JPWO2005090565A1 - Ｄｎａアレイと一塩基多型の検出方法 - Google Patents
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Abstract
遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポット群と、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポット群とを固相基体上に有し、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のそれぞれを構成するプローブスポットは、プローブスポット毎にプローブの長さが異なる。このＤＮＡアレイは、より正確なＳＮＰ検出を可能とする。
Description
この出願の発明はＤＮＡアレイと一塩基多型の検出方法に関するものである。さらに詳しくは、この出願の発明は、一塩基多型をより正確に検出することのできるＤＮＡアレイと、このＤＮＡアレイを用いた一塩基多型の検出方法に関するものである。
ポストゲノムの時代を迎え、ヌクレオチド配列中の塩基種を正確に、効率よく、さらには低コストで検出するための新しい技術が求められている。例えば、ＳＮＰ（Ｓｉｎｇｌｅ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ：一塩基多型）はヒトゲノムに約０．１％（約１０００塩基に一塩基）の割合で存在する最も頻度の高い多型である。すなわち、この一塩基多型とは、ゲノム遺伝子の一塩基が他の塩基に置換することによって、例えば野性型がＧ−Ｃ塩基対であるのに対し、多型形態ではＡ−Ｔ塩基対となっている状態を意味する。また二媒体染色体のそれぞれの対立遺伝子が多型形態である場合（ホモ接合型多型形態）と、一方が野性型、他方が多型形態である場合（ヘテロ接合型多型形態）とが存在する。
このような一塩基の変異は、例えばコドン変異による変異アミノ酸の合成（ミスセンス変異）や終止コドンの生成による不完全タンパク質の合成（ナンセンス変異）を生じさせる場合がある。従って、ＳＮＰの有無が様々な疾病にも関連することが明らかになりつつあり（例えば肺癌に関するｐ５３遺伝子のＳＮＰ：非特許文献１）、診断や遺伝的治療法等を目的としてＳＮＰの有無を正確に判定すること（ＳＮＰタイピング）の重要性が強く認識されてきている。また、このＳＮＰは疾患易罹患性や薬剤反応性に関連する遺伝子を探索する際の有用な多型マーカーでもあり、テーラーメイド医療のための重要な遺伝子情報としても注目されている。
ＳＮＰタイピングの方法としては、「ハイブリダイゼーション効率を利用した方法」、「酵素認識効率を利用した方法」、「電気的手法を利用した方法」等が知られているが、特にハイブリダイゼーション効率を利用した方法は、ＤＮＡアレイ（例えば特許文献１−４、非特許文献２、３参照）への適用が様々に検討されており、例えば非特許文献４にはＤＮＡアレイを用いたＢＲＣＡ１遺伝子ＳＮＰの検出例が報告されている。
このＳＮＰ検出用のＤＮＡアレイは、例えば、標的遺伝子の野性型配列に相補的な第１プローブスポットと、その遺伝子の一塩基多型配列に相補的な第２プローブスポットとを固相基体上に配置している。そして、ＳＮＰの検出に当たっては、蛍光標識プライマーを用いたＰＣＲ増幅等の手段によって調製された標的遺伝子ｃＤＮＡをこのＤＮＡアレイに接触させる。標的遺伝子が野性型の場合、その標識ｃＤＮＡは第１プローブにハイブリダイズし、第１プローブのスポットからのみ蛍光シグナルが得られる（ホモ接合型野性型形態）。一方、標的遺伝子の両方の対立遺伝子がＳＮＰの場合には、第２プローブスポットのみから蛍光シグナルが得られ（ホモ接合型ＳＮＰ形態）、一方の対立遺伝子がＳＮＰの場合には、第１プローブスポットと第２プローブスポットとの両方に同程度の蛍光シグナルがえられる（ヘテロ接合型ＳＮＰ形態）。
米国特許第５，４７４，７９６号明細書 米国特許第５，６０５，６６２号明細書 国際公開第９５／２５１１１６号パンフレット 国際公開第９５／３５５０５号パンフレット Ｂｉｒｏｓ ｅｔ ａｌ．Ｎｅｏｐｌａｓｍａ ４８（５）：４０７−１１，２００１ Ｓｃｈｅｎａ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．９３：１０６１４−１０６１９，１９９６ Ｈｅｌｌｅｒ，Ｒ．Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９４：２１５０−２１５５，１９９７ Ｈａｃｉａ ＪＧ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．１４：４４１−４４７，１９９６
このような一塩基の変異は、例えばコドン変異による変異アミノ酸の合成（ミスセンス変異）や終止コドンの生成による不完全タンパク質の合成（ナンセンス変異）を生じさせる場合がある。従って、ＳＮＰの有無が様々な疾病にも関連することが明らかになりつつあり（例えば肺癌に関するｐ５３遺伝子のＳＮＰ：非特許文献１）、診断や遺伝的治療法等を目的としてＳＮＰの有無を正確に判定すること（ＳＮＰタイピング）の重要性が強く認識されてきている。また、このＳＮＰは疾患易罹患性や薬剤反応性に関連する遺伝子を探索する際の有用な多型マーカーでもあり、テーラーメイド医療のための重要な遺伝子情報としても注目されている。
ＳＮＰタイピングの方法としては、「ハイブリダイゼーション効率を利用した方法」、「酵素認識効率を利用した方法」、「電気的手法を利用した方法」等が知られているが、特にハイブリダイゼーション効率を利用した方法は、ＤＮＡアレイ（例えば特許文献１−４、非特許文献２、３参照）への適用が様々に検討されており、例えば非特許文献４にはＤＮＡアレイを用いたＢＲＣＡ１遺伝子ＳＮＰの検出例が報告されている。
このＳＮＰ検出用のＤＮＡアレイは、例えば、標的遺伝子の野性型配列に相補的な第１プローブスポットと、その遺伝子の一塩基多型配列に相補的な第２プローブスポットとを固相基体上に配置している。そして、ＳＮＰの検出に当たっては、蛍光標識プライマーを用いたＰＣＲ増幅等の手段によって調製された標的遺伝子ｃＤＮＡをこのＤＮＡアレイに接触させる。標的遺伝子が野性型の場合、その標識ｃＤＮＡは第１プローブにハイブリダイズし、第１プローブのスポットからのみ蛍光シグナルが得られる（ホモ接合型野性型形態）。一方、標的遺伝子の両方の対立遺伝子がＳＮＰの場合には、第２プローブスポットのみから蛍光シグナルが得られ（ホモ接合型ＳＮＰ形態）、一方の対立遺伝子がＳＮＰの場合には、第１プローブスポットと第２プローブスポットとの両方に同程度の蛍光シグナルがえられる（ヘテロ接合型ＳＮＰ形態）。
ＤＮＡアレイを用いたＳＮＰ検出では、それぞれのプローブスポットの蛍光シグナルを指標として明確に野性型形態、ホモ接合型ＳＮＰ形態、ヘテロ接合型ＳＮＰ形態を区別することは容易ではない。すなわち、野性型遺伝子と多型遺伝子のそれぞれに由来する標識ｃＤＮＡは一塩基のみの違いである。従って、野性型ｃＤＮＡの多くはそれに完全に相補的な野性型プローブ（第１プローブ）にハイブリダイズするが、一部は一塩基が異なる第２プローブにもハイブリダイズする。同様に多型ｃＤＮＡも一部は第１プローブにもハイブリダイズする。そこでＤＮＡアレイによるＳＮＰ検出は、第１プローブスポットと第２プローブスポットのそれぞれの蛍光シグナルを比較することによって行われるが、両者のシグナル強度の比較が困難な場合があり、結果として誤ったＳＮＰ判定を行ってしまうという不都合が存在した。
そこでこの出願の発明は、より正確なＳＮＰ検出を可能とするＤＮＡアレイと、このＤＮＡアレイを用いたＳＮＰ検出方法を提供することを課題としている。
さらにこの出願の発明は、ＤＮＡアレイを用いたＳＮＰ検出において、より正確な検出を可能とするプローブ長を決定する方法と、この方法により決定された特定長のプローブを備えたＤＮＡアレイを提供することを課題としている。
この出願の発明者らは、ＳＮＰ検出の対象となる被験遺伝子毎に、ＳＮＰ形態を正確に判定するための最適標識シグナルを得ることのできるプローブ長が異なることを見出してこの発明を完成させた。
この出願は、前記の課題を解決するための第１の発明として、遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポット群と、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポット群とを固相基体上に有し、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のそれぞれを構成するプローブスポットは、プローブスポット毎にプローブの長さが異なる、ことを特徴とするＤＮＡアレイを提供する。
