JPWO2012046759A1 - 組織接着膜及びその製造方法 - Google Patents
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Abstract
本発明は、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜及びその製造方法を提供することを課題とする。ゼラチンと架橋用分子とが集積されてなる組織接着膜であって、前記ゼラチンは、その側鎖にアミノ基を備え、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下のゼラチンであり、前記架橋用分子は２以上の活性エステル基または酸無水物を有している組織接着膜を用いることによって前記課題を解決できる。
Description
本発明は、組織接着膜及びその製造方法に関する。
組織接着膜は、心臓血管外科等の手術の際、血管、皮膚等の生体組織（以下、組織）の接着が可能な高分子膜のことである。これを用いることにより、血液の漏出等を防止でき、手術の安全性を高めることができる。
現在、大きく分けて、以下の３種類の組織接着膜がある。
第１の接着剤は、シアノアクリレート系組織接着膜である。この高分子膜は、接着強度は高いが、生体親和性が低いという課題がある。
第２の接着剤は、バイオポリマーとアルデヒド系の組織接着膜である。この高分子膜も、接着強度は高いが、生体親和性が低いという課題がある。
第３の接着剤は、フィブリン系の組織接着膜である。この高分子膜は、逆に、生体親和性は高いが、接着強度が低いという課題がある。
このように、接着強度と生体親和性の両方の特性に優れた組織接着膜がないというのが、従来技術の課題であった。
第１の接着剤は、シアノアクリレート系組織接着膜である。この高分子膜は、接着強度は高いが、生体親和性が低いという課題がある。
第２の接着剤は、バイオポリマーとアルデヒド系の組織接着膜である。この高分子膜も、接着強度は高いが、生体親和性が低いという課題がある。
第３の接着剤は、フィブリン系の組織接着膜である。この高分子膜は、逆に、生体親和性は高いが、接着強度が低いという課題がある。
このように、接着強度と生体親和性の両方の特性に優れた組織接着膜がないというのが、従来技術の課題であった。
近年、フィブリン系の組織接着膜において、ヒト血清アルブミン（Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｕｍ Ａｌｂｕｍｉｎ：以下、ＨＳＡ）と架橋剤とからなる組織接着剤の接着強度が高いことが分かってきた（非特許文献１）。
ＨＳＡは、血液製剤から作られる血清タンパク質であり、分子量６９０００、略径１０ｎｍの球状タンパク質である。また、マイナスチャージを持った酸性タンパク質である。また、架橋剤としては、酒石酸（Ｄｉｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ Ｔａｒｔａｒａｔｅ：以下、ＤＳＴ）が用いられている。
ＨＳＡは、血液製剤から作られる血清タンパク質であり、分子量６９０００、略径１０ｎｍの球状タンパク質である。また、マイナスチャージを持った酸性タンパク質である。また、架橋剤としては、酒石酸（Ｄｉｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ Ｔａｒｔａｒａｔｅ：以下、ＤＳＴ）が用いられている。
しかし、血液製剤を使うと医薬品の分類となるため、承認認可の面で多大な労力を必要とする。また、医薬品となる場合には、認可後も、使用履歴を２０年間継続して残さねばならず、多大な労力を必要とするという課題がある。
そのため、ＨＳＡに代わり、非血液製剤であるゼラチン（ｇｅｌａｔｉｎ）を用いることが考えられる。例えば、特許文献１には、ゼラチンをスクシンイミド化ポリ−Ｌ−グルタミン酸により架橋して調製する医用材料が開示されている。また、特許文献２は、組織接着フィルムに関するものであり、ゼラチン又はコラーゲン（Ｃｏｌｌａｇｅｎ）から作成される組織接着フィルムが開示されている。しかし、これらは、接着力が十分でないという課題がある。
また、特許文献３は、組織接着構成物に関するものであり、粒子形態の縦合成および／または架橋性の材料と、粒子状材料とが混合された組織接着構成物が開示されている。しかし、この組織接着構成物も、接着力が十分でないという課題がある。
更にまた、側鎖にアルキル基を導入したゼラチンに関する論文がある（非特許文献２）。
しかし、上記課題を解決するには、至っていない。
また、特許文献３は、組織接着構成物に関するものであり、粒子形態の縦合成および／または架橋性の材料と、粒子状材料とが混合された組織接着構成物が開示されている。しかし、この組織接着構成物も、接着力が十分でないという課題がある。
更にまた、側鎖にアルキル基を導入したゼラチンに関する論文がある（非特許文献２）。
しかし、上記課題を解決するには、至っていない。
Ｊ．Ｂｉｏａｃｔ．Ｃｏｍｐａｃｔ．Ｐｏｌｙｍ．，２４，５４６−５５９（２００９）
Ｌｉ−Ｈｕｅｉ Ｌｉｎ，Ｋｅｎｇ−Ｍｉｎｇ Ｃｈｅｎ，ＣＯＬＬＯＩＤＳ ＡＮＤ ＳＵＲＦＡＣＥＳ Ａ，２７２，２００６，８−１４
Ｌｉ−Ｈｕｅｉ Ｌｉｎ，Ｋｅｎｇ−Ｍｉｎｇ Ｃｈｅｎ，Ｃｈｅｅ−Ｃｈａｎ Ｗａｎｇ，Ｊｏｕｒｎａｌｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ，１０５，２００７，３３７１−３３７７
本発明は、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜及びその製造方法を提供することを課題とする。
本発明者らは、ＨＳＡに代えて、アミノ基と疎水性官能基とを有し、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下の範囲のゼラチンあるいは疎水化ゼラチンを用いることで、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜及びその製造方法を提供することができることを発見し、本発明を完成した。
本発明は、以下の構成を有する。
本発明は、以下の構成を有する。
本発明の組織接着膜は、側鎖にアミノ基を備え、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下であるゼラチン；及び一分子内に２以上の活性エステル基又は酸無水物を有している架橋用分子が集積してなることを特徴とする。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記疎水化ゼラチンが、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であり、当該高分子中のＬｙｓ残基の一部が前記疎水性官能基で置換されているものとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記疎水性官能基が、コレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基からなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせであるものとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンが、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンからなる群より選択される１種または２種以上の組み合わせであるものとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記疎水性官能基が、コレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基からなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせであるものとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンが、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンからなる群より選択される１種または２種以上の組み合わせであるものとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記架橋用分子が、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、オキサル酢酸、ｃｉｓ−アコニット酸、２−ケトグルタル酸、ポリ酒石酸、ポリクエン酸、ポリリンゴ酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸からなる群から選ばれる１種、または２種以上の組み合わせである上記の組織接着膜とすることができる。
