KR102150944B1 - 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 마이오스타틴의 기능을 억제할 수 있는 항마이오스타틴 활성을 가지는 재조합 단백질을 통해 근감소증 예방 및 치료 또는 근력강화 기능을 가질 수 있는 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물에 관한 것이다.

Description

근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물{Composition for prevention and treatment of muscle strengthening or treating of sarcopenia}
본 발명은 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 마이오스타틴의 기능을 억제할 수 있는 항마이오스타틴 활성을 가지는 재조합 단백질을 통해 근감소증 예방 및 치료 또는 근력강화 기능을 가질 수 있는 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물에 관한 것이다.
20세기에 들어 인구의 수가 두 배로 증가한 사례는 두 차례나 있었지만, 21세기에 접어들면서 출산율 하락 및 평균 수명의 연장으로 인해 인구의 증가가 두 배로 증가하는 일은 한 번 있기도 어려운 실정이다. 2015년 유엔의 세계인구 전망 (World population prospects : the 2015 revision)에 의하면 2015년 9억 1000만 명이었던 60세 이상의 인구는 2030년 약 14억 명으로 증가할 것이며, 2050년에는 21억 명에 이를 것으로 추정하고 있다. 또한 80세 이상의 초 고령 노년층은 2050년에 약 4억 3400만 명에 달할 것이며 이러한 증가는 향후 수십 년간 지속 될 것으로 전망하고 있다. 대한민국 또한 2000년에 65세 이상의 인구가 전체 인구의 7.2%에 달해 고령화 사회 (aging society)에 들어선 이후, 2018년에는 고령사회 (aged society)로 접어들고, 2026년에는 노인인구의 비율이 20.8%에 달해 초 고령사회 (post-aged society)에 진입한다는 것이 통계청의 전망이다. 또한 다른국가에 비해 우리나라는 고령사회 또는 초고령사회까지 도달하는 기간이 매우 빠르게 접근하고 있는것이 큰 문제점으로 지적되고 있다. 이러한 문제점은 최근 급격히 낮아지는 출산율이 원인으로 생각되어지며 이로인해 노인인구의 수가 급격히 증가하는 현상이 나타나고 있다. 노인인구의 증가는 가구당 노인인구에 대한 부양비 증가로 인한 의료비 부담으로 경제적인 문제점이 야기되고 있으며, 이는 곧 노동인구의 감소로 인해 잠재적인 국가 성장률의 감소에도 영향을 미치고 있다.
노화에 따른 대표적인 생리적 변화는 근육량 및 근력 감소에 있다. 근육량 감소는 40대 이후부터 발생하여 70대까지 10년에 약 8%의 감소가 일어나는 것으로 알려져 있으며, 이후에는 급격한 감소가 발생하여 10년에 최대 15%까지 발생하는 것으로 알려져 있다.
근감소증(Sarcopenia)은 직접적인 근력 감소를 유발하여 각종 신체 기능의 감소 및 장애로 인해 사망의 위험성을 증가시킬 뿐만 아니라, 신진대사의 감소 및 면역력 저하 등 고혈압, 당뇨, 관절염, 비만, 암 등과 같은 대사성 질환의 유병률을 높이는 원인이 되기도 한다.
마이오스타틴(Myostatin, MSTN)은 근육성장을 조절하는 단백질로서 transforming growth factor-β(TGF-β)계열에 속하고 성장분화 인자(growth and differentiation factor-8, GDF-8)으로도 알려져 있다. Begian blue는 자연 상태에서 MSTN 돌연변이로서, 3번째 exon의 11개의 염기가 결손되어 MSTN 단백질이 정상적인 기능을 하지 못해 정상개체의 소보다 근육량이 2~3배 많은 표현형을 보인다.
또한 유전자 knock-out기술을 통해 마우스의 마이오스타틴 유전자의 기능을 제어하면 정상 마우스에 비해 골격근이 2~3배 많은 표현형을 보이는 것으로 알려져 있다.
이러한 마이오스타틴의 기능을 억제하기 위한 다양한 길항제(antagonists)연구는 다양한 분야에서 진행 중에 있다. 분자적 수준에서 마이오스타틴의 기능을 억제하기 위한 방법으로는 MSTN prodomain, activin type II receptor, follistatin, follistatin related protein등이 있다.
이들 단백질들은 마이오스타틴에 직접적으로 결합하여 마이오스타틴이 수용체에 결합하는 것을 억제함으로서 세포 내로 신호 전달을 방해하는 것으로 알려져 있다. Lee와 Mcpherron에 의하면 마우스를 이용한 동물실험에서 activin type II receptor 단백질을 생체 내에서 과 발현 한 결과 근섬유의 증식이 대조군에 비해 27%증가하였으며 근섬유의 비대는 19% 증가를 유도하였다. 최근에는 MSTN의 기능만을 특이적으로 억제하는 항체를 제작하여 동물실험에서 근육 성장을 확인한 바 있다. 하지만 이러한 연구를 토대로 진행한 임상연구에서 근육의 증가가 기대 이하이거나 다양한 부작용으로 인해 연구가 중단되어있다.
따라서, 근감소증을 예방 또는 치료할 수 있는 다양한 치료용 조성물에 대하여 부작용이 적고 경제적으로 활용가치가 높은 신규 소재에 대한 개발이 요구되고 있다.
이에 본 발명자들은 항마이오스타틴 활성을 가지는 재조합 단백질을 개발하였고, 이로서 근력 강화 및 근감소증의 예방 및 치료 효과를 나타는 것을 확인하여 본 발명을 완성하였다.
따라서, 본 발명의 목적은, 신규한 재조합 단백질을 포함하는 근감소증 치료 또는 예방용 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명의 다른 목적은, 신규한 재조합 단백질을 포함하는 근력 강화용 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명의 또 다른 목적은, 마이오스타틴의 기능을 억제할 수 있는 재조합 단백질로서, 노인성 근감소증, 유전질환 대사성 질환에 따른 근감소증 치료 또는 예방용 조성물을 제공하는 것이다.
또한, 본 발명의 또 다른 목적은, 건강증진 및 다이어트를 위해 근육 감소의 예방 차원의 건강기능성식품으로 이용할 수 있는 조성물을 제공하는 것이다.
전술한 목적을 달성하기 위해 본 발명의 일실시예에 따르면, 서열번호 2 내지 서열번호 9로 표시되는 아미노산 서열 중에 선택된 1 이상을 포함하는 근감소증 치료 또는 예방용 약학조성물을 제공한다.
또한, 상기 조성물은 항 마이오스타틴 활성을 가지는 것을 특징으로 한다.
또한, 상기 조성물은 근력 및 근밀도를 향상시키는 것을 특징으로 한다.
한편, 본 발명의 다른 일실시예에 따르면, 서열번호 2 내지 서열번호 9로 표시되는 아미노산 서열 중에 선택된 1 이상을 포함하는 근감소증 예방 또는 개선용 건강기능식품을 제공한다.
한편, 본 발명의 다른 일실시예에 따르면, 서열번호 10 내지 서열번호 17로 표시되는 아미노산 서열 중에 선태고딘 1 이상을 포함하는 근감소증 치료 또는 예방용 약학조성물을 제공한다.
또한, 상기 조성물은 항 마이오스타틴 활성을 가지는 것을 특징으로 한다.
또한, 상기 조성물은 근력 및 근밀도를 향상시키는 것을 특징으로 한다.
또한, 상기 서열번호 10 내지 서열번호 17은 서열번호 2로부터 유래되는 것일 수 있다.
