KR20000022630A - 테트라졸륨 화합물에 기초한 진단법 - Google Patents

테트라졸륨 화합물에 기초한 진단법 Download PDF

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Abstract

본 시약은 전혈(whole blood)같은 헤모글로빈을 함유하는 생체액 내의 피분석물의 농도를 측정하기에 적합하다. 본 시약은 피분석물에 대해 특이성을 갖는 탈수소효소, NAD, NAD 유도체, 피롤로-퀴놀린 퀴논 (PQQ) 또는 PQQ 유도체, 테트라졸륨 염료 전구체, 디아포라제 효소 또는 이의 유사물질, 및 아질산염을 포함한다. 본 시약은 피분석물 농도의 척도인 염료 형성을 초래한다. 아질산염은 헤모글로빈에 의해 비효소적으로 초래되는 방해성 염료 형성을 억제한다. 바람직하게는, 본 시약은 베타-히드록시부티레이트 같은 케톤체 측정용 건조 스트립에 사용된다.

Description

테트라졸륨 화합물에 기초한 진단법{Diagnostics based on tetrazolium compounds}
본 발명은 헤모글로빈을 함유하는 생체액내의 피분석물 농도의 측정이 가능하도록하는 진단 조성물에 관한 것이다. 본 조성물은 테트라졸륨 염료 전구체에 기초하고 있으며 헤모글로빈에 의해 유도된 테트라졸륨 염료 전구체의 환원을 억제하는 것을 포함한다.
지방 조직은 신체에서 가장 많은 에너지 저장 형태중의 하나이다. 지방 조직은 저장된 지방산을 순환계 내로 방출하여 우선 간에 의해 대사되도록 한다. 그과정에서, 지방은 소비되어 에너지가 방출되고 신체가 이용할수 있게 된다. 보통, 지방은 거의 소비되지 않고, 지방산은 이산화탄소와 물로 완전히 대사되며, 이런 전환은 신체의 정교한 pH 균형을 교란시키지 않는다. 그러나, 예를들어, 식이요법으로 인해 신체에 불충분한 양의 탄수화물이 존재하는 경우에는, 지방 소비 및 지방산 생성이 증가하여 유해한 수준에 이를수 있다. 식이요법자 이외에, 인슐린-의존 환자 는 손상된 탄수화물 대사 때문에 해를 입기 쉽다. 과도한 지방산이 신체의 에너지 수요량을 공급하기 위해 사용되면, 많은 양의 아세토아세테이트, 아세톤 및 베타-히드록시부티레이트가 생성된다. 이런 중간생성물은 케톤체(ketone body)라 불리며, 이런 환경은 케토아시도시스(ketoacidosis)로서 공지되어 있다.
케톤체는 지나치지 않은 경우에는, 보통 신체에 의해 다른 형태로 재순환 될 수 있다. 그러므로, 건강한 사람은 무시할수 있는 양의 이런 피분석물을 축적한다. 많은 양의 지방이 비교적 짧은 기간 내에 대사되고 있거나, 대부분의 에너지가 지방으로부터 유래되는 경우에는, 많은 양의 케톤체가 생성된다. 이런 지방 대사산물의 과도한 생성은 문제가 재빨리 교정되지 않으면, 어떤 신경계 질환을 일으킬 수 있다.
케톤체는 혈액 내에 존재하며, 역치 이상이 되면, 소변을 통해 배출된다. 이들은 현대의 임상 분석기에 의해 쉽게 탐지된다. 평균적으로, 베타-히드록시부티레이트, 아세토아세테이트 및 아세톤의 백분율은 각각 78%, 20% 및 2% 이다. 아세톤은 비교적 낮은 농도 및 높은 휘발성때문에 거의 측정되지 않는다. 대신에, 아세토아세테이트는 나이트로프루사이드 반응에 의해 정량적으로 측정되고 베타-히드록시부티레이트는 효소적 방법으로 정량된다. 아세토아세테이트 시험 스트립은 수십년간 이용되어 왔다. 이는 알데히드 및 케톤과의 나이트로프루사이드 이온 커플링 반응에 기초하고 있다. 알칼리성 소변 샘플 또는 혈청 시료를 나이트로푸루사이드와 수분 동안 반응시키면, 자줏빛이 나타난다. 색의 강도는 아세토아세테이트 농도를 나타낸다. 그러나, 아세톤은 시험에 간섭하여 더 높은 리딩을 초래한다. 더욱이, 환자가 케토아시도시스 에피소드로부터 회복할때, 소변 및 혈액 내의 아세토아세테이트 수준이 증가하여 진단을 어렵게 만든다.
