JPWO2019168062A1 - 新規酵素及びそれを用いたペントシジンの測定方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、ペントシジンオキシダーゼ活性を有するタンパク質、及び、当該タンパク質と検体とを接触させる工程；及び当該接触により生じた変化を検出する工程、を含む、ペントシジンの測定方法、等を提供する。

Description

本発明は、新規酵素としてのペントシジンオキシダーゼ及びペントシジンオキシダーゼを用いたペントシジンの測定方法等に関する。

ペントシジン（（２Ｓ）−２−ａｍｉｎｏ−６−［２−［［（４Ｓ）−４−ａｍｉｎｏ−４−ｃａｒｂｏｘｙｂｕｔｙｌ］ａｍｉｎｏ］ｉｍｉｄａｚｏ［４，５−ｂ］ｐｙｒｉｄｉｎ−４−ｙｌ］ｈｅｘａｎｏｉｃ ａｃｉｄ）は、ペントースと等モルのリジンとアルギニンが架橋した構造を有し、加齢や糖尿病の発症に相関してヒトの皮膚に蓄積すること、特に糖尿病の発症や末期の腎症において増加することが知られている。

ペントシジンは、酸加水分解後にその蛍光性（Ｅｘ：３３５ｎｍ、Ｅｍ：３８５ｎｍ）を指標としてＨＰＬＣで定量ができること、また、ペントシジンに対するモノクローナル抗体を用いた免疫化学的な方法（例えば、ＥＬＩＳＡ法）を用いて定量できることが知られている。

ペントシジンは加齢や糖尿病以外にも統合失調症との関連が知られており、例えば、生体試料を対象として、ペントシジンの量を測定する工程を有する統合失調症の検査方法が開示されている（例えば、特許文献１を参照）。

特許第５７３８３４６号

免疫化学的な方法や機器分析的手法によるペントシジンの定量は煩雑で費用がかかる場合がある。本発明は、新規酵素と、新規酵素を用いた、免疫化学的な方法や機器分析的手法と比べ安価で簡易的なペントシジンの定量法を提供することを目的とする。

本発明者らは、糸状菌から新規酵素を同定し、その活性を検討した。その結果、新規酵素がペントシジンの定量に有用であることを見出し、本発明が完成するに至った。

本発明の概要は、以下の通りである。
［１］ペントシジンを酸化的に分解する活性を有するタンパク質。
［２］以下の理化学的性質：
（１）作用：ペントシジンを酸化的に分解する活性；及び
（２）ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる分子量：７５，０００〜８５，０００
を有するタンパク質。
［３］前記タンパク質が以下の（ａ）〜（ｆ）から成る群から選ばれるいずれかのタンパク質である、［１］又は［２］に記載のタンパク質：
（ａ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列から成るタンパク質；
（ｂ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列から成る遺伝子によってコードされるタンパク質；
（ｃ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列と７５％以上の同一性を有するアミノ酸配列から成るタンパク質；
（ｄ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列と７５％以上の同一性を有する塩基配列から成る遺伝子によってコードされるタンパク質；
（ｅ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列の１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列から成るタンパク質；あるいは
（ｆ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によってコードされるタンパク質。
［４］前記活性が、ペントシジンの脱アミノ化生成物、過酸化水素及びアンモニアを生成する活性、又は酸素を消費する活性である、［１］〜［３］のいずれかに記載のタンパク質。
［５］糸状菌に由来する、［１］〜［４］のいずれか１項に記載のタンパク質。
［６］至適ｐＨがｐＨ約６．５〜８．０である、［１］〜［５］のいずれかに記載のタンパク質。
［７］至適温度が約３７〜５０℃である、［１］〜［６］のいずれかに記載のタンパク質。
［８］３０℃で１０分間保存した後に前記活性が９０％以上保持される、［１］〜［７］のいずれかに記載のタンパク質。
［９］ｐＨ４．０〜９．０の範囲で前記活性が６０％以上保持される、［１］〜［８］のいずれかに記載のタンパク質。
［１０］ペントシジンに対するＫｍ値が１ｍＭ以下である、［１］〜［９］のいずれかに記載のタンパク質。
［１１］［１］〜［１０］のいずれかに記載のタンパク質をコードする、遺伝子。
［１２］前記遺伝子が以下の（ａ）〜（ｆ）から成る群から選ばれるいずれかの遺伝子である、［１１］に記載の遺伝子：
（ａ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列から成る遺伝子；
（ｂ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列をコードする遺伝子；
（ｃ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列と７５％以上の同一性を有する塩基配列から成る遺伝子；
（ｄ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列と７５％以上の同一性を有するアミノ酸配列から成るタンパク質をコードする遺伝子；
（ｅ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列の１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列から成るタンパク質をコードする遺伝子；あるいは
（ｆ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列から成る遺伝子。
［１３］［１］〜［１０］のいずれかに記載のタンパク質、あるいは、［１１］又は［１２］に記載の遺伝子を含む、キット。
［１４］［１１］又は［１２］に記載の遺伝子を含む、組換えベクター。
［１５］［１４］に記載のベクターを含む、形質転換体。
［１６］［１５］に記載の形質転換体を用いて、［１］〜［１０］のいずれかに記載のタンパク質を製造する方法。
［１７］［１］〜［１０］のいずれかに記載のタンパク質と検体とを接触させる工程；及び
当該接触により生じた変化を検出する工程、を含む、ペントシジンの測定方法。
［１８］酸素、過酸化水素又はアンモニアの量の変化が検出される、［１７］に記載の方法。
［１９］［１］〜［１０］のいずれかに記載のタンパク質とペントシジンとを接触させる工程を含む、ペントシジンの反応生成物の製造方法。
［２０］反応生成物が過酸化水素又はアンモニアである、［１９］に記載の方法。

理論に拘束されることを意図するものではないが、本発明者らが同定した新規酵素ペントシジンオキシダーゼは、図５に示すように、ペントシジンを酸化的に分解し、それにより、過酸化水素やアンモニアを生成すると考えられる。過酸化水素の検出や定量はペルオキシダーゼ反応等を通じて比色法、蛍光法、化学発光法、電極法などにより簡便に行うことができることから、本発明によれば、ペントシジンを酵素法による簡便・迅速な検出及び定量が可能となる。

図１は、サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）から、陰イオン交換クロマトグラフィーを用いて分画した酵素粗精製液（Ｅｌｕｔｉｏｎ １）の基質濃度依存性試験の結果を示す。ペントシジン終濃度（横軸）に対するΔＯＤ（縦軸）がプロットされている。反応開始から２０分後のデータを使用した。 図２は、酵素粗精製液（Ｅｌｕｔｉｏｎ １）の熱失活試験の結果を示す。当該結果は加熱処理による酵素活性の失活を解析したものであり、反応開始から２０分後のデータに相当する。 図３は、ペントシジンとペントシジンオキシダーゼとを反応して生成した過酸化水素の濃度を測定した結果を示す。過酸化水素の濃度は６５８ｎｍの吸光度で測定した。 図４は、ペントシジンの終濃度とペントシジンの酸化に起因するＡ₆₅₈上昇量（ΔＡ）との関係を示す。 図５は、ペントシジンオキシダーゼがペントシジンを分解する反応の推定機構を示す。図では、ペントシジンを構成するリジンとアルギニンの各アミノ基が酸化的脱アミノ化され、過酸化水素とアンモニアが生成される様子が記載されている。 図６Ａは、配列番号１及び２の配列を示す。 図６Ｂは、配列番号３及び４の配列を示す。 図６Ｃは、配列番号５及び６の配列を示す。 図６Ｄは、配列番号７〜１１の配列を示す。 図６Ｅは、配列番号１２〜１４の配列を示す。 図７は、ＰｅｎＯＸ２の至適ｐＨの範囲を示す。 図８は、ＰｅｎＯＸ２の至適温度の範囲を示す。 図９は、ＰｅｎＯＸ２の熱安定性の範囲を示す。 図１０は、ＰｅｎＯＸ２の安定ｐＨの範囲を示す。 図１１は、ＰｅｎＯＸ２のペントシジンに対するＫｍ値を示す。 図１２は、ＰｅｎＯＸ２の分子量を示す。

以下、本発明の一態様であるタンパク質及びそれをコードする遺伝子、形質転換体及び製造方法等の詳細について説明するが、本発明の技術的範囲は本項目の事項によってのみに限定されるものではなく、本発明はその目的を達成する限りにおいて種々の態様をとり得る。

本発明は、ペントシジンオキシダーゼ活性を有するタンパク質及びそれをコードする遺伝子等を提供する。ペントシジンオキシダーゼは新規酵素であり、その酵素活性は完全には解明されていないが、本明細書で使用する場合、「ペントシジンオキシダーゼ活性」とは、ペントシジンを酸化的に分解する活性、より具体的には、ペントシジンを酸化して、その脱アミノ化生成物や、過酸化水素、アンモニアを生成する活性、又は酸素を消費する活性を意味する。このような酵素活性を有する限り、特定の配列に限定されず、あらゆるタンパク質及びそれをコードする遺伝子が本発明の範囲に含まれるものとして意図される。しかしながら、ペントシジンオキシダーゼの塩基配列とアミノ酸配列について、サロクラディウム属（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ属）糸状菌に由来する酵素を例に以下に説明する。

（ペントシジンオキシダーゼのアミノ酸配列）
本発明の遺伝子は、ペントシジンオキシダーゼのアミノ酸配列をコードする塩基配列を含む。ペントシジンオキシダーゼは、上記した酵素活性を有するものであれば、アミノ酸配列については特に限定されない。例えば、上記したペントシジンオキシダーゼ活性を有する酵素の一態様として配列番号２、配列番号４に示すアミノ酸配列がある。以降、配列番号２及び配列番号４で表されるアミノ酸配列を有するタンパク質をそれぞれペントシジンオキシダーゼ１（又はＰｅｎＯＸ１）及びペントシジンオキシダーゼ２（又はＰｅｎＯＸ２）という場合がある。ペントシジンオキシダーゼ１をコードする遺伝子（ｇ４４６２）は６つのエキソン及び５つのイントロンで構成されると予想され、一方、ペントシジンオキシダーゼ２をコードする遺伝子（ｇ１０１２２）は２つのエキソン及び１つのイントロンで構成されることが予想される。両酵素ともペントシジン及びアルギニンに対して高い基質特異性を有する点で共通しているが、その他のＬ−アミノ酸に対する反応性は異なる。

配列番号２、４に示すアミノ酸配列を有するペントシジンオキシダーゼは、サロクラディウム属（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ属）糸状菌に由来する。また、これらの酵素をコードする遺伝子の塩基配列は、それぞれ配列番号１、配列番号３に示す塩基配列である。図６に当該酵素のアミノ酸配列及び塩基配列を示す。

