KR102551269B1 - 저-점도 항원 결합 단백질 및 이의 제조 방법 - Google Patents

저-점도 항원 결합 단백질 및 이의 제조 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 감소된 점도를 갖는 항원 결합 단백질의 제조 방법에 관한 것이다. 이러한 방법은 고점도 가변 도메인 서브패밀리의 잔기를 상관관계가 있는 저점도 서브패밀리의 잔기로 대체함으로써 진행된다. 이러한 방법은 Fc 도메인 내의 잔기를 저점도와 연관된 잔기로 치환하고, 하전된 잔기를 Fc 도메인의 C-말단에 첨가하는 단계를 추가로 포함한다. 본 발명은 추가로, 이러한 방법에 의해 제조된 항원 결합 단백질에 관한 것이다.

Description

저-점도 항원 결합 단백질 및 이의 제조 방법
관련 출원에 대한 교차 참조
본 출원은 2017년 8월 16일에 출원된 미국 가출원 62/546,469; 2016년 12월 6일에 출원된 미국 가출원 62/430,773; 및 2016년 9월 29일에 출원된 미국 가출원 62/401,770의 우선권을 주장하며, 이들은 각각 그 전체가 모든 목적을 위해 원용에 의해 본 명세서에 포함된다.
기술분야
본 발명은 생물약제, 특히 치료적 항원 결합 단백질, 이의 사용 방법, 이의 약제학적 조성물 및 이들의 제조 방법에 관한 것이다. 특히, 본 발명은 점도를 감소시키도록 돌연변이화된 항원 결합 단백질, 특히 항체에 관한 것이다.
서열 목록에 대한 간단한 설명
SEQ ID NO: 1 내지 SEQ ID NO: 383을 포함하는 "A-2063-WO-PCT_ST25"라는 명칭의 서열 목록은 그 전체가 원용에 의해 본 명세서에 포함되며, 이러한 서열 목록은 본원에 개시된 핵산 및/또는 아미노산 서열을 포함한다. 서열 목록은 EFS를 통해 ASCII 텍스트 포맷으로 본 명세서에 제출되었으며, 따라서, 이의 종이 및 컴퓨터 판독 가능 형태를 둘 다 구성한다. 서열 목록은 처음에 2017년 8월 16일에 PatentIn을 사용하여 생성되었고, 그 크기는 4.32 MB이다.
현재, 모노클로날 항체(mAb)는, 판매중이고 개발 하에 있는 현대의 치료적 단백질의 가장 인기있는 양상이다. 항체들 사이의 차이는 주로 항원 결합 도메인 또는 상보성 결정 영역(CDR)에 있다. CDR에서의 이들 차이는, 일시적인 단백질-단백질 상호작용 경향의 차이를 초래하며, 이는 이들 자체를 벌크 용액 점도로서 나타내는 것으로 생각된다. 몇몇 그룹은 점성 항체 용액(주로 이량체) 내에서 항체의 가역적 클러스터의 존재를 기재하였다. 중합체 점도의 몇몇 이론적 설명은 이들 클러스터의 상호작용을 벌크 용액 점도 거동에 대한 기전으로서 설명하기 위해 제안되었다.
항체는 통상적으로 길항제로서 작용하며, 따라서, 요망되지 않는 상호작용을 차단하기 위해서는 종종 1회 용량 당 100 mg을 초과하는 다량이 필요하다. 환자의 편안함을 위해, 1 mL 부피의 단일 피하 주사가 가장 바람직한 투여 방식이다. 비교적 작은 부피로 다량의 mAb를 투여하는 필요성은 100 mg/ml 이상의 고농도 제제를 필요로 하였다. 항체는 분자량이 약 150 kDa인 큰 생물중합체이고, 이들의 고농도는 여과 및 주사 바늘을 통한 통과 중 피하 공간 내에서 단백질-단백질 및 단백질-벽 상호작용으로 인해 고전단응력 및 고점도를 초래한다. 고점도는 치료적 항원 결합 단백질의 제조뿐만 아니라 환자에게 이들 단백질의 투여 시, 주사 동안의 엄청나게 높은 배압으로 인해 주사 장치의 기능 부전, 수동 투여의 어려움, 저하된 생체이용률, 및 환자 불편의 초래를 포함한 문제점을 제시한다.
생물약제 제조 비용이 저하됨에 따라, 고농도 치료적 모노클로날 항체 용액의 개발 및 이용이 가속화되었다. 일부 경우, 이들 항체 용액은 의도된 용량 시도의 제조 및 투여를 가능하게 할 수 있는 점성 용액 속성을 가진다. 항체가 "점성" 또는 "비점성"인지 결정하는 것으로 보이는 CDR의 차이는, 단백질-단백질 상호작용을 추진시키는 CDR의 경향과 관련이 있는 것 같다.
고점도를 초래하는 상호작용의 성질을 이해하고 고점도 항체 제제의 점도를 감소시키기 위한 상당한 노력이 산업에서 이루어지고 있다. 항체 제제의 점도에 영향을 주는 가장 중요한 매개변수는 하기를 포함한다:
· 단백질의 pI 및 용액의 pH에 의해 정의되는 분자간 상호작용. 문헌[Cheng et al. (2013), "Linking the solution viscosity of an IgG2 monoclonal antibody to its structure as a function of pH and temperature," J. Pharm Sci . 102: 4291-4304].
· 전하 상호작용. 문헌[Yadav et al.(2012), "Viscosity behavior of high-concentration monoclonal antibody solutions: correlation with interaction parameter and electroviscous effects," J. Pharm Sci. 101: 998-1011; Yadav et al. (2012), "The influence of charge distribution on self-association and viscosity behavior of monoclonal antibody solutions." Mol Pharm 9(4): 791-802; Singh et al. (2014), "Dipole-Dipole Interaction in Antibody Solutions: Correlation with Viscosity Behavior at High Concentration," Pharm Res . 31(9): 2549-2558; Chaudhri et al. (2013), "The role of amino acid sequence in the self-association of therapeutic monoclonal antibodies: insights from coarse-grained modeling," J. Phys. Chem. B 117: 1269-1279].
· 소수성 상호작용. 문헌[Guo et al. (2012),"Structure-activity relationship for hydrophobic salts as viscosity-lowering excipients for concentrated solutions of monoclonal antibodies," Pharm Res 29: 3102-3109].
최고 용액 점도는 가장 음의(negative) 확산 상호작용 매개변수 kD, 최고 겉보기 반경 및 최저 순전하를 갖는 조건 하에 관찰되었다. 문헌[Neergaard et al. (2013), "Viscosity of high concentration protein formulations of monoclonal antibodies of the IgG1 and IgG4 subclass - prediction of viscosity through protein-protein interaction measurements," Eur. J. Pharm Sci . 49: 400-410]. 삼투 이차 비리얼 계수(B(2); osmotic second virial coefficient)의 구성성분인 확산 상호작용 매개변수(kD)는 농축된 mAb 용액의 점도와 양호한(R은 0.9 초과) 상관관계에 있는 한편, mAb 순전하는 약한(R은 0.6 미만) 상관관계에 있었으며, 이는, 약한 분자간 상호작용이 농축된 mAb 용액의 점탄성 거동을 지배하는 데 중요함을 가리킨다. 문헌[Connolly, et al. (2012), "Weak interactions govern the viscosity of concentrated antibody solutions: high-throughput analysis using the diffusion interaction parameter," Biophys. J . 103: 69-78]. 이 명세서에서 보고된 연구에서, 3D 구조에 연결된 일차 서열이 이용되었다. 문헌[Honegger et al. (2001), "Yet another numbering scheme for immunoglobulin variable domains: an automatic modeling and analysis tool," J. Mol. Biol . 309: 657-670]을 참조한다. 몇몇 mAb 분자들의 점도값을 측정하여, 기계 학습 알고리즘(machine learning algorithm)을 통한 mAb의 점도 예측 모델을 개발하였다. 구조적 위치, 전하 및 소수성은 이러한 모델에 이용된 아미노산의 주요 매개변수였다.
모노클로날 항체의 점도는 하기 문헌의 분자 정보를 사용하여 평가되었다: 문헌[Li, L. et al. (2014), "Concentration dependent viscosity of monoclonal antibody solutions: explaining experimental behavior in terms of molecular properties," Pharm. Res . 31: 3161-3178; 및 Sharma et al. (2014), "In silico selection of therapeutic antibodies for development: viscosity, clearance, and chemical stability," Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A 111: 18601-6].
항체들 사이의 상호작용의 최종(net) 결과는, 점성 용액을 초래하는 상호작용의 연장된 일시적 네트워크(침투(percolating) 네트워크), 또는 이후에 더 큰 구조로서 용액 유동성(rheology)에 다소 영향을 주는 더 큰 올리고머의 형성이다. 이 명세서에서 보고된 연구에서는, 점성 항체 용액을 초래하게 될 특이적인 단백질-단백질 상호작용을 추론하려는 시도에서, 적은 수의 점성 항체가 생화학적 및 생물물리학적 분석을 위한 대상으로서 사용되었다.
안정성 및 다른 생물물리학적 특성을 개선하기 위해 Aho 넘버링 접근법이 과거에 이용되었다. 문헌[Ewert et al. (2003), "Structure-based improvement of the biophysical properties of immunoglobulin VH domains with a generalizable approach," Biochemistry 42: 1517-1528; Ewert et al. (2003), "Biophysical properties of human antibody variable domains," J. Mol. Biol . 325: 531-553; Ewert et al. (2004), "Stability improvement of antibodies for extracellular and intracellular applications: CDR grafting to stable frameworks and structure-based framework engineering," Methods 34: 184-199; 및 Rothlisberger et al. (2005), "Domain interactions in the Fab fragment: a comparative evaluation of the single-chain Fv and Fab format engineered with variable domains of different stability," J Mol. Biol . 347: 773-789]. Aho 넘버링 시스템은 또한 과거에, 응집 경향을 감소시키는 데 이용되었다. Borras et al. (2013), 미국 특허 8,545,849.
본 발명은 고점도와 연관이 있는 것으로 나타난 프레임워크 영역 및/또는 Fc 도메인 내의 서열을 변형시킴으로써 항원 결합 단백질의 점도를 감소시키는 방법에 관한 것이다.
후속하는 공정 상세 사항에서, 모든 가변 영역 아미노산은 Aho 넘버링에 의해 식별되고, 보존 영역으로부터의 모든 아미노산은 EU 넘버링에 의해 식별된다. Aho 넘버링은 정렬되고, EU(문헌[Edelman et al. (1969), "The covalent structure of an entire gamma immunoglobulin molecule," Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A . 63, 78-85]), Kabat(문헌[Kabat et al. (1991), Sequences of proteins of immunological interest, Fifth Edition. NIH Publication No. 91-3242]), Chothia(문헌[Chothia et al., (1992), "Structural repertoire of the human VH segments," J.Mol.Biol . 227: 799-817); (문헌[Tomlinson et al., (1995), "The structural repertoire of the human V kappa domain," EMBO J 14: 4628-4638])를 포함한 다른 주요 넘버링 체계와 상관관계된다. 4개의 넘버링 시스템 중 임의의 시스템은 상호교환적으로 사용되어, 본 명세서에서 기재된 바람직한 아미노산 치환을 식별할 수 있다.
항원 결합 단백질이 VH1|1-18 생식선(germline) 서브패밀리를 포함하는 경우, 본 방법은 82X1, 94X2 및 95X3으로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하도록 VH1 서열을 변형시키는 단계를 포함하며, 여기서, X1은 염기성 잔기(R, K 또는 H)이며, X2는 극성, 비하전된 잔기(S, T, N 또는 Q)이고, X3은 염기성 잔기(R, K 또는 H)이다. 모든 잔기는 Aho 넘버링 시스템에 의해 식별된다. VH1|1-18 생식선 서브패밀리에 바람직한 돌연변이는 82R, 94S 및 95R이다. VH1|1-18 생식선 서브패밀리에 적용된 바와 같은 방법은 치환 59X20을 추가로 포함할 수 있으며, 여기서, X20은 염기성 잔기(R, K 또는 H)이고, 이때 돌연변이 59K가 바람직하다.
항원 결합 단백질이 VH3|3-33 생식선 서브패밀리를 포함하는 경우, 본 방법은 1X4, 17X5 및 85X6으로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하도록 VH3 서열을 변형시키는 단계를 포함하며, 여기서, X4는 음전하성 잔기(D 또는 E)이며, X5는 작은 소수성 잔기(G, A, V, I, L 또는 M)이고, X6은 작은 소수성 잔기(G, A, V, I, L 또는 M)이다. 모든 잔기는 Aho 넘버링 시스템에 의해 식별된다. VH3|3-33 생식선 서브패밀리에 바람직한 돌연변이는 1E, 17G 및 85A이다.
항원 결합 단백질이 VK3|L16 생식선 서브패밀리를 포함하는 경우, 본 방법은 4X10, 13X11, 76X12, 78F, 95X13, 97X14 및 98P로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하도록 VK3 서열을 변형시키는 단계를 포함하며, 여기서, X10은 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되며, X11은 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되며, X12는 D 및 E로부터 선택되며, X13은 R, K 및 H로부터 선택되고, X14는 D 및 E로부터 선택된다. 모든 잔기는 Aho 넘버링 시스템에 의해 식별된다. VK3|L16 생식선 서브패밀리에 바람직한 돌연변이는 4L, 13L, 76D, 95R, 97E 및 98P이다.
항원 결합 단백질이 VK3|L6 생식선 서브패밀리를 포함하는 경우, 본 방법은 76X12 및 95X13으로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하도록 VK3 서열을 변형시키는 단계를 포함한다. VK3|L6 생식선 서브패밀리에 바람직한 돌연변이는 76D 및 95R이다.
본 발명의 방법은 253X15, 440X16 및 439X17로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하도록 Fc 도메인을 변형시키는 단계를 추가로 포함하며, 여기서, X15는 작은 소수성 잔기(G, A, V, I, L 또는 M)이며, X16은 염기성 잔기(R, K 또는 H)이고, X17은 음전하성 잔기(D 또는 E)이며, 여기서, Fc 도메인 서열은 440X16 및 439X17 중 하나만 포함한다. 모든 잔기는 EU 넘버링 시스템에 의해 식별된다. Fc 도메인의 바람직한 돌연변이는 253A, 440K 및 439E이다.
본 발명의 방법은 X18X19를 포함하도록 Fc 도메인 서열의 C-말단을 변형시키는 단계를 추가로 포함하며, 여기서, X18은 D 및 E로부터 또는 H, K 및 R로부터 선택되는 1 내지 4개의 아미노산을 포함하고, X19는 P, M, G, A, V, I, L, S, T, N, Q, F, Y 및 W로부터 선택되고, X18이 D 또는 E를 포함하는 경우 부재하며, X18이 이의 C-말단부에 K 또는 R을 포함하는 경우 존재하고, X18이 이의 C-말단부에 H를 포함하는 경우 존재하거나 부재한다. 바람직한 Fc C-말단 변형은 C-말단에 KP, KKP, KKKP(SEQ ID NO: 380), E 또는 EE를 포함한다.
상기 방법들은 바람직하게는, 이하 도 1a 및 도 1b에 보여진 고점도 항체에 적용된다. VH1|1-18 서열을 수반하는 방법 부분은 바람직하게는, 도 1b로부터의 항체 AF, AK, AL, AN 및 AO에 적용된다. VH3|3-33 서열을 수반하는 방법 부분은 바람직하게는, 도 1b로부터의 항체 AQ, AM, AI 및 AG에 적용된다. VK3|L16 서열을 수반하는 방법 부분은 바람직하게는, 도 1b로부터의 항체 AF 및 AQ에 적용된다. VK3|L6 서열을 수반하는 방법 부분은 바람직하게는, 항체 AJ에 적용된다.
본 발명의 방법은, 항원 결합 단백질 및 부모 항체가 동일한 농도로 투여된 경우, 부모 항체보다 빠르게 최대 혈청 농도에 도달하는 항원 결합 단백질의 제조 방법을 추가로 포함하며, 상기 방법은 부모 항체에 서열 변형 440X16을 도입하는 단계를 포함하며, 여기서, X16은 R, K 및 H로부터 선택된다. 바람직한 방법에서, 서열-변형된 항원 결합 단백질은 피하 주사 후, 부모 항체보다 적어도 2배 빠르게 최대 혈청 농도에 도달한다. 또한, 항원 결합 단백질 및 부모 항체가 동일한 농도로 투여된 경우, 피하 주사 후 부모 항체의 최대 혈청 농도보다 높은 최대 혈청 농도에 도달하는 항원 결합 단백질의 제조 방법이 본 발명에 포함되며, 상기 방법은 부모 항체에 서열 변형 440X16을 도입하는 단계를 포함하며, 여기서, X16은 R, K 및 H로부터 선택된다. 바람직한 방법에서, 서열-변형된 항원 결합 단백질은 부모 항체의 최대 혈청 농도보다 적어도 약 25% 더 높은 최대 혈청 농도에 도달한다. 이들 각각의 방법에서, 바람직한 X16은 K이고, 바람직한 부모 항체는 PCSK9 폴리펩타이드이다(항체 AK가 가장 바람직함).
본 발명은 추가로, 돌연변이체 항원 결합 단백질에 관한 것이며, 이러한 단백질은
a. 82X1, 94X2 및 95X3으로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하는 VH1|1-18 생식선 서브패밀리 서열로서, 여기서, X1은 R, K 및 H로부터 선택되며, X2는 S, T, N 및 Q로부터 선택되고, X3은 R, K 및 H로부터 선택되는, 서열;
b. 1X4, 17X5 및 85X6으로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하는 VH3|3-33 생식선 서브패밀리 서열로서, 여기서, X4는 D 및 E로부터 선택되며, X5는 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되고, X6은 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되는, 서열;
c. 4X10, 13X11, 76X12, 78F, 95X13, 97X14 및 98P로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하는 VK3|L16 생식선 서브패밀리로서, 여기서, X10은 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되며, X11은 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되며, X12는 D 및 E로부터 선택되며, X13은 R, K 및 H로부터 선택되고, X14는 D 및 E로부터 선택되며, 여기서, 돌연변이체 항원 결합 단백질이 치환 78F만 포함하는 것은 아닌, 서열;
d. 76X12 및 95X13으로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하는 VK3|IL6 생식선 서브패밀리;
e. 253X10, 440X11 및 439X12로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하는 Fc 도메인 서열로서, 여기서, X10은 G, A, V, I, L 및 M으로부터 선택되며, X11은 R, K 및 H로부터 선택되고, X12는 D 및 E로부터 선택되며, 여기서, X16이 K이고 X17이 E인 경우, 항원 결합 단백질은 253X15 또는 하위단락 a, b, c, d 및 f로부터 선택되는 변형 중 적어도 하나를 포함하며, 항원 결합 단백질은 CD20에 특이적으로 결합하는, 서열; 및
f. C-말단에 X18X19를 포함하는 Fc 도메인 서열로서, 여기서, X18은 D 및 E로부터 또는 H, K 및 R로부터 선택되는 1 내지 4개의 아미노산이고, X19는 P, M, G, A, V, I, L, S, T, N, Q, F, Y 및 W로부터 선택되고, X18이 D 또는 E를 포함하는 경우 부재하며, X18이 이의 C-말단부에 K 또는 R을 포함하는 경우 존재하고, X18이 이의 C-말단부에 H를 포함하는 경우 존재하거나 부재하고, PGKP(SEQ ID NO:381), PGKKP(SEQ ID NO:382), PGKKKP(SEQ ID NO:383) 또는 PGE가 C-말단에 보이는 경우, 항원 결합 단백질은 253X15 또는 하위단락 a 내지 e로부터 선택되는 치환 중 적어도 하나를 포함하며, 항원 결합 단백질은 CD20 또는 CD38에 특이적으로 결합한다. 바람직한 Fc C-말단 변형은 C-말단에 KP, KKP, KKKP(SEQ ID NO:380), E 또는 EE를 포함하는, 서열
로부터 선택되는 하나 이상의 서열을 포함하며,
가변 영역 아미노산은 Aho 넘버링 시스템에 따라 넘버링되고, Fc를 포함한 보존 영역으로부터의 모든 아미노산은 EU 넘버링에 따른 것이다.
