KR20230030509A - 구강질환 유발 세균 검출용 조성물 내지 이의 용도 - Google Patents
구강질환 유발 세균 검출용 조성물 내지 이의 용도 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 구강질환 유발 세균을 검출할 수 있는 프라이머 및 프로브를 포함하는 조성물 내지 이의 용도에 대한 것이다.
본 발명의 프라이머 내지 프로브를 포함하는 조성물을 이용하는 경우 높은 민감도(sensitivity), 직선성(linearity) 및 특이도(specificity) 로 신속하게 구강질환 유발 세균을 검출할 수 있으므로, 구강질환 유발 세균 검출 내지 구강질환 진단을 위해 효과적으로 사용될 수 있다.
본 발명의 프라이머 내지 프로브를 포함하는 조성물을 이용하는 경우 높은 민감도(sensitivity), 직선성(linearity) 및 특이도(specificity) 로 신속하게 구강질환 유발 세균을 검출할 수 있으므로, 구강질환 유발 세균 검출 내지 구강질환 진단을 위해 효과적으로 사용될 수 있다.
Description
본 발명은 구강질환 유발 세균을 검출할 수 있는 프라이머 및 프로브를 포함하는 조성물 내지 이의 용도에 대한 것이다.
중합효소 연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR) 검사는 DNA의 특정 부분을 반복적으로 복제하여 DNA를 증폭시키는 기술로써, 아주 적은 양으로도 특정세균이나 세포내 표적 유전자만 골라내어 다량을 복제할 수 있으므로 유전적 질병이나 바이러스 감염 등 질환의 진단에 폭넓게 활용되고 있다. 최근에는 실시간 PCR(real time PCR)을 활용해 정량적 분석까지 가능한 단계에 이르렀다. 이러한 유전자 증폭기술인 PCR을 이용해 유전자를 직접 검사하여, 바이러스나 세균에 감염된 사람의 타액, 혈액 등에서 병원체의 유전자 정보를 담고 있는 DNA, RNA를 추출한 후 증폭해 질병 감염 여부를 특이적 바이오마커로 확인하는데, 이처럼 질병의 조기 진단을 통한 예방과 효율적인 치료를 가능하게 하는 것이 바로 분자진단 기술이다.
이러한 분자진단 기술 중에서도 타액을 이용한 진단 기술은 종래의 혈액을 분석하는 방법에 비하여 비침습적이고 간편하며 효율적인 장점이 있으며, 구강질환의 진단 뿐 아니라 전신질환을 예방하고 조기에 진단할 목적으로 타액 사용의 타당성에 대한 다수의 연구가 보고되고 있다.
한편, 구강 내에는 약 700여 종의 세균이 존재한다고 보고되었다. 구강 내 세균으로 검출된 종들 중 현재의 세균 배양법으로는 약 50% 정도의 구강 세균만 배양이 가능하며 구강 감염 병소에서 분리 및 동정된 균종은 더욱 부족한 실정이다. 또한, 지금까지의 구강질환 치료는 치석 제거, 치근의 표면 청소, 잇몸을 절개하고 치근을 노출시켜 수술하는 방식으로 이루어져 왔으나, 이는 치료라는 명목의 응급처치일 뿐이어서 근본적인 구강질환의 해결책은 될 수 없다. 구강질환의 원인과 다양한 위험 요인을 조사하고, 같은 질환 경로가 다시 반복되지 않도록 구강질환을 진단 내지 그 치료 방향을 제시할 수 있는 체계적 구강건강 관리 시스템이 요구되고 있다.
이에 본 출원인은 구강질환 유발 세균을 현장에서 비침습적인 방법으로 신속하게 검출 내지 진단할 수 있는 조성물 내지 방법을 제공하고자 예의 노력한 결과, PCR 을 이용하여 1시간 이내로 구강질환 유발 세균을 특이적으로 검출 내지 진단할 수 있는 프라이머 및 프로브를 도출하여 본 발명을 완성하였다.
따라서, 본 발명의 목적은 구강질환 유발 세균을 검출할 수 있는 프라이머 및 프로브를 포함하는 조성물 내지 이의 용도를 제공하는 것이다.
본 발명은 서열번호 1 의 염기서열 및 서열번호 2 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제1프라이머 세트;
서열번호 4 의 염기서열 및 서열번호 5 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제2프라이머 세트;
서열번호 7 의 염기서열 및 서열번호 8 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제3프라이머 세트; 및
서열번호 10 의 염기서열 및 서열번호 11 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제4프라이머 세트;
로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 프라이머 세트를 포함하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 제1프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 3 의 염기서열을 포함하는 프로브;
제2프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 6 의 염기서열을 포함하는 프로브;
제3프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 9 의 염기서열을 포함하는 프로브; 또는
제4프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 12 의 염기서열을 포함하는 프로브; 를 포함하는 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 프라이머 세트는 PCR(polymerase chain reaction)에 사용되는 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 구강질환 유발 세균은 아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans), 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis), 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola) 및 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia) 로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 구강질환은 치은염, 침습성 치주염, 임플란트 주위염, 소아성 치주염, 괴사 궤양성 치주염 및 만성염증성 치주질환 으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다.
본 발명은 또한, 상기 조성물과, PCR 증폭 반응을 위한 시약을 포함하는 구강질환 유발 세균 검출용 키트를 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다.