ペントシジンオキシダーゼのアミノ酸配列は、それぞれ上記したペントシジンオキシダーゼの酵素活性を有するものであれば、配列番号２や４のような野生型酵素が有するアミノ酸配列において１から複数個、例えば、アミノ酸配列におけるアミノ酸数１００個を一単位とすれば、該一単位あたり、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４又は２５個、好ましくは数個のアミノ酸の欠失、置換、付加などを有するアミノ酸配列からなるものであってもよい。ここで、アミノ酸配列の「１から数個のアミノ酸の欠失、置換、付加」における「１から数個」の範囲は特に限定されないが、上記一単位あたり、好ましくは１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０個程度、より好ましくは１、２、３、４又は５個程度を意味する。また、「アミノ酸の欠失」とは配列中のアミノ酸残基の欠落又は消失を意味し、「アミノ酸の置換」は配列中のアミノ酸残基が別のアミノ酸残基に置き換えられていることを意味し、「アミノ酸の付加」とは配列中に新たなアミノ酸残基が挿入するように付け加えられていることを意味する。

「アミノ酸の欠失、置換、付加」の具体的な態様としては、ペントシジンオキシダーゼを維持する限度でアミノ酸が別の化学的に類似したアミノ酸で置き換えられた態様がある。例えば、ある疎水性アミノ酸を別の疎水性アミノ酸に置換する場合、ある極性アミノ酸を同じ電荷を有する別の極性アミノ酸に置換する場合などを挙げることができる。このような化学的に類似したアミノ酸は、アミノ酸毎に当該技術分野において知られている。

具体例を挙げると、非極性（疎水性）アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニンなどが挙げられる。極性（中性）アミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システインなどが挙げられる。陽電荷をもつ塩基性アミノ酸としては、アルギニン、ヒスチジン、リジンなどが挙げられる。また、負電荷をもつ酸性アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸などが挙げられる。

また、ペントシジンオキシダーゼのアミノ酸配列において、配列番号２や４のような野生型酵素が有するアミノ酸配列と一定以上の配列同一性を有するアミノ酸配列が挙げられ、例えば、ペントシジンオキシダーゼ酵素が有するアミノ酸配列と７５％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、最も好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列が挙げられる。

（ペントシジンオキシダーゼをコードする遺伝子）
ペントシジンオキシダーゼをコードする遺伝子（以下、「ペントシジンオキシダーゼ遺伝子」とよぶ場合がある。）は、上記したペントシジンオキシダーゼ活性を有する酵素が有するアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むものでれば特に限定されない。一部の態様において、ペントシジンオキシダーゼ遺伝子が形質転換体内で発現することによりペントシジンオキシダーゼが生産される。

本明細書における「遺伝子の発現」とは、転写や翻訳などを介して、遺伝子によってコードされる酵素が本来の触媒活性を有する態様で生産されることを意味する。また、「遺伝子の発現」には、遺伝子の高発現、すなわち、遺伝子が挿入されたことにより、宿主生物が本来発現する量を超えて、該遺伝子によってコードされる酵素が生産されることを包含する。

ペントシジンオキシダーゼ遺伝子は、宿主生物に導入された際に、該遺伝子の転写後にスプライシングを経由してペントシジンオキシダーゼを生成し得る遺伝子であっても、該遺伝子の転写後にスプライシングを経由せずにペントシジンオキシダーゼを生成し得る遺伝子であっても、どちらでもよい。

ペントシジンオキシダーゼ遺伝子は、サロクラディウム属糸状菌のような由来生物が本来保有する遺伝子（すなわち、野生型遺伝子）と完全に同一でなくともよく、上記したペントシジンオキシダーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子である限り、野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を有するＤＮＡであってもよい。

本明細書における「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列」とは、配列番号１又は３のような野生型遺伝子の塩基配列の一部に相当するＤＮＡをプローブとして使用し、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法、サザンブロットハイブリダイゼーション法などを用いることにより得られるＤＮＡの塩基配列を意味する。

本明細書における「ストリンジェントな条件」とは、特異的なハイブリッドのシグナルが非特異的なハイブリッドのシグナルと明確に識別される条件であり、使用するハイブリダイゼーションの系と、プローブの種類、配列及び長さによって異なる。そのような条件は、ハイブリダイゼーションの温度を変えること、洗浄の温度及び塩濃度を変えることにより決定可能である。

例えば、非特異的なハイブリッドのシグナルまで強く検出されてしまう場合には、ハイブリダイゼーション及び洗浄の温度を上げるとともに、必要により洗浄の塩濃度を下げることにより特異性を上げることができる。また、特異的なハイブリッドのシグナルも検出されない場合には、ハイブリダイゼーション及び洗浄の温度を下げるとともに、必要により洗浄の塩濃度を上げることにより、ハイブリッドを安定化させることができる。

一部の態様において、ストリンジェントな条件の具体例としては以下のものを含む。例えば、プローブとしてＤＮＡプローブを用い、ハイブリダイゼーションは、５×ＳＳＣ、１．０％（ｗ／ｖ）核酸ハイブリダイゼーション用ブロッキング試薬（ベーリンガ・マンハイム社製）、０．１％（ｗ／ｖ）Ｎ−ラウロイルサルコシン、０．０２％（ｗ／ｖ）ＳＤＳを用い、一晩（８〜１６時間程度）で行う。洗浄は、０．１〜０．５×ＳＳＣ、０．１％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ、好ましくは０．１×ＳＳＣ、０．１％（ｗ／ｖ）ＳＤＳを用い、１５分間、２回行う。ハイブリダイゼーション及び洗浄を行う温度は６５℃以上、好ましくは６８℃以上である。

ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を有するＤＮＡとしては、例えば、コロニー若しくはプラーク由来の野生型遺伝子の塩基配列を有するＤＮＡ又は該ＤＮＡの断片を固定化したフィルターを用いて、上記したストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションすることによって得られるＤＮＡや０．５〜２．０ＭのＮａＣｌ存在下にて、４０〜７５℃でハイブリダイゼーションを実施した後、好ましくは０．７〜１．０ＭのＮａＣｌ存在下にて、６５℃でハイブリダイゼーションを実施した後、０．１〜１×ＳＳＣ溶液（１×ＳＳＣ溶液は、１５０ｍＭ 塩化ナトリウム、１５ｍＭ クエン酸ナトリウム）を用い、６５℃条件下でフィルターを洗浄することにより同定できるＤＮＡなどを挙げることができる。プローブの調製やハイブリダイゼーションの方法は、Ｍｏｌｅｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ−Ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ．，１９８９、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ １−３８，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，１９８７−１９９７（以下、これらの文献を「参考技術文献」ともよぶ。）などに記載されている方法に準じて実施することができる。

なお、当業者であれば、このようなバッファーの塩濃度や温度などの条件に加えて、その他のプローブ濃度、プローブ長さ、反応時間などの諸条件を加味して、野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を有するＤＮＡを得るための条件を適宜設定することができる。

ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むＤＮＡとしては、プローブとして使用する野生型遺伝子の塩基配列を有するＤＮＡの塩基配列と一定以上の配列同一性を有するＤＮＡが挙げられ、例えば、野生型遺伝子の塩基配列と７５％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上の配列同一性を有するＤＮＡが挙げられる。

野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列としては、例えば、塩基配列における塩基数５００個を一単位とすれば、野生型遺伝子の塩基配列において、該一単位あたり、１から複数個、例えば、１から１２５個、１から１００個、１から７５個、１から５０個、１から３０個、１から２０個、好ましくは１から数個、例えば１、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０個の塩基の欠失、置換、付加などを有する塩基配列を含む。

ここで、「塩基の欠失」とは配列中の塩基に欠落又は消失があることを意味し、「塩基の置換」は配列中の塩基が別の塩基に置き換えられていることを意味し、「塩基の付加」とは新たな塩基が挿入するように付け加えられていることを意味する。

野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によってコードされる酵素は、野生型遺伝子の塩基配列によってコードされる酵素が有するアミノ酸配列において１から複数個、好ましくは数個のアミノ酸の欠失、置換、付加などを有するアミノ酸配列を有する酵素である蓋然性があるが、野生型遺伝子の塩基配列によってコードされる酵素と同じ酵素活性を有するものである。

また、酵素をコードする遺伝子は、１つのアミノ酸に対応するコドンが数種類あることを利用して、野生型遺伝子がコードする酵素が有するアミノ酸配列と同一又は近似するアミノ酸配列をコードする塩基配列であって、野生型遺伝子と異なる塩基配列を含むものであってもよい。このような野生型遺伝子の塩基配列に対してコドン改変が施された塩基配列としては、例えば、ｇ４４６２のコドンを改変した配列番号５（ｐｅｎｏｘ１）に記載の塩基配列、ｇ１０１２２のコドンを改変した配列番号６（ｐｅｎｏｘ２）などが挙げられる（図６Ｃ）。コドン改変が施された塩基配列としては、例えば、宿主生物において発現し易いようにコドン改変が施された塩基配列であることが好ましい。

（配列同一性を算出するための手段）
塩基配列やアミノ酸配列の配列同一性を求める方法は特に限定されないが、例えば、通常知られている方法を利用して、野生型遺伝子や野生型遺伝子によってコードされる酵素のアミノ酸配列と対象となる塩基配列やアミノ酸配列とをアラインメントし、両者の配列の一致率を算出するためのプログラムを用いることにより求められる。

２つのアミノ酸配列や塩基配列における一致率を算出するためのプログラムとしては、例えば、Ｋａｒｌｉｎ及びＡｌｔｓｃｈｕｌのアルゴリズム（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：２２６４−２２６８、１９９０；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． ＵＳＡ９０：５８７３−５８７７、１９９３）が知られており、このアルゴリズムを用いたＢＬＡＳＴプログラムがＡｌｔｓｃｈｕｌなどによって開発されている（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４１０、１９９０）。さらに、ＢＬＡＳＴより感度よく配列同一性を決定するプログラムであるＧａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴも知られている（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２５：３３８９−３４０２、１９９７）。したがって、当業者は例えば上記のプログラムを利用して、与えられた配列に対し、高い配列同一性を示す配列をデータベース中から検索することができる。これらは、例えば、米国Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎのインターネット上のウェブサイト（ｈｔｔｐ：／／ｂｌａｓｔ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／Ｂｌａｓｔ．ｃｇｉ）において利用可能である。

上記の各方法は、データベース中から配列同一性を示す配列を検索するために通常的に用いられ得るが、個別の配列の配列同一性を決定する手段としては、Ｇｅｎｅｔｙｘネットワーク版 ｖｅｒｓｉｏｎ １２．０．１（ゼネティックス社製）のホモロジー解析を用いることもできる。この方法は、Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２７：１４３５−１４４１、１９８５）に基づくものである。塩基配列の配列同一性を解析する際は、可能であればタンパク質をコードしている領域（ＣＤＳ又はＯＲＦ）を用いる。

（酵素をコードする遺伝子の由来）
酵素をコードする遺伝子は、ペントシジンオキシダーゼ生産能がある生物種に由来する。酵素をコードする遺伝子の由来生物としては、例えば、糸状菌などの微生物などが挙げられる。ペントシジンオキシダーゼ生産能を有する微生物の具体例としては、サロクラディウム属（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ属）などが挙げられる。