本発明の組織接着膜の製造方法は、（１）ゼラチン又は疎水化ゼラチンをフッ素系溶媒に分散させてから、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する工程；及び（２）前記フッ素系溶媒を揮発させる工程；を有することを特徴とする。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記工程（１）の前に、ゼラチンを溶解させた溶液に、アミン存在下で、疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、前記疎水化ゼラチンを合成する工程を行うことができる。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記フッ素系溶媒がヘキサフルオロイソプロパノールとすることができる。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記フッ素系溶媒がヘキサフルオロイソプロパノールとすることができる。
本発明の組織接着膜は、ゼラチン及び架橋用分子が集積してなる組織接着膜である。本発明の組織接着膜を構成する前記ゼラチンは、その側鎖にアミノ基を備え、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下のゼラチンであり、前記架橋用分子は一分子内に２以上の活性エステル基又は酸無水物を有する。そのため、膜の安定性を保って使用することができる。更に、前記組織接着膜を構成するゼラチンのアミノ基同士を、架橋用分子の活性エステル基又は酸無水物で架橋して、化学的に強固な結合を形成することができる。また、ゼラチンの側鎖のアミノ基を介して、組織への接着強度を高くすることができる。更には、本発明の組織接着膜にはゼラチンを用いているため、創傷治癒過程において酵素（コラゲナーゼ）により容易に分解させることができるため、生体親和性を高くすることができるものとなっている。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンであるため、このような疎水化ゼラチンを用いた場合には疎水性官能基を組織に打ち込んで（アンカーリングして）、組織との間に物理的に強固な結合を形成して、組織への接着強度を高くすることができる。
本発明の組織接着膜においては、前記疎水化ゼラチンを、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であり、当該高分子中のＬｙｓ残基の一部が前記疎水性官能基で置換されているものとすることができる。
本発明の組織接着膜においては、前記疎水性官能基を、コレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基からなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせとすることができる。
本発明の組織接着膜においては、前記ゼラチンを、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンからなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせとすることができる。
本発明の組織生体膜においては、前記架橋用分子を、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、オキサル酢酸、ｃｉｓ−アコニット酸、２−ケトグルタル酸、ポリ酒石酸、ポリクエン酸、ポリリンゴ酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸からなる群から選ばれる１種、または２種以上の組み合わせとすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンであるため、このような疎水化ゼラチンを用いた場合には疎水性官能基を組織に打ち込んで（アンカーリングして）、組織との間に物理的に強固な結合を形成して、組織への接着強度を高くすることができる。
本発明の組織接着膜においては、前記疎水化ゼラチンを、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であり、当該高分子中のＬｙｓ残基の一部が前記疎水性官能基で置換されているものとすることができる。
本発明の組織接着膜においては、前記疎水性官能基を、コレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基からなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせとすることができる。
本発明の組織接着膜においては、前記ゼラチンを、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンからなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせとすることができる。
本発明の組織生体膜においては、前記架橋用分子を、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、オキサル酢酸、ｃｉｓ−アコニット酸、２−ケトグルタル酸、ポリ酒石酸、ポリクエン酸、ポリリンゴ酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸からなる群から選ばれる１種、または２種以上の組み合わせとすることができる。
本発明の組織接着膜の製造方法は、（１）ゼラチン又は疎水化ゼラチンをフッ素系溶媒に分散させてから、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する工程；及び（２）前記フッ素系溶媒を揮発させ膜を得る工程；を有するため、前記フッ素系溶媒の揮発を平坦な面上で行うと、ゼラチンと架橋用分子を架橋しつつ、これを容易に集積することができるため、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜を容易に製造できる。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記工程（１）の前に、ゼラチンを溶解させた溶液に、アミン存在下で、疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、前記疎水化ゼラチンを合成する工程を行うことができる。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記フッ素系溶媒をヘキサフルオロイソプロパノールとすることができる。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記工程（１）の前に、ゼラチンを溶解させた溶液に、アミン存在下で、疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、前記疎水化ゼラチンを合成する工程を行うことができる。
本発明の組織接着膜の製造方法においては、前記フッ素系溶媒をヘキサフルオロイソプロパノールとすることができる。
（本発明の実施形態）
以下、添付図面を参照しながら、本発明の実施形態である組織接着膜及びその製造方法について説明する。
以下、添付図面を参照しながら、本発明の実施形態である組織接着膜及びその製造方法について説明する。
＜組織接着膜＞
まず、本発明の実施形態である組織接着膜について説明する。
図１は、本発明の実施形態である組織接着膜の一例を示す断面概略図である。図１に示すように、組織接着膜は、ゼラチン（疎水化されていない未修飾ゼラチン）と疎水化ゼラチンと架橋用分子とが集積されて、概略構成されている。
なお、前記組織接着膜は、疎水化ゼラチンと架橋用分子とからのみ構成されていてもよく、ゼラチンと架橋用分子とからのみ構成されていてもよい。
例えば、組織接着膜は、平面視略矩形状の膜である。膜の一面と他面はそれぞれ平坦な面とされている。大きさは特に限られるものではないが、例えば、一辺の長さが８ｍｍ、厚さが１００μｍの膜とすることができる。
しかし、組織接着膜の形状はこれに限られるものではなく、平面視略円形状であってもよい。
まず、本発明の実施形態である組織接着膜について説明する。