본 발명은 또한, i) 개체로부터 생물학적 시료를 수득하는 단계;
ii) 상기 단계 i)에서 수득한 생물학적 시료로부터 세균 DNA를 분리하는 단계; 및
iii) 상기 단계 ii)에서 수득한 세균 DNA와 상기 조성물을 이용하여 구강질환 유발 세균을 검출하는 단계;
를 포함하는 구강질환 유발 세균 검출방법을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 단계 i)의 생물학적 시료는 혈액, 소변, 뇌척수액 및 타액 으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 단계 iii)의 검출은 PCR(polymerase chain reaction)을 이용하여 검출하는 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다.
본 발명은 또한, 상기 조성물을 포함하는 구강질환 진단용 조성물을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 조성물과, PCR 증폭 반응을 위한 시약을 포함하는 구강질환 진단용 키트를 제공한다.
본 발명은 또한, i) 개체로부터 생물학적 시료를 수득하는 단계;
ii) 상기 단계 i)에서 수득한 생물학적 시료로부터 세균 DNA를 분리하는 단계; 및
iii) 상기 단계 ii)에서 수득한 세균 DNA와 상기 조성물을 이용하여 구강질환 유발 세균을 검출하는 단계;
를 포함하는 구강질환 진단을 위한 정보제공방법을 제공한다.
본 발명의 프라이머 내지 프로브를 포함하는 조성물을 이용하는 경우 높은 민감도(sensitivity), 직선성(linearity) 및 특이도(specificity) 로 신속하게 구강질환 유발 세균을 검출할 수 있으므로, 구강질환 유발 세균 검출 내지 구강질환 진단을 위해 효과적으로 사용될 수 있다.
도 1은 실시간 PCR 을 이용한 아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 2는 실시간 PCR 을 이용한 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 3은 실시간 PCR 을 이용한 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 4는 실시간 PCR 을 이용한 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 5는 아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Aa) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 6은 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis, Pg) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 7 은 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola, Td) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 8 은 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia, Tf) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 2는 실시간 PCR 을 이용한 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 3은 실시간 PCR 을 이용한 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 4는 실시간 PCR 을 이용한 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia) 검출 결과를 종합적으로 나타낸다.
도 5는 아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans, Aa) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 6은 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis, Pg) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 7 은 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola, Td) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
도 8 은 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia, Tf) 검출 효율에 대한 직선성 분석 결과이다.
이하, 본 발명을 보다 상세히 설명한다.
본 발명의 '프라이머 및 프로브 세트(프라이머/프로브 세트)'는 정방향 프라이머, 역방향 프라이머 및 프로브의 3가지 서열이 하나의 세트로 구성된 것을 의미한다. 본 발명에서는 제1프라이머 세트 내지 제4프라이머 세트에 각각 서열번호 3, 6, 9 또는 12의 염기서열을 포함하는 프로브가 포함된 세트를 의미한다.
본 발명의 '프라이머'는 짧은 자유 3' 말단 수산화기(free 3' hydroxyl group)를 가지는 핵산 서열로 상보적인 주형(template)과 염기쌍을 형성할 수 있고 주형 가닥 복사를 위한 시작 지점으로 기능을 하는 짧은 핵산 서열을 의미한다. 즉, 프라이머는 적절한 버퍼 중의 적절한 조건(예를 들면, 4개의 다른 뉴클레오시드 트리포스페이트 및 DNA, DNA 폴리머라제 효소와 같은 중합제) 및 적당한 온도 하에서 주형-지시 DNA 합성을 개시할 수 있는 단일가닥 올리고뉴클레오티드를 의미한다.
본 발명의 '진단(diagnosis)'은 넓은 의미로는 환자의 병의 실태를 모든 면에 걸쳐서 판단하는 것을 의미한다. 판단의 내용은 병명, 병인, 병형, 경중, 병상의 상세한 양태, 및 합병증의 유무 등이다. 본 발명에서 진단은 바람직하게는 세균에 의하여 구강질환 및 이의 발병 위험성을 판단하는 것이다.
본 발명은 서열번호 1 의 염기서열 및 서열번호 2 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제1프라이머 세트;
서열번호 4 의 염기서열 및 서열번호 5 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제2프라이머 세트;
서열번호 7 의 염기서열 및 서열번호 8 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제3프라이머 세트; 및
서열번호 10 의 염기서열 및 서열번호 11 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제4프라이머 세트;
로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 프라이머 세트를 포함하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물을 제공할 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 제1프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 3 의 염기서열을 포함하는 프로브;
제2프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 6 의 염기서열을 포함하는 프로브;
제3프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 9 의 염기서열을 포함하는 프로브; 또는
제4프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 12 의 염기서열을 포함하는 프로브; 를 포함하는 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 프라이머 세트는 PCR(polymerase chain reaction)에 사용되는 것이다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다. 바람직하게는 상기 PCR 은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR) 또는 실시간 PCR(real-time PCR) 일 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 구강질환 유발 세균은 아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans), 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis), 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola) 및 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia) 로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것일 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 구강질환은 치은염, 침습성 치주염, 임플란트 주위염, 소아성 치주염, 괴사 궤양성 치주염 및 만성염증성 치주질환 으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것일 수 있다.
본 발명은 또한, 상기 조성물과, PCR 증폭 반응을 위한 시약을 포함하는 구강질환 유발 세균 검출용 키트를 제공할 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다. 바람직하게는 상기 PCR 은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR) 또는 실시간 PCR(real-time PCR) 일 수 있다.
