이 되지 않는다. AAV는 심지어 냉동건조될 수 있다. 마지막으로, AAV-감염 세포는 중복 감염에 내성이 없다.
AAV8-유사 AAV는 다양한 단백질을 인코딩하는 DNA들을 전달하기 위한 rh.74로 불린다. Xu et al., Neuromuscular Disorders, 17: 209-220 (2007) 및 Martin et al., Am. J. Physiol. Cell. Physiol., 296: 476-488 (2009)은 듀켄씨 근이영양증에 대한 세포독성 T 세포 GalNAc 전이효소의 rh.74 발현에 관한 것이다. Rodino-Klapac et al., Mol. Ther., 18(1): 109-117 (2010)이 혈관 사지 관류에 의한 AAV rh.74 전달 이후, 마이크로-디스트로핀 FLAG 단백질 태그 융합의 AAV rh.74 발현을 기술한다.
상기 근이영양증은 개인, 가족 및 지역사회에 중대한 영향을 미치는, 확인된 치료법이 없는 질병군이다. 비용은 계산이 불가능할 정도이다. 개인은 정서적 스트레스 및 자긍심의 손실과 관련하여 삶의 질의 저하로 고통을 받는다. 사지 기능의 손실에 의한 극심한 신체적 문제는 일상적인 활동을 어렵게 만든다. 가족 역동은 금전적 손실 및 가족구성원간 관계의 문제를 통해 고통을 받는다. 환자의 형제자매들은 소원해지고, 배우자간 갈등은, 특히 근 이영양증의 책임이 부모인 두 배우자 중 한 명의 발 아래 놓일 경우, 종종 이혼으로 이어진다. 치료법을 찾기 위한 노력의 부담은 종종 삶의 모든 측면을 어지럽히고 힘들게 하는 평생의 집요한 노력이 된다. 가족을 넘어,지역사회는 특수 교육 및 특수 운송수단으로 근 이양증 환자의 장애에 부합하는 부가적 시설들의 필요로 인한 재정적 부담을 떠안고, 재발되는 호흡기 감염 및 심장관련 합병증을 치료하기 위한 되풀이되는 입원의 비용을 떠안는다. 재정적 책임은 주정부 및 연방 정부의 관련 기관들이 나눠 가지며, 이와 같은 책임은 납세의무가 있는 지역 사회로 확장된다.
따라서, DMD를 비롯한 근이영양증을 위한 치료에 대한 필요가 당해 기술에 존재한다.
본 발명은 DMD 유전자의 엑손 2 의 중복을 수반하는 DMD를 예방하고, 이것의 진행을 지연 및/또는 이것을 치료하기 위한 방법 및 생성물을 제공한다. 상기 방법은 U7 소핵 RNA 및 엑손 2 표적 안티센스 서열을 인코딩하는 폴리뉴클레오티드 작제물 , 즉 “엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물”를 위한 전달 벡터로서 AAV 를 사용하는 것을 수반한다. 예를 들어, 상기 폴리뉴클레오티드 작제물이 rAAV rh.74의 게놈, rAAV6의 게놈 또는 rAAV9의 게놈에 삽입된다. AAV rh.74 게놈에 삽입된 상기 폴리뉴클레오티드 서열이 도 7 및 서열번호: 1에 보여진다.
예시적 엑손 2 표적 안티센스 서열은, 비제한적으로 하기를 포함한다:
Figure pat00001
한 측면에서, 환자에게서 DMD를 개선하는 방법이 제공된다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 상기 환자에게 rAAV를 투여하는 단계를 포함하되, 상기 rAAV의 게놈이 엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 포함한다.
또 다른 측면에서, 본 발명은 DMD와 관련된 이양증병증의 진행을 억제하는 방법을 제공한다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 상기 환자에게 rAAV를 투여하는 단계를 포함하되, 상기 rAAV의 게놈이 엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 포함한다.
그밖의 다른 측면에서, DMD을 앓는 환자에게서 근 기능을 향상하는 방법이 제공된다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 상기 환자에게 rAAV를 투여하는 단계를 포함하되, 상기 rAAV의 게놈이 엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 포함한다. 일부 경우에, 근 기능의 향상은 근력의 향상이다. 근력의 향상은 당해 기술에 알려진 기법들, 예컨대 최대 자발적 등척성 수축 실험(MVICT)에 의해 측정된다. 일부 경우에는, 근 기능의 향상이 기립 및 보행에서의 안정성의 향상이다. 안정성 강도(stability strength)의 향상은 당해 기술에 알려진 기법들, 예컨대 6-분 보행 검사(6MWT) 또는 일정시간 계단오르기(timed stair climb)에 의해 측정된다.
또 다른 측면에서, 본 발명은 동물(비제한적으로, 인간 포함)에게 엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 전달하는 방법을 제공한다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 상기 환자에게 rAAV를 전달하는 단계를 포함하되, 상기 rAAV의 게놈이 엑손 2-표적 U7snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 포함한다.
앞서 그리고 아래 기술된 본 발명의 방법의 세포 형질 주입 효율성은 최소한 약 60, 65, 70, 75, 80, 85, 90 또는 95%일 수 있다.
본 발명의 상기 방법의 일부 구현예에서, 상기 바이러스 게놈은 자가보완적 게놈이다. 본 방법의 일부 구현예에서, 상기 rAAV의 게놈에는 AAV rep 및 cap DNA가 없다. 본 발명의 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 도 9에 명시된 예시적 게놈을 포함하는 SC rAAV U7_ACCA이다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 rAAV rh.74이다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 rAAV6이다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 rAAV9이다.