図１は、本発明の実施形態である組織接着膜の一例を示す断面概略図である。図１に示すように、組織接着膜は、ゼラチン（疎水化されていない未修飾ゼラチン）と疎水化ゼラチンと架橋用分子とが集積されて、概略構成されている。
なお、前記組織接着膜は、疎水化ゼラチンと架橋用分子とからのみ構成されていてもよく、ゼラチンと架橋用分子とからのみ構成されていてもよい。
例えば、組織接着膜は、平面視略矩形状の膜である。膜の一面と他面はそれぞれ平坦な面とされている。大きさは特に限られるものではないが、例えば、一辺の長さが８ｍｍ、厚さが１００μｍの膜とすることができる。
しかし、組織接着膜の形状はこれに限られるものではなく、平面視略円形状であってもよい。
なお、前記組織接着膜を用いて、生体組織（以下、組織と略記する）を接着する際には、ゼラチン又は疎水化ゼラチンと架橋用分子とを架橋反応させるために、水を必要とする。しかし、生体組織は、通常、水を含有しているので、組織に前記組織接着膜を貼り付けることにより、組織接着膜が水を吸収し組織を接着することができる。
疎水化ゼラチンは、ゼラチンからなる主鎖と、その側鎖にアミノ基と前記疎水性官能基とを備えている。本発明の組織接着膜においてゼラチン骨格を用いることにより、生体に適用した場合に生体内の酵素により容易に分解させることができるため、生体親和性を高くできる。
前記疎水化ゼラチンは、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であり、当該高分子中のＬｙｓ残基の一部が前記疎水性官能基で置換されているものとすることができる。
前記ゼラチンとしては、例えば、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンを挙げることができる。これらのゼラチンの１種または２種以上の組み合わせを用いてもよい。
前記疎水化ゼラチンは、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であり、当該高分子中のＬｙｓ残基の一部が前記疎水性官能基で置換されているものとすることができる。
前記ゼラチンとしては、例えば、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンを挙げることができる。これらのゼラチンの１種または２種以上の組み合わせを用いてもよい。
ゼラチン、及び疎水化ゼラチンの分子量は、５０,０００以上、１００,０００以下であることが好ましく、６０,０００以上、１００,０００以下がより好ましく、７０,０００以上、１００,０００以下が更に好ましい。疎水化ゼラチンの分子量をこの範囲とすることによって、接着強度を向上させることができる。
ゼラチン、及び疎水化ゼラチンの分子量が５０,０００未満の場合には、膜としての強度が低く、容易に、崩れるため、好ましくない。
ゼラチン、及び疎水化ゼラチンの分子量が５０,０００未満の場合には、膜としての強度が低く、容易に、崩れるため、好ましくない。
Ｌｙｓは、タンパク質を構成するα−アミノ酸の一つであり、必須アミノ酸である。側鎖にε−アミノ基を持つアミノ酸である。
Ｌｙｓのアミノ基の一部は、公知の方法により、疎水性官能基で容易に置換でき、疎水化ゼラチン１１のＬｙｓのアミノ基の一部は疎水性官能基で置換されている。
Ｌｙｓのアミノ基の一部は、公知の方法により、疎水性官能基で容易に置換でき、疎水化ゼラチン１１のＬｙｓのアミノ基の一部は疎水性官能基で置換されている。
疎水化ゼラチン中の疎水性官能基は、疎水化ゼラチンを加水分解反応にかけられる際に、組織にアンカーリングするため、疎水化ゼラチンを組織に強固に固定することを可能にする。これにより、疎水化ゼラチンを組織に物理的に強固に接着させることができ、本発明の組織接着膜の使用時の接着強度を向上させることができる。
疎水性官能基が水溶性の場合には、疎水性度が低いため、疎水性官能基を組織に突き刺すことが困難となり、疎水化ゼラチンを組織に強固に固定することはできない。一方、疎水性官能基が水に対して不溶性の場合には、疎水性を示すので、疎水性官能基を組織にアンカーリングすることが困難となり、疎水化ゼラチンを組織に強固に固定することはできない。
疎水性官能基として、例えば、次式（１）に示すコレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基を挙げることができる。本発明の組織接着膜においては、当該疎水性官能基をこれらの1種、又は2種以上の組合わせとすることができる。
疎水性官能基が水溶性の場合には、疎水性度が低いため、疎水性官能基を組織に突き刺すことが困難となり、疎水化ゼラチンを組織に強固に固定することはできない。一方、疎水性官能基が水に対して不溶性の場合には、疎水性を示すので、疎水性官能基を組織にアンカーリングすることが困難となり、疎水化ゼラチンを組織に強固に固定することはできない。
疎水性官能基として、例えば、次式（１）に示すコレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基を挙げることができる。本発明の組織接着膜においては、当該疎水性官能基をこれらの1種、又は2種以上の組合わせとすることができる。
架橋用分子は、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する有機分子からなる。一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有することにより、これらの架橋用分子は、ゼラチン、又は疎水化ゼラチンの２つのアミノ基と反応して、結合することができ、ゼラチン又は疎水化ゼラチンの２個以上のアミノ基を架橋して、強固な接着構造体を形成することができる。
前記架橋用分子としては、例えば、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、オキサル酢酸、ｃｉｓ−アコニット酸、２−ケトグルタル酸、ポリ酒石酸、ポリクエン酸、ポリリンゴ酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸の群から選ばれる１種または２種以上の組合せであって、前記分子の一分子中に２個以上の活性エステル基を有するもの又は酸無水物を挙げることができる。
前記活性エステル基は、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミジル基の１種または２種以上の組み合わせであることが好ましい。スクシンイミドは、生体内の代謝経路に存在するコハク酸の誘導体であり、アメリカ食品医薬品局で認可された組織接着剤（シーラント）に使用されている実績があるためである。
より具体的には、例えば、架橋用分子として、次式（２）に示す酒石酸ジスクシンイミジルを挙げることができる。
より具体的には、例えば、架橋用分子として、次式（２）に示す酒石酸ジスクシンイミジルを挙げることができる。
＜本実施形態の組織接着膜を用いた組織の接着について＞
次に、本実施形態の組織接着膜を用いた組織の接着について説明する。
まず、組織の一面に、組織接着膜を貼り付け、放置する。これにより、組織接着膜は組織に接着する。
次に、本実施形態の組織接着膜を用いた組織の接着について説明する。
まず、組織の一面に、組織接着膜を貼り付け、放置する。これにより、組織接着膜は組織に接着する。
なお、前記放置時間は、組織接着膜が組織内の水分を吸収して架橋するのに必要な時間であり、組織接着膜中の構成材料の割合によって適宜設定する。例えば、１０分程度とする。また、この際、３７℃以下であれば加熱してもよい。
図２は、本発明の実施形態である組織接着膜を用いた組織の接着の一例を示す概略図である。
図２に示すように、組織接着膜は、組織内の水分を吸収することにより架橋用分子の活性エステルがゼラチンあるいは疎水化ゼラチンのアミノ基と反応して、アミド結合を形成する。また、この架橋用分子の他の活性エステル基が他の疎水化ゼラチンのアミノ基の水素と置換して、前記アミノ基に前記活性エステル基が結合する。これにより、２つの疎水化ゼラチンが一の架橋用分子により架橋される。
この架橋反応が連鎖的に行われることにより、複数の疎水化ゼラチンが架橋用分子により強固に結合された構造体が形成される。これにより、この構造体は、化学的に強固なものとされる。
つまり、次式（３）で表される化学反応が生じていると考えられる。式（３）において、−ＣＯＯＲは、架橋剤の活性エステル、−ＮＨ２は、ゼラチン又は疎水化ゼラチン中のアミノ基を示す。