본 발명에 따른 바람직한 항원 결합 단백질은, 상기 변형이 이하 도 1a 및 도 1b의 항체에 적용되는 것들이다. 또한 다음과 같은 항원 결합 단백질이 바람직하다:
VH1|1-18 생식선 서브패밀리 서열이 82R, 94S 및 95R로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하며, 이때 이러한 치환을 모두 갖는 것이 가장 바람직한, 항원 결합 단백질;
VH3|3-33 생식선 서브패밀리 서열이 치환 1E, 17G 및 85A 중 하나 이상을 포함하며, 이때 이러한 치환을 모두 갖는 것이 가장 바람직한, 항원 결합 단백질;
VK3|L16 생식선 서브패밀리 서열이 4L, 13L, 76D, 95R, 97E 및 98P로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하며, 이때 이러한 치환을 모두 갖는 것이 가장 바람직한, 항원 결합 단백질;
VK3|L6 생식선 서브패밀리 서열이 76D 및 95R로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하며, 이때 이러한 치환을 둘 다 갖는 것이 가장 바람직한, 항원 결합 단백질;
Fc 도메인 서열이 253A, 440K 및 439E로부터 선택되는 하나 이상의 치환을 포함하며, 이때 이러한 치환을 모두 갖는 것이 가장 바람직한, 항원 결합 단백질; 및
Fc 도메인 C-말단이 KP, KKP, KKKP(SEQ ID NO:380) 및 E로부터 선택되는 서열을 포함하는 항원 결합 단백질
이 바람직하다.
가변 영역에서 전술한 바람직한 아미노산 치환은 모두 Aho 넘버링 시스템에 의해 식별된다. Fc를 포함한 보존 영역 내의 모든 잔기는 EU 넘버링 시스템에 의해 식별된다.
본 발명에 따른 바람직한 항원 결합 단백질은 다음을 포함한다: 전술한 VH1|1-18 생식선 서브패밀리 치환 중 하나 이상, 가장 바람직하게는 모두를 갖는 도 1b로부터의 항체 AF, AK, AL, AN 및 AO; VH3|3-33 생식선 서브패밀리 치환 중 하나 이상, 가장 바람직하게는 모두를 갖는 도 1b로부터의 항체 AQ, AM, AI 및 AG; VK3|L16 생식선 서브패밀리 치환 중 하나 이상, 가장 바람직하게는 모두를 갖는 항체 AF 및 AQ; VK3|L6 생식선 서브패밀리 치환 중 하나 이상, 가장 바람직하게는 모두를 갖는 도 1b로부터의 항체 AJ; 및 상기 주지된 Fc 치환 중 하나 이상, 바람직하게는 모두를 갖는 도 1b로부터의 항체 BA, AH 및 AN.
전술한 서열 변형으로 인해, 본 발명은 추가로, SEQ ID NO: 352, 353, 354, 366 및 368로부터 선택되는 중쇄 서열을 포함하고 바람직하게는 SEQ ID NO: 351의 경쇄 서열을 또한 포함하는, PCSK9에 특이적으로 결합하는 항원 결합 단백질에 관한 것이다.
전술한 서열 변형으로 인해, 본 발명은 또한, SEQ ID NO: 356, 357 및 358로부터 선택되는 중쇄 서열을 포함하고 바람직하게는 SEQ ID NO: 355의 경쇄 서열을 추가로 포함하는, c-fms에 특이적으로 결합하는 항원 결합 단백질에 관한 것이다.
전술한 서열 변형으로 인해, 본 발명은 또한, SEQ ID NO: 359, 361, 362, 364 및 368로부터 선택되는 중쇄 서열을 포함하고 바람직하게는 SEQ ID NO: 360, 363, 365 및 367로부터 선택되는 경쇄 서열을 추가로 포함하는, GIPR에 특이적으로 결합하는 항원 결합 단백질에 관한 것이다.
모든 변형된 항원 결합 단백질은 비변형된 항체에 대해 이전에 기재된 것과 동일한 적응증(indication)에 유용하다.
돌연변이화된 중쇄를 갖는 도 1a 및 도 1b로부터의 각각의 항원 결합 단백질은 도 1a 및 도 1b의 비변형된 부모 항체에서 기재된 바와 같은 경쇄 서열을 추가로 포함하는 것이 바람직하다. 돌연변이화된 경쇄를 갖는 각각의 전술한 항원 결합 단백질은 기재된 바와 같은 또는 도 1a 및 도 1b의 비변형된 부모 항체에서 나타나는 바와 같은 중쇄 서열을 추가로 포함하는 것이 바람직하다.
본 발명은 추가로, 개선된 약물동력학 특성을 갖는 상기 기재된 바와 같은 항원 결합 단백질을 포함한다. 본 발명은 상기 언급된 서열 변형 중 임의의 서열 변형을 선택적으로 갖는 항원 결합 단백질을 포함하며, 여기서:
a. 항원 결합 단백질은 440X16 서열 변형이 결여된 부모 항체에 비해, 서열 변형 440X16을 포함하며,
b. 항원 결합 단백질은, 항원 결합 단백질 및 부모 항체가 동일한 농도로 투여된 경우, 피하 주사 후 부모 항체보다 빠르게 최대 혈청 농도에 도달하고,
c. 항원 결합 단백질은, 항원 결합 단백질 및 부모 항체가 동일한 농도로 투여된 경우, 피하 주사 후 부모 항체의 최대 혈청 농도보다 높은 최대 혈청 농도에 도달한다.
이러한 항원 결합 단백질에 바람직한 부모 항체는 PCSK9 결합 폴리펩타이드이며, 이때 항체 AK가 가장 바람직하다. 이러한 항원 결합 단백질에서 바람직한 치환기 X16은 K이다. 이러한 항원 결합 단백질로 과콜레스테롤혈증을 치료하는 방법이 본 발명에 추가로 존재한다.
본 발명은 또한, 본 발명의 항원 결합 단백질을 인코딩하는 단리된 핵산, 뿐만 아니라 이러한 핵산을 포함하는 벡터, 이러한 벡터를 포함하는 숙주 세포, 및 이러한 항원 결합 단백질의 제조 방법 및 사용 방법에 관한 것이다.
다른 실시형태에서, 본 발명은 항원 결합 단백질을 포함하는 조성물 및 항원 결합 단백질을 포함하는 키트, 뿐만 아니라 항원 결합 단백질을 포함하는 제조 물품을 제공한다.
도 1a 및 도 1b는 pH 5.2(폴리소르베이트 없음)에서 20 mM 아세테이트 및 9% 수크로스를 포함하는 제제 완충제에서 150 mg/mL에서 제제화된 IgG1 및 IgG2 모노클로날 항체에 대해 측정된 점도값의 표를 보여준다. 도 1a 및 도 1b는 연구된 항체의 표적뿐만 아니라 이들의 경쇄 및 중쇄 타입, 생식선 서브패밀리, 농도, pI 및 점도를 보여준다. 도 1a 및 도 1b에서 각각의 항체는 도면 및 서열 목록에 주지된 바와 같은 아미노산 서열을 가진다. 중쇄 및 경쇄 아미노산 서열은 서열 목록에서 이들 서열 바로 앞에 SEQ ID NO를 갖는 핵산에 의해 인코딩된다.
도 1c 및 도 1d는 도 1a 및 도 1b의 항체의 프레임워크 영역 및 Fc 영역에 대한 서열 식별 번호(SEQ ID NO)를 보여준다. 도 1d는 또한, 도 17에서 논의된 항체 BA를 보여준다.
도 2는 이 명세서에서 식별된 고점도 및 저점도 서브타입 쌍(pair)을 보여준다.
도 3은 7일간의 세포 배양 후 수합 시 역가에 대한 상대값, 최종 생존 세포 밀도(VCD; viable cell density) 및 생존력(viability)을 포함하여, AK 및 AO 항체 분자 및 이들의 돌연변이체에 대한 발현 결과를 보여준다. AK 값은 100%에서이다.
도 4는 AK 부모 항체(AK 대조군, AK) 및 이들의 돌연변이체의 효능(potency)을 보여준다.
도 5는 부모 AK 및 AO 항체에 비해 돌연변이체의 점도를 보여준다. 43개 항체의 세트로부터의 고점도 VH1|1-18 및 저점도 VH1|1-02의 평균 점도값이 또한, 비교를 위해 나타나 있다.
도 6은 고점도 VH1|1-18 및 저점도 VH1|1-02 서브타입의 mAb의 측정된 점도값 대 계산된 전체 분자 pI 값을 보여준다. AK 및 AO 항체의 저-점도 돌연변이체가 또한 나타나 있다.
도 7은 고점도 VH3|3-33 및 저점도 VH3|3-07 서브타입의 mAb의 측정된 점도값 대 계산된 전체 분자 pI를 보여준다. 저-점도 돌연변이체 AQ(1, 17, 85)가 또한 나타나 있다.
도 8은 고점도 VK3|L16 및 VK3|L6 서브패밀리 및 저점도 VK3|A27 서브패밀리의 mAb의 측정된 점도값 대 계산된 전체 분자 pI 값을 보여준다. 저-점도 돌연변이체 AQ(4 13 76 95 97 98)가 또한 나타나 있다.
도 9는 mAbs 고점도 VH1|1-18 및 저점도 VH1|1-02 서브타입(생식선)의 전반적인 서열 매개변수를 보여주는 표이다. 도 9에서 mAb는 점도에 의해 분류된다. 표는 이들의 mAb 기호, 측정된 점도값, 계산된 pI 값, 및 VL 및 VH 생식선을 포함한다. VH 생식선의 경우, 더 높은 점도 VH1|1-18은 굵은 글씨로 밑줄이 그어져 있다. 중쇄 프레임워크 3 서열이 나타나 있다. 고점도와 상관관계가 있는 잔기는 굵은 글씨로 밑줄이 그어져 있다. VBase 서열은, 상이한 잔기가 서브패밀리에 전형적인 잔기임을 예시하기 위해 비교를 위한 VH1|1-18 및 VH1|1-02 생식선 서브패밀리에 대해 첨가된다.
도 10은 AK 및 AO 항체의 생성되고 특징화된 돌연변이체를 보여주는 표이다.
도 11은 VH3 중쇄를 가진 13개의 mAb의 전반적인 서열 매개변수를 보여주는 표이다. 도 11은 mAb 기호, 측정된 점도값, 계산된 pI 값, HC 및 LC 타입, 및 VL 및 VH 서브타입(생식선)을 포함한다. 더 높은 점도의 VH3|3-33 서브패밀리는 굵은 글씨 및 밑줄로 나타나 있다. 고점도와 상관관계가 있는 잔기는 굵은 글씨로 밑줄이 그어져 있다. VBase 서열은, 상이한 잔기가 서브패밀리에 전형적인 것임을 예시하기 위해 비교를 위한 VH3|3-33 및 VH3|3-07 생식선 서브패밀리에 대해 첨가된다.
도 12는 VK3 경쇄를 가진 14개의 mAb의 전반적인 서열 매개변수를 보여주는 표이다. 도 12에서 mAb는 이들의 mAb 기호, 측정된 점도값, 계산된 pI 값, HC 및 LC 타입, 및 VL 및 VH 서브타입(생식선)을 포함하여 점도에 의해 분류된다. 더 높은 점도 VK3|L16 및 VK3|L6 서브패밀리는 굵은 글씨로 밑줄이 그어져 있다. VK3|A27 서브패밀리와 비교하여 VK3|L16과 VK3|L6 서브패밀리 사이에서 일관적으로 상이한 경쇄 잔기는 우측면에 나타나 있다. VK3|L16 및 VK3|L6 서브패밀리에서 고점도와 상관관계가 있는 잔기는 굵은 글씨로 밑줄이 그어져 있다. VBase 서열은, 상이한 잔기가 서브패밀리에 전형적인 잔기임을 예시하기 위해 비교를 위한 VK3|L16 및 VK3|A27 생식선 서브패밀리에 대해 첨가된다.
도 13a 및 도 13b는 명시된 중쇄 및 경쇄 생식선 패밀리 및 VH1, VH3 및 VK3의 생식선 서브패밀리를 함유하는 온전한 항체 분자에 대한 측정된 점도 및 계산된 pI 값에 대한 평균값을 보여준다. X-축은 패밀리, 및 각각의 패밀리와 서브패밀리 내의 구성원의 수를 함유한다.
도 14a는, Fc-Fc 상호작용 표면에서의 돌연변이가 용액 점도를 저하시킬 수 있음을 보여준다. 항체 AK, 및 항체 AK 돌연변이체 I253A 및 S440K의 농도의 점도가 나타나 있다.
도 14b는, 야생형 보체 활성을 복구시키는 이중 돌연변이체가 야생형 점도도 복구시킴을 보여준다. 이러한 도면은 항체 AK, 항체 AK 돌연변이체 I253A, 항체 AK 돌연변이체 S440K, 및 항체 AK 이중 돌연변이체 K439E/S440K의 농도의 점도를 보여준다. 상기 도면은 또한, 항체 AK 부모에 비해 점도를 저하시키지 않는 항체 AK 돌연변이체 K439E, 항체 AK 돌연변이체 H433A, 및 항체 AK 돌연변이체 N434A의 점도를 보여준다.
도 15는 부모 항체 AK 및 다양한 돌연변이체의 절대 및 상대 점도값을 보여주는 표이다. 부모 항체 AK 및 돌연변이체는 항체 AK 및 저점도 돌연변이체의 약물동력학 및 약력학의 비인간 영장류 연구에 사용된다.
도 16은 EDC 화학적 가교의 도식이다(실시예 2 참조).
도 17은 더 낮은 점도 변이체로의 Fc 돌연변이에 대해 선택된 단백질의 점도를 보여주는 표이다.
도 18은 항체 AH의 EDC 화학적 가교에 의한 항체 시스템 올리고머의 농도-의존적 형성을 보여준다.
도 19a는, Fc 영역에서 S440K 돌연변이가 항체 AQ에서 점도를 감소시킴을 보여준다. (돌연변이체의 농도는 실제로 150 mg/mL임을 주지함.) 도 19b는 지수 적합(exponential fit)과 함께 동일한 데이터의 산점도이다. 도 19b에서 다이아몬드형은 보여진 농도에서 비변형된 항체 AQ를 나타내고, 정사각형은 150 mg/mL에서 S440K 돌연변이체를 보여준다.
도 20a는 측정된 농도 및 점도를 포함하여, 항체 AQ의 생성되고 특징화된 돌연변이체를 보여주는 표이다.
도 20b는 GIP에 의해 활성화되고 항-GIPR 항체에 의해 차단되는 인간 GIP 수용체를 발현하는 293/huGIPR 세포의 cAMP 반응을 보여준다. 시험관내 cAMP 활성은 점도 돌연변이에 의해 동일하게 영향을 받지 않았다. 효능은 검정법의 오차 한계 내에서 여전히 동일하였다.
도 21은 이하 작업예에서 더 상세히 기재되는 바와 같이 수컷 시노몰구스 원숭이에서 단일-용량 피하 볼루스(bolus) 약물동력학 연구를 위한 실험 디자인의 요약을 보여준다.
도 22는 수컷 시노몰구스 원숭이(N = 4마리 수컷)에게 10 mg/kg을 피하 투여한 후, 항체 AK 또는 저점도 돌연변이체 동족체의 평균 약물동력학 매개변수 추정치를 보여준다. 점도를 감소시키는 Fc 영역에서 돌연변이의 도입은 Tmax를 감소시키고, Cmax를 증가시킨다.
도 23은 프리테스트(CLAB일)와 비교한 LDL-C의 퍼센트를 보여준다. *퍼센트 변화는 제1일 프리테스트 값으로 나눈 개별 동물의 투약-후 값으로서 표현된다. 모든 4개의 항체(부모 항체 AK, AK Fc 돌연변이체, AK Fab 돌연변이체 및 AK 이중 Fc/Fab 돌연변이체)는 모두 LDL-C에서 감소를 유도한다.
도 24a 및 도 24b는 약물동력학 프로파일(μg/mL)을 혈장 내 상응하는 저밀도 지질단백질(LDL) 농도(mg/dL) 프로파일과 함께 보여준다. LDL 농도 및 테스트 물품 혈청 농도는 4마리 동물에 대한 평균값으로서 제시된다. 실선과 함께 채워진 원형은 부모 항체 AK의 혈청 농도를 가리킨다. 파선과 함께 비워진(open) 정사각형은 Fab 돌연변이를 갖는 항체의 혈청 농도를 가리킨다. 실선과 함께 채워진 삼각형은 Fc 돌연변이를 갖는 항체의 혈청 농도를 가리킨다. 파선과 함께 비워진 다이아몬드형은 Fab 및 Fc 돌연변이를 둘 다 갖는 항체의 혈청 농도를 가리킨다. 이들 데이터는, 항체 제제의 점도를 감소시키는 Fc 영역 내에서 돌연변이의 존재가 Tmax까지의 감소된 시간 및 더 높은 Cmax를 초래함을 가리킨다. 부모 항체의 모든 돌연변이체 형태는 혈청 LDL-C를 낮추는 능력을 보유한다(하위 패널).
용어의 정의
후속하는 상세한 설명에서, 많은 용어들이 광범위하게 사용된다. 하기 정의는 본 발명의 이해를 용이하게 하기 위해 제공된다.
다르게 명시되지 않는 한, 단수형("a", "an", "the") 및 "적어도 하나"는 상호교환적으로 사용되고, 1개 이상을 의미한다.
"항원 결합 단백질"은, 이것이 결합하는 또 다른 분자(항원)에 대해 강한 친화성을 갖는 항원-결합 영역 또는 항원-결합 부분을 포함하는 단백질 또는 폴리펩타이드를 지칭한다. 항원-결합 단백질은 항체, 펩티바디, 항체 단편(예를 들어 Fab, Fab', F(ab')2, Fv, 단일 도메인 항체), 항체 유도체, 항체 유사체, 융합 단백질, 및 키메라 항원 수용체(CAR)를 포함한 항원 수용체를 포괄한다.
"항체"(Ab) 및 "면역글로불린"(Ig)은 동일한 구조적 특징을 갖는 당단백질이다. 항체는 특이적인 항원에 결합 특이성을 나타내는 한편, 면역글로불린은 항체 및 항원 특이성이 결여된 다른 항체-유사 분자를 둘 다 포함한다. 후자의 종류의 폴리펩타이드는 예를 들어, 림프계에 의해 낮은 수준으로, 및 골수종에 의해 증가된 수준으로 생성된다. 따라서, 본원에 사용된 바와 같이, 용어 "항체" 또는 "항체 펩타이드(들)"는 온전한 항체, 특이적인 결합에 대해 이 명세서에 개시된 항체와 경쟁하는 항체, 또는 특이적인 결합에 대해 온전한 항체와 경쟁하고 키메라, 인간화, 완전 인간 및 이중특이적 항체를 포함하는 이의 항원-결합 단편(예를 들어 Fab, Fab', F(ab')2, Fv, 단일 도메인 항체)을 지칭한다. 소정의 실시형태에서, 항원-결합 단편은 예를 들어, 재조합 DNA 기술에 의해 생성된다. 추가의 실시형태에서, 항원-결합 단편은 온전한 항체의 효소적 또는 화학적 절단에 의해 생성된다. 항원-결합 단편으로는, Fab, Fab', F(ab)2, F(ab')2, Fv 및 단일-사슬 항체가 있으나, 이들로 한정되는 것은 아니다. 본 발명에 사용하기에 적합한 항체의 예로는 비제한적으로, 도 1a 및 1b에 열거된 항체, 뿐만 아니라 아바고보맙(Abagovomab), 아브식시맙(Abciximab), 악톡수맙(Actoxumab), 아달리무맙(Adalimumab), 아펠리모맙(Afelimomab), 아푸투주맙(Afutuzumab), 알라시주맙(Alacizumab), 알라시주맙 페골(Alacizumab pegol), ALD518, 알렘투주맙(Alemtuzumab), 알리로쿠맙(Alirocumab), 알렘투주맙(Alemtuzumab), 알투모맙(Altumomab), 아마툭시맙(Amatuximab), 아나투모맙 마페나톡스(Anatumomab mafenatox), 안루킨주맙(Anrukinzumab), 아폴리주맙(Apolizumab), 아르시투모맙(Arcitumomab), 아셀리주맙(Aselizumab), 알티누맙(Altinumab), 아틀리주맙(Atlizumab), 아토롤리미우맙(Atorolimiumab), 토실리주맙(tocilizumab), 바피뉴주맙(Bapineuzumab), 바실릭시맙(Basiliximab), 바비툭시맙(Bavituximab), 벡투모맙(Bectumomab), 벨리무맙(Belimumab), 벤랄리주맙(Benralizumab), 베르틸리무맙(Bertilimumab), 베실레소맙(Besilesomab), 베바시주맙(Bevacizumab), 베즐로톡수맙(Bezlotoxumab), 비시로맙(Biciromab), 비바투주맙(Bivatuzumab), 비바투주맙 메르탄신(Bivatuzumab mertansine), 블리나투모맙(Blinatumomab), 블로소주맙(Blosozumab), 브렌툭시맙 베도틴(Brentuximab vedotin), 브리아키누맙(Briakinumab), 브로달루맙(Brodalumab), 카나키누맙(Canakinumab), 칸투주맙 메르탄신(Cantuzumab mertansine), 칸투주맙 메르탄신, 카플라시주맙(Caplacizumab), 카프로맙 펜데티드(Capromab pendetide), 카를루맙(Carlumab), 카투막소맙(Catumaxomab), CC49, 세델리주맙(Cedelizumab), 세르톨리주맙 페골(Certolizumab pegol), 세툭시맙(Cetuximab), 시타투주맙 보가톡스(Citatuzumab bogatox), 식수투무맙(Cixutumumab), 클라자키주맙(Clazakizumab), 클레놀릭시맙(Clenoliximab), 클리바투주맙 테트락세탄(Clivatuzumab tetraxetan), 코나투무맙(Conatumumab), 크레네주맙(Crenezumab), CR6261, 다세투주맙(Dacetuzumab), 다클리주맙(Daclizumab), 달로투주맙(Dalotuzumab), 다라투무맙(Daratumumab), 뎀시주맙(Demcizumab), 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본원에 사용된 바와 같이, 용어 "단리된 항체"는 이의 천연 환경의 구성성분으로부터 식별되고, 분리 및/또는 회수된 항체를 지칭한다. 이의 천연 환경의 오염 구성성분은 항체에 대한 진단적 또는 치료적 용도를 방해할 물질이고, 효소, 호르몬, 및 다른 단백질성 또는 비단백질성 용질을 포함할 수 있다. 바람직한 실시형태에서, 항체는 (1) 로리 방법(Lowry method)에 의해 결정된 바와 같이 항체의 95 중량% 초과, 가장 바람직하게는 99 중량% 초과까지, (2) 스피닝 컵 시쿼네이터(spinning cup sequenator)의 사용에 의해 N-말단 또는 내부 아미노산 서열 중 적어도 15개 잔기를 수득하기에 충분한 정도까지, 또는 (3) 환원 또는 비환원 조건 하에 쿠마시 블루 또는 바람직하게는 은(sliver) 염색을 사용하여 SDS-PAGE에 의해 균질성까지 정제될 것이다. 단리된 항체는 재조합 세포 내의 인 시추(in situ) 항체를 포함하는데, 이는 항체의 천연 환경의 적어도 하나의 구성성분이 존재하지 않을 것이기 때문이다. 그러나 통상적으로, 단리된 항체는 적어도 하나의 정제 단계에 의해 제조될 것이다.
