본 발명은 제1 pH에서, 시료를 아미노기와 카르복실기를 포함하고 상기 제1 pH에서 양전하를 띠는 이관능기 물질과 접촉시켜 핵산을 상기 물질에 결합시키는 단계; 및
상기 제1 pH 보다 높은 제2 pH에서 상기 핵산을 방출시키는 단계를 포함하고,
상기 물질은 하기 화학식 1 또는 2로 표시되는 것을 특징으로 하는, 핵산을 포함하는 시료로부터 핵산을 분리하는 방법을 제공한다:
식 중 n은 1 내지10의 정수이고, [ ] 부분의 기는 피로멜릭틱(pyromellitic) 이무수물, 3,3',4,4'-비페닐테트라카르복실릭 이무수물, 2,2',3,3'-비페닐테트라카르복실릭 이무수물, 2,3,3',4'-비페닐테트라카르복실릭 이무수물, 1,2,4,5-벤젠테트라카르복실릭 이무수물, 3,3',4,4'-벤조페논테트라카르복실릭 이무수물, 2,2',3,3'-벤조페논테트라카르복실릭 이무수물, 2,3,3',4'-벤조페논테트라카르복실릭 이무수물, 비스(3,4-디카르복시페닐) 에테르 이무수물, 비스(3,4-디카르복시페닐)술폰 이무수물, 1,4,5,8-나프탈렌테트라카르복실릭 이무수물, 1,2,5,6-나프탈렌 테트라카르복실릭 이무수물, 2,3,6,7-나프탈렌테트라카르복실릭 이무수물, 2,2-비스(3,4-디카르복시페닐)-헥사플루오로프로판 이무수물, 시클로부탄테트라카르복실릭 이무수물, 메틸시클로부탄테트라카르복실릭 이무수물, 및 1,2,3,4-테트라카르복시부탄 이무수물로 이루어지는 군으로부터 선택되는 테트라카르복실산 무수물과 아미노 기의 반응에 의하여 생성되는 기이고,
식 중 R1과 R2는 같거나 다를 수 있으며, 각각 독립적으로 -OH 기 및 n이 1 내지 10의 정수인 -NH2(CH2)nNH2 기로부터 선택되고, R3은 탄소수 1 내지 10의 알킬기이고, l은 1 내지 30,000의 정수이다.
본 발명에 있어서, 제1 pH에서, 시료를 아미노기와 카르복실기를 포함하고 상기 제1 pH에서 양전하를 띠는 이관능기 물질과 접촉시켜 핵산을 상기 물질에 결합시키는 단계를 포함한다. 상기 시료는 핵산을 포함하는 것으로서 예를 들면, 혈액 및 세포를 포함하는 용액과 같은 생물학적 시료 또는 PCR 산물을 포함하는 용액과 같은 화학적 핵산 용액이 포함된다.
본 발명에 있어서, 시료 중의 핵산이 결합되는 물질은 아미노기와 카르복실기를 포함하는 물질로서 제1 pH에서 양전하를 띠는 이관능기 물질이다. 이런한 물질은 화합물 자체 또는 그러한 관능기가 고체 기판 상에 고정화되어 있는 고체 물 질일 수 있다. 고체 기판은 실리콘, 유리, 및 플라스틱 물질로부터 선택되는 것일 수 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 물질은 하기 화학식 3 또는 4로 표시되는 것이다.
식 중 n은 1 내지 10의 정수이고,
식 중 R1과 R2는 같거나 다를 수 있으며, 각각 독립적으로 -OH 기 및 n이 1 내지 10의 정수인 -NH(CH2)nNH2 기로부터 선택되고, m은1 내지 10의 정수이고, l은 1 내지 내지 30,000의 정수이다.
