JPWO2005087240A1

JPWO2005087240A1 - 家畜・家禽用下痢抑制剤

Info

Publication number: JPWO2005087240A1
Application number: JP2006511043A
Authority: JP
Inventors: 牛田　一成; 一成牛田; 隆充塚原; 武川　和琴; 和琴武川; 菅　辰彦; 辰彦菅; 卓巳渡邉; 松原　範宜; 範宜松原
Original assignee: Combi Corp
Current assignee: Combi Corp
Priority date: 2004-03-16
Filing date: 2005-03-15
Publication date: 2008-01-24
Anticipated expiration: 2025-03-15
Also published as: EP1736165A1; EP1736165A4; WO2005087240A1; JP5411405B2; TWI359666B; US20070065423A1; US7582305B2; CA2559813A1; TW200602068A

Abstract

従来のように家畜・家禽の感染症に使用されてきた抗生物質や合成抗菌剤を使用することなく、効果的に下痢抑制剤効果を奏し、また、抗生物質耐性の病原性感染病に対しも予防および治療が可能となる、安全な下痢抑制剤及び抑制方法を提供するものである。エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の加熱処理死菌体又はその処理物を有効成分として含有する家畜・家禽の下痢抑制剤を、家畜・家禽に経口投与、特に授乳期の母豚及び離乳期前後の子豚に経口投与する。

Description

本発明は、乳酸菌エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分とする、家畜・家禽に蔓延する細菌感染、或いは腸過敏性による下痢抑制剤及び特に豚に投与する下痢抑制方法に関する。

従来、乳酸菌を含む家畜の治療薬として、家畜の成長促進あるいは下痢の予防治療薬に、生菌であるラクトバチルス・アシドフィラスおよびストレプトコッカス・フエカリスを含有してなる家畜用薬剤が知られている（例えば、特開昭５１−１０６７２５号公報参照）。また、豚、牛等の家畜の下痢や軟便症状を回復させると共に、毛づやを良くして順調な発育を得ることができるようにするために、ビフィズス菌等の生菌剤１ｇに対し、塩化ナトリウム２〜１２ｇ、塩化カリウム１〜１０ｇ、重炭酸ナトリウム２〜１８ｇ、ブドウ糖１０〜８０ｇ、グリシン５〜３０ｇの割合で含有させる家畜用混合飼料（例えば、特開平３−６１４５２号公報参照）や、ビフィズス菌、乳酸菌、又は酵母の菌体処理物を含有する犬特有の感染症の予防・治療用ドッグフードが知られている（例えば、特開２００１−３０９７５３号公報参照）。

さらに、乳酸菌であるエンテロコッカス属に属する菌体又はその処理物の利用として、カンジダ菌等の感染防御剤（例えば、特開平０５−９７６８９号参照）や、免疫賦活剤（例えば、特開平８−９９８８７号公報、特開平１１−９２３８９号公報参照）が知られている。また、エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）を、コーンスティープリカーとカゼインの加水分解物とを含有する培地を用いて培養する免疫賦活効果を有する乳酸菌の製造法（例えば、特開２００４−４１０９９号公報参照）や、エンテロコッカス・フェカリスＡＤ１０１菌株の死菌体を主成分とする免疫調整剤（例えば、特開２００１−４８７９６号公報参照）も知られている。しかしながら、エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）が家畜・家禽の下痢に対してきわめて優れた抑制作用を有することは知られていなかった。

下痢とは、元来糞便中の水分の増加を意味し、下痢の発生機序から浸透圧性下痢（osmotic diarrhea）、分泌性下痢（secretory diarrhea）、通過時間の異常による下痢の３つに大別される。浸透圧性下痢は腸管から吸収されない物質によって腸管内浸透圧が高まり起こる下痢である。分泌性下痢は、細菌毒素、ホルモン、化学物質などが腸管において水分や電解質の分泌を促進して起こる下痢でその種類は多い。その中で細菌によるものは粘膜損傷を伴わず細菌毒素により下痢を起す型（例えば、ある種の大腸菌）と細菌が細胞内に侵入し粘膜を傷害して下痢を起す型（たとえば、サルモネラ菌）の２種類がある。脂肪や胆汁酸の吸収障害に基づく脂肪性下痢や胆汁酸性下痢も分泌性下痢の１つである。そのほか炎症性腸疾患でも腸管壁の透過性が亢進して下痢を起す。腸通過時間異常のうち、その低下によるものは腸狭窄、憩室など盲係蹄症候群で細菌の異常増殖をおこすことによる。一方、亢進によるものは過敏性腸症候群や甲状腺機能亢進症で、腸運動を亢進することにより下痢を起こす。