한편, 본 발명의 다른 일실시예에 따르면, 서열번호 10 내지 서열번호 17로 표시되는 아미노산 서열 중에 선택된 1 이상을 포함하는 근감소증 예방 또는 개선용 건강기능식품을 제공한다.
한편, 서열번호 2 내지 17로 표시되는 아미노산 서열 중에 선택된 1 이상을 포함하는 항 마이오스타틴 활성을 가지는 단백질을 제공한다.
한편, 서열번호 12의 아미노산 서열을 포함하는 항 마이오스타틴 활성을 가지는 단백질을 제공한다.
또한, 본 발명의 약학조성물은 생리학적으로 허용되는 담체와 함께 투여될 수 있으며, 경구 투여시에는 결합제, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소, 향료 등을 사용할 수 있으며, 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제, 안정화제 등을 혼합하여 사용할 수 있으며, 국소 투여용의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제, 보존제 등을 사용할 수 있다.
또한, 본 발명의 약학조성물의 제형은 상술한 바와 같은 약제학적으로 허용되는 담체와 혼합하여 다양하게 제조될 수 있다. 예를 들어, 경구 투여시에는 정제, 트로키, 캡슐, 엘릴시르, 서스펜션, 시럽, 웨이퍼 등의 형태로 제조할 수 있으며, 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 형태로 제조할 수 있다. 이외의 본 발명 약제학적 조성물은 각종 제형의 형태로 통용되는 기법에 따라 제조할 수 있다.
또한, 본 발명의 약학조성물은 경구적으로 또는 정맥내, 피하, 비강내 또는 복강내 등에 비경구적으로 사람과 동물에게 투여된다. 비경구적 투여는 피하주사, 근육내 주사 및 정맥주사와 같은 주사법 및 점적법을 포함한다.
또한, 본 발명의 약학조성물에 함유되는 재조합 단백질의 유효 투여량의 범위는 성별, 중증도, 연령, 투여방법, 표적 세포, 발현 수준 등 다양한 요인에 따라 달라질 수 있으며, 당 분야의 전문가들에 의해 용이하게 결정될 수 있다. 하나의 예시로서, 약 0.01ug 내지 약 100ug/kg의 범위일 수 있다.
또한, 본 발명의 건강기능식품은 근감소증의 예방, 치료 또는 완화 또는 근력 강화 효과를 가지는 것으로, 식품, 식품첨가제, 음료 또는 음료첨가제를 들 수 있다. 상기 식품 조성물은 그 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더욱 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에서 식품이란 함은 영양소를 한 가지 또는 그 이상 함유하고 있는 천연물 또는 가공품을 의미하며, 바람직하게는 어느 정도의 가공 공정을 거쳐 직접 먹을 수 있는 상태가 된 것을 의미하며, 통상적인 의미로서, 식품, 식품 첨가제, 건강 기능성 식품 및 음료를 모두 포함하는 의도이며, 바람직하게는 껌 또는 캔디일 수 있다.
또한, 본 발명의 조성물을 첨가할 수 있는 식품으로는 예를 들어, 각종 식품류, 음료, 껌, 캔디, 차, 비타민 복합제, 기능성 식품 등이 있다. 추가로, 본 발명에서 식품에는 특수영양식품(예, 조제유류, 영,유아식 등), 식육가공품, 어육제품, 두부류, 묵류, 면류(예, 라면류, 국수류 등), 건강보조식품, 조미식품(예, 간장, 된장, 고추장, 혼합장 등), 소스류, 과자류(예, 스넥류), 유가공품(예, 발효유, 치즈 등), 기타 가공식품, 김치, 절임 식품(각종 김치류, 장아찌 등), 음료(예, 과실,채소류 음료, 두유류, 발효음료류, 아이스크림류 등), 천연조미료(예, 라면 스프 등), 비타민 복합제, 알코올 음료, 주류 및 그 밖의 건강보조식품류를 포함하나 이에 한정되지 않는다. 상기 식품, 음료 또는 식품첨가제는 통상의 제조방법으로 제조될 수 있다.
또한, 본 발명의 기능성 식품이란 식품에 물리적, 생화학적, 생물공학적 수법 등을 이용하여 해당 식품의 기능을 특정 목적에 작용, 발현하도록 부가가치를 부여한 식품군이나 식품 조성이 갖는 생체방어리듬조절, 질병방지와 회복 등에 관한 체조절기능을 생체에 대하여 충분히 발현하도록 설계하여 가공한 식품을 의미하며, 바람직하게는 근감소증의 예방 및 완화 효과 또는 근력 강화 효과를 생체에 대하여 충분히 발현할 수 있는 식품을 의미한다. 상기 기능성 식품에는 식품학적으로 허용 가능한 식품 보조 첨가제를 포함할 수 있으며, 기능성 식품의 제조에 통상적으로 사용되는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더욱 포함할 수 있다.
상기 외에 본 발명의 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 광물(전해질), 합성 풍미제 및 천연 풍미제 등의 풍미제, 착색제 및 중진제(치즈, 초콜릿 등), 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알코올, 탄산 음료에 사용되는 탄산화제 등을 함유할 수 있다. 이러한 성분을 독립적으로 또는 조합하여 사용할 수 있다. 상기 첨가제는 본 발명의 항균조성물 100 중량부 당 0 내지 20 중량부, 바람직하게는 0.00001 내지 15 중량부 일 수 있다.
전술한 바와 같은 본 발명의 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물에 따르면, 높은 항마이오스타틴 활성을 가지며, 근력, 근지구력 및 근육량을 증가시키며, 결과적으로 노인성 근감소증, 유전질환 대사성 질환에 따른 근감소증 치료 또는 예방용으로 사용될 수 있다.
또한, 건강증진 및 다이어트를 위해 근육 감소의 예방 차원의 건강기능성식품으로 이용될 수 있다.
이상에서의 본 발명에 따른 효과는 상기에 한정되는 것은 아니며, 기타 본 발명의 효과들은 후술할 실시예 및 청구범위에 기재된 사항을 통하여 본 발명이 속하는 분야의 통상의 지식을 가진 자에 의하여 분명하게 이해될 수 있을 것이다.
도 1은 본 발명의 부위 특이적 돌연변이 유발에 의해 제작된 MSTN 프로도메인 벡터의 염기서열 시퀀싱 분석 및 아미노산 서열을 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명의 재조합 단백질의 전기영동 결과를 나타낸 것이다.
도 3은 본 발명의 MSTN 프로도메인의 항 마이오스타틴 활성을 나타낸 것이다.
도 4는 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 뉴클레오펩타이드, 아미노산 서열 및 전기영동 결과를 나타낸 것이다.
도 5는 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 항 마이오스타틴 활성도 측정 결과를 나타낸 것이다.
도 6은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 Samd 경로 상에서 MSTN 신호 차단에 대한 Western blot 결과를 나타낸 것이다.
도 7은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 투여한 마우스모델의 근력 및 지구력 증가를 나타낸 것이다.
도 8은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 투여한 마우스모델의 근육질량 측정 결과를 나타낸 것이다.
도 9는 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 투여한 마우스모델로부터 채취한 혈액으로 항체 생성여부를 확인한 결과이다.
도 10은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70으로부터 구축된 마이오스타틴 프로도메인의 전기영동 결과를 나타낸 것이다.
도 11은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-67, pMALc5x-Pro45-66 및 pMALc5x-Pro45-65 재조합 단백질의 luciferase assay 결과를 나타낸 것이다.
도 12는 본 발명의 Pep45-65-NH2의 항 마이오스타틴 활성도 측정 결과를 나타낸 것이다.
도 13은 본 발명의 Pep45-65-NH2의 Samd 경로 상에서 MSTN 신호 차단에 대한 Western blot 결과를 나타낸 것이다.