용어 항원 또는 다른 폴리펩타이드의 "결합하다(하는)"은, 본 발명의 리간드 폴리펩타이드가 수용체에 결합하는 것; 본 발명의 수용체 폴리펩타이드가 리간드에 결합하는 것; 본 발명의 항체가 항원 또는 에피토프에 결합하는 것; 본 발명의 항원 또는 에피토프가 항체에 결합하는 것; 본 발명의 항체가 항-이디오타입(anti-idiotypic) 항체에 결합하는 것; 본 발명의 항-이디오타입 항체가 리간드에 결합하는 것; 본 발명의 항-이디오타입 항체가 수용체에 결합하는 것; 본 발명의 항-항-이디오타입 항체가 리간드, 수용체 또는 항체에 결합하는 것 등을 포함하지만, 이들로 한정되는 것은 아니다.
용어 "면역글로불린"은 면역글로불린 유전자에 의해 실질적으로 인코딩되는 하나 이상의 폴리펩타이드로 구성된 단백질을 지칭한다. 하나의 형태의 면역글로불린은 항체의 기본적인 구조 단위를 구성한다. 이러한 형태는 사량체이고, 2개의 동일한 쌍의 면역글로불린 사슬들로 구성되며, 각각의 쌍은 하나의 경쇄 및 하나의 중쇄를 가진다. 각각의 쌍에서, 경쇄 및 중쇄 가변 영역이 함께 항원에의 결합을 담당하고, 불변 영역은 항체 효과기 기능을 담당한다.
전장 면역글로불린 "경쇄"(약 25 Kd 또는 약 214개 아미노산)는 NH2-말단에서 가변 영역 유전자(약 110개 아미노산) 및 COOH-말단에서 카파 또는 람다 불변 영역 유전자에 의해 인코딩된다. 전장 면역글로불린 "중쇄"(약 50 Kd 또는 약 446개 아미노산)는 유사하게 가변 영역 유전자(약 116개 아미노산) 및 다른 상기 언급된 불변 영역 유전자들 중 하나(약 330개 아미노산)에 의해 인코딩된다. 중쇄는 감마, 뮤, 알파, 델타 또는 입실론으로서 분류되고, 항체의 이소타입을 각각 IgG(예컨대 IgG1, IgG2, IgG3 및 IgG4), IgM, IgA, IgD 및 IgE로서 한정한다(define). 경쇄 및 중쇄 내에서, 가변 및 불변 영역은 약 12개 이상의 아미노산으로 이루어진 "J" 영역에 의해 접합되며, 이때 중쇄는 약 10개 초과의 아미노산으로 이루어진 "D" 영역을 또한 포함한다. (일반적으로, 문헌[Fundamental Immunology (Paul, W., ed., 2nd Edition, Raven Press, NY (1989))], 챕터 7(그 전체가 모든 목적을 위해 원용에 의해 포함됨) 참조).
면역글로불린 경쇄 또는 중쇄 가변 도메인 또는 영역은 "상보성 결정 영역"(CDR)이 개재된(interrupted) "프레임워크 영역"(FR)을 포함한다. 문헌[Kabat et al. (1991), Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Edition, Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, Md. (1991); Chothia et al. (1987), J. Mol. Biol. 196: 901-917](이들은 둘 다 원용에 의해 본 명세서에 포함됨). FR 잔기는 본원에 정의된 바와 같은 CDR 영역 잔기 이외의 가변 도메인 잔기이다. 상이한 경쇄 또는 중쇄의 프레임워크 영역의 서열은 종(species) 내에서 비교적 보존된다. 따라서, "인간 프레임워크 영역"은 자연 발생 인간 면역글로불린의 프레임워크 영역과 실질적으로 동일한(약 85% 이상, 통상 90% 내지 95% 이상) 프레임워크 영역이다. 구성분 경쇄 및 중쇄의 조합된 프레임워크 영역인 항체의 프레임워크 영역은 CDR을 위치시키고 정렬하는 역할을 한다. CDR은 주로, 항원의 에피토프에 결합하는 역할을 한다. 이에, 용어 "인간화" 면역글로불린은 인간 프레임워크 영역, 및 비-인간(통상 마우스 또는 래트) 면역글로불린으로부터의 하나 이상의 CDR을 포함하는 면역글로불린을 지칭한다. CDR을 제공하는 비-인간 면역글로불린은 "공여체"로 불리고, 프레임워크를 제공하는 인간 면역글로불린은 "수여체(acceptor)"로 불린다. 불변 영역이 존재할 필요는 없지만, 이들이 존재한다면 이들 불변 영역은 인간 면역글로불린 불변 영역과 실질적으로 동일, 즉, 적어도 약 85% 내지 90%, 바람직하게는 약 95% 이상 동일해야 한다. 따라서, 가능하게는 CDR을 제외하고, 인간화 면역글로불린의 모든 부분은 천연 인간 면역글로불린 서열의 상응하는 부분과 실질적으로 동일하다. 나아가, 인간 프레임워크 영역 내의 하나 이상의 잔기는 최적의 항원-결합 친화성 및 특이성을 보유하기 위해 부모 서열로 역돌연변이화될 수 있다. 이러한 방식으로, 비-인간 부모 항체로부터의 소정의 프레임워크 잔기는 부모 항체의 면역원성을 최소화하면서도 이의 결합 특성을 보유하기 위해 이러한 인간화 항체에 보유된다. 본원에 사용된 바와 같이, 용어 "인간 프레임워크 영역"은 이러한 역돌연변이를 갖는 영역을 포함한다. "인간화 항체"는 인간화 경쇄 및 인간화 중쇄 면역글로불린을 포함하는 항체이다. 예를 들어, 인간화 항체는 예를 들어 하기 정의된 바와 같은 전형적인 키메라 항체를 포괄하지 않을 것인데, 왜냐하면 키메라 항체의 전체 가변 영역이 비-인간이기 때문이다.
본 발명의 모노클로날 항체 및 항체 구축물은 구체적으로 "키메라" 항체(면역글로불린)를 포함하며, 이러한 항체에서, 이들이 요망되는 생물학적 활성을 나타내는 한, 중쇄 및/또는 경쇄의 일부는 특정 종으로부터 유래되거나 특정 항체 클래스(class) 또는 서브클래스에 속하는 항체 내의 상응하는 서열과 동일하거나 상동성인 한편, 사슬(들)의 나머지는 또 다른 종으로부터 유래되거나 또 다른 항체 클래스 또는 서브클래스에 속하는 항체, 뿐만 아니라 이러한 항체의 단편 내의 상응하는 서열과 동일하거나 상동성이다(미국 특허 4,816,567; 문헌[Morrison et al. (1984), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81: 6851-6855]). 본원에서 관심 키메라 항체는 비-인간 영장류(예를 들어 구대륙 원숭이(Old World Monkey), 유인원 등)로부터 유래된 가변 도메인 항원-결합 서열 및 인간 불변 영역 서열을 포함하는 "영장류화" 항체를 포함한다. 키메라 항체를 제조하기 위한 여러 가지 접근법들이 기재되어 있다. 예를 들어 문헌[Morrison et al . (1985), Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81:6851; Takeda et al . (1985), Nature 314:452], Cabilly et al ., 미국 특허 4,816,567; Boss et al ., 미국 특허 4,816,397; Tanaguchi et al ., EP 0171496; EP 0173494; 및 GB 2177096을 참조한다.
용어 "인간 항체" 및 "완전 인간 항체"는 각각, 인간 면역글로불린 라이브러리로부터 또는 하나 이상의 인간 면역글로불린에 대해 트랜스제닉인 동물로부터 단리된 항체를 포함하여 인간 면역글로불린의 아미노산 서열을 갖고, 내인성 면역글로불린을 발현하지 않는 항체; 예를 들어, Xenomouse® 항체 및 미국 특허 5,939,598에서 Kucherlapati 에 의해 기재된 바와 같은 항체를 지칭한다.
용어 "유전자 변경 항체"는, 아미노산 서열이 본래의 항체의 서열로부터 달라진 항체를 의미한다. 항체의 발생 시 재조합 DNA 기술의 적절성(relevance) 때문에, 당업자는 천연 항체에서 확인되는 아미노산 서열로 국한될 필요가 없으며; 항체는 요망되는 특징을 수득하도록 재설계될 수 있다. 가능한 변이(variation)는 많이 있으며, 단지 하나 또는 몇 개의 아미노산에 가해지는 변화로부터 예를 들어 가변 및/또는 불변 영역의 완전한 재설계에 이르기까지 다양하다. 불변 영역에서의 변화는 일반적으로, 보체 고정, 막과의 상호작용 및 다른 효과기 기능, 뿐만 아니라 제조 가능성(manufacturability) 및 점도와 같은 특징을 개선하거나 변경시키기 위해 이루어질 것이다. 가변 영역에서의 변화는 항원 결합 특징을 개선하기 위해 이루어질 것이다.
"Fab 단편"은 하나의 경쇄, 및 하나의 중쇄의 CH1 및 가변 영역으로 구성된다. Fab 분자의 중쇄는 또 다른 중쇄 분자와 이황화 결합을 형성할 수 없다.
"Fab' 단편"은 하나의 경쇄, 및 CH1과 CH2 도메인 사이에서 불변 영역을 더 함유하는 하나의 중쇄를 함유하여, 사슬간 이황화 결합이 2개의 중쇄들 사이에서 형성되어 F(ab')2 분자를 형성할 수 있다.
"F(ab')2 단편"은 2개의 경쇄, 및 CH1과 CH2 도메인 사이의 불변 영역의 일부를 함유하는 2개의 중쇄를 함유하여, 사슬간 이황화 결합이 2개의 중쇄들 사이에서 형성된다.
용어 "Fv 단편" 및 "단일 사슬 항체"는 중쇄 및 경쇄 둘 다로부터의 항체 가변 영역을 함유하지만 불변 영역이 결여된 폴리펩타이드를 지칭한다. 완전 항체와 같이, 이는 특이적인 항원에 선택적으로 결합할 수 있다. Fv 단편은 분자량이 단지 약 25 kDa으로서, 2개의 중쇄 단백질 및 2개의 경쇄로 구성된 보편적인 항체(150 내지 160 kD)보다 훨씬 작고, 심지어 Fab 단편(약 50 kDa, 하나의 경쇄 및 1/2의 중쇄)보다도 작다.
"단일 도메인 항체"는 단일 도메인 Fv 단위, 예를 들어 VH 또는 VL로 구성된 항체 단편이다. 완전 항체와 같이, 이는 특이적인 항원에 선택적으로 결합할 수 있다. 단일-도메인 항체는 분자량이 단지 12 내지 15 kDa으로서, 2개의 중쇄 단백질 및 2개의 경쇄로 구성된 보편적인 항체(150 내지 160 kD)보다 훨씬 작고, 심지어 Fab 단편(약 50 kDa, 하나의 경쇄 및 1/2의 중쇄) 및 단일-사슬 가변 단편(약 25 kDa, 2개의 가변 도메인, 하나는 경쇄로부터이고 하나는 중쇄로부터임)보다도 작다. 최초의 단일-도메인 항체는 낙타과에서 확인된 중쇄 항체로부터 조작되었다. 단일-도메인 항체에 대한 대부분의 연구가 현재로서는 중쇄 가변 도메인을 기반으로 하고 있지만, 경쇄 가변 도메인 및 경쇄로부터 유래된 나노바디 또한, 표적 에피토프에 특이적으로 결합하는 것으로 나타나 있다.
본원에 사용된 바와 같이, 용어 "모노클로날 항체"는 하이브리도마 기술을 통해 생성된 항체로 한정되지 않는다. 용어 "모노클로날 항체"는 이것이 생성되는 방법이 아니라, 임의의 진핵, 원핵 또는 파지 클론을 포함한 단일 클론으로부터 유래된 항체를 지칭한다.
일부 실시형태에서, 본 발명의 항원 결합 단백질은 이것이 유래되는 항체의 인간 항원을 선택적으로 저해한다. 예를 들어, 본원에 기재된 바와 같이 치환된 것과 같은 항체 AF의 서열을 갖는 항원 결합 단백질은 도 1b에서 항체 AF의 항원을 선택적으로 저해할 것이다. 항체 또는 이의 기능성 단편은, 특이적인 수용체의 저해 검정법에서 항체의 IC50이 또 다른 "참조" 리간드 또는 수용체의 저해 검정법에서의 IC50보다 적어도 50배 더 낮을 때, 다른 수용체 또는 리간드에 비해 특이적인 수용체 또는 리간드를 "선택적으로 저해한다". "IC50"은 생물학적 또는 생화학적 기능의 50% 저해를 달성하는 데 필요한 용량/농도이다. 방사성 리간드를 이용하는 경우, IC50은 이러한 방사성 리간드의 특이적인 결합 중 50%를 대체하는 경쟁 리간드의 농도이다. 임의의 특정 성분 또는 길항제의 IC50은, 용량-반응 곡선을 구축하고 특정 기능 검정법에서 효능제 활성을 역전시키는 데 대한 상이한 농도의 약물 또는 길항제의 효과를 검사함으로써 결정될 수 있다. 효능제의 최대 생물학적 반응의 1/2을 저해하는 데 필요한 농도를 결정함으로써, 주어진 길항제 또는 약물에 대한 IC50 값이 계산될 수 있다. 따라서, 임의의 항-PCSK9 항체 또는 이의 기능성 단편에 대한 IC50 값은 예를 들어, 임의의 기능 검정법에서 인간 PCSK9 수용체를 활성화시키는 데 있어서 PCSK9의 최대 생물학적 반응의 1/2을 저해하는 데 필요한 항체 또는 단편의 농도를 결정함으로써 계산될 수 있다. 특이적인 리간드 또는 수용체를 선택적으로 저해하는 항체 또는 이의 기능성 단편은 해당 리간드 또는 수용체에 대한 중화 항체 또는 중화 단편인 것으로 이해된다. 따라서 일부 실시형태에서, 항-PCSK9 항체 또는 기능성 단편은 인간 PCSK9의 중화 항체 또는 단편이다.
본 발명의 치환된 항원 결합 단백질은 이들이 유래되는 비치환된 항체를 교차-차단할 수 있다. 용어 "교차-차단하다," "교차-차단된," 및 "교차-차단성"은 본원에서, 다른 항원 결합 단백질(예를 들어 항체 또는 결합 단편)이 표적(예를 들어 인간 PCSK9)에 결합하는 것을 방해하는 항원 결합 단백질의 능력을 의미하는 데에 상호교환적으로 사용된다. 또 다른 항원 결합 단백질이 표적에 결합하는 것을 항체 또는 결합 단편이 방해할 수 있는 정도, 및 따라서 이것을 교차-차단이라고 할 수 있는지의 여부는 경쟁 결합 검정법을 사용하여 결정될 수 있다. 일부 실시형태에서, 본 발명의 교차-차단성 항원 결합 단백질은 참조 항체가 표적 항원에 결합하는 것을 약 40% 내지 100%, 예컨대 약 60% 내지 약 100%, 구체적으로 바람직하게는 약 70% 내지 100%, 보다 구체적으로 바람직하게는 약 80% 내지 100% 감소시킨다. 교차-차단을 검출하는 데 특히 적합한 정량적 검정법은, 표면 플라즈몬 공명 기술을 사용하여 상호작용의 정도를 측정하는 Biacore 기계를 사용한다. 또 다른 적합한 정량적 교차-차단 검정법은 표적 항원에의 항체들의 결합의 측면에서 이들 항체 사이의 경쟁을 측정하기 위해 FACS-기반 접근법을 사용한다.
용어 "핵산" 또는 "핵산 분자"는 폴리뉴클레오타이드, 예컨대 데옥시리보핵산(DNA) 또는 리보핵산(RNA), 올리고뉴클레오타이드, 중합효소 연쇄 반응(PCR)에 의해 발생된 단편, 및 연결, 절단, 엔도뉴클레아제 작용 및 엑소뉴클레아제 작용 중 임의에 의해 발생된 단편을 지칭한다. 핵산 분자는, 자연 발생 뉴클레오타이드(예컨대 DNA 및 RNA), 또는 자연 발생 뉴클레오타이드의 유사체(예를 들어 자연 발생 뉴클레오타이드의 α-거울상이성질체 형태), 또는 이들 둘 다의 조합인 단량체로 구성될 수 있다. 변형된 뉴클레오타이드는 당 모이어티 및/또는 피리미딘 또는 퓨린 염기 모이어티에 변경을 가질 수 있다. 당 변형은 예를 들어, 하나 이상의 하이드록실기를 할로겐, 알킬기, 아민 및 아지도기로 대체하는 것을 포함하거나, 당은 에테르 또는 에스테르로서 작용화될 수 있다. 더욱이, 완전 당 모이어티는 입체적으로 및 전자적으로 유사한 구조, 예컨대 아자-당 및 탄소환식 당 유사체로 대체될 수 있다. 염기 모이어티에서의 변형의 예는 알킬화된 퓨린 및 피리미딘, 아실화된 퓨린 또는 피리미딘, 또는 다른 잘 알려진 헤테로환식 치환기를 포함한다. 핵산 단량체는 포스포디에스테르 결합 또는 이러한 연결의 유사체에 의해 연결될 수 있다. 포스포디에스테르 연결의 유사체는 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트, 포스포로셀레노에이트, 포스포로디셀레노에이트, 포스포로아닐로티오에이트, 포스포르아닐리데이트, 포스포르아미데이트 등을 포함한다. 용어 "핵산 분자"는 또한, 소위 "펩타이드 핵산"을 포함하며, 이는 폴리아미드 백본에 부착된 자연 발생 또는 변형된 핵산 염기를 포함한다. 핵산은 단일 가닥 또는 이중 가닥일 수 있다.
용어 "핵산 분자의 보체"는 참조 뉴클레오타이드 서열과 비교하여 상보적 뉴클레오타이드 서열 및 역배향을 갖는 핵산 분자를 지칭한다.
용어 "축퇴(degenerate) 뉴클레오타이드 서열"은 폴리펩타이드를 코딩하는 참조 핵산 분자와 비교하여 하나 이상의 축퇴 코돈을 포함하는 뉴클레오타이드의 서열을 나타낸다. 축퇴 코돈은 뉴클레오타이드의 상이한 트리플렛(triplet)을 함유하지만, 동일한 아미노산 잔기를 인코딩한다(즉, GAU 및 GAC 트리플렛은 각각 Asp을 인코딩함).
