JPWO2019163929A1 - プロゲステロン測定キット、プロゲステロンの測定方法およびプロゲステロン測定試薬 - Google Patents
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Abstract
Description
[1] プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、
プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子と、
上記第一の粒子及び上記第二の粒子を流すための流路と、
上記第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する基板と、
を含むプロゲステロン測定キットであって、
上記の標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
上記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、上記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ上記第一の粒子の平均粒子径より上記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
キット。
[3] 上記の標識を有する第一の粒子が、少なくとも一種のエネルギードナー化合物と、少なくとも一種のエネルギーアクセプター化合物と、粒子とを含有する発光性粒子であって、上記エネルギードナー化合物及び上記エネルギーアクセプター化合物の少なくとも一種が、上記式(1)で示される化合物である、[1]又は[2]に記載のキット。
[4] 上記エネルギードナー化合物として、少なくとも一種の上記式(1)で示される化合物を含有し、上記エネルギーアクセプター化合物として、少なくとも一種の上記式(1)で示される化合物を含有する、[3]に記載のキット。
[5] エネルギードナー化合物とエネルギーアクセプター化合物のモル比が1:10〜10:1である、[3]又は[4]に記載のキット。
[6] 上記第一の粒子に対する上記第二の粒子の質量比が1〜20である、[1]から[5]の何れか一に記載のキット。
[7] プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質が抗体である、[1]から[6]の何れか一に記載のキット。
(b)プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子と、
(c)プロゲステロンを含む被検試料と、
を混合して、混合物を得る工程と、
(ii)上記工程(i)で得た混合物を、基板上に適用する工程と、
(iii)上記第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する、上記基板上の反応部位において、上記第一の結合物質を捕捉する工程と、
(iv)上記反応部位上に捕捉された上記第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子を検出する工程と、
を含むプロゲステロンの測定方法であって、
上記の標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
上記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、上記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ上記第一の粒子の平均粒子径より上記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
プロゲステロンの測定方法。
[10] 上記の標識を有する第一の粒子が、少なくとも一種のエネルギードナー化合物と、少なくとも一種のエネルギーアクセプター化合物と、粒子とを含有する発光性粒子であって、上記エネルギードナー化合物及び上記エネルギーアクセプター化合物の少なくとも一種が、上記式(1)で示される化合物である、[8]又は[9]に記載の方法。
[11] 上記エネルギードナー化合物として、少なくとも一種の上記式(1)で示される化合物を含有し、上記エネルギーアクセプター化合物として、少なくとも一種の上記式(1)で示される化合物を含有する、[10]に記載の方法。
[12] 上記第一の粒子に対する上記第二の粒子の質量比が1〜20である、[8]から[11]の何れか一に記載の方法。
[13] 工程(iv)において、上記反応部位上に捕捉された上記第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子を表面プラズモン蛍光法により検出する、[8]から[12]の何れか一に記載の方法。
上記の標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
上記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、上記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ上記第一の粒子の平均粒子径より上記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
プロゲステロン測定試薬。
[19] 上記プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質が抗体である、[14]から[18]の何れか一に記載のプロゲステロン測定試薬。
[20] 上記標識を有する第一の粒子が、蛍光ラテックス粒子であり、上記第二の粒子がラテックス粒子である、[14]から[19]の何れか一に記載のプロゲステロン測定試薬。
本明細書において「〜」を用いて示された数値範囲は、「〜」の前後に記載される数値をそれぞれ最小値および最大値として含む範囲を意味する。
本発明によるプロゲステロン測定キットは、
プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、
プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子と、
上記第一の粒子及び上記第二の粒子を流すための流路と、
上記第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する基板と、
を含むプロゲステロン測定キットであって、
上記の標識を有する第一の粒子は、本明細書で規定する式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
上記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、上記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ上記第一の粒子の平均粒子径より上記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
キットである。
本発明では、生体試料中のプロゲステロンを測定することができる。
生体試料としては、プロゲステロンを含む可能性のある試料である限り、特に限定されるものではなく、例えば、生物学的試料、特には動物(例えば、ヒト、イヌ、ネコ、ウマなど)の体液(例えば、血液、血清、血漿、髄液、涙液、汗、尿、膿、鼻水、又は喀痰)若しくは排泄物(例えば、糞便)、臓器、組織、粘膜や皮膚などを挙げることができる。
プロゲステロンは、卵巣と胎盤から分泌され、黄体機能や妊娠に関係する性ホルモンである。月経の周期異常、不妊症の診断に利用される。また、犬の交配時期、猫の卵巣遺残確認にも使用される。