この第１発明のＤＮＡアレイにおいては、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群は、それぞれ、２〜１０のプローブスポットからなることを好ましい態様としている。
またこの第１発明の前記態様においては、２〜１０のプローブスポットが、そのプローブの長さの順に配置されていることを好ましい態様としている。
この出願は、第２の発明として、前記第１発明のＤＮＡアレイを少なくとも含む、遺伝子の一塩基多型を検出するためのキットを提供する。
この出願は、第３の発明として、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子の一塩基多型を検出する方法であって、以下のステップ：
（ａ） 被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ；
（ｂ） 標識ポリヌクレオチドをプローブ付固相基体に接触させるステップ；
（ｃ） ＤＮＡアレイ上のプローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定するステップ；
を含むことを特徴とする一塩基多型の検出方法を提供する。
この第３発明の方法においては、前記ステップ（ｃ）において測定された、前記第１のプローブスポット群と前記第２のプローブスポット群のそれぞれのシグナルを比較することをさらに好ましい態様としている。
この出願は、第４の発明として、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて、遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長を決定する方法であって、以下のステップ：
（ａ） 被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ；
（ｂ） 標識ポリヌクレオチドをＤＮＡアレイに接触させるステップ；
（ｃ） ＤＮＡアレイ上の各プローブに結合した標識ポリヌクレオチドの標識シグナルを測定し、
以下の基準：
（ｉ） 被験遺伝子がホモ接合性第１多型形態の場合に第１のプローブスポット群に標識シグナルが観察されること、
（ｉｉ） 被験遺伝子がホモ接合性第２多型形態の場合に第２のプローブスポット群に標識シグナルが観察されること、
（ｉｉｉ） 被験遺伝子がヘテロ接合性多型形態の場合に第１のプローブスポット群と第２のプローブスポット群とに同程度の標識シグナルが観察されること、
を満たすプローブスポットのプローブ長を、その遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長と決定することを特徴とする方法を提供する。
さらにこの出願は、第５の発明として、遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポットと、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポットとを固相基体上に有し、第１および第２のプローブスポットを構成するプローブ長が、前記第４発明の方法で決定された長さであるＤＮＡアレイを提供する。
第１発明のＤＮＡアレイは、様々な１塩基多型形態に対してより正確にハイブリダイズすることのできる様々なプローブ長からなるプローブスポットを備えている。従って、この第１発明のＤＮＡアレイを用いた第３発明の方法によって、より正確なＳＮＰ検出が可能となる。
また第４発明の方法によって、ＳＮＰ検出の対象となる遺伝子毎に適切なプローブ長が決定される。そして、この方法によって、各遺伝子のＳＮＰ検出に適したプローブ長からなるプローブスポットを含む第５発明のＤＮＡアレイが提供される。
なおこの出願の発明において、「一塩基多型」とは例えば遺伝子データベース等に登録された遺伝子配列とは異なる一塩基変異を有する場合を言う。従って、データベース等に登録された遺伝子配列が必ずしも野性型（正常型）を意味するわけではなく、また一塩基変異を有する遺伝子が変異遺伝子であるわけでもない。ただし、一塩基の変異が疾患等に関連することが知られている遺伝子については、野性型を「正常型」、一塩基多型を「変異型」と定義することもできる。この出願の発明においては、従って、遺伝子の「第１の多型形熊」と「第２の多型形態」とは、基本的に「野性型」および「変異型」を意味するものではなく、以下の説明では、第１の多型形態はデータベース等に登録されている遺伝子配列の形態、第２の多型形態は第１多型形態の配列中の一塩基が他の塩基に置換した配列からなる形態と定義する。
この出願の発明における「遺伝子ポリヌクレオチド」とは、具体的には、ＳＮＰ検出の対象となる遺伝子のゲノムＤＮＡ、ゲノムＤＮＡから転写されたｍＲＮＡ、またはｍＲＮＡから合成されたｃＤＮＡを意味する。またこのポリヌクレオチドは、複数のヌクレオチド、好ましくは３０以上、より好ましくは５０以上のヌクレオチドが結合した分子である。
この出願の各発明における具体的構成は、発明の実施形態の説明や実施例において詳しく説明する。またこの発明に係る用語や概念は、特別に規定したものを除き、当該技術分野において通常使用されている範囲のものである。さらにこの発明を実施するために使用する様々な技術は、特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であれば容易かつ確実に実施可能である。例えば、遺伝子工学および分子生物学的技術はＳａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ，ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，Ｎ．Ｙ，１９９５等に記載されている。
そこでこの出願の発明は、より正確なＳＮＰ検出を可能とするＤＮＡアレイと、このＤＮＡアレイを用いたＳＮＰ検出方法を提供することを課題としている。
さらにこの出願の発明は、ＤＮＡアレイを用いたＳＮＰ検出において、より正確な検出を可能とするプローブ長を決定する方法と、この方法により決定された特定長のプローブを備えたＤＮＡアレイを提供することを課題としている。
この出願の発明者らは、ＳＮＰ検出の対象となる被験遺伝子毎に、ＳＮＰ形態を正確に判定するための最適標識シグナルを得ることのできるプローブ長が異なることを見出してこの発明を完成させた。
この出願は、前記の課題を解決するための第１の発明として、遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポット群と、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポット群とを固相基体上に有し、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のそれぞれを構成するプローブスポットは、プローブスポット毎にプローブの長さが異なる、ことを特徴とするＤＮＡアレイを提供する。
この第１発明のＤＮＡアレイにおいては、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群は、それぞれ、２〜１０のプローブスポットからなることを好ましい態様としている。
またこの第１発明の前記態様においては、２〜１０のプローブスポットが、そのプローブの長さの順に配置されていることを好ましい態様としている。
この出願は、第２の発明として、前記第１発明のＤＮＡアレイを少なくとも含む、遺伝子の一塩基多型を検出するためのキットを提供する。
この出願は、第３の発明として、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子の一塩基多型を検出する方法であって、以下のステップ：
（ａ） 被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ；
（ｂ） 標識ポリヌクレオチドをプローブ付固相基体に接触させるステップ；
（ｃ） ＤＮＡアレイ上のプローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定するステップ；
を含むことを特徴とする一塩基多型の検出方法を提供する。
この第３発明の方法においては、前記ステップ（ｃ）において測定された、前記第１のプローブスポット群と前記第２のプローブスポット群のそれぞれのシグナルを比較することをさらに好ましい態様としている。