또 다른 측면에서, 본 발명은 AAV rh.74 캡시드를 포함하는 rAAV 및 상기 예시적 엑손 2-표적 U7 snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물 U7_ACCA를 포함하는 게놈을 제공한다. 일부 구현예에서, rAAV의 게놈에는 AAV rep 및 cap DNA가 없다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 자가보완적 게놈을 포함한다. 본 발명의 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 도 9에 명시된 예시적 게놈을 포함하는 SC rAAV U7_ACCA 이다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 rAAV rh.74이다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 rAAV6이다. 일부 구현예에서, 상기 rAAV는 rAAV9이다.
본 발명의 재조합형 AAV 게놈은 적어도 하나의 엑손 2-표적 U7 snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물 옆에 있는 하나 이상의 AAV ITRs 을 포함한다. [0012]절에 명시된 엑손 2 표적 안티센스 서열 각각을 포함하는 엑손 2-표적 U7 snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 갖는 게놈이, [0012]절에 명시된 엑손 2 표적 안티센스 서열들 중 둘 이상의 가능한 각각의 조합을 포함하는 엑손 2-표적 U7 snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물을 갖는 게놈과 함께, 구체적으로 고안되었다. 예시로 제시된 구현예를 비롯한 일부 구현예에서, 상기 U7 snRNA 폴리뉴클레오티드는 자체 프로모터를 포함한다. rAAV 게놈에 있는 AAV DNA는 재조합형 바이러스가 유도될 수 있는 모든 AAV 혈청형, 예컨대 비제한적으로, AAV 혈청형 AAV-1, AAV-2, AAV-3, AAV-4, AAV-5, AAV-6, AAV-7, AAV-8, AAV-9, AAV-10 및 AAV-11에서 유래된 것일 수 있다. 앞서 배경기술 항목에서 기술된 바와 같이, 다양한 AAV 혈청형의 게놈의 뉴클레오티드 서열이 당해 기술에 알려져 있다. 본 발명의 일부 구현예에서, 상기 프로모터 DNA는 근육-특이적 제어 요소, 예컨대 비제한적으로 액틴 및 미오신 유전자 부류, 예를 들어 myoD 유전자 부류[Weintraub et al., Science, 251: 761-766 (1991) 참조], 근세포-특이적 인핸서 결합인자 MEF-2[Cserjesi and Olson, Mol. Cell. Biol., 11: 4854-4862 (1991)]에서 유래된 것들, 인간 골격 액틴 유전자[Muscat et al., Mol. Cell. Biol., 7: 4089-4099 (1987)], 심장 액틴 유전자, 근육 크레아틴 키나아제 서열 요소[Johnson et al., Mol. Cell. Biol., 9:3393-3399 (1989)] 및 쥣과 크레아틴 키나아제 인핸서(MCK) 요소에서 유래된 제어 요소, 데스민 프로모터, 상기 골격 속근(fast-twitch) 트로포닌 C 유전자, 지근(slow-twitch) 심장 트로포닌 C 유전자 및 지근(slow-twitch) 트로포닌 I 유전자에서 유래된 제어 요소: 저산소증-유도가능 핵 인자[Semenza et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88: 5680-5684 (1991)], 스테로이드-유도가능 요소 및 당질코르티코이드반응요소(GRE)를 포함하는 프로모터[Mader and White, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90: 5603-5607 (1993) 참조] 및 기타 제어 요소이다.
본 발명의 DNA 플라스미드는 본 발명의 rAAV 게놈을 포함한다. 상기 DNA 플라스미드는 rAAV 게놈을 감염성 바이러스 입자에 조립하기 위해, AAV의 헬퍼 바이러스(예컨대, 아데노바이러스, E1-결실 아데노바이러스 또는 헤르페스바이러스)로 감염이 허용되는 세포들에 전달된다. rAAV 입자를 생산하는 기법들(포장될 AAV 게놈, rep 및 cap 유전자, 및 헬퍼 바이러스 기능들이 세포에 제공됨)이 당해 기술에서 표준이다. rAAV의 생산은 단일 세포(이후 포장 세포(packaging cell)로 명명함) 내 하기의 성분들의 존재를 필요로 한다: rAAV 게놈, 상기 rAAV 게놈에서 분리된(즉, 그 안에 존재하지 않는) AAV rep 및 cap 유전자, 및 헬퍼 바이러스 기능. 상기 AAV rep 유전자는 재조합형 바이러스가 유도되는 모든 AAV 혈청형에서 유래된 것일 수 있고, 상기 rAAV 게놈 ITR와는 다른 AAV 혈청형, 예를 들어, 비제한적으로, AAV 혈청형 AAV-1, AAV-2, AAV-3, AAV-4, AAV-5, AAV-6, AAV-7, AAV-8, AAV-9, AAV-10 및 AAV-11에서 유래된 것일 수 있다. 동족 구성성분들의 사용이 구체적으로 고안되었다. 위형(pseudotyped) rAAV의 생산이 예를 들어, WO 01/83692에 개시되었다(전체가 본원에 참조로 편입됨).
포장 세포를 생성하는 방법은 AAV 입자 생산을 위해 필요한 모든 구성성분들을 안정적으로 발현하는 세포주를 형성하는 것이다. 예를 들어, AAV rep 및 cap 유전자가 없는 rAAV 게놈, 상기 rAAV 게놈에서 분리된 AAV rep 및 cap 유전자 및 선택가능 마커, 예컨대 네오마이신 내성 유전자를 포함하는 하나의 플라스미드(또는 다수의 플라스미드)가 하나의 세포의 게놈에 통합된다. GC 꼬리흘림(tailing)(Samulski et al., 1982, Proc. Natl. Acad. S6. USA, 79:2077-2081), 제한 엔도뉴클레아제 절단 부위를 함유하는 합성 링커의 첨가(Laughlin et al., 1983, Gene, 23:65-73)와 같은 절차에 의해, 또는 직접적인 비점착말단 연결(blunt-end ligation)(Senapathy & Carter, 1984, J. Biol. Chem., 259:4661-4666)에 의해, AAV 게놈이 박테리아 플라스미드에 유입된 바 있다. 상기 포장 세포주는 이어서 아데노바이러스와 같은 헬퍼 바이러스로 감염된다. 상기 방법의 장점은 세포가 선택가능하고 rAAV의 대규모 생산에 적합하다는 점이다. 적합한 방법의 기타 예는 rAAV 게놈 및/또는 rep 및 cap 유전자를 포장 세포에 유입시키기 위해 플라스미드 대신 아데노바이러스 또는 베큘로(baculo) 바이러스를 활용하는 것이다.