上記のとおり、酵素をコードする遺伝子の由来生物は特に限定されないが、形質転換体において発現される酵素は、宿主生物の生育条件によって不活化せず、活性を示すことが好ましい。そこで、酵素をコードする遺伝子の由来生物は、酵素をコードする遺伝子を挿入することによって形質転換すべき宿主生物と生育条件が近似する微生物であることが好ましい。

ペントシジンオキシダーゼ活性を有する酵素の理化学的特性質のうち、特徴的なものを以下に例示する。
・ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる分子量：７５，０００〜８５，０００
・至適ｐＨ：ｐＨ約６．５〜８．０
なお、至適ｐＨは酵素が最も好適に作用するｐＨであって、ペントシジンオキシダーゼは上記範囲以外のｐＨでも作用し得る。
・至適温度：約３７〜５０℃
なお、至適温度は至適温度は酵素が最も好適に作用する温度であって、ペントシジンオキシダーゼは上記温度範囲以外の温度でも作用し得る。
・温度安定性：３０℃で１０分間保存した場合、ペントシジンオキシダーゼ活性が９０％以上保持される。４０℃で１０分間保存した場合、ペントシジンオキシダーゼ活性が５０％以上保持される。
・ｐＨ安定性：ｐＨ４．０〜９．０の範囲でペントシジンオキシダーゼ活性が６０％以上保持される。
・Ｋｍ値：ペントシジンに対するＫｍ値が１ｍＭ以下である。
Ｋｍ値とはミカエリス定数であって、その具体的な算出方法は特に限定されず、公知の方法を自由に選択して算出することができる。例えば、後述する実施例９に記載の方法のように、ラインウェーバー・バークプロットによる方法で描かれるミカエリス?メンテンの式に従ってＫｍ値を算出することができる。

（遺伝子工学的手法による酵素をコードする遺伝子のクローニング）
酵素をコードする遺伝子は、適当な公知の各種ベクター中に挿入することができる。さらに、このベクターを適当な公知の宿主生物に導入して、酵素をコードする遺伝子を含む組換えベクター（組換え体ＤＮＡ）が導入された形質転換体を作製できる。酵素をコードする遺伝子の取得方法や、酵素をコードする遺伝子の塩基配列、酵素のアミノ酸配列情報の取得方法、各種ベクターの製造方法や形質転換体の作製方法などは、当業者にとって適宜選択することができる。また、本明細書で使用する場合、形質転換や形質転換体にはそれぞれ形質導入や形質導入体が包含される。酵素をコードする遺伝子のクローニングの一例を非限定的に後述する。

酵素をコードする遺伝子をクローニングするには、通常一般的に用いられている遺伝子のクローニング方法を適宜用いることができる。例えば、酵素の生産能を有する微生物や種々の細胞から、常法、例えば、参考技術文献（上掲）に記載の方法により、染色体ＤＮＡやｍＲＮＡを抽出することができる。抽出したｍＲＮＡを鋳型としてｃＤＮＡを合成することができる。このようにして得られた染色体ＤＮＡやｃＤＮＡを用いて、染色体ＤＮＡやｃＤＮＡのライブラリーを作製することができる。

一部の態様において、酵素をコードする遺伝子は、該遺伝子を有する由来生物の染色体ＤＮＡやｃＤＮＡを鋳型としたクローニングにより得ることができる。酵素をコードする遺伝子の由来生物は特に限定されないが、上記したサロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）などを挙げることができる。例えば、サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）を培養し、得られた菌体から水分を取り除き、液体窒素中で冷却しながら乳鉢などを用いて物理的に磨砕することにより細かい粉末状の菌体片とし、該菌体片から通常の方法により染色体ＤＮＡ画分を抽出する。染色体ＤＮＡ抽出操作には、ＤＮｅａｓｙ Ｐｌａｎｔ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社製）などの市販の染色体ＤＮＡ抽出キットが利用できる。

次いで、前記染色体ＤＮＡを鋳型として、５’末端配列及び３’末端配列に相補的なプライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応（以下、「ＰＣＲ」と表記する。）を行うことにより、ＤＮＡを増幅する。プライマーとしては、該遺伝子を含むＤＮＡ断片の増幅が可能であれば特に限定されない。別の方法として、５’ＲＡＣＥ法や３’ＲＡＣＥ法などの適当なＰＣＲにより、目的の遺伝子断片を含むＤＮＡを増幅させ、これらを連結させて全長の目的遺伝子を含むＤＮＡを得ることができる。

また、酵素をコードする遺伝子を取得する方法は特に限定されず、遺伝子工学的手法によらなくとも、例えば、化学合成法を用いて酵素をコードする遺伝子を構築することが可能である。

ＰＣＲにより増幅された増幅産物や化学合成した遺伝子における塩基配列の確認は、例えば、次のように行うことができる。まず、配列を確認したいＤＮＡを通常の方法に準じて適当なベクターに挿入して組換え体ＤＮＡを作製する。ベクターへのクローニングには、ＴＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ（インビトロジェン社製）などの市販のキット；ｐＵＣ１９（タカラバイオ社製）、ｐＵＣ１８（タカラバイオ社製）、ｐＢＲ３２２（タカラバイオ社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ＋（ストラタジーン社製）、ｐＹＥＳ２／ＣＴ（インビトロジェン社製）などの市販のプラスミドベクターＤＮＡ；λＥＭＢＬ３（ストラタジーン社製）などの市販のバクテリオファージベクターＤＮＡが使用できる。一部の態様において、該組換え体ＤＮＡを用いて、宿主生物、例えば、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）、好ましくは大腸菌 ＪＭ１０９株（タカラバイオ社製）や大腸菌 ＤＨ５α株（タカラバイオ社製）を形質転換する。得られた形質転換体に含まれる組換え体ＤＮＡを、ＱＩＡＧＥＮ Ｐｌａｓｍｉｄ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社製）などを用いて精製してもよい。

組換え体ＤＮＡに挿入された各遺伝子の塩基配列の決定は、ジデオキシ法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、１０１、２０−７８、１９８３）などにより行うことができる。塩基配列の決定の際に使用する配列解析装置は特に限定されないが、例えば、Ｌｉ−ＣＯＲ ＭＯＤＥＬ ４２００Ｌシークエンサー（アロカ社製）、３７０ＤＮＡシークエンスシステム（パーキンエルマー社製）、ＣＥＱ２０００ＸＬ ＤＮＡアナリシスシステム（ベックマン社製）などが挙げられる。そして、決定された塩基配列を元に、翻訳されるタンパク質、すなわち、酵素のアミノ酸配列を知り得る。

（酵素をコードする遺伝子を含む組換えベクターの構築）
酵素をコードする遺伝子を含む組換えベクター（組換え体ＤＮＡ）は、酵素をコードする遺伝子のいずれかを含むＰＣＲ増幅産物と各種ベクターとを、酵素をコードする遺伝子の発現が可能な形で結合することにより構築することができる。例えば、適当な制限酵素で酵素をコードする遺伝子のいずれかを含むＤＮＡ断片を切り出し、該ＤＮＡ断片を適当な制限酵素で切断したプラスミドと連結することにより構築することができる。または、プラスミドと相同的な配列を両末端に付加した該遺伝子を含むＤＮＡ断片と、インバースＰＣＲにより増幅したプラスミド由来のＤＮＡ断片とを、Ｉｎ−Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ（クロンテック社製）などの市販の組換えベクター作製キットを用いて連結させることにより得ることができる。

（形質転換体の作製方法）
形質転換体の作製方法は特に限定されず、例えば、常法に従って、酵素をコードする遺伝子が発現する態様で宿主生物に挿入する方法などが挙げられる。一部の態様において、酵素をコードする遺伝子のいずれかを発現誘導プロモーター及びターミネーターの間に挿入したＤＮＡコンストラクトを作製し、次いで酵素をコードする遺伝子を含むＤＮＡコンストラクトで宿主生物を形質転換することにより、酵素をコードする遺伝子を過剰発現する形質転換体が得られる。本明細書では、宿主生物を形質転換するために作製された、発現誘導プロモーター−酵素をコードする遺伝子−ターミネーターからなるＤＮＡ断片及び該ＤＮＡ断片を含む組換えベクターをＤＮＡコンストラクトと総称してよぶ。

酵素をコードする遺伝子が発現する態様で宿主生物に挿入する方法は、特に限定されないが、例えば、相同組換えや非相同組み換えを利用することにより宿主生物の染色体上に直接的に挿入する手法；プラスミドベクター上に連結することにより宿主生物内に導入する手法などが挙げられる。

相同組換えを利用する方法では、染色体上の組換え部位の上流領域及び下流領域と相同な配列の間に、ＤＮＡコンストラクトを連結し、宿主生物のゲノム中に挿入することができる。非相同組み換えを利用する方法では、該相同配列をＤＮＡコンストラクトと連結していない場合でも、宿主生物のゲノム中に挿入することができる。高発現プロモーターは特に限定されないが、例えば、翻訳伸長因子であるＴＥＦ１遺伝子（ｔｅｆ１）のプロモーター領域、α−アミラーゼ遺伝子（ａｍｙ）のプロモーター領域、アルカリプロテアーゼ遺伝子（ａｌｐ）プロモーター領域、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（ｇｐｄ）プロモーター領域などが挙げられる。

ベクターを利用する方法では、ＤＮＡコンストラクトを、常法により、宿主生物の形質転換に用いられるプラスミドベクターに組み込み、対応する宿主生物を常法により形質転換することができる。

そのような、好適なベクター−宿主系としては、宿主生物中で酵素を生産させ得る系であれば特に限定されず、例えば、ｐＵＣ１９及び糸状菌の系、ｐＳＴＡ１４（Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．２１８、９９−１０４、１９８９）及び糸状菌の系などが挙げられる。

ＤＮＡコンストラクトは宿主生物の染色体に導入して用いることが好ましいが、この他の方法として、自律複製型のベクター（Ｏｚｅｋｉ ｅｔ ａｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．５９，１１３３ （１９９５））にＤＮＡコンストラクトを組み込むことにより、染色体に導入しない形で用いることもできる。

ＤＮＡコンストラクトには、形質転換された細胞を選択することを可能にするためのマーカー遺伝子が含まれていてもよい。マーカー遺伝子は特に限定されず、例えば、ｐｙｒＧ、ｎｉａＤ、ａｄｅＡのような、宿主生物の栄養要求性を相補する遺伝子；ピリチアミン、ハイグロマイシンＢ、オリゴマイシンなどの薬剤に対する薬剤耐性遺伝子などが挙げられる。また、ＤＮＡコンストラクトは、宿主生物中で酵素をコードする遺伝子を過剰発現することを可能にするプロモーター、ターミネーターその他の制御配列（例えば、エンハンサー、ポリアデニル化配列など）を含むことが好ましい。プロモーターは特に限定されないが、適当な発現誘導プロモーターや構成的プロモーターが挙げられ、例えば、ｔｅｆ１プロモーター、ａｌｐプロモーター、ａｍｙプロモーター、ｇｐｄプロモーターなどが挙げられる。ターミネーターもまた特に限定されないが、例えば、ａｌｐターミネーター、ａｍｙターミネーター、ｔｅｆ１ターミネーターなどが挙げられる。