화학식 1과 2의 화합물은 각각 아미노기와 카르복실기를 갖는 화합물이다. 화학식 1의 화합물은 제1 pH에서 양전하와 음전하가 약 2:1의 비율로 포함되어 있어 +1 양전하를 갖는 것이 바람직하다. 더욱 바람직하게는 상기 화학식 2의 화합물은 -OH 기 또는 n이 1 내지 10의 정수인 -NH(CH2)nNH2 기가 약 2:1의 비율로 포함되 어 있는 화학식 4의 화합물이다. 화학식 4의 화합물의 일 예는, -NH(CH2)nNH2가 에틸렌디아민 기인 화합물이다.
본 발명에 있어서, 화학식 1의 화합물은 1,2,4,5-벤젠 테트라카르복실산 무수물과 같은 테트라카르복실산 무수물과 에틸렌디아민을 포함한 n이 1 내지 10의 정수인 NH2(CH2)nNH2를 화학 반응시킴으로써 얻어질 수 있다. 또한, 화학식 2의 화합물은 하기 화학식 5의 화합물을 n이 1 내지 10의 정수인 NH2(CH2)nNH2
과 화학 반응시킴으로써 얻어질 수 있다. 그 결과 얻어지는 화학식 2의 화합물 중 -OH 기와 -NH(CH2)nNH2 기의 비율은 반응물 중의 NH2(CH2)nNH2
의 농도를 조절함으로써 조정할 수 있다.
식 중 R3은 탄소수 1 내지 10의 알킬기이고, l은 1 내지 30,000의 정수이다. 상기 화학식 5의 바람직한 일 예는 하기 화학식 6의 화합물이다.
식 중 m은 1 내지 10의 정수이고, l은 1 내지 30,000의 정수이다.
화학식 5의 화합물은 폴리무수물 중합체이다. 상기 중합체는 원심분리와 같 은 분리 과정에 의하여 용액으로부터 용이하게 분리될 수 있다. 따라서, 핵산을 상기 중합체로부터 얻어지는 화학식 2의 중합체에 결합시키고 얻어지는 핵산-중합체를 용액으로부터 분리하고, 분리된 핵산-중합체를 제2 pH에서 용출함으로써 핵산을 용이하게 상기 중합체로부터 분리할 수 있다.
본 발명의 또다른 구체예에서, 상기 물질은 고체 기판 상에 하기 화학식 7 또는 8로 표시되는 기가 고정화되어 있는 고상 물질이다.
식 중 n은 1 내지 10의 정수이고, [ ] 부분의 기는 피로멜릭틱(pyromellitic) 이무수물, 3,3',4,4'-비페닐테트라카르복실릭 이무수물, 2,2',3,3'-비페닐테트라카르복실릭 이무수물, 2,3,3',4'-비페닐테트라카르복실릭 이무수물, 1,2,4,5-벤젠테트라카르복실릭 이무수물, 3,3',4,4'-벤조페논테트라카르복실릭 이무수물, 2,2',3,3'-벤조페논테트라카르복실릭 이무수물, 2,3,3',4'-벤조페논테트라카르복실릭 이무수물, 비스(3,4-디카르복시페닐) 에테르 이무수물, 비스(3,4-디카르복시페닐)술폰 이무수물, 1,4,5,8-나프탈렌테트라카르복실릭 이무수물, 1,2,5,6-나프탈렌테트라카르복실릭 이무수물, 2,3,6,7-나프탈렌테트라카르복실릭 이무수물, 2,2-비스(3,4-디카르복시페닐)-헥사플루오로프로판 이무수물, 시클로부 탄테트라카르복실릭 이무수물, 메틸시클로부탄테트라카르복실릭 이무수물, 및 1,2,3,4-테트라카르복시부탄 이무수물로 이루어지는 군으로부터 선택되는 테트라카르복실산 무수물과 NH2(CH2)nNH2 중의 아미노 기의 반응에 의하여 생성되는 기이고,
식 중 R1과 R2는 같거나 다를 수 있으며, 각각 독립적으로 -OH 기 및 n이 1 내지 10의 정수인 -NH(CH2)nNH2 기로부터 선택되고, R3은 탄소 1 내지 10의 알킬기이고, l은 1 내지 30,000의 정수이다.