도 14는 본 발명의 Pep45-65-NH2를 투여한 마우스모델의 근력 및 지구력 측정 결과를 나타낸 것이다.
도 15는 본 발명의 Pep45-65-NH2를 투여한 마우스모델의 근육 질량 측정 결과를 나타낸 것이다.
도 16은 본 발명의 Pep45-65-NH2를 투여한 마우스모델로부터 채취한 혈액으로 항체 생성여부를 확인한 결과를 나타낸 것이다.
이하, 본 발명에 대하여 보다 상세하게 설명하도록 한다.
본 발명은 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물에 관한 것으로서, 마이오스타틴의 기능을 억제할 수 있는 항마이오스타틴 활성을 가지는 재조합 단백질을 선별하여 마이오스타틴 활성 저해, 근육량, 근밀도 증가 등의 효과를 실험을 통해 확인하였다. 본 발명을 통해서 노인성 근감소증, 유전질환 대사성 질환에 따른 근감소증을 치료할 수 있는 소재로 활용될 수 있다.
본 발명에서 근감소증(sarcopenia)은 골격 근육량의 감소로 인한 질환이며, 직접적으로 근력의 저하를 유발하고 그 결과 각종 신체기능의 감소 및 장애를 일으켜 사망 위험성을 증가시키는 것으로 알려져 있다. 이는 노화와 연관되어 나타나는 점진적인 골격근 감소의 결과로 나타는 질환이다(박성원, 2007, 노인의 근감소증, 대한내분비학회지 제22권 제1호). 특히 본 발명에서는 노인성 근감소증, 유전질환 대사성 질환에 따른 근감소증을 치료 및 예방 효과를 가진다.
본 발명에서는 재조합 단백질을 포함하는 치료 또는 예방용도의 조성물로서, 건강기능 조성물 또는 식품조성물을 포함한다. 여기서 근력 증가는 골격근량의 증가 또는 근기능의 향상으로 인하여 전체적인 근력이 증가되는 것을 말하며, 특정 질명의 환자군에 제한되는 효과는 아니다.
마이오스타틴(Myostatin)은 형질전환 성장인자(Transforming and growth factor-β, TGF-β)중에 하나이며, 성장과 분화를 조절하는 성장분화 인자(growth and differentiation factor-8, GDF-8)로 알려져 있다.
형질변화 성장인자에 속한 다른 단백질들과 유사하게 마이오스타틴의 활성은 전구체의 N-말단에 위치한 마이오스타틴 프로도메인에 의해 조절된다. 마이오스타틴 프로도메인의 full-length 단백질은 성체 마우스 모델에서 근육량의 증가를 유도하였다. 또한, 넙치 마이오스타틴에서 유래된 MSTNPro1 (Pro1-265)와 Pro45-80은 마이오스타틴 신호를 억제한다.
본 발명에서는 면역원성이 없으면서 마이오스타틴 신호를 억제할 수 있는 아미노산 서열을 확인하고자 하였다. 11개의 끝이 잘린 마이오스타틴 프로도메인은 pMALc5x-Pro45-70으로부터 구축되었으며, 루시퍼레이즈 에세이(luciferase assay)에 의해 항 마이오스타틴 활성을 측정하였다. pMALc5x-Pro45-65 (IC50: 3.1 μM)는 가장 강한 항 마이오스타틴 활성을 나타냈으며, 이 아미노산으로부터 합성한 Pep-45-65-NH2 (IC50:3.67 μM)는 pMALc5x-Pro45-65와 유사하게 강한 항 마이오스타틴 활성을 나타냈다. 또한, 마우스 모델에서 피하주사에 의해 근력 및 근지구력의 향상을 확인하였다.
상기 본 발명의 약학적 조성물은 생물학적 제제에 통상적으로 사용되는 담체, 희석제, 부형제 또는 둘 이상의 이들의 조합을 포함할 수 있다. 약제학적으로 허용 가능한 담체는 조성물을 생체 내 전달에 적합한 것이면 특별히 제한되지 않으며, 예를 들어 식염수, 멸균수, 링거액, 완충 식염수, 덱스트로스 용액, 말토 덱스트린 용액, 글리세롤, 에탄올 등을 혼합하여 이용할 수 있으며, 항산화제, 완충액, 정균제 등 다른 통상의 첨가제를 첨가할 수 있다. 또한, 희석제, 분산제, 계면활성제, 결합제 및 윤활제를 부가적으로 첨가하여 수용액, 현탁액, 유탁액 등과 같은 주이용 제형, 환약, 캡슐, 과립 또는 정제로 제제화할 수 있다. 또한, 본 발명의 조성물은 추가로 동일 또는 유사한 기능을 나타내는 유효성분을 1종 이상 함유할 수 있다.
본 발명의 조성물은 목적하는 방법에 따라 비 경구 투여(예를 들어 정맥 내, 피하, 복강 내 또는 국소에 적용)하거나 경구 투여할 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물의 적합한 투여량은 환자의 체중, 연령, 성별, 건강상태, 식이, 제제화 방법, 투여시간, 투여방법, 배설률 및 질환의 중증도 등에 따라 결정될 수 있다.
상기 본 발명의 건강기능식품은 근감소증의 예방, 치료 또는 완화 또는 근력 강화 효과를 가지는 것으로, 식품, 식품첨가제, 음료 또는 음료첨가제를 들 수 있다. 상기 식품 조성물은 그 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더욱 포함할 수 있다.
본 명세서에서 식품이란 함은 영양소를 한 가지 또는 그 이상 함유하고 있는 천연물 또는 가공품을 의미하며, 바람직하게는 어느 정도의 가공 공정을 거쳐 직접 먹을 수 있는 상태가 된 것을 의미하며, 통상적인 의미로서, 식품, 식품 첨가제, 건강 기능성 식품 및 음료를 모두 포함하는 의도이며, 바람직하게는 껌 또는 캔디일 수 있다.
본 발명의 조성물을 첨가할 수 있는 식품으로는 예를 들어, 각종 식품류, 음료, 껌, 캔디, 차, 비타민 복합제, 기능성 식품 등이 있다. 추가로, 본 발명에서 식품에는 특수영양식품(예, 조제유류, 영,유아식 등), 식육가공품, 어육제품, 두부류, 묵류, 면류(예, 라면류, 국수류 등), 건강보조식품, 조미식품(예, 간장, 된장, 고추장, 혼합장 등), 소스류, 과자류(예, 스넥류), 유가공품(예, 발효유, 치즈 등), 기타 가공식품, 김치, 절임 식품(각종 김치류, 장아찌 등), 음료(예, 과실,채소류 음료, 두유류, 발효음료류, 아이스크림류 등), 천연조미료(예, 라면 스프 등), 비타민 복합제, 알코올 음료, 주류 및 그 밖의 건강보조식품류를 포함하나 이에 한정되지 않는다. 상기 식품, 음료 또는 식품첨가제는 통상의 제조방법으로 제조될 수 있다.
본 발명에서 기능성 식품이란 식품에 물리적, 생화학적, 생물공학적 수법 등을 이용하여 해당 식품의 기능을 특정 목적에 작용, 발현하도록 부가가치를 부여한 식품군이나 식품 조성이 갖는 생체방어리듬조절, 질병방지와 회복 등에 관한 체조절기능을 생체에 대하여 충분히 발현하도록 설계하여 가공한 식품을 의미하며, 바람직하게는 근감소증의 예방 및 완화 효과 또는 근력 강화 효과를 생체에 대하여 충분히 발현할 수 있는 식품을 의미한다. 상기 기능성 식품에는 식품학적으로 허용 가능한 식품 보조 첨가제를 포함할 수 있으며, 기능성 식품의 제조에 통상적으로 사용되는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더욱 포함할 수 있다.
