JPWO2020116398A1 - 抗ｉｇｆ−ｉ受容体ヒト化抗体 - Google Patents

Abstract

ＩＧＦ−Ｉ受容体を介して、筋肉量を増加させるが、血糖値を低下させないヒト化抗体を提供する。斯かるヒト化抗体は、各ＣＤＲ配列としてそれぞれ配列番号１〜６等の特定のアミノ酸配列を有し、ＩＧＦ−Ｉ受容体の細胞外ドメインに特異的に結合する、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体である。

Description

本発明は、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体に関する。具体的には、脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体に特異的に結合する抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体に関する。

１．ＩＧＦ−Ｉ
ＩＧＦ−Ｉは、インスリン様成長因子であり、下垂体から分泌される成長ホルモン（ＧＨ）によるＧＨ受容体の活性化を介して、主に肝臓から分泌され、ＩＧＦ−Ｉ受容体に作用することにより、各種臓器で種々の生理機能を発現する。このことからＩＧＦ−Ｉは、種々の疾患への治療が期待される。ＩＧＦ−Ｉは、プロインスリンのアミノ酸配列と比較して、約４０％と高い相同性を有することから、インスリン受容体にも結合して、インスリン様の作用を発現することがある（非特許文献１）。また、ＩＧＦ−Ｉ受容体は、インスリン受容体のアミノ酸配列と比較して、約６０％と高い相同性を有することから、両受容体はヘテロ二量体を形成することがある（非特許文献１）。なお、インスリンは、インスリン受容体に作用することにより、強力な血糖低下作用を発現することから、血糖降下薬として治療に用いられている。

２．ＩＧＦ−Ｉ受容体
ＩＧＦ−Ｉ受容体はα鎖及びβ鎖で構成され、Ｌ１、ＣＲ、Ｌ２、Ｆｎ１、Ｆｎ２及びＦｎ３の６つの細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、及び細胞内ドメインを含む膜貫通タンパク質である（非特許文献２）。ＩＧＦ−Ｉ受容体の細胞内ドメインは、チロシンキナーゼを有する。細胞外ドメインであるＣＲ（cysteine-rich domain）は、ＩＧＦ−ＩがＩＧＦ−Ｉ受容体に結合した時の当該受容体の立体構造の変化に伴う、細胞内のチロシンキナーゼの活性化に関与する。ＩＧＦ−Ｉ受容体は、ホモ二量体複合体（ホモ型）を形成して、ＩＧＦ−Ｉが結合すると、受容体キナーゼを活性化することにより信号を送る。また、インスリン受容体とのヘテロ二量体複合体（ヘテロ型）を形成して、インスリン又はＩＧＦ−Ｉが結合すると、受容体キナーゼを活性化することにより信号を送る（非特許文献３、４）。

３．ＩＧＦ−Ｉの生理作用
ＩＧＦ−Ｉは、身長や体重増加等の成長促進作用、及び糖代謝促進や血糖低下作用等のインスリン様代謝作用が明らかにされている。ヒト組換えＩＧＦ−Ｉであるメカセルミンは、インスリン受容体異常症の高血糖、高インスリン血症、黒色表皮腫及び多毛といった症状を改善することが認められている。また、成長ホルモン抵抗性低身長症の成長障害を改善することが認められている（非特許文献５）。

４．ＩＧＦ−Ｉの成長促進作用
ＩＧＦ−Ｉはヒト軟骨細胞のＤＮＡ合成能を亢進させることが知られている。また、ＩＧＦ−Ｉの投与は、下垂体摘出ラットの体重を増加させ、大腿骨骨長を伸長させる（非特許文献５）。

５．ＩＧＦ−Ｉの筋肉量増加作用
ＩＧＦ−Ｉを介した細胞増殖活性の亢進は、ＩＧＦ−Ｉ受容体の持続的な活性化が必要である（非特許文献６）。ＩＧＦ−Ｉ受容体を過剰発現させた動物では筋肉量が増加している（非特許文献７）。また、ＩＧＦ−Ｉ／ＩＧＦＢＰ３の持続投与は、大腿骨近位部骨折患者の握力を亢進させ、介助なしでの座位からの立ち上がり能力を改善させる（非特許文献８）。高齢のヒト及びマウスの筋肉中のＩＧＦ−Ｉ濃度は、若齢と比較して低下することが知られているが（非特許文献９、１０）、ＩＧＦ−Ｉを筋組織特異的に強制発現させた高齢のマウスでは、野生型マウスと比較して、筋肉量が改善した（非特許文献１１）。

６．筋肉量を増加させる先行品
グレリン受容体の作動薬であるアナモレリンは、廃用性筋萎縮症であるカケキシアの臨床試験において、除脂肪量を増加させた。一方、副作用として、吐き気及び血糖値の上昇が認められる（非特許文献１２）。

ミオスタチンは、アクチビン受容体II（ＡｃｔＲII）に作用して、Ａｋｔ／ｍＴＯＲを阻害する、骨格筋形成の負の制御因子である（非特許文献１３〜１５）。抗ミオスタチン抗体であるＬＹ２４９５６５５は、全人工股関節置換術を実施した患者及び高齢者の筋肉量を増加させる（非特許文献１６、１７）。

また、抗ＡｃｔＲII抗体であるビマグルマブは、神経筋疾患患者の筋肉量を増加させる（非特許文献１８）。しかし、骨格筋の形成を促進させ、治療のために使用できる薬は現在のところ存在しない。

７．ＩＧＦ−Ｉの血糖低下作用
ＩＧＦ−Ｉのインスリン様作用として、血糖低下作用が知られている。ＩＧＦ−Ｉは、ラット筋肉由来細胞においてグルコース取込み作用を亢進させる（非特許文献５）。また、ＩＧＦ−Ｉの投与は、ラットの血糖値を低下させる（非特許文献５）。

ＩＧＦ−Ｉによる血糖低下作用は、臨床上の副作用として低血糖を惹起させることが報告されている（非特許文献１９）。更に、ＩＧＦ−Ｉは、ヒトへの投与により低血糖を起こすことから、治療開始時は、低用量から順次適当量を投与し、投与後の血糖値等を含む各種臨床所見の観察が必要となる（非特許文献５）。

ＩＧＦ−Ｉは、ＩＧＦ−Ｉ受容体の下流シグナルであるＡｋｔのリン酸化の亢進を介して血糖低下作用を発現する。Ａｋｔの活性型変異体は、３Ｔ３−Ｌ１細胞のグルコース取込みを亢進させる（非特許文献２０）。一方、Ａｋｔ２を欠損させたマウスは、血糖値が上昇した（非特許文献２１）。また、ラット筋肉由来細胞においてＡｋｔ阻害剤は、インスリン刺激によるグルコース取込みを阻害する（非特許文献２２）。更に、ＩＧＦ−Ｉは、血糖低下作用に関与するインスリン受容体を活性化させることが知られている。これらのことから、ＩＧＦ−Ｉによる血糖低下作用には、Ａｋｔの過剰な活性化及びインスリン受容体の活性化が関与することが考えられる。

８．ＩＧＦ−Ｉの短い血中半減期
ＩＧＦ−Ｉの血中半減期は、短いため治療では頻回投与が必要となる。実際に、ヒト組換えＩＧＦ−Ｉであるメカセルミンは、血中半減期が約１１時間から１６時間であり、低身長症の治療では１日１回から２回の投与が必要である（非特許文献５）。

血中のＩＧＦ−Ｉの約７０から８０％はＩＧＦＢＰ３と結合している。ＩＧＦ−Ｉの遊離体が生理活性を示す。ＩＧＦＢＰ３との結合は、ＩＧＦ−Ｉの血中半減期を約１０時間から１６時間に維持している（非特許文献１）。

ＩＧＦ−ＩとＩＧＦＢＰ３の配合剤であるＩＰＬＥＸは、血中半減期が約２１時間から２６時間とＩＧＦ−Ｉと比較して長く、１日１回の投与を可能にした薬剤である（非特許文献２３）。しかし、ＩＰＬＥＸは市場から撤退している。

ＩＧＦ−Ｉの動態を改善させたＰＥＧ化ＩＧＦ−Ｉも開発が試みられたが、治療に用いられている薬剤は存在しない（特許文献１）。

９．ＩＧＦ−Ｉの作用により期待される治療効果
ＩＧＦ−Ｉは多種の臓器に作用し、その生理機能は多岐にわたることが知られている（非特許文献１９）。

ＩＧＦ−Ｉは、中枢神経系において、ＩＧＦ−Ｉ受容体の活性化を介して、ミトコンドリアの保護及び抗酸化作用による神経保護作用があることが報告されている（非特許文献２４、２５）。ＩＧＦ−Ｉは、傷害後の神経突起の形成を促進させる（非特許文献２６）。

ＩＧＦ−Ｉは、成長促進の主要な因子である（非特許文献２７、２８）。実際に、ヒト組換えＩＧＦ−Ｉであるメカセルミンは、低身長症の治療薬として臨床で用いられている。

ＩＧＦ−Ｉは、肝硬変の治療に有用であると考えられている。肝硬変は、肝障害又は慢性肝疾患から病態進展したものであり、肝臓の線維化を伴う疾患である。肝硬変モデル動物において、ＩＧＦ−Ｉの投与は、肝臓の線維化を抑制した（非特許文献２９）。

ＩＧＦ−Ｉは、腎臓の発達、機能にも関与することが知られている。腎臓のメサンギウム細胞において、ＩＧＦ−Ｉは、糖毒性による酸化ストレス及びアポトーシスに対して保護作用がある（非特許文献３０）。ＩＧＦ−Ｉは、腎症の治療薬として期待される。

ＩＧＦ−Ｉの投与により改善が期待される病態には、低身長症、ラロン症、肝硬変、肝線維化、老化、子宮内胎児発育遅延（ＩＵＧＲ）、神経疾患、脳卒中、脊髄損傷、心血管保護、糖尿病、インスリン抵抗性、メタボリックシンドローム、腎症、骨粗しょう症、嚢胞性線維症、創傷治癒、筋強直性ジストロフィー、エイズ筋減弱症、ＨＩＶに伴う脂肪再分布症候群、火傷、クローン病、ウェルナー症候群、Ｘ連鎖性複合免疫不全症、難聴、神経性無食欲症及び未熟児網膜症がある（非特許文献１９）。

ＩＧＦ−Ｉは、その多彩な生理作用から、種々の疾患の治療薬として期待される。しかし、副作用である血糖低下作用、及び短い半減期による複数回の投与が臨床で用いるための課題である。

１０．ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体
抗体製剤は、一般的に半減期が長く、月に１回から２回の投与で有効性を示す。ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体は、インビトロ（in vitro）での受容体活性化作用が報告されているが、インビボ（in vivo）においてＩＧＦ−Ｉ受容体に対するアゴニスト活性を示した抗体の報告は無い（非特許文献３１〜３５）。

抗体３Ｂ７及び抗体２Ｄ１は、インビトロにおいて細胞のＤＮＡ合成を亢進する（非特許文献３２）。

抗体１１Ａ１、１１Ａ４、１１Ａ１１及び２４−５７は、インビトロにおいてＩＧＦ−Ｉ受容体のチロシンのリン酸化を亢進する（非特許文献３３）。

抗体１６−１３、１７−６９、２４−５７、２４−６０、２４−３１及び２６−３は、インビトロにおいて細胞のＤＮＡ合成、及びグルコース取込みの亢進作用を有することが示されており、これらの抗体は血糖低下作用を有する可能性がある（非特許文献３４、３５）。

しかしながら、これまで初代培養細胞、その中でもヒト筋芽細胞を使用したインビトロでの細胞増殖活性を示したＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体の報告は無く、ましてやインビボでの筋肉量増加作用を示すＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体は無かった。

１１．ＩＧＦ−Ｉ受容体アンタゴニスト抗体
ＩＧＦ−Ｉ受容体に結合する抗体はＩＧＦ−ＩとＩＧＦ−Ｉ受容体の結合を阻害するアンタゴニスト作用を利用して、悪性腫瘍等の治療への応用が試みられている。しかしながら、既存のＩＧＦ−Ｉ受容体アンタゴニスト抗体は単独治療において高血糖等の副作用が多いだけでなく（非特許文献３６）、他の抗癌剤との併用により高血糖の発現率が上昇することから（非特許文献３７）、治療への適用は限定的なものになるものと考えられている。

特表２０１１-５１８７７８号公報

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本発明は、脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体に特異的に結合する、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体を提供することを、その目的の一つとする。また、本発明は、ＩＧＦ−Ｉ受容体を介して、筋肉量を増加させ、血糖値を低下させない抗体を提供することを、その目的の一つとする。