この出願は、第４の発明として、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて、遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長を決定する方法であって、以下のステップ：
（ａ） 被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ；
（ｂ） 標識ポリヌクレオチドをＤＮＡアレイに接触させるステップ；
（ｃ） ＤＮＡアレイ上の各プローブに結合した標識ポリヌクレオチドの標識シグナルを測定し、
以下の基準：
（ｉ） 被験遺伝子がホモ接合性第１多型形態の場合に第１のプローブスポット群に標識シグナルが観察されること、
（ｉｉ） 被験遺伝子がホモ接合性第２多型形態の場合に第２のプローブスポット群に標識シグナルが観察されること、
（ｉｉｉ） 被験遺伝子がヘテロ接合性多型形態の場合に第１のプローブスポット群と第２のプローブスポット群とに同程度の標識シグナルが観察されること、
を満たすプローブスポットのプローブ長を、その遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長と決定することを特徴とする方法を提供する。
さらにこの出願は、第５の発明として、遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポットと、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポットとを固相基体上に有し、第１および第２のプローブスポットを構成するプローブ長が、前記第４発明の方法で決定された長さであるＤＮＡアレイを提供する。
第１発明のＤＮＡアレイは、様々な１塩基多型形態に対してより正確にハイブリダイズすることのできる様々なプローブ長からなるプローブスポットを備えている。従って、この第１発明のＤＮＡアレイを用いた第３発明の方法によって、より正確なＳＮＰ検出が可能となる。
また第４発明の方法によって、ＳＮＰ検出の対象となる遺伝子毎に適切なプローブ長が決定される。そして、この方法によって、各遺伝子のＳＮＰ検出に適したプローブ長からなるプローブスポットを含む第５発明のＤＮＡアレイが提供される。
なおこの出願の発明において、「一塩基多型」とは例えば遺伝子データベース等に登録された遺伝子配列とは異なる一塩基変異を有する場合を言う。従って、データベース等に登録された遺伝子配列が必ずしも野性型（正常型）を意味するわけではなく、また一塩基変異を有する遺伝子が変異遺伝子であるわけでもない。ただし、一塩基の変異が疾患等に関連することが知られている遺伝子については、野性型を「正常型」、一塩基多型を「変異型」と定義することもできる。この出願の発明においては、従って、遺伝子の「第１の多型形熊」と「第２の多型形態」とは、基本的に「野性型」および「変異型」を意味するものではなく、以下の説明では、第１の多型形態はデータベース等に登録されている遺伝子配列の形態、第２の多型形態は第１多型形態の配列中の一塩基が他の塩基に置換した配列からなる形態と定義する。
この出願の発明における「遺伝子ポリヌクレオチド」とは、具体的には、ＳＮＰ検出の対象となる遺伝子のゲノムＤＮＡ、ゲノムＤＮＡから転写されたｍＲＮＡ、またはｍＲＮＡから合成されたｃＤＮＡを意味する。またこのポリヌクレオチドは、複数のヌクレオチド、好ましくは３０以上、より好ましくは５０以上のヌクレオチドが結合した分子である。
この出願の各発明における具体的構成は、発明の実施形態の説明や実施例において詳しく説明する。またこの発明に係る用語や概念は、特別に規定したものを除き、当該技術分野において通常使用されている範囲のものである。さらにこの発明を実施するために使用する様々な技術は、特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であれば容易かつ確実に実施可能である。例えば、遺伝子工学および分子生物学的技術はＳａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｍａｎｉａｔｉｓ，ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ−Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，Ｎ．Ｙ，１９９５等に記載されている。
図１は、この発明のＤＮＡアレイの構成例を示した模式図である。
図２はこの発明のＤＮＡアレイの別の構成例を示した模式図である。
図３は、この発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子ＧＮＢ３のＳＮＰを検出した例を示した蛍光画像である。
図４は、この発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子ＭＴＨＦＲのＳＮＰを検出した例を示した蛍光画像である。
図５は、この発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２およびＣＹＰ２Ｃ１９−３のそれぞれのＳＮＰを検出した例を示した蛍光画像である。
図２はこの発明のＤＮＡアレイの別の構成例を示した模式図である。
図３は、この発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子ＧＮＢ３のＳＮＰを検出した例を示した蛍光画像である。
図４は、この発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子ＭＴＨＦＲのＳＮＰを検出した例を示した蛍光画像である。
図５は、この発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２およびＣＹＰ２Ｃ１９−３のそれぞれのＳＮＰを検出した例を示した蛍光画像である。
第１発明のＤＮＡアレイは、１以上のプローブからなる第１のプローブスポット群と、同じく１以上のプローブからなる第２のプローブスポット群とを固相基体上に有している。第１のプローブスポット群を構成する各プローブは、解析対象となる遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が、同遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的であり、第２のプローブスポット群を構成する各プローブは、同遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が、同遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である。そして、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のそれぞれを構成するプローブスポットは、それぞれ長さの異なるプローブによって構成されている。
さらに詳しくは、「プローブスポット」とは、１以上、好ましくは１０３〜１０１３個の同一プローブ（同一配列、同一長のプローブ）の集団が他のプローブスポットと分離されて存在する領域を言う。「プローブスポット群」とは、同一配列で、かつ長さの異なるプローブからなるプローブスポットの集団を意味する。この集団は、一つの好ましい態様として、２〜１０のプローブスポットからなる集団である。またこれらのプローブスポットは、それを構成するプローブの長さの順に整列配置されていることを好ましい態様としている。以下、このように整列配置されているプローブスポット群を「プローブスポット列」と記載することがある。さらに、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列は、互いに同一プローブ長からなるプローブスポットが相対向してもよい。
図１は、第１発明のＤＮＡアレイの構成例である。この第１図の例では、第１プローブスポット（黒丸）の列と、第２プローブスポット（白丸）の列は、それぞれ８個のプローブスポットによって構成されている。また、各プローブスポットは、それぞれに含まれるプローブが長→短の順に１〜８段目までに整列配置されている。すなわち、第１段目の第１プローブスポット列と第２プローブスポット列のそれぞれを構成するプローブはｎ個のヌクレオチドであり（ｎｍｅｒ）、以下第２段目スポットのプローブから順に、ｎ−１ ｍｅｒ、ｎ−２ ｍｅｒ、ｎ−３ｍｅｒ、ｎ−４ ｍｅｒ、ｎ−５ ｍｅｒ、ｎ−６ ｍｅｒ、ｎ−７ ｍｅｒである。この場合の「ｎ」は１０〜１００程度、好ましくは２０〜５０程度である。