상기 외에 본 발명의 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 광물(전해질), 합성 풍미제 및 천연 풍미제 등의 풍미제, 착색제 및 중진제(치즈, 초콜릿 등), 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알코올, 탄산 음료에 사용되는 탄산화제 등을 함유할 수 있다. 이러한 성분을 독립적으로 또는 조합하여 사용할 수 있다. 상기 첨가제는 본 발명의 항균조성물 100 중량부 당 0 내지 20 중량부, 바람직하게는 0.00001 내지 15 중량부 일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
마이오스타틴은 3개의 exon과 2개의 intron으로 구성되어있으며, RNA splicing 과정을 거친 마이오스타틴 mRNA는 약 3.1 kb로 주로 근육 조직에서 발현한다. 인간의 마이오스타틴 유전자는 375개의 아미노산으로 번역되며, signal peptide를 포함하고 있는 28 kDa의 prodomain region과 12 kDa의 mature region으로 구성되어있다 (promyostatin). Promyostatin은 disulfide 결합을 통해 homodimer protein 형태를 유지하며, 마이오스타틴 단백질이 활성상태로 존재 하기 위해서 총 3번의 proteolytic event가 일어난다. 첫 번째로 signal peptidase에 의해 prodomain region 내의 signal peptide가 절단되며, furin (paired basic amino acid enzyme)에 의해 prodomain region과 mature region 영역으로 나뉘게 된다. 절단된 prodomain region은 mature region과 비 공유결합을 유지함으로서 mature region의 활성을 조절하며, 마지막으로 BMP-1/TLD metalloproteinase에 의해 prodomain 내의 75번 arginine과 76번 aspartic acid 사이를 절단하여 prodomain의 활성을 억제함으로서 prodomain과 mature region의 비 공유 결합이 끊어져 활성형의 mature MSTN이 생산된다.
여기서 활성형의 mature region은 세포막에 존재하는 activin type II receptor에 결합하여 인산화 시키며 activin type I receptor로 신호를 전달하여 세포내 smad2의 인산화를 유도한다. 인산화된 smad2는 smad3와 복합체를 형성하여 smad4와 결합한 뒤 target 유전자에 전사를 조절하는 것으로 알려져 있다.
이하, 본 발명의 실시예를 첨부된 도면을 참고하여 보다 상세하게 설명하도록 한다. 그러나, 하기의 실시예는 본 발명의 내용을 구체화 하기 위한 것일 뿐, 이에 의해 본 발명이 한정되는 것은 아닐 것이다.
<실시예 1> 재조합 단백질 발현 벡터 구축
넙치 유래의 마이오스타틴 프로도메인으로부터 마이오스타틴 활성을 억제할 수 있는 재조합 단백질을 구축하기 위하여 site directed mutagenesis 시스템을 이용하여 다양한 길이의 재조합 단백질 발현 벡터를 구축하였다.
Site directed mutagenesis 시스템은 특이적인 프라이머를 이용한 PCR 반응을 통해 염기의 결손, 치환 및 삽입을 유도하는 방법으로, 본 실시예에서는 pMALc5x-Pro45-80 재조합 단백질 발현 벡터로부터 8개의 재조합 단백질 발현 벡터를 구축하였다.
각 재조합 단백질 발현 벡터에 특이적인 프라이머는 NEB사의 NEBaseChanger tool(NEB, USA)을 이용하여 제작하였으며 site directed mutagenesis kit을 이용하여 PCR반응 후 KLD 반응을 시켰다(Site directed mustagenesis kit, NEB, USA).
구축된 벡터는 DH5α competent cell (Solgent, Korea)에 열충격 방법을 통해 형질도입 하였으며, 100 ug/ml의 ampicillin이 첨가된 LB 고체 배지(1% tryptone, 0.5% yeast extract, 1% NaCl, 1% agar)에 도말하여 37°C에서 16시간동안 배양하였다.
선별된 colony는 100 ug/ml의 ampicillin이 첨가된 LB 액체 배지(1% tryptone, 0.5% yeast extract, 1% NaCl)에 접종하여 16시간동안 배양한 후 plasmid extract kit (Solgnet, Korea)을 이용하여 plasmid DNA를 추출하였다.
추출된 plasmid DNA는 sequencing 분석 (Solgent, Korea)을 통해 염기서열을 확인하였으며, 확인된 염기서열은 도 1에 나타내었다. 구축된 재조합 단백질은 각각 pMALc5x-Pro45-70, pMALc5x-Pro45-69, pMALc5x-Pro45-68, pMALc5x-Pro45-67, pMALc5x-Pro46-70, pMALc5x-Pro46-69, pMALc5x-Pro47-70, pMALc5x-Pro49-70로 명명하였다.
도 1은 본 발명의 부위 특이적 돌연변이 유발에 의해 제작된 MSTN 프로도메인 벡터의 시퀀싱 분석결과로서, 각 재조합 단백질 발현 벡터의 뉴클레오타이드 및 아미노산 서열을 나타낸 것이다.
<실시예 2> 재조합 단백질 발현 및 정제
상기 실시예 1에서 염기서열이 확인된 벡터들은 K12TB1 competent cell에 열충격 방법을 통해 형질도입 하였고, 100 ug/ml의 ampicillin과 10 ug/ml의 streptomycin이 첨가된 LB 고체 배지 (1% tryptone, 0.5% yeast extract, 1% NaCl, 1% agar)에 도말하여 37°C에서 16시간 동안 배양하였다.
선별된 colony는 100 ug/ml의 ampicillin과 10 ug/ml의 streptomycine이 첨가된 LB 액체 배지(1% tryptone, 0.5% yeast extract, 1% NaCl)에 접종하여 16시간동안 배양하였다.
재조합 단백질 발현을 위해 500 ml의 LB 액체배지(1% tryptone, 0.5% yeast extract, 1% NaCl, 100 ug/ml ampicillin, 10 ug/ml streptomycine)에 16시간동안 배양한 배지 5 ml를 첨가하여 37°C, 150 rpm에서 OD600값이 0.3~0.4가 될 때까지 진탕배양하였고, 최종 농도가 0.3 mM이 되도록 IPTG(Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside)를 첨가하였다.
이후 30°C, 150 rpm에서 3시간 동안 배양한 뒤, 4°C, 4000 rpm에서 20분간 원심분리 하여 균주를 회수하였으며, 20 ml의 column buffer(20 mM tris-HCl, pH 8.0, 200 mM NaCl, 1 mM EDTA)로 재부유 하고, 최종농도 1 mM이 되도록 PMSF(Phenylmethane sulfonyl fluoride)를 첨가하였다.
Sonicator를 이용하여 대장균을 파쇄하였으며 4°C, 12,000 rpm에서 20분간 원심분리 하였다.
회수된 상등액은 amylose resin (NEB, USA)에 loading 한 뒤, elution buffer (20 mM tris-HCl, pH 8.0, 200 mM NaCl, 1 mM EDTA, 10 mM maltose)를 이용하여 용리하였다.
정제된 재조합 단백질은 12.5% polyacrylamide gel을 이용한 전기영동을 통해 재조합 단백질의 발현과 정제를 확인하였으며, 전기영동 결과를 도 2에 나타내었다.