即ち、本発明は以下に関する。
［１］ 重鎖可変領域のＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｈ１）配列として、配列番号１のアミノ酸配列、又は、配列番号１のアミノ酸配列において１箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、重鎖可変領域のＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｈ２）配列として、配列番号２のアミノ酸配列、又は、配列番号２のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、重鎖可変領域のＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｈ３）配列として、配列番号３のアミノ酸配列、又は、配列番号３のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、軽鎖可変領域のＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｌ１）配列として、配列番号４のアミノ酸配列、又は、配列番号４のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、軽鎖可変領域のＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｌ２）配列として、配列番号５のアミノ酸配列、又は、配列番号５のアミノ酸配列において１箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、及び軽鎖可変領域のＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｌ３）配列として、配列番号６のアミノ酸配列、又は、配列番号６のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、を含み、配列番号１４（ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体）の細胞外ドメインに特異的に結合する、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［２］ 前記抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体が、重鎖可変領域として、配列番号７のアミノ酸配列、又は、配列番号７のアミノ酸配列において１若しくは数箇所におけるアミノ酸残基が置換、欠失、若しくは付加されたアミノ酸配列を含むアミノ酸配列、及び軽鎖可変領域として、配列番号８のアミノ酸配列、又は、配列番号８のアミノ酸配列において１若しくは数箇所におけるアミノ酸残基が置換、欠失、若しくは付加されたアミノ酸配列を含むアミノ酸配列を含む、［１］に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［３］ 前記抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体が、重鎖可変領域として配列番号７のアミノ酸配列、及び軽鎖可変領域として配列番号８、９、１０、１１及び１２から選択される何れかのアミノ酸配列を含む、［１］又は［２］に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［４］ 定常領域として、ヒト免疫グロブリンの各クラスにおける定常領域を更に含む、［１］から［３］に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［５］ 重鎖定常領域が、ヒトＩｇＧ４クラスの重鎖定常領域である、［４］に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［６］ 配列番号１４（ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体）のアミノ酸番号３０８から３１９に相当するアミノ酸配列（ＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＧｌｙＳｅｒＧｌｎＳｅｒＭｅｔ）を有するペプチドを含むエピトープ又はその近傍に結合する、［１］から［５］の何れかに記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［７］ ヒト又はモルモットに由来する筋芽細胞の増殖を誘導する用量において、当該培養細胞でのグルコース取り込みを誘導しない、［１］から［６］の何れかに記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［８］ 脊椎動物に投与され、当該脊椎動物の筋肉量及び／又は体長の増加を誘導する用量において、当該脊椎動物の血糖値を低下させない、［１］から［７］の何れかに記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［９］ 脊椎動物に投与され、当該脊椎動物の筋肉量及び／又は体長の増加を誘導する有効用量に対して１０倍以上の血中曝露量においても、当該脊椎動物の血糖値を低下させない、［８］に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
［１０］ ［１］から［９］の何れかに記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体をコードするポリヌクレオチド配列からなる核酸分子。
［１１］ ［１０］に記載の核酸分子を少なくとも一つ含むクローニングベクター又は発現ベクター。
［１２］ ［１１］に記載のベクターが宿主細胞に導入された組換え体細胞。
［１３］ ［１２］に記載の組換え体細胞を培養し、前記組換え体細胞から産生される当該抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体を精製する工程を含む、［１］から［９］の何れかに記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体の製造方法。
［１４］ ［１］から［９］の何れかに記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体、［１０］に記載の核酸分子、［１１］に記載のベクター或いは［１２］に記載の組換え体細胞を有効成分として含む、医薬組成品。
［１５］ 筋萎縮性疾患又は低身長症の治療に用いられる、［１４］に記載の医薬組成品。
［１６］ 筋萎縮性疾患が、廃用性筋萎縮、サルコペニア又はカヘキシアである、［１５］に記載の医薬組成品。
［１７］ 低身長症が、ラロン型低身長症又は成長ホルモン抵抗性低身長症である、［１５］に記載の医薬組成品。

本発明の抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体は、脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体に特異的に結合する効果を有する。

図１は、ＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインのアミノ酸配列（アミノ酸配列は１文字表記で示す）を、マウス、ラット、ヒト、モルモット及びウサギで比較した結果を示す図である。 図２は、モルモットにＩＧＦ−Ｉを浸透圧ポンプで持続投与又は、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体Ｒ１１−１６Ｂを単回静脈内投与したときの投与２週間後の長趾伸筋の重量を示す図である。 図３は、絶食条件下のモルモットに、ＩＧＦ−Ｉを単回皮下投与したときの血中動態の経時推移を示す図である。 図４は、絶食条件下のモルモットに、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体Ｒ１１−１６Ｂを単回静脈内投与したときの血中動態の経時推移を示す図である。

以下、本発明を具体的な実施形態に基づき説明するが、本発明はこれらの実施形態に何ら限定されない。なお、本明細書において引用する特許公報、特許出願公開公報、及び非特許公報を含む全ての文献は、あらゆる目的において、その全体が援用により本明細書に組み込まれる。

［ＩＧＦ］
本開示において「ＩＧＦ」とは、インスリン様成長因子（Insulin-like Growth Factor）のことをいい、ＩＧＦ−ＩとＩＧＦ−IIが存在する。ＩＧＦ−Ｉ及びＩＧＦ−IIは、後述のＩＧＦ−Ｉ受容体（インスリン様成長因子−Ｉ受容体：Insulin-like Growth Factor-I Receptor）に結合して、細胞内に細胞分裂や代謝のシグナルを入れるアゴニスト活性を有する生体内のリガンドである。ＩＧＦ−Ｉ及びＩＧＦ−IIは、ＩＧＦ−Ｉ受容体と構造的に類似性のあるインスリン受容体（ＩＮＳＲ）にも弱く交差的に結合することが知られている。本明細書では、生理的機能等がよりよく知られているＩＧＦ−Ｉを主に扱うが、ＩＧＦ−Ｉ受容体とリガンドとの結合を介する作用や疾患等の検討を行う場合には、ＩＧＦ−ＩとＩＧＦ−IIの両者の作用を含めて記載することがある。

ＩＧＦ−ＩはソマトメジンＣとも呼ばれ、７０アミノ酸からなる単一ポリペプチドのホルモンである。ヒトのＩＧＦ−Ｉの配列はＥＭＢＬ−ＥＢＩのＵｎｉＰｒｏｔＫＢ−アクセッション番号Ｐ５０９１９等を参照して入手できる。配列表の配列番号１３に成熟型ＩＧＦ−Ｉのアミノ酸配列を示す。この７０アミノ酸からなる配列は、多くの種で保存されている。本発明においては、「ＩＧＦ−Ｉ」とのみ記載された場合は、特に断りがない限り、ホルモン活性を有するＩＧＦ−Ｉタンパク質のことを意味する。

ＩＧＦ−Ｉは、肝臓細胞をはじめ生体内の種々の細胞で産生されていて、血液やその他の体液中にも存在する。従って、天然型のＩＧＦ−Ｉは動物の体液や、動物から分離した初代培養細胞や株化細胞等を培養した培養物から精製して得ることができる。また、ＩＧＦ−Ｉは成長ホルモンによって細胞での産生が誘導されるため、成長ホルモンが投与された動物の体液や、動物から分離した初代培養細胞や株化細胞等を成長ホルモン存在下で培養した培養物からもＩＧＦ−Ｉを精製することで得られる。また、別の方法として、ＩＧＦ−Ｉのアミノ酸配列をコードする核酸分子を発現ベクターに組み込んで大腸菌等の原核生物や酵母、昆虫細胞又は哺乳類由来の培養細胞等の真核細胞の宿主に導入した組換え体細胞や、ＩＧＦ−Ｉ遺伝子を導入したトランスジェニック動物やトランスジェニック植物等を用いて、ＩＧＦ−Ｉを製造することも可能である。更に、ヒトＩＧＦ−Ｉは研究用試薬（Enzo Life Sciences, catalog: ADI-908-059-0100; Abnova, catalog: P3452等）、医薬品（ソマゾン^{（登録商標）}、メカセルミン、ＩＮＣＲＥＬＥＸ^{（登録商標）}等）として入手することも可能である。用いるＩＧＦ−Ｉのインビボ及びインビトロでの活性は、World Health OrganizationのNational Institute for Biological Standards and Control（ＮＩＢＳＣ）のＮＩＢＳＣ ｃｏｄｅ：９１／５５４のＩＧＦ−Ｉ標準物質での活性を１国際ユニット／マイクログラムとして比較することで、その比活性を評価することができる。本発明におけるＩＧＦ−Ｉは、当該ＮＩＢＳＣ ｃｏｄｅ：９１／５５４のＩＧＦ−Ｉと同等の比活性を有するものとして扱うものとする。

［ＩＧＦ−Ｉ受容体］
本開示において「ＩＧＦ−Ｉ受容体」とは、インスリン様成長因子−Ｉ受容体（Insulin-like Growth Factor-I Receptor）のことをいう。本明細書において「ＩＧＦ−Ｉ受容体」は、特に断りがない限り、ＩＧＦ−Ｉ受容体タンパク質を意味する。ＩＧＦ−Ｉ受容体はα鎖とβ鎖からなるサブユニットが２つ会合した構造のタンパク質である。配列番号１４に示したヒトＩＧＦ−Ｉ受容体のアミノ酸配列においては、そのアミノ酸配列のうち、３１番目から７３５番目のアミノ酸配列からなる部分がα鎖に相当し、β鎖は７４０番目以降の配列に相当する。ＩＧＦ−Ｉ受容体のα鎖はＩＧＦ−Ｉの結合部分を有し、β鎖は膜貫通型の構造であり、細胞内へのシグナルを伝える働きをする。ＩＧＦ−Ｉ受容体のα鎖は、Ｌ１、ＣＲ、Ｌ２、ＦｎＩＩＩ−１及びＦｎＩＩＩ２ａ／ＩＤ／ＦｎＩＩＩ２ｂのドメインに分かれる。配列番号１４に示したヒトＩＧＦ−Ｉ受容体のアミノ酸配列においては、３１番目から１７９番目の部分がＬ１ドメイン、１８０番目から３２８番目の部分がＣＲドメイン、３２９番目から４９１番目の部分がＬ２ドメイン、４９２番目から６０７番目の部分がＦｎＩＩＩ−１ドメイン及び６０８番目から７３５番目までがＦｎＩＩＩ−２ａ／ＩＤ／ＦｎＩＩＩ−２ｂドメインに相当する。中でもＣＲドメイン（cysteine-rich domain）は、ＩＧＦ−ＩがＩＧＦ−Ｉ受容体に結合した時の当該受容体の立体構造の変化に伴う、β鎖の細胞内チロシンキナーゼの活性化に関与する。ヒトのＩＧＦ−Ｉ受容体のアミノ酸配列は、ＥＭＢＬ−ＥＢＩのＵｎｉＰｒｏｔＫＢ−アクセッション番号Ｐ０８０６９等から参照することが可能であるが、配列表の配列番号１４にも示す。

ＩＧＦ−Ｉ受容体は生体内の組織や細胞の広い範囲で発現していることが知られており、ＩＧＦ−Ｉによる細胞増殖の誘導や細胞内シグナルの活性化等の刺激を受ける。特に筋芽細胞はＩＧＦ−ＩのＩＧＦ−Ｉ受容体を介する作用を、細胞増殖活性を指標として評価に用いることが可能である。このことから筋芽細胞は、ＩＧＦ−Ｉ受容体に結合する抗体の作用を解析する上で有用である。また、ヒトやその他の脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体のアミノ酸配列をコードする核酸分子を発現ベクターに組み込んで、昆虫細胞又は哺乳類由来の培養細胞等の真核細胞の宿主に導入した組換え体細胞において、その細胞膜上に導入された核酸がコードするＩＧＦ−Ｉ受容体を発現させることで、ヒトやその他の脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体を発現した細胞を人工的に製造することが可能である。当該ＩＧＦ−Ｉ受容体発現細胞は抗体の結合性の解析や細胞内へのシグナルの伝達等の検討に用いることができる。

［抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体］
本発明の一側面によれば、新規な抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体が提供される（これを以下適宜「本発明の抗体」と称する。）。

本開示において「抗体」とは、ジスルフィド結合により相互結合された少なくとも２つの重（Ｈ）鎖及び２つの軽（Ｌ）鎖を含む糖タンパク質である。それぞれの重鎖は、重鎖可変領域（ＶＨと略される）及び重鎖定常領域を含み、重鎖定常領域は、３つのドメイン、ＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３を含む。それぞれの軽鎖は、軽鎖可変領域（ＶＬと略される）及び軽鎖定常領域を含む。軽鎖定常領域は、１つのドメイン、ＣＬを含む。軽鎖の定常領域にはλ鎖及びκ鎖と呼ばれる２種類が存在する。重鎖の定常領域にはγ鎖、μ鎖、α鎖、δ鎖及びε鎖が存在し、その重鎖の違いによって、それぞれＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ及びＩｇＥという抗体のアイソタイプが存在する。ＶＨ及びＶＬは、更にフレームワーク領域（ＦＲ）と称される、より保存されている４つの領域（ＦＲ−１、ＦＲ−２、ＦＲ−３、ＦＲ−４）と、相補性決定領域（ＣＤＲ）と称される超可変性の３つの領域（ＣＤＲ−１、ＣＤＲ−２、ＣＤＲ−３）に細分される。ＶＨは、アミノ末端からカルボキシ末端へ、ＦＲ−１、ＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｈ１）、ＦＲ−２、ＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｈ２）、ＦＲ−３、ＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｈ３）、ＦＲ−４の順番で配列された３つのＣＤＲ及び４つのＦＲを含む。ＶＬは、アミノ末端からカルボキシ末端へ、ＦＲ−１、ＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｌ１）、ＦＲ−２、ＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｌ２）、ＦＲ−３、ＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｌ３）、ＦＲ−４の順番で配列された３つのＣＤＲ及び４つのＦＲを含む。重鎖及び軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含む。

本発明の抗体は、抗体の断片及び／又は誘導体であってもよい。抗体の断片としては、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ、Ｆｖ等が挙げられる。抗体の誘導体としては、定常領域部分に人工的にアミノ酸変異を導入した抗体、定常領域のドメインの構成を改変した抗体、１分子あたり２つ以上のＦｃを持つ形の抗体、重鎖のみ又は軽鎖のみで構成される抗体、糖鎖改変抗体、二重特異性抗体、抗体又は抗体の断片化合物や抗体以外のタンパク質と結合させた抗体コンジュゲート、抗体酵素、ナノボディ、タンデムｓｃＦｖ、二重特異性タンデムｓｃＦｖ、ダイアボディ（Diabody）、ＶＨＨ等が挙げられる。なお、本発明において単に「抗体」という場合には、別途明記しない限り、抗体の断片及び／又は誘導体も含むものとする。

本開示において「抗原抗体反応」とは、ＩＧＦ−Ｉ受容体に対して、抗体が平衡解離定数（ＫＤ）１×１０^−７Ｍ以下の親和性で結合することをいう。本発明の抗体は、ＩＧＦ−Ｉ受容体に対して、通常１×１０^−５Ｍ以下、中でも１×１０^−６Ｍ以下、更には１×１０^−７Ｍ以下のＫＤで結合することが好ましい。