본 발명의 상기 키트는 PCR 증폭 반응을 수행하기 위해 DNA 폴리머라제, dNTPs, 완충액 등을 포함할 수 있다. 상기 키트는 또한 최적의 반응 수행 조건을 기재한 사용자 안내서를 추가로 포함할 수 있다. 안내서는 키트 사용법, 예를 들면, 역전사 완충액 및 PCR 완충액 제조 방법, 제시되는 반응 조건 등을 설명하는 인쇄물이다. 안내서는 팜플렛 또는 전단지 형태의 안내 책자, 키트에 부착된 라벨, 및 키트를 포함하는 패키지의 표면상에 설명을 포함한다. 또한, 안내서는 인터넷과 같이 전기 매체를 통해 공개되거나 제공되는 정보를 포함한다.
본 발명은 또한, i) 개체로부터 생물학적 시료를 수득하는 단계;
ii) 상기 단계 i)에서 수득한 생물학적 시료로부터 세균 DNA를 분리하는 단계; 및
iii) 상기 단계 ii)에서 수득한 세균 DNA와 상기 조성물을 이용하여 구강질환 유발 세균을 검출하는 단계;
를 포함하는 구강질환 유발 세균 검출방법을 제공할 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 단계 i)의 생물학적 시료는 혈액, 소변, 뇌척수액 및 타액으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다. 상기 타액은 개체가 가글링으로 뱉어낸 타액일 수 있다.
상기 세균 DNA 는 상기 구강질환 유발 세균의 DNA 를 의미하는 것일 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 단계 iii)의 검출은 PCR(polymerase chain reaction)을 이용하여 검출하는 것일 수 있다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것이다. 바람직하게는 상기 PCR 은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR) 또는 실시간 PCR(real-time PCR) 일 수 있다
본 발명은 또한, 상기 조성물을 포함하는 구강질환 진단용 조성물을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 조성물과, PCR 증폭 반응을 위한 시약을 포함하는 구강질환 진단용 키트를 제공한다. 상기 PCR 및 키트는 상기 구강질환 유발 세균 검출용 키트에서 사용된 개념과 동일하므로 설명은 그 기재로 대신한다.
본 발명은 또한, i) 개체로부터 생물학적 시료를 수득하는 단계;
ii) 상기 단계 i)에서 수득한 생물학적 시료로부터 세균 DNA를 분리하는 단계; 및
iii) 상기 단계 ii)에서 수득한 세균 DNA와 상기 조성물을 이용하여 구강질환 유발 세균을 검출하는 단계;
를 포함하는 구강질환 진단을 위한 정보제공방법을 제공한다.
상기 시료, 구강질환 유발 세균 및 검출은 상기 구강질환 유발 세균 검출방법에서 사용된 개념과 동일하므로 설명은 그 기재로 대신한다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의하여 제한되는 것으로 해석하지 않는 것은 해당 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명한 것이다.
아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스 검출을 위한 프라이머 및 프로브 제작
<1-1> 타겟 영역 선정
아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans, 이하 A.a) 검출과 관련하여 공개된 논문들에서는 16s RNA 를 이용한 A.a 검출을 제시하고 있었으나, 본 출원인은 프라이머 및 프로브의 특이도를 높이기 위해 단백질 유전자(cpn60)를 타겟하여 프라이머 및 프로브를 디자인하고자 하였다.
GenBank No. AY123712 (Actinobacillus actinomycetemcomitans strain ATCC 33384 (cpn60) gene, partial cds)을 기준으로 이와 유사한 서열을 genious software 11.1.5 를 이용하여 수집하였다. 최종적으로 수집된 총 927 개의 서열을 다중서열정렬(multiple alignment) 방법으로 정렬한 결과, 927 개의 서열 중 12 개가 A.a 임을 확인하였다.
<1-2> 프라이머 및 프로브 디자인
상기 실시예 <1-1> 에서 정렬한 데이터를 기반으로 primer express 3.0.1 을 이용하여 A.a 에 특이적인 프라이머 및 프로브를 디자인하였다(표 1).
| 서열 (5'->3') | 크기(bp) | PCR 산물 크기(bp) | 서열번호 | |
| A.a 프라이머 F | CTCTCCAAACCATGCGAAACC | 21 | 99 | 1 |
| A.a 프라이머 R | CATGGCTTGAGCGATTAATTGAC | 23 | 2 | |
| A.a 프로브 | CACGATCTCTGCAAATTCCGACAGCATT | 28 | 3 |
상기 A.a 프로브 서열은 NCBI blast 에서 다시 검증한 결과 모든 A.a 종에 대하여 특이적이고, 다른 세균 종에 대하여는 비특이적인 것을 확인할 수 있었다.
[NCBI blast searching 조건]
Max target sequences : 1000
Program selection optimize for Highly similar sequences (blastn)
Database : Others (nr etc.)_nucleotide collection (nr/nt)
Tm 과 self- & hetero- dimer 는 IDT 의 Oligo analyzer 를 이용하여 확인하였다.
[정방향 프라이머_A.a 프라이머 F]
GC 52.4% / Melt temp: 56.5℃/ MOLECULAR WEIGHT: 6304.2 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 194900 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 1 개 (Δ0.41)
Self-dimer : Maximum Δ-41.68 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[역방향 프라이머_A.a 프라이머 R]
GC 43.5% / Melt temp: 54.6℃/ MOLECULAR WEIGHT: 7078.6 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 222500 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 2 개 (Δ-0.56, -0.06)
Self-dimer : Maximum Δ- 43.2 kcal/mole -> Max. 6 bases 결합
[프로브_A.a 프로브]
GC 46.4% / Melt temp: 61.1℃/ MOLECULAR WEIGHT: 8492.6 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 262600 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 4 개 (Δ-0.51, -0.38, -0.32, -0.15)
Self-dimer : Maximum Δ- 53.89 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[Dimer analysis]
Hetero-dimer(F-R) : Maximum Δ-43.2 kcal/mole -> Max. 5 bases 결합
Hetero-dimer(F-P) : Maximum Δ-53.89 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
Hetero-dimer(R-P) : Maximum Δ-53.89 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
양성 대조군(positive control)을 주문함에 있어서 필요로 하는 앰플리콘(amplicon) 을 기준으로 NCBI blast 를 이용하여 재검증한 결과 A.a 종(strain) 에 대해 100% cover, 96.97% 이상의 동일성을 지니는 것을 확인하였고, 그 외의 다른 종 에 대해서는 동일성이 90.62% 이하로 떨어지는 것을 확인하였다. 결과적으로 본 발명의 프라이머 및 프로브는 A.a 양성 대조군을 합성하는 데에도 문제가 없는 것을 확인할 수 있었다.