ＤＮＡコンストラクトにおいて、酵素をコードする遺伝子の発現制御配列は、挿入する酵素をコードする遺伝子を含むＤＮＡ断片が、発現制御機能を有している配列を含む場合は必ずしも必要ではない。また、共形質転換法により形質転換を行う場合には、ＤＮＡコンストラクトはマーカー遺伝子を有しなくてもよい場合がある。

ＤＮＡコンストラクトには精製のためのタグをつけることができる。例えば、酵素をコードする遺伝子の上流又は下流に適宜リンカー配列を接続し、ヒスチジンをコードする塩基配列を６コドン以上接続することにより、ニッケルカラムを用いた精製を可能にすることができる。

ＤＮＡコンストラクトにはマーカーリサイクリングに必要な相同配列が含まれていてもよい。例えば、ｐｙｒＧマーカーは、ｐｙｒＧマーカーの下流に挿入部位（５’相同組み換え領域）の上流の配列と相同な配列を付加すること、又はｐｙｒＧマーカーの上流に挿入部位（３’相同組み換え領域）の下流の配列と相同な配列を付加することで、５−フルオロオロチン酸（５ＦＯＡ）を含んだ培地上でｐｙｒＧマーカーを脱落させることが可能となる。マーカーリサイクリングに適した該相同配列の長さは０．５ｋｂ以上が好ましい。

ＤＮＡコンストラクトの一態様は、例えば、ｐＵＣ１９のマルチクローニングサイトにあるＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｓｉｔｅに、ｔｅｆ１遺伝子プロモーター、酵素をコードする遺伝子、ａｌｐ遺伝子ターミネーター及びｐｙｒＧマーカー遺伝子を連結させたＤＮＡコンストラクトである。

相同組み換えにより遺伝子を挿入する場合のＤＮＡコンストラクトの一態様は、５’相同組み換え配列、ｔｅｆ１遺伝子プロモーター、酵素をコードする遺伝子、ａｌｐ遺伝子ターミネーター及びｐｙｒＧマーカー遺伝子、３’相同組み換え配列を連結させたＤＮＡコンストラクトである。

相同組み換えにより遺伝子を挿入し、かつ、マーカーをリサイクルする場合のＤＮＡコンストラクトの一態様は、５’相同組み換え配列、ｔｅｆ１遺伝子プロモーター、酵素をコードする遺伝子、ａｌｐ遺伝子ターミネーター、マーカーリサイクリング用相同配列、ｐｙｒＧマーカー遺伝子、３’相同組み換え配列を連結させたＤＮＡコンストラクトである。

宿主生物が糸状菌である場合、糸状菌への形質転換方法としては、当業者に知られる方法を適宜選択することができ、例えば、宿主生物のプロトプラストを調製した後に、ポリエチレングリコール及び塩化カルシウムを用いるプロトプラストＰＥＧ法（例えば、Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．２１８、９９−１０４、１９８９（上掲）、特開２００７−２２２０５５号公報などを参照）を用いることができる。形質転換体を再生させるための培地は、用いる宿主生物と形質転換マーカー遺伝子とに応じて適切なものを用いる。例えば、宿主生物としてアスペルギルス・オリゼ（Ａ．ｏｒｙｚａｅ）、アスペルギルス・ソーヤ（Ａ．ｓｏｊａｅ）を用い、形質転換マーカー遺伝子としてｐｙｒＧ遺伝子を用いた場合は、形質転換体の再生は、例えば、０．５％寒天及び１．２Ｍソルビトールを含むＣｚａｐｅｋ−Ｄｏｘ最少培地（ディフコ社製）で行うことができる。

また、例えば、形質転換体を得るために、相同組換えを利用して、宿主生物が本来染色体上に有する酵素をコードする遺伝子のプロモーターをｔｅｆ１などの高発現プロモーターへ置換してもよい。この際も、高発現プロモーターに加えて、ｐｙｒＧなどの形質転換マーカー遺伝子を挿入することが好ましい。例えば、この目的のために、特開２０１１−２３９６８１号公報に記載の実施例を参照して、酵素をコードする遺伝子の上流領域−形質転換マーカー遺伝子−高発現プロモーター−酵素をコードする遺伝子の全部又は部分からなる形質転換用カセットなどが利用できる。この場合、酵素をコードする遺伝子の上流領域及び酵素をコードする遺伝子の全部又は部分が相同組換えのために利用される。

酵素をコードする遺伝子の全部又は部分は、開始コドンから途中の領域を含むものが使用できる。相同組換えに適した領域の長さは０．５ｋｂ以上あることが好ましい。

形質転換体が作製されたことの確認は、酵素の酵素活性が認められる条件下で形質転換体を培養し、次いで培養後に得られた培養物における目的産物が検出されることにより行うことができる。

また、形質転換体が作製されたことの確認は、形質転換体から染色体ＤＮＡを抽出し、これを鋳型としてＰＣＲを行い、形質転換が起きた場合に増幅が可能なＰＣＲ産物が生じることを確認することにより行ってもよい。この場合、例えば、用いたプロモーターの塩基配列に対するフォワードプライマーと、形質転換マーカー遺伝子の塩基配列に対するリバースプライマーとの組み合わせでＰＣＲを行い、想定の長さの産物が生じることを確認する。

相同組み換えにより形質転換を行う場合には、用いた上流側の相同領域より上流に位置するフォワードプライマーと、用いた下流側の相同領域より下流に位置するリバースプライマーとの組み合わせでＰＣＲを行い、相同組み換えが起きた場合に想定される長さの産物が生じることを確認することが好ましい。

（宿主生物）
宿主生物としては、酵素をコードする遺伝子を含むＤＮＡコンストラクトによる形質転換により、酵素を生産することができる生物であれば特に限定されない。例えば、微生物や植物などが挙げられ、微生物としては、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属微生物、エシェリキア（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）属微生物、サッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属微生物、ピキア（Ｐｉｃｈｉａ）属微生物、シゾサッカロマイセス（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属微生物、ジゴサッカロマイセス（Ｚｙｇｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属微生物、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｕｍａ）属微生物、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属微生物、クモノスカビ（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ）属微生物、アカパンカビ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ）属微生物、ムコール（Ｍｕｃｏｒ）属微生物、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属微生物、フザリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）属微生物、ネオサルトリア（Ｎｅｏｓａｒｔｏｒｙａ）属微生物、ビッソクラミス（Ｂｙｓｓｏｃｈｌａｍｙｓ）属微生物、タラロミセス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）属微生物、アジェロミセス（Ａｊｅｌｌｏｍｙｃｅｓ）属微生物、パラコッシディオイデス（Ｐａｒａｃｏｃｃｉｄｉｏｉｄｅｓ）属微生物、アンシノカルプス（Ｕｎｃｉｎｏｃａｒｐｕｓ）属微
生物、コッシディオイデス（Ｃｏｃｃｉｄｉｏｉｄｅｓ）属微生物、アルフロデルマ（Ａｒｔｈｒｏｄｅｒｍａ）属微生物、トリコフィトン（Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ）属微生物、エクソフィラ（Ｅｘｏｐｈｉａｌａ）属微生物、カプロニア（Ｃａｐｒｏｎｉａ）属微生物、クラドフィアロフォラ（Ｃｌａｄｏｐｈｉａｌｏｐｈｏｒａ）属微生物、マクロホミナ（Ｍａｃｒｏｐｈｏｍｉｎａ）属微生物、レプトスファエリア（Ｌｅｐｔｏｓｐｈａｅｒｉａ）属微生物、ビポラリス（Ｂｉｐｏｌａｒｉｓ）属微生物、ドチストローマ（Ｄｏｔｈｉｓｔｒｏｍａ）属微生物、ピレノフォラ（Ｐｙｒｅｎｏｐｈｏｒａ）属微生物、ネオフシコッカム（Ｎｅｏｆｕｓｉｃｏｃｃｕｍ）属微生物、セトスファエリア（Ｓｅｔｏｓｐｈａｅｒｉａ）属微生物、バウドイニア（Ｂａｕｄｏｉｎｉａ）属微生物、ガエウマノミセス（Ｇａｅｕｍａｎｎｏｍｙｃｅｓ）属微生物、マルッソニナ（Ｍａｒｓｓｏｎｉｎａ）属微生物、スファエルリナ（Ｓｐｈａｅｒｕｌｉｎａ）属微生物、スクレロチニア（Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ）属微生物、マグナポルセ（Ｍａｇｎａｐｏｒｔｈｅ）属微生物、ヴェルチシリウム（Ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ）属微生物、シュードセルコスポラ（Ｐｓｅｕｄｏｃｅｒｃｏｓｐｏｒａ）属微生物、コレトトリカム（Ｃｏｌｌｅｔｏｔｒｉｃｈｕｍ）属微生物、オフィオストーマ（Ｏｐｈｉｏｓｔｏｍａ）属微生物、メタルヒジウム（Ｍｅｔａｒｈｉｚｉｕｍ）属微生物、スポロスリックス（Ｓｐｏｒｏｔｈｒｉｘ）属微生物、ソルダリア（Ｓｏｒｄａｒｉａ）属微生物、アラビドプシス（Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）属植物などが挙げられ、微生物及び植物が好ましい。ただし、どのような場合であっても、宿主生物からヒトは除かれる。

糸状菌の中では、安全性や培養の容易性を加味すれば、アスペルギルス・オリゼ、アスペルギルス・ソーヤ、アスペルギルス・ニガー（Ａ．ｎｉｇｅｒ）、アスペルギルス・タマリ（Ａ．ｔａｍａｒｉｉ）、アスペルギルス・アワモリ（Ａ．ａｗａｍｏｒｉ）、アスペルギルス・ウサミ（Ａ．ｕｓａｍｉ）、アスペルギルス・カワチ（Ａ．ｋａｗａｃｈｉｉ）、アスペルギルス・サイトイ（Ａ．ｓａｉｔｏｉ）などのアスペルギルス属微生物などが好ましい。

本発明に係るタンパク質の発現は、上記のような宿主生物を用いた実施に限定されない。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける無細胞タンパク質発現系は、特に商業規模での生成のように大量生産を目的としない場合などに好適に用いることができる。無細胞タンパク質発現系は、細胞培養を必要とせず、また、タンパク質の精製も簡便に行うことができるという利点もある。無細胞タンパク質発現系においては、主に、所望とするタンパク質に対応する遺伝子と、セルライセートのような転写と翻訳の分子機構を含む反応液とが使用される。

（酵素をコードする遺伝子の具体例）
サロクラディウム属由来の酵素をコードする遺伝子としては、例えば、配列番号１及び３に記載の塩基配列をそれぞれ有する遺伝子ｇ４４６２及びｇ１０１２２が挙げられる。なお、ペントシジンオキシダーゼ１タンパク質（ＰｅｎＯＸ１）及びペントシジンオキシダーゼ２タンパク質（ＰｅｎＯＸ２）のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号２、４として示す。