도 2는 본 발명의 재조합 단백질의 전기영동 결과를 나타낸 것이다. 도 2에서 M은 단백질 크기를 알 수 있는 standard marker, T는 재조합 단백질 발현을 유도한 대장균의 추출물시료, S는 T 시료를 원심분리 한 뒤 상등액 시료, P는 T 시료를 원심분리 한 뒤 pellet 시료, FT는 affinity chromatography에서 S시료를 amylose resin에 loading하여 컬럼을 통과한 시료, W는 시료를 모두 loading 한 후 washing step 시료, E는 elution buffer를 이용하여 재조합 단백질을 용리한 시료이다. 빨간색 화살표로 나타낸 부분은 amylose resin을 이용하여 정제된 재조합 단백질을 나타낸 것이다.
<실시예 3> Luciferase assay 시스템에 의한 항마이오스타틴 활성
세포수준에서 항마이오스타틴 활성은 luciferase assay 시스템을 통해 확인하였다.
Hek293 세포는 DMEM 배지 (10% FBS, 1% penicillin/streptomycine, 1% geneticine)에서 96 well plater에 well 당 2.0×10^4 cell로 seeding 하여 5% CO2 배양기에서 배양하였다.
24시간 후, 배지는 FBS가 제거된 DMEM으로 교체하였고, 1 nM의 재조합 마이오스타틴(R&D system, USA)과 재조합 단백질을 농도별로 처리하여 CO2 배양기에서 배양하였다.
24시간 뒤 배지를 제거하고 65 ul의 DMEM 배지와 65 ul의 reagent(Bright-Glo luciferase assay system, USA)를 처리하여 micro plate luminometer에서 발광을 측정하였다.
측정된 수치는 도 3a 및 도 3b에 나타내었다. 여기서 positive와 negative control의 수치를 이용하여 항마이오스타틴 활성을 %로 나타내었다.
측정된 수치는 양성대조구 (positive control, 마이오스타틴만 처리한 실험구, MSTN only)와 음성대조구 (negative contorl, 마이오스타틴을 처리하지 않은 실험구, No MSTN)의 수치를 아래와 같은 식을 이용하여 항마이오스타틴 활성을 %로 나타내었다.
마이오스타틴 저해활성 (%) = (1 nM 마이오스타틴만 처리한 실험수의 발광수치 - 마이오스타틴과 재조합 단백질을 동시에 처리한 실험구의 발광수치) × 100 / (1 nM 마이오스타틴만 처리한 실험구의 발광수치 - 마이오스타틴을 처리하지 않은 실험구의 발광수치)
도 3은 본 발명의 MSTN 프로도메인의 항 마이오스타틴 활성을 나타낸 것이다.
도 3에서 Luciferase assay system을 이용하여 세포수준에서 항 마이오스타틴 활성을 확인해 본 결과, 총 8개의 재조합 단백질 중에서 pMALc5x-Pro45-70 재조합 단백질이 1 nM의 마이오스타틴에 대한 IC50 value가 1.10 nM로 가장 높은 항 마이오스타틴 활성을 가진 것을 확인할 수 있었다.
또한, 각각의 MSTN 프로도메인의 IC 50 value를 하기 표 1에 나타내었다.
Figure 112018037904411-pat00001
표 1에서와 같이 pMALc5x-Pro45-69의 IC50 value는 2.3 nM, pMALc5x-Pro45-68의 IC50 value는 13.27 nM, pMALc5x-Pro46-70의 IC50 value는 28.62 nM, pMALc5x-Pro46-69의 IC50 value는 52.22 nM, pMALc5x-Pro47-70의 IC50 value는 13.52 nM의 IC50 value를 확인할 수 있었으며, pMALc5x-Pro45-67 과 pMALc5x-Pro49-70은 60 nM 이하에서 항마이오스타틴 활성을 나타내지 않았다.
<실시예 4> pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질의 발현 및 정제
재조합 단백질의 순도를 향상시키기 위해 상기 실시예 3에서 확인된 pMALc5x-Pro45-70 재조합 단백질의 C-terminal 부위에 His tag를 site directed mutagenesis system을 이용하여 삽입하였고, pMALc5x-Pro45-70-Hisx6로 명명하였다.
pMALc5x-Pro45-70의 C말단에 6개의 Histidine이 결합된 형태의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질의 염기서열을 sequencing 분석을 통해 확인하였으며, 도 4에 나타내었다.
pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질의 정제는 20 ml의 binding buffer(20 mM tris-HCl, pH8.0, 500 mM NaCl, 5 mM imidazole)에 최종농도 1 mM이 되도록 PMSF를 첨가하여 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질이 발현된 균주를 재부유 하여 sonicator을 이용하여 파쇄하였다.
이후 4°C, 12,000 rpm에서 20분간 원심분리하여 회수한 상등액은 실린지 필터 (pore size : 0.2 um)에 필터하여 Ni-NTA resin에 loading 한 뒤, elution buffer(20 mM tris-HCl, pH8.0, 500 mM NaCl, 40 mM imidazole)를 이용하여 용리하였다.
정제된 재조합 단백질은 dialysis tube를 이용하여 24시간동안 투석하였고, amylose resin을 이용하여 앞서 설명한 방법에 따라 2차 정제하였다.
도 4는 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 뉴클레오펩타이드, 아미노산 서열 및 전기영동 결과를 나타낸 것이다.
도 4에서 M은 단백질 크기를 알 수 있는 standard marker, T는 재조합 단백질 발현을 유도한 대장균의 추출물시료, S는 T 시료를 원심분리 한 뒤 상등액 시료, P는 T 시료를 원심분리 한 뒤 pellet 시료, FT1는 S시료를 Ni-NTA resin에 loading하여 컬럼을 통과한 시료, W1는 컬럼의 washing step 시료, E1는 elution buffer를 이용하여 재조합 단백질을 용리한 시료, FT2는 1차 정제 (Ni-NTA 정제)에서 elution한 시료를 투석 한뒤 amylose resin에 loading 하여 컬럼을 통과한 시료, W2는 컬럼의 washing step 시료, E2는 elution buffer를 이용하여 재조합 단백질을 용리한 시료이다.
E1에서 두개의 빨간색 화살표로 나타낸 부분은 Ni-NTA 정제 후 목적하는 재조합 단백질 이외에 다른 단백질들이 보였지만, E2에서 나타낸 빨간색 화살표의 경우 목적하는 재조합 단백질만 명확하게 정제된것을 확인할 수 있었다.
<실시예 5> pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 항 마이오스타틴 활성
Luciferase assay system을 이용하여 상기 실시예 4의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 항미오스타틴 활성을 측정하였으며, 그 결과를 도 5에 나타내었다.
도 5는 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 항 마이오스타틴 활성도 측정 결과를 나타낸 것으로, 1 nM의 마이오스타틴에 대해 IC 50 값이 0.29 nM임을 확인할 수 있다.
상기에서 pMALc5x-Pro45-70의 IC50 value가 1.1 nM 인것과 비교해 봤을 때 2 step(Ni-NTA resin 정제 후 amylose resin 정제) affinity chromatography를 이용한 정제를 통해 목적 단백질의 순도가 높아져, 항 마이오스타틴 활성이 높아진 것으로 볼 수 있다.
또한, 마이오스타틴과 같은 family에 속해있고 유사한 아미노산 서열을 가지는 activin A와 GDF11에 대한 저해활성을 luciferase assay를 통해 확인할 수 있었다.
pMALc5x-Pro45-70-Hisx6는 1 nM의 activinA에 대해 IC50 value가 32.84 nM 이었고, 1 nM의 GDF11 에 대한 IC50 value는 22.65 nM이었다.
항마이오스타틴 IC50 value인 0.29 nM일 경우에 activinA와 GDF11에 대한 저해 효과는 없지만 20 nM 이상의 농도에서는 항 activinA 또는 항 GDF11 효과에 의한 side effect를 고려해야 할 것이다.
