KR100613691B1 - 토양 메타게놈 유래 신규 리파제 및 이를 이용하여 라세믹에틸 2-브로모프로피오네이트를 선택적으로 분할하는 방법 - Google Patents

Abstract

본 발명은 토양 메타게놈 유래 신규 리파제 및 이를 이용하여 라세믹 에틸 2-브로모프로피오네이트 (ethyl 2-bromo propionate)를 광학선택적으로 분할하는 방법에 관한 것으로, 구체적으로 토양 미생물의 메타게놈에서 분리한 서열번호: 3의 리파제 유전자, 이로부터 코딩되는 광학이성질체에 반응특이성을 갖는 서열번호: 4의 리파제 단백질, 및 상기 리파제 단백질을 이용하여 라세믹 에틸 2-브로모프로피오네이트로부터 한 가지 광학이성질체를 선택적으로 가수분해하여 분할하는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 신규 리파제 단백질은 광학선택성이 우수하여 라세믹 에틸 2-브로모프로피오네이트를 단일 이성질체로 순수하게 분리하는데 유용하게 사용될 수 있다.

Description

토양 메타게놈 유래 신규 리파제 및 이를 이용하여 라세믹 에틸 2-브로모프로피오네이트를 선택적으로 분할하는 방법{NOVEL LIPASE FROM SOIL METAGENOME AND METHOD FOR SELECTIVELY PARTITIONING LACEMIC ETHYL 2-BROMOPROPIONATE USING SAME}

도 1은 토양 메타게놈 유래 리파제 ELP182를 암호화하는 서브클론으로 형질전환된 대장균에서 목적하는 33 kDa의 리파제 ELP182의 발현을 SDS-PAGE로 확인한 결과이다.

본 발명은 광학이성질체에 반응특이성을 갖는 토양 미생물의 메타게놈에서 분리한 신규 리파제 ELP182 유전자, 이로부터 코딩되는 단백질 및 상기 단백질을 이용하여 라세믹 에틸 2-브로모프로피오네이트를 광학선택적으로 분할하는 방법에 관한 것이다.

미생물로부터 생산된 단백질을 산업적으로 이용하려는 연구는 지난 100여 년간 여러 분야에서 폭넓게 진행되어 왔다. 이러한 연구는 주로 배양이 가능한 미생물을 대상으로 이루어졌고, 이로부터 밝혀진 다양한 미생물 효소들이 산업적으로 이용되고 있다. 그러나, 배양이 가능한 미생물로부터 생산되는 효소에 대해서는 이미 많은 연구가 되어있어 현재는 다수의 미생물을 배양하여 신규한 효소를 탐색하기 위한 시도가 이루어지고 있다.

그러나, 최근 분자미생물 생태학의 연구를 통해서 자연계에 존재하는 미생물의 99％ 이상이 전형적인 배지에서 배양되지 않는다는 사실이 증명되었다 (Amann et al., Microbiol. Rev. 59: 143-169, 1995; Hugenholtz and Pace, Trends Biotechnol. 14: 190-197, 1996; Ward et al., Nature 345: 63-65, 1990). 따라서, 실제로 배양되어 동정된 적이 없는 대다수 미생물들의 효소를 찾으려는 노력이 필요하며, 이는 분자생물학적인 유전자 재조합 발현을 통하여 가능하리라 여겨진다.

이러한 접근방법의 일환으로 메타게놈 (metagenome)에 관한 연구가 시도되고 있는데, 메타게놈은 자연계에 존재하는 모든 미생물의 유전체를 통칭하는 것으로 정의된다. 일반적으로, 메타게놈 연구는 자연계 시료로부터 미생물을 배양하지 않고 메타게놈을 분리한 후, 이들을 라이브러리로 작성하여 배양가능한 대장균에 도입하는 단계로 구성된다. 이는 배양이 불가능했던 미생물로부터 유용 산물을 확보하기 위한 방법으로, 유전자의 유래가 되는 미생물에 대한 정보는 얻기가 어려우나 미생물의 산물과 유전자를 동시에 확보할 수 있는 장점이 있다.