「長さの順番」は長→短の順番であってもよく、短→長の順番であってもよい。また、プローブ長の違いは１塩基づつの違いでもよく、あるいは２または３塩基づつの違いであってもよい。さらに、この図１の例では第１プローブスポット列と第２プローブスポット列のそれぞれのスポットを縦方向（上から下）に配置しているが、横方向（右から左）に配置してもよい。
さらにまた、同一プローブ（同一配列、同一長のプローブ）からなるプローブスポット２〜５個程度を整列配置するようにしてもよい。例えば、図２は、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列の各段には、同一プローブからなる３個のプローブスポットがそれぞれ並列配置されている。すなわち、同一プローブからなる複数個のプローブスポットの存在によって、個々のプローブスポットに含まれるプローブ数に若干の変動による影響を排除することができる。
第１発明のＤＮＡアレイは、以上のとおりのプローブスポット群（好ましくはプローブスポット列）を配置することを除き、通常のＤＮＡアレイと同様にして作製することができる。ＤＮＡアレイの作製方法としては、固相担体表面で直接プローブを合成する方法（オン・チップ法）と、予め調製したプローブを固相基体表面に固定する方法とが知られているが、この発明のＤＮＡアレイは後者の方法で作製することが好ましい。予め調製したプローブを固相基体表面に固定する場合には、官能基を導入したプローブを合成し、表面処理した固相基体表面にプローブを点着し、共有結合させる（例えば、Ｌａｍｔｕｒｅ，Ｊ．Ｂ．ｅｔ ａｌ．Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２：２１２１−２１２５，１９９４；Ｇｕｏ，Ｚ．ｅｔ ａｌ．Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２：５４５６−５４６５，１９９４）。プローブは、一般的には、表面処理した固相基体にスペーサーやクロスリンカーを介して共有結合させる。ガラス表面にポリアクリルアミドゲルの微小片を整列させ、そこにプローブを共有結合させる方法（Ｙｅｒｓｈｏｖ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９４：４９１３，１９９６）、あるいはポリＬ−リジンを被覆した固相基体にプローブを結合する方法（特開２００１−１８６８８０号公報）も知られている。また、シリカマイクロアレイ上に微小電極のアレイを作製し、電極上にはストレプトアビジンを含むアガロースの浸透層を設けて反応部位とし、この部位をプラスに荷電させることでビオチン化プローブを固定し、部位の荷電を制御することで、高速で厳密なハイブリダイゼーションを可能にする方法も知られている（Ｓｏｓｎｏｗｓｋｉ，Ｒ．Ｇ．ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９４：１１１９−１１２３，１９９７）。この発明のＤＮＡアレイは、以上のいずれの方法によっても作製することができる。また、プローブを固相基体表面に滴下させてスポッティングを行う場合には、ピン方式（例えば米国特許第５，８０７，５２２３号）によって行うこともできるが、特開２００１−１１６７５０号公報や特開２００１−１８６８８１号公報に開示されているインクジェット方式を採用することが、均一で一定形状のスポット形成のために好ましい。また、このインクジェット方式では、個々のプローブスポットに含まれるプローブ数を等しくすることができるため、プローブ長の違いによるハイブリダイゼーションの違いを正確に測定することができる。さらに、特開２００１−１８６８８０号公報に開示されているような、スポッティング重ね打ちを行うこと、あるいはＷＯ ０３／０３８０８９ Ａ１号パンフレットに開示された組成からなるプローブ溶液（保湿性物質を含む溶液）を使用することも、好ましいスポット形成のために推奨される。
スポッティングの後は、冷却、スポットに対する水分付加（湿度〜８０％程度に一定時間保持）、焼成乾燥による固定化処理等を行うことによって、各スポットを固相基体上に固定するし、ＤＮＡアレイを完成することができる。
なお、ＤＮＡアレイの固相基体は、通常のＤＮＡアレイに使用されるガラス（スライドガラス）の他、プラスチック、シリコーン、セラミック等を使用することもできる。
第２発明は、前記のＤＮＡアレイを含むことを特徴とする一塩基多型検出用のキットである。このキットは、例えば、ＤＮＡアレイ、プライマー、ＰＣＲ緩衝液、ｄＮＴＰ、ＭｇＣｌ２、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ等によって構成することができる。
第３発明の方法は、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子の一塩基多型を検出する方法であって、以下のステップを必須として含むことを特徴としている。
（ａ） 被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ。
（ｂ） 標識ポリヌクレオチドをプローブ付固相基体に接触させるステップ。
（ｃ） ＤＮＡアレイ上のプローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定するステップ。
ステップ（ａ）における被験遺伝子は、ＳＮＰの存在が知られている遺伝子であり、その標識ポリヌクレオチドは、例えば既存のＳＮＰデータベース（例えばｈｔｔｐ：／／ＳＮＰ．ｉｍｓ．ｕ−ｔｏｋｙｏ．ａｃ．ｊｐ／ｉｎｄｅｘ＿ｊａ．ｈｔｍｌ）等で公開されているプライマーセットを用いて、被験者から単離したゲノム遺伝子またはトータルＲＮＡからのＰＣＲ産物（ｃＤＮＡ）として調製することができる。このＰＣＲ増幅の際に、標識プライマー（例えばシアニン系有機色素；Ｃｙ３、Ｃｙ５などを結合したプライマー）を取り込ませて標識ポリヌクレオチドとする。
ステップ（ｂ）では、標的ヌクレオチド配列をＤＮＡアレイに接触させ、ＤＮＡアレイのプローブにハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーションは、９６穴もしくは３８４穴プラスチックプレートに分注した標識ポリヌクレオチド水性液を、ＤＮＡアレイ上に点着することによって実施することができる。点着の量は、１〜１００ｎｌ程度とすることができる。ハイブリダイゼーションは、室温〜７０℃の温度範囲で、１〜２０時間の範囲で実施することが好ましい。ハイブリダイゼーション終了後、界面活性剤と緩衝液との混合溶液を用いて洗浄を行い、未反応の標識ポリヌクレオチドを除去する。界面活性剤としては、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を用いることが好ましい。緩衝液としては、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等を用いることができるが、クエン酸緩衝液を用いることが好ましい。
そして、ステップ（ｃ）において、プローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定する。そして、得られたシグナルから、例えば、以下のとおりにＳＮＰを検出する。
まず、得られたシグナルのカットオフ値を２０，０００とし、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群の少なくともどちらか一方のシグナルが、２０，０００以上の部分の第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のシグナル比（第１／第２）を算出し、
（１）シグナル比が＞５の時は被験遺伝子をホモ接合性第１多型形態と判定する。
（２） シグナル比が＜０．２の時は被験遺伝子をホモ接合性第２多型形態と判定する。
（３） さらに、シグナル比が０．２以上５以下の時は被験遺伝子をヘテロ接合性多型形態と判定する。
更に別の判定方法としては、図１に例示したＤＮＡアレイを用いた場合に、第１プローブスポット列を構成する８個のスポット全てにシグナルが観察され、第２プローブスポット列を構成する４個のスポットにシグナルが観察された場合には、前記（１）に該当し、この被験遺伝子はホモ接合型第１多型形態と判定される。あるいはまた、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列のそれぞれから同数のシグナルスポットが得られた場合であっても、第１プローブスポット列のシグナルスポットのシグナル強度の総和が第２プローブスポット列のそれより多い場合には、前記（１）に該当し、この被験遺伝子はホモ接合型第１多型形態と判定される。