베타-히드록시부티레이트 시험은 케톤체 농도를 모니터하는데 좀더 유용하다. 이는 베타-히드록시부티레이트를 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드 (NAD) 보조인자의 존재하에 상응하는 탈수소효소로 산화시키는 것에 기초한다. (엄격히 말해서, D-베타-히드록시부티레이트만이 자연적으로 존재하고 산화되나, 본 명세서 및 첨부된 특허청구범위에서는 간략화하기 위해 "D"를 생략한다.) 산화하자마자, NADH가 생성되고, 이의 농도는 UV 분광계로 직접 측정할 수 있다. 그러므로, 스펙트럼의 상응하는 시그날 변화는 피분석물의 농도에 비례한다. 불행히도, NADH의 여기(excitation)가 UV 부위에서 일어난다; 따라서, 이런 방식의 탐지는 실험 도구를 위해서만 적합하다. 베타-히드록시부티레이트를 모니터하기 위한 또다른 방법은 NADH를 테트라졸륨 화합물로 산화시키는 것에 의한다.
테트라졸륨 화합물은 일반적으로 강염기 및 빛에 매우 민감하다. 따라서, 이 화합물의 완전성을 보장하기 위해서는 특별한 주의를 기울여야한다. 그럼에도불구하고, 테트라졸륨은 조직 대사 연구에서 중요한 역할을 해왔다. 예를들어, 이런류의 화합물은 세포내의 혐기성 산화 및 환원 반응을 탐지하는데 사용되어 왔다. 더욱이, 이들은 임상 진단법에서 흔히 사용된다. 상기 화합물은 전형적으로 환원제의 존재하에서 환원 반응을 일으켜서 진한 색깔의 포르마잔을 생성하는 흐린 색깔 또는 무색의 화합물이다. 아스코르빈산염, 설프하이드릴 또는 NADH, NADPH 및 PQQH2(환원된 PQQ - 피롤로 - 퀴놀린 퀴논)의 변이물 같은 환원제는 염료를 형성할수 있다.
임상 진단법에서, 이런 염료들은 혐기성 반응하에서, 이들의 모화합물인 NAD(P)+로부터 NAD(P)H가 형성되는 것을 모니터하기에 매우 귀중하다는 것이 밝혀졌다 (참조 예: 1994년 11월 1일에 발행된 미국 특허 제 5,360,595호, D. Bell et al.). 산화환원 반응은 빠르고 산소에 민감하지 않다. 생성된 염료 색깔은 매우 강하고 물에 잘 녹지 않는다.
원칙적으로, 테트라졸륨 염료 전구체는 전혈(whole blood)에서 케톤체 및 글루코스를 측정하기 위하여 사용될수 있다. 그러나, 혈액의 적혈구 내에 헤모글로빈이 포함되지 않으면, 테트라졸륨은 헤모글로빈(Fe(Ⅱ))에의해 비효소적으로 환원되어 유색의 포르마잔을 형성할수 있다. 따라서, 유리 헤모글로빈은 측정에 심각한 간섭을 초래한다. 사실상, 전형적인 케톤체 측정에서, 용혈 및 관심의 대상인 피분석물에 비해 유리 헤모글로빈이 많이 생성됨으로 인해 헤모글로빈으로부터의 간섭 시그날이 목적 시그날을 능가할 수 있다. 특히 정상 농도 이상에서, 글루코스 측정은 역으로 영향을 받지는 않는다. 높은 적혈구용적 샘플에서 또는 헤모글로빈 산화 반응이 더빨리 일어나는 고온에서 반응이 수행되는 경우에는 글루코스 측정에 대한 간섭도 또한 심각하다. 유리 헤모글로빈을 존재하게 하는 적혈구의 용혈은 쉽게 회피될 수 없으므로, 테트라졸륨을 분석용으로 사용하고자 한다면, 시험 전에 샘플로 부터 적혈구를 제거해야만 한다.