図２に示すように、組織接着膜は、組織内の水分を吸収することにより架橋用分子の活性エステルがゼラチンあるいは疎水化ゼラチンのアミノ基と反応して、アミド結合を形成する。また、この架橋用分子の他の活性エステル基が他の疎水化ゼラチンのアミノ基の水素と置換して、前記アミノ基に前記活性エステル基が結合する。これにより、２つの疎水化ゼラチンが一の架橋用分子により架橋される。
この架橋反応が連鎖的に行われることにより、複数の疎水化ゼラチンが架橋用分子により強固に結合された構造体が形成される。これにより、この構造体は、化学的に強固なものとされる。
つまり、次式（３）で表される化学反応が生じていると考えられる。式（３）において、−ＣＯＯＲは、架橋剤の活性エステル、−ＮＨ２は、ゼラチン又は疎水化ゼラチン中のアミノ基を示す。
また、図２に示すように、疎水的な相互作用により、一定の分子量及び大きさを有する疎水性官能基が組織に突き刺さっている。これにより、疎水化ゼラチンは、強固に組織に固定される。これにより、前記構造体は、物理的に強固に、組織の表面に接着される。
なお、本実施形態では、接着後固化するまで室温で放置したが、接着速度をあげるために３７℃以下であれば加熱しても良い。
＜組織接着膜の製造方法＞
次に、本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法について説明する。
本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法は、疎水化ゼラチン合成工程と、架橋用分子混合工程と、溶媒揮発化工程とを有する。
次に、本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法について説明する。
本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法は、疎水化ゼラチン合成工程と、架橋用分子混合工程と、溶媒揮発化工程とを有する。
（疎水化ゼラチン合成工程）
疎水化ゼラチン合成工程は、ゼラチンを溶解させた溶液にトリエチルアミン存在下で疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、疎水化ゼラチンを合成する工程である。
なお、前記ゼラチンとしては、疎水化ゼラチンの分子量が２０,０００以上、１００,０００以下となるものを選択する。
疎水化ゼラチン合成工程は、ゼラチンを溶解させた溶液にトリエチルアミン存在下で疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、疎水化ゼラチンを合成する工程である。
なお、前記ゼラチンとしては、疎水化ゼラチンの分子量が２０,０００以上、１００,０００以下となるものを選択する。
まず、有機溶媒に溶解したゼラチンにトリエチルアミン存在下で、アミノ基に反応性を有する疎水性官能基を有する有機分子を混合して、混合溶液を容器に調製する。
有機溶媒としては、例えば、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を用いる。
有機分子としては、例えば、次式（４）に示すコレステリルクロロフォルメイトを挙げることができる。
次に、前記混合溶液を、不活性ガス雰囲気下、加熱し、攪拌する。例えば、窒素雰囲気下、加熱温度は８０℃とし、攪拌時間は一昼夜とする。
有機溶媒としては、例えば、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を用いる。
有機分子としては、例えば、次式（４）に示すコレステリルクロロフォルメイトを挙げることができる。
次に、前記混合溶液を、不活性ガス雰囲気下、加熱し、攪拌する。例えば、窒素雰囲気下、加熱温度は８０℃とし、攪拌時間は一昼夜とする。
次に、この混合溶液を、氷冷したエタノール溶媒中に滴下する。次に、この溶液をガラスフィルター等で濾過する。
更に、濾過物を有機溶媒で洗浄する。これにより、濾過物中の不純物を除去することができ、疎水化ゼラチンの純度を向上させることができる。この洗浄用の有機溶媒としては、例えば、エタノールを用いる。
以上の工程により、ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を疎水性官能基で置換した疎水化ゼラチンを合成できる。
更に、濾過物を有機溶媒で洗浄する。これにより、濾過物中の不純物を除去することができ、疎水化ゼラチンの純度を向上させることができる。この洗浄用の有機溶媒としては、例えば、エタノールを用いる。
以上の工程により、ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を疎水性官能基で置換した疎水化ゼラチンを合成できる。
（架橋用分子混合工程）
架橋用分子混合工程は、前記疎水化ゼラチン又は未修飾ゼラチンをフッ素系溶媒に溶解させてから、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する工程である。
まず、疎水化ゼラチンをフッ素系溶媒に溶解させる。フッ素系溶媒としては、ヘキサフルオロイソプロパノールを挙げることができる。沸点が５６℃であるので、後述する工程で、容易に揮発させることができる。
次に、疎水化ゼラチン又は未修飾ゼラチンを溶解させたフッ素系溶媒に、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する。その際、架橋用分子は、疎水化ゼラチンと架橋反応を起こさない。
架橋用分子混合工程は、前記疎水化ゼラチン又は未修飾ゼラチンをフッ素系溶媒に溶解させてから、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する工程である。
まず、疎水化ゼラチンをフッ素系溶媒に溶解させる。フッ素系溶媒としては、ヘキサフルオロイソプロパノールを挙げることができる。沸点が５６℃であるので、後述する工程で、容易に揮発させることができる。
次に、疎水化ゼラチン又は未修飾ゼラチンを溶解させたフッ素系溶媒に、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する。その際、架橋用分子は、疎水化ゼラチンと架橋反応を起こさない。
（溶媒揮発化工程）
次に、トレイ、シャーレ等の容器に、前記混合溶液を入れた後、室温〜３５℃で放置することにより、フッ素系溶媒を揮発させる。
以上の工程により、ゼラチン又は疎水化ゼラチンと架橋用分子とが集積されてなる組織接着膜であって、前記ゼラチンは、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下のゼラチンであって、その側鎖にアミノ基と疎水性官能基を備えており、前記架橋用分子は一分子内に２以上の活性エステル基又は酸無水物を有している組織接着膜を容易に製造できる。この時、架橋用分子は疎水化ゼラチンと未反応の状態である。
なお、本発明の実施形態である組織接着膜は、未修飾のゼラチン（オリジナルゼラチンと呼称する）を更に混合して、組織接着膜中の疎水化ゼラチンの割合を最適な値に調製して、接着強度をより向上させてもよい。
次に、トレイ、シャーレ等の容器に、前記混合溶液を入れた後、室温〜３５℃で放置することにより、フッ素系溶媒を揮発させる。
以上の工程により、ゼラチン又は疎水化ゼラチンと架橋用分子とが集積されてなる組織接着膜であって、前記ゼラチンは、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下のゼラチンであって、その側鎖にアミノ基と疎水性官能基を備えており、前記架橋用分子は一分子内に２以上の活性エステル基又は酸無水物を有している組織接着膜を容易に製造できる。この時、架橋用分子は疎水化ゼラチンと未反応の状態である。
なお、本発明の実施形態である組織接着膜は、未修飾のゼラチン（オリジナルゼラチンと呼称する）を更に混合して、組織接着膜中の疎水化ゼラチンの割合を最適な値に調製して、接着強度をより向上させてもよい。
本発明の実施形態である組織接着膜は、ゼラチンと架橋用分子とが集積されてなる組織接着膜であって、前記ゼラチンは、その側鎖にアミノ基を備え、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下のゼラチンであり、前記架橋用分子は一分子内に２以上の活性エステル基又は酸無水物を有している構成なので、疎水化ゼラチン同士のアミノ基同士を、架橋用分子の活性エステル基または酸無水物で架橋して、化学的に強固な結合を形成することができ、接着強度を高くすることができるとともに、疎水化ゼラチンを創傷治癒過程において酵素（コラゲナーゼ）により容易に分解するため、炎症反応、石灰化などを抑制できる。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンである構成なので、疎水性官能基を組織に打ち込んで（アンカーリングして）物理的に強固な結合を形成して、接着強度を高くすることができる。
