JPWO2017213158A1 - リボソームディスプレイ複合体およびその製造方法 - Google Patents

リボソームディスプレイ複合体およびその製造方法 Download PDF

Info

Publication number
JPWO2017213158A1
JPWO2017213158A1 JP2018521744A JP2018521744A JPWO2017213158A1 JP WO2017213158 A1 JPWO2017213158 A1 JP WO2017213158A1 JP 2018521744 A JP2018521744 A JP 2018521744A JP 2018521744 A JP2018521744 A JP 2018521744A JP WO2017213158 A1 JPWO2017213158 A1 JP WO2017213158A1
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
group
ribosome
ribosome display
residue
polypeptide chain
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2018521744A
Other languages
English (en)
Other versions
JP7093300B2 (ja
Inventor
寛士 北
寛士 北
敏裕 鹿倉
敏裕 鹿倉
博文 前田
博文 前田
慶士 高津
慶士 高津
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kaneka Corp
Original Assignee
Kaneka Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kaneka Corp filed Critical Kaneka Corp
Publication of JPWO2017213158A1 publication Critical patent/JPWO2017213158A1/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7093300B2 publication Critical patent/JP7093300B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/107General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides
    • C07K1/1072General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides by covalent attachment of residues or functional groups
    • C07K1/1077General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides by covalent attachment of residues or functional groups by covalent attachment of residues other than amino acids or peptide residues, e.g. sugars, polyols, fatty acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1034Isolating an individual clone by screening libraries
    • C12N15/1041Ribosome/Polysome display, e.g. SPERT, ARM
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2/00Peptides of undefined number of amino acids; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C40COMBINATORIAL TECHNOLOGY
    • C40BCOMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
    • C40B40/00Libraries per se, e.g. arrays, mixtures
    • C40B40/04Libraries containing only organic compounds
    • C40B40/10Libraries containing peptides or polypeptides, or derivatives thereof

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本発明の課題は、複雑な反応手順を経ることなく調製可能であり、且つ、リボソームの機能(特にポリペプチドライブラリ作製の為の機能)を損なうことなく提示ポリペプチドが修飾されたリボソーム複合体、および当該リボソーム複合体の調製方法を提供することである。本発明に係るリボソームディスプレイ複合体の製造方法は、リボソームを利用した無細胞ペプチド合成系を用いてmRNA分子を翻訳し、未修飾ポリペプチド鎖、当該mRNA分子および当該リボソームを含むリボソーム複合体を得る工程、および、上記未修飾ポリペプチド鎖に含まれる上記側鎖反応性官能基と修飾試薬とを反応させることにより、上記未修飾ポリペプチド鎖を修飾する工程を含むことを特徴とする。