적혈구는 멤브레인 및 여과지로 여과하거나, 화학 약품으로 추출하거나 또는 두 방법의 결합에 의해 샘플로부터 제거될 수 있다. 전혈로부터 적혈구를 분리하기 위한 여과법은 비용이 많이 들고 좀 많은 샘플 양을 필요로 한다. 전혈 샘플로부터 적혈구를 제거하기 위하여 여과를 이용하는 혈액 케톤(베타-히드록시부티레이트) 시험의 예는 인디애나주 엘하르트의 GDS 다이아그노스틱스사로부터 구할수 있는 케토사이트R시험이다 (참조; Tietz Textbook of Clinical Chemistry, 2nd Ed., ed. by C. Burtis et al., W.B. Saunders Co., Philadelphia, PA, 1994, p.974). 이 시험에서 사용되는 "시험 카드"는 두개의 여과층을 가지는데, 이는 카드를 좀 비싸게 만들고 많은 (25㎕) 혈액 샘플을 필요로하게 한다. 더욱이, 혈액은 용혈되지 않아야 된다.
여과 및 화학약품 추출의 결합은 마일즈(Miles)로부터 구할수 있는 에임즈R글루코미터 앙코르™ (AmesRGlucometer Encore™) 혈액 글루코스 스트립에서 이용된다. 이 스트립은 적혈구의 간섭을 제거하기 위하여 여과 물질층 및 응집반응 보조물질(감자 렉틴)을 이용한다 (참조; Chu et al., European Pat. Appl. 0 638 805 A2, publ. Feb. 15, 1995).
헤모글로빈을 메트헤모글로빈으로 산화시키기 위하여 계 내로 산화제를 도입하는 것은 헤모글로빈의 간섭을 줄이는 또다른 방법이다. 페리시안화물이 헤모글로빈을 메트헤모글로빈으로 전환시키는 것으로 공지되어 있으나, 이는 또한 목적 생성물인 NADH를 파괴한다.
본 발명은 헤모글로빈을 함유하는 생체액내의 피분석물의 농도 측정용 시약을 제공한다. 이 시약은 다음을 포함한다:
a) 피분석물에 대해 특이성을 갖는 탈수소효소,
b) 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드 (NAD), NAD 유도체, 피롤로-퀴놀린 퀴논 (PQQ) 또는 PQQ 유도체,
c) 테트라졸륨 염료 전구체,
d) 디아포라제 효소 또는 이의 유사물질, 및
e) 아질산염.
본 시약은 특히 피분석물 측정용 건조 시약 스트립을 형성하기 위해 하나 이상의 기질 위에 피복하기에 적합하다. 특히 바람직한 스트립은 다음을 포함한다:
a) 지지층,
b) 지지층 위에,
ⅰ) 피분석물에 대해 특이성을 갖는 탈수소효소,
ⅱ) 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드(NAD), NAD 유도체, 피롤로-퀴놀린 퀴논 (PQQ) 또는 PQQ 유도체,
ⅲ) 테트라졸륨 염료 전구체 및
ⅳ) 디아포라제 효소 또는 이의 유사물질을 포함하는 피복물을 가지는 시험 패드, 및
c)시험 패드 위에, 아질산염으로 피복된 흡수성 상층.
본 발명은 피분석물 농도의 척도인 NADH, NAD(P)H 또는 PQQH2같은 보조인자의 환원 형태를 일정 농도로 생성시켜, 헤모글로빈을 함유하는 생체액(예: 전혈)내의 피분석물 농도 측정용 시약을 제공하는 것이다. 시약에 아질산염을 포함시키는 것은 환원된 보조인자 농도 측정에 헤모글로빈이 간섭하는 것을 극복하게 한다. 이는 비제한적으로 케톤체 및 글루코스의 측정에 특히 유용하다.
도 1은 본 발명의 시험 스트립의 투시도이다.
도 2는 본 발명의 또다른 시험 스트립의 조립도이다.
도 3은 본 발명의 또다른 시험 스트립의 조립도이다.
도 4는 본 발명의 케톤 분석 화학을 나타낸 그림이다.
도 5는 본 발명의 글루코스 분석 화학을 나타낸 그림이다.