여기서, ActivinA와 GDF11은 마이오스타틴과 같은 TGF-b superfamily에 속해있는 인자로서 마이오스타틴과 유사한 염기서열 및 구조를 이룬다. ActivinA의 경우 마이오스타틴과 같은 receptor를 공유하여, 발생 초기의 형태형성 및 복구, 신경발달, 염증, 암 등 모두 언급하기 힘들정도로 여러 종류의 세포에서 작용을 한다.
GDF11은 최근 노화 억제 인자로 알려져 있긴 하나 아직 그 기능이 명확하지 않다. 마이오스타틴과 아미노산 서열이 매우 유사하며, 발생 초기에는 앞뒤축 형성에 관여하며 발생 초기에 기능을 하지 못할 경우 골격형성에 문제점을 나타낸다. 또한 대뇌 혈관 및 신경 발생에 관여하기도 한다.
ActivinA와 GDF11은 모두 세포의 생존, 분화 등에 매우 밀접한 연관이 있으며 마이오스티탄과 유사한 신호전달 경로를 이용한다. 따라서, ActivinA와 GDF11에 영향이 없이 마이오스타틴의 활성만 특이적으로 억제하는 재조합 단백질 및 펩타이드의 농도는 매우 중요하다.
<실시예 6> pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 마이오스타틴 신호전달 경로에 미치는 영향
실시예 4의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6이 마이오스타틴 신호전달 경로에 미치는 영향을 확인해 보기 위해 wester blot을 통해 smad 2와 smad 3 전사인자의 인산화 정도를 확인하였다.
Western blot은 위해 HepG2 세포를 DMEM 배지 (10% FBS, 1% penicillin/streptomycine)에서 6 well plater에 well 당 2.0×10^5 cell로 seeding 하여 5% CO2 배양기에서 배양하였다.
24시간 후, 배지는 FBS가 제거된 DMEM으로 교체하였고, 4시간 뒤 10 nM의 재조합 마이오스타틴과 600 nM의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 30분간 처리하였다.
세포는 PBS로 2회 세척 후 RIPA buffer (20 mM tris-HCl, pH7.5, 150 mM NaCl, 1 mM Na2EDTA, 1 mM EGTA, 1% NP-40, 1% sodium deoxychloate, 2.5 mM sodium pyrophosphate, 1 mM β-glycerophosphate, 1 mM NA3NO4, 1 ug/ml leupeptin(cell signaling, USA)와 protease inhibitor cocktail, phosphatase inhibitor cocktail (Roche, USA)을 처리하였다.
이후, 세포는 sonicator를 이용하여 파쇄하였으며 4°C, 12,000 rpm에서 20분간 원심분리하였다.
상등액은 BCA assay를 통해 단백질 정량을 하였고, 10% polyacryamide gel 에 전기영동하였다.
전기영동 후 PVDF membrane에 transfer 하였고 5% BSA또는 5% skim milk를 이용하여 상온에서 2시간 동안 blocking 하였다.
PVDF Membrane은 TBS-T buffer를 이용하여 상온에서 10분간 3회 washing 하였고 1차 항체 (Samd2, P-Smad2, Smad3, P-Smad3, β-actin, Cell signaling, USA))을 상온에서 2시간동안 반응 시켰다.
이후 TBS-T buffer을 이용하여 상온에서 10분간 3회 washing 하였고 2차 항체 (anti-Mouse-IgG, anti-Rabbit IgG, Cell signaling, USA))를 상온에서 2시간 동안 반응시켰다.
PVDF Membrane은 TBS-T buffer를 이용하여 상온에서 10분간 3회 washing 하였고 SuperSignal West Femto Maximum Sensitivity Substrate (Thermo Scientific, USA)를 이용하여 x-ray 필름에 감광하였다.
도 6은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 Samd 경로 상에서 MSTN 신호 차단에 대한 Western blot 결과를 나타낸 것이다.
도 6에서 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6가 마이오스타틴 신호 전달을 방해함으로써 세포 안쪽으로 진행되는 신호(Smad 전사인자의 인산화)를 저해하는 것을 확인할 수 있었다.
도 6의 (A)는 MSTN 길항제로서의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 역할에 대한 웨스턴 블롯 결과를 나타낸 것이고, (B)는 HepG2 세포에서 총 Smad2 및 phospho-Smad2의 농도 측정 결과를 나타낸 것이다. (C)는 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 유무에 관계없이 HepG2 세포에서 총 Smad3 및 phospho-Smad3의 농도를 측정한 것이다.
(A)에서 Lane 1은 control로서 세포에 아무것도 처리하지 않은 lane이다. Lane 2는 마이오스타틴만 처리한 lane으로 인산화된 smad2, smad3의 발현량이 높아진것을 확인할수 있다. Lane 3은 positive control로서 마이오스타틴과 SB431542 (마이오스타틴이 결합하는 수용체의 인산화를 억제하는 small molecule)를 동시에 처리한 lane으로 마이오스타틴에 의해 높아져야 할 인산화된 Smad2, 3 발현량이 높아지지 않는 것을 확인할 수 있었다. Lane 4는 마이오스타틴과 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질을 동시에 처리한 lane으로서 SB431542를 처리한 lane과 마찬가지로 인산화된 smad 2, 3의 발현량이 높아지지 않은 것으로 보아 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6가 마이오스타틴이 수용체에 결합하는 것을 방해하는 것으로 나타났다.
<실시예 7> pMALc5x-Pro45-70-Hisx6가 근육에 미치는 영향
In vivo 수준에서 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6가 근육에 미치는 영향을 확인해보기 위해 ICR 마우스에 피하주사하여 근력 및 근지구력의 변화를 확인하였다.
실험에 사용된 마우스는 5주령 된 수컷 ICR 마우스로서 2주 동안 총 5회의 피하주사하였다. 주사량은 마우스 체중에 대비하여 20 mg/kg의 농도로 피하 주사 하였으며 0, 7, 14일에 체중과 근력테스트, 근지구력 테스트를 진행하였다. 실험이 마친 후 앞다리와 뒷다리 근육의 무게와 부피를 측정함으로서 근밀도를 계산하였고, 혈액 시료로 부터 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질에 대한 항체 생성 여부를 판단하였다.
도 7은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 투여한 마우스모델의 근력 및 지구력 증가를 나타낸 것이다.
도 7에서 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 피하주사를 통해 마우스 체중은 유의적인 차이를 나타내지 않았다. 하지만 근력은 7일에 6.3% 유의적으로 증가 (p<0.001)하였으며 14일에는 7일에 비해 감소하긴 하였으나 0일에 비해 유의적인 증가 (p<0.01)를 나타내었다.
근지구력의 지표가 되는 swimming endurance test에서는 7일에 대조군에 비해 106% 증가 (p<0.005)하였으며 14일에는 근력과 마찬가지로 7일에 비해 감소하긴 하였으나 0일에 비해 유의적인 증가 (p<0.05)를 나타내었다.
도 8은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 투여한 마우스모델의 근육질량 측정 결과를 나타낸 것이다.
도 8에서 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 피하주사를 통해 앞다리와 뒷다리 모두 근육의 질량은 대조군에 비해 유의적으로 증가(앞다리 : p<0.1, 뒷다리 : p<0.001)하였으며 뒷다리의 경우 근육의 부피 또한 유의적으로 증가(p<0.05) 하였다.
근육의 질량과 부피를 이용하여 계산한 근밀도는 뒷다리에서 대조군에 비해 4.9% 유의적으로 증가(p<0.05) 하였다.