"단리된 핵산 분자"는 유기체의 게놈 DNA에 혼입되지 않은 핵산 분자이다. 예를 들어, 세포의 게놈 DNA로부터 분리된, 항체의 중쇄를 인코딩하는 DNA 분자는 단리된 DNA 분자이다. 단리된 핵산 분자의 또 다른 예는 유기체의 게놈에 혼입되지 않은 화학적으로-합성된 핵산 분자이다. 특정 종으로부터 단리된 핵산 분자는 해당 종으로부터의 염색체의 완전한 DNA 분자보다 작다.
"핵산 분자 구축물"은 자연상에 존재하지 않는 배열로 조합되고 병치된 핵산의 분절을 함유하도록 인간 개입을 통해 변형된 단일- 또는 이중-가닥의 핵산 분자이다.
"상보적 DNA(cDNA)"는 효소 역전사효소에 의해 mRNA 주형으로부터 형성된 단일-가닥 DNA 분자이다. 전형적으로, mRNA의 일부에 상보적인 프라이머가 역전사의 개시에 이용된다. 당업자는 또한 용어 "cDNA"를, 이러한 단일-가닥 DNA 분자 및 이의 상보적 DNA 가닥으로 구성된 이중-가닥 DNA 분자를 지칭하는 데 사용한다. 용어 "cDNA"는 또한, RNA 주형으로부터 합성된 cDNA 분자의 클론을 지칭한다.
"프로모터"는 구조 유전자의 전사를 지시하는 뉴클레오타이드 서열이다. 전형적으로, 프로모터는 유전자의 5' 비-코딩 영역에서 구조 유전자의 전사 시작 부위에 근접하게 위치한다. 전사의 개시에 작용하는 프로모터 내의 서열 요소는 종종 컨센서스(consensus) 뉴클레오타이드 서열을 특징으로 한다. 이들 프로모터 요소는 RNA 중합효소 결합 부위, TATA 서열, CAAT 서열, 분화-특이 요소(DSE(differentiation-specific element); 문헌[McGehee et al. (1993), Mol. Endocrinol., 7:551]), 환식 AMP 반응 요소(CRE), 혈청 반응 요소(SRE; 문헌[Treisman (1990), Seminars in Cancer Biol., 1:47]), 글루코코르티코이드 반응 요소(GRE), 및 다른 전사 인자를 위한 결합 부위, 예컨대 CRE/ATF(문헌[O'Reilly et al. (1992), J. Biol. Chem., 267:19938]), AP2(문헌[Ye et al. (1994), J. Biol. Chem., 269:25728]), SP1, cAMP 반응 요소 결합 단백질(CREB; 문헌[Loeken (1993), Gene Expr., 3:253]) 및 팔량체 인자(일반적으로 문헌[Watson et al. (1987), eds., Molecular Biology of the Gene, 4th Edition, The Benjamin/Cummings Publishing Company, Inc., 및 Lemaigre et al. (1994), Biochem. J., 303:1] 참조)를 포함한다. 프로모터가 유도성 프로모터인 경우, 전사 속도는 유도제에 반응하여 증가한다. 대조적으로, 프로모터가 구성적 프로모터인 경우, 전사 속도는 유도제에 의해 조절되지 않는다. 억제성 프로모터가 또한 공지되어 있다.
"조절 요소"는 코어 프로모터의 활성을 조정하는 뉴클레오타이드 서열이다. 예를 들어, 조절 요소는 특정 세포, 조직 또는 세포소기관에서 전사를 배타적으로 또는 우선적으로 가능하게 하는 세포 인자와 결합하는 뉴클레오타이드 서열을 함유할 수 있다. 이들 타입의 조절 요소는 보통, "세포-특이적", "조직-특이적" 또는 "세포소기관-특이적" 방식으로 발현되는 유전자와 연관이 있다.
"인핸서"는 전사의 시작 부위에 비해 인핸서의 거리 또는 배향과는 상관없이, 전사의 효율을 증가시킬 수 있는 조절 요소 타입이다.
"이종성 DNA"는 주어진 숙주 세포 내에 천연적으로 존재하지 않는 DNA 분자, 또는 DNA 분자 집단을 지칭한다. 숙주 DNA가 비-숙주 DNA(즉, 외인성 DNA)와 조합되는 한, 특정 숙주 세포에 이종성인 DNA 분자는 숙주 세포 종으로부터 유래된 DNA(즉, 내인성 DNA)를 함유할 수 있다. 예를 들어, 전사 프로모터를 포함하는 숙주 DNA 분절에 작동적으로 연결되는 폴리펩타이드를 인코딩하는 비-숙주 DNA 분절을 함유하는 DNA 분자는 이종성 DNA 분자인 것으로 여겨진다. 역으로, 이종성 DNA 분자는 외인성 프로모터에 작동적으로 연결된 내인성 유전자를 포함할 수 있다. 또 다른 예시로서, 야생형 세포로부터 유래된 유전자를 포함하는 DNA 분자는, 야생형 유전자가 결여된 돌연변이체 세포 내로 해당 DNA 분자가 도입된다면, 이종성 DNA인 것으로 여겨진다.
"발현 벡터"는 숙주 세포에서 발현되는 유전자를 인코딩하는 핵산 분자이다. 전형적으로, 발현 벡터는 전사 프로모터, 유전자 및 전사 종결자를 포함한다. 유전자 발현은 통상 프로모터의 제어 하에 놓이고, 이러한 유전자는 프로모터에 "작동적으로 연결된다"라고 한다. 유사하게는, 조절 요소 및 코어 프로모터는, 이러한 조절 요소가 상기 코어 프로모터의 활성을 조정한다면, 작동적으로 연결된 것이다.
"재조합 숙주"는 클로닝 벡터 또는 발현 벡터와 같은 이종성 핵산 분자를 함유하는 세포이다. 본 맥락에서, 재조합 숙주의 일례는 발현 벡터로부터 본 발명의 길항제를 생성하는 세포이다. 대조적으로, 이러한 길항제는 상기 길항제의 "천연 공급원"이며 발현 벡터가 결여된 세포에 의해 생성될 수 있다.
용어 "아미노-말단" 및 "카르복실-말단"은 본원에서 폴리펩타이드 내의 위치를 나타내는 데 사용된다. 문맥이 허용하는 경우, 이들 용어는 폴리펩타이드의 특정 서열 또는 일부와 관련하여, 근접성 또는 상대 위치를 나타내는 데 사용된다. 예를 들어, 폴리펩타이드 내의 참조 서열에 대해 카르복실-말단에 위치한 소정의 서열은 상기 참조 서열의 카르복실 말단에 근접하게 위치하지만, 완전한 폴리펩타이드의 카르복실 말단에 필수적으로 있는 것은 아니다.
"융합 단백질"은 적어도 2개의 유전자의 뉴클레오타이드 서열을 포함하는 핵산 분자에 의해 발현되는 하이브리드 단백질이다. 예를 들어, 융합 단백질은 친화성 매트릭스 또는 또 다른 관심 표적에 결합하는 폴리펩타이드와 융합된 항체 중쇄의 적어도 일부를 포함할 수 있다.
용어 "수용체"는 "리간드"라고 하는 생물활성(bioactive) 분자에 결합하는 세포-결합 단백질을 나타낸다. 이러한 상호작용은 세포 상에서 리간드의 효과를 매개한다. 수용체는 막-결합성, 세포액성(cytosolic) 또는 핵성(nuclear); 단량체성(예를 들어 갑상선 자극 호르몬 수용체, 베타-아드레날린성 수용체) 또는 다량체성(예를 들어 PDGF 수용체, 성장 호르몬 수용체, IL-3 수용체, GM-CSF 수용체, G-CSF 수용체, 에리스로포이에틴 수용체 및 IL-6 수용체)일 수 있다. 막-결합성 수용체는 세포외 리간드-결합 도메인, 및 전형적으로 신호 전달에 관여하는 세포내 효과기 도메인을 포함하는 다중(multi)-도메인 구조를 특징으로 한다. 소정의 막-결합성 수용체에서, 세포외 리간드-결합 도메인 및 세포내 효과기 도메인은 완전한 기능성 수용체를 포함하는 개별 폴리펩타이드에 위치한다. 일반적으로, 수용체에의 리간드의 결합은 수용체에서 형태 변화(conformational change)를 초래하여, 효과기 도메인과 세포 내의 다른 분자(들) 사이의 상호작용을 유발하며, 이는 다시 세포의 대사 변경을 초래한다. 수용체-리간드 상호작용과 종종 연결된 대사 과정(event)은 유전자 전사, 인산화, 탈인산화, 증가된 환식 AMP 생성, 세포내 칼슘의 동원, 막지질의 동원, 세포 접착, 이노시톨 지질의 가수분해 및 인지질의 가수분해를 포함한다.
용어 "발현"은 유전자 생성물의 생합성을 지칭한다. 예를 들어, 구조 유전자의 경우, 발현은 구조 유전자를 mRNA로 전사시키고, mRNA를 하나 이상의 폴리펩타이드로 번역하는 것을 수반한다.
용어 "보체/항-보체 쌍"은 적절한 조건 하에 비-공유 결합된, 안정한 쌍을 형성하는 비-동일한(non-identical) 모이어티를 나타낸다. 예를 들어, 비오틴과 아비딘(또는 스트렙타비딘)은 보체/항-보체 쌍의 원형적(prototypical) 구성원이다. 다른 예시적인 보체/항-보체 쌍은 수용체/리간드 쌍, 항체/항원(또는 합텐 또는 에피토프) 쌍, 센스/안티센스 폴리뉴클레오타이드 쌍 등을 포함한다. 보체/항-보체 쌍의 후속적인 해리가 바람직한 경우, 이러한 보체/항-보체 쌍은 바람직하게는 109 M-1 미만의 결합 친화성을 가진다.
"검출 가능 표지"는 진단에 유용한 분자를 생성하기 위해 항체 모이어티에 공액될 수 있는 분자 또는 원자이다. 검출 가능 표지의 예로는, 킬레이터, 광활성제(photoactive agent), 방사성 동위원소, 형광제, 상자성 이온 또는 다른 마커 모이어티가 있다.
용어 "친화성 태그"는 본원에서, 제2 폴리펩타이드의 정제 또는 검출을 제공하거나 기질에의 제2 폴리펩타이드의 부착을 위한 부위를 제공하기 위해 제2 폴리펩타이드에 부착될 수 있는 폴리펩타이드 분절을 나타내는 데 사용된다. 원칙적으로, 항체 또는 다른 특이적인 결합제가 이용 가능한 임의의 펩타이드 또는 단백질이 친화성 태그로서 사용될 수 있다. 친화성 태그는 폴리히스티딘 트랙트, 단백질 A(문헌[Nilsson et al. (1985), EMBO J. 4:1075; Nilsson et al. (1991), Methods Enzymol., 198:3]), 글루타티온 S 전이효소(문헌[Smith et al. (1988), Gene, 67:31]), Glu-Glu 친화성 태그(문헌[Grussenmeyer et al (1985)., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:7952]), 성분 P, FLAG® 펩타이드(문헌[Hopp et al. (1988), Biotechnology 6:1204]), 스트렙타비딘 결합 펩타이드, 또는 다른 항원성 에피토프 또는 결합 도메인을 포함한다. 일반적으로, 문헌[Ford et al. (1991), Protein Expression and Purification, 2:95]를 참조한다. 친화성 태그를 인코딩하는 DNA 분자는 상업적 공급 회사(예를 들어 Pharmacia Biotech, 미국 뉴저지주 피스카타웨이 소재)로부터 입수 가능하다.
용어 "산성 잔기" 및 "음전하성 잔기"는 산성 기를 포함하는 측쇄를 갖는 아미노산 잔기를 지칭한다. 예시적인 산성 또는 음전하성 잔기는 D 및 E를 포함한다.
용어 "아미드 잔기"는 산성 기의 아미드 유도체를 포함하는 측쇄를 갖는 아미노산을 지칭한다. 예시적인 아미드 잔기는 N 및 Q를 포함한다.
용어 "방향족 잔기"는 방향족 기를 포함하는 측쇄를 갖는 아미노산 잔기를 지칭한다. 예시적인 방향족 잔기는 F, Y 및 W를 포함한다.
용어 "염기성 잔기" 및 "양전하성 잔기"는 염기성 기를 포함하는 측쇄를 갖는 아미노산 잔기를 지칭한다. 예시적인 염기성 또는 양전하성 잔기는 H, K 및 R을 포함한다.
용어 "친수성 잔기" 및 "극성 비하전된 잔기"는 극성 기를 포함하는 측쇄를 갖는 아미노산 잔기를 지칭한다. 예시적인 친수성 또는 극성 비하전된 잔기는 C, S, T, N 및 Q를 포함한다.
용어 "비-작용성 잔기" 및 "작은 소수성 잔기"는 산성, 염기성 또는 방향족 기가 결여된 측쇄를 갖는 아미노산 잔기를 지칭한다. 예시적인 비-작용성, 작은 소수성 잔기는 M, G, A, V, I, L 및 노르류신(Nle)을 포함한다.
본 발명의 일 양태는 PCSK9 결합 폴리펩타이드에 관한 것이다. "PCSK9-결합 폴리펩타이드"는 전구단백질 전환효소 서브틸리신(subtilisin)/켁신(kexin) 타입 9(PCSK9) 단백질에 결합하는 폴리펩타이드를 의미한다. 일부 경우, PCSK9-결합 폴리펩타이드는 PCSK9가 저밀도 지질 수용체(LDLR)에 결합하는 것을 차단한다. 이러한 차단성 PCSK9-결합 폴리펩타이드는 모노클로날 항체(mAb)일 수 있고, 다음 중 하나일 수 있다:
a. SEQ ID NO: 136의 아미노산 서열을 갖는 중쇄 폴리펩타이드 및 SEQ ID NO: 134의 아미노산 서열을 갖는 경쇄 폴리펩타이드를 포함하는 mAb(항체 AK, 에볼로쿠맙) 또는 이의 항원-결합 단편;
b. PCSK9에의 결합에 대해 에볼로쿠맙과 경쟁하는 mAb;
c. 하기를 포함하는 mAb:
i. 하기 상보성 결정 영역(CDR)을 포함하는 중쇄 폴리펩타이드: SEQ ID NO: 376 또는 378에서 CDR1인 중쇄 CDR1; SEQ ID NO: 376 또는 378에서 CDR2인 중쇄 CDR2; SEQ ID NO: 376 또는 378에서 CDR3인 중쇄 CDR3, 및
ii. 하기 CDR을 포함하는 경쇄 폴리펩타이드: SEQ ID NO: 377 또는 379에서 CDR1인 경쇄 CDR1; SEQ ID NO: 377 또는 379에서 CDR2인 경쇄 CDR2; 및 SEQ ID NO: 377 또는 379에서 CDR3인 경쇄 CDR3;
d. PCSK9의 잔기 S153, D188, I189, Q190, S191, D192, R194, E197, G198, R199, V200, D224, R237, 및 D238, K243, S373, D374, S376, T377, F379, I154, T1897, H193, E195, I196, M201, V202, C223, T228, S235, G236, A239, G244, M247, I369, S372, C375, C378, R237 및 D238 중 적어도 하나에 결합하는 mAb로서, 상기 PCSK9는 SEQ ID NO: 369의 아미노산 서열을 포함하는, mAb;
e. 하기를 포함하는 항체에 의해 결합되는 에피토프와 중첩되는 PCSK9 상의 에피토프에서 PCSK9에 결합하는 mAb:
i. SEQ ID NO: 136에서 아미노산 서열의 중쇄 가변 영역; 및
ii. SEQ ID NO: 134에서 아미노산 서열의 경쇄 가변 영역, 및
iii. 여기서, mAb의 에피토프는 저밀도 지질단백질 수용체(LDLR) 단백질의 상피 성장 인자-유사 반복부 A(EGF-A) 도메인이 결합하는 부위와 추가로 중첩됨(문헌[Horton, Cohen, & Hobbs (2007), Trends Biochem Sci, 32(2), 71-77. doi: 10.1016/j.tibs.2006.12.008; Seidah & Prat (2007), J Mol Med (Berl), 85(7), 685-696];
f. 하기 상보성 결정 영역(CDR)을 포함하는 중쇄 폴리펩타이드를 포함하는 mAb:
i. SEQ ID NO: 373, 374 및 375의 아미노산 서열을 각각 갖는 중쇄 CDR1, CDR2 및 CDR3; 및
ii. SEQ ID NO: 369, 370 및 371의 아미노산 서열을 각각 갖는 경쇄 CDR1, CDR2 및 CDR3; 또는
g. SEQ ID NO: 378의 중쇄 변이체 영역 서열 및 SEQ ID NO: 379의 경쇄 변이체 영역 서열을 포함하는 mAb.
바람직한 실시형태
전반적인 서열 특징과 점도의 상관관계
본 명세서의 실시예 1에 보고된 연구의 주요 목적은 고농도 모노클로날 항체 제제의 점도를 감소시킬 목적으로, 점도와 IgG 모노클로날 항체의 아미노산 서열 또는 전반적인 서열 특징 사이의 연관성을 식별하는 것이었다. 이를 위해, 43개의 상이한 모노클로날 항체의 점도값을 150 mg/ml에서 측정하여, 5 내지 33 cP의 광범위한 값을 제공하였다(도 1a 및 도 1b). 모노클로날 항체의 주요 전반적인 서열 특징, 예컨대 경쇄 및 중쇄 유형, 이들의 서브타입(생식선), 및 pI는 계산되었으며 점도와 상관관계가 있었으나, 유의한 상관관계를 즉시 드러내지는 않았다(도 1a 및 도 1b). IgG 이소타입 내의 다형성(polymorphism)(알로타입으로 공지됨)은 인간으로부터 유래된 혈청학적 시약을 사용하여 기재되었고(문헌[Ropartz, C., Schanfield, M. S., and Steinberg, A. G. (1976), "Review of the notation for the allotypic and related markers of human immunoglobulins," WHO meeting on human immunoglobulin allotypic markers, held 16-19 July 1974, Rouen, France; report amended June 1976, J Immunogenet. 3, 357-362]), 중쇄 및 경쇄의 보존 영역 내의 몇몇 특이적인 위치에서 소정의 아미노산 잔기와 상관관계가 있었다(문헌[Jefferis and Lefranc (2009) Human immunoglobulin allotypes: possible implications for immunogenicity, mAbs 1, 332-338])(문헌[Vidarsson, G., Dekkers, G., and Rispens, T. (2014) IgG subclasses and allotypes: from structure to effector functions, Front Immunol. 5, 1-17]). 알로타입은 경쇄 및 중쇄의 다른 식의(otherwise) 보존 영역에 소수의 상이한 잔기(하기 기재됨)를 도입한다. 이러한 연구에 사용된 모든 카파 경쇄는 동일한(3) 알로타입(EU 넘버링에서 잔기 A153, V191을 특징화함)이었다. 모든 IgG2 중쇄 경쇄는 동일한 (n-) 알로타입이었다(P189를 특징화함). 4개의 IgG1 중쇄 알로타입이 기재되었다(EU 넘버링에서 하기 관련된 잔기를 포함함): f(R214); z(K214); a(D356, L358) 및 x(G431)(Jefferis & Lefranc, 2009)(Vidarsson et al., 2014). 위치 E356, M358 및 A431에 대안적인 잔기를 갖는 IgG1 중쇄는, 이들 아미노산 잔기가 다른 IgG 서브클래스에 존재하기 때문에 알로타입을 구성하지 않는다. IgG1 알로타입(x)은 이 연구에 존재하지 않았으며; 모든 IgG1 중쇄는 A431을 가졌다. IgG1 중쇄 알로타입(f), (z), (a) 및 관련된 잔기는 도 1a 및 도 1b에서 보여진다.
도 1a 및 도 1b에서 항체는 점도에 의해 분류된다. 도 1a 및 도 1b의 표는 모노클로날 항체 명칭, 측정된 농도, 측정된 점도값, 및 타입, 서브타입 및 계산된 pI를 포함한 전반적인 서열 매개변수를 포함한다. IgG1 타입, 람다 경쇄 및 VH1 중쇄 서브타입은 볼드체로 되어 있다.
IgG1과 IgG2 중쇄 및 카파와 람다 경쇄는 점도 범위에 걸쳐 보다 고르게 분포되었다. 서브타입의 서열 평가는 몇몇 고점도 및 저점도 서브타입 쌍: VH1|1-18 및 VH1|1-02; VH3|3-33 및 VH3|3-07; VK3|L16 및 VK3|A27을 드러내었으며, 이때 점도 잔기와 상관 시, 무작위 상관관계 확률은 각각 0.0002; 0.076 및 0.031에서였다(도 2). 이 연구는 D 및 J 영역 서열과 점도의 상관관계를 알아보았으나, 유의한 상관관계를 확인하지 못하였다.