포필로모나스 진지발리스 검출을 위한 프라이머 및 프로브 제작
<2-1> 타겟 영역 선정
해외에서 상용화 되고 있는 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis, 이하 P.g) 를 검출할 수 있는 진단 키트는 P.g 의 fimA 유전자를 이용하여 검출하고 있었으나, 본 출원인이 fimA 를 타겟 유전자로 검출한 결과 특이도가 낮았다. 이에 본 출원인은 프라이머 및 프로브의 특이도를 높이기 위해 단백질 유전자(rgpB)를 타겟하여 프라이머 및 프로브를 디자인하고자 하였다.
GenBank No. AP009380 (Porphyromonas gingivalis ATCC 33277 DNA, complete genome)을 기준으로 이와 유사한 서열을 genious software 11.1.5 를 이용하여 수집하였다. 최종적으로 수집된 총 54 개의 서열을 다중서열정렬(multiple alignment) 방법으로 정렬한 결과, 54 개의 서열 모두 P.g 임을 확인하였다.
<2-2> 프라이머 및 프로브 디자인
상기 실시예 <2-1> 에서 정렬한 데이터를 기반으로 primer express 3.0.1 을 이용하여 P.g 에 특이적인 프라이머 및 프로브를 디자인하였다(표 2).
| 서열 (5'->3') | 크기(bp) | PCR 산물 크기(bp) | 서열번호 | |
| P.g 프라이머 F | TAGCATTCTCCTCTCTGTTGGGAG | 24 | 119 | 4 |
| P.g 프라이머 R | CATACGGAATTGCACCTTGGAC | 22 | 5 | |
| P.g 프로브 | CGCAACCCACAAGTACGACTGCTCTCC | 27 | 6 |
상기 P.g 프로브 서열은 NCBI blast 에서 다시 검증한 결과 모든 P.g 종에 대하여 특이적이고, 다른 세균 종에 대하여는 비특이적인 것을 확인할 수 있었다.
[NCBI blast searching 조건]
Max target sequences : 1000
Program selection optimize for Highly similar sequences (blastn)
Database : Others (nr etc.)_nucleotide collection (nr/nt)
Tm 과 self- & hetero- dimer 는 IDT 의 Oligo analyzer 를 이용하여 확인하였다.
[정방향 프라이머_P.g 프라이머 F]
GC 50% / Melt temp: 57.8℃/ MOLECULAR WEIGHT: 7325.8 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 217500 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 3 개 (Δ-1.7, -1.21, -0.89)
Self-dimer : Maximum Δ-43.34 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[역방향 프라이머_P.g 프라이머 R]
GC 50% / Melt temp: 56.3℃/ MOLECULAR WEIGHT: 6719.4 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 210000 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 3 개 (Δ0.34, 0.84, 0.97)
Self-dimer : Maximum Δ- 42.29 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[프로브_P.g 프로브]
GC 59.3% / Melt temp: 64.5℃/ MOLECULAR WEIGHT: 8134.3 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 246200 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 4 개 (Δ-0.26, 0.21, 0.35, 0.38)
Self-dimer : Maximum Δ- 53.2 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[Dimer analysis]
Hetero-dimer(F-R) : Maximum Δ-43.34 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
Hetero-dimer(F-P) : Maximum Δ-53.2 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
Hetero-dimer(R-P) : Maximum Δ-53.2 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
양성 대조군(positive control)을 주문함에 있어서 필요로 하는 앰플리콘(amplicon) 을 기준으로 NCBI blast 를 이용하여 재검증한 결과 P.g 종(strain) 에 대해 99% 이상 커버되는 것을 확인하였고, 그 외의 다른 종 에 대해서는 동일성이 73.3% 이하로 떨어지는 것을 확인하였다. 결과적으로 본 발명의 프라이머 및 프로브는 P.g 양성 대조군을 합성하는 데에도 문제가 없는 것을 확인할 수 있었다.
트레포네마 덴티콜라 검출을 위한 프라이머 및 프로브 제작
<3-1> 타겟 영역 선정
트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola, 이하 T.d) 의 검출을 위하여 본 출원인은 프라이머 및 프로브의 특이도를 높이고자 단백질 유전자(cfpA)를 타겟하여 프라이머 및 프로브를 디자인하고자 하였다.
GenBank No. AF062737 (Treponema denticola cytoplasmic filament protein A (cfpA) gene, partial cds)을 기준으로 이와 유사한 서열을 genious software 11.1.5 를 이용하여 수집하였다. 최종적으로 수집된 총 14 개의 서열을 다중서열정렬(multiple alignment) 방법으로 정렬한 결과, 14 개의 서열에는 T.d 이외에 T. putidum, T. pedis, T. phagedenis, T. vincentii 등이 포함되어 있었다.