サロクラディウム属及びサロクラディウム属以外の生物から酵素をコードする遺伝子を得る方法は特に限定されないが、例えば、遺伝子ｇ４４６２及びｇ１０１２２の塩基配列（配列番号１及び３）に基づいて、対象生物のゲノムＤＮＡをＢＬＡＳＴ相同性検索して、遺伝子ｇ４４６２及びｇ１０１２２の塩基配列と配列同一性の高い塩基配列を有する遺伝子を特定することにより得ることができる。また、対象生物の総タンパク質を基に、ペントシジンオキシダーゼ１及びペントシジンオキシダーゼ２タンパク質のアミノ酸配列（配列番号２及び４）と配列同一性の高いアミノ酸配列を有するタンパク質を特定し、該タンパク質をコードする遺伝子を特定することにより得ることができる。

サロクラディウム属から得られた酵素をコードする遺伝子、又は酵素と配列同一性を有する酵素をコードする遺伝子を、宿主生物としてアスペルギルス属微生物等の任意の宿主細胞に導入して形質転換することができる。

（形質転換体）
形質転換体の一態様は、微生物や植物などを宿主生物として、遺伝子のいずれか一つ、又はこれらの組み合わせが挿入されており、かつ、該挿入された遺伝子を発現するように形質転換した形質転換体である。

形質転換体の別の一態様は、微生物や植物などを宿主生物として、遺伝子ｇ４４６２またはｇ１０１２２のすべて又は一部を含む、遺伝子（ＯＲＦ以外のプロモーター配列等も含む。）、及び、該遺伝子の転写を制御する転写因子を高発現又は低発現するように設計されたＤＮＡコンストラクトが挿入されており、かつ、該挿入された遺伝子を発現するように形質転換した形質転換体である。

宿主生物が、サロクラディウム属などのペントシジンオキシダーゼの産生能が認められる生物である場合は、挿入された遺伝子は恒常的に強制発現若しくは内在性の発現よりも高発現にすること、又は細胞増殖後の培養後期で条件発現させることが望ましい。このような形質転換体は、発現量の変化した転写因子の作用によって、宿主生物又は形質転換体に適した条件で培養又は生育することにより、宿主生物では生産しない、又は生産したとしてもペントシジンオキシダーゼを検出可能以上に生産することができる。

（製造方法）
本発明の別の一態様の製造方法は、形質転換体の生育に適した培地を用いて、形質転換体の生育に適した培養条件下で形質転換体を培養することによって、ペントシジンオキシダーゼを製造する方法などが挙げられる。培養方法は特に限定されず、例えば、宿主生物が糸状菌である場合は、通気又は非通気条件下で行う固体培養法や液体培養法などが挙げられる。

本発明の別の一態様の製造方法は、形質転換体より抽出するペントシジンオキシダーゼの製造方法である。以下では、主として宿主生物や野生型生物が糸状菌である場合の製造方法について記載するが、本発明の各態様の製造方法は下記記載に限定されない。

培地は、宿主生物や野生型生物（以下では、これらを総称して「宿主生物等」ともよぶ。）を培養する通常の培地、すなわち炭素源、窒素源、無機物、その他の栄養素を適切な割合で含有するものであれば、合成培地及び天然培地のいずれでも使用できる。宿主生物等がアスペルギルス属微生物である場合は、後述する実施例に記載があるようなＹＭＧ培地やＰＰＹ培地などを利用することができるが、特に限定されない。

形質転換体の培養条件は、当業者により通常知られる宿主生物等の培養条件を採用すればよく、例えば、宿主生物等が糸状菌である場合、培地の初発ｐＨは５〜１０に調整し、培養温度は２０〜４０℃、培養時間は数時間〜数日間、好ましくは１〜７日間、より好ましくは２〜４日間など、適宜設定することができる。培養手段は特に限定されず、通気撹拌深部培養、振盪培養、静地培養などを採用することができるが、溶存酸素が十分になるような条件で培養することが好ましい。例えば、アスペルギルス属微生物を培養する場合の培地及び培養条件の一例として、後述する実施例に記載があるＹＭＧ培地やＰＰＹ培地を用いた、３０℃、１６０ｒｐｍでの３〜５日間の振盪培養が挙げられる。

培養終了後に培養物からペントシジンオキシダーゼを抽出する方法は特に限定されない。抽出には、培養物から濾過、遠心分離などの操作により回収した菌体をそのまま用いてもよく、回収した後に乾燥した菌体やさらに粉砕した菌体を用いてもよい。菌体の乾燥方法は特に限定されず、例えば、凍結乾燥、天日乾燥、熱風乾燥、真空乾燥、通気乾燥、減圧乾燥などが挙げられる。

また、上記処理に代えて、例えば、超音波破砕機、フレンチプレス、ダイノミル、乳鉢などの破壊手段を用いて菌体を破壊する方法；ヤタラーゼなどの細胞壁溶解酵素を用いて菌体細胞壁を溶解する方法；ＳＤＳ、トリトンＸ−１００などの界面活性剤を用いて菌体を溶解する方法などの菌体破砕処理に供してもよい。これらの方法は単独又は組み合わせて使用することができる。

得られた抽出液は、遠心分離、フィルターろ過、限外ろ過、ゲルろ過、溶解度差による分離、溶媒抽出、クロマトグラフィー（吸着クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、陽イオン交換クロマトグラフィー、陰イオン交換クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーなど）、結晶化、活性炭処理、膜処理などの精製処理に供することにより目的産物を精製することができる。

本発明の各態様の製造方法では、本発明の課題を解決し得る限り、上記した工程の前段若しくは後段又は工程中に、種々の任意の工程や操作を加入することができる。

（測定方法）
本発明に係るペントシジンの測定方法は：
ペントシジンオキシダーゼを検体と接触させる工程；及び
当該接触により生じた変化を検出する工程、を含む。

本明細書で使用する場合、「検体」とは、被験者、例えば、ペントシジンに関連する疾患に罹患しているか、罹患していると疑われる対象に由来する血液、体液又は排泄物等の試料を意味する。検体はペントシジンを必ずしも含んでいなくてもよく、ペントシジンを含まない場合であっても、本発明に係る測定方法はペントシジン含有の有無の分析（定性分析）に使用することができる。本明細書で使用する場合、「接触により生じた変化」とは、検体中に含まれるペントシジンなどの出発物質や、ペントシジンオキシダーゼとの反応生成物又は反応消費物などの有無、又はそれらの量の経時的な変化を意味する。

より具体的な態様において、ペントシジンの測定方法は：
（Ａ）水と酸素の存在下、検体にペントシジンオキシダーゼを作用させる工程；及び
（Ｂ）上記ペントシジンオキシダーゼの作用による反応生成物又は反応消費物の少なくとも一種の量を計測する工程
を含み得る。

上記工程（Ｂ）において測定する反応生成物としては、過酸化水素、アンモニア及びペントシジンの脱アミノ化生成物を挙げることができる。また、反応生成物である過酸化水素の量は、例えば、ペルオキシダーゼ反応により計測することができる。また、反応生成物であるアンモニアの量は、例えば、インドフェノール法やネスラー試薬を用いる方法、もしくは、グルタミン酸デヒドロゲナーゼやＮＡＤシンターゼ等のアンモニアを基質とする酵素を用いてＮＡＤＨ量を測定する方法等により計測することができる。本明細書で使用する場合、「脱アミノ化生成物」とは、例えば、ペントシジンを構成するリジンとアルギニンのアミノ基の一方又は両方が外れて酸素に置き換わり、少なくとも一方の末端がケト酸となっている生成物を意味する。このような脱アミノ化生成物の例を図５に示す。上記工程（Ｂ）において測定する反応消費物としては、酸素を挙げることができる。酵素反応により減少する酸素量は、例えば、酸素電極により測定することもできるし、または、Ｗｉｎｋｌｅｒ手法に基づいて、酸素によりマンガンイオンの酸化させることで、比色定量することもできる。

別の態様において、本発明は、ペントシジンオキシダーゼを含むキットを提供する。本発明に係るキットは、ペントシジンとペントシジンオキシダーゼの反応生成物又は反応消費物を検出するために使用され得る。本発明に係るキットはさらに、反応用緩衝液、並びに反応生成物検出用試薬、例えば過酸化水素検出用試薬、アンモニア検出試薬及びペントシジンの脱アミノ化生成物検出用試薬、または反応消費物検出用試薬、例えば酸素検出用試薬の少なくとも一つを含むものであってもよい。本発明のキットは体外診断薬としても使用可能であり、例えば、ペントシジン又は、ペントシジンとペントシジンオキシダーゼとの反応生成物に関連している疾患、例えば糖尿病や腎症の診断に好適に使用され得る。

過酸化水素検出用試薬としては、過酸化水素を高感度で検出できる１０−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−３、７−ビス（ジメチルアミノ）−フェノシアジン（ＤＡ-６７）やＮ−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−４、４’ −ビス（ジメチルアミノ）-ジフェニルアミン（ＤＡ−６４）に加え、公知のトリンダー試薬などの呈色試薬が挙げられる。アンモニア検出用試薬としては、フェノール・ニトロプルシッドナトリウムと、次亜塩素酸ナトリウム等の酸化剤との組み合わせ（インドフェノール法）、ネスラー試薬等が挙げられる。酸素検出用試薬としては、例えば、マンガンイオン、水酸化ナトリウムおよび硫酸の組み合わせが挙げられる

呈色反応を利用した反応生成物の検出は免疫化学的な方法や機器分析的手法と比較して極めて簡便で安価に行うことができる。しかしながら、反応生成物又は反応消費物の検出は、検出試薬以外の他公知の定量・定性方法を排除するものではなく、適宜採用してもよい。例えば、過酸化水素やアンモニアの検出試薬に代えて、専用の検出電極を備えた酵素センサなどの装置を使用して検出を行うこともできる。

上記反応生成物又は反応消費物の検出方法は、ペントシジン又は各反応生成物又は反応消費物と直接的又は間接的に関連している疾患の検出方法、延いては診断方法にも使用可能である。

以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではなく、本発明の課題を解決し得る限り、本発明は種々の態様をとることができる。

（実施例１）サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）の培養及び酵素液調製方法
・使用培地
ＭＥＡ培地：Ｍａｌｔ ｅｘｔｒａｃｔ ａｇａｒ（Ｏｘｏｉｄ社製）を５０ｇ／Ｌとなるよう蒸留水に溶解した。
ＹＭＧ培地：Ｙｅａｓｔ ｅｘｔｒａｃｔ ０．４％、Ｍａｌｔ ｅｘｔｒａｃｔ １％、グルコース ０．４％、ｐＨ５．５

・菌株の培養
−８０℃で保存されたサロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．） Ｆ１００１２株をＭＥＡ培地に塗布し、２４℃で７〜１０日間、十分量の菌糸が得られるまで静置培養した。得られた菌糸を１Ｌフラスコ中のＹＭＧ培地２５０ｍＬに摂取し、３０℃で３日間振とう培養した。

・粗酵素液の調製
菌体を培養したＹＭＧ培地を、Ｍｉｒａｃｌｏｔｈ（メルクミリポア社製）を用いてろ過することで菌体を取り除き、培養上清を取得した。培養上清を限外ろ過膜（Ｖｉｖａｓｐｉｎ ２０−３ｋ、ＧＥヘルスケア社製）を用いて濃縮し、５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）で希釈する工程を複数回繰り返すことで低分子を除去するとともに、ＹＭＧ培地をリン酸カリウムバッファーに置換した。