rAAV 생산의 일반적 원칙들이 예를 들어, Carter, 1992, Current Opinions in Biotechnology, 1533-539; 및 Muzyczka, 1992, Curr. Topics in Microbial. and Immunol., 158:97-129)에서 검토되었다. 다양한 접근법들이 Ratschin et al., Mol. Cell. Biol. 4:2072 (1984); Hermonat et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81:6466 (1984); Tratschin et al., Mo1. Cell. Biol. 5:3251 (1985); McLaughlin et al., J. Virol., 62:1963 (1988); 및 Lebkowski et al., 1988 Mol. Cell. Biol., 7:349 (1988)에 기술되었다. Samulski et al. (1989, J. Virol., 63:3822-3828); 미국 특허 제5,173,414호; WO 95/13365 및 상응하는 미국 특허 제5,658.776호; WO 95/13392; WO 96/17947; PCT/US98/18600; WO97/09441(PCT/US96/14423); WO97/08298(PCT/US96/13872); WO97/21825(PCT/US96/20777); WO97/06243(PCT/FR96/01064); WO99/11764; Perrin et al. (1995) Vaccine 13:1244-1250; Paul et al. (1993) Human Gene Therapy 4:609-615; Clark et al. (1996) Gene Therapy 3:1124-1132; 미국 특허 제5,786,211호; 미국 특허 제5,871,982호; 및 미국 특허 제6,258,595호. 앞서 문서들은 전체가 본원에 참조로 편입되었고, rAAV 생산과 관련된, 문서의 항목들이 특히 강조되었다.
본 발명은 따라서 감염성 rAAV를 생산하는 포장 세포를 제공한다. 한 구현예에서, 포장 세포는 안정적으로 형질주입된 암세포, 예컨대 HeLa 세포, 293 세포 및 PerC.6 세포(동족 293 세포주)일 수 있다. 또 다른 구현예에서, 포장 세포는 형질주입된 암 세포가 아닌 세포, 예컨대 낮은 계대 293 세포(아데노바이러스의 E1 로 형질주입된 인간 태아 신장 세포), MRC-5 세포(인간 태아 섬유아세포), WI-38 세포(인간 태아 섬유아세포), 베로 세포(원숭이 신장 세포) 및 FRhL-2 세포(붉은털원숭이 태아 폐 세포)이다.
상기 rAAV는 당해 기술에서 표준인 방법들, 예컨대 컬럼 크로마토그래피 및 염화세슘 구배법에 의해 정제될 수 있다. 헬퍼 바이러스에서 rAAV 벡터를 정제하는 방법들이 당해 기술에 알려져 있고, 여기에는 예를 들어, Clark et al., Hum. Gene Ther., 10(6): 1031-1039 (1999); Schenpp and Clark, Methods Mol. Med., 69 427-443 (2002); 미국 특허 제6,566,118호 및 WO 98/09657에 개시된 방법들이 포함된다.
또 다른 구현예에서, 본 발명은 본 발명의 rAAV를 포함하는 조성물을 고안한다. 본 발명의 조성물은 약제학적으로 허용가능한 운반체에 rAAV를 포함한다. 상기 조성물은 또한 다른 성분들, 예컨대 희석제를 포함할 수 있다. 허용가능한 운반체 및 희석제는 수혜자에게 독성이 없고, 활용되는 용량 및 농도에서 바람직하게는 불활성(inert)이며, 인산염, 구연산염 또는 기타 유기산과 같은 완충제; 아스코르브산과 같은 산화제; 저분자량 폴리펩티드; 혈청 알부민, 젤라틴 또는 면역글루불린과 같은 단백질; 폴리비닐피롤리돈과 같은 친수성 중합체; 글리신, 글루타민, 아스파라긴, 아르기닌 또는 라이신과 같은 아미노산; 단당류, 이당류 및 기타 탄수화물, 예컨대 글루코오스, 만노오스 또는 덱스트린; EDTA와 같은 킬레이트 제제; 만니톨 또는 소르비톨과 같은 당 알코올; 나트륨과 같은 염-형성 반대이온; 및/또는 트윈(Tween), 플루로닉스(pluronics) 또는 폴리에틸렌 글리콜(PEG)과 같은 비이온성 계면활성제를 포함한다.
필요한 양 만큼의 rAAV를, 필요에 따라, 앞서 열거된 기타 다양한 성분들과 함께 적당한 용매에 편입시키고, 이어서 여과 살균을 실행함으로써, 살균 주사가능 용액이 제조된다. 일반적으로, 상기 살균된 활성 성분을, 기본적인 분산 매체 및 앞서 열거된 성분들 중 필요한 기타 성분들을 함유하는 비히클에 편입시킴으로써, 분산용액이 제조된다. 살균 주사가능 용액의 제조를 위해 살균 분말을 사용하는 경우, 제조를 위한 바람직한 방법은, 앞서 살균-여과된 용액에서 활성 성분의 분말을 비롯하여 원하는 모든 추가적인 성분들을 생성하는 진공 건조 및 동결건조 기법이다.