미국 위스콘신 대학 연구팀은 처음으로 대형의 메타게놈을 성공적으로 분리하여 세균성 인위적 염색체 (bacterial artificial chromosome, BAC) 벡터에 클로닝하여 메타게놈 라이브러리를 구축하였고, 이로부터 광범위한 항생물질 및 그의 생합성에 관련된 유전자들을 분리하였다 (Gillespie et al., Appl. Environ. Microbiol. 68: 4301-4306, 2002; Rondon et al., Appl. Environ. Microbiol. 66: 2541-2547, 2000). TIGR (The Institute for Genomic Research) 연구팀에서도 해양 미생물의 총 미생물 메타게놈 라이브러리를 BAC 벡터에 구축하여 해양 생태계로부터 배양되지 않는 미생물의 유전자원 탐색을 시도하고 있다.

한편, 자연계에 존재하는 약리활성 화합물은 대부분 키랄 구조를 가지고 있으며 한 가지 광학이성질체 (enatiomer)로 존재하는데 반해, 화학합성에 의해 생산되는 많은 약리활성 화합물은 두 가지 광학이성질체가 혼합된 형태의 라세믹 화합물 (racemate)로서 얻어지게 된다. 이때, 대부분 한 종류의 광학이성질체만이 약리 활성을 나타내며 나머지는 활성이 없거나 부작용을 일으키기도 한다. 따라서, 기존의 라세믹 화합물을 약리활성이 있는 단일 이성질체로 전환시키거나, 앞으로 개발될 약리활성 화합물 역시 순수한 단일 광학이성질체로서 생산하는 것이 바람직하다.

순수한 광학이성질체를 얻는 방법으로서는 라세믹 화합물로부터 얻는 방법과 키랄성을 갖지 않는 화합물로부터 촉매를 사용하여 키랄 화합물을 합성하는 비대칭 합성법 (asymmetric synthesis)이 있다. 라세믹 화합물로부터 한 가지 광학이성질체를 분리하는 방법으로서 효소를 사용한 방법이 많이 연구되고 있는데, 이는 효소 촉매가 화학촉매보다 뛰어난 광학 선택성과 온화한 반응조건을 가지기 때문이다. 또한, 효소는 기질특이성이 있어 비슷한 종류의 물질에도 폭넓은 응용이 가능하다는 장점을 가지고 있다.

이러한 효소촉매로 이용되는 것 중의 하나가 리파제 (lipase)이다. 리파제는 트리글리세라이드 (triglyceride)를 가수분해하는 효소로 유지의 전환뿐만 아니라 수용액에서의 가수분해 및 유기용매 내에서의 (트랜스)에스터화 반응에 의해 다양한 정밀화학품, 특히 광학활성 의약품의 생산에 유용한 효소로 알려져 있다. 리파제는 다른 효소들에 비해 상대적으로 저렴하게 생산할 수 있으며 조효소를 필요로 하지 않아 산업적으로 큰 장점이 있어 최근에는 생물의약분야에서 생체촉매로 널리 활용되면서 그 중요성이 부각되고 있다.

이에 본 발명자들은 기질에 대한 우수한 광학선택성과 반응성을 갖는 신규한 리파제 유전자를 토양 메타게놈으로부터 분리한 후 이로부터 생산된 리파제 단백질을 이용하여 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트로부터 한 가지 광학이성질체를 선택적으로 생산하는 방법을 개발함으로써 본 발명을 완성하였다.

따라서, 본 발명의 목적은 신규 리파제 유전자 및 이에 의해 코딩되는 신규 리파제를 제공하는 것이다.

본 발명의 다른 목적은 상기 리파제를 이용하여 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트로부터 단일 광학이성질체를 선택적으로 생산하는 방법을 제공하는 것이 다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 토양 메타게놈 유래 신규 리파제 유전자를 제공한다.

또한, 본 발명은 상기 리파제 유전자에 의해 코딩되는, 기질에 대해 우수한 광학선택성과 반응성을 갖는 단백질을 제공한다.

아울러, 본 발명은 상기 리파제 단백질을 이용하여 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트를 선택적으로 가수분해하여 분할함으로써 약리활성을 갖는 단일의 광학이성질체를 생산하는 방법을 제공한다.