<3-2> 프라이머 및 프로브 디자인
상기 실시예 <3-1> 에서 정렬한 데이터를 기반으로 primer express 3.0.1 을 이용하여 T.d 에 특이적인 프라이머 및 프로브를 디자인하였다(표 3).
| 서열 (5'->3') | 크기(bp) | PCR 산물 크기(bp) | 서열번호 | |
| T.d 프라이머 F | GCGCGGTGTTAATGATTTGG | 20 | 99 | 7 |
| T.d 프라이머 R | ACGATTGAGTATGCGTTTTCACCT | 24 | 8 | |
| T.d 프로브 | AGGCAGAAGACGGACGTAGGTGCCTTC | 27 | 9 |
상기 T.d 프로브 서열은 NCBI blast 에서 다시 검증한 결과 모든 T.d 종에 대하여 특이적이고, 다른 세균 종에 대하여는 비특이적인 것을 확인할 수 있었다.
[NCBI blast searching 조건]
Max target sequences : 1000
Program selection optimize for Highly similar sequences (blastn)
Database : Others (nr etc.)_nucleotide collection (nr/nt)
Tm 과 self- & hetero- dimer 는 IDT 의 Oligo analyzer 를 이용하여 확인하였다.
[정방향 프라이머_T.d 프라이머 F]
GC 50% / Melt temp: 55.1℃/ MOLECULAR WEIGHT: 6219.1 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 192500 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 8 개 (Δ0.92, 1.03, 1.46, 1.53, 1.63, 1.79, 1.84, 1.9)
Self-dimer : Maximum Δ-41.45 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[역방향 프라이머_T.d 프라이머 R]
GC 41.7% / Melt temp: 56.9℃ / MOLECULAR WEIGHT: 7333.8 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 227100 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 2 개 (Δ-0.28, -0.19)
Self-dimer : Maximum Δ- 44.27 kcal/mole -> Max. 3 bases 결합
[프로브_T.d 프로브]
GC 59.3% / Melt temp: 65.2℃/ MOLECULAR WEIGHT: 8374.5 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 268600 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 1 개 (Δ-2.34)
Self-dimer : Maximum Δ- 54.2 kcal/mole -> Max. 5 bases 결합
[Dimer analysis]
Hetero-dimer(F-R) : Maximum Δ-44.27 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
Hetero-dimer(F-P) : Maximum Δ-54.2 kcal/mole -> Max. 2 bases 결합
Hetero-dimer(R-P) : Maximum Δ-54.2 kcal/mole -> Max. 5 bases 결합
양성 대조군(positive control)을 주문함에 있어서 필요로 하는 앰플리콘(amplicon) 을 기준으로 NCBI blast 를 이용하여 재검증한 결과 T.d 종(strain) 에 대하여 특이적이고, 그 외의 다른 종 에 대해서는 동일성이 92.93% 이하로 떨어지는 것을 확인하였다. 결과적으로 본 발명의 프라이머 및 프로브는 T.d 양성 대조군을 합성하는 데에도 문제가 없는 것을 확인할 수 있었다.
터너렐라 포시티아 검출을 위한 프라이머 및 프로브 제작
<4-1> 타겟 영역 선정
터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia,이하 T.f) 의 검출을 위하여 본 출원인은 프라이머 및 프로브의 특이도를 높이고자 단백질 유전자(hsp60)를 타겟하여 프라이머 및 프로브를 디자인하고자 하였다.
GenBank No. AB547635 (Tannerella forsythia hsp60 gene for heat shock protein 60, partial cds, strain: JCM 10827)을 기준으로 이와 유사한 서열을 genious software 11.1.5 를 이용하여 수집하였다. 최종적으로 수집된 총 35 개의 서열을 다중서열정렬(multiple alignment) 방법으로 정렬한 결과, 35 개의 서열 중 6 개가 T.f 임을 확인하였다.
<4-2> 프라이머 및 프로브 디자인
상기 실시예 <4-1> 에서 정렬한 데이터를 기반으로 primer express 3.0.1 을 이용하여 T.f 에 특이적인 프라이머 및 프로브를 디자인하였다(표 4).
| 서열 (5'->3') | 크기(bp) | PCR 산물 크기(bp) | 서열번호 | |
| T.f 프라이머 F | AGGCGTCATCACGGTAGAAGAAG | 23 | 94 | 10 |
| T.f 프라이머 R | ATAAGCGGAGATATAACCGCGATC | 24 | 11 | |
| T.f 프로브 | CAAGGGAACGGAAACGACCGTGGAG | 25 | 12 |
상기 T.f 프로브 서열은 NCBI blast 에서 다시 검증한 결과 모든 T.f 종에 대하여 특이적이고, 다른 세균 종에 대하여는 비특이적인 것을 확인할 수 있었다.
[NCBI blast searching 조건]
Max target sequences : 1000
Program selection optimize for Highly similar sequences (blastn)
Database : Others (nr etc.)_nucleotide collection (nr/nt)
Tm 과 self- & hetero- dimer 는 IDT 의 Oligo analyzer 를 이용하여 확인하였다.