본 발명의 방법에서 투여될 rAAV의 역가(titer)는, 예를 들어, 특정 rAAV, 투여 방식, 치료 목적, 개인 및 표적이 되는 세포 유형(들)에 따라 달라질 것이고, 당해기술에 표준 방법들에 의해 측정될 수 있다. rAAV의 역가의 범위는 1 ml당 약 1x106, 약 1x107, 약 1x108, 약 1x109, 약 1x1010, 약 1x1011, 약 1x1012, 약 1x1013 내지 약 1x1014 개 또는 그 이상의 DNA 분해효소(DNase) 내성 입자(DRP)일 수 있다. 복용량은 또한 바이러스 게놈의 단위(vg)(즉, 각각 1x107 vg, 1x108 vg, 1x109　vg, 1x1010　vg,　1x1011　vg,　1x1012　vg,　1x1013　vg,　1x1014　vg)으로 표현될 수 있다. 　
체내에서 또는 체외에서, 표적 세포(예컨대, 골격근)에 rAAV를 형질도입하는 방법이 본 발명에 의해 고안되었다. 상기 방법은 본 발명의 rAAV를 포함하는 조성물의 유효 용량 또는 유효 다중 용량을, 이것을 필요로 하는 동물(인간 포함)에게 투여하는 단계를 포함한다. 상기 용량이 DMD의 발병 이전에 투여되는 경우, 상기 투여는 예방차원이다. 상기 용량이 DMD의 발병 이후에 투여되는 경우, 상기 투여는 치료 차원이다. 본 발명의 구현예에서, 유효용량은 치료 중인 DMD 관련 적어도 하나의 증상을 완화(제거 또는 감소)시키고, DMD로의 진행을 지연 또는 예방하고, 장애/질병 상태의 진행을 지연 또는 예방하고, 질병의 정도를 축소시키고, 질병의 차도(부분적 또는 전체적)을 초래하고, 및/또는 생존을 연장하는 용량이다.
상기 조성물의 유효 용량의 투여는 당해 기술에서 표준 경로, 예컨대 비제한적으로 근육내, 비경구, 정맥내, 경구, 볼 안쪽, 비강, 폐, 두개내, 골내, 안구내, 직장 또는 질을 통해 이루어질 수 있다. 본 발명의 투여 경로(들) 및 rAAV의 AAV 구성성분들의 혈청형(들)(특히, AAV ITRs 및 캡시드 단백질)이, 치료 대상인 감염 및/또는 질병 및 표적 세포/조직(들)을 고려하여, 당해기술의 숙련가에 의해 선택 및/또는 매칭될 수 있다. 일부 구현예에서, 투여 경로는 근육내이다. 일부 구현예에서, 투여 경로는 정맥내이다.
병용 요법 또한 본 발명에서 고안되었다. 본원에서 사용되는 병용에는 동시 치료 또는 순차적 치료가 포함된다. 앞서 배경기술 항목에서 언급된 것과 같은 기타 요법들과의 조합과 마찬가지로, 표준 의학 치료법(예컨대, 코르티코스테로이드류 및/또는 면역억제제)과 본 발명의 방법의 조합이 구체적으로 고안되었다.
도 1은 Dup2 마우스의 근육의 조직학 및 면역형광 분석을 나타낸다.
도 2는 Dup 2 마우스의 근육의 웨스턴 블롯 분석에서 도출된 면역블롯(immunoblots)을 나타낸다.
도 3은 엑손 스플라이스 인핸서에 겨냥된 AON에 의해 유도된 MyoD-이행분화된(transdifferentiated) 근아세포에서 중복된 엑손 2의 스키핑이 39% 야생형 전사를 초래함으로 나타낸다. nMoles에 나타낸 레인별 복용량(25, 50, 100, 200, 300,400,500). 다양한 전사량이 각 레인 아래 표시되었고, 최대치는 음영표시되었다. TB= 형질주입 완충액. NSM= 정상적 골격근. 엑손 2 중복의 백분율, wt, 및 엑손 2 결실이 각 레인 아래 열거되었다.
도 4는 엑손-스키핑에 대한 U7snRNA 벡터 접근법을 묘사한다. U7snRNA는 RNA 전구체(pre-messenger)를 표적으로 삼기 위해 운반체로 사용된다. 이것은 핵-세포질 수출을 위해 사용되는 루프, U7snRNA 및 상기 표적 pre-mRNA 사이의 효율적인 조립을 위해 사용되는 Sm 단백질에 결합하는 인식 서열 및 상기 pre-mRNA를 표적으로 삼는 안티센스 서열로 이루어진다. 이것은 자체 프로모터 및 3'다운스트림 서열을 갖는다. 상기 U7 카세트는 이어서 AAV 플라스미드에서 복제되어, 상기 벡터를 생산한다.
도 5는 Dup2 불멸 인간 섬유아세포에 예시적 엑손 2-표적 U7snRNA 작제물을 형질도입하기 위해, SC rAAV 벡터를 사용하는 엑손-스키핑 실험에 대한 RT-PCR 결과를 나타낸다.
도 6(A-D)은 체내에서의 엑손-스키핑실험에 대한 결과들을 제공하는데, 여기서 U7_ACCA SC rAAV는 Dup2 마우스에 근육내 주사에 의해 전달되었다.
도 7은 rh74 게놈 서열(서열번호: 1)로, 뉴클레오티드 210-2147은 Rep 78 유전자 개방 해독틀이고, 882-208은 Rep52 개방 해독틀이고, 2079-2081은 Rep78 중단이고, 2145-2147은 Rep78 중단이고, 1797-1800은 스플라이스 공여부위이고, 2094-2097은 스플라이스 수용 부위이고, 2121-2124는 스플라이스 수용 부위이고, 174-181은 상기 p5 프로모터 +1 예측됨(predicted), 145-151은 p5 TATA 박스이고, 758-761는 p19 프로모터 +1 예측됨이고, 732-738은 상기 p19 TATA 박스이고, 1711-1716은 상기 p40 TATA 박스이고, 2098-4314는 상기 VP1 Cap 유전자 개방 해독틀이고, 2509-2511은 상기 VP2 개시이고, 2707-2709는 상기 VP3 개시이고, 4328-4333은 폴리A 신호이다.