이하, 본 발명을 상세히 설명한다.

본 발명은 토양 메타게놈으로부터 분리한 서열번호: 3의 염기서열을 갖는 리파제 유전자 및 그의 단편을 제공한다.

본 발명자들은 신규한 리파제 유전자를 토양으로부터 동정하기 위하여, 토양 미생물로부터 메타게놈을 분리한 후 포스미드 (fosmid)를 이용하여 대장균에 메타게놈 라이브러리를 작성하였다. 상기 라이브러리로부터 트라이뷰티린 (tributyrin)의 가수분해 여부를 통해 리파제 활성을 갖는 메타게놈 클론을 선별하였다. 리파제 활성관련 유전자를 다시 작게 재분리하여 유전자 부위를 결정하였고 이의 염기서열을 분석하였다. 그 결과, 토양 메타게놈으로부터 서열번호: 3으로 기재되는 1,866 bp의 염기서열 (GenBank 등재번호 제AY496581호)을 갖는 유전자를 분리하였다.

서열번호: 3의 염기서열에서, 뉴클레오티드 번호 921 내지 1856 부위 (1854-1856: 종결코돈)에 해당하는 전사 해독 프레임 (open reading frame)은 리파제 단백질 코딩 영역으로 이로부터 유도되는 아미노산 서열을 서열번호: 4로 기재되는 311개 아미노산으로 구성되어 있다. 본 발명에서는 상기 단백질을 리파제 ELP182로 명명하였다. 상기 서열번호: 3의 리파제 유전자는 이전에 보고된 리파제 유전자 집단과 32∼46％ 정도의 낮은 상동성을 보여 리파제를 암호화하는 신규한 유전자로서 확인되었다.

그러나, 코돈의 축퇴성 (degeneracy)으로 인하여 또는 상기 리파제 유전자를 발현시키고자 하는 생물에서 선호되는 코돈을 고려하여 본 발명의 리파제 유전자는 코딩영역으로부터 발현되는 리파제 단백질의 아미노산 서열을 변화시키지 않는 범위 내에서 코딩영역에 다양한 변형이 이루어질 수 있고 코딩영역을 제외한 부분에서도 유전자의 발현에 영향을 미치지 않는 범위 내에서 다양한 변형 또는 수식이 이루어질 수 있으며, 그러한 변형 유전자 역시 본 발명의 범위에 포함된다. 따라서, 본 발명은 상기 서열번호: 3의 리파제 유전자와 실질적으로 동일한 염기 서열을 갖는 폴리뉴클레오티드 및 상기 유전자의 단편을 포함한다. 실질적으로 동일한 폴리뉴클레오티드란 80％ 이상, 바람직하게는 90％ 이상, 가장 바람직하게는 95％ 이상의 서열 상동성을 갖는 것들을 의미한다.

본 발명의 리파제 유전자로부터 발현되는 리파제 단백질 ELP182는 311개의 아미노산으로 이루어져 있고 서열번호: 4와 같은 아미노산 서열을 가지며 크기는 약 33 kDa이다. 그러나, 상기 리파제 단백질의 아미노산 서열에서도 역시 단백질의 기능에 영향을 미치지 않는 범위 내에서 아미노산의 치환, 부가 또는 결실이 이루어질 수 있으며, 목적에 따라 단백질의 일부만이 사용될 수도 있으며 이와 같이 변형된 아미노산 서열 역시 본 발명의 범위에 포함된다. 따라서, 본 발명은 상기 리파제 단백질과 실질적으로 동일한 아미노산 서열을 갖는 폴리펩티드 및 그의 단편을 포함하며, 실질적으로 동일한 폴리펩티드란 80％ 이상, 바람직하게는 90％ 이상, 가장 바람직하게는 95％ 이상의 서열 상동성을 갖는 것들을 의미한다.