また前記（３）の判定基準は、シグナルスポットの数が同一であり、それぞれのシグナル強度の総和が３０％以下、好ましくは２０％以下、より好ましくは１０％以下である場合とすることもできる。
すなわち、従来方法では、それぞれ単一の第１プローブスポットと第２プローブスポットのシグナル強度の多寡を比較するのに対し、この第３発明の方法では、それぞれ複数個のスポットからなるプローブスポット群からより多くのシグナルを発するスポット数を測定し、それを比較する。これによって、従来方法に比べてはるかに高精度でＳＮＰを検出することが可能となる。
なお、第３発明における標識ポリヌクレオチドの調製や、ハイブリダイゼーション手続等は、例えば特開２００１−０９５５７４号公報を初め、多くの特許文献、非特許文献に記載されており、それらの文献記載の方法を適宜に採用して行うことができる。
第４発明の方法は、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて、各遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長を決定する方法である。具体的には、前記第３発明の方法でＳＮＰを検出する際に最も適したプローブ長、すなわち、それぞれの１塩基多型形態を最も正確に反映することのできるプローブ長が、この第４発明において決定されるプローブ長となる。従って、被験者のＳＮＰ検出を目的とした第３発明の方法によって得られるデータから、適切なプローブ長を得ることができる。
そして、各遺伝子について適切なプローブ長からなるプローブスポットをそれぞれに備えた第５発明のＤＮＡアレイが提供される。この第５発明のＤＮＡアレイは、一つの被検遺伝子に対して、それぞれ「一つ」の第１プローブスポットと第２プローブスポットを備えている。それぞれのプローブスポットを構成するプローブは、その遺伝子のＳＮＰを検出するための最適の長さである。従って、この第５発明のＤＮＡアレイは、第１発明のＤＮＡアレイと比較してはるかに多くの遺伝子のＳＮＰ検出を対象とするプローブスポットを備えることができ、しかもＳＮＰ検出制度は第１発明のＤＮＡアレイと実質的に同一である。
さらに詳しくは、「プローブスポット」とは、１以上、好ましくは１０３〜１０１３個の同一プローブ（同一配列、同一長のプローブ）の集団が他のプローブスポットと分離されて存在する領域を言う。「プローブスポット群」とは、同一配列で、かつ長さの異なるプローブからなるプローブスポットの集団を意味する。この集団は、一つの好ましい態様として、２〜１０のプローブスポットからなる集団である。またこれらのプローブスポットは、それを構成するプローブの長さの順に整列配置されていることを好ましい態様としている。以下、このように整列配置されているプローブスポット群を「プローブスポット列」と記載することがある。さらに、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列は、互いに同一プローブ長からなるプローブスポットが相対向してもよい。
図１は、第１発明のＤＮＡアレイの構成例である。この第１図の例では、第１プローブスポット（黒丸）の列と、第２プローブスポット（白丸）の列は、それぞれ８個のプローブスポットによって構成されている。また、各プローブスポットは、それぞれに含まれるプローブが長→短の順に１〜８段目までに整列配置されている。すなわち、第１段目の第１プローブスポット列と第２プローブスポット列のそれぞれを構成するプローブはｎ個のヌクレオチドであり（ｎｍｅｒ）、以下第２段目スポットのプローブから順に、ｎ−１ ｍｅｒ、ｎ−２ ｍｅｒ、ｎ−３ｍｅｒ、ｎ−４ ｍｅｒ、ｎ−５ ｍｅｒ、ｎ−６ ｍｅｒ、ｎ−７ ｍｅｒである。この場合の「ｎ」は１０〜１００程度、好ましくは２０〜５０程度である。
「長さの順番」は長→短の順番であってもよく、短→長の順番であってもよい。また、プローブ長の違いは１塩基づつの違いでもよく、あるいは２または３塩基づつの違いであってもよい。さらに、この図１の例では第１プローブスポット列と第２プローブスポット列のそれぞれのスポットを縦方向（上から下）に配置しているが、横方向（右から左）に配置してもよい。
さらにまた、同一プローブ（同一配列、同一長のプローブ）からなるプローブスポット２〜５個程度を整列配置するようにしてもよい。例えば、図２は、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列の各段には、同一プローブからなる３個のプローブスポットがそれぞれ並列配置されている。すなわち、同一プローブからなる複数個のプローブスポットの存在によって、個々のプローブスポットに含まれるプローブ数に若干の変動による影響を排除することができる。
第１発明のＤＮＡアレイは、以上のとおりのプローブスポット群（好ましくはプローブスポット列）を配置することを除き、通常のＤＮＡアレイと同様にして作製することができる。ＤＮＡアレイの作製方法としては、固相担体表面で直接プローブを合成する方法（オン・チップ法）と、予め調製したプローブを固相基体表面に固定する方法とが知られているが、この発明のＤＮＡアレイは後者の方法で作製することが好ましい。予め調製したプローブを固相基体表面に固定する場合には、官能基を導入したプローブを合成し、表面処理した固相基体表面にプローブを点着し、共有結合させる（例えば、Ｌａｍｔｕｒｅ，Ｊ．Ｂ．ｅｔ ａｌ．Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２：２１２１−２１２５，１９９４；Ｇｕｏ，Ｚ．ｅｔ ａｌ．Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２：５４５６−５４６５，１９９４）。プローブは、一般的には、表面処理した固相基体にスペーサーやクロスリンカーを介して共有結合させる。ガラス表面にポリアクリルアミドゲルの微小片を整列させ、そこにプローブを共有結合させる方法（Ｙｅｒｓｈｏｖ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９４：４９１３，１９９６）、あるいはポリＬ−リジンを被覆した固相基体にプローブを結合する方法（特開２００１−１８６８８０号公報）も知られている。また、シリカマイクロアレイ上に微小電極のアレイを作製し、電極上にはストレプトアビジンを含むアガロースの浸透層を設けて反応部位とし、この部位をプラスに荷電させることでビオチン化プローブを固定し、部位の荷電を制御することで、高速で厳密なハイブリダイゼーションを可能にする方法も知られている（Ｓｏｓｎｏｗｓｋｉ，Ｒ．Ｇ．ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９４：１１１９−１１２３，１９９７）。この発明のＤＮＡアレイは、以上のいずれの方法によっても作製することができる。また、プローブを固相基体表面に滴下させてスポッティングを行う場合には、ピン方式（例えば米国特許第５，８０７，５２２３号）によって行うこともできるが、特開２００１−１１６７５０号公報や特開２００１−１８６８８１号公報に開示されているインクジェット方式を採用することが、均一で一定形状のスポット形成のために好ましい。また、このインクジェット方式では、個々のプローブスポットに含まれるプローブ数を等しくすることができるため、プローブ長の違いによるハイブリダイゼーションの違いを正確に測定することができる。さらに、特開２００１−１８６８８０号公報に開示されているような、スポッティング重ね打ちを行うこと、あるいはＷＯ ０３／０３８０８９ Ａ１号パンフレットに開示された組成からなるプローブ溶液（保湿性物質を含む溶液）を使用することも、好ましいスポット形成のために推奨される。
スポッティングの後は、冷却、スポットに対する水分付加（湿度〜８０％程度に一定時間保持）、焼成乾燥による固定化処理等を行うことによって、各スポットを固相基体上に固定するし、ＤＮＡアレイを完成することができる。
なお、ＤＮＡアレイの固相基体は、通常のＤＮＡアレイに使用されるガラス（スライドガラス）の他、プラスチック、シリコーン、セラミック等を使用することもできる。
第２発明は、前記のＤＮＡアレイを含むことを特徴とする一塩基多型検出用のキットである。このキットは、例えば、ＤＮＡアレイ、プライマー、ＰＣＲ緩衝液、ｄＮＴＰ、ＭｇＣｌ２、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ等によって構成することができる。