本発明の組織接着膜は、前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンである構成なので、疎水性官能基を組織に打ち込んで（アンカーリングして）物理的に強固な結合を形成して、接着強度を高くすることができる。
本発明の実施形態である組織接着膜は、疎水化ゼラチンが、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であって、前記アミノ酸として含まれるＬｙｓのアミノ基の一部が疎水性官能基で置換されている構成なので、Ｌｙｓ由来のアミノ基を有しているため、ゼラチン又は疎水化ゼラチン中に存在するアミノ基同士を、架橋用分子の活性エステル基で架橋して、化学的に強固な結合を形成することができ、接着強度を高くすることができるとともに、疎水化ゼラチンを創傷治癒過程において酵素（コラゲナーゼ）により容易に分解させることができ、生体親和性を高くすることができる。
本発明の実施形態である組織接着膜は、前記疎水性官能基がコレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基の１種または２種以上の組み合わせである構成なので、疎水性官能基を組織に打ち込んで（アンカーリングして）物理的に強固な結合を形成して、接着強度を高くすることができる。
本発明の実施形態である組織接着膜は、前記ゼラチンが、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来のゼラチン又は遺伝子組換えゼラチンの１種または２種以上の組み合わせである構成なので、アンカーリングさせた疎水化ゼラチンと未修飾ゼラチンを結合させ、組織接着膜の結合を化学的に強固な結合にすることができる。
本発明の実施形態である組織接着膜は、前記架橋用分子が、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、オキサル酢酸、ｃｉｓ−アコニット酸、２−ケトグルタル酸、ポリ酒石酸、ポリクエン酸、ポリリンゴ酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸の群から選ばれる１種または２種以上の組み合わせであって、前記分子の一分子中に２個以上の活性エステル基を有するもの又は酸無水物である構成なので、ゼラチン又は疎水化ゼラチン同士のアミノ基同士を、架橋用分子の活性エステル基または酸無水物で架橋して、組織接着膜の結合を化学的に強固な結合にすることができる。
本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法は、ゼラチン又は疎水化ゼラチンをフッ素系溶媒に分散させてから、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する工程と、前記フッ素系溶媒を揮発させる工程と、を有する構成なので、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜を容易に製造できる。
本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法は、ゼラチンを溶解させた溶液にアミン存在下で疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、前記疎水化ゼラチンを合成する工程を有する構成なので、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜を容易に製造できる。
本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法は、ゼラチンを溶解させた溶液にアミン存在下で疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、前記疎水化ゼラチンを合成する工程を有する構成なので、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜を容易に製造できる。
本発明の実施形態である組織接着膜の製造方法は、前記フッ素系溶媒がヘキサフルオロイソプロパノールである構成なので、前記フッ素系溶媒を容易に揮発させ、組織接着膜を容易に製造することができる。
本発明の実施形態である組織接着膜及びその製造方法は、上記実施形態に限定されるものではなく、本発明の技術的思想の範囲内で、種々変更して実施することができる。本実施形態の具体例を以下の実施例で示す。しかし、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
（ゼラチン製組織接着膜の調製）
（実施例１）
まず、アルカリ処理ゼラチンを用意した。
アルカリ処理ゼラチンとは、ゼラチンに存在するアスパラギン、グルタミンを脱アミド化によりアスパラギン酸、グルタミン酸に変換したゼラチンである。
（実施例１）
まず、アルカリ処理ゼラチンを用意した。
アルカリ処理ゼラチンとは、ゼラチンに存在するアスパラギン、グルタミンを脱アミド化によりアスパラギン酸、グルタミン酸に変換したゼラチンである。
前記アルカリ処理ゼラチン１０．５２ｇをヘキサフルオロイソプロパノール７０ｍＬに溶解し、１５％アルカリ処理ゼラチン溶液を得た。
得られた溶液２．５ｍＬに架橋用分子であるトリスクシンイミジルシトレート（ＴＳＣ）９６．６ｍｇを混合して溶解し、実施例１の組織接着膜作製用の溶液を製造した。なお、このとき、組織接着膜作製用溶液中のＴＳＣのモル濃度は、８０ｍＭとなるように調製した。
次に、前記溶液をテフロン（登録商標）製トレイ（底面８ｃｍ×５ｃｍ）に入れ、ドラフトにおいて３５℃のホットプレート上でこれを放置してヘキサフルオロイソプロパノール溶液を揮発させた。３日間放置後、１晩真空乾燥を行い、組織接着膜を製造した。
得られた溶液２．５ｍＬに架橋用分子であるトリスクシンイミジルシトレート（ＴＳＣ）９６．６ｍｇを混合して溶解し、実施例１の組織接着膜作製用の溶液を製造した。なお、このとき、組織接着膜作製用溶液中のＴＳＣのモル濃度は、８０ｍＭとなるように調製した。
次に、前記溶液をテフロン（登録商標）製トレイ（底面８ｃｍ×５ｃｍ）に入れ、ドラフトにおいて３５℃のホットプレート上でこれを放置してヘキサフルオロイソプロパノール溶液を揮発させた。３日間放置後、１晩真空乾燥を行い、組織接着膜を製造した。
（組織接着膜の形成評価）
得られた組織接着膜を直径８ｍｍのポンチで打ち抜き、１５ｍＬのプラスチック製試験管に入れた。その後、４℃あるいは３７℃の超純水１０ｍＬを入れることにより架橋反応の進行と膜形成を評価した。
得られた組織接着膜を直径８ｍｍのポンチで打ち抜き、１５ｍＬのプラスチック製試験管に入れた。その後、４℃あるいは３７℃の超純水１０ｍＬを入れることにより架橋反応の進行と膜形成を評価した。
（組織接着膜の接着性評価）
ラット肝臓に得られた組織接着膜（直径８ｍｍ）を５分間静置し、ピンセットで組織接着膜を引っ張ることにより、接着性を定性的に評価した。
比較例として、架橋用分子を用いず、ゼラチンのみにより調製した組織接着膜を用いた。
ラット肝臓に得られた組織接着膜（直径８ｍｍ）を５分間静置し、ピンセットで組織接着膜を引っ張ることにより、接着性を定性的に評価した。
比較例として、架橋用分子を用いず、ゼラチンのみにより調製した組織接着膜を用いた。
（組織接着膜の生体親和性評価）
ラット肝臓に得られた組織接着膜（直径８ｍｍ）を５分間静置後、閉腹し、７日後の様子を目視で評価した。
比較例として、架橋用分子を用いず、ゼラチンのみにより調製した組織接着膜を用いた。
ラット肝臓に得られた組織接着膜（直径８ｍｍ）を５分間静置後、閉腹し、７日後の様子を目視で評価した。
比較例として、架橋用分子を用いず、ゼラチンのみにより調製した組織接着膜を用いた。
（組織接着膜のシーリング評価）
まず、前記組織接着膜の一部を切り取り、ラットの肺に設けた穴（径１ｍｍ）を塞ぐように貼り付けてから、７分間放置した。
５分後、前記組織接着膜が固化しているのを確認した。また、前記ネズミの肺に他の穴がないことも確認した。
次に、注射器を前記ラット肺に差し込み、その内部に空気を注入した。
前記ラットの肺から空気が漏れ始める最大圧力を測定した。
まず、前記組織接着膜の一部を切り取り、ラットの肺に設けた穴（径１ｍｍ）を塞ぐように貼り付けてから、７分間放置した。