・目的酵素の粗精製
バッファー置換した粗酵素液を、イオン交換クロマトグラフィー用カラム（ＨｉＴｒａｐ Ｑ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ １ｍＬ、ＧＥヘルスケア社製）を用いて分画した。具体的な手順は、以下のとおりである。

まず、５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）で平衡化したカラムに粗酵素液をロードし、酵素をカラムに吸着させた後に、５ｍＬのリン酸カリウムバッファーでカラムを洗浄し、未吸着のタンパク質を溶出させた。

その後、リン酸カリウムバッファーに０．２５Ｍ、０．５Ｍ、０．７５Ｍ、１．０Ｍの塩化ナトリウムを溶解したバッファーを５ｍＬずつ順次カラムに通すことで、カラムに吸着したタンパク質を溶出させた。

粗酵素液をロードした際にカラムから溶出した液を「Ｆｌｏｗ ｔｈｒｏｕｇｈ」、バッファーによる洗浄時に溶出した液を「Ｓｔａｒｔ ｂｕｆｆｅｒ」、塩化ナトリウムを含むバッファーで溶出した液をそれぞれ「Ｅｌｕｔｉｏｎ１」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ２」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ３」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ４」とし、それぞれ異なる容器に回収した。

（実施例２）ペントシジンオキシダーゼ活性の測定方法
・酵素粗精製液の活性測定
イオン交換クロマトグラフィー用のカラムより溶出した液をサンプルとし、活性を測定した。サンプル５０μＬを、１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ８．０）に溶解した４ｍＭ ペントシジン（ペプチド研究所社製）２５μＬ及びオキシダーゼ発色試薬（４Ｕ／ｍＬ ペルオキシダーゼ（ＴＯＹＯＢＯ社製）、１．８ｍＭ ４−アミノアンチピリン（Ｆｌｕｋａ社製）、２ｍＭ ＴＯＯＳ（Ｄｏｊｉｎｄｏ社製））２５μＬと混合し、室温で反応させた。

反応には、９６穴のマイクロウェルプレート（Ｎｕｎｃ社製）を用いた。ブランクは、基質溶液のかわりに１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ８．０）を加えたものとした。反応液及びブランク溶液の５５５ｎｍにおける吸光度を測定し、吸光度の差（ΔＯＤ）をもとに酵素活性の強さを評価した。

・基質濃度依存性試験
酵素粗精製液のペントシジンオキシダーゼ活性を、様々な濃度の基質を用いて測定することで、基質の濃度に対する活性の推移を評価した。用いた基質溶液の濃度は、０．１３ｍＭ、０．２５ｍＭ、０．５ｍＭ、１．０ｍＭ、２．０ｍＭ及び４．０ｍＭである。

・熱失活試験
酵素粗精製液を８０℃で１時間熱処理をすることにより、タンパク質を変性させた。この加熱処理サンプルのペントシジンオキシダーゼ活性を上述の活性測定方法にのっとって測定し、未加熱のサンプルの活性と比較した。

（実施例３）サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）酵素液のペントシジンオキシダーゼ活性解析
サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）の培養上清をイオン交換クロマトグラフィー用カラムで分画したサンプルについて、ペントシジンとの反応性を解析した。その結果、０．２５Ｍ 塩化ナトリウムを含むリン酸カリウムバッファーで溶出したＥｌｕｔｉｏｎ１に強い活性が認められ、ペントシジンオキシダーゼが含まれていることが示唆された。このＥｌｕｔｉｏｎ１に対し、基質濃度依存性試験（図１）及び熱失活試験（図２）を行ったところ、酵素活性は基質濃度依存的に上昇し、さらに加熱処理により完全に失活することが明らかとなった。このことから、Ｅｌｕｔｉｏｎ１にみられるペントシジンオキシダーゼ活性は、酵素由来のものであることが示された。

（実施例４）サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）由来のペントシジンオキシダーゼの配列決定
上記結果と、サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）の全ゲノム配列情報に基づき、ペントシジンオキシダーゼであると推測される、２種類の遺伝子（配列番号１及び３）とそのアミノ酸配列（配列番号２及び４）が特定された。

（実施例５）麹菌アスペルギルス・ソーヤ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ）における、サロクラディウム・エスピー（Ｓａｒｏｃｌａｄｉｕｍ ｓｐ．）由来ペントシジンオキシダーゼの異種組換発現
上記で特定された２種のペントシジンオキシダーゼについて、酵素活性を解析するために麹菌アスペルギルス・ソーヤを宿主として異種組換発現を行った。

・発現ベクターの作製
配列番号２と配列番号４のアミノ酸配列を基に麹菌発現用にコドン改変した配列番号５と６の塩基配列を人工遺伝子合成によりそれぞれ取得した。

配列番号５及び配列番号６のペントシジンオキシダーゼ遺伝子（ｐｅｎｏｘ１、ｐｅｎｏｘ２）を発現させるための発現カセットとしては、翻訳伸長因子遺伝子ｔｅｆ１のプロモーター配列であるＰｔｅｆ（ｔｅｆ１遺伝子の上流７４８ｂｐ、配列番号７）をプロモーターとして、アルカリプロテアーゼ遺伝子ａｌｐのターミネーター配列であるＴａｌｐ（ａｌｐ遺伝子の下流８００ｂｐ、配列番号８）をターミネーターとして用いた。

また、選択マーカーとしてはウラシル／ウリジン要求性を相補し、遺伝子の多コピー導入を可能とする形質転換マーカー遺伝子ｐｙｒＧ３（上流５６ｂｐ、コード領域８９６ｂｐ及び下流５３５ｂｐを含む１，４８７ｂｐ、配列番号９）を用いた（特開２０１８−０６８２９２号公報参照）。これらのＰｔｅｆ、Ｔａｌｐ、ｐｙｒＧ３は、麹菌アスペルギルス・ソーヤ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ ＮＲＲＣ４２３９株）のゲノムＤＮＡを鋳型としたＰＣＲ反応により取得した。

次に、それぞれのＤＮＡを連結するためにＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ ＨＤ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ（クロンテック社製）を使用した。例えば、Ｐｔｅｆとｐｅｎｏｘ１遺伝子及びＴａｌｐとを連結させる場合には、Ｐｔｅｆは配列番号１０のリバースプライマーを用いて、Ｔａｌｐは配列番号１１のフォワードプライマーを用いてＰＣＲ反応によりＤＮＡ断片を増幅させている。このとき、配列番号１０のＰｔｅｆ増幅用のリバースプライマーには、５’末端にｐｅｎｏｘ１遺伝子（配列番号５）の５’末端と相補的な配列が１５ｂｐ付加されており、配列番号１１のＴａｌｐ増幅用のフォワードプライマーには、５’末端にｐｅｎｏｘ１遺伝子（配列番号５）の３’末端と相同な配列が１５ｂｐ付加されているため、Ｉｎ ｆｕｓｉｏｎ反応により、Ｐｔｅｆ、ｐｅｎｏｘ１遺伝子及びＴａｌｐとの連結が可能となる。このようにして、Ｐｔｅｆ、ｐｅｎｏｘ１遺伝子又はｐｅｎｏｘ２遺伝子、Ｔａｌｐ及びｐｙｒＧ３が順に連結されたＰｔｅｆ−ｐｅｎｏｘ１−Ｔａｌｐ−ｐｙｒＧ３、Ｐｔｅｆ−ｐｅｎｏｘ２−Ｔａｌｐ−ｐｙｒＧ３がｐＵＣ１９プラスミドのマルチクローニングサイトに挿入されている発現ベクターｐ１９−ｐＧ３−ｐｅｎｏｘ１及びｐ１９−ｐＧ３−ｐｅｎｏｘ２を作製した。

・麹菌発現株の作製及び培養
上記で取得した形質転換用プラスミドｐ１９−ｐＧ３−ｐｅｎｏｘ１及びｐ１９−ｐＧ３−ｐｅｎｏｘ２を用いて、アスペルギルス・ソーヤのｐｙｒＧ遺伝子破壊株（ｐｙｒＧ遺伝子の上流４８ｂｐ、コード領域８９６ｂｐ、下流２４０ｂｐ欠損株）に対しプロトプラストＰＥＧ法により形質転換を行い、ｐｅｎｏｘ１及びｐｅｎｏｘ２の発現カセットが多コピーで挿入されたアスペルギルス・ソーヤ形質転換株Ａｓ−ｐｅｎｏｘ１株を９株、Ａｓ−ｐｅｎｏｘ２株を６株取得した。

取得したアスペルギルス・ソーヤ形質転換株Ａｓ−ｐｅｎｏｘ１株及びＡｓ−ｐｅｎｏｘ２株を５０ｍＬ三角フラスコに入れた１５ｍＬのＰＰＹ液体培地（２％（ｗ／ｖ）パインデックス、１％（ｗ／ｖ）ポリペプトン、０．５％（ｗ／ｖ）酵母エキス、０．５％（ｗ／ｖ）リン酸２水素１カリウム、０．０５％（ｗ／ｖ）硫酸マグネシウム・７水和物）に植菌し、３０℃で４〜５日間振とう培養を行った。

・菌糸抽出液の調製
各Ａｓ−ｐｅｎｏｘ１株及びＡｓ−ｐｅｎｏｘ２株の培養液をＭｉｒａｃｌｏｔｈ（メルクミリポア社製）を用いてろ過し、培養上清を取り除いて菌体を取得した。１５ｍＬの１０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）に再懸濁した後、Ｍｉｃｒｏ Ｓｍａｓｈ ＭＳ−１００Ｒ（トミー精工社製）を用いて菌体を破砕した。菌体破砕液を１５，０００ｒｐｍで１５分間遠心分離して、上清を粗酵素液として回収した。

・菌糸抽出液のＬ−アルギニン酸化活性の測定
各粗酵素液２００μＬを、１５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ ７．０）に溶解した７．１Ｕ／ｍＬ ペルオキシダーゼ、 ０．７０ｍＭ ４−アミノアンチピリン、０．７９ｍＭ ＴＯＯＳ溶液３８０μＬと混合して３７℃で５分間インキュベートした後、６０ｍＭ Ｌ−アルギニン溶液２０μＬを添加して撹拌し、３７℃で５分間反応させた。反応中のＡ₅₅₅の経時変化を分光光度計（Ｕ−３９００、日立ハイテクサイエンス社製）で測定した。対照実験は、２０μＬの６０ ｍＭ Ｌ−アルギニン溶液の代わりに２０μＬのイオン交換水を添加して実施した。３７℃で１分間あたりに１μｍｏｌの過酸化水素を生成する酵素量を１ｕｎｉｔ（Ｕ）と定義し、下記の式に従って算出した。