도 9는 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 투여한 마우스모델로부터 채취한 혈액으로 항체 생성여부를 확인한 결과이다.
7일과 14일에 채취한 혈액으로 부터 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6에 대한 항체 생성 여부를 ELISA 방법을 통해 확인하였다. 채취한 혈액은 상온에서 3000 rpm으로 20분간 원심분리하여 혈청만 분리하여 사용하였다. pMALc5x-Pro45-70-Hisx6은 96 well plate에 well 당 100 ng씩 분주 하여 4°C에서 24시간 동안 코팅하였다. PBS 를 이용하여 3회 washing 후 1% BSA를 이용하여 상온에서 3시간 동안 blocking 하였다. 7일과 14일에 채취한 serum을 well에 첨가하여 상온에서 3시간 동안 반응하였다. PBS를 이용하여 4회 washing 후 anti-mouse IgG alkaline phosphate를 처리하여 상온에서 3시간 동안 반응하였다. PBS를 이용하여 4회 washing 후, 100 ul의 p-nitrophenyl phosphate (pNPP, Sigma, USA)를 처리하고 37°C에서 빛을 차단한 채 30분간 반응 한 후 405 nm에서 흡광도를 측정하였다.
도 9에서 피하주사 한 그룹은 대조군에 7일에 309% 높은 흡광도를 나타내었고(p<0.001), 14일이 되었을 때 509% 높은 흡광도를(p<0.001) 나타낸 것으로 보아, pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 피하주사를 통해서 7일부터 항체가 생성된 것으로 사료된다. 이러한 결과는 14일에 근력과 근지구력에 영향을 미침으로서 7일에 근력과 근지구력이 증가한 반면 14일에는 항체에 의해 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 기능이 상쇄되어 근력 및 근 지구력이 더 이상 증가하지 못하고 대조군과 유사하게 감소하였다.
pMALc5x-Pro45-70-Hisx6를 14일간 5번의 피하주사를 실시한 후 채취한 혈액으로부터 분리한 혈청을 이용하여 중성지방, 총콜레스테롤, 글루코즈, LDH activity, GPx activity, HDL, LDL, FFA를 측정하였다. 총콜레스테롤, 중성지방, 글루코즈는 Lipidocare (SD biosense, Korea)장비를 이용하여 측정하였고, LDH activity, GPx activity, HDL, LDL, FFA은 Biovision kit (Biovision, USA)을 이용하여 함량을 측정하였다. 측정된 수치들은 하기 표 2에 나타내었다.
Figure 112018037904411-pat00002
상기 표 2에서 대조군에 비해 총콜레스테롤은 16.4% 유의적으로 감소하였다(p<0.01). 하지만 HDL과 LDL의 함량에서는 유의적인 차이를 확인할수 없었다.
또한 중성지방의 함량은 대조군에 비해 41% 유의적으로 감소(p<0.001)하였고, 글루코즈의 함량은 대조군에 비해 9.7% 감소하였지만 유의적인 차이는 없었다.
FFA는 중성지방의 감소로 인해 대조군에 비해 31% 유의적으로 감소 (p<0.005)하였다.
<실시예 8> pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 기반 재조합 단백질 구축
상기 실시예 7의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6 재조합 단백질을 이용한 in vivo 실험에서 항체가 형성됨에 따라 일정 시간이 경과한 이후, 근력 및 근 지구력이 더 이상 증가되지 않는 것으로 나타났다. 따라서 항원성이 없는 재조합 단백질이 필요하여 보다 길이가 짧은 재조합 단백질을 구축하고자 하였다.
상기 실시예 3에서 확인된 pMALc5x-Pro45-70 서열을 기반으로 하여 8개의 재조합 단백질을 구축하였으며, 각각 pMAL-c5x-Pro45-67, pMAL-c5x-Pro45-66, pMAL-c5x-Pro45-65, pMAL-c5x-Pro45-64, pMAL-c5x-Pro45-63, pMAL-c5x-Pro45-62, pMAL-c5x-Pro45-61, pMAL-c5x-Pro45-60으로 명명하였다.
이들 중에 pMAL-c5x-Pro45-66, pMAL-c5x-Pro45-65, pMAL-c5x-Pro45-64, pMAL-c5x-Pro45-63, pMAL-c5x-Pro45-62, pMAL-c5x-Pro45-61, pMAL-c5x-Pro45-60의 재조합 단백질을 site directed mutagenesis 시스템을 이용하여 발현 벡터를 구축하여 발현 여부를 확인하였으며, 그 결과는 도 10에 나타내었다.
도 10은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-70으로부터 구축된 마이오스타틴 프로도메인의 전기영동 결과를 나타낸 것이다. 도 10에서 M은 단백질 크기를 알 수 있는 standard marker, T는 재조합 단백질 발현을 유도한 대장균의 추출물시료, S는 T 시료를 원심분리 한 뒤 상등액 시료, P는 T 시료를 원심분리 한 뒤 pellet 시료, FT는 affinity chromatography에서 S시료를 amylose resin에 loading하여 컬럼을 통과한 시료, W는 시료를 모두 loading 한 후 washing step 시료, E는 elution buffer를 이용하여 재조합 단백질을 용리한 시료이다. 빨간색 화살표로 나타낸 부분은 amylose resin을 이용하여 정제된 재조합 단백질을 나타내었다.
도 11은 본 발명의 pMALc5x-Pro45-67, pMALc5x-Pro45-66 및 pMALc5x-Pro45-65 재조합 단백질의 luciferase assay 결과를 나타낸 것으로, pMALc5x-Pro45-67, pMALc5x-Pro45-66, pMALc5x-Pro45-65 재조합 단백질은 luciferase assay 시스템에 의해서 항마이오스타틴 활성을 확인할 수 있었다. 나머지 재조합 단백질에서는 항마이오스타틴 활성을 확인할 수 없었다.
본 발명에서 pMALc5x-Pro45-70 기반 재조합 단백질들의 Luciferase assay와, in silico 분석 결과를 하기 표 3에 나타내었다.
Figure 112018037904411-pat00003
Luciferase assay 결과 pMALc5x-Pro45-67과 pMALc5x-Pro45-66은 1 nM의 마이오스타틴에 대한 IC50 value가 각각 0.16 uM과 8.0 uM임을 확인하였지만 in silico 분석을 통해 면역원성이 있는 것으로 분석되었다.
pMALc5x-Pro45-65는 in silico 분석을 통해 면역원성이 없는 것으로 분석되었으며 luciferase assay 실험을 통해 IC50 value값이 3.1 uM임을 확인할 수 있었다.
나머지 pMALc5x-Pro45-64, pMALc5x-Pro45-63, pMALc5x-Pro45-62, pMALc5x-Pro45-61, pMALc5x-Pro45-60은 면역원성은 없었으나, 5 uM 이하에서 항마이오스타틴 활성을 나타내지 않았다.
재조합 단백질의 경우 정제의 편의성을 위해 fusion protein을 함유하고 있어 단백질의 크기가 크고 항원성을 가질 가능성이 크므로 pMALc5x-Pro45-65 아미노산 서열을 가지는 펩타이드를 합성하여 사용하였다.
합성된 펩타이드는 Pep45-65-NH2로 명명하였으며, luciferase assay 시스템을 통해 항 마이오스타틴 활성을 확인하였다. 또한, 마이오스타틴과 같은 family에 속하며 유사한 아미노산 서열을 가지는 activinA와 GDF11에 대한 저해 활성을 luciferase assay 시스템을 통해 확인하였다.