本発明における粒子(第一の粒子及び第二の粒子)の材質及び形態は特に限定されず、例えば、ポリスチレンビーズなどの有機高分子粒子、又はガラスビーズ等の無機粒子を用いることができる。粒子の材質の具体例としては、スチレン、メタクリル酸、グリシジル(メタ)アクリレート、ブタジエン、塩化ビニル、酢酸ビニルアクリレート、メチルメタクリレート、エチルメタクリレート、フェニルメタクリレート、又はブチルメタクリレートなどのモノマーを重合させたホモポリマー、並びに2種以上のモノマーを重合させたコポリマーなどが挙げられ、上記のホモポリマー又はコポリマーを均一に懸濁させたラテックスでもよい。また、粒子としては、その他の有機高分子粉末、無機物質粉末、微生物、血球、細胞膜片、リポソーム、マイクロカプセルなどが挙げられる。第一の粒子及び第二の粒子としては、ラテックス粒子が好ましい。
本発明で用いる第一の結合物質は、プロゲステロンと特異的な結合性を有する物質である。第一の結合物質としては、抗体を使用できるが、これに限定されるものではない。好ましくは、第一の結合物質は抗体である。第一の結合物質が抗体である場合は、例えば、そのプロゲステロンによって免疫された動物の血清から調製する抗血清や、抗血清から精製された免疫グロブリン画分、プロゲステロンによって免疫された動物の脾臓細胞を用いる細胞融合によって得られるモノクローナル抗体、あるいは、それらの断片[例えば、F(ab’)2、Fab、Fab’、又はFv]などを用いることができる。これらの抗体の調製は、常法により行なうことができる。さらに、その抗体がキメラ抗体などの場合のように、修飾を加えられたものでもよいし、また市販の抗体でも、動物血清又は培養上清から公知の方法により調製した抗体でも使用可能である。
プロゲステロンと、牛血清アルブミン(Bovine Serum Albumin、以下BSAと略す)と、縮合剤を混合してプロゲステロン−BSA結合体を作製することができる。結合体をマウス免疫感作抗原として用いて、数回、マウス背部皮下に免疫する。この場合、完全アジュバント(Complete Freund‘s Adjuvant:CFA)、および/又は不完全アジュバント(Incomplete Freund‘s Adjuvant:IFA)を適宜選択して免疫感作抗原と混合して使用することができる。完全アジュバントとは、免疫を刺激する物質であって、パラフィンとアラセルの混合物である。不完全アジュバントとは、完全アジュバントに死滅したミコバクテリア又は結核菌の死菌を加え、抗原性をさらに増強させたものである。数週間で数回、適宜免疫感作を行った後にマウスから採血し抗体価の測定を実施する。抗体価の十分な上昇が認められた場合に腹腔内に抗原を投与し、数日後に脾臓を摘出する。こうして免疫マウスより摘出した脾臓細胞を、変異株骨髄腫細胞(ミエローマ)と融合させることで、抗体産生能力を備えた融合細胞を作製することができる。この融合細胞の中から目的とする抗原に対する抗体産生細胞のみを選択し、さらにその細胞株だけを増殖するために限界希釈を行う。希釈後の細胞の培養(クローニング)を行うことができる。このようにして得られる融合細胞株を、マウスの腹腔内に注射して、腹水型の抗体産生細胞を増殖させることによってモノクローナル抗体を腹水中に産生することが可能となり、これらの抗体を回収することで、目的の抗体を入手することができる。
本発明で使用される標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有する粒子であり、標識粒子又は蛍光標識粒子とも表記する。標識を有する第一の粒子は、好ましくはラテックス粒子であり、より好ましくは蛍光ラテックス粒子である。
本明細書において、アリールオキシ基としては、好ましくは炭素数6〜14のアリールオキシ基であり、例えば、フェノキシ基、ナフトキシ基、アントリルオキシ基などが挙げられる。
アリールチオ基としては、好ましくは、炭素数6から30のアリールチオ基であり、例えば、フェニルチオ基、p−クロロフェニルチオ基、m−メトキシフェニルチオ基等が挙げられる。
なお、芳香環は置換基を有していてもよく、「芳香環」との用語は、置換基を有する芳香環、及び置換基を有さない芳香環の両方を意味する。芳香環が有する置換基としては、後記する置換基群Aに記載の置換基が挙げられる。
スルファモイル基、シアノ基、イソシアノ基、チオシアナト基、イソチオシアナト基、ニトロ基、ニトロシル基、ハロゲン原子、ヒドロキシ基、アミノ基、メルカプト基、アミド基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アルキルチオ基、アリールチオ基、カルバモイル基、アシル基、アルデヒド基、カルボニル基、アリール基、アルキル基、ハロゲン原子で置換されたアルキル基、エテニル基、エチニル基、シリル基、及びトリアルキルシリル基(トリメチルシリル基等)。
R111〜R116が表すアルキル基、アリール基、ヘテロ環基、エテニル基、エチニル基、アミノ基、アシル基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アルキルチオ基、又はアリールチオ基は、置換基を有していてもよく、上記置換基としては、置換基群Aに記載の置換基が挙げられる。
式(1)中、R11〜R15はそれぞれ独立に、水素原子、ハロゲン原子、アルキル基、アリール基、ヘテロ環基、エテニル基、エチニル基、アミノ基、アシル基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アルキルチオ基、又はアリールチオ基を表し、これらは置換基を有していてもよい。R11〜R15のうち少なくとも3つは水素原子以外の原子又は基を表し、好ましくはR11〜R15のうち少なくとも4つは水素原子以外の原子又は基を表し、より好ましくはR11〜R15の全てが水素原子以外の原子又は基を表す。
R11及びR15は、好ましくは、水素原子、ハロゲン原子、アルキル基、アリール基、ヘテロ環基、エテニル基、又はエチニル基を表し、これらは置換基を有していてもよい。
R12及びR14は、好ましくは、アルキル基を表し、これらは置換基を有していてもよい。
R13は、好ましくは、アリール基を表し、これは置換基を有していてもよい。
X1及びX2は、好ましくは、ハロゲン原子、又はアルコキシ基を表す。X1及びX2は、フッ素原子、メトキシ基、エトキシ基、イソプロピルオキシ基、t−ブチルオキシ基であることがより好ましく、これらはフッ素原子、アルコキシ基によって置換されていることも好ましい。
L1及びL2は、好ましくは、式(L−1)又は式(L−2)の何れかを表し、より好ましくは式(L−1)を表す。
R111〜R116は、好ましくは水素原子である。
式(1)で示される化合物の好ましい例としては、下記式(2)で示される化合物が挙げられる。
式(1)で示される化合物の好ましい例としては、下記式(4)で示される化合物が挙げられる。
式(4)中、R41及びR42はそれぞれ独立に、アリール基、ヘテロ環基、エテニル基、又はエチニル基を表し、これらは置換基を有していてもよい。上記置換基としては、置換基群Aに記載の置換基が挙げられる。R41及びR42はそれぞれ独立に、アリール基、エテニル基、又はエチニル基であることが好ましく、量子収率向上の観点からは、アリール基が好ましく、長波長化の観点からは、エテニル基、エチニル基であることが好ましい。アリール基である場合、アリール基のオルト位又はメタ位に少なくとも一つ置換基を有していることが好ましく、オルト位に少なくとも一つ置換基を有していることがより好ましい。アリール基に置換する置換基の数は、1〜3つが好ましく、2つ又は3つがより好ましい。アリール基に置換する置換基としては、アルキル基であることが好ましく、メチル基、イソプロピル基、t−ブチル基であることがより好ましく、メチル基であることがさらに好ましい。