本開示において、抗体が抗原に対して「特異性」を有するとは、抗体とその抗原との間に高い抗原抗体反応が起こることをいう。特に、本開示において「ＩＧＦ−Ｉ受容体特異的抗体」とは、ＩＧＦ−Ｉ受容体を発現させた細胞と有意に抗原抗体反応を示す濃度において、ＩＧＦ−Ｉ受容体の一次構造（アミノ酸配列）及び高次構造と高い類似性を有するＩＮＳＲに対する抗原抗体の反応性が、Ｍｏｃｋ細胞に対する反応性の１．５倍以下である場合をいう。

抗原抗体反応の測定は、当業者であれば固相又は液相の系での結合測定を適宜選択して行うことが可能である。そのような方法としては、酵素結合免疫吸着法（enzyme-linked immunosorbent assay：ＥＬＩＳＡ）、酵素免疫測定法（enzyme immunoassay：ＥＩＡ）、表面プラズモン共鳴法（surface plasmon resonance：ＳＰＲ）、蛍光共鳴エネルギー移動法（fluorescence resonance energy transfer：ＦＲＥＴ）、発光共鳴エネルギー移動法（luminescence resonance energy transfer：ＬＲＥＴ）等が挙げられるが、それらに限定されるものではない。また、そのような抗原抗体結合を測定する際に、抗体及び／又は抗原を酵素、蛍光物質、発光物質、放射性同位元素等で標識を行い、その標識した物質の物理的及び／又は化学的特性に適した測定方法を用いて抗原抗体反応を検出することも可能である。

本発明の抗体は、ＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインに結合することにより、ＩＧＦ−Ｉ受容体が二量体を形成したホモ型の受容体、或いはＩＧＦ−Ｉ受容体とＩＮＳＲが二量体を形成したヘテロ型の受容体を活性化させると考えられる。

本発明の抗体は、各ＣＤＲ配列として、特定のアミノ酸配列を有することが好ましい。具体的には以下のとおりである。なお、本発明においてアミノ酸配列の「同一性」（identity）とは、一致するアミノ酸残基の割合を意味し、「相同性」（similarity）とは、一致又は類似するアミノ酸残基の割合を意味する。相同性及び同一性は、例えばＢＬＡＳＴ法（ＮＣＢＩのＰＢＬＡＳＴのデフォルト条件）により決定することができる。

ここで「類似するアミノ酸残基」とは、同様の化学的特質（例えば、電荷又は疎水性）を持つ側鎖を有するアミノ酸残基を意味する。類似するアミノ酸残基としては、例えば以下の組合せが挙げられる。
１）脂肪族側鎖を有するアミノ酸残基：グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、及びイソロイシン残基。
２）脂肪族ヒドロキシル側鎖を有するアミノ酸残基：セリン及びトレオニン残基。
３）アミド含有側鎖を有するアミノ酸残基：アスパラギン及びグルタミン残基。
４）芳香族側鎖を有するアミノ酸残基：フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファン残基。
５）塩基性側鎖を有するアミノ酸残基：リシン、アルギニン、及びヒスチジン残基。
６）酸性側鎖を有するアミノ酸残基：アスパラギン酸及びグルタミン酸残基。
７）硫黄含有側鎖を有するアミノ酸残基：システイン及びメチオニン残基。

本発明において、重鎖可変領域のＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｈ１）配列としては、配列番号１（ＳｅｒＴｙｒＴｒｐＭｅｔＨｉｓ）、又は、配列番号１の何れか１箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列が好ましい。また、重鎖可変領域のＣＤＲ−Ｈ１配列は、配列番号１と８０％以上の相同性（好ましくは同一性）を有することが好ましい。

重鎖可変領域のＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｈ２）配列としては、配列番号２（ＧｌｕＴｈｒＡｓｎＰｒｏＳｅｒＡｓｎＳｅｒＶａｌＴｈｒＡｓｎＴｙｒＡｓｎＧｌｕＬｙｓＰｈｅＬｙｓＳｅｒ）、又は、配列番号２の何れか１箇所若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列が好ましい。また、重鎖可変領域のＣＤＲ−Ｈ２配列は、配列番号２と８８％以上、中でも９４％の相同性（好ましくは同一性）を有することが好ましい。

重鎖可変領域のＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｈ３）配列としては、配列番号３（ＧｌｙＡｒｇＧｌｙＡｒｇＧｌｙＰｈｅＡｌａＴｙｒ）、又は、配列番号３の何れか１箇所若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列が好ましい。また、重鎖可変領域のＣＤＲ−Ｈ３配列は、配列番号３と７５％以上、中でも８７％以上の相同性（好ましくは同一性）を有することが好ましい。

軽鎖可変領域のＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｌ１）配列としては、配列番号４（ＡｒｇＡｌａＳｅｒＧｌｎＡｓｎＩｌｅＡｓｎＰｈｅＴｒｐＬｅｕＳｅｒ）、又は、配列番号４の何れか１箇所若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列が好ましい。また、軽鎖可変領域のＣＤＲ−Ｌ１配列は、配列番号４と８１％以上の相同性、中でも９０％以上の相同性（好ましくは同一性）を有することが好ましい。

軽鎖可変領域のＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｌ２）配列としては、配列番号５（ＬｙｓＡｌａＳｅｒＡｓｎＬｅｕＨｉｓＴｈｒ）、又は、配列番号５の何れか１箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列が好ましい。また、軽鎖可変領域のＣＤＲ−Ｌ２配列は、配列番号５と８５％以上の相同性（好ましくは同一性）を有することが好ましい。

軽鎖可変領域のＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｌ３）配列としては、配列番号６（ＬｅｕＧｌｎＧｌｙＧｌｎＳｅｒＴｙｒＰｒｏＴｙｒＴｈｒ）、又は、配列番号６の何れか１箇所若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列が好ましい。また、軽鎖可変領域のＣＤＲ−Ｌ３配列は、配列番号６と７７％以上、中でも８８％以上の相同性（好ましくは同一性）を有することが好ましい。

特に、本発明の抗体は、以下のＣＤＲ配列の組み合わせを有することが好ましい。ＣＤＲ−Ｈ１配列として、配列番号１のアミノ酸配列、ＣＤＲ−Ｈ２配列として、配列番号２のアミノ酸配列、ＣＤＲ−Ｈ３配列として、配列番号３のアミノ酸配列、ＣＤＲ−Ｌ１配列として、配列番号４のアミノ酸配列、ＣＤＲ−Ｌ２配列として、配列番号５のアミノ酸配列、及びＣＤＲ−Ｌ３配列として、配列番号６のアミノ酸配列。

なお、抗体におけるＣＤＲ−Ｈ１、ＣＤＲ−Ｈ２、ＣＤＲ−Ｈ３、ＣＤＲ−Ｌ１、ＣＤＲ−Ｌ２、又はＣＤＲ−Ｌ３の各配列を同定する方法としては、例えばＫａｂａｔ法（Kabat et al., The Journal of Immunology, 1991, Vol.147, No.5, pp.1709-1719）やＣｈｏｔｈｉａ法（Al-Lazikani et al., Journal of Molecular Biology, 1997, Vol.273, No.4, pp.927-948）が挙げられる。これらの方法は、この領域の当業者にとっては技術常識であるが、たとえばDr. Andrew C.R. Martin‘s Groupのインターネットホームページ（http://www.bioinf.org.uk/abs/）から概要を知ることも可能である。

本発明の抗体である免疫グロブリンのフレームワーク配列は、ヒトの免疫グロブリンの各クラスにおけるフレームワーク配列であることが好ましい。

本発明の抗体は、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域として、特定のアミノ酸配列を有することが好ましい。具体的には以下のとおりである。なお、本開示において「１箇所若しくは数箇所」とは、特に断り書き無い限り、１箇所、２箇所、３箇所、４箇所、５箇所、６箇所、７箇所、８箇所、９箇所、又は１０箇所の何れかを指すものとする。

本発明の抗体の重鎖可変領域としては、配列番号７、配列番号７の何れか１箇所若しくは数箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、又は配列番号７と９０％以上の相同性（好ましくは同一性）を有するアミノ酸配列が好ましい。また、本発明の抗体の軽鎖可変領域としては、配列番号８、配列番号８の何れか１箇所若しくは数箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、又は配列番号８と９０％以上の相同性（好ましくは同一性）を有するアミノ酸配列が好ましい。

特に、本発明の抗体は、重鎖可変領域として配列番号７を有すると共に、軽鎖可変領域として配列番号８、又は、配列番号８の３６番目（Ｋａｂａｔ番号：Ｌ３６）がＴｙｒからＡｌａ、Ｓｅｒ、Ｐｈｅ若しくはＣｙｓに置換されたアミノ酸配列を含む配列（それぞれ配列番号９、配列番号１０、配列番号１１及び配列番号１２）を有することが好ましい。

本発明の抗体の重鎖及び軽鎖の各フレームワーク領域及び／又は各定常領域のアミノ酸配列は、例えばヒトのＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＥ、及びＩｇＤの各クラス並びにそれらの変異体から選択することが可能である。一例によれば、本発明の抗体の重鎖定常領域は、ヒトのＩｇＧ４の重鎖定常領域である。

［抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体のエピトープ］
本発明の抗体は、ＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインをエピトープとする。好ましくは、本発明の抗体は、配列番号１４（ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体）のアミノ酸番号３０８から３１９に相当するアミノ酸配列（ＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＧｌｙＳｅｒＧｌｎＳｅｒＭｅｔ）を有するペプチドを含むエピトープ又はその近傍に結合する。本発明の抗体は、ＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインに結合することにより、ＩＧＦ−Ｉ受容体が二量体を形成したホモ型の受容体、或いはＩＧＦ−Ｉ受容体とＩＮＳＲが二量体を形成したヘテロ型の受容体を活性化させると考えられる。但し、後述する本発明のアゴニスト抗体（アゴニスト抗体である本発明の抗体）は、ＩＧＦ−Ｉ受容体の一次構造（アミノ酸配列）及び高次構造と高い類似性を有するＩＮＳＲに対しては結合性を有さない。

［ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体及びアンタゴニスト抗体］
本発明の抗体は、アゴニスト抗体とアンタゴニスト抗体の両方を含む（以下、アゴニスト抗体である本発明の抗体を適宜「本発明のアゴニスト抗体」と称し、アンタゴニスト抗体である本発明の抗体を適宜「本発明のアンタゴニスト抗体」と称する）。本発明のアゴニスト抗体は、単独で作用させた場合、ＩＧＦ−Ｉによる筋芽細胞の増殖活性を亢進する作用を有する。一方、本発明のアンタゴニスト抗体は、ＩＧＦ−Ｉと同時に作用させた場合、ＩＧＦ−Ｉによる筋芽細胞の増殖活性を阻害する作用を有する。

本発明のアゴニスト抗体は、ヒトＩｇＧクラス又はその変異体であることが好ましく、ヒトＩｇＧ４サブクラス若しくはその変異体、又は、ヒトＩｇＧ１サブクラス若しくはその変異体であることが好ましい。１つの例では、安定化ＩｇＧ４定常領域は、Ｋａｂａｔの系により、ヒンジ領域の位置２４１においてプロリンを含む。この位置は、ＥＵ付番方式（Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, DIANE Publishing, 1992, Edelman et al., Proc. Natl. Acad. Sci USA, 63, 78-85, 1969）により、ヒンジ領域の位置２２８に対応する。ヒトＩｇＧ４では、この残基は一般的にセリンであり、セリンのプロリンへの置換で安定化を誘導することができる。１つの例では、ＩｇＧ１の定常領域にＮ２９７Ａ変異を組み入れてＦｃ受容体への結合及び／又は補体を固定する能力をできるだけ抑えることができる。

本発明のアゴニスト抗体は、ＩＧＦ−Ｉ受容体の特異的なドメインに強力に結合し、インビトロで筋芽細胞の増殖活性の亢進作用を有する。

また、本発明のアゴニスト抗体は、インビトロでの分化筋細胞のグルコース取込み亢進作用を有さないという特徴を有する。具体的に、本発明のアゴニスト抗体は、筋芽細胞（例えば、ヒト又はモルモットに由来する筋芽細胞）の増殖活性を亢進させる作用濃度、より好ましくは作用濃度より１０倍高い濃度、更に好ましくは１００倍高い濃度でも、インビトロでの培養分化筋細胞のグルコース取込み亢進作用を有さない。

また、本発明のアゴニスト抗体は、筋肉量増加作用を示す用量において、血糖低下作用を有さないという特徴を有する。ＩＧＦ−Ｉは、筋肉量増加作用を示す用量で投与した場合、著しい血糖低下作用を有する。しかし、本発明のアゴニスト抗体は、脊椎動物の筋肉量及び／又は体長の増加を誘導する用量において、当該脊椎動物の血糖値を低下させる作用を有さない。好ましくは、本発明のアゴニスト抗体は、脊椎動物の筋肉量及び／又は体長の増加を誘導する有効用量の１０倍以上の血中曝露量となるように投与した場合でさえも、脊椎動物の血糖値を低下させる作用を有さない。

更に、本発明のアゴニスト抗体は、モルモットへ単回投与した場合に、ＩＧＦ−Ｉを持続投与したときの筋肉量増加作用と、同程度のインビボ活性を有する。また、本発明のアゴニスト抗体は、血中半減期が長く、動物への単回投与により筋肉量増加作用を示す。

以上のことから、本発明のアゴニスト抗体は、ＩＧＦ−Ｉで期待される、廃用性筋萎縮及び低身長症等のＩＧＦ−Ｉ受容体が関連する種々の疾患の治療薬又は予防薬となる可能性を有し、ＩＧＦ−Ｉの問題点である、血糖低下作用を克服し、血中半減期を長期化することが可能である。