５分後、前記組織接着膜が固化しているのを確認した。また、前記ネズミの肺に他の穴がないことも確認した。
次に、注射器を前記ラット肺に差し込み、その内部に空気を注入した。
前記ラットの肺から空気が漏れ始める最大圧力を測定した。
実施例１において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
また、ラット肝臓への接着性が認められ、７日後において分解性が認められた。前記ラットの肺から空気が漏れ始める最大圧力は、９１６ｍｍＨｇであった。
また、ラット肝臓への接着性が認められ、７日後において分解性が認められた。前記ラットの肺から空気が漏れ始める最大圧力は、９１６ｍｍＨｇであった。
（実施例２）
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を４０ｍＭ（添加量４９．９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例２の組織接着膜を製造した。
実施例２において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。また、ラット肝臓への接着性が認められた。
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を４０ｍＭ（添加量４９．９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例２の組織接着膜を製造した。
実施例２において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。また、ラット肝臓への接着性が認められた。
（実施例３）
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を２０ｍＭ（添加量２４．０ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例３の組織接着膜を製造した。
実施例３において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を２０ｍＭ（添加量２４．０ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例３の組織接着膜を製造した。
実施例３において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例４）
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を１０ｍＭ（添加量１２．７４ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例４の組織接着膜を製造した。
実施例４において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を１０ｍＭ（添加量１２．７４ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例４の組織接着膜を製造した。
実施例４において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例５）
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を５ｍＭ（添加量６．４５ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例５の組織接着膜を製造した。
実施例５において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膨潤した膜が形成された。
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を５ｍＭ（添加量６．４５ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例５の組織接着膜を製造した。
実施例５において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膨潤した膜が形成された。
（実施例６）
組織接着膜中のＴＳＣをジスクシンイミジルマレート（ＤＳＭ）に変え、ＤＳＭ濃度を８０ｍＭ（添加量６５．５９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例６の組織接着膜を製造した。
実施例６において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膜が形成されなかった。また、ラット肝臓への接着性が認められた。７日後において分解性が認められた。
組織接着膜中のＴＳＣをジスクシンイミジルマレート（ＤＳＭ）に変え、ＤＳＭ濃度を８０ｍＭ（添加量６５．５９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例６の組織接着膜を製造した。
実施例６において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膜が形成されなかった。また、ラット肝臓への接着性が認められた。７日後において分解性が認められた。
（実施例７）
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を４０ｍＭ（添加量３２．２ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例７の組織接着剤を製造した。
実施例７において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を４０ｍＭ（添加量３２．２ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例７の組織接着剤を製造した。
実施例７において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例８）
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を２０ｍＭ（添加量１５．８８ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例８の組織接着剤を製造した。
実施例８において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膨潤した膜が形成された。
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を２０ｍＭ（添加量１５．８８ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例８の組織接着剤を製造した。
実施例８において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膨潤した膜が形成された。
（実施例９）
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を１０ｍＭ（添加量８．７９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例９の組織接着剤を製造した。
実施例９において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を１０ｍＭ（添加量８．７９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例９の組織接着剤を製造した。
実施例９において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
（実施例１０）
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を５ｍＭ（添加量４．３８ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１０の組織接着剤を製造した。
実施例１０において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
組織接着膜中のＤＳＭ濃度を５ｍＭ（添加量４．３８ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１０の組織接着剤を製造した。
実施例１０において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
（実施例１１）