式(5)で示される化合物は、下記式(6)で示される化合物であることがより好ましい。
X1及びX2はそれぞれ独立に、ハロゲン原子、アルキル基、アリール基、ヘテロ環基、ヒドロキシ基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アルキルチオ基、アリールチオ基、エテニル基、又はエチニル基を表し、これらは置換基を有していてもよく、X1及びX2は互いに連結して環を形成してもよい。
R31〜R35はそれぞれ独立に、水素原子、ハロゲン原子、アルキル基、アリール基、ヘテロ環基、エテニル基、エチニル基、アミノ基、アシル基、シアノ基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アルキルチオ基、又はアリールチオ基を表し、これらは置換基を有していてもよく、R31〜R35のいずれか一つは水素原子である。
R51及びR52はそれぞれ独立に、アルキル基、アリール基、ヘテロアリール基、アミノ基、アシル基、アルコキシ基、アリールオキシ基、アルキルチオ基、又はアリールチオ基を表し、これらは置換基を有していてもよい。
Q1及びQ2はそれぞれ独立に、芳香族炭化水素環又は芳香族ヘテロ環を表し、これらは置換基を有していてもよい。
L1及びL2はそれぞれ独立に、式(L−1)〜式(L−4)の何れかを表す。
式(1)〜式(6)で示される化合物の具体例を以下に記載する。Meはメチル基を示し、Etはエチル基を示し、iPrはイソプロピル基を示す。
好ましくは、R1及びR2はそれぞれ独立に、アリール基又はヘテロ環基であり、これらは置換基を有していてもよい。
R1及びR2はそれぞれ同一でも異なっていてもよいが、好ましくは同一である。
R1及びR2は、連結して環を形成することはない。
好ましくは、R3は、水素原子、アルキル基、アリール基又はヘテロ環基であり、これらは置換基を有していてもよい。より好ましくは、R3は、水素原子である。
好ましくは、Y1及びY2はそれぞれ独立に、ハロゲン原子、アルキル基、アリール基、ヒドロキシ基、アルコキシ基、又はアリールオキシ基を表し、これらは置換基を有していてもよく、Y1及びY2は互いに連結して環を形成してもよい。
より好ましくは、Y1及びY2はそれぞれ独立に、ハロゲン原子である。
さらに好ましくは、Y1及びY2はフッ素原子である。
Y1及びY2はそれぞれ同一でも異なっていてもよいが、好ましくは同一である。
好ましくは、Ar11及びAr12はベンゼン環を表す。
好ましくは、Z1及びZ2は、それぞれ独立に、置換基を有していてもよいアリール基を表す。
より好ましくは、Z1及びZ2は、それぞれ独立に、フェニル基、ナフチル基、又はアントリル基を表し、これらは置換基を有していてもよい。
好ましくは、m1が2以上である場合、複数のZ1は同じ基である。
好ましくは、m2が2以上である場合、複数のZ2は同じ基である。
式(10)で示される化合物は、分子内に、カルボン酸基、リン酸基、スルホン酸基などの酸性基を有さないことが好ましい。
好ましくは、Y1及びY2はそれぞれ独立にハロゲン原子を表す。
特に好ましくは、Y1及びY2はフッ素原子である。
好ましくは、R3は、水素原子、アルキル基、アリール基又はヘテロ環基であり、これらは置換基を有していてもよい。
より好ましくは、R3は、水素原子である。
さらに好ましくは、R34〜R37の少なくとも1つ以上が、置換基を有していてもよいアリール基であり、R38〜R41の少なくとも1つ以上が、置換基を有していてもよいアリール基である。
式(10A)で示される化合物は、分子内に、カルボン酸基、リン酸基、スルホン酸基などの酸性基を有さないことが好ましい。
式(10)又は式(10A)で示される化合物の具体例を以下に記載する。Meはメチル基を示し、Buはn−ブチル基を示し、Phはフェニル基を示す。
エネルギードナー化合物とエネルギーアクセプター化合物の組み合わせの具体例を以下に記載する。
本発明で用いる粒子(即ち、式(1)〜式(6)で示される化合物を添加する前の粒子)に対する式(1)〜式(6)で示される化合物の含有量は、本発明の効果を損なわない限り特に限定されないが、好ましくは0.5μmol/g〜400μmol/gであり、より好ましくは1μmol/g〜300μmol/gであり、さらに好ましくは2μmol/g〜200μmol/gであり、特に好ましくは3μmol/g〜100μmol/gである。
式(1)〜式(6)で示される化合物は、例えば、後記する実施例に示す合成スキームにより製造することができる。
式(10)で示される化合物は、例えば、以下に示す合成スキームにより製造することができる。
化合物A−10と化合物A−20とをMacromolecules 2010、43、193−200に記載の方法に従って反応させることにより、化合物A−30を合成することができる。次いで、化合物A−30、式:Z1−B(OH)2で表される化合物、及びフッ化セシウム(CsF)をジメトキシエタン(DME)と水の混合溶液に加え、真空引き、窒素置換を繰り返して脱気を行う。酢酸パラジウム(Pd(OAc)2)、及び2−ジシクロヘキシルホスフィノ−2’、6’−ジメトキシビフェニル(SPhos)を加え、昇温し、還流下、所定の時間(例えば、2〜24時間)反応させることにより、化合物D−10を製造することができる。
本発明における標識を有する第一の粒子は、式(1)で示される化合物を含むことにより、高い量子収率と高い輝度を示す。
標識を有する第一の粒子の励起極大波長とは、励起スペクトルで蛍光強度の最も大きい波長である。標識を有する第一の粒子の蛍光極大波長とは、蛍光スペクトルで蛍光強度の最も大きい波長のことである。また、励起スペクトルとは、蛍光標識強度の励起波長依存性を示し、蛍光スペクトルは、蛍光強度の蛍光波長依存性を示す。
標識を有する第一の粒子の励起極大波長は、好ましくは640nm〜900nmであり、より好ましくは640nm〜800nmであり、さらにより好ましくは650nm〜750nmである。
標識を有する第一の粒子の蛍光極大波長は、好ましくは660nm〜900nmであり、より好ましくは660nm〜800nmであり、さらに好ましくは670nm〜750nmである。
標識を有する第一の粒子の蛍光強度とは、ある測定条件で測定した際の蛍光の強度のことであり、測定条件に依存するため一般的には相対的な比較をするために用いられる。
標識を有する第一の粒子が示す量子収率は、好ましくは0.25以上であり、より好ましくは0.30以上であり、さらに好ましくは0.40以上である。量子収率の上限は特に限定されないが、一般的には、1.0以下である。
標識を有する第一の粒子の量子収率は、市販の量子収率測定装置を使用して測定することができ、例えば、浜松ホトニクス社製の絶対PL量子収率測定装置C9920−02を使用して測定することができる。
標識を有する第一の粒子の製造方法は特に限定されないが、式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを混合することによって製造することができる。例えば、ラテックス粒子などの粒子に、式(1)で示される化合物を添加することによって、標識を有する第一の粒子を作製することができる。より具体的には、水及び水溶性有機溶剤(テトラヒドロフラン、メタノール等)の何れか一種以上を含む粒子の溶液に、式(1)で示される化合物を含む溶液を添加して攪拌することにより、標識を有する第一の粒子を製造することができる。