도 12는 본 발명의 Pep45-65-NH2의 항 마이오스타틴 활성도 측정 결과를 나타낸 것이다. 도 12에서 Pep45-65-NH2는 1 nM의 마이오스타틴에 대해 3.6 uM의 IC50 value를 확인할 수 있었고, 1 nM의 activinA와 1 nM의 GDF11에는 10 uM 이하의 Pep45-65-NH2에서는 저해 활성이 없는 것으로 보아 Pep45-65-NH2가 마이오스타틴만 특이적으로 저해한다는 것을 확인할 수 있었다.
western blot을 통해서 Pep45-65-NH2가 마이오스타틴 신호전달에 미치는 영향을 확인하였다. Pep45-65-NH2의 western blot 방법은 실시예 6의 pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 western blot 방법과 동일하게 진행하였다. Pep45-65-NH2의 western blot결과를 도 13에 나타내었으며, smad2 전사인자의 인산화를 농도의존적으로 저해하는 것을 확인할 수 있었다.
도 13은 본 발명의 Pep45-65-NH2의 Samd 경로 상에서 MSTN 신호 차단에 대한 Western blot 결과를 나타낸 것이다.
도 13의 (A)에서 Lane 1은 control로서 세포에 아무것도 처리하지 않은 lane이다.
Lane 2는 마이오스타틴만 처리 한 lane으로 인산화된 smad2의 발현량이 높아진 것을 확인할 수 있다.
Lane 3은 positive control로서 마이오스타틴과 SB431542 (마이오스타틴이 결합하는 수용체의 인산화를 억제하는 small molecule)를 동시에 처리한 lane으로 마이오스타틴에 의해 높아져야 할 인산화된 Smad2 발현량이 높아지지 않는 것을 확인할 수 있었다.
Lane 4와 5는 마이오스타틴과 Pep45-65-NH2 펩타이드를 동시에 처리한 lane으로서 농도 의존적으로 마이오스타틴이 수용체에 결합하는 것을 방해하는 것을 확인할 수 있었다.
도 14는 본 발명의 Pep45-65-NH2를 투여한 마우스모델의 근력 및 지구력 측정 결과를 나타낸 것으로, ICR 마우스를 이용한 in vivo 실험에서 Pep45-65-NH2는 2주동안 5번의 피하주사하였고 주사량은 마우스 체중 대비 20 mg/kg의 농도로 주사하였다.
0, 7, 14일에 무게와 근력테스트, 근지구력 테스트를 실시한 결과 7일과 14일 모두 대조군에 비해 유의적으로 무게가 증가 (p<0.05)된 것을 확인할 수 있었으며 근력과 근지구력에서 모두 대조군에 비해 유의적으로 증가 (근력 : p<0.01, 근지구력 : p<0.05)하는 것을 확인할 수 있었다.
도 15는 본 발명의 Pep45-65-NH2를 투여한 마우스모델의 근육 질량 측정 결과를 나타낸 것으로, Pep-45-65-NH2의 피하주사를 통해 앞다리와 뒷다리 모두 근육의 질량은 대조군에 비해 유의적으로 증가(p<0.01)하였으며 뒷다리의 경우 근육의 부피 또한 유의적으로 증가 (p<0.05)하였다.
근육의 질량과 부피를 이용하여 계산한 근밀도는 뒷다리에서 대조군에 비해 유의적으로 증가 (p<0.1)하였다.
도 16은 본 발명의 Pep45-65-NH2를 투여한 마우스모델로부터 채취한 혈액으로 항체 생성여부를 확인한 결과를 나타낸 것으로, 7일과 14일에 채취한 혈액으로 부터 Pep-45-65-NH2에 대한 항체 생성 여부를 ELISA 방법을 통해 확인하였다. 피하주사 한 그룹은 7일과 14일에서 모두 대조군과 흡광도 Pep-45-65-NH2에 대한 항체 형성이 되지 않는 것으로 나타났다.
Pep-45-65-NH2를 피하주사 한 후 채취한 혈액으로부터 분리한 혈청을 이용하여 중성지방, 총콜레스테롤, 글루코즈, LDH activity, GPx activity, HDL, LDL, FFA를 측정하였다. 총콜레스테롤, 중성지방, 글루코즈는 Lipidocare (SD biosense, Korea)장비를 이용하여 측정하였고, LDH activity, GPx activity, HDL, LDL, FFA은 Biovision kit (Biovision, USA)을 이용하여 함량을 측정하였다. 측정된 수치들은 하기 표 4에 나타내었다.
Figure 112018037904411-pat00004
표 4에서와 같이 Pep45-65-NH2의 피하주사로 인해 혈청 내 중성지방의 함량은 대조군에 비해 26.5% 유의적으로 감소(p<0.05)하였다. 또한 글루코즈의 함량도 대조군에 비해 19.1% 유의적으로 감소 (p<0.001)하였다.
FFA는 중성지방의 감소로 인해 대조군에 비해 73% 유의적으로 감소 (p<0.01)하였다.
이에 Pep45-65-NH2의 피하주사를 통해 근육의 질량 및 부피의 증가로 대조군에 비해 근밀도가 유의적으로 상승하였으며, 증가된 근육량에 따라서 혈액내 중성지방과, 글루코즈 및 FFA의 함량이 유의적으로 감소한 것을 확인하였다. 또한, pMALc5x-Pro45-70-Hisx6의 결과와는 달리 14일까지 근력 및 근지구력이 지속적으로 증가하는 것을 확인하였다.
이상에서 살펴본 바와 같이, 본 발명에 따른 근력 강화 또는 근감소증 예방 및 치료용 조성물은 발명의 구체적인 실시예를 상세하게 설명되었으나, 본 발명의 사상을 이해하는 당업자는 동일한 사상의 범위 내에서 다른 구성요소를 추가, 변경, 삭제 등을 통하여, 퇴보적인 다른 발명이나 본 발명 사상의 범위 내에 포함되는 다른 실시예를 용이하게 제안할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상술한 상세한 설명보다는 후술하는 특허청구의 범위에 의하여 나타내어지며, 특허청구의 범위의 의미 및 범위 그리고 그 균등 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
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Claims (11)

  1. 서열번호 2, 서열번호 3, 서열번호 4, 서열번호 6, 서열번호 7, 서열번호 8, 서열번호 10, 서열번호 11 또는 서열번호 12의 아미노산 서열로 이루어진 펩타이드를 유효성분으로 포함하는 근감소증 치료 또는 예방용 약학 조성물.
  2. 제 1 항에 있어서,
    상기 조성물은 항 마이오스타틴 활성을 가지는 것을 특징으로 하는 근감소증 치료 또는 예방용 약학 조성물.
  3. 제 1 항에 있어서,
    상기 조성물은 근력 및 근밀도를 향상시키는 것을 특징으로 하는 근감소증 치료 또는 예방용 약학 조성물.
  4. 서열번호 2, 서열번호 3, 서열번호 4, 서열번호 6, 서열번호 7, 서열번호 8, 서열번호 10, 서열번호 11 또는 서열번호 12의 아미노산 서열로 이루어진 펩타이드를 유효성분으로 포함하는 근감소증 예방 또는 개선용 건강기능식품.
  5. 삭제
  6. 삭제
  7. 삭제
  8. 삭제
  9. 삭제
  10. 삭제
  11. 시험관 내(in vitro)에서 서열번호 2, 서열번호 3, 서열번호 4, 서열번호 6, 서열번호 7, 서열번호 8, 서열번호 10, 서열번호 11 또는 서열번호 12의 아미노산 서열로 이루어진 펩타이드를 시료에 처리하는 단계를 포함하는 마이오스타틴의 활성 억제 방법.
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