一方、本発明のアンタゴニスト抗体は、ＩＧＦ−ＩがＩＧＦ−Ｉ受容体に結合するのを阻害する作用を有する。

本発明のアンタゴニスト抗体の一つの態様は、ＩＧＦ−Ｉ受容体を活性化するが、ＩＧＦ−ＩによるＩＧＦ−Ｉ受容体に対する作用を阻害する抗体である。この場合、当該抗体はＩＧＦ−Ｉの相加的なアゴニスト活性、例えば筋芽細胞のＩＧＦ−Ｉによる増殖誘導活性を打ち消す作用がある。

本発明のアンタゴニスト抗体の別の態様は、ＩＧＦ−Ｉ受容体と結合するが、ＩＧＦ−Ｉ受容体を活性化させない抗体である。このようなＩＧＦ−Ｉ受容体の架橋による活性化を起こさないアンタゴニスト抗体の例としては、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ等の抗原結合性が１価である抗体、二重特異性抗体のように２価の結合部位を有するがその片側の結合部位のみがＩＧＦ−Ｉ受容体の特異的ドメインに結合する抗体、又は２価の結合部位の距離をリンカー等で変化させた抗体等がある。しかし、本態様のアンタゴニスト抗体は、これらに限定されるものではない。

本発明のアンタゴニスト抗体のうち、ＩＧＦ−Ｉ受容体と結合するが、アゴニスト活性を持たない態様の抗体については、抗体とＩＧＦ−Ｉ受容体との抗原抗体反応を測定する方法により、ＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合性を有すること、筋芽細胞等の細胞での細胞増殖試験により細胞増殖の誘導活性を持たないことを確認できる。

また、本発明のアンタゴニスト抗体は、インビトロでの分化筋細胞のグルコース取込みやインビボでの血糖値に対して影響を及ぼさない。従って、本発明のアンタゴニスト抗体は、高血糖等の副作用を示さない抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体として、乳癌、大腸癌、サルコーマ、肺癌、前立腺癌、甲状腺癌、ミエローマ等の悪性腫瘍等の治療薬又は予防薬となる可能性を有している。

［交差反応］
本発明の抗体は、他の脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体に対して交差反応を有することが好ましい。交差反応とは、その抗体が抗原抗体反応をするＩＧＦ−Ｉ受容体の動物種（例えばヒト）とは異なる、他の動物種の抗原に対する抗体の結合性を示す。その抗体が抗原抗体反応をするＩＧＦ−Ｉ受容体の動物種以外である、ヒト、又はモルモット、サル、ウサギ、ウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、イヌ若しくはニワトリを含む非ヒト動物のＩＧＦ−Ｉ受容体と交差反応性を有することが好ましい。後述の実施例４において、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体であるＲ１１−１６Ｂは、ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインにおけるＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＧｌｙＳｅｒＧｌｎＳｅｒＭｅｔの配列と結合することが示された。サル（カニクイザル）、ウサギ、モルモット、ウシ、ヒツジ、ウマ及びイヌのＩＧＦ−Ｉ受容体の相同的な部分において、このＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＧｌｙＳｅｒＧｌｎＳｅｒＭｅｔの配列が保存されており、これらの種の間でのＩＧＦ−Ｉ受容体と結合交差性がある。また、マウス及びラットにおいては、当該相同的な部分のアミノ酸配列がＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＳｅｒＴｈｒＧｌｎＳｅｒＭｅｔとなっており、この部分に結合する抗ＩＧＦ−Ｉ受容体抗体を取得することで、マウスやラット等のＩＧＦ−Ｉ受容体と結合し、Ｒ１１−１６Ｂと同様の性状や機能を有する抗体を取得することが可能である。

また、本発明の抗体と交差反応しない動物の種を用いて、その細胞や動物を遺伝子工学的に改変させることにより、本発明の抗体が交差反応するＩＧＦ−Ｉ受容体を発現する細胞や動物を作製することも可能である。

［脊椎動物由来細胞の増殖誘導活性、筋肉量及び／又は体長の増加の誘導活性］
本発明のある態様における抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体は、脊椎動物由来細胞の増殖誘導活性を有する。ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体の存在はすでに知られていたものの、初代培養細胞、その中でも筋芽細胞において細胞の増殖誘導活性を示した抗体の報告は無かった。更に、インビトロにおいてＩＧＦ−ＩのＥＣ_５０値よりも低用量で細胞の増殖誘導活性を有する抗体の報告もなかった。

なお、本開示において「脊椎動物由来細胞」とは、好ましくは哺乳類、鳥類、爬虫類、両生類又は魚類に由来する細胞であり、より好ましくは哺乳類又は鳥類に由来する細胞であり、更により好ましくは、ヒト、サル、ウサギ、モルモット、ウシ、ブタ、ヒツジ、ウマ又はイヌに由来する細胞である。これらの種に由来する細胞で、ＩＧＦ−Ｉ受容体を発現し、当該ＩＧＦ−Ｉ受容体に本発明の抗体が交差反応する細胞であれば、本発明の抗体によって細胞増殖が誘導されうる。また、本発明の抗体と交差反応性がある種のＩＧＦ−Ｉ受容体を発現されるように改変された細胞や動物、又は当該改変動物に由来する細胞も、本開示における「脊椎動物由来細胞」に含まれる。

脊椎動物由来細胞のインビトロにおける増殖誘導活性を調べるための細胞としては、初代培養細胞、株化細胞、又はそれらの細胞の形質転換体細胞等を用いることが可能である。

本開示において「初代培養細胞」とは、生物の臓器や組織から分離された細胞で、通常はある程度の継代数での継代培養が可能であるものをいう。脊椎動物由来の初代培養細胞は、脊椎動物の臓器や組織から酵素処理、物理的方法による分散又はｅｘｐｌａｎｔ法等の手法で得ることができる。また、脊椎動物から得られた臓器や組織、又はそれらの断片を用いることも可能である。それらの当該初代細胞を調製する臓器や組織としては、好ましくは甲状腺、副甲状腺や副腎等の内分泌組織、虫垂、扁桃腺、リンパ節や脾臓等の免疫組織、気管や肺等の呼吸器、胃、十二指腸、小腸や大腸等の消化器、腎臓や膀胱等の泌尿器、輸精管、睾丸や前立腺等の雄性生殖器、乳房や卵管等の雌性生殖器、心筋や骨格筋等の筋組織等が挙げられ、より好ましくは肝臓、腎臓若しくは消化器又は筋組織等であり、更により好ましくは筋組織である。本発明の抗体の増殖誘導活性を調べるために用いられる当該初代培養細胞としては、ＩＧＦ−Ｉ受容体を発現し、そのＩＧＦ−Ｉ受容体と結合するＩＧＦ−Ｉによって増殖が誘導される細胞が用いられる。その代表としては、筋組織から分離された初代培養細胞である骨格筋筋芽細胞等が使われる。ヒトや動物由来の初代培養細胞としては、分譲や市販されているものを入手して使用することも可能である。ヒト初代培養細胞は、例えばＡＴＣＣ^{（登録商標）}、ＥＣＡＣＣ、Ｌｏｎｚａ、Ｇｉｂｃｏ^{（登録商標）}、Ｃｅｌｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、ＳｃｉｅｎＣｅｌｌ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ等の機関や会社から入手できる。

本開示において「株化細胞」とは、生物に由来する細胞が不死化されて一定の性質を保ちながら半永久的に増殖しうる培養細胞をいう。株化細胞には非腫瘍由来のものと、腫瘍由来のものが存在する。本発明の抗体による増殖誘導活性を調べるための脊椎動物由来の株化細胞としては、ＩＧＦ−Ｉ受容体を発現し、そのＩＧＦ−Ｉ受容体と結合するＩＧＦ−Ｉによって増殖が誘導される細胞が用いられる。ＩＧＦ−Ｉ受容体を発現し、ＩＧＦ−Ｉにより細胞増殖が誘導される株化細胞としては、例えばヒト神経芽細胞腫ＳＨ−ＳＹ５Ｙ、ヒト表皮角化細胞株ＨａＣａＴ、ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞株Ａ５４９、ヒト結腸腺癌細胞株Ｃａｃｏ−２、ヒト肝癌由来細胞株ＨｅｐＧ２、ヒト子宮頚部癌細胞株Ｈｅｌａ、ヒト子宮頚部癌細胞株ＳｉＨａ、ヒト乳がん細胞株ＭＣＦ７、ヒト多能性胎生期癌ＮＴＥＲＡ−２やヒト骨肉腫細胞株Ｕ−２−ＯＳ等があるが、これらに限定されるものではない。

本開示において、本発明の抗体による増殖誘導活性を調べるために使用できる形質転換体細胞としては、前述の初代培養細胞や株化細胞の形質転換体細胞が挙げられる。そのような形質転換細胞の一例としては、初代培養細胞から作製したｉＰＳ細胞や、そのｉＰＳ細胞から分化誘導した細胞や組織等が挙げられる。また、他の形質転換細胞の例としては、初代培養細胞や株化細胞に遺伝子を導入し一過的又は持続的に発現させた細胞も当該形質転換細胞に含まれる。当該細胞に導入して発現させる遺伝子としては、ヒト又は他の種のＩＧＦ−Ｉ受容体の遺伝子を含んでもよい。

脊椎動物由来の細胞における本発明の抗体による細胞の増殖誘導活性を調べる方法としては、細胞数計測、ＤＮＡ合成量の測定、代謝酵素活性の変化量の測定等が挙げられる。細胞数計測の方法は、血球算定盤を用いた方法やコールターカウンター等の細胞数計測装置を用いた方法があり、ＤＮＡ合成量を測定する方法としては、［３Ｈ］−チミジンや５−ブロモ−２’−デオキシウリジン（ＢｒｄＵ）の取込みによる測定方法、代謝酵素活性の変化量をみる方法としては、ＭＴＴ法、ＸＴＴ法やＷＳＴ法等があるが、当業者であれば適宜その他の方法等でも実施することができる。

細胞の増殖誘導活性は、試験に用いる培養細胞に対して、本発明の抗体を反応させた場合の方が、当該抗体を反応させていない場合よりも細胞の増殖が上昇していることで判定できる。この場合、当該誘導活性の対照として、同条件で本来のＩＧＦ−Ｉ受容体のリガンドであるＩＧＦ−Ｉを反応させた測定を行うと、その活性の評価に便利である。試験を行う培養細胞に対して、本発明の抗体及びＩＧＦ−Ｉをそれぞれの濃度を変化させて反応させたときに、最大の増殖誘導活性の５０％を示すときの濃度をＥＣ_５０値として示す。ヒト骨格筋筋芽細胞を用いて増殖誘導活性を評価した場合、好ましくは本発明の抗体の細胞増殖誘導活性はＩＧＦ−Ｉと同等のＥＣ_５０値であり、より好ましくは本発明の抗体のＥＣ_５０値はＩＧＦ−Ｉの１／１０以下であり、更に好ましくは１／２０以下であり、更により好ましくは本発明の抗体のＥＣ_５０値はＩＧＦ−Ｉの１／５０以下である。また、ヒト骨格筋筋芽細胞を用いて増殖誘導活性を評価した場合、本発明の抗体のＥＣ_５０値は、好ましくは０．５ｎｍｏｌ／Ｌ以下であり、より好ましくは０．３ｎｍｏｌ／Ｌ以下であり、更に好ましくは０．１ｎｍｏｌ／Ｌ以下である。

脊椎動物由来細胞のインビボにおける増殖誘導活性を調べる方法としては、当該脊椎動物に本発明の抗体を投与して、投与された個体全体、又は投与された個体における臓器又は組織の重量、大きさ、細胞数等の変化を計測するか、当該脊椎動物細胞を移植された動物を用いて、当該移植を受けた個体において当該移植された脊椎動物細胞を含む移植片の重量、大きさ、細胞数等の変化を計測することで調べることができる。個体全体での計測では、体重、体長、四肢周囲長等の測定や、インピーダンス法による体組成測定、クレアチニン、身長係数等が用いられる。個体での臓器や組織、又は移植片の計測については、ヒト以外の動物では直接目的の臓器、組織又は移植片を回収し、重量、大きさや含まれる細胞数の算定等が行われる。また、非侵襲的に個体の臓器、組織又は移植片を計測する方法としては、Ｘ線撮影像やＣＴ、ＭＲＩによる画像解析、同位元素や蛍光物質によるトレーサーを用いた造影法等が用いられる。対象となる組織が骨格筋である場合には、筋力の変化等が指標となる。その他、当業者であれば適宜その他の方法を用いることで、本発明の抗体の脊椎動物由来細胞のインビボにおける増殖誘導活性に対する作用を調べることができる。本発明の抗体のインビボにおける脊椎動物由来細胞の増殖誘導活性を調べるためには、本発明の抗体を投与した個体と、本発明の抗体以外の抗体又は別の対照物質を投与された個体との間で、上に示した方法等での計測等を行った結果を比較することで評価することができる。

本発明の抗体は、細胞に接触させた時間に対して、増殖誘導する作用の持続性が天然型ＩＧＦ−Ｉに対して長いという特徴を有する。インビトロでの細胞増殖誘導活性において、天然型ＩＧＦ−Ｉは、細胞に接触させた後でＩＧＦ−Ｉを含まない培地で洗浄すると細胞増殖誘導活性が消失してしまうのに対して、本発明の抗体の設計の基となったマウス抗体であるＩＧＦ１１−１６抗体（日本特許出願：特願２０１７−１０６５２９）は、細胞に接触させた後ＩＧＦ１１−１６抗体を含まない培地で洗浄した場合でも、細胞の増殖誘導活性が持続していた。また、後述の実施例８において、ＩＧＦ−Ｉと本発明の抗体であるＲ１１−１６Ｂ抗体の血中動態を比較しているが、天然型ＩＧＦ−Ｉは動物への投与後２４時間までに約５０％以上が血中から消失するのに対して、Ｒ１１−１６Ｂ抗体は動物に投与された後、４８時間後でも６０％以上が血中に存在することから、長期間にわたって血中に存在していることが示された。これらのことから、本発明の抗体は、インビトロ及びインビボにおいて長い細胞増殖誘導効果を示すことがわかる。