도 6은 케톤 분석에 대한 헤모글로빈 억제제로서의 아질산염의 영향을 나타낸 그래프이다.
도 7은 글루코스 분석에 대한 헤모글로빈 억제제로서의 아질산염의 영향을 나타낸 그래프이다.
도 1은 지지체 14 위에 부착된 시험 패드 12로 이루어진 본 발명의 전형적인 시험 스트립 10을 나타낸다. 지지체는 - 예를들어, 폴리스티렌, 나일론 또는 폴리에스테르 같은 - 합성수지, 금속성 시트 또는 당업계에 공지된 어떤 다른 적당한 재료일수 있다. 시험 패드는 피분석물과 반응하여 색깔 변화를 일으키는 시약으로 피복된다. 시험 패드는 바람직하게는 여과지 또는 폴리머 멤브레인 같은 흡수성 재료를 포함한다. 그러나, 반응은 산소를 필요로하지 않으므로, 시험 패드는 합성수지 필름 같은 비흡수성 재료일 수 있다. 시약은 피분석물에 특이한 효소, 수소화물 전달제, 테트라졸륨 염료 전구체, 적당한 효소 보조인자 및 헤모글로빈 억제제를 포함한다. 임의적으로, 완충제 및 안정제가 더 큰 안정성을 위하여 포함된다.
도 2에서 보듯이, 시험 스트립은 또한 시험 패드 12 위에 상층 16을 가진 다층 구조일 수 있다. 이 구조에서, 시약은 두 층 사이로 나뉠 수 있다. 예를들어, 헤모글로빈 억제제는 임의적인 상층 16 위에 피복될수 있고 시약의 나머지는 시험패드 12위에 피복될 수 있다. 바람직하게는, 상층 16은 흡수성이고 전개층(spreading layer) 및 과잉 샘플을 흡수하는 흡수층으로서 작용한다. 샘플은 상층 16에 놓여져서 시험 패드 12를 통과한다. 피분석물 농도는 지지층 14를 통한 색깔 변화를 측정하거나, 또는 층 14의 인접한 반응 부위가 투명하지 않은 경우에 임의적인 윈도우나 통과 홀(through-hole) 18을 통한 색깔 변화를 측정함으로써 결정된다.
도 3에 나타낸 또다른 양태에서, 스페이서 20은 상층 16과 시험 패드 12를 분리한다. 스페이서 20은 바람직하게는 두 면 위에 접착 피복물을 갖는 (나타나 있지 않음) 비흡수성 합성수지 필름이다. 스페이서 20 내의 홈 22는 샘플이 입구 24로부터 측정 부위 26으로 흘러가는 모세관 통로를 제공한다. 흐름은 시험 패드 12의 표면과 인접층 또는 달리, 임의적인 구멍 18 사이의 공기 배출에 의존한다. 측정 부위 26에서의 색깔 변화는 임의적인 구멍/윈도우 18을 통해 모니터한다. 시약은 모두 시험 패드 12 위에 있거나, 달리 시험 패드와 비흡수층 14 및 16 중의 하나 또는 모두의 사이에서 나뉠수 있다. 따라서, 시약의 첫 부분은 시험 패드 위에 있고 시약의 두번째 부분은 비흡수층 중의 하나 또는 모두 위에 있을수 있다. 본 출원인이 시약을 "피복물" 또는 층 "위에"라고 말할때, 본 출원인은 시약이 층 내로 흡수될 가능성을 포함하고자 하는데, 특히 층이 흡수성인 경우에 그러하다.
본 발명으로 분석하기에 적합한 효소 및 상응하는 피분석물은 다음과 같다: 알코올용 알코올 탈수소효소, 포름알데히드용 포름알데히드 탈수소효소, 글루코스용 글루코스 탈수소효소, 글루코스-6-포스페이트용 글루코스-6-포스페이트 탈수소효소, 글루탐산용 글루타메이트 탈수소효소, 글리세롤용 글리세롤 탈수소효소, 베타-히드록시부티레이트용 베타-히드록시부티레이트 탈수소효소, 스테로이드용 히드록시스테로이드 탈수소효소, L-락테이트용 L-락테이트 탈수소효소, 루신용 루신 탈수소효소, 말산용 말레이트탈수소효소 및 피루브산용 피루베이트 탈수소효소.