Description

本発明は、新規なリボソームディスプレイ複合体とその製造方法に関するものである。
近年、様々なアミノ酸配列のポリペプチドライブラリの中から、特定の疾患に対する治療薬や、標的分子に親和性の高い分子などを選択することが行われるようになっている。その理由としては、ポリペプチドは特異性や選択性が高いので、低分子化合物に比べて副作用などが少ないと考えられることによる。また、ランダムプライマーを用いたPCR技術により、特定部分のアミノ酸配列をランダム化したポリペプチドをコードするDNAが容易に得られるため、低分子化合物のライブラリに比べ、多くのポリペプチドを含むライブラリを容易に調製できるという利点もある(非特許文献1〜3)。
一方で、抗体などのポリペプチドを機能性分子で化学的に修飾してその機能を拡張した医薬品の開発に注目が集まっている。例えば、非特許文献4と5には、抗体薬物複合体(ADC)が抗がん剤に応用された例が記載されている。ポリペプチドと機能性分子が連結したこのような化合物は、ポリペプチドの特性と機能性分子の機能がハイブリッドし、それぞれの特徴を生かしたりそれぞれの欠点を補う分子として、創薬分野において注目される(非特許文献6〜10)。
例えば、ポリペプチドは標的分子への特異性が高いので、低分子医薬品と比較して副作用などが低いと考えられる。一方で、ポリペプチドは生体内でプロテアーゼやペプチダーゼ等により分解されるので不安定である。そこで、非天然アミノ酸を導入したり、修飾試薬を使って環状化することにより、生体内での安定性が向上することがある。さらに、環状化により構造が安定化するため、標的化合物への親和性や選択性が向上したり、分解酵素に対する耐性や細胞膜透過性が発現することもある(非特許文献6〜10)。
このように、ポリペプチドに、環状化のための修飾試薬や抗がん剤といった機能性分子が連結したポリペプチドライブラリを作製する技術が注目される。
このような機能性分子とポリペプチドが連結した化合物のライブラリを作製する技術としては、提示するポリペプチド(表現型)とそれをコードする遺伝子(遺伝型)が1対1で対応付けされた複合体がある(非特許文献1)。
この方法としてファージディスプレイ法がしばしば用いられる。ファージディスプレイ法において、バクテリオファージ上にポリペプチドを提示させ、そのポリペプチドに対して修飾を施すことによりライブラリを作製する手法も知られている。このファージディスプレイ法によるライブラリは、比較的簡単な設備で安価に製造できる。作製されたライブラリは、有用なポリペプチドを単離するためのスクリーニングに用いることができる。しかし、ファージに提示したポリペプチドと機能性分子を特異的に連結する操作は難しく、また工程が多くて煩雑であるため数例しか報告がない(非特許文献6,7,10)。
一方で、機能性分子が結合したポリペプチドライブラリとしては、in vitro翻訳系により特殊アミノ酸をポリペプチド鎖の特性の位置に取り込ませ、当該ペプチドを構成するアミノ酸残基と反応性官能基とを反応させて環化したものが知られている(非特許文献8,9)。また、mRNAディスプレイ法において、mRNA−ペプチド複合体に修飾試薬を直接反応させ環状化する方法が報告されている(非特許文献9)。
このin virto翻訳系を用いたライブラリ作製方法は、ファージディスプレイ法と比較して多様性の観点で非常に優れている。このin vitro翻訳系の方法としては、例えばリボソームディスプレイ法(RD法)、mRNAディスプレイ法、cDNAディスプレイ法などがある。このうち、リボソームディスプレイ法(RD法)は、in vitro翻訳系とmRNAさえあれば、それらを混合するだけで、1012種類以上のポリペプチドライブラリが数分で作製できる点で優れている。一方、mRNAディスプレイ法とcDNAディスプレイ法は、mRNAとピューロマイシンDNAのアニール工程など、ライブラリ作製のための工程が多く煩雑である。
しかしRD法において、ポリペプチドに機能性分子を連結させる方法の報告はない。その原因としては、RD法で用いられる表現型−遺伝型の複合体は、提示するペプチドと遺伝子を含む核酸がリボソームを介した非共有結合により形成されていることや、リボソーム自体の機能性分子連結反応に対する脆弱性が挙げられる。即ち、1)共有結合で遺伝型−表現型複合体をつくるmRNAディスプレイ法に比べて複合体が不安定であり、2)リボソームを形成するリボソーマルタンパク質に含まれるシステインやリジンなどに反応性があるために、機能性分子を連結させるとリボソーム自体の機能や複合体の機能が低下しやすくなることなどがRD法で機能性分子を連結させた報告がない理由である。実際、例えば大腸菌の55種類のリボソーマルタンパク質には合計で36個のシステインと686個のリジンが存在する。
例えば、システインは、ポリペプチドの残基の1つとして、構造的・機能的に特に重要な役割を果たす。システイン残基のSH基は、同ポリペプチド内および異なるポリペプチドのシステイン残基のSH基とジスルフィド結合を形成する。このジスルフィド結合は、しばしばポリペプチドの高次構造形成に貢献する。SH基はジスルフィド結合形成のほかにも多様な反応の基質となりえるので、ポリペプチド鎖を人為的に修飾するにあたり、修飾部位としてよい候補となる。その反面、その反応性が高いがゆえに、特定のシステイン残基に対して特異的に修飾したい場合に、別の意図しない位置での反応が起こる可能性がある。これによりポリペプチドの高次構造が損なわれたりすることがしばしばある。リジン、ヒスチジンやトリプトファンも同様である。従って、システイン、リジン、ヒスチジン、トリプトファンが複数含まれるポリペプチド、リボソーム又はそれらを含むRD複合体において、それらの機能を損なうことなく、目的のシステインを修飾する方法をデザインすることは容易なことではない。具体的には、遺伝子工学により意図しないシステインをリボソーマルタンパク質から除去する方法や、意図しないシステインが反応しないような予備的反応を含む複雑な反応工程手順が必要になる。このような工程をライブラリ作製工程に組み込むと、RD法の特徴である工程が少なくライブラリが作製できるというメリットが失われることになる。
H.Leemhuis,外3名,「New genotype-phenotype linkages for directed evolution of functional proteins」,Current Opinion in Structural Biology 2005,15:472-478 D.Lipovsek,外1名,「In-vitro protein evolution by ribosome display and mRNA display」,Journal of immunological methods,290(2004),51-67 H.M.E.Azzazy,外1名,「Phage display technology: clinical applications and recent innovations」,Clinical Biochemistry,35(2002),425-445 H.L.Perez,外6名,「Antibody-drug conjugates: current status and future directions」,Drug Discovery Today,Volume 19,Number 7,July 2014 S.C.Alley,外2名,「Antibody-drug conjugates: targeted drug delivery for cancer」,Current Opinion in Chemical Biology,2010,14:529-537 C.Heinis,外3名,「Phage-encoded combinatorial chemical libraries based on bicyclic peptides」,Nature Chemical Biology,5,502-507(2009) I.R.Rebollo,外1名,「Phage selection of bicyclic peptides」,Methods 60(2013),46-54 T.Kawakami,外2名,「Messenger RNA-Programmed Incorporation of Multiple N-Methyl-Amino Acids into Linear and Cyclic Peptides」,Chemistry & Biology,vol.15(1),p.32-42,January 2008 K.Josephson,外2名,「mRNA display: from basic principles to macrocycle drug discovery」,Drug Discovery Today,volume 19,Number 4,April2014,pp.388-399 K.Fukunaga,外4名,「Construction of a crown ether-like supramolecular library by conjugation of genetically-encoded peptide linkers displayed on bacteriophage T7」,Chemical Communications,2014,50,3921-3923
実際、本発明者らは、修飾試薬としての環化試薬(1,3−ジブロモ−2−プロパノン;DBP)をリボソームに作用させた後に、RD複合体形成工程を行った場合、RD複合体の形成ができなくなることを実験的に確認している。
従って本発明の課題は、複雑な反応手順を経ることなく調製可能であり、且つ、リボソームの機能(特にポリペプチドライブラリ作製の為の機能)を損なうことなく提示ポリペプチドが修飾されたリボソーム複合体、および当該リボソーム複合体の調製方法を提供することである。
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた。その結果、リボソームディスプレイ法により修飾されたポリペプチドライブラリを作製するに当たり、リボソームにはそのリボソーマルタンパク質内にシステインなど反応性側鎖官能基を有するアミノ酸残基を多数含むため、人工物で修飾する際にその機能を失うリスクが存在していたが、人工物による修飾のタイミングを適切にすれば、RNAとそこから翻訳されたポリペプチドとを結合するリボソームの接着機能については本来の機能を失うことなく維持することができ、リボソームディスプレイ複合体においてポリペプチドを簡便、容易に修飾できることを見出して、本発明を完成した。
以下、本発明を示す。
[1] ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含むリボソームディスプレイ複合体を製造するための方法であって、
上記ポリペプチド鎖は、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、及びトリプトファン残基からなる群より選択される1以上の反応性アミノ酸残基を含み、当該反応性アミノ酸残基の側鎖反応性官能基が修飾されているものであり、
上記mRNA分子は、上記ポリペプチド鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含み、
上記リボソームを利用した無細胞ペプチド合成系を用いて上記mRNA分子を翻訳し、未修飾ポリペプチド鎖、上記mRNA分子および上記リボソームを含むリボソーム複合体を得る工程、および、
上記未修飾ポリペプチド鎖に含まれる上記側鎖反応性官能基と修飾試薬とを反応させることにより、上記未修飾ポリペプチド鎖を修飾する工程を含むことを特徴とする方法。
[2] 前記修飾試薬が、下記式(1)で表される化合物である上記[1]に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
Figure 2017213158
(式中、Aは、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基の側鎖と反応して結合を形成可能な基を表し、Bは連結基又は単結合を表し、Cは機能性基を表す。aは1以上の整数を表し、cは0又は1以上の整数を表し、aが2以上の整数を表す場合、複数のAは互いに同一であっても異なっていてもよい)
[3] 前記Aが、ハロゲン化アルキル基、活性化カルボニル基、不飽和炭化水素基、エポキシ基、スルホニル含有基、イソシアネート基、チオイソシアネート基、カルベン発生基、カルベン含有基、ジスルフィド結合含有基、或いはチオール基である上記[2]に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[4] 前記連結基Bが、ヘテロ原子含有極性基、炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
前記ヘテロ原子含有極性基が、−O−、−S−、−NR1−(式中、R1は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−CO−、−COO−、−CONR2−(式中、R2は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−N=N−、又は−SO2−であり、