また、本発明の抗体のインビボでの効果としては、筋肉量及び／又は体長の増大効果が挙げられる。ＩＧＦ−Ｉは骨格筋において上述の筋芽細胞の増殖や分化に作用するほか、筋線維を太くする作用もあり、そのような総合的な作用として筋肉量を増大させる効果があると考えられている。本発明の抗体もＩＧＦ−Ｉと同様に動物に投与することによって、当該動物の筋肉量を増大させる効果を有する。ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体の作用として、インビボで筋肉の増大作用を有することが示されたのは、本発明の抗体が初めてである。

本発明の抗体による筋肉量の増大効果を計測する方法としては、個体全体での計測では、体重、体長、四肢周囲長等の測定や、インピーダンス法による体組成測定、クレアチニン、身長係数等が用いられ、また、ＣＴ、ＭＲＩによる画像解析、同位元素や蛍光物質によるトレーサーを用いた造影法等の方法が用いられるほか、筋力の変化等も指標になる。また、ヒト以外の動物では直接筋肉を採取してその重量や大きさを計測する方法等も可能である。筋肉量の増加の効果は、本発明の抗体を投与された個体と当該抗体を投与されなかった個体での筋肉量の増加を比較すること、又は、一つの個体で本発明の抗体を投与する前と投与した後での筋肉量の比較を行うことで評価することができる。筋肉量の増加の効果は、本発明の抗体が投与により筋肉量の増加の差が見られれば、その効果を知ることができるが、本発明の抗体が投与された個体と投与されなかった個体、又は、本発明の抗体が投与される前と後で、好ましくは１０３％以上、より好ましくは１０４％以上の筋肉量の差が認められることで本発明の抗体の投与による効果を判断することが可能である。ＩＧＦ−Ｉは骨の成長にも関与し、体長（ヒトの場合は身長）を増大させる働きもある。したがって、本発明の抗体も、動物に投与することによって体長を増大させる効果を有する。本発明の抗体による体長増大の効果は、個体の体重、体長、四肢周囲長等の測定によって計測することが可能である。

［脊椎動物由来細胞でのグルコース取込み及び／又は動物での血糖値に対する作用］
一態様によれば、本発明の抗体は、脊椎動物由来の分化筋細胞での細胞内へのグルコースの取込み作用及び／又は脊椎動物での血糖値に影響を及ぼさないという特徴を有する。ＩＧＦ−Ｉは、ＩＧＦ−Ｉ受容体へのアゴニスト作用の一部として、細胞へのグルコースの取込みの亢進や血糖値の低下作用を起こすことが知られている。しかし、ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体として機能する本発明のアゴニスト抗体は、脊椎動物由来細胞での増殖誘導活性のインビトロにおけるＥＣ_５０値の１００倍以上の用量においても、分化筋細胞でのグルコース取込みを誘導せず、また、動物に非経口的に投与した場合に筋肉量の増加を誘導する有効用量の更に１０倍以上の血中曝露量でも、血糖値を変動させないという特徴を示すという、予想外の効果を有する。また、ＩＧＦ−Ｉ受容体アンタゴニスト抗体として機能する本発明のアンタゴニスト抗体も、脊椎動物由来細胞の分化筋細胞でのグルコース取込み及び／又は脊椎動物での血糖値に影響を及ぼさないという特徴は、従来のＩＧＦ−Ｉ受容体アンタゴニスト抗体をヒトの治療で用いる際の未充足の課題であった高血糖等を回避するうえで有利な効果である。なお、本開示における脊椎動物由来細胞については、前述したとおりである。

本発明の抗体が有する、脊椎動物由来細胞のインビトロにおける細胞内へのグルコース取込みに影響を及ぼさないという特徴を調べるための細胞としては、初代培養細胞、株化細胞、又はそれらの細胞の形質転換体細胞等を用いることが可能である。なお、本開示における初代培養細胞、株化細胞、及び形質転換体細胞については、何れも前述したとおりである。

脊椎動物由来の細胞における本発明の抗体によるグルコース取込みに及ぼす影響を調べる方法としては、細胞内グルコース濃度の測定、グルコース類縁トレーサー物質の細胞内取込み量の測定、グルコーストランスポーターの変化の測定等が挙げられる。グルコース濃度の測定方法は、酵素法等の吸光度測定法があり、グルコース類縁トレーサー物質の細胞内取込み量を測定する方法としては、［３Ｈ］−２’−デオキシグルコースの取込み量の測定、グルコーストランスポーターの変化をみる方法としては、細胞免疫染色法、ウエスタンブロット等があるが、当業者であれば適宜その他の方法等でも実施することができる。細胞内へのグルコース取込みに及ぼす影響は、試験に用いる培養細胞に対して、本発明の抗体を反応させた場合の細胞内へのグルコース取込みが、当該抗体を反応させていない場合と同程度であることで判定できる。この場合、当該誘導活性の対照として、同条件で本来のＩＧＦ−Ｉ受容体のリガンドであるＩＧＦ−Ｉを反応させた測定を行うと、その活性の評価に便利である。

試験を行う培養細胞に対して、本発明の抗体及びＩＧＦ−Ｉをそれぞれの濃度を変化させて反応させたときに、無処置群の細胞内へのグルコース取込みを１００％とした場合のグルコース取込み量として示す。ヒト分化筋細胞を用いてグルコース取込み量を評価した場合、好ましくは本発明の抗体のグルコース取込み量は同一濃度のＩＧＦ−Ｉのグルコース取込み量以下であり、より好ましくは本発明の抗体のグルコース取込み量は無処置群の１１０％以下であり、更に好ましくは本発明の抗体のグルコース取込み量は無処置群と同等の１００％である。また、ヒト分化筋細胞を用いてグルコース取込み量を評価した場合、本発明の抗体を１００ｎｍｏｌ／Ｌ添加した場合のグルコース取込み量は、好ましくは１１０％以下であり、より好ましくは１０５％以下であり、更に好ましくは９５から１００％である。

脊椎動物由来細胞のインビボにおけるグルコース取込みを調べる方法としては、当該脊椎動物に本発明の抗体を投与して、投与された個体における臓器又は組織中のグルコース含量等の変化を計測することで調べることができる。個体全体での計測では、血糖値等の測定や、糖化蛋白質を指標としたヘモグロビンＡ１Ｃ等が用いられる。個体での臓器や組織中のグルコース取込み量等の測定においては、ヒト以外の動物においては直接目的の臓器又は組織を回収し、グルコース含量又はトレーサーの算定等が行われる。また、非侵襲的に個体の臓器又は組織中のグルコース取込みを測定する方法としては、Ｘ線撮影像やＣＴ、ＭＲＩによる画像解析、同位元素や蛍光物質によるトレーサーを用いた造影法等が用いられる。対象となる組織が骨格筋である場合には、グルコースクランプ等も指標となる。その他、当業者であれば適宜その他の方法を用いることで、本発明の抗体の脊椎動物由来細胞のインビボにおけるグルコース取込みに及ぼす影響を調べることができる。

また、本発明の抗体は、脊椎動物に投与された場合、当該脊椎動物の筋肉量の増加を誘導する有効用量に対して、同一用量、好ましくは１０倍以上の用量においても、当該脊椎動物の血糖値を変動させないことを特徴とする。本発明の抗体の脊椎動物での血糖値の変化を調べるための動物としては、好ましくは哺乳類、鳥類、爬虫類、両生類又は魚類に属する動物であり、より好ましくは哺乳類又は鳥類に属する動物であり、更により好ましくは、ヒト、サル、ウサギ、モルモット、ウシ、ブタ、ヒツジ、ウマ又はイヌである。また、本発明の抗体と交差反応性がある種のＩＧＦ−Ｉ受容体を発現されるように改変された動物も、本発明の抗体の脊椎動物での血糖値の変化を調べるための動物に含まれる。血糖値の測定は、観血的方法としては比色法や電極法等が用いられ、検出のための酵素にはグルコースオキシダーゼ法（ＧＯＤ法）、グルコースデヒドロゲナーゼ法（ＧＤＨ法）等があり、非観血的方法としては光学的測定法等があるが、当業者であれば適宜その他の方法も選択することができる。血糖値はヒトの場合、空腹時血糖値の正常域は、１００ｍｇ／ｄＬ〜１０９ｍｇ／ｄＬである。血糖値に対する薬剤投与による有害事象は（有害事象共通用語規準ｖ４．０）、血糖値が７７ｍｇ／ｄＬ〜５５ｍｇ／ｄＬの範囲より低値となる場合は低血糖、１０９ｍｇ／ｄＬ〜１６０ｍｇ／ｄＬの範囲より高値となる場合は高血糖と定義されている。薬剤投与による血糖値に及ぼす影響がないとは、薬剤投与後の血糖値が５５ｍｇ／ｄＬより上で１６０ｍｇ／ｄＬ未満の範囲内となること、より好ましくは７７ｍｇ／ｄＬより上で１０９ｍｇ／ｄＬ未満の範囲内となることである。但し、血糖値は投与する動物によって正常値やその変動の幅が異なり、またヒトであっても投与時の血糖値が必ずしも正常値の範囲であるとは限らないことから、本開示において脊椎動物の血糖値を変動させないとは、本発明の抗体を投与された脊椎動物の血糖値が好ましくは３０％以内、より好ましくは２０％以内、更により好ましくは１０％以内の変化であることをいう。

［抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体の製法］
本発明の抗体は、ＩＧＦ−Ｉ受容体に対するマウスモノクローナル抗体ＩＧＦ１１−１６（マウスＩＧＦ１１−１６抗体、日本特許出願：特願２０１７−１０６５２９）をヒト化することにより取得できる。そのようなヒト化抗体の取得方法の例は、後述の実施例１に記載されており、それによって得られたヒト化抗体としては、配列番号７のＶＨアミノ酸配列、配列番号８、９、１０、１１又は１２のＶＬアミノ酸配列を有するヒト化抗体（Ｒ１１−１６Ｂ、Ｒ１１−１６Ｃ、Ｒ１１−１６Ｄ、Ｒ１１−１６Ｅ又はＲ１１−１６Ｆ）が挙げられる。しかし、本発明の抗体は、それらに限定されるものではない。

得られた抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体について、その抗体のタンパク質のアミノ酸をコードする塩基配列を有する核酸分子を得ることも可能であり、そのような核酸分子を用いて遺伝子工学的に抗体を作製することも可能である。当該抗体の遺伝子情報におけるＨ鎖、Ｌ鎖、若しくはそれらの可変領域について、ＣＤＲ配列等の情報を参考にして、抗体の結合性や特異性の向上のための改変等を行うことができる。

本発明の抗体を製造する方法としては、それぞれ取得したい抗体のタンパク質のアミノ酸をコードする遺伝子を導入された哺乳細胞、昆虫細胞、及び大腸菌などを培養し、得られた培養上清から常法によって抗体を精製して取得することができる。その具体的な方法としては、これに限定されるものではないが、以下のような方法が例示される。

まず、Ｈ鎖可変領域をコードする核酸分子に、Ｈ鎖シグナルペプチドをコードする核酸分子と、Ｈ鎖定常領域をコードする核酸分子とを結合させて作製する。Ｌ鎖可変領域をコードする核酸分子に、Ｌ鎖シグナルペプチドをコードする核酸分子と、Ｌ鎖定常領域をコードする核酸分とを結合させて作製する。

これらのＨ鎖遺伝子とＬ鎖遺伝子を、選択した宿主細胞で発現するのに適したベクター、例えばクローニングベクター又は発現用ベクターに組込む。ここで、Ｈ鎖遺伝子及びＬ鎖遺伝子は、両方の遺伝子が発現する形であれば、一つのベクターに組み込まれてもよく、また、それぞれ別のベクターに組み込まれてもよい。

次に、Ｈ鎖遺伝子とＬ鎖遺伝子が組み込まれたベクターは、宿主細胞に導入される。宿主細胞としては、例えば哺乳動物細胞、昆虫細胞、酵母細胞、若しくは植物細胞等の真核細胞、又は細菌細胞が挙げられる。宿主細胞に遺伝子を導入する方法としては、リン酸カルシウムやリポフェクション法などの化学的方法、エレクトロポレーション法やパーティクルガン法などの物理的方法又はウイルスやファージなどでの感染による方法などから適宜選択することができる。Ｈ鎖遺伝子及びＬ鎖遺伝子が導入された宿主細胞は、選択をかけることなく培養に用いることもできるし、薬剤耐性や栄養要求性などの性質を用いて遺伝子が導入された組換え体細胞を選択的に濃縮することや、更に遺伝子が導入された単一の宿主細胞から樹立されたクローンの組換え体細胞を培養に用いることも可能である。

Ｈ鎖遺伝子及びＬ鎖遺伝子が導入された宿主細胞は、適切な培地と培養条件で培養される。ここで、宿主細胞内で発現したＨ鎖遺伝子及びＬ鎖遺伝子の産物は、通常は抗体タンパク質として培地中に分泌され、当該培地を回収することで産生された抗体タンパク質を得ることができる。但し、遺伝子と宿主との組み合わせにより、必要がある場合には宿主細胞を破壊して細胞内に蓄積した抗体タンパク質を回収すること、原核細胞の場合にはペリプラズム画分から抗体タンパク質を回収することも選択できる。回収された抗体タンパク質を含む培地等の試料から抗体を精製する方法としては、塩沈法、透析や限外濾過法等による濃縮や溶媒の交換、プロテインＡ、プロテインＧ又は抗原等が固定化された担体を用いたアフィニティークロマトグラフィーなどが一般に用いられるが、その他、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、混合モードクロマトグラフィーやサイズ排除クロマトグラフィー等の方法も適宜用いて精製することが可能である。これらの手順に用いられる各種の手法は、何れも当業者には周知である。