第３発明の方法は、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて遺伝子の一塩基多型を検出する方法であって、以下のステップを必須として含むことを特徴としている。
（ａ） 被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ。
（ｂ） 標識ポリヌクレオチドをプローブ付固相基体に接触させるステップ。
（ｃ） ＤＮＡアレイ上のプローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定するステップ。
ステップ（ａ）における被験遺伝子は、ＳＮＰの存在が知られている遺伝子であり、その標識ポリヌクレオチドは、例えば既存のＳＮＰデータベース（例えばｈｔｔｐ：／／ＳＮＰ．ｉｍｓ．ｕ−ｔｏｋｙｏ．ａｃ．ｊｐ／ｉｎｄｅｘ＿ｊａ．ｈｔｍｌ）等で公開されているプライマーセットを用いて、被験者から単離したゲノム遺伝子またはトータルＲＮＡからのＰＣＲ産物（ｃＤＮＡ）として調製することができる。このＰＣＲ増幅の際に、標識プライマー（例えばシアニン系有機色素；Ｃｙ３、Ｃｙ５などを結合したプライマー）を取り込ませて標識ポリヌクレオチドとする。
ステップ（ｂ）では、標的ヌクレオチド配列をＤＮＡアレイに接触させ、ＤＮＡアレイのプローブにハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーションは、９６穴もしくは３８４穴プラスチックプレートに分注した標識ポリヌクレオチド水性液を、ＤＮＡアレイ上に点着することによって実施することができる。点着の量は、１〜１００ｎｌ程度とすることができる。ハイブリダイゼーションは、室温〜７０℃の温度範囲で、１〜２０時間の範囲で実施することが好ましい。ハイブリダイゼーション終了後、界面活性剤と緩衝液との混合溶液を用いて洗浄を行い、未反応の標識ポリヌクレオチドを除去する。界面活性剤としては、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を用いることが好ましい。緩衝液としては、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等を用いることができるが、クエン酸緩衝液を用いることが好ましい。
そして、ステップ（ｃ）において、プローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定する。そして、得られたシグナルから、例えば、以下のとおりにＳＮＰを検出する。
まず、得られたシグナルのカットオフ値を２０，０００とし、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群の少なくともどちらか一方のシグナルが、２０，０００以上の部分の第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のシグナル比（第１／第２）を算出し、
（１）シグナル比が＞５の時は被験遺伝子をホモ接合性第１多型形態と判定する。
（２） シグナル比が＜０．２の時は被験遺伝子をホモ接合性第２多型形態と判定する。
（３） さらに、シグナル比が０．２以上５以下の時は被験遺伝子をヘテロ接合性多型形態と判定する。
更に別の判定方法としては、図１に例示したＤＮＡアレイを用いた場合に、第１プローブスポット列を構成する８個のスポット全てにシグナルが観察され、第２プローブスポット列を構成する４個のスポットにシグナルが観察された場合には、前記（１）に該当し、この被験遺伝子はホモ接合型第１多型形態と判定される。あるいはまた、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列のそれぞれから同数のシグナルスポットが得られた場合であっても、第１プローブスポット列のシグナルスポットのシグナル強度の総和が第２プローブスポット列のそれより多い場合には、前記（１）に該当し、この被験遺伝子はホモ接合型第１多型形態と判定される。
また前記（３）の判定基準は、シグナルスポットの数が同一であり、それぞれのシグナル強度の総和が３０％以下、好ましくは２０％以下、より好ましくは１０％以下である場合とすることもできる。
すなわち、従来方法では、それぞれ単一の第１プローブスポットと第２プローブスポットのシグナル強度の多寡を比較するのに対し、この第３発明の方法では、それぞれ複数個のスポットからなるプローブスポット群からより多くのシグナルを発するスポット数を測定し、それを比較する。これによって、従来方法に比べてはるかに高精度でＳＮＰを検出することが可能となる。
なお、第３発明における標識ポリヌクレオチドの調製や、ハイブリダイゼーション手続等は、例えば特開２００１−０９５５７４号公報を初め、多くの特許文献、非特許文献に記載されており、それらの文献記載の方法を適宜に採用して行うことができる。
第４発明の方法は、前記第１発明のＤＮＡアレイを用いて、各遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長を決定する方法である。具体的には、前記第３発明の方法でＳＮＰを検出する際に最も適したプローブ長、すなわち、それぞれの１塩基多型形態を最も正確に反映することのできるプローブ長が、この第４発明において決定されるプローブ長となる。従って、被験者のＳＮＰ検出を目的とした第３発明の方法によって得られるデータから、適切なプローブ長を得ることができる。
そして、各遺伝子について適切なプローブ長からなるプローブスポットをそれぞれに備えた第５発明のＤＮＡアレイが提供される。この第５発明のＤＮＡアレイは、一つの被検遺伝子に対して、それぞれ「一つ」の第１プローブスポットと第２プローブスポットを備えている。それぞれのプローブスポットを構成するプローブは、その遺伝子のＳＮＰを検出するための最適の長さである。従って、この第５発明のＤＮＡアレイは、第１発明のＤＮＡアレイと比較してはるかに多くの遺伝子のＳＮＰ検出を対象とするプローブスポットを備えることができ、しかもＳＮＰ検出制度は第１発明のＤＮＡアレイと実質的に同一である。
以下、実施例を示してこの出願の発明をさらに詳細かつ具体的に説明するが、この出願の発明は以下の例によって限定されるものではない。
実施例１
（１）ＤＮＡアレイの作成
遺伝子ＧＮＢ３、ＭＴＨＦＲのそれぞれのポリヌクレオチド（ｃＤＮＡ）にハイブリダイズする配列部分がそれぞれの遺伝子の第１多型形態に正確に相補的である第１プローブ、同じく配列部分が第２多型形態に正確に相補的である第２プローブを、それぞれ１塩基異なる長さで合成した。各プローブの塩基配列は、遺伝子ＧＮＢ３用の第１プローブ（ＧＮＢ３Ｃ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１−８、第２プローブ（ＧＮＢ３Ｔ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．９−１６、遺伝子ＭＴＨＦＲ用の第１プローブ（ＭＴＨＦＲＣ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１７−２４、第２プローブ（ＭＴＨＦＲＴ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．２５−３２である。また、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏｓ．１−３２の各塩基配列の５’側には塩基配列「ＴＴＴＴＴ」が連結されている。
これらのプローブの５’をアミノ基で修飾し、オリゴＤＮＡ固定化用エポキシガラス基板に、１スポット当たり、５０ｐｍｏｌ／μＬの溶液を２００ｐＬずつスポッティングした。また、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列の構成は、図２に示したように、同一プローブからなるプローブスポットを３個づつ並列配置した。
スポッティング後、４２℃、相対湿度５０％の条件下で一晩インキュベートした。次に、０．２％ＳＤＳ水溶液で室温にて２分間洗浄し、さらに滅菌水で室温にて１分間の洗浄を２回行った。最後に５０℃の滅菌水中で２０分間インキュベーした後、遠心器で１０００ｒｐｍ×５分間遠心し、乾燥した。
（２）標識ポリヌクレオチドの調製
遺伝子型が判明している被験者血液から抽出したＤＮＡをテンプレートとし、以下のＰＣＲ条件で増幅を行い、標識ポリヌクレオチドを調整した。
・プライマー１： ５ｐｍｏｌ（５’末端Ｃｙ３標識）
・プライマー２： ５ｐｍｏｌ
・×１０緩衝液： ２．５μｌ
・２ｍＭ ｄＮＴＰ： ２．５μｌ
・２５ｍＭ ＭｇＣｌ２： ２．５μｌ
・Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ：１Ｕ