前記脂肪族炭化水素基の置換基が、ハロゲノ基、アリール基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、又はヒドロキシ基であり、
前記芳香族環の置換基がハロゲノ基、アルキル基、アラルキル基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、ヒドロキシアルキル基、又はカルボキシアルキル基である上記[2]または[3]に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[5] 前記連結基Bが、−B1−単位、−B2−単位、−B2−B1−単位、又は−B2−B1−B3−単位を有し、
B1が炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
B2及びB3がそれぞれ独立してヘテロ原子含有極性基であり、
B1又はB2が前記Aと結合しており、
ヘテロ原子含有極性基及び置換基が前記と同じ意味である上記[4]に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[6] 前記修飾試薬が、下記式
Figure 2017213158
(式中、A、B1、B2、B3は前記に同じ。nは1以上の整数を表す。B1、B2、B3のいずれか一つ以上には、前記Cの1つ以上が結合していてもよい)
のいずれかで表される上記[5]に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[7] 前記Aがハロゲン化アルキルであるとき、このハロゲノ基が結合する炭素原子が、カルボニル基のα位の炭素原子、又は芳香族環に直結する炭素原子である上記[2]〜[6]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[8] 前記ポリペプチド鎖が、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基からなる群より選択される2以上の反応性アミノ酸残基を含み、
前記式(1)の修飾試薬でaが2以上であり、
未修飾ポリペプチド鎖に含まれる側鎖反応性官能基と修飾試薬とを反応させる前記工程で、ポリペプチド鎖と修飾試薬の間に環を形成する上記[2]〜[7]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[9] 前記ポリペプチド鎖が100〜5000アミノ酸残基からなる上記[1]〜[8]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[10] 前記反応性アミノ酸残基を、前記ポリペプチド鎖のN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に有する上記[1]〜[9]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[11] 前記ポリペプチド鎖がN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に1〜30アミノ酸残基のランダム配列を含む上記[1]〜[10]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[12] 前記リボソームが、大腸菌由来のリボソームである上記[1]〜[11]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
[13] ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含み、
上記ポリペプチド鎖は、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、及びトリプトファン残基からなる群より選択される1以上の反応性アミノ酸残基を含み、且つ、当該反応性アミノ酸残基の側鎖反応性官能基が修飾されているものであり、
上記mRNA分子は、上記ポリペプチド鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むものであることを特徴とするリボソームディスプレイ複合体。
[14] 前記側鎖反応性官能基の修飾構造が、下記式(2)で表される化学構造である上記[13]に記載のリボソームディスプレイ複合体。
Figure 2017213158
(式中、Axは、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基又はトリプトファン残基の側鎖と反応して形成される結合基を表し、Bは連結基又は単結合を表し、Cは機能性基を表す。aは1以上の整数を表し、cは0又は1以上の整数を表し、aが2以上の整数を表す場合、複数のAxは互いに同一であっても異なっていてもよい)
[15] 前記Axが、ハロゲン化アルキル基、活性化カルボニル基、不飽和炭化水素基、エポキシ基、スルホニル含有基、イソシアネート基、チオイソシアネート基、カルベン発生基、カルベン含有基、ジスルフィド結合含有基、或いはチオール基と、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基又はトリプトファン残基の側鎖とが形成する化学結合である上記[14]に記載のリボソームディスプレイ複合体。
[16] 前記連結基Bが、ヘテロ原子含有極性基、炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
前記ヘテロ原子含有極性基が、−O−、−S−、−NR1−(式中、R1は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−CO−、−COO−、−CONR2−(式中、R2は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−N=N−、又は−SO2−であり、
前記脂肪族炭化水素基の置換基が、ハロゲノ基、アリール基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、又はヒドロキシ基であり、
前記芳香族環の置換基がハロゲノ基、アルキル基、アラルキル基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、ヒドロキシアルキル基、又はカルボキシアルキル基である上記[15]に記載のリボソームディスプレイ複合体。
[17] 前記連結基Bが、−B1−単位、−B2−単位、−B2−B1−単位、又は−B2−B1−B3−単位を有し、
B1が炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
B2及びB3がそれぞれ独立してヘテロ原子含有極性基であり、
B1又はB2が前記Axと結合しており、
ヘテロ原子含有極性基及び置換基が前記と同じ意味である上記[16]に記載のリボソームディスプレイ複合体。
[18] 前記修飾構造が、下記式
Figure 2017213158
(式中、Ax、B1、B2、B3は前記に同じ。nは1以上の整数を表す。B1、B2、B3のいずれか一つ以上には、前記Cの1つ以上が結合していてもよい)
で表される上記[17]に記載のリボソームディスプレイ複合体。
[19] 前記Axがハロゲン化アルキルと、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基の側鎖とが形成する化学結合であるとき、このハロゲノ基が結合する炭素原子が、カルボニル基のα位の炭素原子、又は芳香族環に直結する炭素原子である上記[14]〜[18]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
[20] 前記ポリペプチド鎖が、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、およびトリプトファン残基からなる群より選択される2以上の反応性アミノ酸残基を含み、
前記式(2)の修飾構造でaが2以上であり、
ポリペプチド鎖と式(2)の修飾構造とで環が形成されている上記[14]〜[19]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
[21] 前記ポリペプチド鎖が100〜5000アミノ酸残基からなる上記[13]〜[20]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
[22] 前記反応性アミノ酸残基を、前記ポリペプチド鎖のN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に有する上記[13]〜[21]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
[23] 前記ポリペプチド鎖がN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に1〜30アミノ酸残基のランダム配列を含む上記[13]〜[22]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
[24] 前記リボソームが、大腸菌由来のリボソームである上記[13]〜[23]のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
本発明によれば、提示ポリペプチドのシステイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基またはトリプトファン残基を機能性分子により修飾したリボソーム複合体を極めて簡便な工程により提供することができる。リボソーム複合体はその構成因子であるリボソーマルタンパク質中にシステイン残基など反応性側鎖官能基を有するアミノ酸残基を、提示ポリペプチドに比べてはるかに多数有することを考えると、非常に驚くべき効果である。つまり、リボソームは55個のリボソーマルタンパク質と3本のRNAにより構成されており、あるリボソームには、合計で36個のシステイン、686個のリジン、151個のヒスチジンが含まれる。それにも関わらず、ポリペプチドとmRNAの接着機能を阻害することなく(すなわちRD複合体を維持したまま)、極めて簡便な工程で提示ポリペプチドを化学修飾できるという本発明の効果は、予想外であり且つ極めて有用である。
図1は、本発明に係るリボソームディスプレイ複合体を作製するために用いた鋳型DNAの構造の模式図である。 図2は、HSP90を結合させた磁性粒子と結合させていない磁性粒子に対するリボソームディスプレイ複合体の結合量を測定した結果を示すグラフである。 図3は、ポリペプチド鎖を修飾したリボソームディスプレイ複合体と、修飾していないリボソームディスプレイ複合体の、HSP90に対する親和性を測定した結果を示すグラフである。 図4は、リボソームディスプレイ複合体に各修飾試薬を反応させたもののマススペクトルチャートである。 図5は、リボソームディスプレイ複合体に各修飾試薬を反応させたもののマススペクトルチャートである。 図6は、pH7.4でリボソームディスプレイ複合体を環化反応に付した場合のマススペクトルチャートである。 図7は、pH7.7でリボソームディスプレイ複合体を環化反応に付した場合のマススペクトルチャートである。 図8は、pH8.0でリボソームディスプレイ複合体を環化反応に付した場合のマススペクトルチャートである。 図9は、配列番号12のアミノ酸配列を有するリボソームディスプレイ複合体をスベリン酸ジサクシンイミジルで環化した場合のマススペクトルチャートである。 図10は、配列番号13のアミノ酸配列を有するリボソームディスプレイ複合体をスベリン酸ジサクシンイミジルで環化した場合のマススペクトルチャートである。 図11は、配列番号14のアミノ酸配列を有するリボソームディスプレイ複合体をスベリン酸ジサクシンイミジルで環化した場合のマススペクトルチャートである。 図12は、配列番号13のアミノ酸配列を有するリボソームディスプレイ複合体をEZ−Link NHS−PEG4−Biotinで修飾した場合のマススペクトルチャートである。 図13は、未修飾リボソームディスプレイ複合体、または1,3−ジブロモ−2−プロパノンもしくはEZ−Link NHS−PEG4−Biotinで修飾したリボソームディスプレイ複合体の、HSP90に対する親和性を相対的に表すグラフである。 図14は、修飾試薬の添加の時期を変更して作製されたリボソームディスプレイ複合体の量を比較するためのグラフである。
以下、先ず、本発明に係るリボソームディスプレイ複合体の製造方法につき説明する。
(1) リボソームディスプレイ複合体の調製工程
本工程では、リボソームを利用した無細胞ペプチド合成系を用いてmRNA分子を翻訳し、未修飾ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含むリボソーム複合体を得る。
リボソームを利用した無細胞ペプチドの合成系は、細胞内で行われるRNA情報に基づくポリペプチドの合成に必要な化合物を用い、in vitroでmRNAからポリペプチドを合成するものである。具体的には、開始因子、伸張因子、アミノアシルtRNA合成酵素など、mRNAの翻訳やエネルギー再生などに必要なタンパク質、リボソーム、tRNA、アミノ酸、NTP、緩衝液などを含む反応系にmRNA分子を添加し、添加したmRNAに応じたポリペプチドを合成させる。無細胞ペプチド合成のためのキットは市販されているため、mRNA分子以外は市販キットを利用すればよい。