적합한 효소 보조인자는 효소를 활성화하기 위하여 필요하다. 효소에 따라, 다음의 보조인자가 사용될 수 있다: 베타-니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드(베타-NAD), 베타-니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드 포스페이트(베타-NADP), 티오니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드, 티오니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드 포스페이트, 니코틴아미드 1,N6-에테노아데닌 디뉴클레오티드, 니코틴아미드 1,N6-에테노아데닌 디뉴클레오티드 포스페이트 및 피롤로-퀴놀린 퀴논 (PQQ). 효소의 존재하에, 피분석물은 보조인자를 환원시킨다.
염료-형성 과정에서 다음 단계는 환원된 보조인자로부터의 수소화물 추출이다. 이는 리포익 디하이드로지네이즈, 페레독신-NADP 환원효소, 리포아미드 탈수소효소 같은 디아포라제, 또는 페나진 메토설페이트 (PMS) 또는 멜돌라 블루 같은 유사물질에 의해 성취될 수 있다. 반응속도 및 안정성은 수소화물 전달제(transfer agent) 또는 "추출제(abstractor)"를 선택하기 위한 첫번째 요소이다. 예를들어, PMS는 보편적인 수소화물 추출제인데, 이는 PMS가 아래에 열거된 대부분의 테트라졸륨 화합물과 비교적 빠른 반응을 하기 때문이다. 이런 이유로,보조인자가 PQQ인 경우가 바람직하다. 그러나, PMS는 효소에 기초한 수소화물 추출제 보다 더 빛에 민감하다. 디아포라제는 좀더 안정하며, 이런 이유로 보조인자가 NAD인 경우가 바람직하다.
포획된 수소화물은 테트라졸륨 화합물(염료 전구체)에 전달되어 유색의 포르마잔을 형성한다. 이 고안에 가장 적합한 테트라졸륨 화합물은 다음과 같다: 2-(2′벤조티아졸릴)-5-스티릴-3-(4′-프탈히드라지딜) 테트라졸륨 (BSPT), 2-벤조티아졸릴-(2)-3,5-디페닐 테트라졸륨 (BTDP), 2,3-디(4-니트로페닐) 테트라졸륨 (DNP), 2,5-디페닐-3-(4-스티릴페닐) 테트라졸륨 (DPSP), 디스티릴 니트로블루 테트라졸륨 (DS-NBT), 3,3′-[3,3′-디메톡시-(1,1′-비페닐)-4,4′-디일]-비스[2-(4-니트로페닐)-5-페닐(-2H 테트라졸륨 (NBT), 3-(4,5-디메틸-2-티아졸릴)-2,5-디페닐-2H 테트라졸륨 (MTT), 2-페닐-3-(4-카복시페닐)-5-메틸 테트라졸륨 (PCPM), 테트라졸륨 블루(TB), 티오카바밀 니트로블루 테트라졸륨 (TCNBT), 테트라니트로블루 테트라졸륨 (TNBT), 테트라졸륨 바이올렛 (TV), 2-벤조티아조티아졸릴-3-(4-카복시-2-메톡시페닐)-5-[4-(2-설포에틸카바모일)페닐]-2H-테트라졸륨 (WST-4) 및 2,2′-디벤조티아졸릴-5,5′-비스[4-디(2-설포에틸)카바모일페닐]-3,3′-(3,3′-디메톡시-4,4′-비페닐렌)디테트라졸륨, 이나트륨염(WST-5). WST-5가 바람직한데, 이는 생체 샘플과 가장 조화를 이루는 수성 매질에 쉽게 용해되기 때문이다. 더욱이, 생성된 포르마잔 화합물은 자주색-푸른색 부위에서 강한 스펙트럼 흡수를 나타내고, 따라서 헤모글로빈으로부터의 배경 시그날을 교정할 필요성을 감소시킨다.