도 8은 예시적 엑손 2-표적 U7snRNA의 AAV 게놈 삽입물을 가진 플라스미드의 맵을 나타낸다.
도 9는 도 8의 플라스미드의 AAV 게놈 삽입물(서열번호: 2)의 DNA 서열을 나타낸다.
도 10은 MLPA 프로브의 대략적인 위치를 표시하는 수직 바를 나타낸다.
도 11은 mdxdup2 (Dup2) 마우스의 형성에 사용되는 벡터의 개요도를 나타낸다.
도 12(a-e)는 AAV1 U7-ACCA를 Dup2 마우스로 근육내 전달한 결과를 나타낸다.
도 13(a-f)은 Dup2 마우스모형에 AAV9 U7_ACCA 의 정맥내 주사의 결과를 나타낸다.
실시예
본 발명의 측면 및 구현예들이 하기 실시예들에 의해 설명된다.
실시예 1
AAV rh.74의 단리
선형 롤링 원형 증폭(Linear Rolling Circle Amplification)이라는 새로운 기법을 사용하여 붉은털원숭이 림프절에서 고유한 AAV 혈청형을 단리하였다. 상기 LRCA 공정을 사용하여, 이중가닥 원형 AAV 게놈을 여러 붉은털원숭이에서 증폭하였다. 상기 방법은 phi29 파지 DNA 중합체 분해효소 및 AAV 특이적 프라이머를 사용하는 등온대 롤링 원형 증폭에 의해 원형 AAV 게놈을 증폭시키는 능력에 기초한다. LRCA 생성물은 전장 AAV Rep-Cap 분자형 클론이 단리된 원형 AAV 게놈의 인접한 머리-꼬리 어레이(head-to-tail arrays)이다. 4개의 단리물을 순서대로 나열하고, Rep 및 Cap ORF에 대해 예측된 아미노산 서열을 배열하여 이전에 공개된 혈청형(표)과 비교하였다. VP1 단백질 서열을 분석하여 상기 NHP AAV clades D, E 및 AAV 4-유사 바이러스 단리물에 상동성을 드러냈다. Rep78(표의 최상부) ORF의 분석은 AAV 1과 강력한 상동성(98~99%)을 드러내었다.
표 1
Figure pat00002
하나의 붉은털 원숭이 조직샘플(rh426-M)에서 rh.74라는 분기된 AAV8-유사 단리물을 생성하였는데, 이것은 AAV8와의 서열 동일성이 93%이다. 상기 rh.74 게놈의 뉴클레오티드 서열을 도 7 및 서열번호: 1에 명시하였다.
상기 rh.74 캡시드 유전자 서열을 AAV2에서 유래된 Rep 유전자를 함유하는 AAV 헬퍼 플라스미드에 복제하여, 재조합형 AAV 벡터 생산을 위한 벡터 복제 기능을 제공하였다.
실시예 2
DMD 모형
DMD 엑손 2 중복의 모형의 예에는 다음과 같이 체내 및 체외 모형이 포함된다.
mdx dup2 마우스 모형
Dmd 부위 내에 엑손 2 의 중복을 갖는 마우스를 개발하였다. 엑손 2 중복 변이는 가장 일반적인 인간 중복 변이로, 비교적 심각한 DMD를 초래한다.
우선, White et al., Hum. Mutat., 27(9): 938-945 (2006)에서 유래된, 11개의 상이한 인간 엑손 2 중복의 최대 범위를 MLPA 및 장거리 PCR로 살펴보았다. 결과를 도 10에 나타내었다. 도 10에서, 각각의 수직바는 MLPA 프로브의 대략적 위치를 표시한다. 음영표시된 기둥은 확인된 2개의 빈발(hotspot) 영역을 표시하고; 이들은 엑손 2 카세트의 상동성에 의한 마우스 삽입의 위치를 판단하기 위해 사용하였다.
상기 삽입 벡터의 맵을 도 11에 나타내었다. 상기 맵에서, 숫자는 복제 부위, 엑손 및 제한 부위의 상대적 위치를 표시한다. 네오 카세트는 상기 유전자와 동일한 방향에 존재하고, 상기 삽입 지점은 정확하게 인트론2의 32207/32208 bp 지점이다. 최소한 150bp 엑스트라 인트론 서열이 삽입된 엑손 2의 각 측면에 유지되고, E2 영역은 1775-2195bp이다. 엑손 2 및 인트론 2의 크기는 각각 62bp 및 209572bp이다.
수컷 C57BL/6 ES 세포에 상기 엑손2 작제물을 가진 벡터를 형질주입하고, 이어서 삽입을 PCR로 확인하였다. 하나의 양호한 클론을 발견하여 증폭시키고, 수십개의 알비노 BL/6 배반포에 주입하였다. 주입된 배반포를 수혜 마우스에 이식하였다. 수컷 키메라에서 유래된 상기 디스트로핀 유전자를 PCR로, 그리고 이어서 RT-PCR로 확인하였다. 콜로니를 확장시켜서 동형접합성으로 사육된 일부 암컷 마우스를 포함시켰다.
도 1 및 도 2는 4주령 반접합성 mdxdup2 마우스에서 유래된 근육에서의 디스트로핀 발현이 반드시 부재함을 입증한다(도 2에 보여지는 바와 같이, 발현의 흔적이 엑손 1-특이적 Manex1A 항체가 아닌 C-말단 항체을 사용하여 검출될 수 있고, 이것은 앞서 기술된 엑손 6 교차 번역 개시부위에서의 아주 소량의 번역과 일맥상통한다.)
불멸 및 조건에 따라 유도가능한(conditionally inducible) 섬유 MyoD 세포주
포유류 섬유아세포에서의 MyoD 유전자의 발현은 세포의 근원성 계통로의 이행분화를 초래한다. 이와 같은 세포는 추가로 근관으로 분화될 수 있고, 이들은 DMD 유전자를 비롯하여 근육 유전자를 발현한다 .