組織接着膜中のＴＳＣをジスクシンイミジルタータレート（ＤＳＴ）に変え、ＤＳＴ濃度を８０ｍＭ（添加量６９．６４ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１１の組織接着膜を製造した。
実施例１１において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膜が形成されなかった。また、ラット肝臓への接着性が認められた。７日後において分解性が認められた。
組織接着膜中のＴＳＣをジスクシンイミジルタータレート（ＤＳＴ）に変え、ＤＳＴ濃度を８０ｍＭ（添加量６９．６４ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１１の組織接着膜を製造した。
実施例１１において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては、膜が形成されなかった。また、ラット肝臓への接着性が認められた。７日後において分解性が認められた。
（実施例１２）
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を４０ｍＭ（添加量３５．３５ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１２の組織接着剤を製造した。
実施例１２において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を４０ｍＭ（添加量３５．３５ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１２の組織接着剤を製造した。
実施例１２において調製した組織接着膜は、４℃あるいは３７℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例１３）
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を２０ｍＭ（添加量１７．７９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１３の組織接着剤を製造した。
実施例１３において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膨潤した膜が形成された。
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を２０ｍＭ（添加量１７．７９ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１３の組織接着剤を製造した。
実施例１３において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膨潤した膜が形成された。
（実施例１４）
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を１０ｍＭ（添加量８．５２ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１４の組織接着剤を製造した。
実施例１４において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を１０ｍＭ（添加量８．５２ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１４の組織接着剤を製造した。
実施例１４において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
（実施例１５）
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を５ｍＭ（添加量４．０１ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１５の組織接着剤を製造した。
実施例１５において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
組織接着膜中のＤＳＴ濃度を５ｍＭ（添加量４．０１ｍｇ）となるようにした他は実施例１と同様にして、実施例１５の組織接着剤を製造した。
実施例１５において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。３７℃においては膜が形成されなかった。
（実施例１６）
（疎水化ゼラチン（コレステリル化ゼラチン）の合成）
まず、分子量１００，０００のゼラチン（豚皮由来、新田ゼラチン社製）１ｇを９．９ｍＬのＤＭＳＯ中で撹拌して溶解し窒素雰囲気下で８０℃に保った。０．１ｍＬのトリエチルアミンを添加した。そこに、ゼラチン中に含まれるアミノ基の１０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、８０℃で撹拌し溶解させた。塩化カルシウム管で栓をし、一昼夜撹拌しながら反応させた。
反応溶液を氷冷した３０ｍＬエタノール中に滴下して反応を停止し、反応物を析出させた後、ガラスフィルターでろ過した。その後、１０ｍＬのエタノールで３回洗浄した。ガラスフィルター中の残渣を１０ｍＬの酢酸エチルで３回洗浄した後、６０℃で一昼夜真空乾燥しコレステリル化ゼラチンを得た。コレステリル基の導入は、プロトン核磁気共鳴装置（１Ｈ−ＮＭＲ）によりＣ１８プロトンのピークを０．６７ｐｐｍ付近に確認した。
（疎水化ゼラチン（コレステリル化ゼラチン）の合成）
まず、分子量１００，０００のゼラチン（豚皮由来、新田ゼラチン社製）１ｇを９．９ｍＬのＤＭＳＯ中で撹拌して溶解し窒素雰囲気下で８０℃に保った。０．１ｍＬのトリエチルアミンを添加した。そこに、ゼラチン中に含まれるアミノ基の１０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、８０℃で撹拌し溶解させた。塩化カルシウム管で栓をし、一昼夜撹拌しながら反応させた。
反応溶液を氷冷した３０ｍＬエタノール中に滴下して反応を停止し、反応物を析出させた後、ガラスフィルターでろ過した。その後、１０ｍＬのエタノールで３回洗浄した。ガラスフィルター中の残渣を１０ｍＬの酢酸エチルで３回洗浄した後、６０℃で一昼夜真空乾燥しコレステリル化ゼラチンを得た。コレステリル基の導入は、プロトン核磁気共鳴装置（１Ｈ−ＮＭＲ）によりＣ１８プロトンのピークを０．６７ｐｐｍ付近に確認した。
（組織接着膜の調製）
得られたコレステリル化ゼラチン０．３ｇをヘキサフルオロイソプロパノール２ｍＬに溶解し、１５％コレステリル化ゼラチン溶液を得た。得られた溶液０．５ｍＬに架橋用分子であるトリスクシンイミジルシトレート（ＴＳＣ）１９．３２ｍｇを混合して溶解し、実施例１６の組織接着膜作製用の溶液を製造した。なお、このとき、組織接着膜作製用溶液中のＴＳＣのモル濃度は、８０ｍＭとなるように調製した。前記溶液をテフロン（登録商標）製トレイ（底面８ｃｍ×５ｃｍ）に入れ、ドラフトにおいて３５℃のホットプレート上でこれを放置してヘキサフルオロイソプロパノール溶液を揮発させた。３日間放置後、１晩真空乾燥を行い、組織接着膜が製造された。
得られた組織接着膜を直径８ｍｍのポンチで打ち抜き、１５ｍＬのプラスチック製試験管に入れた。その後、４℃の超純水１０ｍＬを入れることにより架橋反応の進行と膜形成を評価した。
実施例１６において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
得られたコレステリル化ゼラチン０．３ｇをヘキサフルオロイソプロパノール２ｍＬに溶解し、１５％コレステリル化ゼラチン溶液を得た。得られた溶液０．５ｍＬに架橋用分子であるトリスクシンイミジルシトレート（ＴＳＣ）１９．３２ｍｇを混合して溶解し、実施例１６の組織接着膜作製用の溶液を製造した。なお、このとき、組織接着膜作製用溶液中のＴＳＣのモル濃度は、８０ｍＭとなるように調製した。前記溶液をテフロン（登録商標）製トレイ（底面８ｃｍ×５ｃｍ）に入れ、ドラフトにおいて３５℃のホットプレート上でこれを放置してヘキサフルオロイソプロパノール溶液を揮発させた。３日間放置後、１晩真空乾燥を行い、組織接着膜が製造された。
得られた組織接着膜を直径８ｍｍのポンチで打ち抜き、１５ｍＬのプラスチック製試験管に入れた。その後、４℃の超純水１０ｍＬを入れることにより架橋反応の進行と膜形成を評価した。
実施例１６において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例１７）