分散液は、標識を有する第一の粒子を分散媒に分散することにより製造することができる。分散媒としては、水、有機溶媒、又は水と有機溶媒との混合物等が挙げられる。有機溶媒としては、メタノール、エタノール、イソプロパノール等のアルコール、テトラヒドロフラン等のエーテル系溶媒などを使用することができる。
分散液における標識を有する第一の粒子の固形分濃度は特に限定されないが、一般的には0.1〜20質量%であり、好ましくは0.5〜10質量%であり、より好ましくは1〜5質量%である。
第一の結合物質を、標識を有する第一の粒子に固定化する方法は、例えば、特開2000−206115号公報やThermo Fisher 社FluoSpheres(登録商標)ポリスチレンマイクロスフィアF8813に添付のプロトコールなどに記載されており、免疫凝集反応用試薬を調製する公知の方法がいずれも使用可能である。また、結合物質として抗体を粒子に固定化する原理として、物理吸着及び共有結合による化学結合のいずれの原理も採用可能である。抗体を粒子に固定させた後に抗体が被覆されていない粒子表面を覆うブロッキング剤(即ち、第一のブロッキング剤)としては、例えば、アルブミン(BSAなど)、スキムミルク、カゼイン、大豆由来成分、魚由来成分、又はポリエチレングリコールなど、並びに上記物質又は上記物質と性質が同じである物質を含む市販の免疫反応用ブロッキング剤などが使用可能である。これらのブロッキング剤は、必要に応じて熱や酸・アルカリ等により部分変性などの前処理を施すことも可能である。さらに、第一のブロッキング剤としては、プロゲステロンと結合性を有しない抗体(グロブリン)、あるいはテストエリアに使用しないタンパク質(Protein A、Protein G)などを使用することもできる。
本発明における標識を有しない第二の粒子は、プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾されている。第二の結合物質としては、例えば、結合物質(抗体)、あるいは結合物質(抗体)に対して結合するタンパク質(Protein A、Protein G)など、プロゲステロンと特異的な結合性を有しない化合物であり、かつ、第一の結合物質に対して親和性を有しない化合物であれば特に限定されず、いずれの化合物でも好ましく用いることができる。例えば、第二の結合物質が抗体である場合には、免疫された動物の血清から調製する抗血清、抗血清から精製された免疫グロブリン画分、免疫された動物の脾臓細胞を用いる細胞融合によって得られるモノクローナル抗体、あるいは、それらの断片[例えば、F(ab’)2、Fab、Fab’、又はFv]などを用いることができる。これらの抗体の調製は、常法により行なうことができる。さらに、その抗体がキメラ抗体などの場合のように、修飾を加えられたものでもよいし、また市販の抗体でも、動物血清や培養上清から公知の方法により調製した抗体でも使用可能である。
第一の粒子と第二の粒子の使用比率については、第一の粒子に対する第二の粒子の質量比が一般的には1〜20であり、1〜10であることが好ましく、2〜8であることがより好ましく、4〜6がさらに好ましい。
第一の粒子の平均粒子径は、好ましくは70〜130nmであり、より好ましくは80〜120nmであり、さらに好ましくは85〜110nmである。
第二の粒子の平均粒子径は、好ましくは130〜300nmであり、より好ましくは135〜260nmであり、さらに好ましくは140〜200nmである。
本発明のキットは、第一の粒子及び第二の粒子を流すための流路を含む。本発明においては、プロゲステロンを含む可能性のある生体試料と、標識を有する第一の粒子と、標識を有しない第二の粒子とを混合した混合液を、基板上に適用し、流路に展開することができる。流路とは、生体試料と、標識を有する第一の粒子と、第二の粒子とを反応部位まで流下する通路であれば、特に制限はない。好ましい流路の態様としては、標識を有する第一の粒子及び第二の粒子を含む生体試料液を点着する点着口、第三の結合物質が固定化された反応部位としての金属薄膜、及び金属薄膜を超えて流路が存在し、生体試料が、金属薄膜上を通過できる構造を有するものである。好ましくは、金属薄膜に対して、点着口とは反対側に、吸引口を設けることができる。
本発明では、高感度な測定を達成するために、後述する表面プラズモン蛍光(SPF)検出を行う測定法を採用することが好ましい。この場合における基板としては、表面に金属膜を有する基板を使用することが好ましい。金属膜を構成する金属としては、表面プラズモン共鳴が生じ得るようなものであれば特に限定されない。好ましくは金、銀、銅、アルミニウム、又は白金等の自由電子金属が挙げられ、特に金が好ましい。金を使用する場合、後記する検出領域は、金膜上にある。上記の金属は単独又は組み合わせて使用することができる。また、上記基板への付着性を考慮して、基板と金属からなる層との間にクロム等からなる介在層を設けてもよい。金属膜の膜厚は任意であるが、例えば、1nm以上500nm以下であるのが好ましく、特に10nm以上200nm以下であるのが好ましい。500nmを超えると、媒質の表面プラズモン現象を十分検出することができない。また、クロム等からなる介在層を設ける場合、その介在層の厚さは、0.1nm以上、10nm以下であることが好ましい。
本発明においては、基板上に生体試料中のプロゲステロンの有無を検出するテストエリアを設けることができる。このテストエリアでは、抗原に結合した標識のみを結合できないようにし、抗原に結合していない標識のみを捕獲して、抗原の結合した標識の量を算出する方法により、抗原を定量することが可能となる。この検出方法は競合法と呼ばれているが、ここでは、競合法に関する基板について説明する。
本発明では、測定環境、特に測定温度の影響を極力抑えるために、基板上にコントロールエリアを有し、テストエリアの情報を、コントロールエリアの情報で規格化することによって、環境依存性を非常に低く抑えることが可能となる。コントロールエリアとしては、使用する生体試料の中に存在するプロゲステロンの量に依存せず、すべての標識と結合することが可能なように設計されていることが好ましい。標識粒子上に存在する抗体すべてに相互作用する抗体を有することが好ましい。このように設計することによって、テストエリアの情報をコントロールエリアの情報で規格化することにより、例えば、低温環境で、生体試料の流れや、反応速度が影響を受けた場合でも、規格化によってその影響をキャンセルして、常に精度よく、測定環境に影響されない結果を得ることが可能になる。
例えば、競合法において、プロゲステロンを含まない陰性となる生体試料だけでなく、プロゲステロンを含む陽性となる生体試料に対しても反応して陰性となる生体試料が存在しており、高値乖離の問題の解決が課題として認識されている。このような擬陰性を示す原因は明確にはなっていないが、抗体に覆われていない標識粒子表面と、検出領域(テストエリア)との非特異的な相互作用により、本来結合してほしくない標識粒子が存在することが原因の一つではないかと考えられている。また、テストエリア上に存在する物質と同じ物質が標識粒子表面上に存在する場合にも、遊離した抗体などが生体試料中に存在する場合には、その抗体が、テストエリア上に存在する物質と、標識粒子表面上の物質のどちらにも結合することで、プロゲステロンを含む陽性となる生体試料を測定した場合においても陰性として検出される場合がある。
一般的に、固相表面(例えば標識粒子表面、基板の金膜表面)への非特異吸着抑制のためにBSAでのブロッキングが用いられている。