・抽出ＤＮＡ溶液： ２０ｎｇ
・増幅条件
９４℃／５分
９４℃／３０秒、６０℃／３０秒、７２℃／３０秒（３５サイクル）
７２℃／２分
（３）ハイブリダイゼーション
前記（２）で調製した標識ポリヌクレオチドを０．３ Ｎ ＮａＯＨ（終濃度）と混合し、一本鎖に変性した後、２００ｍＭクエン酸−リン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、２％ＳＤＳ、７５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．１％ＮａＮ３（全て終濃度）を添加、混合し、サンプルとした。
次に、前記（１）で作製したＤＮＡアレイ上にハイブリダイゼーションサンプルを滴下し、カバーガラスをかけ、５５℃、相対湿度１００％のモイスチャーチャンバー内で一晩インキュベートを行った。反応後、カバーガラスをはずし、あらかじめ５５℃に加温した２×ＳＳＣ、１％ＳＤＳ水溶液に、５５℃で２０分間浸漬した。次に５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、０．０２５％ Ｔｗｅｅｎ２０水溶液に１５分間浸漬した後、遠心器で１０００ｒｐｍで５分間遠心し、乾燥した。
（４）シグナル測定
Ｓｃａｎ Ａｒｒａｙ（Ｐａｃｋａｒｄ ＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅ社製）にて、レーザーパワー１００％、フォトマル１００％で蛍光画像を測定した。得られた画像は図３、４に示したとおりである。また、得られた画像シグナルをＧｃｎｅＰｉｘ Ｐｒｏ（Ａｘｏｎ社製）にて数値化した（表１−３）。
蛍光シグナルのカットオフ値を２０，０００とし、第１プローブと第２プローブの少なくともどちらか一方の蛍光シグナルが２０，０００以上の部分の第１プローブと第２プローブの蛍光シグナル比（第１／第２）を算出した。蛍光シグナル比が＞５の時はホモ接合型第１多型形態、＜０．２の時はホモ接合型第２多型形態、０．２以上５以下の時はヘテロ接合性多型形態と判定したところ、事実と一致したことが確認できた。
実施例２
実施例１と同様にして、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２およびＣＹＰ ２Ｃ１９−３のそれぞれの遺伝子多型を検出試験した。各プローブの塩基配列は、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２用の第１プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−２−Ｇ−０１〜０５）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．３３−３７、第２プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−２−Ａ−０６〜０１０）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．３８−４２、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−３の第１プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−３−Ｇ−０１〜０５）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．４３−４７、第２プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−３−Ａ−０６〜０１０）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．４８−５２である。また、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏｓ．３３−５２の各塩基配列の５’側には塩基配列「ＴＴＴＴＴ」が連結されている。
これらのプローブを実施例（１）と同様にしてエポキシガラス基板に固定し、ＤＮＡマイクロアレイを作成した。なお、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２およびＣＹＰ２Ｃ１９−３のそれぞれのマイクロアレイ構成は図５の左欄に示したとおりである。すなわち、ＣＹＰ ２Ｃ１９−２用アレイの場合には、▲１▼〜▲５▼が第１プローブスポット列、▲６▼〜▲１０▼が第２プローブスポット列である。また、ＣＹＰ ２Ｃ１９−３用アレイの場合には、▲１１▼〜▲１５▼が第１プローブスポット列、▲１６▼〜▲２０▼が第２プローブスポット列である。
標識ポリヌクレオチドの調製、ハイブリダイゼーション、シグナル測定はそれぞれ実施例１と同様にして行った。
得られた蛍光画像は図５に示したとおりである。また、得られた画像シグナルを数値化した結果は表４（ＣＹＰ ２０１９−２）および表５（ＣＹＰ ２Ｃ１９−３）に示したとおりである。実施例１と同様に蛍光シグナル比（第１／第２）を算出し、蛍光シグナル比が＞５の時はホモ接合型第１多型形態、＜０．２の時はホモ接合型第２多型形態、０．２以上５以下の時はヘテロ接合性多型形態と判定したところ、事実と一致したことが確認された。
実施例１
（１）ＤＮＡアレイの作成
遺伝子ＧＮＢ３、ＭＴＨＦＲのそれぞれのポリヌクレオチド（ｃＤＮＡ）にハイブリダイズする配列部分がそれぞれの遺伝子の第１多型形態に正確に相補的である第１プローブ、同じく配列部分が第２多型形態に正確に相補的である第２プローブを、それぞれ１塩基異なる長さで合成した。各プローブの塩基配列は、遺伝子ＧＮＢ３用の第１プローブ（ＧＮＢ３Ｃ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１−８、第２プローブ（ＧＮＢ３Ｔ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．９−１６、遺伝子ＭＴＨＦＲ用の第１プローブ（ＭＴＨＦＲＣ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１７−２４、第２プローブ（ＭＴＨＦＲＴ−０１〜０８）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．２５−３２である。また、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏｓ．１−３２の各塩基配列の５’側には塩基配列「ＴＴＴＴＴ」が連結されている。
これらのプローブの５’をアミノ基で修飾し、オリゴＤＮＡ固定化用エポキシガラス基板に、１スポット当たり、５０ｐｍｏｌ／μＬの溶液を２００ｐＬずつスポッティングした。また、第１プローブスポット列と第２プローブスポット列の構成は、図２に示したように、同一プローブからなるプローブスポットを３個づつ並列配置した。
スポッティング後、４２℃、相対湿度５０％の条件下で一晩インキュベートした。次に、０．２％ＳＤＳ水溶液で室温にて２分間洗浄し、さらに滅菌水で室温にて１分間の洗浄を２回行った。最後に５０℃の滅菌水中で２０分間インキュベーした後、遠心器で１０００ｒｐｍ×５分間遠心し、乾燥した。
（２）標識ポリヌクレオチドの調製
遺伝子型が判明している被験者血液から抽出したＤＮＡをテンプレートとし、以下のＰＣＲ条件で増幅を行い、標識ポリヌクレオチドを調整した。
・プライマー１： ５ｐｍｏｌ（５’末端Ｃｙ３標識）
・プライマー２： ５ｐｍｏｌ
・×１０緩衝液： ２．５μｌ
・２ｍＭ ｄＮＴＰ： ２．５μｌ
・２５ｍＭ ＭｇＣｌ２： ２．５μｌ
・Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ：１Ｕ
・抽出ＤＮＡ溶液： ２０ｎｇ
・増幅条件
９４℃／５分
９４℃／３０秒、６０℃／３０秒、７２℃／３０秒（３５サイクル）
７２℃／２分
（３）ハイブリダイゼーション
前記（２）で調製した標識ポリヌクレオチドを０．３ Ｎ ＮａＯＨ（終濃度）と混合し、一本鎖に変性した後、２００ｍＭクエン酸−リン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、２％ＳＤＳ、７５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．１％ＮａＮ３（全て終濃度）を添加、混合し、サンプルとした。