[정방향 프라이머_T.f 프라이머 F]
GC 52.2% / Melt temp: 58.6℃/ MOLECULAR WEIGHT: 7146.7 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 240200 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 1 개 (Δ-1.53)
Self-dimer : Maximum Δ-43.45 kcal/mole -> Max. 3 bases 결합
[역방향 프라이머_T.f 프라이머 R]
GC 45.8% / Melt temp: 56.4℃/ MOLECULAR WEIGHT: 7394.9 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 248000 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 1 개 (Δ-3.72)
Self-dimer : Maximum Δ- 46.76 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[프로브_T.f 프로브]
GC 60% / Melt temp: 63.4℃/ MOLECULAR WEIGHT: 7799.1 g/mole / EXTINCTION COEFFICIENT : 258800 L/(mole·cm)
Hairpin str.: 3 개 (Δ-3.21, -2.82, -1.92)
Self-dimer : Maximum Δ- 52.73 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
[Dimer analysis]
Hetero-dimer(F-R) : Maximum Δ-46.76 kcal/mole -> Max. 4 bases 결합
Hetero-dimer(F-P) : Maximum Δ-52.73 kcal/mole -> Max. 6 bases 결합
Hetero-dimer(R-P) : Maximum Δ-52.73 kcal/mole -> Max. 3 bases 결합
양성 대조군(positive control)을 주문함에 있어서 필요로 하는 앰플리콘(amplicon) 을 기준으로 NCBI blast 를 이용하여 재검증한 결과 T.f 종(strain) 에 대하여 100% 특이적이고, 그 외의 다른 종 에 대해서는 동일성이 떨어지는 것을 확인하였다. 결과적으로 본 발명의 프라이머 및 프로브는 T.f 양성 대조군을 합성하는 데에도 문제가 없는 것을 확인할 수 있었다.
프라이머 및 프로브의 민감도 확인
상기 <실시예 1> 내지 <실시예 4> 에서 제작한 프라이머 및 프로브의 분석적 민감도(sensitivity)를 평가하고자 하였다.
구체적으로, 생물자원센터에서 분양받은 표준균주(Aggregatibacter actinomycetemcomitans KCTC 2581(Aa), Porphyromonas gingivalis KCTC 5352 (Pg), Treponema denticola KCTC 15104 (Td) 및 Tannerella forsythia KCTC 5666 (Tf))는 멸균된 20%의 glycerol stock 과 1:1 로 혼합하여 초저온 냉동고(-70℃ 이하)에 보관하였다. 표준균주를 초저온 냉동고(-70℃ 이하)로부터 꺼내 해동한 후, 제조사(Qiagen) 프로토콜에 따라 QIAamp DNA mini prep kit 으로 핵산을 추출하였다. 추출된 핵산은 NanoDrop 2000 분광분석기 (Thermo Fisher)를 이용하여 수율을 측정한 뒤, copy number 로 단위를 환산하여 106 copies/㎕ 부터 1/10X 배수로 연속희석을 진행하여 100 copy/㎕ 까지 제조하였다 (균주별 농도 구간 상이). 희석/제조된 핵산은 상기 <실시예 1> 내지 <실시예 4> 에서 제작한 프라이머 및 프로브를 각각 사용하여 Gene Checker UF-300(PCR thermocycler, Genesystem)로 실시간 PCR(real time PCR) 분석을 수행하였다(표 5). 리포트 창에서 Ct 값 결과를 해석하고, CV(%) 분석값과 검출정도(유무)를 통해 시험 결과가 유효한지 확인하였다. 그 후 IBM SPSS Statistics (Ver. 28.0.0.0) Probit 분석을 통해 민감도를 결정하였다. 최소한의 테스트 수는 60회 이었다(균주별 6개 농도 X 10회 반복).
| 온도(℃) | 시간(s) | 사이클 |
| 98 | 30 | 1 |
| 98 | 3 | 40 |
| 60 | 15 | |
| 주형(1 ㎕), Pp mix(1 ㎕), 2x MM(5 ㎕), D.W(3 ㎕); 총 10 ㎕ | ||
| 장비 : UF-300 (Genesystem)시약 : Rapi:Spec Probe Mastermix (Genesystem) Oligo (Primer&Probe) : macrogene |
||
그 결과, Aa 와 Td 의 경우, 10 copies/㎕ 까지 100% 검출되었으며 Pg 는 20%, Tf 는 30% 검출되는 것을 확인할 수 있었다. 실험 결과의 유효성 정도를 확인할 수 있는 CV(Coefficient of Variation, 변동계수) 역시 모두 5% 이내의 수치를 나타냈으며, PCR 자체의 performance 를 확인할 수 있는 지표인 IPC(Internal Positive Control, 서열번호 13 ~15)는 4 개의 target 에서 100% 검출된 것을 확인할 수 있었다(도 1 ~ 도 4). 상기 데이터를 기반으로 SPSS probit 분석을 진행하여 각 target 별 q-PCR reagents 의 분석적 민감도를 확인한 결과는 하기 [표 6] 에 기재하였다(copies/㎕, 95% 신뢰구간 기준).
| 타겟 | Aa | Pg | Td | Tf |
| 민감도 | 8.613 | 81.993 | 8.613 | 44.751 |
프라이머 및 프로브의 직선성 확인
상기 <실시예 1> 내지 <실시예 4> 에서 제작한 프라이머 및 프로브의 효율의 직선성(linearity)을 평가하고자 상기 <실시예 5> 와 동일한 방법으로 표준균주들을 정량한 후, 리포트 창에서 Ct 값 결과를 해석하여 직선성을 평가하였다.
그 결과, [도 5] 내지 [도 8] 에서 나타나는 바와 같이 Aa, Td 및 Tf 의 상관계수값이 0.99 이상으로 확인되었으며 Pg 역시 0.9873 의 높은 상관계수값을 나타내는 것을 확인할 수 있었다. 이는 표적 핵산의 농도에 따라 일정한 값을 재현성 있게 도출하는 것을 의미하였다.
프라이머 및 프로브의 특이도 확인
상기 <실시예 1> 내지 <실시예 4> 에서 제작한 프라이머 및 프로브의 분석적 특이도(specificity)를 평가하고자 하였다.