본 발명의 리파제 유전자 및 단백질은 토양의 메타게놈으로부터 분리하거나, 공지의 DNA 또는 펩티드 합성 방법에 따라 합성할 수도 있다. 또한, 이렇게 제조된 유전자를 당 분야에 공지된 미생물 발현용 벡터에 삽입하여 발현벡터를 제조한 후 이를 적절한 숙주 세포, 예를 들어, 대장균 또는 효모 세포 등에 도입시킬 수 있다. 이와 같이 형질전환 된 숙주를 이용하여 본 발명의 유전자의 DNA를 대량으로 복제하거나 단백질을 대량 생산할 수 있다. 벡터의 제작 시에는, 상기 리파제 유전자 또는 단백질을 생산하고자 하는 숙주 세포의 종류에 따라 프로모터 (promoter), 종결자 (terminator) 등과 같은 발현 조절 서열, 자가-복제 서열 및 분비 시그날 등을 적절히 선택하고 조합할 수 있다.

본 발명의 서열번호: 3의 유전자로부터 코딩되는 단백질의 리파제 활성을 조사한 결과, 상기 유전자를 포함하지 않는 pUC119 벡터로만 형질전환된 대장균은 p-나이트로페닐 뷰티레이트 (nitrophenyl butyrate)를 전혀 분해하지 못한 반면, 본 발명의 리파제 ELP182 서브클론으로 형질전환된 대장균은 p-나이트로페닐 뷰티레이트를 효과적으로 분해하여 강한 리파제 활성을 나타내었다. 이로부터 토양 메타게놈에서 분리한 리파제 유전자가 대장균 형질전환체에서 발현되고 배지로 분비되어 우수한 리파제 활성을 나타냄을 확인하였다.

이에, 본 발명자들은 상기에서 확인된 토양 메타게놈 유래 리파제 단백질 ELP182에 대하여 라세믹 화합물로부터 단일의 광학이성질체를 선택적으로 가수분해할 수 있는 효소촉매로서의 가능성을 검정하였다.

라세믹 에틸 2-브로모프로피오네이트에 대한 본 발명의 리파제 단백질 ELP182의 광학선택적 반응 특이성을 조사하였다. 그 결과, 본 발명의 토양 메타게놈 유래 리파제 단백질 ELP182가 S-형 에틸 2-브로모프로피오네이트에는 반응하지 않고 R-형 에틸 2-브로모프로피오네이트에만 선택적으로 작용하여 이를 에틸 2-브로모프로피온산으로 가수분해시키는 우수한 키랄 선택성을 가짐을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 리파제 단백질 ELP182가 라세믹 화합물에서 R-형 에스터에만 광학선택적으로 작용하여 이를 유기산으로 가수분해시킴으로써 라세믹 화합물을 효율적으로 분할할 수 있음을 확인하였다.

이에 본 발명은 상기 토양 메타게놈 유래 리파제 단백질 ELP182를 이용하여 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트를 광학선택적으로 분할하는 방법을 제공한다.

본 발명의 방법은 하기 반응식 1에 예시한 바와 같이, 우수한 광학선택성을 갖는 토양 메타게놈 유래 리파제 단백질 ELP182를 사용하여 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트에서 R-형 에스터 (R-1)에만 선택적으로 작용하여 이를 R-형 유기산 (R-2)으로 가수분해할 수 있으므로, 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트로부터 단일의 이성질체를 효과적으로 분리할 수 있다.

리파제 단백질 ELP182의 광학선택적 가수분해 반응은 pH 6 내지 8의 완충용액 존재하에서 상온, 바람직하게는 5 내지 50℃에서 5 내지 48시간 동안 수행한다. 또한, 본 발명의 리파제 ELP182는 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트의 총 중량에 대해 0.1 내지 10 중량％의 양으로 첨가할 수 있다.

이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.

단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.