마지막으로, 헤모글로빈 억제제가 시약내에 존재하여 헤모글로빈과 테트라졸륨 화합물 사이의 바람직하지 못한 염료-형성 반응을 줄인다. 헤모글로빈 억제제의 역할은 헤모글로빈을 메트헤모글로빈으로 산화시키는 것인데, 메트헤모글로빈은 테트라졸륨이나 포르마잔과 반응하지 않는다. 놀랍게도, 아질산 나트륨, 아질산 칼륨 및 이의 유도체 같은 아질산염은 헤모글로빈을 억제하는데 매우 효과적이지만, 한편 환원된 보조인자(예: NADH 또는 PQQH2)를 파괴하지는 않는다. 아질산염은 고온에서 그리고 높은 적혈구용적 샘플로도 또한 효과적이다. 아질산 나트륨은 물에 잘 녹고,독성이 없으며, 비교적 저렴하기 때문에 바람직하다.
본발명의 시약은 쿠베트 내와 같은 습식 화학 방식에서 사용될수 있지만, 바람직한 양태에서 본 발명은 전혈 내의 베타-히드록시부티레이트 또는 글루코스 분석용 건조 스트립을 제공한다. 스트립은 멤브레인 시험 패드(membrane test pad),바람직하게는 나일론으로 이루어지는데, 이는 지지체와 상층 사이에 놓여진다. 지지체는 바람직하게는 폴리에스테르 시트이다. 상층은 당업계에 공지된 흡수성 물질일 수 있다. 바람직한 물질은 조지아주 페어번의 포렉스사로부터 구입할 수 있는 메틸 올레오일 타우레이트 나트륨으로 처리된 다공성 폴리에틸렌이다. 본 출원인은 이물질을 "포렉스(Porex)"라고 부른다. 시험 패드는 베타-히드록시부티레이트 탈수소효소(또는 글루코스 탈수소효소), NAD (또는 PQQ), 디아포라제(또는 PMS) 및 WST-5(표 1(또는 3), 하기)를 포함하는 시약을 포함한다. 포렉스 상층은 아질산염 시약을 포함한다(표 2).
작동에 있어서, 사용자는 포렉스 상층의 윗쪽 표면에 전혈 한방울을 떨어뜨린다. 전혈 또는 용혈된 혈액이 포렉스와 접촉하게 되면, 아질산 나트륨이 재구성되어 유리 헤모글로빈과 반응함으로써 헤모글로빈이 분석에 해를 끼치지 않도록한다. 생성된, 실질적으로 헤모글로빈이 없는 샘플은 모세관력 또는 중력에 의해 시험 패드 아래로 전달된다. 시험 패드 위에서,샘플은 연속반응을 시작하여 유색염료를 생성시키는데, 이 유색염료의 농도는 샘플 내의 피분석물의 농도에 비례하고 포토메터로 직접 측정될 수 있다. 도 4는 효소, NAD 및 디아포라제를 사용한 베타-히드록시부티레이트에 대한 반응을 나타낸다. 도 5는 효소, PQQ 및 PMS를 사용한 글루코스에 대한 반응을 나타낸다.
도 6은 모두 55%의 적혈구용적을 갖고 0 및 15 ㎎/㎗의 베타-히드록시부티레이트를 포함하며, 아질산염을 포함하거나 포함하지 않는 혈액 샘플의 시간에 따른 광밀도 변화를 나타낸다. NAD 계가 사용되었으며, 아질산염 농도는 5 g/㎗ 이었다. 아질산염의 부재하에, 헤모글로빈은 테트라졸륨을 환원하여 계속 염료 농도를 증가시키는데 이에 상응하여 광밀도가 증가한다. 헤모글로빈을 제거함으로써 (산화에 의해), 아질산염은 색깔 형성을 오직 샘플 내의 케톤체 (즉, 베타-히드록시부티레이트)로부터 유래한 것으로 제한한다. 그래프에 나타낸 데이타를 생성시키기 위해 사용된 스트립의 제조가 하기 실시예 1에 기술되어 있다.
도 7은 글루코스/PQQ 계에서 색깔-형성 반응에 대한 아질산염의 효과를 나타낸다. 혈액 샘플은 모두 60%의 적혈구용적을 갖고, 0 또는 100mg/㎗의 글루코스 및 0 또는 5 g/㎗의 아질산염을 포함했다. 글루코스가 없는 샘플을 35℃에서 반응시켰다.
그래프는 본 계가 35℃ 까지의 온도 및 60% 까지의 적혈구용적에서 효과적임을 나타낸다. 사용된 스트립의 제조는 하기 실시예 2에 기술되어 있다.