活性 （Ｕ／ｍＬ）＝｛（ΔＡｓ−ΔＡ０）×０．６×ｄｆ｝÷（３９．２×０．５×０．２）
ΔＡｓ：反応液の１分間あたりのＡ₅₅₅変化量
ΔＡ０：対照実験の１分間あたりのＡ₅₅₅変化量
３９．２：反応により生成されるキノンイミン色素のミリモル吸光係数 （ｍＭ^-1・ｃｍ^-1）
０．５：１ｍｏｌの過酸化水素による生成されるキノンイミン色素のｍｏｌ数
０．６：反応液全体の容量（ｍＬ）
ｄｆ：希釈係数
０．２：酵素液の容量（ｍＬ）

Ａｓ−ｐｅｎｏｘ１株、Ａｓ−ｐｅｎｏｘ２株の粗酵素液のＬ−アルギニン酸化活性は、最大で、それぞれ０．００９Ｕ／ｍＬ（Ａｓ−ｐｅｎｏｘ１−１５株）、５．１Ｕ／ｍＬ（Ａｓ−ｐｅｎｏｘ２−１６株）であった。

（実施例６）菌糸抽出型組換えｐｅｎｏｘ２の精製
Ａｓ−ｐｅｎｏｘ２−１６株の粗酵素液を、１０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）にバッファー置換した後、陰イオン交換クロマトグラフィーカラム（ＨｉＳｃｒｅｅｎ ＣａｐｔｏＱ、ＧＥヘルスケア社製）を用いて分画した。まず、１０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）で平衡化したカラムに粗酵素液をロードし、酵素をカラムに吸着させた後に、１０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）でカラムを洗浄し、未吸着のタンパク質を溶出させた。その後、１０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ ７．５）に含まれる塩化ナトリウム濃度を０ｍＭから４０ｍＭまで直線的に上昇させ、カラムに吸着したタンパク質を溶出させた。Ｌ−アルギニン酸化活性を示す画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析し、夾雑タンパク質を含まない画分を精製ＰｅｎＯＸ２として回収した。回収した精製ＰｅｎＯＸ２溶液は、Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ−１５ Ｕｌｔｒａｃｅｌ−３０ｋ （Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を用いて、Ｌ−アルギニン酸化活性が２４Ｕ／ｍＬになるまで濃縮し、ペントシジン定量試験に用いた。

（実施例７）ペントシジン定量試験
以下の試薬を調製し、Ｂｉｏ Ｍａｊｅｓｔｙ ＪＣＡ−ＢＭ１６５０（日本電子社製）を利用してペントシジンを測定した。
（試料：ペントシジン溶液）
０．２μＭ、０．４μＭ、０．６μＭ、１．０μＭ、２．０μＭ又は４．０μＭペントシジン溶液

（第１試薬：Ｌｅｕｃｏ色素、ペルオキシダーゼ溶液）
１２０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．０）
０．２ｍＭ ＤＡ−６７（１０−（Ｃａｒｂｏｘｙｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏｃａｒｂｏｎｙｌ）−３，７−ｂｉｓ（ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏ）ｐｈｅｎｏｔｈｉａｚｉｎｅ， ｓｏｄｉｕｍ ｓａｌｔ）（和光純薬工業社製）
３．０Ｕ／ｍＬ ペルオキシダーゼ

（第２試薬：ＰｅｎＯＸ２溶液）
１２０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．０）
２４Ｕ／ｍＬ ＰｅｎＯＸ２

試料２５μＬを５０μＬの第１試薬に添加して３７℃で５分間インキュベートした後、２５μＬの第２試薬を添加して、ＰｅｎＯＸ２によるペントシジン酸化反応と、前記反応によって生成される過酸化水素の検出反応を３７℃で５分間進行させた。

過酸化水素の検出反応では、ペルオキシダーゼが消費されると同時にＤＡ−６７が酸化されてメチレンブルーとなって呈色し、吸光度（Ａ₆₅₈）が上昇する。一例として、試料（４．０μＭ ペントシジン溶液）と第１試薬を混合してからの経過時間と吸光度（Ａ₆₅₈）の関係を図３に示した。ＰｅｎＯＸ２を含む第２試薬の添加直後からＡ₆₅₈の上昇が確認できた。

続いて、ペントシジンの酸化に起因するＡ₆₅₈上昇量（ΔＡ）を下記の式に従って算出した。
ΔＡ＝（第２試薬添加５分後の吸光度）−（第２試薬添加直前の吸光度×０．７５）
（第２試薬の添加により反応液中の組成物の濃度は０．７５倍（７５／１００倍）となるため、
第２試薬添加直前の吸光度を０．７５倍した値を第２試薬添加直後の吸光度とみなした。）

ペントシジン終濃度とΔＡとの間には相関関係が成立した（図４）。したがって、ＰｅｎＯＸ２はペントシジン酸化活性を示し、ペントシジンの定量に利用できることが示された。結果は示さないが、ＰｅｎＯＸ１も同様にペントシジン酸化活性を示した。

（実施例８）菌糸分泌型組換えｐｅｎｏｘ２の精製
Ａｓ−ｐｅｎｏｘ２株の菌糸培養液をＭｉｒａｃｌｏｔｈ（メルクミリポア社製）を用いてろ過し、菌糸培養上清を回収した。得られた菌糸培養上清７５ｍＬを、ポアサイズ０．２μｍのシリンジフィルターでフィルターろ過したのち限外ろ過膜（Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ １５−３０ｋＤ、メルク社製）で濃縮した。濃縮液に、硫酸アンモニウムを７０％飽和となるように徐々に添加し、２時間、４℃で放置後、遠心（１５，０００ｒｐｍ、４℃、５分）し、余分なタンパク質を沈殿させ、上清を回収した。回収した上清を、限外ろ過膜（Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ ０．５−３０ｋＤ、メルク社製）で濃縮した。

これに、リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）および硫酸アンモニウムをそれぞれの終濃度が５０ｍＭおよび２Ｍになるように添加した後、疎水性相互作用クロマトグラフィー用カラム（ＨｉＴｒａｐ Ｂｕｔｙｌ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ １ｍＬ、ＧＥヘルスケア社製）を用いて分画した。具体的な手順は、以下のとおりである。

まず、２Ｍ 硫酸アンモニウムを含む５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）で平衡化したカラムに粗酵素液をロードし、酵素をカラムに吸着させた後に、２Ｍ 硫酸アンモニウムを含む５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５） １０ｍＬでカラムを洗浄し、未吸着のタンパク質を溶出させた。

その後、１．５Ｍ、１．３Ｍ、１．１５Ｍ 硫酸アンモニウムをそれぞれ含む５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）を５ｍＬずつ、さらに１Ｍ 硫酸アンモニウムを含む５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）を１０ｍＬ、硫酸アンモニウムを含まない５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）を５ｍＬ、順次カラムに通すことで、カラムに吸着したタンパク質を溶出させた。

粗酵素液をロードした際にカラムから溶出した液を「Ｆｌｏｗ ｔｈｒｏｕｇｈ１」、硫酸アンモニウム２Ｍを含むバッファーによる洗浄時に溶出した液を「Ｅｌｕｔｉｏｎ１」、硫酸アンモニウム１．５Ｍ、１．３Ｍ、１．１５Ｍ、１Ｍを含むバッファーで溶出した液をそれぞれ「Ｅｌｕｔｉｏｎ２」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ３」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ４」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ５」、硫酸アンモニウムを含まないバッファーで溶出した液を「Ｅｌｕｔｉｏｎ６」とし、それぞれ異なる容器に回収した。

分画したサンプルについて、ペントシジンとの反応性を解析した。その結果、１Ｍ 硫酸アンモニウムを含むリン酸カリウムバッファーで溶出したＥｌｕｔｉｏｎ５に強い活性が認められ、ペントシジンオキシダーゼ（ＰｅｎＯＸ２）が含まれていることが示唆された。このＥｌｕｔｉｏｎ５を、限外ろ過膜（Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ １５−３０ｋＤ、メルク社製）で濃縮し、硫酸アンモニウムを含まない５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）にバッファー置換したのち再度限外ろ過膜（Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ １５−３０ｋＤ、メルク社製）で濃縮した。これを、イオン交換クロマトグラフィー用カラム（ＨｉＴｒａｐ Ｑ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ １ｍＬ、ＧＥヘルスケア社製）を用いて分画した。具体的な手順は、以下のとおりである。

まず、５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）で平衡化したカラムに粗酵素液をロードし、酵素をカラムに吸着させた後に、５ｍＬの５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）でカラムを洗浄し、未吸着のタンパク質を溶出させた。

その後、５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）に０．１Ｍの塩化ナトリウムを溶解した液を１ｍＬ ５回、同バッファーに０．１７５Ｍの塩化ナトリウムを溶解した液を１ｍＬ ５回、同バッファーに１Ｍの塩化ナトリウムを溶解した液を５ｍＬ １回、順次カラムに通すことで、カラムに吸着したタンパク質を溶出させた。

粗酵素液をロードした際にカラムから溶出した液を「Ｆｌｏｗ ｔｈｒｏｕｇｈ２」、バッファーによる洗浄時に溶出した液を「Ｅｌｕｔｉｏｎ７」、塩化ナトリウムを含むバッファーで溶出した液をそれぞれ「Ｅｌｕｔｉｏｎ８−１」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ８−２」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ８−３」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ８−４」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ８−５」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ９−１」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ９−２」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ９−３」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ９−４」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ９−５」、「Ｅｌｕｔｉｏｎ１０」とし、それぞれ異なる容器に回収した。

分画したサンプルについて、ペントシジンとの反応性を解析した。その結果、０．１７５Ｍ 塩化ナトリウムを含むリン酸カリウムバッファーで溶出したＥｌｕｔｉｏｎ９−１およびＥｌｕｔｉｏｎ９−２に強い活性が認められ、ペントシジンオキシダーゼが含まれていることが示唆された。活性画分Ｅｌｕｔｉｏｎ９−１およびＥｌｕｔｉｏｎ９−２を等量ずつ混合したものをＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析したところ、ほぼ単一のバンドが得られた（分子量約８０，０００）。得られたこの活性画分を、以下の理化学的性質を決定するのに用いた。

（実施例９）アスペルギルス・ソーヤ形質転換株Ａｓ−ｐｅｎｏｘ２株により生産されたＰｅｎＯＸ２の理化学的性質
ＰｅｎＯＸ２の理化学的性質を決定するために、以下の酵素活性の測定方法を用いた。
任意のバッファー６００μＬ、脱イオン水に溶解した３．９９Ｕ／ｍＬ ペルオキシダーゼ、１．８ｍＭ ４−アミノアンチピリン、２ｍＭ ＴＯＯＳ溶液４００μＬ、脱イオン水１５０μＬを任意の温度で１０分間インキュベートした後、氷上で保存していた酵素液５０μＬ、任意の温度で１０分間インキュベートした１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ８．０）に溶解させた４ｍＭ ペントシジン溶液４００μＬを添加して撹拌し、任意の温度で３分間反応させた。反応中のＡ₅₅₅の経時変化を分光光度計（Ｕ−３９００、日立ハイテクサイエンス社製）で測定した。２０秒から６０秒までの測定開始後経過時間−Ａ₅₅₅変化量を活性値とみなした。
さらに、３７℃で１分間あたりに１μｍｏｌの過酸化水素を生成する酵素量を１ｕｎｉｔ（Ｕ）と定義し、下記の式に従って算出した。