테트라사이클린-유도가능 프로모터의 통제 하에 조건적으로 MyoD를 발현하는 불멸 세포주를 생성하였다. 이것은 tet-유도가능 MyoD인 렌티바이러스의 1차 섬유아세포주의 안정적인 형질주입 및 인간 텔로머라아제 유전자(TER)의 함유에 의해 달성하였다. 수득된 안정적 세포주는 독시사이클린 처리에 의해 MyoD 발현이 개시되도록 하였다. 이와 같은 세포주를 엑손 2의 중복을 갖는 DMD를 앓는 환자에게서 생성하였다.
상기 세포주를 사용하여, Dr. Steve Wilton (Perth, Australia)에 의해 제공된 2'O-메틸 안티센스 올리고머(AONs)를 사용한 중복 스키핑을 입증하였다. 다수의 세포주를 검사하였다. 예시적 세포주에서 수득한 결과들을 도 3에 나타내었다.
일시적으로 MyoD-형질주입된 1차 세포주
아데노바이러스-MyoD이 일시적으로 형질주입된 1차 섬유아세포주를 사용하는 원리확인 실험(Proof-of-principle experiment)을 수행하였다. 상기 아데노바이러스 작제물을 세포 게놈에 통합하지 않았으나, MyoD가 일시적으로 발현되었다.(비록 안정적으로 형질주입된 세포주에서 재현가능성이 뛰어났지만) 수득된 DMD 발현은 엑손-스키핑 실험을 수행하기에 충분하였다.
실시예 3
엑손 2 중복 변이체에서의 U7 snRNA-중재 스키핑의 효과성
중복된 엑손의 바이러스성-매개 엑손-스키핑을 위한 생성물 및 방법을 개발하였다. Goyenvalle et al., Science, 306(5702): 1796-1799 (2004) 또는 Goyenvalle et al., Mol. Ther., 20(6): 179601799 (2004)에 기술된 U7snRNA 시스템과 비교하여, 상기 생성물 및 방법을 변형하였다.
U7snRNA을 변형하여, 주어진 표적 엑손에서의 스플라이싱을 방해하는 표적 안티센스 서열을 포함하게 하였다(도 4). 구체적으로, 실시예 2에 기술된 AON 연구 결과에 기초하여, 4개의 새로운 엑손 2 표적 서열을 설계하였다.
Figure pat00003
상기 엑손 2 표적 서열을 포함하는 U7 snRNA 작제물을 생성하였다. 각각의 U7 snRNA 작제물은 표적 서열들 중 하나를 포함하였다. 다른 엑손을 선택하기 위해 표적이 된 U7 snRNA 작제물 또한 생성하였다(상기의 MyoD-이행분화된 세포주 연구를 기반으로). 이어서, 하나 이상의 U7 snRNA 작제물을 포함하는 게놈을 갖는 자가보완적(SC) AAV 벡터를 생산하였다.
세포 배양에서의 실험을 위해, 그리고 Dup2 마우스에서의 근육내 주사를 위해, rAAV1 벡터를 활용하였다. HEK293 세포에서의 아데노바이러스 없는, 트리플 플라스미드 DNA 형질주입(CaPO4 침전) 방식[Rabinowitz et al., J. Virol., 76:791-801 (2002)]에 의해, 원하는 벡터 게놈을 포함하는 플라스미드를 사용하는 변형된 교차-포장 접근법에 의해 원하는 AAV 혈청형의 재조합형 SC AAV 벡터를 생산하였다. 앞서 기술된 방식[Wang et al., Gene. Ther., 10:1528-1534 (2003)]과 유사한 방식으로, AAV 헬퍼 플라스미드 및 아데노바이러스 헬퍼 플라스미드로의 공동 형질주입에 의해 벡터를 생산하였다. 아데노바이러스 헬퍼 플라스미드(pAd헬퍼)는 아데노바이러스 유형 5 E2A, E4ORF6 및, 고역가 rAAV 생산에 필요한 VA I/II RNA 유전자를 발현한다.
[Clark et al., Hum. Gene Ther, 10:1031-1039 (1999)]에서 앞서 기술된 바와 같이, 순차적 아이오디사놀 구배 정제법 및, 선형 NaCl 염 구배를 사용하는 음이온-교환 컬럼 크로마토그래피에 의해, 정화된 293 세포 용해물에서 벡터를 정제하였다. 앞서 기술된 바(Clark et al., supra)와 같이, Prism 7500 Taqman 검출기(PE Applied Biosystems)를 활용하는 특이적 프라이머/프로브 세트로 QPCR-기반 검출을 수행하여, 벡터 게놈(vg) 역가를 측정하였다. 벡터 보관 역가의 범위는 1 내지 10 x 1012 vg/mL이다.
Dup2 불멸 인간 섬유아세포에 형질도입되는 SC rAAV 벡터를 사용하는 RT-PCR로 초기 엑손-스키핑 분석을 수행하였다. 독시사이클린의 통제 하에 근 계통 세포로 이행분화할 수 있는 Dup 2 불멸 인간 섬유아세포를, 텔로머라아제-발현 및 tet-유도가능-MyoD 발현 벡터의 형질도입을 통해, 생산하였다. 이어서, 전환된 인간 섬유아세포(FM)에 엑손 2 안티센스 서열를 포함하는 상이한 U7 작제물들을 갖는 SC rAAV 를 형질도입하였다.