도 2는 점도에 대한 무작위 상관관계 확률을 가리키는 p-값을 보여준다. 도 2는 또한, 고점도 서브타입에서의 잔기, Aho 넘버링에서의 위치, 및 저점도 서브타입에서의 잔기를 보여준다.
VH1 서브타입의 14개 IgG 분자 중에서, 고점도는 VH1 1-18 서브타입과 강하게 연관이 있었고, 저점도는 VH1 1-01 서브타입과 강하게 연관이 있었으며, 이때 이의 매우 낮은 확률은 우발 동시 계수(random coincidence)였다(도 9).
2개의 서브타입과 점도 사이의 상관관계를 평가하기 위해, 스튜던츠 t-테스트에 의한 동일한 집단 평균의 확률을, 양측 분포(two-tailed distribution)와 함께 t-테스트 2-표본 동일 변이체를 사용하여 VH1|1-02 대 VH1|1-18, VH3|3-33 대 VH3|3-07 및 VK3|L16 대 VK3|A27에 대해 계산하였다.
경쇄 VK3|L16과 고점도 및 VK3|A27과 저점도의 연관성(t-테스트, p=0.031)이 검출되었다(도 2, 도 12, 좌측면). VK3|L16 대 VK3|A27 및 VH3|3-33 대 VH3|3-07은 이 명세서에서 더 논의된다. VH1|1-18 및 VH1|1-02는 점도에 대한 강한 상관관계로 인해, 하기와 같이 더 평가되었다. 다음 단계로서, 43개의 항체 사슬 서열을 하기와 같이 정렬하고, 평가하였다.
서열 정렬 및 넘버링 시스템
하기를 포함한 몇몇 IgG 넘버링 시스템이 존재한다:
· EU--문헌[Edelman et al. (1969), "The covalent structure of an entire gamma immunoglobulin molecule," Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A . 63, 78-85];
· Kabat--문헌[Kabat et al. (1991), Sequences of proteins of immunological interest, Fifth Edition. NIH Publication No. 91-3242];
· Chothia--문헌[Chothia et al. (1992), "Structural repertoire of the human VH segments," J.Mol.Biol. 227: 799-817; Tomlinson et al., (1995), "The structural repertoire of the human V kappa domain. EMBO J. 14: 4628-4638];
· Aho--문헌[Hoenegger et al. (2001), "Yet another numbering scheme for immunoglobulin variable domains: an automatic modeling and analysis tool," J. Mol. Biol . 309, 657-670];
및 기타. 상기 언급된 모든 4개의 넘버링 시스템은 도 9에 예시되어 있으며, 우측면은 VH1 서브타입의 중쇄의 프레임 영역 3에 대한 것이다. 상이한 항체의 가변 도메인의 400개 초과의 결정 구조로부터 유래된 아미노산 잔기의 공간 위치를 이용함으로써 Aho 체계를 구축하였다. A. Honegger(상기 인용)에 의해 정의된 Aho 넘버링 시스템이 3D 구조-기반 넘버링 시스템이기 때문에, 이 연구에 사용하였다. 이는 CDR 내의 잔기에 대해 특이적으로 이점을 생성하며: 동일한 숫자를 가진 잔기는 유사한 공간 영역에 위치하고, 상이한 IgG 서열에 걸쳐 비교될 만하다. Aho 넘버링 체계에서 잔기 위치가 3차 구조와 관련이 있기 때문에, 이들 위치는 생물물리학적 및 생화학적 특성, 및 가능하게는 점도와 더 연관될 것이다. Aho 넘버링은 이 명세서의 몇몇 표에 보여진 바와 같이 다른 주요 넘버링 체계와 함께 정렬되고 상관관계를 이룬다. 4개의 넘버링 시스템 중 임의의 시스템은 바람직한 아미노산 치환을 식별하기 위해 상호교환적으로 사용될 수 있다. 상이한 넘버링 시스템에 대해 중쇄 가변 영역은 하기 잔기: 149 Aho, 117 EU, 113 Kabat, 113 Chothia에서 종결된다. 경쇄 가변 영역은 149 Aho, 107 EU, 107 Kabat, 107 Chothia에서 종결된다. Aho 넘버링은, Kabat 및 Chothia에서와 같이 CDR 잔기에 문자를 사용하는 대신(예를 들어 Kabat 및 Chothia에 대해 82b), CDR 영역에 더 많은 수를 할당한다. 그 결과, 동일한 잔기에 대한 Aho 수는 종종 더 길다. 각각의 가변 영역은 하기 서열: FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4에서 3개의 상보성 결정 영역(CDR) 및 4개의 프레임워크 영역(FR)을 포함한다. CDR이 항원에의 결합을 목적으로 큰 서열 다양성을 제공하는 한편(CDR3 영역이 가장 자주 결합함), FR 서열은 보다 보존되고, 단지 소수의 차이를 함유하며, 이들 차이 중 일부는 서브타입 특이적이다.
점도에 대한 서열의 상관관계
전반적인 서열 특징을 평가하는 것 외에도, 가변 영역의 서열을 정렬하여, 점도 차이의 원인이 되는 잔기를 식별하였다. 시각적 관찰 외에도, 소프트웨어 기계 학습 알고리즘을 개발하고, 적용하여, 점도에 가장 많이 영향을 주는 잔기를 식별하고 이들의 서열로부터 항체의 점도값을 예측하였다. Aho-정렬 위치에서 잔기의 전하 및 소수성을 사용하여 예측 모델을 구축하였다.
중쇄 VH1 서열 정렬, 및 고-점도 VH1 1-18 서브타입의 5개 서열 및 저-점도 VH1 1-02 서브타입 분자의 5개 서열의 평가는, 단지 4개의 잔기가 2개 서브타입들 사이에서 프레임에서 상이하였으며, 4개 모두 프레임워크 3에 위치하였음을 드러내었다(도 9, 우측면). CDR이 종종 항원에의 결합에 관여하고 점도를 감소시키려는 목적으로 CDR을 조작하는 것(CDR 내의 잔기를 돌연변이화하는 것)은 효능 상실이라는 유의한 위험을 가질 것이기 때문에, 다수의 서열 차이가 CDR에서 관찰되었으나 이들 차이는 연구 범위를 벗어났다. 점도와 FR3 내의 잔기에서 서브타입-관련 차이는, 하기 아미노산 치환: T82R, T86I, R94S 및 S95R이 Aho 넘버링에서 점도를 잠재적으로 감소시킬 수 있을 것임을 가리켰다. 소프트웨어 알고리즘은 4개의 치환을 지지하였고, 또한, 하기 2개의 치환: FR1에서 경쇄 G13V/L 및 CDR2의 엣지로부터 중쇄 S59R/K가 점도 감소와 상관관계가 있음을 제안하였으며: 후자의 상관관계는 VH3 서브타입에서 관찰되었다(도 9, 우측면).
제안된 아미노산 치환의 인 실리코(in silico) 평가
VH T82R. R82는 VH1-02에서 고빈도로 발생한다. IgG 구조 모델링은, 중쇄 Aho 위치 82가 글로불린 폴드(fold)의 상위(upper) 코어의 일부이고 항원과 전형적으로 접촉하지는 않지만 문헌[Ewert et al. (2003), "Biophysical properties of human antibody variable domains," J. Mol. Biol . 325: 531-553]에 따르면 CDR 백본과 직접적으로 접촉할 수 있음을 가리켰다. HC82는 CDR1 및 CDR2 백본 아미드와 매우 보존된 주쇄 - 측쇄 H-결합 상호작용을 가진다(상기 Honegger et al.). R82는 또한, CDR2 루프의 백본 산소 원자와 배위될 수 있다.
VH R94S 및 S95R. S94 및 R95는 VH1-02에서 고빈도로 발생한다. 이들 위치는 표면 상에서 항원 결합 도메인으로부터 멀리 위치하고, 하위 코어의 일부인 것으로 여겨진다.
T86I. I86은 VH1-02에서 고빈도로 발생한다. 데이터는 표면 상의 소수성 잔기(I)를 친수성 잔기(T)로 치환하는 것을 제안하며, 이러한 치환은 잠재적으로 응집을 초래할 수 있다.
VH S59R/K- VH1 및 VH3 내에서, 친수성 위치 59는 더 낮은 점도와 연관이 있다. VH S59R/K 위치는 높은 구조적 및 서열 가변성을 가지며, 용매에 꽤 노출되고, 상위 코어의 일부이며 결합에 영향을 줄 수 있는 잔기 58과 60 사이에 직접적으로 존재한다. 이러한 구조는 잔기 58 및 60(특히 묻힌다면(buried) 58)에서의 차이에 직접적으로 의존할 가능성이 있을 것이다. R/K59는 낮은 발생 빈도(2% 미만)을 가지고, 아미노산 잔기 빈도 분석에 따르면 VH1에서 관찰되지 않았다. 모든 R/K59는 1개(VH4)를 제외하고는 VH3 데이터세트 내에 수용된다.
VL G13V/L- 이 위치는 구조적으로 묻혀 있고, 상기 Ewert et al.에 따르면 가변 도메인의 하위 코어의 일부이다. 이러한 관점에서, 더 많은 소수성 잔기로의 G13V 돌연변이는 코어를 더 강하게 만들어야 한다.
요약하면, 인 실리코 서열 분석은, 제안된 돌연변이가 생리학적 또는 약한 산성 제제 조건 하에 임의의 추가의 글리코실화 부위 또는 신속한 분해에 취약한 부위를 도입하지 않음을 가리켰다(NG, NS, NT, DG, DH). VH T82R, T86I, R94S 및 S95R 돌연변이는 프레임 영역 3에서 서브타입 VH1-18로부터 VH1-02로의 스위치를 제공할 것이며, 따라서, 이들 돌연변이는 임의의 비통상적인 또는 희귀한 모티프를 도입하지 않아야 한다. VH S59R 및 VL G13V 돌연변이의 첨가는 VH1 외부의 VH3 서브타입으로부터 소프트웨어에 의해 제안되었다. HC CDR2의 엣지에 존재하는 S59R을 제외하고 돌연변이 부위 중 어느 것도 결합 영역에 가까이 위치하지 않으며, 따라서, 효능/결합을 방해할 약한 위험성을 나타낸다. 아르기닌은 위치 59에서 매우 낮은 빈도의 잔기(R59)이며, 따라서 이의 영향을 예측하기란 어렵다. T86I는 응집 위험이 높은 것으로 식별되었으며, 돌연변이 목록으로부터 제거되었다.
생성된 돌연변이체 및 이들의 발현, 효능, 화학적 변형, 글리코실화 및 점도.
상기 고려사항들을 참작하여, 효능을 유지하면서도 점도를 감소시킬 목적으로 고-점도 VH1-18 서브타입의 2개의 IgG2 항체 AK 및 AO에 대해 몇몇 돌연변이체를 생성하였다(도 9b). 도 9b는 모노클로날 항체 돌연변이체 기호 및 중쇄 및 경쇄 상에서의 관련 돌연변이를 포함한다.
S59R 치환을 함유하는 AK 돌연변이체 둘 다에서 매우 낮은 발현 수준이 관찰되었다(도 3에서 *로 표시되어 있음). 생존력 및 생존 세포 밀도 또한, 이들 중 하나인 AK(59 82 94 95 13)에서 낮았다. 한편, S59R 치환을 함유하는 항체 AO 돌연변이체는 AO 부모 분자의 역가와 비교될 만한 역가를 생성하였다. 중쇄 위치 59에 대한 일반적인 결론을 내리기에는 통계가 충분하지 않았지만, 이러한 사례는 단일 아미노산 치환이 발현을 급격하게 변경시킬 수 있음을 제안하였다. 산화, 탈아미드화, 이성질체화 및 글리코실화 패턴을 포함한 화학적 변형은 펩타이드 맵핑 LC-MS 분석에 의해 측정된 바와 같이 2개의 부모 및 이들의 돌연변이체 사이에서 유사하였다.
PCSK9에의 결합을 통해 측정된 부모 AK 항체 및 2개의 잘-발현된 돌연변이체의 효능값은 유사하였다(도 4). 마지막으로, AK 및 AO 돌연변이체의 측정된 점도값은 예측된 바와 같이 부모보다 유의하게 낮았다(도 5). 예를 들어, AK(82 94 95) 돌연변이체는 부모의 점도의 39%에 불과하였다. S59R 치환을 함유하는 AO 돌연변이체 둘 다의 점도는 훨씬 더 낮아서, 부모의 점도의 대략 28%였다(도 5). S59R 돌연변이체는 AK 항체에 대해서는 잘 발현되지 않았으며, 점도가 측정될 수 없었다. 비교를 위해 VH1|1-18 및 VH1|1-02 생식선 서브패밀리에 대한 평균 점도값을 부가하였다. CDR에서 8개 및 프레임 영역에서 4개를 포함하여 총 12개의 일관된 서열 차이를 VH1|1-18과 VH1|1-02 서브패밀리 사이에서 식별하였다(도 9). 모두 프레임 영역 3에 있는 3개의 부위를 고점도 VH1|1-18로부터 저점도 VH1|1-02로의 아미노산 치환을 위해 선택하였다. 프레임에서의 3개의 점 돌연변이를 VH1|1-18 서브패밀리의 2개의 mAb(AK 및 AO)에 도입하여, 이들 잔기만 VH1|1-02에 존재하는 잔기로 전환시켰다. 점도에서 가능한 2배 저하를 달성할 가능성이 이론적으로 낮긴(3/12) 하였지만, 이들 치환은 오히려 예상치 못하게 바람직한 결과를 낳았으며: 단지 3개의 치환으로도, 점도는 2개의 항체 분자 모두에서 대략 2배 저하되었다.
점도 대 pI
pI로부터의 점도 의존성이 43개의 mAb로 이루어진 전체 세트로부터 명확하지 않더라도, VH1 서브세트는, pH 5.2 제제에서 mAb의 pI 값이 pI 8.5로부터 pI 6.5까지 저하될 때, 점도는 꾸준히 증가하였음을 명확하게 보여주었다(도 6). 고-점도 VH1|1-18 mAb와 저-점도 VH1|1-02 mAb 사이의 시프트(shift) 또한 알 수 있다. 예측된 바와 같이, AK 및 AO 항체의 T82R, R94S 및 S95R 돌연변이체는 도면 상에서 VH1|1-18로부터 VH1|1-02 영역까지 점도 스케일을 따라 대략 2배 아래로 이동하였다(도 6). 돌연변이체 AO(59 82 94 95) 및 AO(59 82 94 95 13)는 훨씬 더 낮은 점도 및 약간 더 높은 pI까지 이동하였고, 이는 VH1 그룹의 외부로부터 채택된 S59R 치환이 점도를 더 감소시키는 데 효과적이었음을 가리켰다. 안타깝게도, R59를 함유하는 AK 돌연변이체는 잘 발현되지 않았으며, 이는 위치 59에서 저-빈도 아르기닌 잔기의 출현이 발현에 영향을 줄 수 있음을 제안하였다.
pH가 pI보다 낮은 제제(예를 들어 이 연구에서 사용된 약한 산성 제제)에서 항체에 대한 pI의 증가는 전형적으로, 점도 저하를 초래한다. 이러한 결과는, 양으로 하전된 항체 분자의 쿨롱 반발에 의해 설명될 수 있다. 항체를 포함한 단백질은 고농도에서 불량한 용해성 및 높은 침전율을 보여주며, 이는 점도에 영향을 주는 것으로 공지되어 있다. 프레임 영역 3에서 VH1|1-18로부터 VH1|1-02로의 치환이 점도에서 2배 저하 및 항체 pI 값에서 단지 미미한 증가를 초래하였으며, 이는, 전하 증가가 아니라 그보다는 일부 구조적 변화가 점도의 급격한 저하의 원인일 수 있음을 제안한다는 것이 흥미롭다.
수백 개의 Fab 도메인의 결정학 구조를 겹친 후, 모든 VH 및 VL 위치에 대한 수소 결합 상호작용이 식별되었다(문헌[Honegger et al. (2001), "Yet another numbering scheme for immunoglobulin variable domains: an automatic modeling and analysis tool," J. Mol. Biol . 309: 657-670]). 데이터는, 식별된 위치가 주쇄 및 측쇄 수소 결합 상호작용을 통해 다른 잔기에 결합될 수 있음을 가리킨다(타입 III AK 및 AO 항체 분자에 대해). 예를 들어, 일부 VH 타입 III 면역글로불린 구조에서 94는 77에 결합되었고; 95 내지 18에; 59는 67, 66, 65, 61, 60에, 그리고 VL13은 146, 148에 결합되었다. 따라서, 이들 위치에서 잔기 치환은 상호작용 및 면역글로불린 폴드를 변화시킬 수 있다. AK 항체의 결정 구조(문헌[Jackson et al ., 2007), "The Crystal Structure of PCSK9: a Regulator of Plasma LDL-Cholesterol," Structure 15: 545-52])는, 모든 3개의 위치 82, 94 및 95가 Fab 영역의 바로 주변부 상에 존재하고, 용매 및 다른 항체 분자에 노출됨을 제안한다. VH3(도 11) 및 VK3(도 12)에서 FR3 위치의 변화가 또한, 점도와 상관관계가 있다. 점도에서 이들의 역할에 대한 한 가지 설명은, FR3에서 이들 위치가 분자의 주변부 상에 존재하고 주사 바늘을 통한 움직임과 연관된 전단 응력 및 점도 측정 동안 분자간 상호작용에 능동적으로 연계된다는 것이다.
더 낮은 점도 VK3|A27 및 더 높은 점도 VK3|L16 항체는 점도와 pI 사이에서 역의 상관관계를 보여주었다(도 8, 도 12).
pI는 매우 강하지는 않았지만 일부 경우에서는 점도의 유용한 예측자였음을 언급할 필요가 있다. 일반적으로, pI가 증가함에 따라 점도는 저하되었으며, pI를 고려할 것이다. 예를 들어, VH3|3-33의 점도값은 낮아졌으며, 더 높은 pI 항체 분자에 대해서는 VH3|3-07과 유사하였다(도 7). 따라서, VH3|3-33의 점도를 예측할 때, pI가 고려될 것이다.
VH3 및 VK3 생식선 패밀리에 대해 제안된 점도 감소
고-점도 VH3|3-33 및 저-점도 VH3|3-07 항체는 평균적으로, 큰 점도 차이를 갖는 한편, 유사한 pI 범위를 차지한다(도 7). 예상치 못하게 평균적으로, VH3|3-07은 더 낮은 점도 및 또한 더 낮은 pI를 가졌으며, 이는 문헌에서 보고된 전형적인 거동과 모순된다. 하기 VH3|3-33 분자의 점도값은 돌연변이: AQ, AM, AI, AG에 의해 감소될 수 있다.
고-점도 VK3|L16 및 저-점도 VK3|A27 경쇄를 갖는 모노클로날 항체가 또한, 큰 점도 차이를 보여준 한편, pI 값에서는 비교적 작은 차이를 보여주었고, 이는 다시, 서브패밀리들 사이에서의 구조적 차이를 제안한다(도 8). 하기 VK3|L16 분자의 점도값은 도 11에서 기재된 돌연변이: 항체 AQ 및 AF에 의해 감소될 수 있다.
전반적인 서열 특징의 분석은, 하기 고/저점도 쌍: VH1|1-18 / VH1|1-02; VK3|L16 / VK3|A27; 및 VH3|3-33 / VH3|3-07을 드러내었으며, 이때 상관관계의 p-값은 각각 0.0002, 0.031 및 0.076에서였다(도 2). 점도 차이와 상관관계가 있는 서열 위치 및 잔기가 식별되었으며, 점도 저하 점 돌연변이에 대한 후보로서 고려될 수 있다(도 2). VH 및 VL 패밀리와 점도의 수행된 상기 상관관계는, 이론적으로 하기 VH 및 VL 조합: VH에 대해 VH2, VH3|3-07, VH1|1-02 및 VL에 대해 VK3, VL1, VK3|A27을 갖는 항체가 최저 점도를 가질 것임을 가리킨다(도 13a 및 도 13b). VH1|1-02 및 VK3|A27 배열의 3개의 항체는 사실상 본 발명자들의 세트에서 발생하였고, 이들은 실제로 낮은 점도값: B(5.6 cP), J(8.2 cP), Y(12.1 cP)을 나타내었다.
화학적 가교 연구
점성 항체 용액에서 잠재적인 단백질-단백질 상호작용의 광범위한 조사는, 높은 단백질 농도에서 화학적 가교를 사용하여 시도되었다. 화학적 가교는, 단백질의 특이적인 부분이 서로 상호작용함을 입증하기 위해 사용되는 전형적인 생화학적 기술이다. 본 문헌에서, 본 발명자들은 고농도 점성 항체 용액에서 잠재적인 단백질-단백질 상호작용을 식별하기 위한 제로 길이(zero length) 화학적 가교 시약의 사용을 기재하고 있다. 점성 및 비-점성 항체의 화학적 가교 결과는 용액에서 잠재적인 단백질-단백질 상호작용의 모델을 구축하는 데 사용된다.