本工程で調製するリボソームディスプレイ複合体は、mRNA、その翻訳物であるポリペプチド鎖、およびリボソームを含む。以下、リボソームディスプレイを「RD」と略記する場合がある。
本発明に係るRD複合体に含まれるポリペプチド鎖は、次工程で修飾に利用するシステイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、およびトリプトファン残基からなる群より選択される1以上の反応性アミノ酸残基を含む。反応性アミノ酸残基の数としては、ポリペプチド鎖を環状化することにより安定性などがより一層向上することがあるため、2以上が好ましい。一方、反応点が多いとRD複合体に結合する修飾試薬の数や位置が安定せず、アミノ酸配列に由来するポリペプチド鎖の特性が比較し難くなる場合があるので、上記反応性アミノ酸残基の数としては10以下が好ましい。
上記反応性アミノ酸残基としては、システイン残基および/またはリジン残基が好ましい。また、例えばシステイン残基がジスルフィド結合によりポリペプチドの高次構造の安定化に関与しているような場合には、別途、上記反応性アミノ酸残基を導入することが好ましい。
反応性アミノ酸残基の位置は適宜選択すればよく、例えば、リボソームの出口トンネル(exit tunnel)から外に出ている部分であり、具体的にはN末端から2番目〜C末端から30番目の位置(N末端から2番目の位置およびC末端から30番目の位置を含む)とすることが好ましい。本発明ではRD複合体の状態でポリペプチド鎖を修飾するので、反応性アミノ酸残基が上記位置にあれば、修飾反応がリボソームにより立体的に阻害され難くなり得る。上記のC末端からの位置としては、50番目が好ましく、100番目がより好ましい。また反応性アミノ酸残基の位置をN末端側から数えた場合、その位置は、ポリペプチドの鎖長に応じて適宜設定できるが、例えば、N末端から2〜1000番目の位置であり、好ましくはN末端から2〜100番目の位置であり、より好ましくはN末端から2〜50番目の位置である。
また、ポリペプチドライブラリとして有用であるように、ポリペプチド鎖は、特定位置にランダム配列を含むものが好ましい。かかるランダム配列の中から、所定の目的に応じた有用なアミノ酸配列を特定し得る。ランダム配列の位置も適宜選択すればよいが、例えば、反応性アミノ酸残基の位置と同様に、N末端から2番目〜C末端から30番目の位置(N末端から2番目の位置およびC末端から30番目の位置を含む)とすることが好ましい。即ち、反応性アミノ酸残基は、ランダム配列内に含まれることが好ましい。従ってランダム配列の好ましい位置は、反応性アミノ酸残基の好ましい位置と同じ範囲から設定できる。ランダム配列のアミノ酸数も適宜調整すればよいが、例えば、1以上、30以下とすることができる。ランダム配列数の上限は特に制限されないが、10以下が好ましい。また、このようなランダム配列は、ポリペプチド鎖中、1つであってもよく、2つ以上であってもよい。1つのランダム配列が長くなるほど、またランダム配列の数が多くなるほど、ポリペプチドライブラリの多様性を高めることができる。
その他、ポリペプチド鎖は、目的に応じたアミノ酸配列を有していてもよい。例えば、FLAG(登録商標)配列やポリHis配列など、ポリペプチド鎖の精製のための配列や、プロテアーゼなどにより選択的に切断される配列、スペーサー配列などを挙げることができる。
mRNAは、少なくとも上記ポリペプチド鎖をコードする塩基配列を含む。その他、翻訳などに必要な配列を有していてもよい。当該mRNAは、同じRD複合体中のポリペプチドをコードするものであることから、ライブラリの中から特定のRD複合体が選択された場合、当該mRNAの塩基配列を解析することにより、有用なポリペプチドのアミノ酸配列を間接的に特定することが可能になる。
ポリペプチド鎖のアミノ酸残基数は特に制限されないが、例えば、100以上、5000以下とすることができる。当該アミノ酸残基数としては、150以上がより好ましく、200以上がよりさらに好ましく、また、800以下または600以下がより好ましく、500以下がよりさらに好ましい。
リボソームは、生体から精製されたものを用いることができる。例えば、大腸菌由来のリボソームを用いればよい。
細胞内におけるポリペプチド合成では、ポリペプチドが合成されると解離因子がmRNAの終止コドンに結合し、ポリペプチド鎖が遊離し、mRNAもリボソームから解離する。しかし、本工程ではポリペプチド鎖、mRNAおよびリボソームを含むRD複合体を調製することを目的とするので、ポリペプチド鎖が遊離しない処置をする必要がある。かかる処置としては、公知のものを用いることができる。例えば、mRNAから終止コドンを除いたり、mRNAの3’末端にアレスト配列と呼ばれる翻訳伸張停止配列を配置したり、無細胞ペプチド合成系に解離因子やリボソーム再生因子を添加しないことが挙げられる。
RD複合体の合成後、RD複合体の精製方法としては常法を用いればよい。例えば、ポリペプチド鎖にFLAG(登録商標)配列やポリHis配列が存在する場合には、これら配列に応じた公知の精製方法を適用することができる。
(2) ポリペプチド鎖の修飾工程
以上の様にして未修飾ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含むリボソーム複合体を製造した後、本工程では、その未修飾ポリペプチド鎖に含まれる側鎖反応性官能基と修飾試薬とを反応させることにより、未修飾ポリペプチド鎖を修飾する。未修飾ポリペプチド鎖を含むリボソーム複合体を製造してから修飾試薬と反応させると、RD複合体が維持されたまま(すなわちリボソームにおけるポリペプチドとmRNAの接着機能を阻害することなく)、極めて簡便な工程でポリペプチド鎖を化学修飾できる。
なお、リボソームはrRNAとタンパク質との複合体である巨大分子であるため、RD複合体に含まれる提示ポリペプチドに比べて多数の反応性アミノ酸残基を含む。しかし、RD複合体を作製した後に修飾試薬を作用させた場合でも、RD複合体に含まれる提示ポリペプチド鎖を修飾することが可能であり、かつRD複合体もその維持が可能である。
未修飾ポリペプチド鎖の修飾に用いられる修飾試薬としては、例えば、下記式(1)で表される化合物を用いることができる。
Figure 2017213158
上記式中、Aは、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基の側鎖と反応して結合を形成可能な基を表す。即ち、システイン残基のチオール基、リジン残基の側鎖アミノ基(−NH2)、又はヒスチジン残基およびリプトファン残基の側鎖アミノ基(>NH)と反応して結合を形成可能な基を表す。
具体的には、Aとしては、ハロゲン化アルキル基、活性化カルボニル基、不飽和炭化水素基、エポキシ基、スルホニル含有基、イソシアネート基、チオイソシアネート基、カルベン発生基、カルベン含有基、ジスルフィド結合含有基、或いはチオール基を挙げることができる。
ハロゲン化アルキル基におけるハロゲノ基としては、クロロ基、ブロモ基またはヨード基を挙げることができる。また、ハロゲン化アルキル基におけるアルキレン基としては、直鎖アルキレン基でも分岐鎖アルキレン基であってもよく、例えば、C1-20アルキレン基を挙げることができ、C1-10アルキレン基が好ましく、C1-6アルキレン基またはC1-4アルキレン基がより好ましく、C1-2アルキレン基がよりさらに好ましい。また、ハロゲン化アルキル基としては、ハロゲノ基が結合している炭素原子が、Bに含まれるカルボニル基または芳香族環に直結しているものが好ましい。ハロゲン化アルキル基は、チオール基と結合可能である他、アミノ基とも結合し得る。
活性化カルボニル基には、活性化エステル基、ホルミル基などが含まれる。活性化エステル基としては、例えば、スクシンイミド基などのイミドエステル基、4−ニトロフェノールエステル基、HOBtエステル基、HOAtエステル基、Oxymaエステル基などを挙げることができる。活性化カルボニル基は、例えばシステイン残基の側鎖チオールと結合可能である他、アミノ基とも結合し得る。またホルミル基は、例えばリジンの側鎖アミノ基に還元的アミノ化反応により結合可能である。
不飽和炭化水素基は、少なくとも1つの炭素−炭素二重結合または炭素−炭素三重結合を有する不飽和炭化水素基をいい、ビニル基、プロパルギル基などが含まれ、ビニルカルボニル基、プロパルギルカルボニル基、ビニルスルホニル基などが好ましい。不飽和炭化水素基は、例えば、マイケル付加や求核置換反応によりアミノ基やチオール基と結合させることができる。
スルホニル含有基としては、例えば、アルキルスルホニル基、アリールスルホニル基、スルホン酸エステル基(例えば、アルキルスルホニルオキシ基、アリールスルホニルオキシ基など)などを挙げることができ、いわゆる脱離基としてチオール基やアミノ基と反応可能である。アルキルスルホニル基としては、メタンスルホニル基、クロロメタンスルホニル基、トリフルオロメタンスルホニル基などを挙げることができ、アリールスルホニル基としては、例えば、ベンゼンスルホニル基、トルエンスルホニル基などを挙げることができる。また、スルホン酸エステル基としては、例えば、メタンスルホニルオキシ基、クロロメタンスルホニルオキシ基、トリフルオロメタンスルホニルオキシ基、ベンゼンスルホニルオキシ基、トルエンスルホニルオキシ基を挙げることができる。
カルベン発生基としては、例えば、ジアゾ含有基、ジアジリン構造含有基などが挙げられ、好ましくはカルボニルに隣接する炭素原子にジアゾ基が結合している基が挙げられる。ジアゾ基が脱離することで、カルベンが発生し、チオールと結合することができる。またカルベン含有基としては、種々のカルベン発生基からカルベンが生じた後の基が挙げられる。
ジスルフィド結合含有基とチオール基は、システイン残基の側鎖チオール基とジスルフィド結合を形成することができる。
エポキシ基、イソシアネート基およびチオイソシアネート基は、チオール基とアミノ基の両方と反応可能である。
Aの数、即ちaとしては2以上の整数が好ましい。Aが2以上であり且つ側鎖反応性官能基が2以上あれば、ポリペプチド鎖を環化することが可能になる。環化されたポリペプチド鎖は、安定性などがより一層向上する可能性がある。
上記式中、Bは連結基又は単結合を表す。連結基であるBとしては、ヘテロ原子含有極性基、脂肪族炭化水素基および芳香族環を挙げることができる。
ヘテロ原子含有極性基としては、−O−、−S−、−NR1−(式中、R1は水素原子、炭化水素基(好ましくはC1-6アルキル基)、又は連結基末端の結合手を表す。なおRが結合手の場合、連結基の価数は3になる(以下、同様))、−CO−、−COO−、−CONR2−(式中、R2は水素原子、炭化水素基(好ましくはC1-6アルキル基)、又は連結基末端の結合手を表す)、−C(=N−R3)−(式中、R3は、置換基を有していてもよい鎖状または環状の脂肪族炭化水素基、置換基を有していてもよい芳香族環基またはヘテロ原子含有基、および、何らかの機能を付加するための機能性基からなる群から選ばれる少なくとも1種以上を含む基、水素原子、または連結基末端の結合手を表す)、−N=N−、および−SO2−を挙げることができる。
脂肪族炭化水素基としては、直鎖アルキレン基、分岐鎖アルキレン基および環状鎖アルキレン基のいずれであってもよく、例えば、C1-20アルキレン基を挙げることができ、C1-10アルキレン基が好ましく、C1-6アルキレン基またはC1-4アルキレン基がより好ましく、C2-4アルキレン基がよりさらに好ましい。当該脂肪族炭化水素基の炭素原子間または末端には、上記ヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく、また、置換基を有していてもよい。置換基としては、ハロゲノ基、アリール基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、又はヒドロキシ基を挙げることができる。アリール基としては、C6-10アリール基が好ましく、フェニル基またはナフチル基がより好ましく、フェニル基が好ましい。置換基数は、置換可能である限り特に制限されないが、例えば1以上、4以下とすることができ、3以下または2以下が好ましく、1が好ましい。置換基数が2以上である場合、それら置換基は互いに同一であっても異なっていてもよい。
芳香族環基としては、フェニル基、インデニル基、ナフチル基、ビフェニル基などのC6-10アリール基が好ましく、フェニル基またはナフチル基がより好ましく、フェニル基が好ましい。芳香族環基は置換基を有していてもよく、置換基としては、ハロゲノ基、アルキル基、好ましくはC1-6アルキル基、アラルキル基、好ましくはベンジル基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、好ましくは(C1-6アルコキシ)カルボニル基、ヒドロキシアルキル基、好ましくはヒドロキシ−C1-6アルキル基、又はカルボキシアルキル基、好ましくはカルボキシ−C1-6アルキル基を挙げることができる。置換基数は、置換可能である限り特に制限されないが、例えば1以上、4以下とすることができ、3以下または2以下が好ましく、1が好ましい。置換基数が2以上である場合、それら置換基は互いに同一であっても異なっていてもよい。