세 가지 상이한 안티센스 서열을 갖는 SC rAAV.1-U7 작제물에 대한 RT-PCR 결과를 도 5 에 나타내었다. 도 5에서, "(4C)”는 상기 U7 작제물의 4개 카피가 벡터 게놈에 포함되었음을 표시하고, “+”는 고용량을 표시하고, “U7_ACCA A=Along”(도 8의 플라스미드 맵에 나타내었고, 이것의 서열(서열번호: 2)이 도 9에 명시됨)는 서열에 하기의 엑손 2-표적 U7 snRNA 폴리뉴클레오티드 작제물 4개를 포함하는 벡터 게놈을 표시한다: 제1 U7Along 작제물, 제1 U7C 작제물, 제2 U7C 작제물 및 제2 U7Along 작제물. 보다시피, 상기 U7_ACCA A-Along SC rAAV(본원의 다른 곳에서는 줄여서U7_ACCA SC rAAV1라고 명명함)는 다른 기타 벡터 작제물과 비교하여 더 높은 비율의 엑손 2 스키핑을 달성하였다.
추후 실험에서, 체내 엑손-스키핑 효율을 분석하였다. Dup2 마우스 근육내 주입을 위해, 가장 효율적인 AAV-U7 벡터인 U7_ACCA SC rAAV1를 선택하였다. 결과를 아래 도 6(a-d)에 나타내었는데, (a)는 상기 단백질 발현이 복원되고, 여러 근 섬유 중 막에 적절하게 자리 잡은 디스트로핀 염색을 나타내고; (b)는 웨스턴 블롯에 의해 단백질 복원을 확인하였음을 나타낸다. RT-PCR는 (c) Dup2 마우스에서 용량-의존적 단일 또는 이중 스키핑 및 (d) 야생형 마우스에서 효율적인 스키핑을 나타낸다.
따라서, 엑손 2를 스키핑하도록, 고효율의 AAV-매개 U7snRNA를 설계하여, 하부근초 디스트로핀 복원을 허용하였다. 심장 기능; EDL 및 횡격박 힘 평가; 및 러닝머신 및 악력 검사가 미처리된 마우스와 처리된 마우스 사이에서 비교된다. 주입된 근육 내에서 검출가능한 디스트로핀 발현 정도에 기초하여, 첫 번째 무리에 1E11 vg/kg을 정맥내로 전달하고, 이어서 두 번째 무리에 1 log 더 높게 투여하기 위한 실험용으로 U7_ACCA SC rAAV를 선택하였다. 주입은 4주차에 수행하고, 앞서 기술된 바와 같이, 10주 및 24주 차에 생리학적 평가 및 조직병리학으로 동물들(n= 8마리(한 무리당))을 평가하였다.
실시예 4
AAV1에의한 U7-ACCA 의 근육내 전달이 Dup2 마우스에서의 유의미한 N-절삭 디스트로핀 발현을 초래한다
실시예 3에 기술된 방법들로 도 9의 게놈 삽입물을 포함하는 rAAV1을 생산하였다. 이어서, 근육내 주사를 통해, 상기의 AAV.1U7-ACCA를 Dup2 마우스에 투여하였다.
5e11vg AAV.1U7-ACCA의 TA 근육내 주사 후 4주가 지나, DMD mRNA에 RT-PCR을 수행한 결과는 Dup2 동물에서 엑손 2 의 양쪽 카피의 거의 완벽한 스키핑을 보여주었다[도 12(a)].
감염 1개월 후, C-말단 항체(PA1-21011, ThermoScientific)를 사용하는 면역블롯을 수행한 결과, Dup2 및 대조군 Bl6 마우스 양쪽 모두에서 N-절삭 동형단백질(별표)의 유의미한 발현이 나타났다[도 12(b)]. U7-ACCA를 주사한 Bl6 수컷에서 유도된 단백질은 Dup2 처리된 동물에서 발현된 것과 크기가 동일하였고, 이로써 본 단백질과 전장(full-length) 동형단백질 사이의 크기 차이를 확인하였다.
디스트로핀, β-디스트로글리칸 및 뉴런 산화질소 합성효소의 면역형광 염색은 디스트로핀 관련 복합체의 구성성분들의 복원을 입증하였다[도 12(c)].
미처리된 Dup2 동물에서의 강축(tetanic contraction) 후 정규화된 비력(specific force)은 유의미하게도 Bl6 마우스에서보다 작었다. AAV1.U7-ACCA 단독으로, 또는 프레드니손과 병용한 근육내 주사는 Bl6 마우스에서 나타난 것과 크게 다르지 않은 수준으로 힘을 증가시켰다. 미처리된 Dup2 마우스와 (Dup2+PDN)과 병용하여 프레드니손으로 처리된 마우스 사이에 유의미한 차이는 관측되지 않았다[도 12(d)]. 이와 같은 검사의 경우, 공개된 프로토콜[Hakim et al., Journal of Applied Physiology, 110: 1656-1663 (2011)]을 사용하여, 정규화된 비력을 평가하였다.
처리는 공개된 프로토콜(Hakim et al., supra)에 의해 평가된 바와 같이, 반복적인 비정상적 수축 후 비력 손실로부터 Dup2 근육을 유의미하게 보호하였다. AAV1.U7-ACCA 단독으로의 Dup2 마우스 처리는, 미처리된 Dup2 마우스와 비교하여, 통계적으로 유의미한 향상을 초래하였다. AAV1.U7-ACCA 및 프레드니손의 조합은 3회 내지 10회 수축 후, 힘 유지에 있어서, 대조군 Bl6 마우스와 비교하여, 유의미한 차이를 나타내지 않았다[도 12(e)].
실시예 5
Dup2 마우스 모형의 AAV9-U7_ACCA의 정맥내 주사는 N-절삭 동형단백질의 유의미한 발현 및 근력 부족의 수정을 초래한다
주입된 근육 내에서 검출가능한 디스트로핀 발현의 정도를 기초로, 추가 실험을 위해 U7_ACCA SC rAAV를 정맥내로 전달하기로 결정하고, 알려진 조직 분배 특성을 기초로 혈청형 rAAV9를 선택하였다.