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を４０ｍＭ（添加量９．９８ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例１７の組織接着剤を製造した。
実施例１７において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を４０ｍＭ（添加量９．９８ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例１７の組織接着剤を製造した。
実施例１７において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例１８）
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を２０ｍＭ（添加量４．８ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例１８の組織接着剤を製造した。
実施例１８において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のＴＳＣ濃度を２０ｍＭ（添加量４．８ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例１８の組織接着剤を製造した。
実施例１８において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例１９）
組織接着膜中のゼラチン中に含まれるアミノ基の５０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、ＴＳＣ濃度を８０ｍＭ（添加量１９．３２ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例１９の組織接着剤を製造した。
実施例１９において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のゼラチン中に含まれるアミノ基の５０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、ＴＳＣ濃度を８０ｍＭ（添加量１９．３２ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例１９の組織接着剤を製造した。
実施例１９において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例２０）
組織接着膜中のゼラチン中に含まれるアミノ基の５０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、ＴＳＣ濃度を２０ｍＭ（添加量４．８ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例２０の組織接着剤を製造した。
実施例２０において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のゼラチン中に含まれるアミノ基の５０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、ＴＳＣ濃度を２０ｍＭ（添加量４．８ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例２０の組織接着剤を製造した。
実施例２０において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（実施例２１）
組織接着膜中のゼラチン中に含まれるアミノ基の５０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、ＴＳＣ濃度を５ｍＭ（添加量０．６ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例２１の組織接着剤を製造した。
実施例２１において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
組織接着膜中のゼラチン中に含まれるアミノ基の５０％となるようコレステリル化クロロフォルメイト（Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍａｔｅ）を粉体のまま添加し、ＴＳＣ濃度を５ｍＭ（添加量０．６ｍｇ）となるようにした他は実施例１６と同様にして、実施例２１の組織接着剤を製造した。
実施例２１において調製した組織接着膜は、４℃の水を入れることにより架橋反応が進行し膜が形成した。
（比較例１）
分子量１００,０００のゼラチンを用い、架橋用分子を含まない場合においては４℃において膜が膨潤し、３７℃においては膜が形成されず溶解した。
分子量１００,０００のゼラチンを用い、架橋用分子を含まない場合においては４℃において膜が膨潤し、３７℃においては膜が形成されず溶解した。
（比較例２）
分子量２０,０００のゼラチンを用いた他は実施例１６と同様にして、比較例２の組織接着膜を製造した。
比較例２の組織接着膜は、ボロボロであり、膜として形成できなかった。
分子量２０,０００のゼラチンを用いた他は実施例１６と同様にして、比較例２の組織接着膜を製造した。
比較例２の組織接着膜は、ボロボロであり、膜として形成できなかった。
（比較例３）
分子量５０,０００のゼラチンを用いた他は実施例１６と同様にして、比較例３の組織接着膜を製造した。
比較例３の組織接着膜は、ボロボロであり、膜として形成できなかった。
分子量５０,０００のゼラチンを用いた他は実施例１６と同様にして、比較例３の組織接着膜を製造した。
比較例３の組織接着膜は、ボロボロであり、膜として形成できなかった。
本発明の組織接着膜及びその製造方法は、接着強度が高く、かつ、生体親和性の高い組織接着膜及びその製造方法に関するものなので、組織接着剤、組織封止剤（Ｓｅａｌａｎｔ）、止血剤等を必要とする産業等において利用可能性がある。
Claims (9)
- 側鎖にアミノ基を備え、分子量が５０,０００以上、１００,０００以下であるゼラチン；及び
一分子内に２以上の活性エステル基又は酸無水物を有している架橋用分子；
が集積してなる組織接着膜。 - 前記ゼラチンの一部又は全部が、その側鎖に疎水性官能基を備えた疎水化ゼラチンである、請求項１に記載の組織接着膜。
- 前記疎水化ゼラチンが、２個以上のアミノ酸が直鎖状に連結された高分子であり、当該高分子中のＬｙｓ残基の一部が前記疎水性官能基で置換されている、請求項２に記載の組織接着膜。
- 前記疎水性官能基が、コレステリル基、オレイル基、イソステアリル基、ステアリル基、イソパルミチル基、ミリスチル基、ラウリル基、カプリン基、ペラルゴル基、カプリル基、カプロル基、α−リロレニル基、ステアリドニル基、エイコサペンタエノイル基、ドコサヘキサエニル基からなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせである請求項１〜３のいずれか１項に記載の組織接着膜。
- 前記ゼラチンが、ヒト、ブタ、ウシ、魚由来の天然ゼラチン、又はこれらの遺伝子組換えゼラチンからなる群より選択される１種、または２種以上の組み合わせである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の組織接着膜。
- 前記架橋用分子が、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、グルタミン酸、アスパラギン酸、オキサル酢酸、ｃｉｓ−アコニット酸、２−ケトグルタル酸、ポリ酒石酸、ポリクエン酸、ポリリンゴ酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸からなる群から選ばれる１種、または２種以上の組み合わせである、請求項１〜５のいずれか１項に記載の組織接着膜。
- （１）ゼラチン又は疎水化ゼラチンをフッ素系溶媒に分散させてから、一分子内に２個以上の活性エステル基又は酸無水物を有する架橋用分子を混合する工程；及び
（２）前記フッ素系溶媒を揮発させる工程；
を有する、組織接着膜の製造方法。 - 前記工程（１）の前に、
ゼラチンを溶解させた溶液に、アミン存在下で、疎水性官能基を有する有機分子を添加し、前記ゼラチンの側鎖のアミノ基の一部を前記疎水性官能基で置換して、前記疎水化ゼラチンを合成する工程
を行う、請求項７に記載の組織接着膜の製造方法。 - 前記フッ素系溶媒がヘキサフルオロイソプロパノールである、請求項７又は請求項８に記載の組織接着膜の製造方法。
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