前記連結基Bは、好ましくは−B1−単位、−B2−単位、−B2−B1−単位、又は−B2−B1−B3−単位を有する。B1は、炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、B2及びB3は、それぞれ独立してヘテロ原子含有極性基であり、B1又はB2は前記Aと結合するものである。ここで、ヘテロ原子含有極性基及び置換基は、前記と同じ意味を有する。
ヘテロ原子含有基としては、−O−、−S−、−NR3−(式中、R3は水素原子、炭化水素基(好ましくはC1-6アルキル基)、又は連結基末端の結合手を表す。なおRが結合手の場合、連結基の価数は3になる(以下、同様))、−CO−、−COO−、−CONR4−(式中、R4は水素原子、炭化水素基(好ましくはC1-6アルキル基)、又は連結基末端の結合手を表す)、−N=N−、および−SO2−を挙げることができる。
上記式中、Cは、ポリペプチドに何らかの機能を付加するための機能性基を表す。当該機能性基は、使用目的などに応じて適宜選択すればよく、特に制限されないが、例えば、ポリペプチドを環状化するリンカー化合物の他、蛍光物質などの発光物質、色素、放射性物質、薬剤、毒素、核酸、アミノ酸、ペプチド、糖類、脂質、および各種ポリマー等、並びにこれらの組合せが挙げられる。蛍光物質としては、例えば、フルオレセイン類、ローダミン類、クマリン類、ピレン類、およびシアニン類の蛍光色素を挙げることができる。
具体的な修飾試薬としては、例えば、下記式で表されるいずれかのものを挙げることができる。
Figure 2017213158
(式中、A、B1、B2、B3は前記に同じ。nは1以上の整数を表す。B1、B2、B3のいずれか一つ以上には、前記Cの1つ以上が結合していてもよい)
なお前記式(1a)〜(1f)で表される化合物は、機能性基C(蛍光色素、標識単位のいずれかを含む基)を有し、機能性基Cは、B1、B2、B3のいずれかに結合している。また、水溶性向上のため、スルホン酸基(−SO2−OH)やスルホン酸塩基(−SO2−O-+)などの水溶性置換基を有していてもよい。M+としては、ナトリウムイオンやカリウムイオンなどのアルカリ金属イオンを挙げることができる。
式(1a)の具体例には、例えば、Aがハロゲン化アルキル基、活性化カルボニル基(特に活性化エステル基)、又はエポキシ基であり、B1が脂肪族炭化水素基、又は芳香族環であり、nが2又は3である化合物が含まれ、特に下記式で表される化合物が含まれる。
Figure 2017213158
式(1b)の具体例には、Aがハロゲン化アルキル基であり、B2が酸素原子含有極性基(特に−CO−)、又は窒素原子含有極性基(特に−C(=N−R5)−(式中、R5は、置換基を有していてもよい鎖状または環状の脂肪族炭化水素基、置換基を有していてもよい芳香族環基またはヘテロ原子含有基、および、何らかの機能を付加するための機能性基からなる群から選ばれる少なくとも1種以上を含む基、水素原子、または連結基末端の結合手を表す)であり、nが2である化合物が含まれ、特に下記式で表される化合物が含まれる。
Figure 2017213158
式(1c)の具体例には、Aがハロゲン化アルキル基、又は活性化カルボニル基(特に活性化エステル基)であり、B1が脂肪族炭化水素基、炭素原子間に酸素原子が挿入されている脂肪族炭化水素基、又は芳香族環であり、B2が酸素原子、窒素原子などを含有する極性基(特に−COO−、−CONH−)であり、nが1、2又は3である化合物が含まれ、特に下記式で表される化合物が含まれる。
Figure 2017213158
式(1d)の具体例には、Aがハロゲン化アルキル基であり、B1が脂肪族炭化水素基であり、B2が酸素原子及び窒素原子を含有する極性基(特に−CONH−)であり、nが3である化合物が含まれ、特に下記式で表される化合物が含まれる。
Figure 2017213158
式(1e)の具体例には、Aがハロゲン化アルキル基であり、B1が芳香族環であり、B2、B3が酸素原子、窒素原子などを含有する極性基(特に−COO−、−N=N−など)であり、nが2である化合物が含まれ、特に下記式であらわされる化合物が含まれる。
Figure 2017213158
RD複合体中のポリペプチド鎖を修飾するための条件は、修飾すべき側鎖反応性官能基の種類と使用する修飾試薬に応じて適宜設定することができる。例えば、システイン残基の側鎖チオール基を修飾すべき場合には、還元剤によりジスルフィド結合を切断してチオール基とした上で、修飾試薬を反応させればよい。還元剤としては、例えば、トリス(2−カルボキシエチル)ホスフィンナトリウム塩、ジチオトレイトール、β−メルカプトエタノールなどが挙げられる。
また、側鎖アミノ基に修飾試薬のハロゲン化アルキル基やエポキシ基などを反応させる場合には、塩基を添加してもよい。塩基としては、例えば、炭酸水素ナトリウムなどの炭酸水素塩;炭酸ナトリウムなどの炭酸塩;水酸化ナトリウムなどの金属水酸化物;ピリジンやトリエチルアミンなどの有機塩基などが例示できる。
修飾試薬を反応させる時の反応溶媒としては、通常、水が使用される。また反応温度は、例えば、0〜30℃程度、好ましくは1〜20℃程度、より好ましくは1〜10℃程度である。
修飾試薬の反応時のpHは、使用する修飾試薬などに応じて適宜調整すればよく特に制限されないが、例えば、4.0〜10.0程度の範囲から選択でき、好ましくは5.0〜9.0程度、より好ましくは6.0〜8.0程度である。より好ましい範囲は修飾試薬に応じて異なるが、ポリペプチド鎖当たりの修飾試薬導入数が2以上になる事を抑制する観点から、pHを7.0〜7.5に調整してもよい。
修飾試薬の量は、試薬の種類に応じて適宜設定でき、例えば、未修飾ポリペプチド鎖を含むリボソーム複合体1モルに対して、例えば、1,000モル以上、好ましくは10,000モル以上であり、より好ましくは60,000モル以上であり、よりさらに好ましくは100,000モル以上である。その上限は特に限定されないが、例えば、100,000,000モル以下、好ましくは50,000,000モル以下、より好ましくは20,000,000モル以下、よりさらに好ましくは10,000,000モル以下である。
ポリペプチド鎖を修飾した後、RD複合体は常法により精製することができる。例えば、ポリペプチド鎖にFLAG(登録商標)配列やポリHis配列などのタグ配列が存在する場合には、これら配列に応じた公知の精製方法を適用することができる。なお、タグ配列に特異的な抗体を結合させた担体とRD複合体とは、修飾試薬を反応させる前からアフィニティ結合させていてもよい。このアフィニティ結合は、修飾子薬の反応の間に切断されず、修飾試薬の反応後、このアフィニティ結合を利用してRD複合体を精製してもよい。
上記本発明方法で製造されるRD複合体は、ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含み、当該ポリペプチド鎖中のシステイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、及びトリプトファン残基からなる群より選択される1以上の反応性アミノ酸残基が使用した修飾試薬により修飾されており、当該mRNA分子は、上記ポリペプチド鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むものである。このRD複合体は、前記式(1)、(1a)〜(1e)において、基Aがその反応結果である基Ax(Axは、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基の側鎖と反応して形成される結合基)に置き換わった構造を有している点で、非修飾のRD複合体と区別される。
本願は、2016年6月7日に出願された日本国特許出願第2016−113935号に基づく優先権の利益を主張するものである。2016年6月7日に出願された日本国特許出願第2016−113935号の明細書の全内容が、本願に参考のため援用される。
以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はもとより下記実施例によって制限を受けるものではなく、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも勿論可能であり、それらはいずれも本発明の技術的範囲に包含される。
実施例1
(1)RNAライブラリの作製
本(1)項では、NNK法を用い、(NNK)10[式中、NはA、U、GまたはCを示し、KはGまたはUを示し、NNKはすべてのコドンに対応する]の配列を含む配列を有するRNAを1012以上含むRNAライブラリを作製する方法について説明する。
このRNAライブラリ作製の為に、図1の構造を有する鋳型DNA(塩基配列:配列番号1,アミノ酸配列:配列番号2)を用いた。具体的には、表1に示す組成を有する反応液を用い、表2のPCRサイクルでプラスミドを鋳型DNAとして5’フラグメントを調製した。表1中、5FFnew_130816はフォワードプライマーであり、Ma3frag_R0502はリバースプライマーである。
Figure 2017213158
Figure 2017213158
次に、表3に示す組成を有する反応液を用い、表4のPCRサイクルで鋳型DNAの3’フラグメントを調製した。表3中、Ma10NNK_F0502はフォワードプライマーであり、3F−Rはリバースプライマーである。
Figure 2017213158
Figure 2017213158
次に、表5に示す組成を有する反応液を用い、表6のPCRサイクルでoverlapping PCRを行い、上記5’フラグメントと3’フラグメントを連結し、全長を増幅して鋳型DNAを得た。なお、表5中、X〜Zは、1×1012の5’フラグメントと3’フラグメントを用い、反応液にH2Oを加えて総量を60μLに調整したことを示す。
Figure 2017213158
Figure 2017213158
得られた上記鋳型DNAを鋳型とし、表7に示す組成を有する反応液を用い、37℃で5時間反応させることにより、配列番号3の塩基配列を有する1012以上のmRNAを含むRNAライブラリを得た。このライブラリに含まれるmRNAは、図1に示す様に5’側から順にFLAG(登録商標)サイト、His6サイト、ランダム配列、TEVプロテアーゼサイト、スペーサー配列を有しており、終止コドンを有さない。
Figure 2017213158
(2)リボソームディスプレイ複合体ライブラリの作製
再構成型無細胞タンパク質合成キット(ジーンフロンティア社製「PURE frex(登録商標)」)を用い、上記RNAライブラリからリボソームディスプレイ(RD)複合体を調製した。別途、ストレプトアビジン−磁性粒子(「NanoLinkTM Streptavidin Magnetic Beads」Solulink社製)5μLを、150μLに希釈した。上記RD複合体反応液と、抗FLAG(登録商標) M2抗体結合アガロースビーズ(Sigma−Aldrich社製,20μL)を混合し、4℃で60分間攪拌した。ペプチド部分にFLAG配列を有するRD複合体が選択的に結合した抗FLAG M2抗体結合アガロースビーズを回収した。
(3)ペプチドの環化反応
上記で回収したアガロースビーズを80μLに希釈した後、還元剤として10mMトリス(2−カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(4μL)(終濃度0.5mM)と、修飾試薬として40mM 1,3−ジブロモ−2−プロパノン(4μL)(終濃度2mM)を添加し、4℃で3時間環化反応させた。なお、このとき還元剤の添加は必須ではない。環化反応後、FLAGペプチドを添加することにより、RD複合体をアガロースビーズから分離した。
(4)HSP90親和性ペプチドの選択
別途、上記ストレプトアビジン−磁性粒子希釈液(5μL)に、ヒートショックタンパク質であるHSP90にビオチンを結合させたものをモル比が1:1となるように混合し、4℃で攪拌することで、磁性粒子にHSP90を結合させた。また、比較のために、HSP90を結合させない以外は同様にして磁性粒子懸濁液を調製した。
上記(3)で得たペプチド環化RD複合体溶液と磁性粒子懸濁液を混合し、4℃で1時間攪拌した。磁気スタンドを用いて磁性粒子を回収し、0.05MのEDTAを加えることにより磁性粒子上のHSP90に結合しているRD複合体からRNAを解離させた。磁気スタンドを用いて磁性粒子を除去した後、RNA濃縮・精製キット(QIAGEN社製「RNeasy MinElute Cleanup Kit」)を用いてRNAを精製した。次いで、表8に示す組成で65℃にて5分間反応させた後、当該反応液につき、表9に示す組成で50℃にて1時間、さらに70℃で15分間反応させることにより逆転写した。
Figure 2017213158
Figure 2017213158
上記逆転写反応で得られたcDNAをRT−PCRに付して、ランダム配列を含む配列を増幅した。具体的には、表10に示す組成の反応液を用い、表11のPCRサイクルでPCRを行った。
Figure 2017213158
Figure 2017213158