<실시예 1> 토양 메타게놈 DNA의 분리

대전시 유성구 일대의 산림에서 채취한 토양 시료를 메타게놈 라이브러리의 작성에 사용하였다. 채취한 토양을 메쉬 직경이 1.4 ㎜인 체에 걸러서 직경 1.5 ㎜ 이상의 입자와 식물 잔재물 등을 제거한 후, 메타게놈 추출을 위하여 5 g씩 사용하였다. 토양 시료 5 g을 15 ㎖ 완충용액 (100 mM Tris-HCl [pH 8.0], 100 mM EDTA [pH 8.0], 100 mM 인산염 나트륨 (sodium-phosphate) [pH 8.0], 1.5 M NaCl 및 1％ CTAB)에 현탁하였다. 상기 현탁액에 100 ㎎/㎖ 농도의 단백질 분해효소 (proteinase) K (Sigma)를 100 ㎕ 첨가한 후 37℃ 진탕 배양기에서 150 rpm의 속도로 30분간 진탕하였다. 여기에 20％ SDS를 1.5 ㎖ 첨가하고 잘 흔들어 섞어주었다.

상기 혼합물을 65℃ 항온수조에서 30분마다 한번씩 섞어주면서 2시간 동안 유지하였다. 이후에 7,000 rpm에서 10분간 원심분리하여 상등액을 분리하였고, 동일한 부피의 클로로폼/아이소아밀 알콜 (24:1)을 첨가하여 섞어준 후 8,000 rpm에서 5분간 원심분리하여 DNA가 포함된 상등액만을 새 튜브로 옮겼다. 상등액 부피의 0.6배에 해당하는 아이소프로판올을 첨가하여 섞어준 후 11,000 rpm에서 5분간 원심분리하여 DNA 침전물을 얻었다. 상기 DNA 침전물을 70％ 에탄올로 세척한 후 원심분리로 에탄올을 제거하였다. 이로부터 얻은 침전물을 건조시켜서 0.5 ㎖의 TE 완충용액 (10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA [pH 8.0])에 용해시킨 후 4℃에 보관하면서 라이브러리 작성에 이용하였다. 분리된 DNA의 양과 크기 결정은 PFGE (pulsed field gel electrophoresis)로 확인하였다. PFGE는 6 V/㎝에서 120°고정각 (fixed angle)으로 1 내지 6초의 교대시간 (switch time) 조건에서 6시간 동안 수행하였다.

이로부터 토양 시료 1 g당 약 1 내지 1.5 ㎍의 메타게놈 DNA를 회수하였고, 분리된 DNA 크기는 20 내지 100 kb 정도임을 확인하였다.

<실시예 2> 메타게놈 라이브러리의 작성 및 리파제 활성 클론의 선별

DNA 전기영동, 플라스미드 분리, DNA 절단 등은 통상적인 분자생물학적 방법 (Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, ed. 2, 1989)에 따라 수행하였고, 시약 및 제한효소는 제조사의 지침에 따라 사용하였다.

상기 실시예 1에서 토양 시료로부터 추출한 메타게놈을 저융점 아가로스 겔 (low melting point agarose gel)에서 전기영동을 한 후 20 kb 이상의 DNA를 포함하는 아가로스 겔 블록 (block)만을 회수하였다. 회수된 겔 블록에 겔레이즈 (GeLase, Epicentre, USA)를 처리하여 DNA를 순화하였고, 이 과정을 통해 휴믹산 (humic acid) 등을 제거하였다. 순화된 DNA 조각의 양끝 말단을 DNA 말단-리페어 (end-repair) 효소로 처리하여 무딘 말단 (blunt end)을 갖는 20 kb 이상의 메타게놈 DNA를 얻었고, 이를 제한효소 Eco72I로 처리한 포스미드 벡터 pEpiFOS-5 (Epicentre, USA)에 라이게이션하고 라이게이션 혼합물을 상업적인 패키징 시스템 (packagene extract, Epicentre. USA)을 이용하여 E. coli에 도입한 후 50 ㎍/㎖ 의 클로람페니콜 (chloramphenicol)이 첨가된 LB 한천배지에서 자라는 형질전환체 들을 선별하였다. 선별된 형질전환체들로부터 SDS-알칼리 용혈 (alkali lysis) 방법으로 분리한 플라스미드 DNA를 제한효소 BamHI으로 절단한 후 전기영동을 수행한 결과, 선별된 80개의 형질전환체들 모두 재조합 플라스미드를 포함하고 있는 것으로 확인되어 라이브러리가 잘 작성되었음을 확인하였다. 삽입된 메타게놈 DNA의 평균 크기는 35 kb 이상이었다.