本発明において、抗体は、その動物種やサブクラス等によらず使用できる。例えば、本発明に用いることが可能な抗体は、マウス、ラット、ハムスター、ヤギ、ウサギ、ヒツジ、ウシ、ニワトリなど免疫反応が起こり得る生物に由来する抗体、具体的には、マウスIgG、マウスIgM、ラットIgG、ラットIgM、ハムスターIgG、ハムスターIgM、ウサギIgG、ウサギIgM、ヤギIgG、ヤギIgM、ヒツジIgG、ヒツジIgM、ウシIgG、ウシIgM、トリIgY等であり、ポリクローナル又はモノクローナルのどちらも使用可能である。断片化抗体は、少なくとも1つの抗原結合部位を持つ、完全型抗体から導かれた分子であり、具体的にはF(ab’)2、Fab、Fab’、又はFv等である。これらの断片化抗体は、酵素あるいは化学的処理によって、もしくは遺伝子工学的手法を用いて得られる分子である。
本発明のキットは、プロゲステロンを測定する方法に用いられるものである。本発明のキットは、標識を有する第一の粒子と、標識を有しない第二の粒子とを含み、さらに第一の粒子及び第二の粒子を流すための流路と、第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する基板とを含むセンサチップを含む。本発明のキットにはさらに、表面プラズモン励起装置、及び蛍光測定デバイスなどの、プロゲステロンの測定に使用される各種の器材又は装置を含めてもよい。さらに、キットの要素として、既知量のプロゲステロンを含む試料、取扱説明書などを含めてもよい。
さらに本発明によれば、
(i)(a)プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、
(b)プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子と、
(c)プロゲステロンを含む被検試料と、
を混合して、混合物を得る工程と、
(ii)工程(i)で得た混合物を、基板上に適用する工程と、
(iii)第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する、基板上の反応部位において、第一の結合物質を捕捉する工程と、
(iv)反応部位上に捕捉された第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子を検出する工程と、
を含むプロゲステロンの測定方法であって、
標識を有する第一の粒子は、本明細書に記載した式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ第一の粒子の平均粒子径より第二の粒子の平均粒子径が大きい、
プロゲステロンの測定方法が提供される。
本発明における測定は、プロゲステロンの量の測定である限り、最も広い概念として解釈される。測定方法の具体的な実施態様としては、競合法が好ましい。
競合法では、先ず、プロゲステロン・アルブミン結合体が固定化されているプロゲステロン免疫測定用基板に、プロゲステロンを含む生体試料及び抗プロゲステロン抗体標識蛍光粒子を接触させる。その生体試料中にプロゲステロンが存在しない場合には、抗プロゲステロン抗体標識蛍光粒子と、基板上のプロゲステロン(即ち、プロゲステロン・アルブミン結合体中のプロゲステロン)とにより、基板上で抗原抗体反応が起こる。一方、生体試料中にプロゲステロンが存在する場合には、生体試料中のプロゲステロンと抗プロゲステロン抗体標識蛍光粒子との間で抗原抗体反応が起こり、抗プロゲステロン抗体標識蛍光粒子と、基板上のプロゲステロン(即ち、プロゲステロン・アルブミン結合体中の胆汁酸)との間の抗原抗体反応が阻害される。上記の反応が終了した後、基板上のアルブミンに結合しなかった抗プロゲステロン抗体標識蛍光粒子を除去する。次いで基板上の免疫複合体(即ち、抗プロゲステロン抗体標識蛍光粒子と、基板上のプロゲステロン・アルブミン結合体中のプロゲステロンとの複合体)の形成の度合いを蛍光強度として検出することにより、生体試料中のプロゲステロンの濃度などを測定することができる。
本発明における蛍光などの標識の検出方法としては、特に限定されないが、例えば、蛍光強度を検出することができる機器、具体的には、マイクロプレートリーダー、又は表面プラズモン励起による蛍光検出(SPF)を行うためのバイオセンサーなどを用いて蛍光強度を検出することが好ましい。好ましくは、表面プラズモン共鳴による蛍光検出により、プロゲステロンの量に関連した標識情報を取得することができる。
さらに本発明の方法は、標識粒子の量に関連した標識情報を取得する、標識粒子関連標識情報取得工程;及びプロゲステロンの量に関連した標識情報を取得するプロゲステロン関連標識情報取得工程で取得した標識情報を、標識粒子関連標識情報取得工程で取得した標識情報により規格化する、規格化工程を含む方法でもよい。
さらに本発明によれば、(a)プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、(b)プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子とを含む、プロゲステロン測定試薬であって、上記の標識を有する第一の粒子は、本明細書に記載した式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、上記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、上記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ上記第一の粒子の平均粒子径より上記第二の粒子の平均粒子径が大きい、プロゲステロン測定試薬が提供される。
上記したプロゲステロン測定試薬を用いて、本発明によるプロゲステロンの測定方法を実施することができる。
<1−1>平均粒子径303nmラテックス粒子の調製
スチレン(和光純薬社製)30g(288mmol)とアクリル酸(和光純薬社製)1g(12mmol)を超純水330mLに懸濁させ、85℃に昇温し、過硫酸カリウム(KPS)(和光純薬社製)1gを25mLに溶解させた水溶液を添加し、85℃、250rpmで6時間攪拌した。その後、10,000rpmで6時間遠心分離を3回行い、ラテックス粒子を得た。最後に、得られたラテックス粒子を超純水に再分散させた。固形分濃度が1質量%となるように、純水を添加して希釈液を調製した。粒径アナライザーFPAR−1000(大塚電子(株))を用いて、温度25℃で測定したメジアン径(d=50)として求めたところ、ラテックス粒子の平均粒子径は303nmであった。
スチレン(和光純薬社製)30g(288mmol)とアクリル酸(和光純薬社製)2g(24mmol)を超純水330mLに懸濁させ、85℃に昇温し、過硫酸カリウム(KPS)(和光純薬社製)1gを25mLに溶解させた水溶液を添加し、85℃、250rpmで6時間攪拌した。その後、10,000rpmで6時間遠心分離を3回行い、ラテックス粒子を得た。最後に、得られたラテックス粒子を超純水に再分散させた。固形分濃度が1質量%となるように、純水を添加して希釈液を調製した。粒径アナライザーFPAR−1000(大塚電子(株))を用いて、温度25℃で測定したメジアン径(d=50)として求めたところ、ラテックス粒子の平均粒子径は220nmであった。
スチレン(和光純薬社製)30g(288mmol)とアクリル酸(和光純薬社製)3g(42mmol)を超純水440mLに懸濁させ、95℃に昇温し、過硫酸カリウム(KPS)(和光純薬社製)1gを10mLに溶解させた水溶液を添加し、95℃、250rpmで6時間攪拌した。その後、10,000rpmで6時間遠心分離を3回行い、ラテックス粒子を得た。最後に、得られたラテックス粒子を超純水に再分散させた。固形分濃度が1質量%となるように、純水を添加して希釈液を調製した。粒径アナライザーFPAR−1000(大塚電子(株))を用いて、温度25℃で測定したメジアン径(d=50)として求めたところ、ラテックス粒子の平均粒子径は151nmであった。