別途、上記(1)において、PCRサイクル中68℃での加熱時間を15秒間に変更した以外は同様にして5’フラグメント(配列番号6)を調製し、また、フォワードプライマーとして3fragF_140407を用い且つPCRサイクル中68℃での加熱時間を25秒間に変更した以外は同様にして3’フラグメント(配列番号7)を調製した。次いで、得られた5’フラグメントと3’フラグメントに加えて上記のランダム配列を含むcDNA溶液を用い、且つポリメラーゼの使用量を0.6μLに変更した以外は同様にして、overlapping PCRにより各フラグメントを連結し、得られたDNAを増幅させた。
得られたDNAを用い、前記(1)と同様にしてmRNAを転写し、前記(2)「リボソームディスプレイ複合体ライブラリの作製」工程に戻し、以下、上記と同様にしてHSP90に親和性を有するRD複合体を回収した。HSP90に結合するRD複合体に含まれるmRNA量が増加しなくなることを確認できるまで、以上の操作を繰り返した。以下、1回の繰り返しを「ラウンド」と称する。ラウンド1〜3では、RD複合体と使用するHSP90のモル比をRD複合体:HSP90=3:1に調整し、ラウンド4〜5では当該モル比を10:1に調整した。結果を、HSP90と接触させる前のmRNA量とHSP90を用いない場合のmRNA量と共に図2に示す。図2に示す結果のとおり、HSP90に結合するRD複合体はラウンド1に比べてラウンド2に比べて増加していたが、ラウンド2以降は増加が認められなくなっており、HSP90に対する親和性を有するRD複合体の濃縮は完了したと考えられた。
(5)HSP90親和性ペプチドの同定
配列の濃縮が確認されたラウンドの全長鎖DNAを鋳型として、Taq polymeraseを用いてPCRを行うことで、末端にAを付加した。この突出末端とクローニングキット(Promega社製「pGEM T Easy Cloning Kit」)を用いて、付属のプラスミドDNAにライゲーションした。得られたプラスミドを用いて、JM109 competent cellを形質転換し、培養した。培養により形成されたコロニーから抽出した各クローンのプラスミドを用いて、上記全長鎖DNAのアミノ酸配列を解析した。得られたアミノ酸配列のうち、ランダム部分(NNK部分)の配列を表12に示す。
Figure 2017213158
表12のとおり、本発明に係るスクリーニング方法により1012以上のmRNAを含むライブラリからHSP90に親和性を有するペプチドをコードするものを16種類まで選択することができ、また、選択されたペプチドはアミノ酸配列が類似していることが明らかとなった。
(6)獲得した配列の結合能確認
上記(5)にて獲得した各クローンのHSP90に対する親和性の確認を行った。具体的には、上記(5)で合成した各クローンの全長DNAを鋳型とし、上記(1)と同様にしてRNAを合成し、上記(2)と同様にリボソームディスプレイ複合体を作製した。また、その一部のポリペプチドを、上記(3)と同様にして環化した。得られた各リボソームディスプレイ複合体のHSP90に対する親和性を、上記(4)と同様にして調べた。回収した複合体の量を定量することで、各クローンのHSP90に対する親和性を求めた。結果を図3に示す。図3中のアルファベットは、上記表12中の配列記号に相当する。
図3に示す結果のとおり、HSP90に対する親和性を調べたリボソームディスプレイ複合体の内3種のポリペプチドがHSP90に親和性を示し、そのうち2種類については、修飾試薬が連結された環状態において10倍以上強く結合することが示唆された。これらの結果から、RD複合体の機能を維持したまま、RD複合体に提示されたポリペプチドに修飾試薬を連結することができたことを示していると考えている。また、修飾試薬の有無により親和性が6倍程度のクローンが取得できた。即ち、ポリペプチドを環化することによりHSP90に対する親和性が増したことが示唆されており、修飾試薬を連結することの有用性を示している。
実施例2:ペプチドの環化反応
再構成型無細胞タンパク質合成キット(ジーンフロンティア社製「PURE frex(登録商標)」)を用い、反応液50μLに、FLAG配列、His6配列およびTEVプロテアーゼサイトをコードする塩基配列を有するRNA(配列番号8)2.5×1013分子を混合し、37℃で35分間反応させることによりRD複合体を作製し、反応液に抗FLAG(登録商標) M2抗体結合アガロースビーズ(Sigma−Aldrich社製,2μL)を加えてRD複合体を結合させた。さらに、還元剤としてトリス(2−カルボキシエチル)ナトリウム塩(pH7,終濃度0.5mM)と、図4に示す各修飾試薬を終濃度2mMで加え、4℃で3時間攪拌することによりビーズ上でRD複合体中のペプチドを環化した。反応後、FLAGペプチド(配列:DYKDDDDK,5mg)を加えることによりRD複合体をビーズから遊離させた。反応液からビーズを分離除去し、Mg2+を含まないリン酸緩衝生理食塩水(pH7.5,100μL)を加えて複合体を解離させた後、His−tagビーズでペプチド鎖を精製した。精製したポリペプチドをTEVプロテアーゼで切断した後、環状化部位を含みN末端がホルミル化されている断片ペプチド(配列番号9)の分子量をMALDI−TOFMSで測定した。修飾試薬の化学構造と得られたマススペクトルチャートを図4に示す。図4中、(a)は修飾試薬を添加しない反応液のマススペクトルチャートであり、(e)はRNAを用いない以外は同様に反応させた反応液のマススペクトルチャートでありバックグラウンドのシグナルを示すものである。また、白矢印は未環化ペプチド鎖のピークを示し、黒矢印は環化ペプチド鎖のピークを示す。
図4に示す結果のとおり、修飾試薬として1,3−ジブロモ−2−プロパノンを用いた場合(b)と1,3−ビス(ブロモメチル)ベンゼンを用いた場合(c)では、環化反応が進行していることが分かった。修飾試薬として1,5−ヘキサジン ジエポキシドを用いた場合(d)、反応効率は比較的低いものの環状化合物の確認はできることから、エポキシドも環化試薬として使用できると考えられる。
なお、各マススペクトルチャートでは、使用した修飾試薬1分子分の分子量が増加したピークが明確に認められている一方で、2以上の分子分の分子量が増加したピークは明確に認められない。かかる結果より、修飾試薬は1分子のみがポリペプチド鎖に結合したものと考えられる。
実施例3:ペプチドの環化反応
RNAとして配列番号10の塩基配列を有するものを用い、修飾試薬として図5に示すものを用いた以外は上記実施例2と同様にして、環化反応を行った。結果を図5に示す。
図5のとおり、マレイミド型修飾試薬(図5(b))とハロアセチルアミノ型修飾試薬化合物(図5(c)、(d))ともに、環化試薬として使用できることが明らかとなった。
本実験でも、各マススペクトルチャートでは、使用した修飾試薬1分子分の分子量が増加したピークが明確に認められている。それに加えて、その他のピークも認められるが、2以上の修飾試薬が結合したRD複合体の計算上の分子量とは異なっていることから、プロテアーゼ処理で除去しきれなかったリボソーマルタンパク質に由来するものであると考えられる。かかる結果より、修飾試薬は1分子のみがポリペプチド鎖に結合したものと考えられる。
実施例4:ペプチドの環化反応
RNAとして配列番号11塩基配列を有するものを用い、修飾試薬としてスベリン酸ジサクシンイミジルを用い、反応液のpHを7.4、7.7または8.0に変更した以外は上記実施例2と同様にして、環化反応を行った。反応液のpHが7.4の場合の結果を図6に、pHが7.7の場合の結果を図7に、pHが8.0の場合の結果を図8に示す。
図6〜8のとおり、いずれのpHでも反応が進行していた。また、pHが高いほど修飾試薬がさらに1分子(合計で2分子)付加した化合物のピークの強度が強くなることから、修飾試薬がヒスチジンやトリプトファンといった塩基性アミノ酸にも付加していることが示唆された。
但し、3分子以上の修飾試薬が結合したRD複合体のピークは明確に認められないことから、本実験でも、1分子または2分子の修飾試薬がポリペプチド鎖に結合していると考えられる。
実施例5:ペプチドの環化反応
配列番号12〜14のアミノ酸配列をコードするRNAと修飾試薬としてスベリン酸ジサクシンイミジルを用いた以外は上記実施例2と同様にして、環化反応を行った。配列番号12のアミノ酸配列の結果を図9に、配列番号13のアミノ酸配列の結果を図10に、配列番号14のアミノ酸配列の結果を図11に示す。
図9〜11のとおり、2つの活性カルボキシ基を有するジスクシンイミジル化合物は、2つのリジン側鎖アミノ基と反応してペプチドを環化することが示唆され、さらに、ヒスチジン側鎖の第二級アミノ基とも反応していることが示唆された。
また、本実験でも反応後のRD複合体の主なピークは1分子または2分子の修飾試薬が結合したものであることから、1分子または2分子の修飾試薬がポリペプチド鎖に結合していると考えられる。
実施例6:ペプチドのビオチン化反応
配列番号13のペプチド配列をコードするRNAを用い、修飾試薬としてEZ−Link NHS−PEG4−Biotin(Thermo Fisher社製)を用いた以外は上記実施例2と同様にして、ペプチドへの修飾を行った。図12に示すとおり、ビオチン化されたことを示唆するシグナルを得た。このペプチド配列は2つのリジンを含むため、1つビオチン化されたペプチドに加え(黒矢印)、2つビオチンが導入されたペプチドも検出できた(斜線矢印)。このように、本実験でも、1分子または2分子の修飾試薬がポリペプチド鎖に結合していると考えられる。
実施例7:ペプチドの環化反応およびビオチン化反応
配列番号12のペプチド配列をコードするRNAを用い、修飾試薬として1,3−ジブロモ−2−プロパノンまたはEZ−Link NHS−PEG4−Biotin(Thermo Fisher社製)を用いた以外は上記実施例2と同様にして、ビオチン修飾されたRD複合体を作製した。ビオチン化された複合体に上記ストレプトアビジン−磁性粒子希釈液(5μL)を加え、磁気スタンドを用いて磁性粒子を回収した。回収した磁性粒子に0.05MのEDTAを加えることにより、磁性粒子上のHSP90に結合しているRD複合体からRNAを解離させた。磁気スタンドを用いて磁性粒子を除去した後、RNA濃縮・精製キット(QIAGEN社製「RNeasy MinElute Cleanup Kit」)によりRNAを精製した。各修飾試薬で修飾した場合のRNA回収量を定量RT−PCRで測定し、修飾試薬なしで行った条件での回収量をバックグラウンドとして、相対的に比較した。結果を図13に示す。図13に示す結果の通り、RD複合体に対してNHS−PEG4−Biotinでのビオチン化が進行し、RNAが回収できたことを示唆する結果を得た。
実施例8:修飾条件の比較
(1)条件1
再構成型無細胞タンパク質合成キット(ジーンフロンティア社製「PURE frex(登録商標)」)を用い、反応液50μLに含まれるリボソームに、還元剤としてトリス(2−カルボキシエチル)ナトリウム塩(pH7,終濃度0.5mM)と、修飾試薬として1,3−ジブロモ−2−プロパノンを終濃度2mMで加え、4℃で3時間反応した。次いで、上記再構成型無細胞タンパク質合成キットのリボソーム以外の因子(反応液50μLに必要量)と、RNA(配列番号8)2.5×1012分子を加えて混合し、37℃で35分間反応させることによりRD複合体の調製を行った。この反応液に抗FLAG(登録商標) M2抗体結合アガロースビーズ(Sigma−Aldrich社製,2μL)を加えて、RD複合体を結合させた。ここでは何も加えずに、4℃で3時間攪拌した。攪拌後、FLAGペプチド(配列:DYKDDDDK,5mg)を加えることによりRD複合体をビーズから遊離させた。得られたRD複合体の量を、定量RT−PCRで求めた。結果を図14に示す。
(2)条件2
条件2では、上記実施例と同様に、RD複合体を作製した後に修飾試薬を作用させた。具体的には、上記再構成型無細胞タンパク質合成キットを用い、反応液50μLに含まれるリボソームに対して、修飾試薬を加えずに4℃で3時間インキュベーションした。次いで、条件1と同様の操作によりRD複合体を調製し、この反応液に抗FLAG(登録商標) M2抗体結合アガロースビーズ(Sigma−Aldrich社製,2μL)を加えてRD複合体を結合させた。さらに、還元剤としてトリス(2−カルボキシエチル)ナトリウム塩(pH7,終濃度0.5mM)と、修飾試薬として1,3−ジブロモ−2−プロパノンを終濃度2mMで加え、4℃で3時間攪拌することによりビーズ上でRD複合体の修飾を行った。なお、添加した修飾試薬(1,3−ジブロモ−2−プロパノン)の量は、RD複合体1モルに対して1,000,000倍モルとなる。反応後、FLAGペプチド(配列:DYKDDDDK,5mg)を加えることによりRD複合体をビーズから遊離させた。得られたRD複合体の量を、定量RT−PCRで求めた。結果を図14に示す。
図14に示す結果のとおり、リボソームに修飾試薬を作用させてからRD複合体を作製しようとしても、RD複合体は得られなかった。それに対して、RD複合体に対して修飾試薬を作用させても、得られたRD複合体は分解などをおこさないことが明らかとなった。また、上記実施例の結果より、修飾試薬は少なくともRD複合体中のペプチドに反応していると考えられる。