EDC를 이용한 화학적 가교는, 보편적인 화학적으로 가교 가능한 올리고머성 분포의 존재를 드러낸다. 올리고머성 패턴을 초래하는 화학적 가교는 놀랍게도, 분가간이 아니라 분자내 가교이다. Fc의 상부와 Fab의 하부 사이의 분자내 가교는 Fc-Fc 매개 항체 올리고머의 형성을 도울 수 있는 항체 형태를 초래한다. 1HZH 항체 결정 구조는, IgG1 육량체를 형성하는 데 중대한 Fc-Fc 상호작용을 용이하게 하기 위해 Fc 도메인에 기대어 고정된(pinned) 하나의 Fab 팔(arm)을 갖는 비대칭적 단위에서 항체 육량체를 함유한다. 이러한 형태의 출현은 단백질 결정에서 육량체의 형성에 중대할 수 있거나 그렇지 않을 수 있다. Fab-Fc 분자내 화학적 가교가 존재할 때, 용액 내에서 육량체를 형성하려는 증가된 경향은, Fc에 고정된 Fab 팔이 Fc-Fc 기반 항체 올리고머를 형성하려는 증가된 경향을 가질 수 있음을 제안한다.
Fc-Fc 상호작용의 저하는 용액 점도를 저하시킬 수 있다
과학적 문헌은, Clq1과의 상호작용 및 CDC 활성과 관련된 항체의 육량체 형성에 대한 연구를 포함한다. Diebolder 은, K439E 및 S440K를 포함한 소정의 Fc 점 돌연변이를 갖는 항-CD20 항체가 CDC 활성을 무력화시켰으나, 연관된 K439E/S440K 이중 돌연변이체는 CDC 활성을 복구시켰음을 확인하였다. 또한, I253A 돌연변이는 CDC 활성을 저하시켰다. 문헌[Diebolder et al. (2014), "Complement is Activated by IgG Hexamers Assembled at the Cell Surface," Science 343: 1260-3]. Diebolder 은 이들이 개시하는 돌연변이체를 항체 점도에 미치는 효과와 연관시키지 않았다. 유사하게는, van den Bremer 등(2015)은, 항체의 C-말단에 있는 하전된 잔기가 IgG 육량체 구조를 형성하는 능력의 저하로 인해 Clq1 상호작용을 저하시킬 수 있음을 확인하였다. 저자들은 IgG의 C-말단에 있는 하전된 잔기의 존재를 항체 용액 점도에 미치는 효과와 연관시키지는 않았다.
점성 항체 용액에서 항체의 육량체의 관찰은, 항체 육량체 결정 구조뿐만 아니라 Clq1(보체)의 모집(recruitment) 전에 형성되는 것으로 생각되는 구조에 존재하는 Fc-Fc 상호작용이 화학적 가교제 EDC의 부재 시 점성 항체 용액 내에 존재하는 가능성이 있음을 제안하였다. Fc-Fc 상호작용이 용액 점도에 기여할 것인지 테스트하기 위해, Diebolder 에 의해 수행된 연구를 기반으로 한 Fc 돌연변이체를 Amgen사에서 발생시켰다. 그 후에, 콘 앤드 플레이트 유동학(cone and plate rheology)에 의해 항-PCSK9 제제 완충제 내에서 물질을 평가하였다. 부모 항-PCSK9 항체 AK와 Fc 돌연변이체 항-PCSK9 항체의 비교는, Fc에 대한 Fc의 친화성의 저하가 항체의 용액 점도를 저하시킨다는 것을 입증하였다. 점 돌연변이체는 FcRn 결합능을 보유하였고, 생물활성에 아무런 변화가 없었다. 야생형 점도로 되돌아가기 위해 야생형 보체 활성을 복구시킨 이중 돌연변이체의 능력은, Fc-Fc 상호작용 능력이 야생형 수준으로 복구된다면 점도 저하가 역전될 수 있음을 증명한다. 용액 점도를 증가시키는 Fc-Fc 매개 올리고머성 화학종의 관찰과 함께 고려하면, 항체 용액 점도에 기여하는 보편적인 Fc-매개 단백질-단백질 상호작용이 존재한다. Diebolder 등에 의해 CDC 활성을 감소시키는 것으로 식별되고 이 연구에서 점도에 대해 테스트된 5개의 돌연변이, S440K, I253A, K439E, H433A, N434A 중에서, 단지 처음 2개의 돌연변이만 고농도 항-PCSK9 제제에서 감소된 점도를 보여준 한편, K439E, H433A 및 N343A는 고농도 항-PCSK9 제제에서 점도를 감소시키지 않았으며, 이는 직접적인 상관관계가 존재하지 않고, 당업자는 Diebolder 에 의해 제공된 정보로부터 더 낮은 점도를 올바르게 예상할 수 없을 것임을 가리킨다는 점에 주목할 필요가 있다. K439E 돌연변이체는 또한, 고 단백질 농도 수크로스 제제에서 평가되었으며, 동일한 농도에서 부모 항-PCSK9 돌연변이체보다 점성이 낮은 것으로 확인되었다. 항-PCSK9 제제에서 아르기닌의 존재는, Fc-Fc 상호작용을 저하시키기 위해 K439E 돌연변이체에 도입된 음전하의 유효성(effectiveness)을 저하시켰을 수 있는 전하 스크리닝에 영향을 끼쳤을 수 있다. H433A 및 N434A 돌연변이체는 K439E 돌연변이체처럼 명백한 전하 스크리닝 민감성을 갖지 않는다.
Fc-Fc 상호작용은 2가지 잠재적인 방식으로 가능한 잠재적인 상호작용의 수를 증가시킴으로써 용액 점도에 영향을 줄 수 있다. Fc-Fc 상호작용은 1개 항체 당 상호작용의 수를, 1개 항체 당 2개의 CDR 매개 상호작용으로부터 2개의 CDR 매개 상호작용 + 2개의 Fc 매개 상호작용까지 증가시킬 수 있거나, 용액에 존재하는 올리고머에서 이용 가능한 자유(free) CDR 말단의 수를 변화시킬 수 있을 것이다. IgG1, IgG2, IgG3 및 IgG4 항체의 Fc 도메인이 매우 유사하다는 사실을 고려하면, Fc-Fc 매개 상호작용은 모든 항체에 존재할 가능성이 있다. 비-점성 항체의 분석은, Fc-Fc 상호작용의 존재를 가리키는 분자내 가교가 동일한 농도에서 점성 항체와는 대조적으로 부재함을 보여준다. 이는, 비-점성 항체에서 Fc-Fc 상호작용이 이론적으로는 가능하더라도, 부재함을 제안한다. CDR 차근접 이웃(next nearest neighbor) 상호작용은 Fc-Fc 상호작용을 증강시키기 위해 Fc들 사이의 상대 거리뿐만 아니라 상대 배향에도 영향을 줄 수 있다. 이는, 점성 항체가 실온에서 Fc-Fc 상호작용을 갖는 한편 비-점성 항체는 그렇지 못한 이유를 설명해 줄 수 있다.
Fc-Fc 상호작용의 존재는 또한, 항체의 올리고머(이량체, 삼량체, 사량체 )가 최대 수의 자유 CDR 말단을 함유할 가능성을 증가시킨다. 더 큰 수의 자유 CDR 말단은 CDR 차근접 이웃 상호작용의 수를 증가시킨다. 이는 다시, 보다 효율적인 "침투"의 결과, 네트워크 형성 경향을 증가시키고 용액 점도를 증가시킬 수 있다.
점도를 감소시키기 위한 C-말단 변형
항체 C-말단에서 소정의 변형은 C1q 결합 및 보체-의존적 세포독성(CDC)을 방해한다. 문헌[Van den Bremer et al. (2015), "Human IgG is produced in a pro-form that requires clipping of C-terminal lysines for maximal complement activation," mAbs 7(4): 672-80]. 저자들은, C-말단 라이신 및 C-말단 글루탐산이, Clq1와 가장 효율적으로 상호작용할 수 있는 항체의 육량체를 초래하는 Fc-Fc 상호작용의 경향을 저하시키는 가능성이 있음을 확인하였다. 저자들은, C-말단에 PGKP(SEQ ID NO:381), PGKKP(SEQ ID NO:382), PGKKKP(SEQ ID NO:383), 및 PGE를 갖는 CD20 항체 및 CD38 항체의 돌연변이체를 구축하였다. 이들은, 이들 돌연변이체가 유의하게 감소되거나 완전히 상실된 CDC 활성을 보여주었음을 확인하였다. 따라서, 저자들에 의해 이전에 CDC 활성과 상관관계된 육량체화를 상기 돌연변이가 차단했다고 결론내릴 수 있다. 육량체화와 점도의 본 상관관계를 고려하면, 이러한 돌연변이는 항원 결합 단백질의 점도도 감소시킬 것이다. 따라서, 기존의 C-말단 아미노산의 첨가 또는 치환에 의해 배치되는지 상관없이, 양으로 하전된 또는 음으로 하전된 아미노산을 C-말단에 배치하는 것은 항원 결합 단백질의 점도를 감소시킬 것으로 결론내리는 것이 타당하다.
약물동력학 매개변수를 개선하기 위한 서열 변형
본 발명은 또한, 점도도 감소시킬 수 있는 돌연변이를 갖는 항원 결합 단백질에서 개선된 약물동력학 특성의 발견을 포함한다. 특히, S440K 돌연변이는 Tmax(투약 후 최대 농도가 관찰될 때의 시간) 및 Cmax(투약 후 측정된 최대 관찰 농도)를 둘 다 개선하는 것으로 확인되었다. S440K를 선택적으로 다른 돌연변이와 함께 갖는 항체 AK의 돌연변이체는 돌연변이체 및 부모 항체를 동일한 농도에서 피하 주사 후, 부모 항체 AK의 Tmax의 1/2 초과만큼 감소된 Tmax를 갖는 것으로 확인되었다. 이러한 돌연변이체는 또한, 돌연변이체 및 부모 항체의 피하 주사 후, 28% 또는 42% 더 높은 Cmax를 갖는 것으로 확인되었다. 도 22를 참조한다.
핵산, 벡터, 숙주 세포
본 발명은 또한, 본 발명의 이중특이적 항체를 인코딩하는 단리된 핵산을 포함하며, 상기 항체는 예를 들어 본원에 개시된 이중특이적 항체의 경쇄, 경쇄 가변 영역, 경쇄 불변 영역, 중쇄, 중쇄 가변 영역, 중쇄 불변 영역, 링커, 및 이들의 모든 구성성분 및 조합을 포함한다. 본 발명의 핵산은 이러한 본 발명의 핵산과 적어도 80%, 보다 바람직하게는 적어도 약 90%, 보다 바람직하게는 적어도 약 95%, 가장 바람직하게는 적어도 약 98%의 상동성을 갖는 핵산을 포함한다. 특정 서열을 지칭할 때, 용어 "유사성 퍼센트", "동일성 퍼센트" 및 "상동성 퍼센트"는 위스콘신 대학교의 GCG® 소프트웨어 프로그램에서 설정된 바와 같이 사용된다. 본 발명의 핵산은 또한, 상보적 핵산을 포함한다. 일부 경우, 서열은 정렬되었을 때, 완전히 상보적일 것이다(미스매치가 없음). 다른 경우, 서열에 약 20% 이하의 미스매치가 있을 수 있다. 본 발명의 일부 실시형태에서, 본 발명의 항체의 중쇄 및 경쇄를 둘 다 인코딩하는 핵산이 제공된다.
본 발명의 핵산은 플라스미드, 코스미드, 바크미드(bacmid), 파지, 인공 염색체(BAC, YAC) 또는 바이러스와 같은 벡터 내로 클로닝될 수 있으며, 이러한 벡터 내로 또 다른 유전자 서열 또는 요소(DNA 또는 RNA)가 삽입되어, 부착된 서열 또는 요소의 복제가 유발될 수 있다. 일부 실시형태에서, 발현 벡터는 구성적으로 활성인 프로모터 분절(예컨대 비제한적으로 CMV, SV40, 신장 인자 또는 LTR 서열) 또는 유도성 프로모터 서열, 예컨대 스테로이드 유도성 pIND 벡터(Invitrogen)를 함유하며, 여기서, 핵산의 발현이 조절될 수 있다. 본 발명의 발현 벡터는 내부 리보솜 진입 부위(internal ribosomal entry site)와 같은 조절 서열을 추가로 포함할 수 있다. 발현 벡터는, 예를 들어 형질감염에 의해 세포 내로 도입될 수 있다.
또 다른 실시형태에서, 본 발명은 하기 작동적으로 연결된 요소: 전사 프로모터; 본 발명의 이중특이적 항원 결합 단백질, 항체 또는 항원-결합 단편의 중쇄를 인코딩하는 제1 핵산 분자; 본 발명의 이중특이적 항원 결합 단백질, 항체 또는 항원-결합 단편의 경쇄를 인코딩하는 제2 핵산 분자; 및 전사 종결자를 포함하는 발현 벡터를 제공한다. 또 다른 실시형태에서, 본 발명은 하기 작동적으로 연결된 요소: 제1 전사 프로모터; 본 발명의 이중특이적 항원 결합 단백질, 항체 또는 항원-결합 단편의 중쇄를 인코딩하는 제1 핵산 분자; 제1 전사 종결자; 제2 전사 프로모터; 본 발명의 이중특이적 항원 결합 단백질, 항체 또는 항원-결합 단편의 경쇄를 인코딩하는 제2 핵산 분자; 및 제2 전사 종결자를 포함하는 발현 벡터를 제공한다.
분비 신호 펩타이드 서열은 또한 선택적으로, 관심 코딩 서열에 작동적으로 연결된 발현 벡터에 의해 인코딩될 수 있으며, 따라서, 발현된 폴리펩타이드는 요망된다면 세포로부터 관심 폴리펩타이드의 보다 손쉬운 단리를 위해 재조합 숙주 세포에 의해 분비될 수 있다.
이러한 벡터를 포함하고 중쇄 및 경쇄를 발현하는 재조합 숙주 세포가 또한 제공된다.
정제
항체 정제 방법은 당업계에 공지되어 있고, 본 발명의 항체 및 이중특이적 항체의 제조와 함께 이용될 수 있다. 본 발명의 일부 실시형태에서, 항체 정제 방법은 여과, 친화성 컬럼 크로마토그래피, 양이온 교환 크로마토그래피, 음이온 교환 크로마토그래피 및 농축을 포함한다. 여과 단계는 바람직하게는 한외여과(ultrafiltration), 보다 바람직하게는 한외여과 및 투석여과(diafiltration)를 포함한다. 여과는 바람직하게는 적어도 약 5 내지 50회, 보다 바람직하게는 10 내지 30회, 가장 바람직하게는 14 내지 27회 수행된다. 친화성 컬럼 크로마토그래피는 예를 들어 PROSEP® 친화성 크로마토그래피(Millipore, 미국 메사추세츠주 빌레리카 소재)를 사용하여 수행될 수 있다. 바람직한 실시형태에서, 친화성 크로마토그래피 단계는 PROSEP®-vA 컬럼 크로마토그래피를 포함한다. 용출물은 용매 세제 내에서 세척될 수 있다. 양이온 교환 크로마토그래피는 예를 들어, SP-세파로스 양이온 교환 크로마토그래피를 포함할 수 있다. 음이온 교환 크로마토그래피는 예를 들어 비제한적으로 Q-세파로스 패스트 플로우 음이온 교환을 포함할 수 있다. 음이온 교환 단계는 바람직하게는 비-결합성이어서, DNA 및 BSA를 포함한 오염물질의 제거를 허용한다. 항체 생성물은 바람직하게는 예를 들어 Pall DV 20 나노필터를 사용하여 나노여과된다. 항체 생성물은 예를 들어 한외여과 및 투석여과를 사용하여 농축될 수 있다. 본 방법은 응집물을 제거하기 위해 크기 배제 크로마토그래피 단계를 추가로 포함할 수 있다. 정제의 추가의 매개변수는 이하 작업예에서 보인다.
이중특이적 항체, 항체 또는 항원-결합 단편은 또한, 당업계에 공지된 다른 방법에 의해, 예를 들어 항체 및 항체 단편의 화학적 커플링에 의해 생성될 수 있다.
본 명세서에서 인용된 각각의 원고, 연구 논문, 검토 기사, 요약서, 특허 출원, 특허 또는 다른 공개문헌은 그 전체가 원용에 의해 본 명세서에 포함된다.
작업예
본 발명은 하기 작업예에 의해 더 예시되며, 이들 작업예는 예시하는 것이지만 본 발명의 범위를 제한하지 않는다.
실시예 1
Fab 돌연변이
재료
상이한 표적 및 상이한 서열을 갖는 43개의 인간 및 인간화 재조합 모노클로날 항체 분자 세트를 표준 절차에 따라 생성하고 정제하였다(도 1a 및 도 1b). 크기 배제 크로마토그래피(SEC)에 의해 등가 순도(equivalent purity)가 98% 초과인 세트를 수합하였다. 시료를 2℃ 내지 8℃에서 30±10 psi의 최대 압력에서 Amicon Ultrafiltration Stirred Cell Model 8003(Millipore, 미국 메사추세츠주 빌레리카 소재)을 사용하여 3 mL 최대 부피로 농축시켰다. 이들 시료를 pH 5.2에서 20 mM 아세테이트, 9% 수크로스를 함유하는(폴리소르베이트 없음) 제제 완충제 내에서 근사 부피 고갈(approximate volume depletion)에 따라 150 mg/mL까지 농축시키고, 최종 농도를 280 nm에서 단백질의 흡광도(희석 후 0.1 내지 1의 흡광 단위(AU) 내에서 끝나기 위해) 및 단백질-특이 소광 계수(extinction coefficient)를 사용하여 결정하였다(± 10%).
2개의 mAb의 몇몇 저점도 돌연변이체를 유사한 표준 절차에 따라 생성하며, 정제하고 제제화하였다. 이들 돌연변이체는 전구단백질 전환효소 서브틸리신/켁신 타입 9에 대한 항체(PCSK9, 항체 AK) 및 대식세포 콜로니-자극 인자에 대한 항체(M-CSF, AO)를 포함하였다.
점도 측정
점도 분석을, CP-40 스핀들 및 시료 컵을 사용하여 Brookfield LV-DVIII 콘 앤드 플레이트 장비(Brookfield Engineering, 미국 메사추세츠주 미들보로 소재) 상에서 수행하였다. 모든 측정을 시료 컵에 부착된 수조에 의해 제어되는 25℃에서 수행하였다. 다수의 점도 측정을, 한정된 토크 범위(10% 내지 90%) 내에서 스핀들의 RPM을 증가시킴으로써 수동으로 수합하였다. 생성된 비교 차트를 단순화하고자 1개 시료 당 1개의 점도값을 보고하기 위해 측정을 평균내었다.
서열 정렬
구조-기반 서열 정렬을, 취리히 대학교의 생화학부로부터 다운로드한 Excel Macros를 사용하여 개발된 Ab Initio 소프트웨어 툴에 의해 수행하였다.
실시예 2
Fc 돌연변이
돌연변이체의 발현 및 정제
재료 및 방법
· -C-키트 항체(SEQ ID NO: 173 및 175의 핵산에 의해 각각 인코딩된 항체 BA, SEQ ID NO: 174 및 176), 항-스클레로스틴(sclerostin) 항체 AH 및 항-PCSK9 항체 AK
· -스트렙타비딘 IgG1 및 IgG2.