상기 식 7 및 8의 일 예는 각각 하기 식 9 및 10의 화합물일 수 있다:
식 중 n은 1 내지 10의 정수이고,
식 중 R1과 R2는 같거나 다를 수 있으며, 각각 독립적으로 -OH 기 및 n이 1 내지 10의 정수인 -NH(CH2)nNH2 기로부터 선택되고, m은 1 내지 10의 정수이고, l은 1 내지 30,000의 정수이다.
화학식 10의 기는 제1 pH에서 양전하와 음전하가 약 2:1로 비율로 포함되어 있는 것일 수 있다. 더욱 바람직하게는 상기 화학식 10의 기는 -OH 기와 n이 1 내지 10의 정수인 -NH(CH2)nNH2 기가 약 2:1의 비율로 포함되어 있는 것이다. 화학식 10의 기의 일 예는, -NH(CH2)nNH2가 에틸렌디아민인 것이다.
본 발명의 상기 구체예에서, 상기 고체 기판은 실리콘, 유리, 및 플라스틱 물질로부터 선택되는 것일 수 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다. 또한, 상기 고체 기판은 화학식 9 또는 10으로 표시되는 기를 고정화하기 위하여 활성화되어 있는 것일 수 있다. 예를 들면, 아미노기와 같은 활성기가 코팅되어 있는 기판일 수 있다.
본 발명에 있어서, 고체 기판 상에 화학식 9 또는 10의 가 고정화되는 고상 물질은 당업계에 알려진 임의의 고정화 방법에 의하여 제조될 수 있다. 예를 들면, NH2(CH2)nNH2와 같은 아미노기로 코팅되어 있는 고체 기판 (예를 들면, 실리콘, 유리 또는 플라스틱 물질)에 1,2,4,5-벤젠 테트라카르복실산 무수물을 화학 반응시켜 기판 상에 고정화한 다음, n이1 내지 10의 정수인 NH2(CH2)nNH2인 화합물 (예, 에틸렌디아민)을 화학 반응시킴으로써 제조될 수 있다. 또한, 화학식 10의 관능기가 고정화되어 있는 고체 물질은 예를 들면, 식 5의 폴리무수물을 아미노기가 코팅되어 있는 기판 상에 화학 반응시킴으로써 고정화한 한 다음, n이 1 내지 10의 정수인 NH2(CH2)nNH2인 화합물 (예, 에틸렌디아민)을 화학 반응시킴으로써 제조될 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 제1 pH는 화학식 1 내지 2의 화합물 또는 화학식 3 내지 4의 기 내의 카르복실기의 pKa 값보다 낮은 pH가 바람직하다. 구체적으로 상기 제1 pH는 2 내지 3.5일 수 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 방법은 얻어진 물질-핵산로부터 상기 제1 pH보다 높은 제2 pH에서 핵산을 분리하는 단계를 포함한다. 핵산을 분리시키는 단계는 상기 핵산-이관능기 물질의 복합체를 혼합물로부터 분리하고 상기 제1 pH보다 높은 제2 pH를 갖는 용액 중에서 용출하는 단계를 포함한다.
제2 pH는 상기 제1 pH보다 높은 것이면 어느 것이 가능하나, 바람직하게는 pH 5 내지 10이다. 상기 핵산-물질 복합체를 용출하는데 사용되는 용액은 물 및 버퍼 등일 수 있다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1
본 실시예에서는 n이 2인 화학식 3의 기가 고정화되어 있는 기판을 제조하고, pH에 따른 DNA의 결합양을 측정하였다.
먼저, 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사)를 N-메틸-2-피 롤리돈 (NMP) 중의 100 mM 1,2,4,5-벤젠 테트라카르복실산 무수물에 1 시간 동안 침지한 다음, 아세톤으로 세척하고, 진공하에서 건조하였다. 얻어진 1,2,4,5-벤젠 테트라카르복실산 무수물이 공유결합된 유리 기판을 N-메틸-2-피롤리돈 (NMP) 중의 100 mM 에틸렌디아민 중에 1 시간 동안 침지한 다음, 에탄올로 세척하였다.