平均粒子径151nmのラテックス粒子の調製において、昇温時の温度を適宜調整することで、平均粒子径129、100、72nmのラテックス粒子を調製した。平均粒子径は<1−1>と同様に測定した。
上記のように作製したラテックス粒子の固形分濃度2質量%の水分散液100mLにメタノール100mLを加え、10分間、室温で攪拌した。一方、別途用意した蛍光色素(比較化合物:特許3442777号公報記載の化合物5)を60分間かけてゆっくりラテックス溶液に滴下した。滴下完了後、エバポレーターで有機溶媒を減圧留去した後、遠心分離とPBS水溶液への再分散を3回繰り返し、精製を行うことで、平均粒子径が、302nm、218nm、150nm、132nm、98nm、71nmの6種類の比較用蛍光ラテックス粒子を調製した。
抗プロゲステロン抗体で修飾した蛍光粒子を、以下の通り調製した。
<2>で調製した平均粒子径150nmの2質量%(固形分濃度)蛍光ラテックス粒子水溶液を375μL準備し、50mmol/LのMES(2−モルホリノエタノスルホン酸、同仁化学研究所社製)緩衝液(pH6.0)を117μL、10mg/mLの水溶性カルボジイミド(water soluble carbodiimide:WSC)水溶液を5μL加え、室温で15分間攪拌した。その後、0.5mg/mLの抗プロゲステロンモノクローナル抗体(GeneTex社製)を182.4μL添加し、室温で1.5時間撹拌した。2mol/LのGlycine(和光純薬社製)水溶液を37.5μL添加し、15分間撹拌した後、遠心分離(15,000rpm、4℃、30分)にて、蛍光ラテックス粒子を沈降させた。上清液を取り除き、PBS(Phosphate Buffered Saline リン酸緩衝生理食塩水;和光純薬社製)溶液(pH7.4)を750μL加え、超音波洗浄機により蛍光ラテックス粒子を再分散させた。さらに遠心分離(15,000rpm、4℃、15分)を行い、上清液を除いた後、1質量%BSAを含むPBS(pH7.4)溶液750μLを加え、蛍光ラテックス粒子を再分散させることで、抗プロゲステロン抗体結合蛍光ラテックス粒子の1質量%溶液を得た。平均粒子径303nm、220nm、129nm、100nm、72nmの蛍光ラテックス粒子のプロゲステロン抗体修飾も同様に行った。
抗T4抗体で修飾したラテックス粒子を、以下の通り調製した。
<1−3>で調製した平均粒子径151nmの2質量%(固形分濃度)ラテックス粒子水溶液250μLに、50mmol/LのMESバッファー(pH6.0)溶液250μLを加え、5mg/mLの抗T4モノクローナル抗体(Medix社Anti−Thyroxineモノクローナル抗体(6901))100μLを添加し、室温で15分間攪拌した。その後、10mg/mLの1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(EDC)水溶液を5μL加え、室温で2時間撹拌した。2mol/LのGlycine(和光純薬社製)水溶液を25μL添加して30分間撹拌した後、遠心分離(15,000rpm、4℃、15分)を行い、ラテックス粒子を沈降させた。その後上清を取り除き、PBS溶液(pH7.4)を500μL加え、超音波洗浄機によりラテックス粒子を再分散させた。再度、遠心分離(15,000rpm、4℃、15分)を行って上清を除いた後、1質量%BSAを含むPBS(pH7.4)溶液500μLを加えて、ラテックス粒子を再分散させることで、抗T4抗体結合ラテックス粒子の1質量%溶液を調製した。その他の粒子径(302nm、218nm、132nm、98nm、71nm)のラテックス粒子の抗T4抗体修飾も同様に行った。
無標識粒子のマウス抗体の種類の表記として、抗T4抗体を1、抗hCG抗体を2とし、下記の表3に記載した。
<5−1>化合物の合成
用語は以下の意味を示す。
MS:質量分析 (mass spectrometry)
ESI:エレクトロスプレーイオン化(electrospray ionization)
NMR:核磁気共鳴(nuclear magnetic resonance)
rt:室温
Et:エチル基
PL:フォトルミネッセンス
THF:テトラヒドロフラン
100mL三ツ口フラスコに、窒素雰囲気下、3,5−ビス(トリフルオロメチル)ベンズアルデヒド1.00g及びジクロロメタン20mLを導入し、室温で撹拌した。水冷しながら3−エチル−2,4−ジメチルピロール0.98gを滴下し、続いて、トリフルオロ酢酸を2滴加えた後、室温で30分間撹拌した。水冷しながらクロラニル1.0gを加え、室温で10分間撹拌した後、水冷しながらジイソプロピルエチルアミン(NiPr2Et)3.67gを滴下し、室温で15分間撹拌した。続いて、水冷しながら三フッ化ホウ素ジエチルエーテル錯体5.6mLを滴下し、室温で30分間撹拌した。飽和炭酸水素ナトリウム及びトルエンを滴下し、抽出・分液して得られた有機層を無水硫酸ナトリウムで予備乾燥した後、減圧濃縮した。この粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(展開溶媒:ヘキサン/酢酸エチル)で精製した後、メタノールで再結晶することにより、化合物(1−A)を1.28g得た。
1H NMR(CDCl3,400MHz):δ 8.03(s,1H),7.83(s,2H),2.54(s,6H),2.31(q,J=7.6Hz,4H),1.21(s,6H),1.00(t,J=7.6Hz,6H).
100mL三ツ口フラスコに、化合物(1−A)100mg、2,4,6−トリメチルベンズアルデヒド115mg、及び脱水トルエン5mLを導入し、室温で撹拌した。ピペリジン1mL及びp−トルエンスルホン酸1水和物(和光純薬工業(株)社製、試薬特級)1片を加えて140℃で溶媒を留去しながら1時間撹拌し、放冷後に脱水トルエン5mLを加えて140℃で溶媒を留去しながら1時間撹拌した。反応液を減圧濃縮して得られた粗生成物を分取TLC(展開溶媒:ヘキサン/酢酸エチル)で精製した後、メタノールで再結晶することにより、化合物(1)を71mg得た。化合物の同定は、1H−NMRとESI−MSにより行った。
1H NMR(CDCl3,400MHz):δ 8.06(s,1H),7.87(s,2H),7,38(d,J=17.2Hz,2H),7,32(d,J=17.2Hz,2H),6.93(s,4H),2.63(q,J=7.6Hz,4H),2.44(s,12H),2.30(s,6H),1.27(s,6H),1.17(t,J=7.6Hz,6H).
ESI−MS:[M−H]-=775.8
500mL三ツ口フラスコに、窒素雰囲気下、2,4−ジメチルピロール1.16ml及びジクロロメタン140mLを導入し、室温で撹拌した。2,3,5,6−テトラフルオロベンズアルデヒド1.0g、トリフルオロ酢酸1滴を加えた後、室温で15分間撹拌した。クロラニル(Chloranil)1.38gを加え、室温で15分間撹拌した後、水冷しながらジイソプロピルエチルアミン(NiPr2Et)6.8mLを滴下し、室温で20分間撹拌した。続いて、水冷しながら三フッ化ホウ素ジエチルエーテル錯体(BF3・Et2O)7.8mLを滴下し、室温で30分間撹拌した。飽和炭酸水素ナトリウム400mLを滴下し、ジクロロメタンで抽出・分液して得られた有機層を無水硫酸ナトリウムで予備乾燥した後、減圧濃縮した。この粗生成物をシリカゲルカラムクロマグラフィー(展開溶媒:ヘキサン/酢酸エチル)で精製した後、メタノールで再結晶することにより、化合物(5−A)を360mg得た。
1H NMR(CDCl3,400MHz):δ 7.43(s,1H),7.39(s,1H),7.29−7.21(m,1H),6.94(s,4H),6.80(s,4H),6.69(s,1H),6.65(s,1H),2.29(s,6H),2.23(s,6H),2.08(s,12H),2.03(s,12H),1.33(s,6H).