이렇게 작성된 메타게놈 라이브러리로부터 리파제 활성을 나타내는 클론을 선별하기 위하여, LB 배지에 1％의 트라이뷰티린 (tributyrin)을 첨가하여 유화한 후 각 클론들을 상기 배지에 도말하였다. 이를 37℃에서 2일간 배양하여 콜로니 주위에 투명한 후광 (halo)을 보이는 콜로니를 선발하였다. 선발된 활성 클론의 리파제 활성을 상기 방법에 의해 재검정하여 최종적으로 8종을 분리하였고, 이들을 -80℃에 보관하였다.

<실시예 3> 리파제 활성 유전자 부위 결정 및 염기서열 결정

토양으로부터 분리된 메타게놈에서 리파제 활성 유전자 부위를 결정하기 위하여, 리파제 활성을 보이는 8개의 클론중에서 우수한 활성을 보이는 pELP18으로부터 플라스미드 DNA를 대량으로 분리하였고, 플라스미드 DNA를 제한효소 BfuCI으로 부분 절단하여 DNA 크기를 2 내지 5 kb로 만들었다. 상기 DNA 절편들을 BamHI으로 절단한 pUC119 (Vieira and Messing, Methods Enzymol. 153: 3-11, 1987)에 라이게이션하여 2차 숏건 라이브러리 (shot gun library)를 작성하였다. 작성된 라이브러리를 암피실린 (ampicillin)과 트라이뷰티린이 첨가된 LB 배지에 도말하고 37℃ 에서 2일간 배양하여 리파제 활성 서브클론을 분리하였다. 분리한 활성 서브클론중 삽입 DNA가 가장 작은 서브클론을 선발하고 염기서열을 결정하여 서브클론을 pELP182로 명명하였다.

서브클론에 삽입된 DNA의 염기서열 중 리파제 활성부위를 결정하기 위하여, in vitro 트랜스포존 삽입변이 (insertional mutagenesis)를 유발한 후 염기서열 분석을 통해 리파제 단백질을 코딩하는 유전자를 분석하였다. 트랜스포존 삽입변이는 전이효소 (transposase)와 GPS3 트랜스포존을 함유하는 pGPS3 (New England Biolabs)을 이용하여 제조사의 지침에 따라 수행하였다. 이로부터 BamHI, HindIII, EcoRI 및 EcoRV 절단 다형성을 평가하여 서로 다른 부위에 트랜스포존이 삽입된 변이체들을 분리하였고, 이들의 리파제 활성을 재검정하여 활성을 상실한 변이체를 다수 선별하였다.

리파제 활성을 상실한 변이체들의 트랜스포존 삽입부위의 DNA 염기서열을 결정하기 위하여, GPS3 트랜스포존의 염기서열에 기초하여 제작된 서열번호: 1 및 2의 프라이머 N과 S (New England Biolabs)를 사용하고 (주)제노텍에서 자동염기서열 분석기 ABI3700을 이용하여 염기서열을 분석하였다. 그 결과, 리파제 활성을 가지는 서브클론이 서열번호: 3으로 기재되는 1,866 bp의 염기서열을 가짐을 확인하였고, 상기 염기서열을 포함하는 서브클론을 pELP182로 명명하였다. 리파제 활성을 상실한 변이체들의 트랜스포존 삽입부위가 서열번호: 3의 1,866 bp 부위에서도 코딩부위인 951 bp 와 1856 bp 사이에 위치하여 리파제 활성 부위가 확인되었다. 서열번호: 3의 염기서열을 갖는 리파제 활성 유전자를 기존에 보고된 리파제 유전자 집단과 비교한 결과, 32∼46％ 정도의 낮은 상동성을 보여 리파제를 암호화하는 신규한 유전자로서 확인되었다. 토양 메타게놈으로부터 분리한 리파제 활성을 나타내는 서열번호: 3의 유전자는 2004년 5월 1일자로 GenBank에 등재되었고 (등재번호 제AY496581호), 상기 염기서열로부터 코딩되는 서열번호: 4의 311개 아미노산 서열로 구성된 리파제 단백질을 리파제 ELP182로 명명하였다.