하기 실시예는 본 발명의 바람직한 양태를 설명한다. 실시예 1에서,피분석물은 베타-히드록시부티레이트이고 효소는 베타-히드록시부티레이트 탈수소효소 이다. 실시예 2에서, 피분석물은 글루코스이고 효소는 글루코스 탈수소효소이다. 본 조성물은 응용을 위해서 앞에 열거된 다른 피분석물-효소 결합으로 쉽게 변형될 수 있다(참조 예: Tietz Textbook of Clinical Chemistry, 2nd Ed.,ed. by C. Burtis et al., W.B. Saunders Co., Philadelphia, PA,1994, pp 976-978 & 1174-1175). 실시예는 어떤 방법으로든지 제한을 의도한 것은 아니다.
실시예 1
쿠노사(Cuno, Meriden, CT,USA)로부터 구입한 0.8㎛ 나일론 멤브레인을 표 1의 시약에 포화될 때까지 담갔다. 과량의 시약을 유리 막대로 부드럽게 제거했다. 생성된 멤브레인을 56℃ 오븐에서 10분간 건조시켰다. 포렉스(0.6 mm 두께)를 표 2의 아질산염 용액에 담근후에 100℃ 오븐에서 10 시간 동안 매달아 건조시켰다. 마지막으로, 멤브레인을 폴리에스테르 스톡(델라웨어주 윌밍톤 ICI America로부터 구입한 0.4 mm MelenexRpolyester) 및 아질산염을 침투시킨 포렉스 사이에 두었다.
실시예 2
첫번째 침액이 표 3의 시약인 것을 제외하고 실시예 1의 과정을 반복했다.
케톤체 시험 패드용 시약
성분
100 ml
트리스(히드록시메틸) 아미노메탄 (분자량 121, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) (6M HCl을 가해서 pH를 8.5로 조정했다) 1.2 gm
염화 나트륨 (분자량 56.44, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) 560 mg
염화 마그네슘 (분자량 203, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마 ) 2.5 gm
PSSA, 폴리스티렌술폰산, 나트륨염 (분자량 70,000,미국 펜실베니아주 워링톤 폴리사이언시즈사) 3 gm
크로테인( 미국 뉴저지주 파시패니 크로다사) 3 gm
옥삼산, 나트륨염 (분자량 111.03, 미국 위스콘신주 밀워키 알드리히 케미칼스) 250 mg
테트로닉 1307 (미국 뉴저지주 마운트 올리브 BASF사) 2 gm
수크로스 ( 분자량 342.30, 미국 위스콘신주 밀워키 알드리히 케미칼스) 5 gm
NAD (분자량 663.4, N-7004, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) 450 mg
D-3-히드록시부티레이트탈수소효소 (출처: 일본 토요보,Pseudomonas sp.,HBD-301,125 U/mg) 50,000 U
디아포라제(출처: 일본 토요보, B.Stearothermophilus, New, 1033 U/㎎) 340890 U
WST-5 (분자량 1331.37,일본 도진도) 1.8 gm
아질산염 시약
성분
10 mM 인산염 완충 식염수, pH 7.4, (P-3813, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) 70 ml
에탄올 30 ml
아질산 나트륨 (분자량69, 미국 위스콘신주 밀워키 알드리히 케미칼스) 5 gm
폴리비닐피로딘 (분자량 40,000, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) 200 mg
옥삼산, 나트륨염 (분자량 111,03, 미국 위스콘신주 밀워키 알드리히 케미칼스) 500 mg
글루코스 시험 패드용 시약
성분
100 ml
트리스(히드록시메틸)아미노메탄 ( 분자량 121, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) (6 M HCl을 가해 pH를 7.4로 조정) 1.2 gm
염화 나트륨 (분자량 56.44, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) 560 mg
염화 마그네슘 (분자량 203, 미국 몬타나주 세인트루이스 시그마) 2.5 gm
PSSA, 폴리스티렌술폰산, 나트륨염 (분자량 70,000, 미국 펜실베니아주 워링톤 폴리사이언시즈사) 3 gm
크로테인 (미국 뉴저지주 파시패니 크로다사) 3 gm
옥삼산, 나트륨염 (분자량 111.03, 미국 위스콘신주 밀워키 알드리히 케미칼스) 250 mg
테트로닉 1307 (미국 뉴저지주 마운트 올리브 BASF사) 2 gm
수크로스(분자량 342.30, 미국 위스콘신주 밀워키 알드리히 케미칼스) 5 gm
PQQ (분자량 330,64682,플루카) 100㎎
글루코스 탈수소효소(291 U/㎎, 일본 토요보) 29100 U
페나진 메토설페이트 (분자량 306.34) 4 mg
WST-5(분자량 1331.37, 일본 도진도) 3.2 gm
본 발명으로 피분석물 농도의 척도인 NADH, NAD(P)H 또는 PQQH2같은 보조인자의 환원 형태를 일정 농도로 생성시켜, 헤모글로빈을 함유하는 생체액(예: 전혈)내의 피분석물 농도 측정용 시약을 제공할수 있다. 시약에 아질산염을 포함시켜 환원된 보조인자 농도 측정에 헤모글로빈이 간섭하는 것을 극복할 수 있다. 이는 비제한적으로 케톤체 및 글루코스의 측정에 특히 유용하다.