얻어진 n이 2인 화학식 3의 기가 코팅된 유리 기판 상에 여러 pH (각각, 3, 7 및 10)에서, 5′말단이 Cy3로 표지된 서열번호 1의 DNA와 반응시켰다. 반응은 상기 DNA 1μM 을 포함하는 용액을 기판 상에 첨가하고 두껑을 덮고 실온에서 30 분 동안 방치함으로써 수행되었다. 이때 사용되는 버퍼 용액은 pH 3, 7 및 10에 대하여 각각 0.15 M 소듐 아세테이트, Tris 버퍼, 및 소듐 카르보네이트 버퍼였다. 결과는 pH 3, 7 및 10에 대하여 각각 0.15 M 소듐 아세테이트, Tris 버퍼, 및 소듐 카르보네이트 버퍼로 세척한 다음, 532nm (PMT 300)에서 Axon scanner (GenePix 사, 미국)를 사용하여 측정하였다. 도 1은 각각 pH 3, 7 및 10에서 결합된 DNA의 양을 관찰한 결과를 나타내는 도면이다. 대조군은 n이 2인 화학식 3의 관능기가 코팅되지 않은 상태의 유리 기판 즉, 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사) 기판을 사용하였다.
도 1에 나타낸 바와 같이, pH 3에서는 DNA가 많이 기판 상에 결합하나, pH 7 및 10에서는 그 결합량이 현저하게 줄어드는 것을 알 수 있다. 이는 용액의 pH가 증가함에 따라 표면의 전하가 +에서 -로 변환되었다는 것을 나타내는 것이다. 도 1에서 관찰된 형광강도를 하기 표 1에 나타내었다.
표 1.
pH |
3 |
5 |
10 |
기판 |
본 발명의 기판 |
4159 |
32 |
32 |
대조군 |
6927 |
1648 |
358 |
실시예 2
본 실시예에서는 실시예 1에서 제조된 n이 2인 화학식 3의 기가 고정화되어 있는 기판에 DNA를 pH 3에서 결합시킨 다음, 각각 pH 3, 5 및 7에서 상기 핵산-기판 복합체로부터 방출되는 DNA의 양을 측정하였다.
얻어진 n이 2인 화학식 3의 기가 코팅된 유리 기판 상에 여러 pH (3,5,7)에서, 5′말단이 Cy3로 표지된 서열번호 1의 DNA와 반응시켰다. 반응은 상기 DNA 1 μM을 포함하는 용액을 기판 상에 첨가하고 두껑을 덮고 실온에서 30 분 동안 방치함으로써 수행되었다. 이때 버퍼 용액은 0.15 M 소듐 아세테이트를 사용하였고, 반응 후 0.15 M 소듐 아세테이트로 세척한 다음, 532nm (PMT 380)에서 Axon scanner (GenePix 사, 미국)를 사용하여 측정하였다. 도 2는 pH 변화에 따라 방출되는 DNA의 양을 관찰한 결과를 나타내는 도면이다. 대조군은 n이 2인 화학식 3의 기가 코팅되지 않은 상태의 유리 기판 즉, 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사) 기판을 사용하였다.
도 2에 나타낸 바와 같이, 세척 용액을 pH 3에서 순차적으로 pH를 상승시켰을 경우 본 발명의 경우 pH 7에서 80 %의 DNA가 회수된 반면 대조군은 65 % 만이 회수됨을 알 수 있었다. 따라서, 본 발명의 기판의 DNA 방출 효과 즉, 회수 효과가 현저하여 DNA 분리 효율이 현저하게 높다는 것을 알 수 있다. 도 2에서 관찰된 형광강도를 하기 표 2에 나타내었다.
표 2.
pH |
3 |
5 |
7 |
기판 |
본 발명의 기판 |
15147 |
3588 |
2991 |
대조군 |
37041 |
16458 |
12602 |
실시예 3 : 화학식 4의 기가 고정화된 기판을 이용한 핵산의 회수
본 실시예에서는 하기 화학식 4의 기가 고정화된 기판을 제조하고, 제1 pH에서 DNA를 결합시킨 다음, 제2 pH에서 상기 DNA-기판 복합체로부터 핵산을 회수하였다.