<실시예 4> 리파제 활성 유전자 부위를 포함하는 형질전환체의 제조

상기 서브클론 pEPL182를 콤피턴트 대장균 세포 DH5α 50 ㎕와 혼합한 후 얼음에서 20분간 정치시키고, 42℃에서 45초간 열처리하여 서브클론을 콤피턴트 세포내로 도입한 후, LB 배지 400 ㎕를 가하여 37℃에서 45분 동안 배양하였다. 이로부터 형질전환체를 선별하기 위하여 1％의 트라이뷰티린과 암피실린이 100 ㎍/㎖ 함유된 LB 플레이트에 도말하여 37℃에서 16시간 배양하였다. 배양된 플레이트로부터 트라이뷰티린을 가수분해하여 강한 후광을 보이는 콜로니들을 선별하고 pELP182 도입여부를 플라스미드 분리 키트 ( Qiagen)를 이용하여 플라스미드 DNA를 분리하고 제한효소 BamHI EcoRI, HindIII, PstI 및 SmaI의 절단양상을 판별하여 확인하였다. 이와 같이 강한 리파제 활성을 유지하는 pELP182를 함유한 대장균 DH5α 세포를 글리세롤 스톡으로 -80℃에 보관하면서 리파제 단백질 실험에 이용하였다.

<실시예 5> 리파제 활성 측정

신규한 리파제 단백질을 코딩하는 서브클론 pELP182를 포함하는 대장균 형질 전환체를 LB 액체배지에 2일간 현탁 배양하였다. 배양액을 14,000 rpm에서 원심분리하여 상등액만을 분리한 후 다시 막 여과를 거쳐 균체가 제거된 배양액을 확보하였다. 상기 배양액은 농축하지 않은 상태로, 상기에서 분리된 대장균체는 10배로 농축한 후 12％ SDS-PAGE 전기영동을 통해 단백질의 발현을 분석하였다. 그 결과, 도 1에 나타난 바와 같이, 예상되는 크기의 33 kDa 단백질이 pUC119 벡터만 가진 대장균에 비해 강하게 발현되었고 배지로도 잘 분비됨을 확인하였다

또한, 상기 대장균 형질전환체로부터 발현된 단백질의 리파제 활성을 p-나이트로페닐 뷰티레이트 (nitrophenyl butyrate)를 이용하여 검정하였다. 먼저, 대장균 형질전환체를 LB 액체배지에 접종하고 37℃에서 1일간 배양한 후 원심분리하여 상등액을 분리하였다. 2 mM의 p-나이트로페닐 뷰티레이트를 포함하는 기질용액 0.1 ㎖을 1.8 ㎖의 0.1 M 인산 완충용액 (pH 7.25)과 혼합한 후 상기에서 분리된 상등액에 0.1 ㎖ 첨가하여 상온에서 매 분당 반응의 진행을 분광학적으로 모니터링 하였다. 리파제 활성은 반응 생성물인 p-나이트로페놀 (nitrophenol)을 400 ㎚에서 분광학적으로 정량하여 결정하였고, 그 결과를 하기 표 1에 나타내었다. 효소 활성 1 단위 (unit, U)는 1분당 1 μmole의 p-나이트로페놀을 생성하는 데 필요한 효소의 활성으로 정의하였다.

U/㎖	pUC119	ELP182
p-나이트로페닐 뷰티레이트	0	0.059

그 결과, pUC119 벡터만 포함하는 대장균은 리파제 활성을 전혀 나타내지 않 은 반면, 본 발명의 리파제 ELP182 서브클론으로 형질전환된 대장균은 강한 리파제 활성을 나타내었다. 이로부터 토양 메타게놈에서 분리한 리파제 유전자가 대장균 형질전환체에서 발현되고 배지로 분비되어 우수한 리파제 활성을 나타냄을 확인하였다.

<실시예 6> 리파제 ELP182의 광학선택적 반응 특이성

본 발명에 따라 토양 메타게놈으로부터 분리된 서열번호: 2의 리파제 활성 유전자로부터 코딩된 리파제 단백질 ELP182가 광학 선택적인 가수분해 반응에서 키랄 선택성을 갖는지를 다음과 같이 조사하였다.