Claims (10)

  1. a) 피분석물에 대해 특이성을 갖는 탈수소효소,
    b) 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드 (NAD), NAD 유도체, 피롤로-퀴놀린 퀴논 (PQQ) 또는 PQQ 유도체,
    c) 테트라졸륨 염료 전구체,
    d) 디아포라제 또는 이의 유사물질 및
    e) 아질산염을 포함하는, 헤모글로빈을 함유하는 생체액 내의 피분석물의 농도를 측정하기 위한 시약.
  2. 제 1항에 있어서, 피분석물이 베타-히드록시부티레이트이고 효소가 베타-히드록시부티레이트 탈수소효소인 시약.
  3. 제 1항에 있어서, 피분석물이 글루코스이고 효소가 글루코스 탈수소효소인 시약.
  4. 지지층 위에 제 1항의 시약의 피복물을 갖는 시험 패드가 있는 지지층을 포함하는, 헤모글로빈을 함유하는 생체액 내의 피분석물의 존재 및 양을 측정하기 위한 건조 시약 스트립.
  5. 제 1항의 시약의 첫번째 부분은 시험 패드 위에 있고 상기 시약의 두번째 부분은 지지층 및 상층 또는 두층 중의 한층 위에 있으며, 그 위에 시험 패드를 갖는 지지층 및 시험 패드를 덮어씌운 상층을 포함하는, 헤모글로빈을 함유하는 생체액 내의 피분석물의 존재 및 양을 측정하기 위한 건조 시약 스트립.
  6. 제 5항에 있어서, 상층 및 패드 사이에 모세관 통로를 제공하기 위하여 상층 및 시험 패드 사이에 스페이서 및 홈을 추가로 포함하는 스트립.
  7. 제 5항에 있어서,피분석물이 베타-히드록시부티레이트이고 효소가 베타-히드록시부티레이트 탈수소효소인 스트립.
  8. 제 5항에 있어서, 피분석물이 글루코스이고 효소가 글루코스 탈수소효소인 스트립.
  9. 제 5항에 있어서, 테트라졸륨 염료 전구체가 2,2'-디벤조티아졸릴-5,5'-비스[4-디(2-설포에틸)카바모일페닐]-3,3'-(3,3'-디메톡시-4,4'-비페닐렌)디테트라졸륨, 이나트륨염 (WST-5)인 스트립.
  10. a) 지지층,
    b) 지지층 위에,
    ⅰ) 피분석물에 대해 특이성을 갖는 탈수소효소,
    ii) 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오티드 (NAD), NAD 유도체, 피롤로-퀴놀 린 퀴논 (PQQ) 또는 PQQ 유도체,
    iii) 테트라졸륨 염료 전구체, 및
    iv) 디아포라제 또는 이의 유사물질을 포함하는 피복물을 갖는 시험 패드, 및
    c) 시험 패드 위에, 아질산염으로 피복된 흡수성 상층을 포함하는, 헤모글로빈을 함유하는 생체액 내의 피분석물의 존재 및 양을 측정하기 위한 건조 시약 시험 스트립.
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