본 실시예에서 사용된 하기 화학식 4의 기는
식 중 R1과 R2는 같거나 다를 수 있으며, 각각 독립적으로 -OH 기 및 n이 2인 -NH(CH2)nNH2 기로부터 선택되고, m은 2이고, l은 1 내지 30,000이고, R1
과 R2의 아미노기와 카르복실기의 비율은 NH2(CH2)2NH2가 도입되는 반응 조건에 의하여 조절되었다.
기판 상에 상기 화학식 4의 관능기의 고정화는 다음과 같이 수행되었다. 먼저, 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사) 기판을 N-메틸-2-피롤리돈 (NMP) 중의 200 mM (반복 단위 기준) 폴리무수물 (Poly(ethylene-alt-maleic anhydride)) (분자량 Mw 100,000-500,0000)에 실온에서 1 시간 동안 침지한 다음, 아세톤으로 세척하고, 진공하에서 건조하였다. 얻어진 상기 폴리무수물이 결합된 유리 기판을 N-메틸-2-피롤리돈 (NMP) 중의 농도를 달리하는 에틸렌디아민 중에 실온에서 1 시간 동안 침지한 다음, 에탄올로 세척하고 건조하였다. 상기 에틸렌디아민의 농도는 각각 500 mM (실험군 1), 450 mM 및 물 50 mM (에틸렌디아민/H2O 몰비=9:1) (실험군 2), 400 mM 및 물 100 mM (에틸렌디아민/H2O 몰비=8:2) (실험군 3), 350 mM 및 물 150 mM (에틸렌디아민/H2O 몰비=6:4) (실험군 4), 150 mM 및 물 350 mM (에틸렌디아민/H2O 몰비=4:6) (실험군 5)이었다.
얻어진 m이 2이고, R1과 R2의 -OH과 에틸렌디아민 기가 여러 비율로 도입된 화학식 4의 기가 코팅된 2 장의 유리 기판 상에 pH 3에서, 5′말단이 Cy3로 표지된 서열번호 1의 DNA와 반응시켰다. 반응은 상기 DNA 1 μM을 포함하는 0.15 M 소듐 아세테이트 용액을 기판 상에 첨가하고 두껑을 덮고 실온에서 5 분 동안 방치함으로써 수행되었다. 반응 후 0.15 M 소듐 아세테이트로 각각 pH 3 및 pH 7에서 세척한 다음, 532nm (PMT 350)에서 Axon scanner (GenePix 사, 미국)를 사용하여 형광강도를 측정하였다. 형광강도 측정결과를 하기 표 3에 나타내었다. 대조군은 화학식 4의 관능기가 코팅되지 않은 상태의 유리 기판 즉, 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사) 기판을 사용하였다.
표 3.
기판 |
형광강도 |
회수율 (%) |
pH 3 |
pH 7 |
대조군 |
28871 |
7899 |
72 |
실험군 1 |
42694 |
12369 |
71 |
실험군 2 |
42453 |
10028 |
76 |
실험군 3 |
43620 |
10762 |
75 |
실험군 4 |
43123 |
11143 |
74 |
실험군 5 |
43398 |
6357 |
85 |
표 3에 나타낸 바와 같이, DNA의 회수율은 실험군 5 즉, 에틸렌디아민/H2O의 몰비율이 4:6인 경우가 가장 높았다.
실시예 4 :
화학식 4의 기가 고정화된 기판을 이용한 핵산의 회수
본 실시예에서는 실시예 3에서 실험군 5 즉, 에틸렌디아민/H2O의 몰비율이 4:6로 하여 반응시켜 얻어지는 화학식 3의 관능기가 코팅된 기판을 이용하여 여러 반응 시간 동안 반응시킨 후 핵산을 분리하였다.