구체적으로, 생물자원센터에서 분양받은 표준균주(표 7) 들은 멸균된 20%의 glycerol stock 과 1:1 로 혼합하여 초저온 냉동고(-70℃ 이하)에 보관하였다. 표준균주를 초저온 냉동고(-70℃ 이하)로부터 꺼내 해동한 후, 제조사(Qiagen)의 프로토콜에 따라 QIAamp DNA mini prep kit 으로 핵산을 추출하였다. 추출된 핵산은 NanoDrop 2000 분광분석기 (Thermo Fisher)를 이용하여 수율을 측정한 뒤, copy number 로 단위를 환산하여 희석하고, 105 copies/㎕ 를 q-PCR 실험에 사용하였다. 희석/제조된 핵산은 상기 <실시예 1> 내지 <실시예 4> 에서 제작한 프라이머 및 프로브를 각각 사용하여 Gene Checker UF-300(PCR thermocycler, Genesystem)에서 실시간 PCR(real time PCR) 분석을 수행하였다. 리포트 창에서 Ct 값 결과를 해석하고, PC(Positive control), NC(Negative control) 및 IPC(Internal Positive Control)의 CV(%) 분석값과 검출정도(유무)를 통해 시험 결과가 유효한지 확인하였다. 각 타겟 별 35 종의 다른 균의 핵산을 주형(template)으로 이용하여 q-PCR 1 회 반복하였다.
그 결과, 하기 [표 8] 에서 나타나는 바와 같이 100% 의 특이도를 나타냈으며, 실험 결과에 유효성 정도를 확인할 수 있는 CV(Coefficient of Variation, 변동계수) 역시 모두 5% 이내의 수치를 나타낸 것을 확인할 수 있었다.
| 검출 비율(총 35 종) | ||||||
| 검출 제제 | 타겟 | IPC | PC | IPC | NC | IPC |
| Aa | 0/35 | 35/35 | 5/5 | 5/5 | 0/5 | 5/5 |
| Pg | 0/35 | 35/35 | 5/5 | 5/5 | 0/5 | 5/5 |
| Td | 0/35 | 35/35 | 5/5 | 5/5 | 0/5 | 5/5 |
| Tf | 0/35 | 35/35 | 5/5 | 5/5 | 0/5 | 5/5 |
| % | 0% | 100% | 100% | 100% | 100% | 100% |
SEQUENCE LISTING
<110> Denomics
<120> Composition for detecting microorganism associated with oral
disease and uses thereof
<130> 1071150
<160> 15
<170> PatentIn version 3.2
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> A.a primer F
<400> 1
ctctccaaac catgcgaaac c 21
<210> 2
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> A.a primer R
<400> 2
catggcttga gcgattaatt gac 23
<210> 3
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> A.a probe
<400> 3
cacgatctct gcaaattccg acagcatt 28
<210> 4
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> P.g primer F
<400> 4
tagcattctc ctctctgttg ggag 24
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> P.g primer R
<400> 5
catacggaat tgcaccttgg ac 22
<210> 6
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> P.g probe
<400> 6
cgcaacccac aagtacgact gctctcc 27
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> T.d primer F
<400> 7
gcgcggtgtt aatgatttgg 20
<210> 8
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> T.d primer R
<400> 8
acgattgagt atgcgttttc acct 24
<210> 9
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> T.d probe
<400> 9
aggcagaaga cggacgtagg tgccttc 27
<210> 10
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> T.f primer F
<400> 10
aggcgtcatc acggtagaag aag 23
<210> 11
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> T.f primer R
<400> 11
ataagcggag atataaccgc gatc 24
<210> 12
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> T.f probe
<400> 12
caagggaacg gaaacgaccg tggag 25
<210> 13
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> IPC primer F
<400> 13
ctcaaakgaa ttgacgggg 19
<210> 14
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> IPC primer R
<400> 14
gtcatccmma ccttcctc 18
<210> 15
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> IPC probe
<400> 15
catggytgtc gtcagctcgt g 21
Claims (15)
- 서열번호 4 의 염기서열 및 서열번호 5 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제2프라이머 세트;
서열번호 7 의 염기서열 및 서열번호 8 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제3프라이머 세트; 및
서열번호 10 의 염기서열 및 서열번호 11 의 염기서열을 포함하는 프라이머 쌍으로 이루어진 제4프라이머 세트;
를 모두 포함하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물.
- 제1항에 있어서, 상기 제2프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 6 의 염기서열을 포함하는 프로브;
제3프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 9 의 염기서열을 포함하는 프로브; 또는
제4프라이머 세트는 추가적으로 서열번호 12 의 염기서열을 포함하는 프로브;
를 포함하는 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물.
- 제1항에 있어서, 상기 프라이머 세트는 PCR(polymerase chain reaction)에 사용되는 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물.
- 제3항에 있어서, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물.
- 제1항에 있어서, 상기 구강질환 유발 세균은 아그레가티박터 악티노마이세템코미탄스(Aggregatibacter actinomycetemcomitans), 포필로모나스 진지발리스(Porphyromonas gingivalis), 트레포네마 덴티콜라(Treponema denticola) 및 터너렐라 포시티아(Tannerella forsythia) 로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물.
- 제1항에 있어서, 상기 구강질환은 치은염, 침습성 치주염, 임플란트 주위염, 소아성 치주염, 괴사 궤양성 치주염 및 만성염증성 치주질환 으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출용 조성물.
- 제1항의 조성물과, PCR 증폭 반응을 위한 시약을 포함하는 구강질환 유발 세균 검출용 키트.
- 제7항에 있어서, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출용 키트.