먼저, 키랄 유기산 에스터인 라세믹 에틸 2-브로모 프로피오네이트 (ethyl 2-bromo propionate) 54 ㎎을 헥산 3 ㎖에 용해시켜 기질용액을 준비하였다. 효소액은 리파제 서브클론 pEPL182를 포함하는 대장균을 LB 액체배지에서 배양한 후 균체를 제거하여 얻은 배양액을 사용하였고, 상기 효소액 2 ㎖을 완충용액 (pH 7.0, Aldrich) 2 ㎖과 함께 상기 기질용액에 가하고 상온에서 24시간 동안 교반하였다. 이때, 이용한 리파제 ELP182를 포함하는 배양액에서 리파제의 농도는 8 ㎍/㎖으로 결정되었다.

광학선택성의 반응 여부는 키랄 컬럼으로 시클로실-B (Ψ=0.25 ㎜, 30 m, 애질런트사)를 사용하는 가스 크로마토그래피로 확인하였다. 이때, 컬럼은 초기 온도를 80℃에서 5분간 유지한 후 5 ℃/분의 속도로 200℃까지 상승시켜 5분간 유지하였다. 음성 대조군으로는 기질 용액에 리파제 효소액을 첨가하지 않은 것을 사 용하였고, 양성 대조군으로는 기존에 광학이성질체의 가수분해 활성을 갖는 것으로 알려진 칸디다 안타르티카 (Candida antartica) 유래 리파제 (노보디스크사), 리조무코 미헤이 (Rhizomucor miehei) 유래 리파제 (노보디스크사) 및 칸디다 루고사 (Candida rugosa) 유래 리파제 (시그마사)를 0.5 ㎎/㎖ 농도로 사용하였다.

리파제 종류	R-형 진행율 (％)	S-형 진행율 (％)
음성 대조군	0	0
칸디다 안타르티카	24	33
리조무코 미헤이	41	35
칸디다 루고사	33	16
리파제 ELP182	31	<0.1

상기 표 2에 나타난 바와 같이, 기존에 상업적인 리파제들이 키랄 선택성 없이 R-형 및 S-형 에틸 2-브로모 프로피오네이트 이성질체 모두를 에틸 2-브로모 프로피온산으로 가수분해한 반면, 본 발명의 리파제 ELP182는 S-형 에틸 2-브로모 프로피오네이트에는 반응하지 않고 R-형 에틸 2-브로모 프로피오네이트에만 선택적으로 작용하여 이를 R-형 에칠 2-브로모 프로피온산으로 효율적으로 가수분해함을 알 수 있다.

상기에서 전술한 바와 같이, 본 발명의 토양 메타게놈 유래 리파제 단백질은 우수한 광학선택성을 갖고 R-형 이성질체만을 특이적으로 가수분해하여 분할함으로써 라세믹 에틸 2-브로모 프로피오네이트로부터 약리활성을 갖는 단일의 이성질체 를 효과적으로 생산할 수 있다.

서열목록 전자파일 첨부

Claims (7)

1. 서열번호: 4의 아미노산 서열을 갖는 리파제 단백질.
2. 제 1항의 리파제 단백질을 코딩하는 유전자.
3. 삭제
4. 제 2항에 있어서,

   서열번호: 3의 염기 번호 921 내지 1856에 해당하는 염기서열을 갖는 것을 특징으로 하는 유전자.
5. 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트를 제 1항의 리파제 단백질을 사용하여 가수분해시켜 R-형 및 S-형 이성질체를 분할하는 방법.
6. 제 5항에 있어서,

   가수분해 반응이 5 내지 50℃에서 pH 6 내지 8의 완충용액을 사용하여 진행되는 것을 특징으로 하는 방법.
7. 제 5항에 있어서,

   리파제 단백질이 라세믹 에틸-2 브로모프로피오네이트 총 중량에 대해 0.1 내지 10 중량％로 첨가되는 것을 특징으로 하는 방법.

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