실험군 5의 유리 기판 상에 pH 3에서, 5′말단이 Cy3로 표지된 서열번호 1의 DNA와 반응시간을 달리하여 반응시켰다. 반응은 상기 DNA 1 μM을 포함하는 0.15 M 소듐 아세테이트 용액을 기판 상에 첨가하고 두껑을 덮고 실온에서 각각 1, 5, 10, 및 30 분 동안 방치함으로써 수행되었다. 반응 후 0.15 M 소듐 아세테이트로 각각 pH 3 및 pH 7에서 세척한 다음, 532nm (PMT 350)에서 Axon scanner (GenePix 사, 미국)를 사용하여 형광강도를 측정하였다. 형광강도 측정결과를 하기 표 4에 나타내었다. 대조군1은 화학식 4의 관능기가 코팅되지 않은 상태의 유리 기판 즉, 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사) 기판을 동일한 방법으로 사용하였다. 대조군2는 상기 DNA 1 μM을 포함하는 Qiagen (QIAquick PCR Purification Kit, Qiagen 사) 결합 버퍼를 피라냐 (H2O2:H2SO4=1:3) 용액 중의 아미노기로 코팅된 유리 (Corning GAPS glass, 코닝사) 기판에 첨가하고 두껑을 덮고 실온에서 30 분 동안 방치함으로써 반응시켰다. 반응 후 Qiagen 세척 버퍼로 pH 3 및 7에서 각각 세척한 다음, 532nm (PMT 350)에서 Axon scanner (GenePix 사, 미국)를 사용하여 형광강도를 측정하였다.
표 4.
기판 |
반응시간 (분) |
형광 강도 |
회수율(%) |
pH 3 |
pH 7 |
실험군 5 |
1 |
39305 |
1844 |
95 |
5 |
38684 |
5398 |
86 |
10 |
36810 |
5111 |
87 |
30 |
44083 |
5495 |
87 |
대조군1 |
1 |
26372 |
7332 |
67 |
5 |
23307 |
8611 |
63 |
10 |
24798 |
8273 |
67 |
30 |
26886 |
12300 |
54 |
대조군2 |
30 |
27189 |
7083 |
74 |
표 4에 나타낸 바와 같이, 실험군 5의 기판을 이용하는 경우 DNA 95%가 반응 1 분 이내에 회수될 수 있었다. 이는 대조군 1 및 2에 비하여 현저하게 우수한 회수율을 나타내는 장점이 있는 것이다.
실시예 5 : EtBr 염색을 통한 결합된 핵산의 확인
본 실시예에서는 실시예 3에서 실험군 5 즉, 에틸렌디아민/H2O의 몰비율이 4:6로 하여 반응시켜 얻어지는 화학식 4의 기가 코팅된 기판에 박테리아 게놈 DNA를 반응시킨 후 결합되어 있는 핵산을 EtBr 염색을 통하여 확인하였다.
실험군 5의 유리 기판 상에 각각 pH 3 및 7에서, 5′말단이 Cy3로 표지된 박테리아 게놈 DNA (E.coli, Qiagen DNA Miniprep kit 를 사용하여 추출)을 20 분 동안 반응시켰다. 반응은 상기 DNA 10ng/㎕를 포함하는 0.15 M 소듐 아세테이트 용액 을 기판 상에 첨가하고 두껑을 덮고 실온에서 20 분 동안 방치함으로써 수행되었다. 반응 후 각각 pH3과 7의 0.15 M 소듐 아세테이트로 세척한 다음, EtBr을 포함하는 용액 중에 첨가하여 핵산을 EtBr로 염색하고 오토라디오그래피를 이용하여 확인하였다. 동일한 기가 포함되고, DNA 처리를 하지 않은 시료를 대조군으로 사용하였다. 도 3은 pH 3과 pH 7에서 박테리아 게놈과 반응된 기판을 EtBr로 염색한 결과를 나타내는 도면이다. 도 3에 나타낸 바와 같이, 길이가 긴 DNA를 정제하는 것이 가능함을 알 수 있었다.