· 1-에틸-3-[3-디메틸아미노프로필] 카르보디이미드 하이드로클로라이드(EDC)
· n-메틸-2-피롤리돈을 이용한 용해
· 광 산란(LS)과 함께 크기 배제 고성능 액체 크로마토그래피(SE-HPLC)
· 환원 및 알킬화된 역상 고성능 액체 크로마토그래피(RA RP-HPLC)
· 전기 분무 이온화 질량 분광법(ESI-MS)과 함께 트립신 펩타이드 맵
· 콘 앤드 플레이트 점도계
결과
고농도 모노클로날 항체 용액의 EDC 가교의 SE-HPLC는 올리고머를 형성하는 경향을 드러낸다
화합물 1-에틸-3-[3-디메틸아미노프로필] 카르보디이미드 하이드로클로라이드(EDC)를 사용하여, 항체 내의 산성 잔기를 항체 내의 일차 아민(N-말단 및/또는 Lys 잔기)에 화학적으로 가교시키고, 다른 연구에도 사용하여 단백질-단백질 상호작용의 영역을 결정하였다. 일차 아민에 대한 카르복실기의 근접성은, 아미드 결합이 2개의 기들 사이에서 형성되기 때문에 중대하다(도 16). 형성되는 가교는 용액 내에 존재하는 염다리(salt bridge)일 가능성이 있다. 문헌[Carraway and Koshland, Jr. (1972). "Carbodiimide modification of proteins." Methods Enzymol 25: 616-623]. 항체 패널을 동일한 용액 조건 하에 EDC와 화학적으로 가교시켰다. 이전의 유동학 연구는, 패널 내의 항체 중 일부가 점성이고 일부는 그렇지 않음을 결정하였다(도 17). 비-점성 항체는 이량체 함량이 조금 증가하였으나, 더 높은 차수(order)는 다량으로 함유하지 않았다. 대조적으로, 점성 항체는 이량체뿐만 아니라 더 높은 차수의 올리고머를 다량으로 함유하였다. 요약은 도 17에 제공된다. 점성이 있는 것으로서 식별된 모든 항체는 이량체보다 큰 것으로 보인 EDC 가교 화학종을 함유하였다. 더 큰 올리고머 화학종의 출현은 농도 의존적이다(항체 AH는 도 18에서 실시예로서 보여짐). 추가 분석을 용이하게 하기 위해, 화학적 가교 조건을 변화시켜, 가교 반응을 완료시켰다. 200 mg/mL에서 화학적 가교 후 용액은 고체가 되었다. 고체를 완충제 또는 완충 3% NMP 용액을 이용하여 재-용해시켰다. 2개 시료 모두의 SE-HPLC 분석은, 시료들이 유사하였음을 보여주었다. 완충 3% NMP 용액은, 더 많은 물질을 용액 내로 넣음에 따라 단백질을 유의하게 더 빠르게 용해시켰다. 항체 AH를 재-용해시키고, 실시예로서 추가로 분석하였다.
온라인 LS와 함께 SE-HPLC에 의한 크기 분석
가교된 항체 용액을 온라인 광 산란과 함께 SE-HPLC에 의해 분석하여, 용출 화학종의 크기를 결정하였다. EDC 화학적 가교 및 3% NMP를 이용한 재용해 후, 항체 AH의 온라인 광 산란 분석과 함께 SE-HPLC를 수행하였다. SE-HPLC는 UV 및 RI에 존재하는 3개의 피크를 드러내었다. 첫 번째 피크는 질량이 840.5 kD인 화학종으로서 식별되었다. 이는 항체 AH의 육량체에 대해 예상된 질량 873.2 kD에 가깝다. 또 다른 화학종은 494.6 kD의 질량을 가졌으며, 이는 항체 AH의 삼량체에 대해 예측된 질량 436.6 kD에 가깝다. 세 번째 화학종은 139.9 kD의 질량을 보여주었으며, 이는 항체 AH의 단량체에 대해 예측된 질량 145.5 kD에 가깝다.
EDC 가교된 항체 AH의 환원 및 알킬화된 역상 HPLC
가교된 항체 용액을 환원 및 알킬화된 역상 고성능 액체 크로마토그래피에 의해 분석하였다. 경쇄(LC) 및 중쇄(HC)가 둘 다 대부분 회수되는 것은 예상치 못하였는데, 왜냐하면 HC 또는 LC는 서로 가교되어 본래의 것이 아닌(non-native) LC-HC 펩타이드 또는 본래의 것이 아닌 LC-LC 또는 HC-HC 펩타이드를 형성하며, 이는 SEC 분석에 의해 관찰된 가교된 올리고머를 반영하는 것으로 추정되었기 때문이다. 항체 AH의 경우, LC는 비-가교된 항체 AH LC와 정확하게 동일한 질량을 갖고 동일한 장소에서 용출되었다. 항체 AH 내의 HC에서 변화가 존재하였으며, 이는 농도 의존적이다. 100 kD의 식별된 질량을 가졌던 HC-HC 가교된 물질(약 33분째에 용출됨, 도 21)이 소량 존재한다. 150 mg/mL 및 200 mg/mL에서, HC 화학종의 분포는 유사하다. 더 낮은 단백질 농도에서, 분포는 약 28.5분째에 용출되는 화학종을 더 많이 포함한다. HC 화학종의 분포는 SEC에 의해 분석된 바와 같이 각각의 시료에 존재하는 올리고머의 양과 상관관계가 있으며, 이때 200 mg/mL 시료는 가장 많은 양의 육량체를 함유하고, 10 mg/mL 시료는 매우 적은 양의 올리고머를 함유하였다. 패턴은 다른 점성 항체 용액에서도 관찰되었다.
실시예 3
항-PCSK9 부모 항체 AK 및 저점도 돌연변이체의 약물동력학 및 약력학(PKPD)에 대한 비인간 영장류 연구
재료: 항체 AK 및 이의 돌연변이체. 모든 돌연변이는 중쇄에 있다.
Fab 돌연변이체: T82(72)R, R94(84)S, S95(85)R; Aho 넘버링(실제 넘버링)
Fc 돌연변이체 S(434)K(EU 넘버링에서 S440K):
이중 돌연변이체: T82(72)R, R94(84)S, S95(85)R; S(434)K:
4마리의 수컷 시노몰구스 원숭이로 이루어진 4개 그룹을 이 연구에 사용하였다. 각각의 그룹은 하기와 같이 10 mg/kg의 1회 피하(SC) 용량을 제공받았다. 그룹 1은 부모 항체 AK(140 mg/ml)를 제공받았으며; 그룹 2는 Fab 돌연변이체(210 mg/ml)를 제공받았으며; 그룹 3은 Fc 돌연변이체(210 mg/ml)를 제공받았고; 그룹 4는 Fab/Fc 돌연변이체(210 mg/ml)를 제공받았다. 그룹 1 및 2는 또한, 희석제 대조군 SC 용량을 가졌다. Fab 돌연변이체는 위치에서 하기 치환 T82(72)R, R94(84)S, S95(85)R을 포함하였다. Fc 돌연변이체는 위치에서 치환 S(434)K를 포함하였다.
210 mg/ml에서 점도를 측정하기 위해, 부모 및 모든 돌연변이체를 10 mM 아세테이트, 155 mM N-아세틸 아르기닌(NAR), 70 mM ArgHCl, pH 5.4, 0.01% 폴리소르베이트 80 내에서 210 mg/mL에서 제제화하였다. ARG2 콘/플레이트를 1000 sec-1 및 25C에서 사용하여 점도를 측정하였다. 도 15를 참조한다.
연구 설계 개요:
4마리의 수컷 시노몰구스 원숭이로 이루어진 4개 그룹
· 각각의 그룹은 1 SC 용량(10 mg/kg)의:
그룹 1: 부모 항체 AK(140 mg/ml)
그룹 2: Fab 돌연변이체(210 mg/ml)
그룹 3: Fc 돌연변이체(210 mg/ml)
그룹 4: Fab/Fc 돌연변이체(210 mg/ml)
를 제공받았다.
· 그룹 1 및 2는 또한, 희석제 대조군 피하 용량을 가졌다
· 투약 후 3일째에 주사 부위에서 피부 생검을 채취하였다
· 조직병리 분석을 수행하였다
· 혈장 LDL, HDL, 총 콜레스테롤 및 PK를 투약-후 6주 동안 이어나갔다
연구 결론
생성된 모든 4개의 동족체는 LDL을 낮추는 것으로 표시되었다
· 투약 후 2주째에 최대 감소: 부모에 대해 이전에 관찰된 것보다 1주 후에
· 효과의 최하점(nadir)은 Fab/Fc 돌연변이체의 경우 상당한(profound) 것만큼은 아니었다(약 78% vs 약 90%)
· 기준선으로의 회귀는 Fc 돌연변이체의 경우 약간 더 가속화된 것으로 보인다
· PK: 평균 노출은 모든 처리군 사이에서 (Cmax 및 AUClast를 기반으로) 유사하였다(1.4배 이내)
· 항-PCSK9 항체 AK에서 Fab 및/또는 Fc 돌연변이는 비인간 영장류(NHP)(시노몰구스 원숭이)에서 주사 부위 반응(ISR) 또는 약물동력학 및 약력학 (PKPD) 프로파일에 유의한 효과를 갖지 않았다.
Fab 돌연변이체: T82(72)R, R94(84)S, S95(85)R; Aho 넘버링(실제 넘버링).
Fc 돌연변이체: S(434)K(EU 넘버링에서 S440K).
실시예 4
GIPR(2G10.006) 항체 AQ의 저-점도 돌연변이체의 생성 및 특징화
항체 AQ의 저점도 돌연변이체의 클로닝, 발현, 정제 및 고농도 제제
GIPR(2G10.006) AQ 부모는 미국 가출원 62/387,486에서 2G10_LC1.006(인용된 특허 출원의 SEQ ID NO: 74)으로서 기재되어 있다. 상기 언급된 미국 특허 출원은 원용에 의해 본 명세서에 포함된다. 돌연변이 부위 Q1(1)E, R17(16)G, S85(75)A를 갖는 중쇄 돌연변이체 AQ(HC 1, 17, 85) 및 돌연변이 부위 M4(4)L, V13(13)L, A76(60)D, S95(77)R, Q97(79)E, S98(80)P를 갖는 경쇄 돌연변이체 AQ(LC 4 13 76 95 97 98)를 하기와 같이 생성하였다. GIPR(2G10.006)(항체 AQ) 저점도 돌연변이체를 위한 합성 유전자를 생성하고, 분해한 다음, 플라스미드 발현 벡터 내로 연결하였다. 구축물을 DNA 시퀀싱에 의해 입증하였다. 클로날 CHO 숙주 세포주의 전기천공에 의해 안정한 세포 풀을 만들었다. 이러한 풀을 선별 하에, 생존력이 85% 초과에 도달할 때까지 배양하였다. 풀을 유가식 생성 배양물 내로 10일 동안 접종하고, 원심분리된 배지를 수합하였다.
수합된 상층액을 멸균 여과하고, 이전에 기재된 공정과 유사한 단백질 A, 양이온 교환 및 음이온 교환으로 구성된 3개의 컬럼 크로마토그래피 공정을 통해 정제하였다(문헌[Shukla et al. (2007), "Downstream processing of monoclonal antibodies―Application of platform approaches," J. Chrom. B 848: 28-39]). 생성된 정제 풀을 pH 5.2에서 20 mM 아세테이트 및 9% 수크로스를 함유하는 제제 완충제(폴리소르베이트 없음) 내로 투석시켜, 약 5.2의 최종 pH를 달성하고, 원심분리 한외여과를 통해 30 kDa 컷오프 필터 위로 대략 150 mg/mL까지 농축시켰다(도 20a).
효능 측정
글루코스-의존적 인슐린 자극성 폴리펩타이드 수용체(GIPR; glucose-dependent insulinotropic polypeptide receptor)를 발현하는 포유류 세포 293/huGIPR을 이용하는 검정법에서 효능을 측정하였다. 증가하는 농도의 항-GIPR 부모 AQ 및 저-점도 돌연변이체는 GIP와 GIPR의 상호작용을 차단하고 있었으며, 이는 검정법 동안 모니터링된 cAMP 변화를 유도하였다. 검정법의 적용은 문헌[Tseng C.C. et al. (1996), "Postprandial stimulation of insulin release by glucose-dependent insulinotropic polypeptide (GIP). Effect of a specific glucose-dependent insulinotropic polypeptide receptor antagonist in the rat," J. Clin..Invest. 98: 2440-2445]에서 이미 기재되었다.
점도 측정
AQ 및 2개의 저점도 돌연변이체의 점도 분석을, CP25-1/TG 스핀들을 사용하여 Anton Paar 레오미터 상에서 수행하였다. 모든 측정을 시료 컵에 부착된 수조에 의해 제어되는 25℃에서 수행하였다. 점도 측정을, 전단 속도를 0 rpm 내지 2000 rpm에서 증가시키면서 수동으로 수합하였다. 전단 속도 1000 1/s에서 10개의 점도 측정 결과 및 전단 속도 2000 1/s에서 10개의 점도 측정 결과를 각각의 시료에 대해 수합하고, 1개 시료 당 1개의 점도값을 보고하기 위해 평균내었다.
점도 측정은 점도계의 상태, 실내 온도, 및 측정 시간에서의 일부 다른 미미한 매개변수와 같은 일부 매개변수에서 훨씬 미미한 변화에도 민감하기 때문에, 점도 측정의 정밀도가 해당 정확성보다 훨씬 더 양호함을 주지할 필요가 있다. 따라서, 모든 관심 시료를 하나의 세팅에서 측정하거나 관심 시료가 2개의 세팅에서 측정된다면 2개 세팅 모두에서 동일한 참조 표준을 갖는 것이 중요하다.
결과
항-GIPR(2G10.006) 항체 AQ는 중쇄 VH3|3-33 및 경쇄 VK3|L16의 고-점도 생식선 서브패밀리에 속한다. AQ의 점도를 감소시키기 위해 도 11 및 도 12로부터 유래된 몇몇 돌연변이를 프레임에서 만들었다. 하나의 점도계 세팅에서 측정된 부모 AQ 및 2개의 돌연변이체의 점도는 하기 값: AQ - 19.1 cP, AQ(HC 1, 17, 85) - 15.8 cP, AQ(LC 4 13 76 95 97 98) - 12.7 cP(도 20)을 드러내었다. 부모 AQ에 비해, 중쇄 돌연변이체 AQ(HC 1, 17, 85) 돌연변이체는 83%에 존재하였고, 경쇄 돌연변이체 AQ(LC 4 13 76 95 97 98)는 67%에 존재하였다. 도 7 및 8은 VH3 및 VK3 패밀리 구성원에 대한 점도 대 pI 도면 상에서 돌연변이체의 위치를 예시한다. 시험관내 cAMP 활성은 점도 돌연변이에 의해 동일하게 영향을 받지 않았다. 시험관내 세포-기반 검정법의 오차 한계 내에서 효능은 여전히 동일하였다(도 20b 참조). 요약하자면, 도입된 돌연변이는 효능 상실 없이 점도를 감소시켰다.
실시예 5
GIPR 저점도 돌연변이체 경쇄 V78F(Aho 넘버링에서는 LC V78F 및 선형 넘버링에서는 LC V62F)
GIPR(2G10.006) 항체 AQ는 A52Su 제제 내 150 mg/mL에서 23 cP의 고점도를 보여주었다. 이 항체는 카파 경쇄(LC V78 Aho) 내의 Aho 넘버링에서 저-빈도 잔기 V78(선형 넘버링에서는 V62)을 특징으로 하였다. V78의 발생 빈도는 1% 미만인 한편, F78은 카파 생식선과 관련된 경쇄 서열 내에서 98% 초과이다. 잔기 LC V78은 공분산 위반자(covariance violator)였기 때문에 관심을 끌었다. 공분산 분석은 항체의 가변 영역에서 잔기의 생리화학적 특성을 기반으로 쌍으로(pair-wise) 보존된-잔기 위치를 구축하여, 잘못 위치된 잔기(종종 비-생식선 잔기임)를 식별할 수 있게 한다. 공분산 분석은 추가로, 이탈(deviating) 위치의 아미노산을, 분자-동역학적 시뮬레이션에 의해 커버되지 않는(uncovered) 큰 형태 변화를 초래하는 보다 보편적인 생식선 서열로 대체하는 것을 제안할 수 있다(문헌[Kannan G., "Method of correlated mutational analysis to improve therapeutic antibodies,"] US Ser. No. 61/451929, PCT/US 2012/028596, WO 2012/125495). 공분산 위반을 제거하고 인간 서열의 퍼센트를 증가시키기 위해, LC V78F 돌연변이를 GIPR(2G10.006) 항체 AQ에 도입하였다.
뜻밖에도, 돌연변이체의 점도는 25%만큼 저하된 한편, cAMP(세포-기반) 검정법에 의해 측정된 바와 같이 인간 GIPR에 대해 유사한 효능을 유지하였다. 2개의 서열, GIPR(2G10.006) AQ 부모 및 이의 LC V78F 돌연변이체는 모두 미국 가출원 62/387,486에서 각각 2G10_LC1.006(인용된 출원의 SEQ ID NO: 74) 및 2G10_LC1.003(인용된 출원의 SEQ ID NO: 71)으로서 기재되어 있다. 이러한 미국 특허 출원은 원용에 의해 본 명세서에 포함된다. 본 발명에서 새로 발견된 것은, 이러한 치환이 LC V78F 돌연변이에 의해 약 25%의 점도 감소를 초래하였다는 것이다. GIPR_2G10.006 AQ 및 이의 V78F 돌연변이체의 점도 분석을, 20 mM 아세테이트, pH 5.2에서 9% 수크로스, 0.01% 폴리소르베이트 80을 함유하는 제제 내 150 mg/ml에서, 1000 전단 속도 및 25C에서 TA Instruments - Waters LLC사의 AR-G2 Magnetic Bearing 콘 앤드 플레이트 레오미터를 사용하여 수행하였다. 콘 플레이트 크기는 직경이 20 mm이고, 콘 각도가 1.988°이었으며, Steel -990918 Peltier 플레이트가 구비되었고, Flow Sweep 절차를 사용하여 작동되었다. 측정된 점도값은 GIPR_2G10.006의 경우 21 cP이고, GIPR (2G10.003) LC V78F 돌연변이체의 경우 15.3 cP였으며 25%의 점도 감소가 존재한다.
이전의 실시예에서 주지된 바와 같이, 점도 측정의 정밀도는 해당 정확성보다 훨씬 양호하다. 0.01% 폴리소르베이트가 있을 때 150 mg/mL에서의 점도는 전형적으로 폴리소르베이트가 없을 때보다 10% 낮으며, 이는 GIPR(2G10.006)의 경우에 관찰되었다. 이의 점도는 폴리소르베이트가 없을 때(모든 43개의 항체에서와 같이) 23 cP였고, 폴리소르베이트가 있을 때 21 cP였다.
실시예 6
시노몰구스 원숭이 연구
실시예 3에 보여진 AK(대조군으로서, AMG 145 및 에볼로쿠맙으로도 공지되어 있음)로서 지정된 항체, 및 Fab 돌연변이체, Fc 돌연변이체 및 이중 돌연변이체를 실시예 1 및 2에 개시된 방법을 사용하여 발생시켰다. 이들 항체의 약물동력학 특성을 생체내에서 수컷 시노몰구스 원숭이 내로의 단일 피하 볼루스 주사에 의해 테스트하였다.
연구 설계
연구를 수컷 시노몰구스 원숭이에서 수행하였다. 동물은 2.7 내지 3.8 연령이었고, 체중은 2.9 내지 3.8 kg이었다. 투약 개시 전에 동물을 7일 동안 실험실에 적응시켰다. 선별 기준은 치료전 콜레스테롤(LDL 및 HDL 포함) 수준으로부터 허용 가능한 결과를 포함하였다. 투약 개시 전, 모든 동물을 무작위로 나누고, 컴퓨터-기반 무작위화 절차를 사용하여 그룹으로 지정하였다.
제1일에 테스트 및 대조군 물품을 적절한 동물에게 등-중앙(mid-dorsal) 영역 내로 1회 피하 투여하였다. 투여 전에 주사 부위(들)를 면도하고, 만년 잉크(indelible ink)로 표시하였다. 용량 투여 동안 동물을 일시적으로 움직이지 못하게 하였으며, 진정제를 투여하지는 않았다. 각각의 동물에 대한 용량 부피는 가장 최근의 체중 측정을 기반으로 하였다. 그룹 1 및 2의 경우, 투약 용액을 각각의 동물의 등에 2회 피하 주사(1회는 테스트 물질로, 1회는 희석제로)를 통해 투여하였다. 주사 부위는 적어도 5 내지 6 cm 떨어져 있었다. 테스트 물질을 각각의 동물의 척추의 우측 상에 투여하였다. 희석제를 각각의 동물의 척추의 좌측 상에 전달하였다. 그룹 3 및 4의 경우, 투약 용액을 각각의 동물의 등에 단일 피하 주사를 통해 투여하였다. 각각의 동물에 대한 용량 수준 및 부피는 도 21에 요약되어 있다.
이 연구의 생전(in-life portion) 기간(43일)에 걸쳐 다양한 시점에서, 포타슘(K2) EDTA를 함유하는 튜브 내로 정맥 천자에 의해 혈액 시료를 수합하였다. 혈청 화학 채혈 전에 동물을 단식시키지 않았다.
채혈 후 시료를 냉각시키고, 혈청 또는 혈장 조제물용으로 나누었다. 시료를 부드럽게 혼합하고 원심분리하였다. 수합 직후 원심분리(1500 내지 2000 x g에서 대략 10분 동안)할 때까지 혈액 시료를 습식 아이스 상에서 대략 4℃에서 유지시켰다. 생성된 혈장 또는 혈청을 분리하고, 2개의 분취물(주된 것(primary) 및 백업)로 나누고, 적절하게 표지된 폴리프로필렌 튜브로 옮긴 다음, -80℃에서 유지되도록 설정된 냉동고에서 분석 시까지 보관하였다. 혈장 시료를 사용하여 약물동력학 평가를 위한 테스트 물품 농도를 결정하였으며, 혈청 시료를 콜레스테롤, HDL 및 LDL에 대해 분석하였다.