ここで、免疫グロブリンの重鎖及び／又は軽鎖をコードする遺伝子について、望む形質を導入するための遺伝子改変を行ったり、免疫グロブリンの重鎖及び／又は軽鎖の可変領域又はＣＤＲ領域の構造情報を用いたりすることにより、抗体キメラタンパク質、低分子抗体、スキャフォールド抗体等を作製することは、当業者であれば公知の技術を用いて実施可能である。また、抗体の性能の向上や副作用の回避を目的に、抗体の定常領域の構造に改変を入れることや、糖鎖の部分での改変を行うことも、当業者によく知られた技術によって適宜行うことができる。

［抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体を含有する薬］
本発明の抗体は、ＩＧＦ−Ｉに関連した状態又はＩＧＦ−Ｉ受容体への作用に起因する疾患の治療薬又は予防薬として利用可能である。具体的には、ＩＧＦ−Ｉに関連した状態又はＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体での治療又は予防の対象となる疾患としては、筋萎縮性疾患（例えば廃用性筋萎縮、サルコペニア、カヘキシア等）、低身長症（例えばラロン型低身長症、成長ホルモン抵抗性低身長症等）、肝硬変、肝線維化、糖尿病性腎症、慢性腎不全、老化、子宮内胎児発育遅延（ＩＵＧＲ）、心血管保護、糖尿病、インスリン抵抗性、メタボリックシンドローム、骨粗しょう症、嚢胞性線維症、筋強直性ジストロフィー、エイズ筋減弱症、ＨＩＶに伴う脂肪再分布症候群、クローン病、ウェルナー症候群、Ｘ連鎖性複合免疫不全症、難聴、神経性無食欲症及び未熟児網膜症、ターナー症候群、プラダー・ウィリー症候群、シルバー・ラッセル症候群、特発性低身長、肥満、多発性硬化症、潰瘍性大腸炎、低筋肉量、心筋虚血、低骨密度、ＩＧＦ−Ｉ受容体アンタゴニスト抗体での治療又は予防の対象となる疾患としては、神経芽細胞腫、横紋筋肉腫、骨肉腫、小児がん、先端巨大症、卵巣がん、膵臓がん、良性前立腺肥大症、乳がん、前立腺がん、骨がん、肺がん、結腸直腸がん、頚部がん、滑膜肉腫、膀胱がん、胃がん、ウィルムス腫瘍、転移性カルチノイド及び血管作動性腸管ペプチド分泌腫瘍に関連する下痢、ビポーマ、ウェルナー−モリソン症候群、ベックウィズ−ヴィーデマン症候群、腎臓がん、腎細胞がん、移行上皮がん、ユーイング肉腫、白血病、急性リンパ芽球性白血病、脳腫瘍、膠芽腫、非膠芽腫性脳腫瘍、髄膜腫、下垂体腺腫、前庭神経鞘腫、未分化神経外胚葉性腫瘍、髄芽腫、星状細胞腫、乏突起膠腫、脳室上衣腫、脈絡叢乳頭腫、巨人症、乾癬、アテローム性動脈硬化症、血管の平滑筋再狭窄、不適切な微小血管増殖、糖尿病性網膜症、グレーヴズ病、全身性エリテマトーデス、橋本甲状腺炎、重症筋無力症、自己免疫性甲状腺炎、及びベーチェット病が挙げられる。特に、本発明の抗体は、筋萎縮性疾患（例えば廃用性筋萎縮、サルコペニア、カヘキシア等）及び／又は低身長症（例えばラロン型低身長症、成長ホルモン抵抗性低身長症等）の治療薬又は予防薬としての使用が好ましい。また、本発明の抗体は投与によって血糖値の変動を生じさせない点において優れている。

本発明の抗体を含有する薬は、本発明の抗体の他に、医薬的に許容される担体及び／又はその他の添加剤を含有する、医薬組成物の形態として製剤化してもよい。医薬的に許容される担体及び／又はその他の添加剤を用いての製剤は、例えばUniversity of the Sciences in Philadelphia, “Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th EDITION”, Lippincott Williams & Wilkins, 2000に記載の方法で実施することが可能である。

このような治療剤又は予防剤の一つの形態としては、無菌の水性液又は油性液に溶解、懸濁、又は乳化することによって調製された液剤或いは凍結乾燥剤として供される。このような溶剤又は溶解液として、水性液としては注射用蒸留水、生理食塩水等が挙げられ、それに加えて浸透圧調節剤（例えば、Ｄ−グルコース、Ｄ−ソルビトール、Ｄ−マンニトール、塩化ナトリウム等）が添加される場合、適当な溶解補助剤、例えばアルコール（例えばエタノール）、ポリアルコール（例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン性界面活性剤（例えばポリソルベート８０、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油５０）等が併用される場合もある。また、溶剤又は溶解液としては油性液が用いられる場合もあり、当該油性液の例としてはゴマ油、大豆油等があげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコール等が併用される場合もある。このような製剤においては、適宜、緩衝剤（例えば、リン酸塩類緩衝剤、酢酸塩類緩衝剤）、無痛化剤（例えば、塩化ベンザルコニウム、塩酸プロカイン等）、安定剤（例えば、ヒト血清アルブミン、ポリエチレングリコール等）、保存剤（例えば、アスコルビン酸、エリソルビン酸及びそれらの塩等）、着色剤（例えば、銅クロロフィル、β−カロチン、赤色２号、青色１号等）、防腐剤（例えばパラオキシ安息香酸エステル、フェノール、塩化ベンゼトニウム、塩化ベンザルコニウム等）、増粘剤（例えばヒドロキシプロピルセルロース、カルボキシメチルセルロース及びそれらの塩等）、安定化剤（例えばヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール等）、矯臭剤（例えばメントール、柑橘香料等）の添加剤が用いられる場合がある。

別の形態として、粘膜適用用治療剤又は予防剤もあげられる。この製剤においては、粘膜への吸着性、滞留性等を付与することを主な目的として、添加剤として粘着剤、粘着増強剤、粘稠剤、粘稠化剤等（例えば、ムチン、カンテン、ゼラチン、ペクチン、カラギーナン、アルギン酸ナトリウム、ローカストビンガム、キサンタンガム、トラガントガム、アラビアゴム、キトサン、プルラン、ワキシースターチ、スクラルフェート、セルロース、及びその誘導体（例えば、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリグリセリン脂肪酸エステル、アクリル酸（メタ）アクリル酸アルキル共重合体、又はその塩、ポリグリセリン脂肪酸エステル等）が含有される場合もある。しかしながら、生体に供与される治療剤又は予防剤の形態及び溶剤や添加剤はこれらに限定されるものではなく、当業者であれば適宜選択できる。

本発明の抗体を含有する薬は、本発明の抗体の他に、既存の他の薬物（活性成分）を含んでいてもよい。また、本発明の抗体を含む薬を、既存の他の薬物と組み合わせ、キットの形態としてもよい。ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体と組み合わせる活性成分として、成長ホルモン又はそのアナログ、インスリン又はそのアナログ、ＩＧＦ−II又はそのアナログ、抗ミオスタチン抗体、ミオスタチンアンタゴニスト、抗アクチビンＩＩＢ型受容体抗体、アクチビンＩＩＢ受容体アンタゴニスト、可溶性アクチビンＩＩＢ型受容体又はそのアナログ、グレリン又はそのアナログ、フォリスタチン又はそのアナログ、ベータ２アゴニスト、及び選択的アンドロゲン受容体モジュレーターが挙げられる。また、ＩＧＦ−Ｉ受容体アンタゴニスト抗体と組み合わせる活性成分として、コルチコステロイド、制吐薬、オンダンセトロン塩酸、グラニセトロン塩酸、メトロクロプラミド（metroclopramide）、ドンペリドン、ハロペリドール、シクリジン、ロラゼパム、プロクロルペラジン、デキサメタゾン、レボメプロマジン、トロピセトロン、癌ワクチン、ＧＭ−ＣＳＦ阻害薬、ＧＭ−ＣＳＦ ＤＮＡワクチン、細胞に基づくワクチン、樹状細胞ワクチン、組換えウイルスワクチン、熱ショックタンパク質（ＨＳＰ）ワクチン、同種腫瘍ワクチン、自己腫瘍ワクチン、鎮痛薬、イブプロフェン、ナプロキセン、トリサリチル酸コリンマグネシウム、オキシコドン塩酸、抗血管形成薬、抗血栓薬、抗ＰＤ−１抗体、ニボルマブ、ペムブロリズマブ、抗ＰＤ−Ｌ１抗体、アテゾリズマブ、抗ＣＴＬＡ４抗体、イピリムマブ、抗ＣＤ２０抗体、リツキシマブ、抗ＨＥＲ２抗体、トラスツズマブ、抗ＣＣＲ４抗体、モガムリズマブ、抗ＶＥＧＦ抗体、ベバシズマブ、抗ＶＥＧＦ受容体抗体、可溶性ＶＥＧＦ受容体断片、抗ＴＷＥＡＫ抗体、抗ＴＷＥＡＫ受容体抗体、可溶性ＴＷＥＡＫ受容体断片、ＡＭＧ ７０６、ＡＭＧ ３８６、抗増殖薬、ファルネシルタンパク質トランスフェラーゼ阻害薬、αｖβ３阻害薬、αｖβ５阻害薬、ｐ５３阻害薬、Ｋｉｔ受容体阻害薬、ｒｅｔ受容体阻害薬、ＰＤＧＦＲ阻害薬、成長ホルモン分泌阻害薬、アンジオポエチン阻害薬、腫瘍浸潤マクロファージ阻害薬、ｃ−ｆｍｓ阻害薬、抗ｃ−ｆｍｓ抗体、ＣＳＦ−１阻害薬、抗ＣＳＦ−１抗体、可溶性ｃ−ｆｍｓ断片、ペグビソマント、ゲムシタビン、パニツムマブ、イリノテカン、及びＳＮ−３８が挙げられる。配合される本発明の抗体以外の薬物の用量としては、通常の治療に用いられる用量で行うことができるが、状況に応じて増減することも可能である。

本発明における治療剤又は予防剤は、症状の改善を目的として、非経口的に投与することができる。非経口投与の場合には、例えば経鼻剤とすることができ、液剤、縣濁剤、固形製剤等を選択できる。また別の非経口投与の形態としては、注射剤とすることができ、注射剤としては、皮下注射剤、静脈注射剤、点滴注射剤、筋肉注射剤、脳室内注射剤又は腹腔内注射剤等を選択することができる。またその他の非経口投与に用いる製剤としては、坐剤、舌下剤、経皮剤、経鼻剤以外の経粘膜投与剤等も挙げられる。更に、ステントや血管内栓塞剤に含有若しくは塗布する態様で、血管内局所投与することもできる。

本発明における治療剤又は予防剤の投与量は、患者の年齢、性別、体重、症状、治療効果、投与方法、処理時間、又は当該医薬組成物に含有される活性成分の種類等により異なるが、通常成人１人あたり、１回につき主剤を０．１ｍｇから１ｇの範囲で、好ましくは０．５ｍｇから３００ｍｇの範囲で、１週から４週間に１回、若しくは１か月から２か月に１回投与することができる。しかし、投与量及び投与回数は種々の条件により変動するため、前記投与量及び回数よりも少ない量及び回数で充分な場合もあり、また前記の範囲を超える投与量及び投与回数が必要な場合もある。

［抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体を用いた細胞培養方法］
脊椎動物由来細胞をインビトロにおいて維持、増殖及び／又は分化させるための細胞培養技術において、ＩＧＦ−Ｉ又はその誘導体が多く用いられており、細胞培養用の試薬として市販されている。ＩＧＦ−Ｉは安定性の問題等から、長期の培養においては時間が経つにつれて効果が減弱する可能性があり、安定的な細胞培養を行うためには適宜濃度を調節する等の対応が必要になる。また、ＩＧＦ−Ｉは細胞へのグルコースの取込みを誘導することから、細胞内グルコース濃度の上昇によって細胞の代謝や特性の変化が誘導されたり、培地中のグルコース濃度が減少して培養環境が変化する可能性がある。本発明の抗体はＩＧＦ−Ｉと比較して安定性が高く、細胞に接触してからの細胞増殖を誘導する時間が長く、ＩＧＦ−Ｉより低濃度で細胞増殖誘導活性を示し、かつ、細胞内へのグルコース取込みを誘導しないという特徴を持つ。本発明の抗体は、細胞培養においてその培地に適量を添加して使用されるほか、培養を行う容器の固相に吸着又は固定して用いることが可能で、それによって使用量を削減したり、固相に付着する細胞に対して有効に細胞増殖誘導を行うことができる。なお、本開示における脊椎動物由来細胞については、前述したとおりである。更に、本発明の抗体を用いた培養の対象としては、脊椎動物又はその遺伝子改変動物に由来する臓器や組織等も含まれる。本発明の抗体は、細胞を用いた物質生産のための培養や、細胞自体を用いる細胞医療・再生医療での培養工程で用いることができる。

以下、実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明する。但し、本発明は以下の実施例にも束縛されるものではなく、本発明の趣旨を逸脱しない範囲において、任意の形態で実施することが可能である。

［実施例１］マウスＩＧＦ１１−１６抗体のヒト化抗体遺伝子の作製：
Kohlerら（Nature, 256:495-497, 1975）のハイブリドーマ法により作製し得られたＩＧＦ−Ｉ受容体に対するマウスモノクローナル抗体ＩＧＦ１１−１６（マウスＩＧＦ１１−１６抗体、日本特許出願：特願２０１７−１０６５２９）の重鎖可変領域（ＶＨ）及び軽鎖可変領域（ＶＬ）中の相補性決定領域（ＣＤＲ）アミノ酸の移植先となる鋳型ヒト抗体は、マウスＩＧＦ１１−１６抗体のＶＨ、ＶＬのフレームワーク領域（ＦＲ）のアミノ酸配列に対して、それらと相同性の高いアミノ酸配列を持つヒト抗体の生殖細胞系列（germline）の中から選んだ。