ESI−MS:[M−H]-=891.4
<1−3>で調製した固形分濃度が2質量%の平均粒子径151nmのラテックス粒子分散液(ラテックス分散液25mL、固形分500mg)に対してTHF(5mL)を滴下して10分攪拌した。そこに、化合物(5)48μmol/gを含むTHF溶液(2.5mL)を15分間かけて滴下した。そこに化合物(1)48μmol/gを含むTHF溶液(2.5mL)を15分間かけて滴下した。化合物の滴下終了後、30分攪拌した後、減圧濃縮してTHFを除去した。その後、遠心分離して粒子を沈殿させた後、超純水を加えて再度分散させることで固形分濃度2質量%の高輝度蛍光ラテックス粒子の分散液を調製した。また、化合物(1)の代わりに化合物(5)を用いて同様の操作を行い、化合物(5)を含む固形分濃度2質量%の高輝度蛍光ラテックス分散液を調製した。
さらに、化合物(1)24μmol/gと化合物(5)12μmol/gを混合したものを用いて同様の操作を行い、化合物(1)と化合物(5)を含む固形分濃度2質量%の高輝度蛍光ラテックス分散液を調製した。
<5−2>で調製した固形分濃度が2質量%の高輝度蛍光ラテックス粒子それぞれを用いて<3>と同様の作業を実施し、平均粒子径303nm、220nm、151nm、129nm、100nm、72nmの抗プロゲステロン抗体結合高輝度蛍光ラテックス粒子の1質量%溶液を調製した。
超純水280μL、12.5質量%スクロース水溶液427μL、20質量%BSA水溶液133μL、1質量%抗プロゲステロン抗体修飾蛍光ラテックス粒子(平均粒子径150nm)80μL、1質量%抗T4抗体修飾ラテックス粒子(平均粒子径150nm)80μLを混合した。ポリプロピレン(プライムポリマー社製、プライムポリプロ ランダムPPグレード)を基体としたカップを準備し、15μL点着した。その後、スーパードライ乾燥機(TOYOリビング社、ウルトラスーパードライ00シリーズ)を用いて、12時間かけて含水量を25質量%以下となるまで乾燥させ、乾燥粒子を作製した。他の実験水準に使用した乾燥粒子については、ラテックス粒子の平均粒子径、および抗プロゲステロン抗体修飾蛍光ラテックス粒子と、抗T4抗体修飾ラテックス粒子の使用する質量比率を表3に示すように適宜変更して、乾燥粒子を作製した。
<7−1>プロゲステロン−BSA結合体のクエン酸緩衝液の溶液の調製
プロゲステロン−BSA結合体(BIO−RAD社製)150μgを、50mmol/L濃度のクエン酸緩衝液1mL(pH5.2、150mmol/L NaCl)に添加して溶解させ、クエン酸緩衝液の溶液を得た。
マウス由来のグロブリン(LAMPIRE Biological Laboratories社製、カタログ番号7404302、Mouse Gamma Globulin Salt Fractionation、500mg)を準備し、完全フロイントアジュバント(CFA)と混合したエマルジョンを初回投与し、2〜4回目の免疫には不完全アジュバント(IFA)と混合したエマルジョンを投与する方法で、ヤギへ免疫感作(皮下免疫)を2週間隔で4回免疫を行った。その後、ELISA測定を行って抗体価の上昇を確認した後に全採血を行い、遠心分離により抗血清を得た。その後、Protein Aカラム(Thermo scientific社製Pierce ProteinA Columns、カタログ番号20356)により精製し、目的の抗マウス抗体を取得した。
ポリメチルメタクリレート(PMMA)の基体(三菱レイヨン(株)社製、アクリペットVH)を準備し、マグネトロンスパッタ法により、検出領域と参照領域の2箇所に、それぞれ厚さ45nmの金膜を片面に幅4mm、長さ3mmとなるように作製して基板を構成するためのチップを作製した。このチップの検出領域の金膜面上に、<7−1>で調製したプロゲステロン−BSA結合体のクエン酸緩衝液による溶液を点着して乾燥させ、プロゲステロン−BSA結合体を固定化した基板を作製した。また、それぞれの基板の参照領域には、<7−2>で作製した抗マウス抗体を含む液(濃度:50μg/mL in 50mmol/L MES緩衝液 pH6,150mmol/L NaCl)を点着して、乾燥させた。
このように調製した基板をセンサチップの流路に取り付ける前に、予め調製した洗浄用溶液(0.05質量%Tween(登録商標)20(ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノラウラート、和光純薬社製)を含むPBS溶液(pH7.4))を300μL用いて3回繰り返し洗浄した。洗浄終了後、金薄膜上の抗体の未吸着部分のブロッキングを行うため、1質量%カゼイン(Thermo Scientific社製)を含むPBS溶液(pH7.4)を300μL添加し、1時間、室温で静置した。上記の洗浄用溶液で洗浄後、安定化剤としてImmunoassay Stabilizer(ABI社製)300μLを添加し、室温で30分間放置し、溶液を除去して乾燥機を用いて水分を完全に取り除いた。
特開2010−190880号公報の第2の実施形態の構成となるように、作製した基板を流路に封入し、流路型センサチップを作製した。その概略図を図1および図2に示した。図1は、センサチップ1の概略図であり、図2は、センサチップ1の分解図である。センサチップ1は、上部部材2、中間部材3および基板4から構成されている。上部部材2には、第一の容器5および第二の容器6が設けられている。なお、第一の容器5および第二の容器6を併せて、容器群7と称する。基板4には、流路10が形成されており、流路10の上には、検出領域8および参照領域9が形成されている。
検量線評価用に、各種濃度(0.00ng/mL、0.5ng/mL、2.0ng/mL、15.0ng/mL、30.0ng/mL、45.0ng/mL)のプロゲステロンを含む試料を用意した。
また、性能評価用に、イヌ血清として北山ラベスから購入した東洋ビーグル犬の血清を使用し、被検試料(検体)No. 1〜11を用意した。
<6>で調製した、カップ内の乾燥粒子を、25℃50%RH(相対湿度)の環境下で15日間保存した後、このカップ内に、<10>で準備した各種濃度のプロゲステロンを含む試料、及び被検試料(検体)それぞれ100μLと、塩化マグネシウム44μmolを充分に混合して調製した混合試料を点着し、10分間攪拌しながら混合して混合液を得た。次に、<9>で作製した、基板を封入した流路型センサチップに、得られた混合液を点着した。点着後、ポンプ吸引を行いながら混合液1を10μL/minの速度で流下させた。プロゲステロン−BSA結合体を固定した金薄膜面上の蛍光強度を1.5分間継続して測定した。得られた蛍光強度の単位時間における増加速度を蛍光シグナル値として求めた。
文献「The Immunoassay Handbook Third Edition Edited by David Wild(2005)」に競合法の検量線として、シグモイド関数の4パラメータロジスティック曲線モデルが適用できることが記載されており、この方法に従って、近似線を得る方法として一般的に知られている最小二乗法を用いて、下記の表3に記載された比較例、及び実施例ごとに、<11>で測定したプロゲステロンを含む試料の各種濃度(0.00ng/mL、0.5ng/mL、2.0ng/mL、15.0ng/mL、30.0ng/mL、45.0ng/mL)における蛍光シグナル値の各点の最近傍を通る4パラメータロジスティック曲線を求め、検量線とした。
免疫測定で、当業者により広く使用されている大型機であるシーメンス社IMMULYZE1000全自動免疫化学発光測定装置により、取り扱い説明書に従い、被検試料中の被検物質の測定を行った。測定は、<10>で準備した被検試料(検体)No. 1〜11に対して行った。本発明は、対照機で測定した測定値を基準にし、迅速で簡便に測定が可能となる発明であり、対照機の測定値との差が小さいことが必要であり、被検試料(検体)No. 1に対して、大型機から求めたプロゲステロン測定値と、12.で作成した検量線から求めたプロゲステロン測定値(本発明 プロゲステロン測定値)を用いて以下の基準で評価し、結果を表3に示した。