약물동력학 평가
효소-연결 면역흡착 검정법(ELISA)을 사용하여 혈장 시료를 각각의 테스트 항체(항체 AK, AK Fab 돌연변이체, AK S440K Fc 돌연변이체 및 AK Fab/S440K 이중 돌연변이체)의 농도에 대해 분석하였다. 이러한 검정법은 재조합 인간 PCSK9를 포착 시약으로서 사용하고, 인간 IgG1에 대한 홀스래디쉬 퍼옥시다제 표지 항체를 검출 시약으로서 사용한다. 항체 AK 또는 저점도 동족체를 100% 시노몰구스 원숭이 K2-EDTA 풀 내로 스파이킹(spiking)함으로써 표준 및 품질 관리 시료(QC)를 제조한다. Costar 96-웰 마이크로플레이트 웰(Corning Incorporated)을 재조합 인간 PCSK9로 코팅시킨다. 블록킹(blocking) 단계 후, TBS(Thermo Scientific) 중 Blocker™ BLOTTO에서 100의 희석 인자로 전처리한 후, 표준, 매트릭스 블랭크(NSB), QC(QC) 및 테스트 시료를 마이크로플레이트 웰 내로 로딩한다. 시료 내 항체 AK는 마이크로플레이트 상에 코팅된 고정된 재조합 인간 PCSK9에 의해 포착된다. 마이크로플레이트 웰을 세척함으로써, 비결합된 물질을 제거한다. 세척 후, 포착된 항체 AK를 결합시키기 위해, 마우스 항-인간 IgG, Ab35, HRP 공액 검출 항체를 마이크로플레이트 웰에 첨가한다. 마이크로플레이트 웰을 세척함으로써, 비결합된 검출 항체를 제거한다. 결합된 마우스 항-인간 IgG Ab35 HRP 공액체의 검출을 위해 1-구성성분 TMB 용액을 마이크로플레이트 웰에 첨가한다. TMB 기질 용액은 퍼옥시다제와 반응하고, HRP의 존재 시 비색 신호(colorimetric signal)를 생성하며, 이러한 신호는 포착 시약에 의해 결합된 항체 AK 또는 저점도 돌연변이체 동족체의 양과 비례한다. 2 N 황산을 사용하여 발색을 중단시키고, 색상 세기(광학 밀도 또는 OD)를 450 nm 마이너스 650 nm에서 측정한다. 1의 가중 인자와 함께 4 매개변수(Marquardt) 회귀 모델을 사용하는 Watson 버전 7.4 SP3(또는 이후의) 데이터 환원 패키지를 사용하여 데이터를 환원시킨다.
WinNonlin 약물동력학 소프트웨어를 사용하여 약물동력학 매개변수를 추정하였다. 피하 투여 경로와 일관되는 비-구획(non-compartmental) 접근법을 매개변수 추정에 사용하였다. 제1일로부터의 혈장 내 개별 농도로부터 모든 매개변수를 발생시켰다. 하기 매개변수를 확인하였다
Tmax(투약 후 최대 관찰 농도가 관찰되었을 때의 시간),
Cmax(투약 후 측정된 최대 관찰 농도),
AUC(0-t)(선형 또는 선형/로그 사다리꼴 방법을 사용한, 용량 투여 시작 시부터 투약 후 마지막으로 정량 가능한 농도가 관찰되었을 때까지의 농도 대 시간 곡선 아래의 영역),
AUC(0-t)/D(투여된 용량으로 나눈 AUC(0-t)), 및
RAUC(초기 투약 간격 동안 T1로부터 T2까지의 곡선 아래 면적으로 나눈, 정상 상태에서 T1로부터 T2까지의 곡선 아래 면적).
결과 및 논의
도시된 테스트 물품 농도 대 시간은 도 24a 및 도 24b에 보여진다(각각의 테스트 물품에 대한 평균 농도, 각각의 시점에서 n=4). 4개의 테스트 물품에 대한 약물동력학 매개변수는 도 22에 요약되어 있다. Fc 돌연변이 S440K를 함유하는 항체(항체 AK(Fc 돌연변이체) 및 항체 AK(Fc 및 Fab 이중 돌연변이체) 둘 다)는 항체 AK(대조군) 및 항체 AK(Fab 돌연변이체)에 비해 감소된 Tmax(각각 0.81 및 1일 대 2.5일) 및 증가된 Cmax(각각 125 및 112 μg/mL 대 87.8 μg/mL)를 보여주며, 이는, 점도를 감소시키는 Fc 돌연변이를 함유하는 항체가 피하 주사 후 보다 빠르게 순환계로 분포되고 있음을 가리킨다.
항체 AK의 모든 저점도 동족체의 투여는 예상된 약리학에서, 기준선(제-6일)과 비교하여 저하된 총 콜레스테롤 농도와 연관된 저밀도 지질단백질(LDL)의 약한 내지 중간 정도의 저하를 초래하였다. AK Fab 돌연변이체 및 AK S440K Fc 돌연변이체의 투여 후 총 콜레스테롤 및 저밀도 지질단백질 콜레스테롤에 대한 저하 규모는 일반적으로, 제25일에 AK S440K Fc 돌연변이체 및 제29일에 AK(대조군) 및 AK Fab 돌연변이체의 기준선으로의 회복 경향을 가진 대조군 동물과 유사하였다. AK Fab/S440K 이중 돌연변이체에 대한 총 콜레스테롤 및 저밀도 지질단백질 콜레스테롤에 대한 저하 규모는 일반적으로, 대조군(10 mg/kg에서 항체 AK)과 비교하여 덜 확연하였다. 임의의 AK 저점도 동족체에서 고밀도 지질단백질에서는 변화가 없었다. 기준선에 비해 LDL-C의 변화 퍼센트는 도 23에서 표로 제시되어 있고, 도 24a 및 도 24b에서 시간에 대해 도시되어 있다.
약어
본 명세서 전체에 걸쳐 사용된 약칭된 용어는 하기와 같이 정의된다.
AEI 대립유전자 발현 불균형
ANOVA 분산 분석
AUC 곡선 아래 면적
BSA 소 혈청 알부민
DMEM 둘베코스 모디파이드 이글 미디엄
DMSO 디메틸 설폭사이드
EDC 1-에틸-3-[3-디메틸아미노프로필] 카르보디이미드 하이드로클로라이드
EDTA 에틸렌디아민테트라아세트산
ELISA 효소-연결 면역흡착 검정법
eQTL 발현량 형질 위치(expression quantitative trait loci)
ESI-TOF 비행형 전기분무 이온화 시간(electrospray ionization time of flight)
FACS 형광-활성화 세포 분류
FBS 태아 소 혈청
FPLC 고속 단백질 액체 크로마토그래피
FVB 프렌드 백혈병 바이러스 1b(Fv1b) 대립유전자를 위해 근친 교배된 마우스 계통
H&E 헤마톡실린 및 에오신
HA 하이포크산틴
HIC 소수성 상호작용 크로마토그래피
HPLC 고성능 액체 크로마토그래피
HRP 홀스래디쉬 퍼옥시다제
HUVEC 인간 제대혈 상피 세포
IBD 염증성 장질환
IDMEM 글루타민이 없는 DMEM
IFN 인터페론
IL 인터루킨
MCP 단핵구 화학주성 단백질
MSD 거대분자 구조 데이터베이스
PBMC 말초 혈액 단핵구 세포
PBS 인산염-완충 식염수
PCR 중합효소 연쇄 반응
PEG 폴리에틸렌 글리콜
PEI 폴리에틸렌이민
QTL 양적 형질 위치
RPMI Roswell Park Memorial Institute사에서 개발된 배지
SNP 단일 뉴클레오타이드 다형성
TFA 트리플루오로아세트산
TMB 3,3',5,5'-테트라메틸벤지딘
SEQUENCE LISTING <110> AMGEN Inc. <120> LOW-VISCOSITY ANTIGEN BINDING PROTEINS AND METHODS OF MAKING THEM <130> IPA190564-US <150> US 62/401,770 <151> 2016-09-29 <150> US 62/430,773 <151> 2016-12-06 <150> US 62/546,469 <151> 2017-08-16 <160> 379 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 705 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 1 atggaaaccc cggcgcagct gctgtttctg ctgctgctgt ggctgccgga taccaccggc 60 gaaattgtgt tgacgcagtc tccaggcacc ctgtctttgt ctccagggga cagagccacc 120 ctctcctgca gggccagtca gagtgttagt agcagctact ttgcctggta ccagcagaaa 180 cctggccagg ctcccaggct cctcatttat ggtgcatcca gtagggccac tggcatccca 240 gacaggttca gtggcagtgg gtctgggaca gacttcactc tcaccatcag cagactggag 300 cctgaagatt ttgcagtgta ttactgtcag cagtatgata ggtcacctcg gacgttcggc 360 caagggacca aggtggaaat caaacgtacg gtggctgcac catctgtctt catcttcccg 420 ccatctgatg agcagttgaa atctggaact gcctctgttg tgtgcctgct gaataacttc 480 tatcccagag aggccaaagt acagtggaag gtggataacg ccctccaatc gggtaactcc 540 caggagagtg tcacagagca ggacagcaag gacagcacct 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aacgccctcc aatcgggtaa ctcccaggag 540 agtgtcacag agcaggacag caaggacagc acctacagcc tcagcagcac cctgacgctg 600 agcaaagcag actacgagaa acacaaagtc tacgcctgcg aagtcaccca tcagggcctg 660 agctcgcccg tcacaaagag cttcaacagg ggagagtgt 699 <210> 10 <211> 233 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 10 Met Ser Pro Ser Gln Leu Ile Gly Phe Leu Leu Leu Trp Val Pro Ala 1 5 10 15 Ser Arg Gly Glu Ile Val Leu Thr Gln Ser Pro Asp Phe Gln Ser Val 20 25 30 Thr Pro Lys Glu Lys Val Thr Ile Thr Cys Arg Ala Ser Gln Ser Ile 35 40 45 Gly Ser Ser Leu His Trp Tyr Gln Gln Lys Pro Asp Gln Ser Pro Lys 50 55 60 Leu Leu Ile Lys Tyr Ala Ser Gln Ser Phe Ser Gly Val Pro Ser Arg 65 70 75 80 Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe Thr Leu Thr Ile Asn Ser 85 90 95 Leu Glu Ala Glu Asp Ala Ala Ala Tyr Tyr Cys His Gln Ser Ser Ser 100 105 110 Leu Pro Leu Thr Phe Gly Gly Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys Arg Thr 115 120 125 Val Ala Ala Pro Ser Val Phe Ile Phe Pro Pro Ser Asp Glu Gln Leu 130 135 140 Lys Ser Gly Thr Ala Ser Val Val Cys Leu Leu Asn 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Val 130 135 140 Lys Asp Tyr Phe Pro Glu Pro Val Thr Val Ser Trp Asn Ser Gly Ala 145 150 155 160 Leu Thr Ser Gly Val His Thr Phe Pro Ala Val Leu Gln Ser Ser Gly 165 170 175 Leu Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val Pro Ser Ser Asn Phe Gly 180 185 190 Thr Gln Thr Tyr Thr Cys Asn Val Asp His Lys Pro Ser Asn Thr Lys 195 200 205 Val Asp Lys Thr Val Glu Arg Lys Cys Cys Val Glu Cys Pro Pro Cys 210 215 220 Pro Ala Pro Pro Val Ala Gly Pro Ser Val Phe Leu Phe Pro Pro Lys 225 230 235 240 Pro Lys Asp Thr Leu Met Ile Ser Arg Thr Pro Glu Val Thr Cys Val 245 250 255 Val Val Asp Val Ser His Glu Asp Pro Glu Val Gln Phe Asn Trp Tyr 260 265 270 Val Asp Gly Val Glu Val His Asn Ala Lys Thr Lys Pro Arg Glu Glu 275 280 285 Gln Phe Asn Ser Thr Phe Arg Val Val Ser Val Leu Thr Val Val His 290 295 300 Gln Asp Trp Leu Asn Gly Lys Glu Tyr Lys Cys Lys Val Ser Asn Lys 305 310 315 320 Gly Leu Pro Ala Pro Ile Glu Lys Thr Ile Ser Lys Thr Lys Gly Gln 325 330 335 Pro Arg Glu Pro Gln Val Tyr Thr Leu Pro Pro Ser Arg Glu Glu 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Leu Ala Glu Ala Pro Glu His Gly Thr Thr Ala Thr Phe 50 55 60 His Arg Cys Ala Lys Asp Pro Trp Arg Leu Pro Gly Thr Tyr Val Val 65 70 75 80 Val Leu Lys Glu Glu Thr His Leu Ser Gln Ser Glu Arg Thr Ala Arg 85 90 95 Arg Leu Gln Ala Gln Ala Ala Arg Arg Gly Tyr Leu Thr Lys Ile Leu 100 105 110 His Val Phe His Gly Leu Leu Pro Gly Phe Leu Val Lys Met Ser Gly 115 120 125 Asp Leu Leu Glu Leu Ala Leu Lys Leu Pro His Val Asp Tyr Ile Glu 130 135 140 Glu Asp Ser Ser Val Phe Ala Gln Ser Ile Pro Trp Asn Leu Glu Arg 145 150 155 160 Ile Thr Pro Pro Arg Tyr Arg Ala Asp Glu Tyr Gln Pro Pro Asp Gly 165 170 175 Gly Ser Leu Val Glu Val Tyr Leu Leu Asp Thr Ser Ile Gln Ser Asp 180 185 190 His Arg Glu Ile Glu Gly Arg Val Met Val Thr Asp Phe Glu Asn Val 195 200 205 Pro Glu Glu Asp Gly Thr Arg Phe His Arg Gln Ala Ser Lys Cys Asp 210 215 220 Ser His Gly Thr His Leu Ala Gly Val Val Ser Gly Arg Asp Ala Gly 225 230 235 240 Val Ala Lys Gly Ala Ser Met Arg Ser Leu Arg Val Leu Asn Cys Gln 245 250 255 Gly Lys Gly Thr Val Ser Gly Thr Leu Ile Gly Leu Glu Phe Ile Arg 260 265 270 Lys Ser Gln Leu Val Gln Pro Val Gly Pro Leu Val Val Leu Leu Pro 275 280 285 Leu Ala Gly Gly Tyr Ser Arg Val Leu Asn Ala Ala Cys Gln Arg Leu 290 295 300 Ala Arg Ala Gly Val Val Leu Val Thr Ala Ala Gly Asn Phe Arg Asp 305 310 315 320 Asp Ala Cys Leu Tyr Ser Pro Ala Ser Ala Pro Glu Val Ile Thr Val 325 330 335 Gly Ala Thr Asn Ala Gln Asp Gln Pro Val Thr Leu Gly Thr Leu Gly 340 345 350 Thr Asn Phe Gly Arg Cys Val Asp Leu Phe Ala Pro Gly Glu Asp Ile 355 360 365 Ile Gly Ala Ser Ser Asp Cys Ser Thr Cys Phe Val Ser Gln Ser Gly 370 375 380 Thr Ser Gln Ala Ala Ala His Val Ala Gly Ile Ala Ala Met Met Leu 385 390 395 400 Ser Ala Glu Pro Glu Leu Thr Leu Ala Glu Leu Arg Gln Arg Leu Ile 405 410 415 His Phe Ser Ala Lys Asp Val Ile Asn Glu Ala Trp Phe Pro Glu Asp 420 425 430 Gln Arg Val Leu Thr Pro Asn Leu Val Ala Ala Leu Pro Pro Ser Thr 435 440 445 His Gly Ala Gly Trp Gln Leu Phe Cys Arg Thr Val Trp Ser Ala His 450 455 460 Ser Gly Pro Thr Arg Met Ala Thr Ala Ile Ala Arg Cys Ala Pro Asp 465 470 475 480 Glu Glu Leu Leu Ser Cys Ser Ser Phe Ser Arg Ser Gly Lys Arg Arg 485 490 495 Gly Glu Arg Met Glu Ala Gln Gly Gly Lys Leu Val Cys Arg Ala His 500 505 510 Asn Ala Phe Gly Gly Glu Gly Val Tyr Ala Ile Ala Arg Cys Cys Leu 515 520 525 Leu Pro Gln Ala Asn Cys Ser Val His Thr Ala Pro Pro Ala Glu Ala 530 535 540 Ser Met Gly Thr Arg Val His Cys His Gln Gln Gly His Val Leu Thr 545 550 555 560 Gly Cys Ser Ser His Trp Glu Val Glu Asp Leu Gly Thr His Lys Pro 565 570 575 Pro Val Leu Arg Pro Arg Gly Gln Pro Asn Gln Cys Val Gly His Arg 580 585 590 Glu Ala Ser Ile His Ala Ser Cys Cys His Ala Pro Gly Leu Glu Cys 595 600 605 Lys Val Lys Glu His Gly Ile Pro Ala Pro Gln Gly Gln Val Thr Val 610 615 620 Ala Cys Glu Glu Gly Trp Thr Leu Thr Gly Cys Ser Ala Leu Pro Gly 625 630 635 640 Thr Ser His Val Leu Gly Ala Tyr Ala Val Asp Asn Thr Cys Val Val 645 650 655 Arg Ser Arg Asp Val Ser Thr Thr Gly Ser Thr Ser Glu Glu Ala Val 660 665 670 Thr Ala Val Ala Ile Cys 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Tyr Asn Gly Asn Thr Asn Tyr Ala Gln Lys Leu 50 55 60 Gln Gly Arg Gly Thr Met Thr Thr Asp Pro Ser Thr Ser Thr Ala Tyr 65 70 75 80 Met Glu Leu Arg Ser Leu Arg Ser Asp Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys 85 90 95 Ala Arg Gly Tyr Gly Met Asp Val Trp Gly Gln Gly Thr Thr Val Thr 100 105 110 Val Ser Ser 115 <210> 377 <211> 109 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 377 Gln Ser Ala Leu Thr Gln Pro Ala Ser Val Ser Gly Ser Pro Gly Gln 1 5 10 15 Ser Ile Thr Ile Ser Cys Thr Gly Thr Ser Ser Asp Val Gly Gly Tyr 20 25 30 Asn Ser Val Ser Trp Tyr Gln Gln His Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu 35 40 45 Met Ile Tyr Glu Val Ser Asn Arg Pro Ser Gly Val Ser Asn Arg Phe 50 55 60 Ser Gly Ser Lys Ser Gly Asn Thr Ala Ser Leu Thr Ile Ser Gly Leu 65 70 75 80 Gln Ala Glu Asp Glu Ala Asp Tyr Tyr Cys Asn Ser Tyr Thr Ser Thr 85 90 95 Ser Met Val Phe Gly Gly Gly Thr Lys Leu Thr Val Leu 100 105 <210> 378 <211> 115 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 378 Gln Val Gln Leu Val Gln Ser Gly Ala Glu Val Lys Lys Pro Gly Ala 1 5 10 15 Ser Val Lys 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100 105

Claims (113)

  1. VH1|1-18 생식선(germline) 서브패밀리의 항체 중쇄 프레임워크 3(HFR3) 폴리펩티드 서열을 변형시키는 단계를 포함하는 항체 점도를 감소시키는 방법으로서, 상기 HFR3 폴리펩티드 서열이 점도를 감소시키는 치환인 T82R, R94S 및 S95R을 포함하도록 변형시키는 것을 포함하되, 상기 아미노산이 Aho 넘버링 시스템에 따라 넘버링되는, 방법.
  2. 제1항에 있어서, 상기 HFR3 폴리펩티드 서열이, 치환되는 것을 제외하고, 서열번호: 114 및 116, 서열번호: 134 및 136, 서열번호: 138 및 140, 서열번호: 146 및 148, 및 서열번호: 150 및 152로 이루어진 군으로부터 선택된 중쇄 및 경쇄 서열을 포함하는 항체에 포함되는, 방법.
  3. 제1항에 있어서, 상기 HFR3 폴리펩티드 서열이 서열번호: 150 및 152의 중쇄 및 경쇄 서열을 포함하는 항체에 포함되는 경우, 상기 방법이 VH1 서열이 치환 S59R을 포함하도록 변형시키는 단계를 추가로 포함하는, 방법.
  4. 제1항에 있어서, 상기 HFR3 폴리펩티드 서열을 포함하는 항체가, 치환되는 것을 제외하고, 서열번호: 134 및 136, 및 서열번호: 150 및 152로 이루어진 군으로부터 선택되는 중쇄 및 경쇄 서열을 포함하는, 방법.
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