- i) 개체로부터 생물학적 시료를 수득하는 단계;
ii) 상기 단계 i)에서 수득한 생물학적 시료로부터 세균 DNA를 분리하는 단계; 및
iii) 상기 단계 ii)에서 수득한 세균 DNA와 상기 제1항의 조성물을 이용하여 구강질환 유발 세균을 검출하는 단계;
를 포함하는 구강질환 유발 세균 검출방법.
- 제9항에 있어서, 상기 단계 i)의 생물학적 시료는 혈액, 소변, 뇌척수액 및 타액 으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출방법.
- 제9항에 있어서, 상기 단계 iii)의 검출은 PCR(polymerase chain reaction)을 이용하여 검출하는 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출방법.
- 제11항에 있어서, 상기 PCR은 정량적 PCR(quantitative PCR, qPCR), 실시간 PCR(real-time PCR), 역전사 PCR(Reverse Transcription PCR, RT-PCR), 고체상 PCR(Solid Phase PCR), 경쟁적 PCR(Competitive PCR), 오버랩 PCR(Overlap-extension PCR), 멀티플렉스 PCR(Multiplex PCR), 네스티드 PCR(Nested PCR), 역 PCR(Inverse PCR), 라이게이션-연관 PCR(Ligation-mediated PCR), ISSR(Intersequence-specific PCR), 메틸화-특이 PCR(Methylation-specific PCR, MSP), 콜로니 PCR(colony PCR), 미니프라이머 PCR(Miniprimer PCR), 나노 PCR(Nanoparticle-Assisted PCR, nanoPCR), TAIL-PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR), 터치다운 PCR(Touchdown(Step-down) PCR), 핫 스타트 PCR(Hot start PCR), 인-실리코 PCR(In silico PCR), 대립유전자 특이 PCR(allele-specific PCR), 어셈블리 PCR(Assembly PCR), 비대칭 PCR(asymmetric PCR), 다이알-아웃 PCR(Dial-out PCR), 디지털 PCR(Digital PCR, dPCR) 및 헬리카제-의존형 증폭 기술(helicasedependent amplification)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 구강질환 유발 세균 검출방법.
- 제1항의 조성물을 포함하는 구강질환 진단용 조성물.
- 제13항의 조성물과, PCR 증폭 반응을 위한 시약을 포함하는 구강질환 진단용 키트.
- i) 개체로부터 생물학적 시료를 수득하는 단계;
ii) 상기 단계 i)에서 수득한 생물학적 시료로부터 세균 DNA를 분리하는 단계; 및
iii) 상기 단계 ii)에서 수득한 세균 DNA와 상기 제1항의 조성물을 이용하여 구강질환 유발 세균을 검출하는 단계;
를 포함하는 구강질환 진단을 위한 정보제공방법.
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| KR (2) | KR102395651B1 (ko) |
| WO (1) | WO2023027418A1 (ko) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR102395651B1 (ko) * | 2021-08-25 | 2022-05-09 | 주식회사 덴오믹스 | 구강질환 유발 세균 검출용 조성물 내지 이의 용도 |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR20100123454A (ko) | 2009-05-15 | 2010-11-24 | 이정훈 | 오답율에 따른 기출문제를 제공하는 시스템 |
| KR20120018161A (ko) | 2009-04-16 | 2012-02-29 | 시리트 엘엘씨 | 휘발성 핵분열 생성물이 제거되는 핵분열 원자로 |
| KR101706070B1 (ko) * | 2016-06-28 | 2017-02-13 | (주) 와이디생명과학 | 멀티플렉스 실시간 pcr을 이용한 다수의 구강질환 원인 세균의 동시 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출 방법 |
| KR20170064613A (ko) * | 2015-12-01 | 2017-06-12 | 주식회사 마이크로이즈 | 구강 질환 관련 세균의 실시간 검출용 프라이머 및 프로브, 및 이를 이용한 리얼타임 pcr 방법 |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR102395651B1 (ko) * | 2021-08-25 | 2022-05-09 | 주식회사 덴오믹스 | 구강질환 유발 세균 검출용 조성물 내지 이의 용도 |
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2021
- 2021-08-25 KR KR1020210112573A patent/KR102395651B1/ko active IP Right Grant
-
2022
- 2022-05-03 KR KR1020220054688A patent/KR102616515B1/ko active IP Right Grant
- 2022-08-18 WO PCT/KR2022/012337 patent/WO2023027418A1/ko active Application Filing
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR20120018161A (ko) | 2009-04-16 | 2012-02-29 | 시리트 엘엘씨 | 휘발성 핵분열 생성물이 제거되는 핵분열 원자로 |
| KR20100123454A (ko) | 2009-05-15 | 2010-11-24 | 이정훈 | 오답율에 따른 기출문제를 제공하는 시스템 |
| KR20170064613A (ko) * | 2015-12-01 | 2017-06-12 | 주식회사 마이크로이즈 | 구강 질환 관련 세균의 실시간 검출용 프라이머 및 프로브, 및 이를 이용한 리얼타임 pcr 방법 |
| KR101706070B1 (ko) * | 2016-06-28 | 2017-02-13 | (주) 와이디생명과학 | 멀티플렉스 실시간 pcr을 이용한 다수의 구강질환 원인 세균의 동시 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출 방법 |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Daniel Saito et al., Clinical Research, 35(11), p.1518-1524, 2009. * |
| Y.-J. Jung et al., Molecular Oral Microbiology, 32, p.301-313, 2017. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| KR102395651B1 (ko) | 2022-05-09 |
| KR102616515B1 (ko) | 2023-12-21 |
| WO2023027418A1 (ko) | 2023-03-02 |
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