실시예 3에 기술된 방법으로, 도 9의 게놈 삽입물을 포함하는 rAAV9을 생산하였다. 이어서, 상기 AAV.9U7-ACCA를 Dup2 마우스에 투여하였다. 첫 번째 무리에는 꼬리 정맥을 통해 3.3E112 vg/kg를 주사하였다. 4주령에 주사를 투여하였다.
AAV9.U7-ACCA의 꼬리 정맥 주사(3.3E12 vg/kg) 후 1개월이 지나서, 5개의 상이한 Dup2 마우스 근육에 RT-PCR를 수행하였다[도 13(a)]. 다중 전사(Dup2, wt, 및 Del2로 표지됨)의 존재에 의해 입증된 바와 같이, U7-ACCA 처리는 모든 검사 대상 근육에서 엑손 2의 카피 1개 또는 2개 모두의 스키핑을 강제할 수 있었다(TA: 전경골근; Gas: 비복근; ♥: 심장; Tri: 삼두근; dia: 횡격막).
주사 후 1개월이 지나 5개의 상이한 근육에 C-말단 항체(PA1-21011, ThermoScientific)를 사용하는 웨스턴 블롯을 수행한 결과, 모든 검사대상 근육에서 디스트로핀의 존재가 입증되었다[도 13(b)].
동일 샘플 상에서 C-말단 항체(PA1-21011, ThermoScientific)를 사용하는 디스트로핀의 면역염색은 근초에서 디스트로핀 발현 및 이것의 적절한 자리잡기를 확인시켜주었다[도 13(c)].
앞다리 및 뒷다리 모두의 악력(grip strength) 평가는 AAV9.U7-ACCA으로 처리된 Dup2 동물에서 악력의 완전한 수정을 입증하였다[도 13(d)]. 공개된 프로토콜[Spurney, et al., Muscle & Nerve, 39, 591-602 (2009)]을 사용하여 이와 같은 검사를 수행하였다.
공개된 프로토콜[Hakim et al., supra)을 사용하여, 미처리된 Dup2 동물[도 13(e)]과 비교하자, 정규화된 비력 및 강축 후 총 힘은 근력의 향상을 나타내었다.
심장 꼭지근(papillary muscles)이, 공개된 프로토콜[Janssen et al., Am J Physiol Heart Circ Physiol., 289(6):H2373-2378 (2005)]을 사용하여, 처리된 동물에서 길이-의존적 힘 생성의 향상을 입증하였다[도 13(f)].
본 발명이 특정 구현예의 측면에서 기술되었으나, 변경 및 변형이 발생하리라는 점이 당해기술의 숙련가에게 이해된다. 따라서, 청구항에서 나타난 바와 같은 제한만이 본 발명에 적용될 것이다.
본원에서 언급된 모든 문서는, 이들이 관련된 내용에 특히 주목을 끌면서, 전체가 참조로 본원에 편입되었다.
SEQUENCE LISTING <110> RESEARCH INSTITUTE AT NATIONWIDE CHILDREN'S HOSPITAL Flanigan, et al. <120> RECOMBINANT ADENO-ASSOCIATED VIRUS DELIVERY OF EXON 2-TARGETED U7snRNA POLYNUCLEOTIDE CONSTRUCTS <130> 28335/47699 KR <150> PCT/US2014/034702 <151> 2014-04-18 <150> US-61/814,256 <151> 2013-04-20 <160> 8 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 4472 <212> DNA <213> Adeno-associated virus <400> 1 ctccatcact aggggtaacc gcgaagcgcc tcccacgctg ccgcgtcagc gctgacgtaa 60 attacgtcat aggggagtgg tcctgtatta gctgtcacgt gagtgctttt gcgacatttt 120 gcgacaccac gtggccattc atggtatata tggccgagtg agcgagcagg atctccattt 180 tgaccgcgaa atttgaacga gcagcagcca tgccgggctt ctacgagatc gtgcttaagg 240 tgccgagcga cctggacgag cacctgccgg gcatttctga ctcgtttgtg aactgggtgg 300 cagagaagga atgggagctg cccccggatt ctgacatgga tcggaatctg attgagcagg 360 cacccctgac cgtggccgag aagctacagc gcgacttcct ggtccaatgg cgccgcgtga 420 gtaaggcccc ggaggccctc ttctttgttc agttcgagaa gggcgagtcc tacttccacc 480 tccatattct ggtagagacc acgggggtca aatccatggt 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caaaaattta gatgaaagag aagatcttca aaagaaaact tgcggaagtg 1620 cgtctgtagc gagccaggga aggacatcaa ctccactttc gatgagggtg agatcaaggt 1680 gccatttcca cacccctcca ctgatatgtg aatcacaaag cacagttcct tattcggttc 1740 gataaacaat attctaaaag actattaaaa ccgctcgttt cttgagtttg tgaccgcttg 1800 taaaggctat gcaaatgagt cagtgctgat tggctgaaaa cagccaatca cagctcctat 1860 gttgttatct agagcatggc tacgtagata agtagcatgg cgggttaatc attaactaca 1920 aggaacccct agtgatggag ttggccactc cctctctgcg cgctcgctcg ctcactgagg 1980 ccgggcgacc aaaggtcgcc cgacgcccgg gctttgcccg ggcggcctca gtgagcgagc 2040 gagcgcgcca gc 2052 <210> 3 <211> 28 <212> DNA <213> Adeno-associated virus <400> 3 tcaaaagaaa acattcacaa aatgggta 28 <210> 4 <211> 31 <212> DNA <213> Adeno-associated virus <400> 4 gttttctttt gaagatcttc tctttcatct a 31 <210> 5 <211> 19 <212> DNA <213> Adeno-associated virus <400> 5 agatcttctc tttcatcta 19 <210> 6 <211> 23 <212> DNA <213> Adeno-associated virus <400> 6 gcacaatttt ctaaggtaag aat 23 <210> 7 <211> 42 <212> DNA <213> 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  1. 인간에 대한 치료 방법.
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