上記の鋳型ヒト抗体ＶＨ及びＶＬのＦＲに、マウスＩＧＦ１１−１６抗体のＶＨ及びＶＬから必要なアミノ酸配列を移植してヒト化抗体を作製した。具体的には、ＶＨについては、前述の鋳型ヒト抗体ＶＨのＣＤＲアミノ酸配列及びＦＲアミノ酸の数カ所をマウスＩＧＦ１１−１６抗体のＶＨ中の対応するアミノ酸配列で置換し、マウスＩＧＦ１１−１６抗体をヒト化したＶＨであるＲ１１−１６ＶＨのアミノ酸配列をデザインし（配列番号７）、更にそれらのアミノ酸をコードするＤＮＡの塩基配列をデザインした。

ＶＬについては、前述の鋳型ヒト抗体ＶＬのＣＤＲアミノ酸配列及びＦＲアミノ酸の数カ所をマウスＩＧＦ１１−１６抗体のＶＬ中のアミノ酸配列に置換し、マウスＩＧＦ１１−１６抗体をヒト化したＶＬであるＲ１１−１６ＶＬのアミノ酸配列をデザインした。

Ｒ１１−１６ＶＬの３６番目のアミノ酸については、マウスＩＧＦ１１−１６抗体ではシステインであったが、通常のヒト抗体ではこの位置にシステインは存在することは少なく、本来は生じないジスルフィド結合が形成され、凝集の原因になることが考えられたことから、３６番目のアミノ酸がシステイン、チロシン、アラニン、セリン、フェニルアラニンから成る５種類のＲ１１−１６ＶＬ、すなわちＲ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６、Ｒ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ｙ、Ｒ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ａ、Ｒ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ｓ、Ｒ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ｆのアミノ酸配列をデザインし（配列番号１２、配列番号８、配列番号９、配列番号１０、配列番号１１）、更にそれらのアミノ酸をコードするＤＮＡの塩基配列をデザインした。各ヒト化抗体の構造及びそのアミノ酸を下記表１に示す。

［実施例２］ヒト化抗体の調製：
デザインされたヒト化抗体の重鎖可変領域Ｒ１１−１６ＶＨと、ヒトＩｇＧ４サブクラスを安定化した変異体であるヒトＩｇＧ４Ｓ２２８Ｐ変異体をコードするＤＮＡをそれぞれ合成し、ｐＣＡＧＧＳ１系発現ベクターに組み込み連結し、ヒト化抗体重鎖を発現するプラスミドとした。

デザインされたヒト化抗体の軽鎖可変領域Ｒ１１−１６ＶＬについては、κ鎖定常領域を連結したヒト化抗体軽鎖領域をコードするＤＮＡを合成し、ｐＣＡＧＧＳ１系発現ベクターに組み込み、ヒト化抗体軽鎖を発現するプラスミドとした。

これらのヒト化抗体重鎖発現プラスミドとヒト化抗体軽鎖発現プラスミドを混合してExpi293^TM Expression System（Thermo Fisher Scientific）を用いて細胞に導入することにより、マウスＩＧＦ１１−１６抗体をヒト化した各種抗体を発現させた。この際、Ｒ１１−１６ＶＨを組込んだ重鎖発現プラスミドとＲ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ｙを組込んだ軽鎖発現プラスミドを組み合わせて発現させたヒト化抗体をＲ１１−１６Ｂ抗体、Ｒ１１−１６ＶＨを組込んだ重鎖発現プラスミドとＲ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ａを組込んだ軽鎖発現プラスミドを組み合わせて発現させたヒト化抗体をＲ１１−１６Ｃ抗体、Ｒ１１−１６ＶＨを組込んだ重鎖発現プラスミドとＲ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ｓを組込んだ軽鎖発現プラスミドを組み合わせて発現させたヒト化抗体をＲ１１−１６Ｄ抗体、Ｒ１１−１６ＶＨを組込んだ重鎖発現プラスミドとＲ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６Ｆを組込んだ軽鎖発現プラスミドを組み合わせて発現させたヒト化抗体をＲ１１−１６Ｅ抗体、Ｒ１１−１６ＶＨを組込んだ重鎖発現プラスミドとＲ１１−１６ＶＬ−Ｃ３６を組込んだ軽鎖発現プラスミドを組み合わせて発現させたヒト化抗体をＲ１１−１６Ｆ抗体と、それぞれ命名した。ヒト化抗体は、ヒト化抗体重鎖及びヒト化抗体軽鎖発現プラスミドを導入した細胞の培養上清を、プロテインＡカラムを用いてアフィニティー精製することにより取得した。

［実施例３］ＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合活性（ＥＬＩＳＡ）：
ヒト（配列番号１４、ＮＰ＿０００８６６）、モルモット（配列番号１６、ＸＰ＿００３４７５３１６）、カニクイザル（配列番号１８、ＸＰ＿００５５６０５７５）及びラット（配列番号２０、ＮＰ＿４３４６９４）のＩＧＦ−Ｉ受容体に対するＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体の結合活性を検討するために、各種ＩＧＦ−Ｉ受容体を発現させた細胞を用いてＣｅｌｌ ＥＬＩＳＡを実施した。

ＨＥＫ２９３Ｔ細胞にリポフェクション法によりヒト（配列番号１５）、モルモット（配列番号１７）、カニクイザル（配列番号１９）及びラット（配列番号２１）のＩＧＦ−Ｉ受容体遺伝子を組込んだｐＥＦ１発現ベクター（Thermofisher）を導入した。リポフェクション後に一晩以上培養させたＨＥＫ２９３Ｔ細胞を４×１０^４ｃｅｌｌｓ／ウェルで９６ウェルプレート（ポリ−Ｄ−リジンコート）に添加して、更に一晩以上培養したものをＥＬＩＳＡに使用した。

ＥＬＩＳＡは、１％ＢＳＡ／１％ＦＢＳ／ＰＢＳにて２ｎＭに調製された各ヒト化抗体溶液を各ウェルに１００μＬ添加して３７℃にて約１時間反応させた。洗浄液にて３回洗浄した。１％ＢＳＡ／１％ＦＢＳ／ＰＢＳにて各濃度に調製された抗ヒトＩｇＧ抗体ＨＲＰコンジュゲート溶液を各ウェルに１００μＬ添加して３７℃にて約１時間反応させ、洗浄液にて３回洗浄した。各ウェルに基質（ＴＭＢ）を１００μＬ添加して反応を開始させた。約３０分後に各ウェルに１００μＬの１Ｍ硫酸を添加して４５０及び６５０ｎｍの吸光度を測定し、吸光度４５０−６５０ｎｍを算出した。ＩＧＦ−Ｉ受容体遺伝子を導入していないＨＥＫ２９３Ｔ細胞（コントロール細胞）に対する吸光度４５０−６５０ｎｍの値を１として、結合活性を算出した。結果を下記表２に示す。

各ヒト化抗体は、ヒト、カニクイザル、及びモルモットのＩＧＦ−Ｉ受容体を発現させた細胞では、コントロール細胞（ＨＥＫ２９３Ｔ）と比較して、結合活性を３倍以上に上昇させた。一方、ラットのＩＧＦ−Ｉ受容体を発現させた細胞に対する結合活性は、コントロール細胞と同等であった。これらのことから、各ヒト化抗体はヒト、カニクイザル、及びモルモットのＩＧＦ−Ｉ受容体に結合するが、ラットのＩＧＦ−Ｉ受容体には結合しないことが示された。

［実施例４］ヒト化抗体Ｒ１１−１６Ｂのエピトープの決定：
Ｒ１１−１６Ｂは、ヒト、カニクイザル、及びモルモットのＩＧＦ−Ｉ受容体に結合するが、ラットのＩＧＦ−Ｉ受容体には結合しない。また、Ｒ１１−１６Ｂの設計の基となったマウス抗体（日本特許出願：特願２０１７−１０６５２９）であるマウスＩＧＦ１１−１６抗体は、ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインに結合し、ラットのＩＧＦ−Ｉ受容体には結合しない。このことから、Ｒ１１−１６Ｂのエピトープは、ＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインのアミノ酸配列のうち、ヒト、カニクイザル及びモルモットに共通して、ラットとは異なるアミノ酸配列と推定した。

Ｒ１１−１６ＢがヒトＩＧＦ−Ｉ受容体のＣＲドメインのどの部位のアミノ酸に結合するのかを決定するために、ＣＲドメインの各種アミノ酸置換体に対する結合性をＥＬＩＳＡにより測定した。ＣＲドメインのうち、Ｒ１１−１６Ｂとの結合が推定されるアミノ酸配列を変異させたＩＧＦ−Ｉ受容体を発現させた細胞を用いてＣｅｌｌ ＥＬＩＳＡを実施した。

ＣＲドメインの各種アミノ酸置換体は、以下の２種を用いた。また、陽性対照として野生型のヒトＩＧＦ−Ｉ受容体（配列番号１４、ＮＰ＿０００８６６）のＣ末端にＦＬＡＧタグ（ＡｓｐＴｙｒＬｙｓＡｓｐＡｓｐＡｓｐＡｓｐＬｙｓ）を結合させたアミノ酸配列をコードするＤＮＡ（配列番号２２）をｐＥＦ１発現ベクター（Thermofisher）に組込んだものを用いた。ｐＥＦ１発現ベクターのみを処置した細胞をＭｏｃｋとした。

（ＣＲドメインの置換体１）
ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体（配列番号１４、ＮＰ＿０００８６６）のアミノ酸配列、２４５番目、２４７番目及び２９４番目のアスパラギン酸、アラニン及びグルタミン酸を、それぞれアスパラギン、トレオニン及びアスパラギン酸に置換させた。当該置換体１受容体のアミノ酸配列のＣ末端にＦＬＡＧタグを結合させたアミノ酸配列をコードするＤＮＡ（配列番号２３）をｐＥＦ１発現ベクターに組み込んだ。

（ＣＲドメインの置換体２）
ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体（配列番号１４、ＮＰ＿０００８６６）のアミノ酸配列、３１５番目及び３１６番目のグリシン及びセリンを、それぞれセリン及びトレオニンに置換させた。当該置換体２受容体のアミノ酸配列のＣ末端にＦＬＡＧタグを結合させたアミノ酸配列をコードするＤＮＡ（配列番号２４）をｐＥＦ１発現ベクターに組み込んだ。

２９３Ｔ細胞を６×１０^６ｃｅｌｌｓでポリ−Ｄ−リジンコートされた１０ｃｍディッシュに播種した。翌日に各プラスミドＤＮＡをリポフェクション法により細胞に導入した。その翌日に０．０５％トリプシン／ＥＤＴＡを用いて２９３Ｔ細胞を剥がして、培養液にて懸濁した。２９３Ｔ細胞を２×１０^４ｃｅｌｌｓ／ウェルで９６ウェルプレート（ポリ−Ｄ−リジンコート）に添加して、３７℃、５％ＣＯ_２の条件で一晩インキュベートした。９６ウェルプレートから培地を除去して、１０％緩衝ホルマリン（Mildform^{（登録商標）}10NM、Wako）を用いて固定し、ブロッキングバッファー（３％ＢＳＡ／ＰＢＳ／０．０２％アジ化ナトリウム）に置換したものをＥＬＩＳＡに使用した。

ＥＬＩＳＡは、ブロッキングバッファーにて５ｎＭに調製されたＲ１１−１６Ｂを各ウェルに５０μＬ添加して室温にて約１時間反応させた。洗浄液にて２回洗浄した。ブロッキングバッファーにて２５００倍に希釈された抗ヒトＩｇＧ抗体ＡＬＰコンジュゲート溶液（2087-04、Southern Biotech）を各ウェルに５０μＬ添加して室温にて約１時間反応させた。洗浄液にて３回洗浄した。各ウェルに基質（ｐＮＰＰ）を１００μＬ添加して反応を開始させた。約１時間後に４０５及び５５０ｎｍの吸光度を測定した。Ｒ１１−１６Ｂ処置群から無処置群の値を差し引いたものを結合活性として評価した。結果を下記表３に示す。

Ｒ１１−１６ＢのヒトＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合活性は、Ｍｏｃｋと比較して、２倍以上亢進した。また、置換体１に対する結合活性は、ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体に対するものと同等であった。一方、置換体２に対する結合活性は、Ｍｏｃｋと同等であり、結合活性の亢進は認められなかった。これらのことから、Ｒ１１−１６ＢのヒトＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合活性は、ＩＧＦ−Ｉ受容体の３１５番目及び３１６番目のアミノ酸が重要であることが示された。

以上の結果から、Ｒ１１−１６ＢのヒトＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合部位は、３１５番目及び３１６番目のＧｌｙ（グリシン）とＳｅｒ（セリン）の近傍と推定された。一般的に抗体による認識配列数はアミノ酸８残基（６から１０残基の平均値）であること、及びＲ１１−１６Ｂの交差反応性（ラットのＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合性なし、ヒト及びモルモットのＩＧＦ−Ｉ受容体に対する結合性を有する）から、ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体のＲ１１−１６Ｂに対する結合部位の配列は、ＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＧｌｙ^＊Ｓｅｒ^＊ＧｌｎＳｅｒＭｅｔと考えられた（Ｇｌｙ^＊Ｓｅｒ^＊は、３１５番目及び３１６番目のアミノ酸配列を示す）。

［実施例５］ヒト筋芽細胞における細胞増殖活性：
ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体のヒト筋芽細胞に対する増殖活性を検討するため、ヒト筋芽細胞に薬剤を添加して、４日後の細胞内のＡＴＰ量を測定した。