次に、前記（１）で作製したＤＮＡアレイ上にハイブリダイゼーションサンプルを滴下し、カバーガラスをかけ、５５℃、相対湿度１００％のモイスチャーチャンバー内で一晩インキュベートを行った。反応後、カバーガラスをはずし、あらかじめ５５℃に加温した２×ＳＳＣ、１％ＳＤＳ水溶液に、５５℃で２０分間浸漬した。次に５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、０．０２５％ Ｔｗｅｅｎ２０水溶液に１５分間浸漬した後、遠心器で１０００ｒｐｍで５分間遠心し、乾燥した。
（４）シグナル測定
Ｓｃａｎ Ａｒｒａｙ（Ｐａｃｋａｒｄ ＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅ社製）にて、レーザーパワー１００％、フォトマル１００％で蛍光画像を測定した。得られた画像は図３、４に示したとおりである。また、得られた画像シグナルをＧｃｎｅＰｉｘ Ｐｒｏ（Ａｘｏｎ社製）にて数値化した（表１−３）。
蛍光シグナルのカットオフ値を２０，０００とし、第１プローブと第２プローブの少なくともどちらか一方の蛍光シグナルが２０，０００以上の部分の第１プローブと第２プローブの蛍光シグナル比（第１／第２）を算出した。蛍光シグナル比が＞５の時はホモ接合型第１多型形態、＜０．２の時はホモ接合型第２多型形態、０．２以上５以下の時はヘテロ接合性多型形態と判定したところ、事実と一致したことが確認できた。
実施例１と同様にして、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２およびＣＹＰ ２Ｃ１９−３のそれぞれの遺伝子多型を検出試験した。各プローブの塩基配列は、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２用の第１プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−２−Ｇ−０１〜０５）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．３３−３７、第２プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−２−Ａ−０６〜０１０）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．３８−４２、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−３の第１プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−３−Ｇ−０１〜０５）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．４３−４７、第２プローブ（ＣＹＰ ２Ｃ１９−３−Ａ−０６〜０１０）はＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．４８−５２である。また、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏｓ．３３−５２の各塩基配列の５’側には塩基配列「ＴＴＴＴＴ」が連結されている。
これらのプローブを実施例（１）と同様にしてエポキシガラス基板に固定し、ＤＮＡマイクロアレイを作成した。なお、遺伝子ＣＹＰ ２Ｃ１９−２およびＣＹＰ２Ｃ１９−３のそれぞれのマイクロアレイ構成は図５の左欄に示したとおりである。すなわち、ＣＹＰ ２Ｃ１９−２用アレイの場合には、▲１▼〜▲５▼が第１プローブスポット列、▲６▼〜▲１０▼が第２プローブスポット列である。また、ＣＹＰ ２Ｃ１９−３用アレイの場合には、▲１１▼〜▲１５▼が第１プローブスポット列、▲１６▼〜▲２０▼が第２プローブスポット列である。
標識ポリヌクレオチドの調製、ハイブリダイゼーション、シグナル測定はそれぞれ実施例１と同様にして行った。
得られた蛍光画像は図５に示したとおりである。また、得られた画像シグナルを数値化した結果は表４（ＣＹＰ ２０１９−２）および表５（ＣＹＰ ２Ｃ１９−３）に示したとおりである。実施例１と同様に蛍光シグナル比（第１／第２）を算出し、蛍光シグナル比が＞５の時はホモ接合型第１多型形態、＜０．２の時はホモ接合型第２多型形態、０．２以上５以下の時はヘテロ接合性多型形態と判定したところ、事実と一致したことが確認された。
以上詳しく説明したとおり、この出願の発明は、より正確なＳＮＰ検出を可能とするＤＮＡアレイと、このＤＮＡアレイを用いて正確なＳＮＰ検出を行う方法に関するものである。またこの出願の発明は、ＳＮＰ検出の対象となる遺伝子に応じた適切なプローブ長を決定する方法と、この方法により決定されたプローブ長からなるプローブを備えたＤＮＡアレイに関するものである。これらの発明によって、疾患易罹患性や薬剤反応性に関連する遺伝子の探索、あるいはテーラーメイド医療のための重要な遺伝子情報としてのＳＮＰを正確かつ再現性よく検出することが可能となる。
Claims (8)
- 遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポット群と、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポット群とを固相基体上に有し、第１プローブスポット群と第２プローブスポット群のそれぞれを構成するプローブスポットは、プローブスポット毎にプローブの長さが異なる、ことを特徴とするＤＮＡアレイ。
- 第１プローブスポット群と第２プローブスポット群は、それぞれ、２〜１０のプローブスポットからなる請求項１のＤＮＡアレイ。
- ２〜１０のプローブスポットが、そのプローブの長さの順に配置されている請求項２のＤＮＡアレイ。
- 請求項１から３のいずれかのＤＮＡアレイを少なくとも含む、遺伝子の一塩基多型を検出するためのキット。
- 請求項１から３のいずれかのＤＮＡアレイを用いて遺伝子の一塩基多型を検出する方法であって、以下のステップ：
（ａ）被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ；
（ｂ）標識ポリヌクレオチドをプローブ付固相基体に接触させるステップ；
（ｃ）ＤＮＡアレイ上のプローブにハイブリダイズした標識ポリヌクレオチドより得られるシグナルを測定するステップ；
を含むことを特徴とする一塩基多型の検出方法。 - 前記ステップ（ｃ）において測定された、前記第１のプローブスポット群と前記第２のプローブスポット群のそれぞれのシグナルを比較する請求項５の一塩基多型の検出方法。
- 請求項１から３のいずれかのＤＮＡアレイを用いて、遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長を決定する方法であって、以下のステップ：
（ａ）被験遺伝子から、標識ポリヌクレオチドを調製するステップ；
（ｂ）標識ポリヌクレオチドをＤＮＡアレイに接触させるステップ；
（ｃ）ＤＮＡアレイ上の各プローブに結合した標識ポリヌクレオチドの標識シグナルを測定し、
以下の基準：
（ｉ）験遺伝子がホモ接合性第１多型形態の場合に第１のプローブスポット群に標識シグナルが観察されること、
（ｉｉ）被験遺伝子がホモ接合性第２多型形態の場合に第２のプローブスポット群に標識シグナルが観察されること、
（ｉｉｉ）被験遺伝子がヘテロ接合性多型形態の場合に第１のプローブスポット群と第２のプローブスポット群とに同程度の標識シグナルが観察されること、
を満たすプローブスポットのプローブ長を、その遺伝子の一塩基多型を検出するための適切なプローブ長と決定することを特徴とする方法。 - 遺伝子の一塩基多型を検出するためのＤＮＡアレイであって、遺伝子ポリヌクレオチドにハイブリダイズする配列部分が遺伝子の第１の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第１のプローブスポットと、同配列部分が遺伝子の第２の多型形態に正確に相補的である１以上のプローブからなる第２のプローブスポットとを固相基体上に有し、第１および第２のプローブスポットを構成するプローブ長が、請求項７の方法で決定された長さであるＤＮＡアレイ。
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| JPN6009060510, Ｗｏｒｌｄ Ｊ Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ, 2003, Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．６, ｐ．１３４２−１３４６ * |
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