Claims (24)

  1. ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含むリボソームディスプレイ複合体を製造するための方法であって、
    上記ポリペプチド鎖は、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、及びトリプトファン残基からなる群より選択される1以上の反応性アミノ酸残基を含み、当該反応性アミノ酸残基の側鎖反応性官能基が修飾されているものであり、
    上記mRNA分子は、上記ポリペプチド鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含み、
    上記リボソームを利用した無細胞ペプチド合成系を用いて上記mRNA分子を翻訳し、未修飾ポリペプチド鎖、上記mRNA分子および上記リボソームを含むリボソーム複合体を得る工程、および、
    上記未修飾ポリペプチド鎖に含まれる上記側鎖反応性官能基と修飾試薬とを反応させることにより、上記未修飾ポリペプチド鎖を修飾する工程を含むことを特徴とする方法。
  2. 前記修飾試薬が、下記式(1)で表される化合物である請求項1に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
    Figure 2017213158

    (式中、Aは、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基の側鎖と反応して結合を形成可能な基を表し、Bは連結基又は単結合を表し、Cは機能性基を表す。aは1以上の整数を表し、cは0又は1以上の整数を表し、aが2以上の整数を表す場合、複数のAは互いに同一であっても異なっていてもよい)
  3. 前記Aが、ハロゲン化アルキル基、活性化カルボニル基、不飽和炭化水素基、エポキシ基、スルホニル含有基、イソシアネート基、チオイソシアネート基、カルベン発生基、カルベン含有基、ジスルフィド結合含有基、或いはチオール基である請求項2に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  4. 前記連結基Bが、ヘテロ原子含有極性基、炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
    前記ヘテロ原子含有極性基が、−O−、−S−、−NR1−(式中、R1は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−CO−、−COO−、−CONR2−(式中、R2は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−N=N−、又は−SO2−であり、
    前記脂肪族炭化水素基の置換基が、ハロゲノ基、アリール基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、又はヒドロキシ基であり、
    前記芳香族環の置換基がハロゲノ基、アルキル基、アラルキル基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、ヒドロキシアルキル基、又はカルボキシアルキル基である請求項2または3に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  5. 前記連結基Bが、−B1−単位、−B2−単位、−B2−B1−単位、又は−B2−B1−B3−単位を有し、
    B1が炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
    B2及びB3がそれぞれ独立してヘテロ原子含有極性基であり、
    B1又はB2が前記Aと結合しており、
    ヘテロ原子含有極性基及び置換基が前記と同じ意味である請求項4に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  6. 前記修飾試薬が、下記式
    Figure 2017213158

    (式中、A、B1、B2、B3は前記に同じ。nは1以上の整数を表す。B1、B2、B3のいずれか一つ以上には、前記Cの1つ以上が結合していてもよい)
    のいずれかで表される請求項5に記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  7. 前記Aがハロゲン化アルキルであるとき、このハロゲノ基が結合する炭素原子が、カルボニル基のα位の炭素原子、又は芳香族環に直結する炭素原子である請求項2〜6のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  8. 前記ポリペプチド鎖が、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基からなる群より選択される2以上の反応性アミノ酸残基を含み、
    前記式(1)の修飾試薬でaが2以上であり、
    未修飾ポリペプチド鎖に含まれる側鎖反応性官能基と修飾試薬とを反応させる前記工程で、ポリペプチド鎖と修飾試薬の間に環を形成する請求項2〜7のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  9. 前記ポリペプチド鎖が100〜5000アミノ酸残基からなる請求項1〜8のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  10. 前記反応性アミノ酸残基を、前記ポリペプチド鎖のN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に有する請求項1〜9のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  11. 前記ポリペプチド鎖がN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に1〜30アミノ酸残基のランダム配列を含む請求項1〜10のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  12. 前記リボソームが、大腸菌由来のリボソームである請求項1〜11のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体の製造方法。
  13. ポリペプチド鎖、mRNA分子およびリボソームを含み、
    上記ポリペプチド鎖は、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、及びトリプトファン残基からなる群より選択される1以上の反応性アミノ酸残基を含み、且つ、当該反応性アミノ酸残基の側鎖反応性官能基が修飾されているものであり、
    上記mRNA分子は、上記ポリペプチド鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むものであることを特徴とするリボソームディスプレイ複合体。
  14. 前記側鎖反応性官能基の修飾構造が、下記式(2)で表される化学構造である請求項13に記載のリボソームディスプレイ複合体。
    Figure 2017213158