正常ヒト骨格筋筋芽細胞（Human Skeletal Muscle Myoblast Cells、HSMM、Lonza）を、ＳｋＢＭ−２（Lonza、CC-3246）に１％ＢＳＡを含む培地を使用して、９６ウェルプレート（Collagen type I coated）に、０．１ｍＬ／ウェル（２×１０^３ｃｅｌｌｓ／ウェル）で播種し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件でインキュベートした。細胞播種の翌日に各種薬剤を２５μＬ／ウェルで添加し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件で４日間インキュベートした。細胞増殖の指標として細胞内のＡＴＰ量を、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｇｌｏ^{（登録商標）}発光細胞生存アッセイ（Promega）を使用して測定した。４日間インキュベートした９６ウェルプレートを、培養液が５０μＬ／ウェルとなるように上清を除き、３０分以上室温にて静置した。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｇｌｏ^{（登録商標）}試薬を５０μＬ／ウェルで添加して１０分以上反応させた後にルミノメーター（ベルトールド）にて発光シグナルを測定した。溶媒のみを添加した群の活性を１００％として算出した。結果を下記表４〜６に示す。

０．００００００５、０．０００００５、０．００００５、０．０００５、０．００５、０．０５、０．５、５及び５０ｎＭのＲ１１−１６Ｂは、ヒト筋芽細胞の増殖活性を濃度依存的に亢進させた。Ｒ１１−１６Ｂ、マウスＩＧＦ１１−１６抗体及びＩＧＦ−Ｉの筋芽細胞増殖活性のＥＣ_５０は、それぞれ０．００２、０．００２及び０．９５ｎＭであり、Ｒ１１−１６ＢはマウスＩＧＦ１１−１６抗体と同等、且つ、ＩＧＦ−Ｉと比較して１００倍以上強い活性を示した。

０．００００５、０．０００５、０．００５、０．０５、０．５、５、及び５０ｎＭのＲ１１−１６Ｂ、Ｒ１１−１６Ｃ、Ｒ１１−１６Ｄ、Ｒ１１−１６Ｅ、Ｒ１１−１６Ｆは、ヒト筋芽細胞の増殖活性を濃度依存的に亢進させた。Ｒ１１−１６Ｂ、Ｒ１１−１６Ｃ、Ｒ１１−１６Ｄ、Ｒ１１−１６Ｅ及びＲ１１−１６Ｆのヒト筋芽細胞増殖活性のＥＣ_５０ は、何れも０．００２ｎＭであった。各ヒト化抗体はＩＧＦ−Ｉと比較して１００倍以上強い活性を示した。

ＩＧＦ−Ｉは、コントロール抗体（ＦＬＡＧ Ｍ２、シグマアルドリッチ）と比較して、細胞増殖活性を亢進させた。

非特許文献３５に記載された１６−１３抗体、及び２６−３抗体（インビトロにおける細胞のＤＮＡ合成、及びグルコース取込みの亢進作用を有することが示されているアゴニスト抗体）は、溶媒コントロール（アジ化ナトリウムを含む）に比べて、顕著な細胞増殖活性は認められず、Ｒ１１−１６Ｂの活性と比較して弱いものであった。

［実施例６］インビボ薬効（モルモットにおける筋肉量増加作用）：
ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体のインビボでの薬効を確認するために、ＩＧＦ−Ｉを持続投与した時の作用と比較した。

モルモットにＲ１１−１６Ｂを単回投与して、２週間後の筋肉量を測定した。筋肉量増加作用とは、モルモットの筋肉重量をコントロール群と比べて５％以上増加させることとする。Ｒ１１−１６Ｂ（０．１及び０．３ｍｇ／ｋｇ）を、正常モルモットの静脈内に単回投与した。陽性対照としてヒト組換えＩＧＦ−Ｉ（メカセルミン）を、浸透圧ポンプ（アルゼット）を使用して皮下に埋め込み、０．３及び１ｍｇ／ｋｇ／日となるように持続投与した。薬剤投与の２週間後、モルモットを麻酔下で放血致死させ、長趾伸筋の重量を測定した。結果を図２に示す。

Ｒ１１−１６Ｂの０．１及び０．３ｍｇ／ｋｇを静脈内投与した群（Ｒ１１−１６Ｂ）は、溶媒のみを処置したコントロール群（vehicle）と比較して、用量依存的、且つ有意に筋肉量を増加させた。

Ｒ１１−１６Ｂの０．３ｍｇ／ｋｇの単回投与群の筋肉増加量は、ヒト組換えＩＧＦ−Ｉを１ｍｇ／ｋｇ／日で持続投与した群（ＩＧＦ−Ｉ）と同程度であった。このことから、Ｒ１１−１６Ｂは、単回投与により、ＩＧＦ−Ｉの持続投与と同等の薬効を有することが示された。臨床でのＩＧＦ−Ｉ（メカセルミン）の用法用量は１日１回から２回である。一方、インビボにおいてＲ１１−１６Ｂは２週に１回の投与でＩＧＦ−Ｉの持続投与と同等の有効性を示すことから、ＩＧＦ−Ｉと比較して持続性に優れることが示された。

［実施例７］インビボ血糖低下作用（モルモットにおける血糖低下作用）：
ＩＧＦ−Ｉ受容体アゴニスト抗体のインビボでの血糖低下作用の有無を確認するために、モルモットにＲ１１−１６Ｂを単回投与して、継時的に血糖値を測定して、ＩＧＦ−Ｉの単回投与時の血糖低下作用と比較した。血糖低下作用とは、血糖値を５０ｍｇ／ｄＬ以下に低下させる、又は低血糖症状を起こす作用とする。

ＩＧＦ−Ｉによる血糖低下作用を検討した。モルモットを１２時間絶食させ、ヒト組換えＩＧＦ−Ｉ（メカセルミン）を、０．３、１、３及び１０ｍｇ／ｋｇで単回皮下投与した。モルモットは、投与２４時間後まで絶食させた。覚醒状態のモルモットを、投与前（０時間）、投与１、２、４、８、及び２４時間後に採血して、グルテストセンサー（三和化学研究所）を使用して血糖値を測定した。結果を下記表７に示す。

ＩＧＦ−Ｉは、０．３ｍｇ／ｋｇから有意に血糖値を低下させ、１ｍｇ／ｋｇ以上では低血糖症状が認められ、３ｍｇ／ｋｇ以上では死亡例が認められた。

Ｒ１１−１６Ｂ、Ｒ１１−１６Ｃ、Ｒ１１−１６Ｄ、Ｒ１１−１６Ｅ及びＲ１１−１６Ｆが血糖値に及ぼす影響を検討した。モルモットを１２時間絶食させ、各ヒト化抗体を、１０ｍｇ／ｋｇで単回静脈内投与した。モルモットは、投与２４時間後まで絶食させた。覚醒状態のモルモットを、投与前（０時間）、投与１、２、４、８、及び２４時間後に採血して、グルテストセンサー（三和化学研究所）を使用して血糖値を測定した。結果を下記表８〜表１０に示す。

各ヒト化抗体は、溶媒のみを投与した溶媒対照群と比較して、血糖値に有意な差を認めず、投与後の血糖値は何れも５０ｍｇ／ｄＬ以上であった。このことから、各ヒト化抗体は、ＩＧＦ−Ｉのような顕著な血糖低下作用を有さず、血糖値に影響を及ぼさないことから、ＩＧＦ−Ｉの副作用である低血糖を克服する薬剤としての可能性が示された。

［実施例８］ＩＧＦ−ＩとＲ１１−１６Ｂの血中動態（モルモットにおける血中動態）：
・ＩＧＦ−Ｉの血中動態：
モルモットを１２時間絶食させ、ヒト組換えＩＧＦ−Ｉを、０．３、１、３及び１０ｍｇ／ｋｇで皮下投与した。モルモットは、投与２４時間後まで絶食させた。覚醒状態のモルモットを、投与前（０時間）、投与１、２、４、８、１０及び２４時間後に採血して、血漿中のヒトＩＧＦ−Ｉ濃度をＥＬＩＳＡ（DG100、R&D）により測定した。結果を図３に示す。

血漿中のＩＧＦ−Ｉ濃度は投与用量に依存して上昇し、投与２４時間後の血漿中のＩＧＦ−Ｉ濃度はピーク時の約５０％以下にまで低下していた。０．３ｍｇ／ｋｇ投与群の投与２４時間後のＩＧＦ−Ｉ濃度は測定下限以下であった。また、１０ｍｇ／ｋｇ投与群は投与４時間以降に低血糖のため死亡したため血漿を採取できなかった。

・ヒト化抗体の血中動態：
モルモットを１２時間絶食させ、ヒト化抗体Ｒ１１−１６Ｂを、１．５及び１０ｍｇ／ｋｇで単回静脈内投与した。モルモットは、投与２４時間後まで絶食させ、２４時間後に再給餌した。覚醒状態のモルモットを、投与前（０時間）、投与２、４、８、２４、４８及び７２時間後に採血して、血漿中のヒト化抗体濃度をＥＬＩＳＡにより測定した。結果を図４に示す。

血漿中のヒト化抗体濃度は投与用量に依存して上昇し、投与４８時間以降も血漿中のヒト化抗体濃度は投与２４時間後と比較して約５０％以上を維持していた。ヒト化抗体の血中動態はＩＧＦ−Ｉと比較して持続性に優れていることが示された。

本発明は、脊椎動物のＩＧＦ−Ｉ受容体に特異的に結合し、ＩＧＦ−Ｉ受容体を介して、筋肉量を増加させ、血糖値を低下させない抗体を提供することができるため、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体に関する疾患の治療、予防又は診断に利用可能である。

Claims (17)

1. 重鎖可変領域のＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｈ１）配列として、配列番号１のアミノ酸配列、又は、配列番号１のアミノ酸配列において１箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、重鎖可変領域のＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｈ２）配列として、配列番号２のアミノ酸配列、又は、配列番号２のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、重鎖可変領域のＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｈ３）配列として、配列番号３のアミノ酸配列、又は、配列番号３のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、軽鎖可変領域のＣＤＲ−１（ＣＤＲ−Ｌ１）配列として、配列番号４のアミノ酸配列、又は、配列番号４のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、軽鎖可変領域のＣＤＲ−２（ＣＤＲ−Ｌ２）配列として、配列番号５のアミノ酸配列、又は、配列番号５のアミノ酸配列において１箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、及び軽鎖可変領域のＣＤＲ−３（ＣＤＲ−Ｌ３）配列として、配列番号６のアミノ酸配列、又は、配列番号６のアミノ酸配列において１若しくは２箇所のアミノ酸残基が置換されたアミノ酸配列、を含み、配列番号１４（ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体）の細胞外ドメインに特異的に結合する、抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
2. 前記抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体が、重鎖可変領域として、配列番号７のアミノ酸配列、又は、配列番号７のアミノ酸配列において１若しくは数箇所におけるアミノ酸残基が置換、欠失、若しくは付加されたアミノ酸配列を含むアミノ酸配列、及び軽鎖可変領域として、配列番号８のアミノ酸配列、又は、配列番号８のアミノ酸配列において１若しくは数箇所におけるアミノ酸残基が置換、欠失、若しくは付加されたアミノ酸配列を含むアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
3. 前記抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体が、重鎖可変領域として配列番号７のアミノ酸配列、及び軽鎖可変領域として配列番号８、９、１０、１１及び１２から選択される何れかのアミノ酸配列を含む、請求項１又は２に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
4. 定常領域として、ヒト免疫グロブリンの各クラスにおける定常領域を更に含む、請求項１から３の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
5. 重鎖定常領域が、ヒトＩｇＧ４クラスの重鎖定常領域である、請求項４に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
6. 配列番号１４（ヒトＩＧＦ−Ｉ受容体）のアミノ酸番号３０８から３１９に相当するアミノ酸配列（ＰｒｏＳｅｒＧｌｙＰｈｅＩｌｅＡｒｇＡｓｎＧｌｙＳｅｒＧｌｎＳｅｒＭｅｔ）を有するペプチドを含むエピトープ又はその近傍に結合する、請求項１から５の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
7. ヒト又はモルモットに由来する筋芽細胞の増殖を誘導する用量において、当該培養細胞でのグルコース取り込みを誘導しない、請求項１から６の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
8. 脊椎動物に投与され、当該脊椎動物の筋肉量及び／又は体長の増加を誘導する用量において、当該脊椎動物の血糖値を低下させない、請求項１から７の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
9. 脊椎動物に投与され、当該脊椎動物の筋肉量及び／又は体長の増加を誘導する有効用量に対して１０倍以上の血中曝露量においても、当該脊椎動物の血糖値を低下させない、請求項８に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体。
10. 請求項１から９の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体をコードするポリヌクレオチド配列からなる核酸分子。
11. 請求項１０に記載の核酸分子を少なくとも一つ含むクローニングベクター又は発現ベクター。
12. 請求項１１に記載のベクターが宿主細胞に導入された組換え体細胞。
13. 請求項１２に記載の組換え体細胞を培養し、前記組換え体細胞から産生される当該抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体を精製する工程を含む、請求項１から９の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体の製造方法。
14. 請求項１から９の何れか一項に記載の抗ＩＧＦ−Ｉ受容体ヒト化抗体若しくはその断片、又はそれらの誘導体、請求項１０に記載の核酸分子、請求項１１に記載のベクター或いは請求項１２に記載の組換え体細胞を有効成分として含む、医薬組成品。
15. 筋萎縮性疾患又は低身長症の治療に用いられる、請求項１４に記載の医薬組成品。
16. 筋萎縮性疾患が、廃用性筋萎縮、サルコペニア又はカヘキシアである、請求項１５に記載の医薬組成品。
17. 低身長症が、ラロン型低身長症又は成長ホルモン抵抗性低身長症である、請求項１５に記載の医薬組成品。

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