活性 （Ｕ／ｍＬ）＝｛（ΔＡｓ−ΔＡ０）×１．６×ｄｆ｝÷（３９．２×０．５×０．０５）
ΔＡｓ：反応液の１分間あたりのＡ₅₅₅変化量
ΔＡ０：対照実験の１分間あたりのＡ₅₅₅変化量
１．６：反応液全体の容量（ｍＬ）
ｄｆ：希釈係数
３９．２：反応により生成されるキノンイミン色素のミリモル吸光係数 （ｍＭ^-1・ｃｍ^-1）
０．５：１ｍｏｌの過酸化水素による生成されるキノンイミン色素のｍｏｌ数
０．０５：酵素液の容量（ｍＬ）

ｐｅｎｏｘ２の理化学的性質は、以下の通りであった。
（ａ）至適ｐＨの範囲
終濃度５０ｍＭ クエン酸−１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ４．０−７．５）、終濃度１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ６．５−８．０）、終濃度１００ｍＭ グリシンバッファー（ｐＨ８．０−１１．０）となるように夫々のバッファーを調製し、これらを用いて、夫々のｐＨにおいて、温度３７℃にて酵素反応を行なった。結果を図７に示す。ＰｅｎＯＸ２は、ｐＨ７．５において最も高い活性を示した。また、ｐＨ６．５−８．０でもリン酸カリウムバッファーｐＨ７．５付近における活性値の７０％以上を示したことから、ＰｅｎＯＸ２の至適ｐＨはｐＨ６．５−８．０であり、最も好ましい至適ｐＨはｐＨ７．５であると判断した。
（ｂ）至適温度の範囲
終濃度５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）を用いて、種々の温度にてＰｅｎＯＸ２の活性測定を行なった。結果を図８に示す。最も高い活性を示した温度である、５０℃付近での活性に対して、８０％以上の活性を示す温度範囲は３７℃〜５０℃であった。以上から、ＰｅｎＯＸ２の至適温度の範囲は３７℃〜５０℃であると判断した。
（ｃ）熱安定性
酵素液を各温度で１０分間処理した時の残存活性を、終濃度１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（活性測定時最終ｐＨ７．５）を用い温度３７℃にて前記活性測定を行なうことで評価した。熱安定性の結果は、図９に示す通りであり、ＰｅｎＯＸ２は、３０℃付近まで安定であった。
（ｄ）安定ｐＨの範囲
緩衝液として、１００ｍＭ クエン酸−２００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ３．０−６．５）、２００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ６．５−８．０）、２００ｍＭ グリシンバッファー（ｐＨ８．０−１０．０）を用いて、夫々のｐＨにおいて２５℃で２０時間処理した後、ＰｅｎＯＸ２の残存活性を測定した。結果を図１０に示す。４℃で保存しておいたＰｅｎＯＸ２の活性に対して９０％以上の活性を示すｐＨ範囲はｐＨ４．５−７．５、６０％以上の活性を示すｐＨ範囲はｐＨ４．０−９．０であった。
（ｅ）ペントシジンに対する活性値
前記活性測定方法において、終濃度５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（活性測定時最終ｐＨ７．５）、３７℃で活性測定を行ない、上記の計算式を用いて活性値（Ｕ／ｍＬ）を求めた。活性値は７．８Ｕ／ｍＬ、比活性は２９．１Ｕ／ｍｇ（ブラッドフォード法）であることが判った。
（ｆ）ペントシジンに対するＫｍ値
前記活性測定方法において、終濃度５０ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）、３７℃で、基質ペントシジンの濃度を変化させて活性測定を行ない、ラインウェーバー・バークプロットから、ミカエリス定数（Ｋｍ）を求めた。結果を図１１に示す。ペントシジンに対するＫｍ値は０．１４ｍＭであることが判った。
（ｇ）分子量
Ｌａｅｍｍｌｉの方法に従って行なったＳＤＳ−ＰＡＧＥ法により分子量を求めた。電気泳動ゲルとしてはＭｉｎｉ−ＰＲＯＴＥＡＮ ＴＧＸ Ｓｔａｉｎ−Ｆｒｅｅ Ｐｒｅｃａｓｔ Ｇｅｌｓ ４−２０％（Ｂｉｏ−ｒａｄ社製）を用い、分子量マーカーとしてはＰｒｅｃｉｓｉｏｎ Ｐｌｕｓ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｌｌ Ｂｌｕｅ Ｐｒｅｓｔａｉｎｅｄ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｔａｎｄａｒｄｓを用いた。結果を図１２に示す。ＰｅｎＯＸ２の分子量は、約８０，０００であった。

（実施例１０）ＰｅｎＯＸ１及びＰｅｎＯＸ２と配列相同性を持つ酵素のペントシジンオキシダーゼ活性測定

前述の通りＰｅｎＯＸ１及びＰｅｎＯＸ２はいずれもペントシジンオキシダーゼ活性を有していた。ＢＬＡＳＴプログラムを用いてアミノ酸配列の一致率を調べると、両者のアミノ酸配列相同性は３８．２％であった。続いて以下の３酵素を購入し、前記活性測定方法において、終濃度１００ｍＭ リン酸カリウムバッファー（ｐＨ７．５）、３７℃で、ペントシジンオキシダーゼ活性を調べた。夫々のＰｅｎＯＸ１及びＰｅｎＯＸ２とのアミノ酸配列相同性、並びにペントシジンオキシダーゼ活性は以下の通りであった。
（ａ）Ｃｒｏｔａｌｕｓ ａｄａｍａｎｔｅｕｓ由来アミノ酸オキシダーゼＴｙｐｅ ＶＩ（メルク社製）（配列番号１２）
分子量：１３０，０００
本酵素のＰｅｎＯＸ１及びＰｅｎＯＸ２とのアミノ酸配列相同性は、夫々２６．８％および２３．５％であった。酵素濃度が１ｍｇ／ｍＬ（ビュレット法）になるよう脱イオン水で希釈して活性測定に用いた。本酵素のペントシジンオキシダーゼ活性は０．５５５（Ｕ／ｍＬ）、比活性は０．５５５（Ｕ／ｍｇ）であった。
（ｂ）Ｃｒｏｔａｌｕｓ ａｔｒｏｘ由来アミノ酸オキシダーゼＴｙｐｅ Ｉ（メルク社製）（配列番号１３）
分子量：５９，０００（アミノ酸配列に基づく計算値）
本酵素のＰｅｎＯＸ１及びＰｅｎＯＸ２とのアミノ酸配列相同性は、夫々２６．３％および２３．４％であった。酵素粉末１ｍｇを１ｍＬの脱イオン水で溶解して活性測定に用いた。本酵素のペントシジンオキシダーゼ活性は０．０２２（Ｕ／ｍＬ）、比活性は参考値として０．０２２（Ｕ／ｍｇ）であった。
（ｃ）Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｖｉｒｉｄｅ由来リジンオキシダーゼ（メルク社製）（配列番号１４）
分子量：１１６，０００

本酵素のＰｅｎＯＸ１及びＰｅｎＯＸ２とのアミノ酸配列相同性は、夫々２４．０％および２３．３％であった。酵素粉末１ｍｇを１ｍＬの脱イオン水で溶解して活性測定に用いた。本酵素のペントシジンオキシダーゼ活性は０．０６３（Ｕ／ｍＬ）、比活性は参考値として０．０６３（Ｕ／ｍｇ）であった。本実施例で使用した酵素間の配列相同性を以下の表に示す。

Claims (20)

1. ペントシジンを酸化的に分解する活性を有するタンパク質。
2. 以下の理化学的性質：
   （１）作用：ペントシジンを酸化的に分解する活性；及び
   （２）ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる分子量：７５，０００〜８５，０００
   を有するタンパク質。
3. 前記タンパク質が以下の（ａ）〜（ｆ）から成る群から選ばれるいずれかのタンパク質である、請求項１又は２に記載のタンパク質：
   （ａ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列から成るタンパク質；
   （ｂ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列から成る遺伝子によってコードされるタンパク質；
   （ｃ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列と７５％以上の同一性を有するアミノ酸配列から成るタンパク質；
   （ｄ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基酸配列と７５％以上の同一性を有する塩基配列から成る遺伝子によってコードされるタンパク質；
   （ｅ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列の１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列から成るタンパク質；あるいは
   （ｆ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によってコードされるタンパク質。
4. 前記活性が、ペントシジンの脱アミノ化生成物、過酸化水素及びアンモニアを生成する活性、又は酸素を消費する活性である、請求項１〜３のいずれか１項に記載のタンパク質。
5. 糸状菌に由来する、請求項１〜４のいずれか１項に記載のタンパク質。
6. 至適ｐＨが約６．５〜８．０である、請求項１〜５のいずれか１項に記載のタンパク質。
7. 至適温度が３７〜５０℃である、請求項１〜６のいずれか１項に記載のタンパク質。
8. ３０℃で１０分間保存した後に前記活性が９０％以上保持される、請求項１〜７のいずれか１項に記載のタンパク質。
9. ｐＨ４．０〜９．０の範囲で前記活性が６０％以上保持される、請求項１〜８のいずれか１項に記載のタンパク質。
10. ペントシジンに対するＫｍ値が１ｍＭ以下である、請求項１〜９のいずれか１項に記載のタンパク質。
11. 請求項１〜１０のいずれか１項に記載のタンパク質をコードする、遺伝子。
12. 前記遺伝子が以下の（ａ）〜（ｆ）から成る群から選ばれるいずれかの遺伝子である、請求項１１に記載の遺伝子：
    （ａ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列から成る遺伝子；
    （ｂ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列をコードする遺伝子；
    （ｃ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列と７５％以上の同一性を有する塩基配列から成る遺伝子；
    （ｄ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列と７５％以上の同一性を有するアミノ酸配列から成るタンパク質をコードする遺伝子；
    （ｅ）配列番号２又は４に記載のアミノ酸配列の１若しくは複数のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加されたアミノ酸配列から成るタンパク質をコードする遺伝子；あるいは
    （ｆ）配列番号１、３、５又は６に記載の塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列から成る遺伝子。
13. 請求項１〜１０のいずれか１項に記載のタンパク質、あるいは、請求項１１又は１２に記載の遺伝子を含む、キット。
14. 請求項１１又は１２に記載の遺伝子を含む、組換えベクター。
15. 請求項１４に記載のベクターを含む、形質転換体。
16. 請求項１５に記載の形質転換体を用いて、請求項１〜１０のいずれか１項に記載のタンパク質を製造する方法。
17. 請求項１〜１０のいずれか１項に記載のタンパク質と検体とを接触させる工程；及び
    当該接触により生じた変化を検出する工程、を含む、ペントシジンの測定方法。
18. 酸素、過酸化水素又はアンモニアの量の変化が検出される、請求項１７に記載の方法。
19. 請求項１〜１０のいずれか１項に記載のタンパク質とペントシジンとを接触させる工程を含む、ペントシジンの反応生成物の製造方法。
20. 反応生成物が過酸化水素又はアンモニアである、請求項１９に記載の方法。