低濃度域の検量線傾きの逆数は、1.4以内の場合の判定をAとし、1.5より大きい場合の判定をBとし、Aの判定を許容範囲とした。
高濃度域での検量線からのズレは、1.5%未満の場合の判定をA、1.5%以上2%以下の場合の判定をB、2%より大きい場合の判定をCとし、A及びBの判定を許容範囲とした。
大型機との乖離幅(%)は、2.0%未満の判定をA、2.0%以上5.0%未満の判定をB、5.0%以上の判定をCとし、A及びBの判定を許容範囲とした。
上記で固形分濃度2質量%の蛍光ラテックス分散液を超純水で200倍に希釈し、蛍光分光光度計RF−5300PC(島津製作所製)の励起光を658nmに設定し、測定を行った。蛍光ラテックス分散液の蛍光強度が測定範囲を超えるほど高い場合には、蛍光強度の極大値が測定可能な範囲まで超純水で希釈を行った。<6>で作製した蛍光ラテックス分散液の発光スペクトルの蛍光強度の積分値に対する、蛍光ラテックス分散液の発光スペクトルの蛍光強度の積分値を粒子蛍光強度(相対値)とした。算出に用いた計算式を以下に示す。
蛍光強度(相対値)=(蛍光ラテックス分散液の発光スペクトルの蛍光強度の積分値)/(<6>で作製した蛍光ラテックス分散液の発光スペクトルの蛍光強度の積分値)
2 上部部材
3 中間部材
4 基板
5 第一の容器
6 第二の容器
7 容器群
8 検出領域
9 参照領域
10 流路
Claims (20)
- プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、
プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子と、
前記第一の粒子及び前記第二の粒子を流すための流路と、
前記第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する基板と、
を含むプロゲステロン測定キットであって、
前記の標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
前記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、前記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ前記第一の粒子の平均粒子径より前記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
キット。
- 前記第一の粒子及び前記第二の粒子がラテックス粒子である、請求項1に記載のキット。
- 前記の標識を有する第一の粒子が、少なくとも一種のエネルギードナー化合物と、少なくとも一種のエネルギーアクセプター化合物と、粒子とを含有する発光性粒子であって、前記エネルギードナー化合物及び前記エネルギーアクセプター化合物の少なくとも一種が、前記式(1)で示される化合物である、請求項1又は2に記載のキット。
- 前記エネルギードナー化合物として、少なくとも一種の前記式(1)で示される化合物を含有し、前記エネルギーアクセプター化合物として、少なくとも一種の前記式(1)で示される化合物を含有する、請求項3に記載のキット。
- エネルギードナー化合物とエネルギーアクセプター化合物のモル比が1:10〜10:1である、請求項3又は4に記載のキット。
- 前記第一の粒子に対する前記第二の粒子の質量比が1〜20である、請求項1から5の何れか一項に記載のキット。
- プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質が抗体である、請求項1から6の何れか一項に記載のキット。
- (i)(a)プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、
(b)プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子と、
(c)プロゲステロンを含む被検試料と、
を混合して、混合物を得る工程と、
(ii)前記工程(i)で得た混合物を、基板上に適用する工程と、
(iii)前記第一の結合物質に対して結合性を有する物質を有する、前記基板上の反応部位において、前記第一の結合物質を捕捉する工程と、
(iv)前記反応部位上に捕捉された前記第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子を検出する工程と、
を含むプロゲステロンの測定方法であって、
前記の標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
前記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、前記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ前記第一の粒子の平均粒子径より前記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
プロゲステロンの測定方法。
- 前記第一の粒子及び前記第二の粒子がラテックス粒子である、請求項8に記載の方法。
- 前記の標識を有する第一の粒子が、少なくとも一種のエネルギードナー化合物と、少なくとも一種のエネルギーアクセプター化合物と、粒子とを含有する発光性粒子であって、前記エネルギードナー化合物及び前記エネルギーアクセプター化合物の少なくとも一種が、前記式(1)で示される化合物である、請求項8又は9に記載の方法。
- 前記エネルギードナー化合物として、少なくとも一種の前記式(1)で示される化合物を含有し、前記エネルギーアクセプター化合物として、少なくとも一種の前記式(1)で示される化合物を含有する、請求項10に記載の方法。
- 前記第一の粒子に対する前記第二の粒子の質量比が1〜20である、請求項8から11の何れか一項に記載の方法。
- 工程(iv)において、前記反応部位上に捕捉された前記第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子を表面プラズモン蛍光法により検出する、請求項8から12の何れか一項に記載の方法。
- (a)プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質で修飾された、標識を有する第一の粒子と、(b)プロゲステロンと特異的な結合性を有しない第二の結合物質で修飾された、標識を有しない第二の粒子とを含む、プロゲステロン測定試薬であって、
前記の標識を有する第一の粒子は、下記式(1)で示される少なくとも一種の化合物と粒子とを含有し、
前記第一の粒子の平均粒子径が50〜250nmであり、前記第二の粒子の平均粒子径が70〜500nmであり、かつ前記第一の粒子の平均粒子径より前記第二の粒子の平均粒子径が大きい、
プロゲステロン測定試薬。
- 前記式(1)で示される化合物が、下記式(3)で示される化合物である、請求項14に記載のプロゲステロン測定試薬。
- 前記第一の粒子に対する前記第二の粒子の質量比が1〜20である、請求項14から17の何れか一項に記載のプロゲステロン測定試薬。
- 前記プロゲステロンと特異的な結合性を有する第一の結合物質が抗体である、請求項14から18の何れか一項に記載のプロゲステロン測定試薬。
- 前記標識を有する第一の粒子が、蛍光ラテックス粒子であり、前記第二の粒子がラテックス粒子である、請求項14から19の何れか一項に記載のプロゲステロン測定試薬。
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