    (式中、Axは、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基又はトリプトファン残基の側鎖と反応して形成される結合基を表し、Bは連結基又は単結合を表し、Cは機能性基を表す。aは1以上の整数を表し、cは0又は1以上の整数を表し、aが2以上の整数を表す場合、複数のAxは互いに同一であっても異なっていてもよい)
  15. 前記Axが、ハロゲン化アルキル基、活性化カルボニル基、不飽和炭化水素基、エポキシ基、スルホニル含有基、イソシアネート基、チオイソシアネート基、カルベン発生基、カルベン含有基、ジスルフィド結合含有基、或いはチオール基と、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基又はトリプトファン残基の側鎖とが形成する化学結合である請求項14に記載のリボソームディスプレイ複合体。
  16. 前記連結基Bが、ヘテロ原子含有極性基、炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
    前記ヘテロ原子含有極性基が、−O−、−S−、−NR1−(式中、R1は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−CO−、−COO−、−CONR2−(式中、R2は水素原子、炭化水素基、又は連結基末端の結合手を表す)、−N=N−、又は−SO2−であり、
    前記脂肪族炭化水素基の置換基が、ハロゲノ基、アリール基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、又はヒドロキシ基であり、
    前記芳香族環の置換基がハロゲノ基、アルキル基、アラルキル基、カルボキシ基、アルコキシカルボニル基、ヒドロキシアルキル基、又はカルボキシアルキル基である請求項15に記載のリボソームディスプレイ複合体。
  17. 前記連結基Bが、−B1−単位、−B2−単位、−B2−B1−単位、又は−B2−B1−B3−単位を有し、
    B1が炭素原子間にヘテロ原子含有極性基が挿入されていてもよく置換基を有していてもよい鎖状又は環状の脂肪族炭化水素基、及び置換基を有していてもよい芳香族環から選ばれる1種以上を単独で又は組み合わせて有する基であり、
    B2及びB3がそれぞれ独立してヘテロ原子含有極性基であり、
    B1又はB2が前記Axと結合しており、 ヘテロ原子含有極性基及び置換基が前記と同じ意味である請求項16に記載のリボソームディスプレイ複合体。
  18. 前記修飾構造が、下記式
    Figure 2017213158

    (式中、Ax、B1、B2、B3は前記に同じ。nは1以上の整数を表す。B1、B2、B3のいずれか一つ以上には、前記Cの1つ以上が結合していてもよい)
    で表される請求項17に記載のリボソームディスプレイ複合体。
  19. 前記Axがハロゲン化アルキルと、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、又はトリプトファン残基の側鎖とが形成する化学結合であるとき、このハロゲノ基が結合する炭素原子が、カルボニル基のα位の炭素原子、又は芳香族環に直結する炭素原子である請求項14〜18のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
  20. 前記ポリペプチド鎖が、システイン残基、リジン残基、ヒスチジン残基、およびトリプトファン残基からなる群より選択される2以上の反応性アミノ酸残基を含み、
    前記式(2)の修飾構造でaが2以上であり、
    ポリペプチド鎖と式(2)の修飾構造とで環が形成されている請求項14〜19のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
  21. 前記ポリペプチド鎖が100〜5000アミノ酸残基からなる請求項13〜20のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
  22. 前記反応性アミノ酸残基を、前記ポリペプチド鎖のN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に有する請求項13〜21のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
  23. 前記ポリペプチド鎖がN末端から2番目〜C末端から30番目の位置に1〜30アミノ酸残基のランダム配列を含む請求項13〜22のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
  24. 前記リボソームが、大腸菌由来のリボソームである請求項13〜23のいずれかに記載のリボソームディスプレイ複合体。
JP2018521744A 2016-06-07 2017-06-06 リボソームディスプレイ複合体およびその製造方法 Active JP7093300B2 (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2016113935 2016-06-07
JP2016113935 2016-06-07
PCT/JP2017/021038 WO2017213158A1 (ja) 2016-06-07 2017-06-06 リボソームディスプレイ複合体およびその製造方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPWO2017213158A1 true JPWO2017213158A1 (ja) 2019-05-09
JP7093300B2 JP7093300B2 (ja) 2022-06-29

Family

ID=60578693

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2018521744A Active JP7093300B2 (ja) 2016-06-07 2017-06-06 リボソームディスプレイ複合体およびその製造方法

Country Status (6)

Country Link
US (1) US11248226B2 (ja)
EP (1) EP3467107B1 (ja)
JP (1) JP7093300B2 (ja)
CN (1) CN109312324B (ja)
DK (1) DK3467107T3 (ja)
WO (1) WO2017213158A1 (ja)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP7529217B2 (ja) * 2019-03-28 2024-08-06 株式会社カネカ ペプチド複合体及びその製造方法、並びに前記ペプチド複合体の利用
EP4043076B1 (en) * 2019-10-08 2024-06-26 GeneFrontier Corporation Cyclic peptide having ctla-4 inhibitory activity and use thereof

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011514803A (ja) * 2008-02-05 2011-05-12 メディカル リサーチ カウンシル 方法及び組成物
JP2013518558A (ja) * 2010-02-04 2013-05-23 メディカル リサーチ カウンシル 構造化されたペプチドプロセシング
JP2013526830A (ja) * 2009-08-12 2013-06-27 メディカル リサーチ カウンシル ペプチドライブラリ

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007137690A (ja) 2005-11-15 2007-06-07 High Energy Accelerator Research Organization 炭素フォイルのビルドアップ抑制方法、炭素フォイル及び炭素フォイルのビルドアップ抑制装置
GB0913775D0 (en) 2009-08-06 2009-09-16 Medical Res Council Multispecific peptides
JP6092104B2 (ja) * 2010-08-13 2017-03-08 ミティ・バイオシステムズ・ゲーエムベーハー 修飾ペプチドディスプレイ
JP5818237B2 (ja) * 2010-09-09 2015-11-18 国立大学法人 東京大学 N−メチルアミノ酸およびその他の特殊アミノ酸を含む特殊ペプチド化合物ライブラリーの翻訳構築と活性種探索法
EP2989202B1 (en) * 2013-04-25 2019-04-10 Sutro Biopharma, Inc. The use of lambda-gam protein in ribosomal display technology
JP2016113935A (ja) 2014-12-12 2016-06-23 株式会社オティックス 内燃機関用の過給装置

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011514803A (ja) * 2008-02-05 2011-05-12 メディカル リサーチ カウンシル 方法及び組成物
JP2013526830A (ja) * 2009-08-12 2013-06-27 メディカル リサーチ カウンシル ペプチドライブラリ
JP2013518558A (ja) * 2010-02-04 2013-05-23 メディカル リサーチ カウンシル 構造化されたペプチドプロセシング

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIOTECHNOLOGY AND BIOENGINEERING, vol. 113, no. 8, JPN6021019624, August 2016 (2016-08-01), pages 1777 - 1786, ISSN: 0004666575 *
EXPERT OPINION ON BIOLOGICAL THERAPY, vol. 6, no. 2, JPN6021019626, 2006, pages 177 - 187, ISSN: 0004666577 *
JOURNAL OF IMMUNOLOGICAL METHODS, vol. 290, JPN6021050107, 2004, pages 51 - 67, ISSN: 0004666574 *
NATURE METHODS, vol. 4, no. 3, JPN6021019625, 2007, pages 269 - 279, ISSN: 0004666576 *

Also Published As

Publication number Publication date
EP3467107B1 (en) 2022-06-01
US11248226B2 (en) 2022-02-15
DK3467107T3 (da) 2022-06-27
EP3467107A1 (en) 2019-04-10
CN109312324B (zh) 2022-08-16
JP7093300B2 (ja) 2022-06-29
WO2017213158A1 (ja) 2017-12-14
EP3467107A4 (en) 2020-01-01
US20190169600A1 (en) 2019-06-06
CN109312324A (zh) 2019-02-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5818237B2 (ja) N−メチルアミノ酸およびその他の特殊アミノ酸を含む特殊ペプチド化合物ライブラリーの翻訳構築と活性種探索法
WO2012074130A1 (ja) ペプチドライブラリーの製造方法、ペプチドライブラリー、及びスクリーニング方法
WO2012074129A1 (ja) 安定化された二次構造を有するペプチド、及びペプチドライブラリー、それらの製造方法
EP2665744B1 (en) Macrocyclic compounds with a hybrid peptidic/non-peptidic backbone and methods for their preparation
Frost et al. Macrocyclization of Organo‐Peptide Hybrids through a Dual Bio‐orthogonal Ligation: Insights from Structure–Reactivity Studies
WO2014119600A1 (ja) Flexible Display法
JP7079018B2 (ja) D-アミノ酸及びβ-アミノ酸の取り込みを増強するtRNAのD及びTアームの改変
US11248226B2 (en) Ribosome display complex and production method therefor
WO2022147334A1 (en) Metalloenzymes for biomolecular recognition of n-terminal modified peptides
JPWO2020080490A1 (ja) ペプチドライブラリーの製造方法
JP2019073511A (ja) アゾリン化合物及びアゾール化合物のライブラリー、並びにその製造方法
WO2023122698A1 (en) Methods for balancing encoding signals of analytes
WO2015115661A1 (ja) アゾール誘導体骨格を有するペプチドの製造方法
JP7461652B2 (ja) 化合物ライブラリー及び化合物ライブラリーの製造方法
WO2019112567A1 (en) Methods and compositions related to selecting variant proteases
Murakami et al. High-affinity mirror-image monobody targeting MCP-1 generated via TRAP display and chemical protein synthesis
JP6057297B2 (ja) 核酸構築物、核酸−蛋白質複合体、及びその利用
US20240053350A1 (en) High throughput peptide identification using conjugated binders and kinetic encoding
WO2021100833A1 (ja) N-メチルアミノ酸の取り込みを増強するtRNAのTステムの改変
JP4897265B2 (ja) 新規な非天然アミノ酸のタンパク質への導入法
JPWO2006054807A1 (ja) ミトコンドリア蛋白質を用いる、非天然アミノ酸を蛋白質に部位特異的に導入する方法及びtRNAの効率的調製方法

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20200410

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20210525

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20210709

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20211221

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20220217

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20220614

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20220617

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7093300

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150