豚において、その飼育中、離乳期子豚や母豚で消化不良性下痢を起す場合がある。育成豚の飼料にトウモロコシを主原料とした穀類が約４０〜８０％含まれており、豚の小腸で澱粉は消化・吸収されるが、一時に大量の食物が小腸に入ってきた場合や、離乳期前後の子豚、授乳している母豚では消化酵素や胃酸の分泌が不十分であるため、小腸では澱粉を完全に消化・吸収できず、その澱粉が大腸に入ってくる場合がある。大腸内の乳酸菌の一種であるストレプトコッカス属の中には、素早くその澱粉を分解し、乳酸をどんどん生産し、それ自体増殖するものもあるので、大腸内は急に乳酸が増える。その結果、急激なｐＨの低下を起こし、他菌の死滅或いは弱体化が起こり、異常な大腸フローラになる。このとき、下痢が起こり、下痢便中からは乳酸と、乳酸と同様の性質を持つコハク酸が大量に検出される。このように、大腸フローラが様々な原因で異常になった時に、しばしば下痢が起こる。さらに、乳酸の大量蓄積は、大腸組織にも悪影響を及ぼして、大腸組織が損傷を受けて大腸が薄くなるだけでなく、結果として病原菌の大腸への侵入を受けやすくなるという二次被害を被る可能性が出てくる。したがって、大腸菌、クロストリディウム（Clostrdium perfringens）、Brychispira hyodysenteriae,Lowsonia intracellaris、Salmonella sp.、ロタウィルス、コクシジウムなど下痢を引き起こす病原性細菌、病原性ウイルス、病原性原虫に感染されやすい。
ところで、豚の大腸菌症は、原因菌や発病機序により大腸菌性下痢、大腸菌性腸管毒血症及び大腸菌性敗血症に大別される。下痢、敗血症は新生期に多発し、下痢は特定の血清型に属する毒素原生大腸菌の感染が主因である。腸管毒血症は離乳期（４〜１２週齢）に発生し、原因菌は腸管毒血症大腸菌Enterotoxemic Escherichia coli（ETEEC）と総称される。毒血症はETEECの小腸内定着とその結果産生された毒素が吸収され、標的組織に障害を引き起こすことにより発病する。浮腫病Edema disease（ED）は大腸菌性腸管毒血症の典型であり、原因菌は特定の血清型に属し、Vero毒素産生性大腸菌（VTEC）の範疇に入る。浮腫病（ED）は散発的に発生することが多いが、時には小規模な集団発生を起こす。まれに２〜３週齢の哺乳豚、あるいは成豚にも発生する。成豚は離乳豚よりも慢性の経過をとる。発生の特徴は、豚群の中の数等が突発的に発病し、短期間（４〜１５日間）で終息することであるが、同一農場で再発を繰り返すこともある。発病率は、１０〜４０％であるが、死亡率は５０〜９０％と高い。発生は１つの血清型菌の感染によることが多いが、時には複数の菌型による感染もある。浮腫病（ED）原因菌の血清型（Ｏ１３９、Ｏ１４１）は各国とも共通している。実験的にはＯ１３９の１０^５個を３日間経口投与する事で発症する。通常、伝播は糞便、エロゾール、汚染飼料などを介して起こり、農場の汚染は長期に及ぶことが知られている（「臨床と微生物」 Vol.23, 843-849, 1996）。

本発明の課題は、従来のように家畜・家禽の感染症に使用されてきた抗生物質や合成抗菌剤を使用することなく、効果的に下痢抑制剤効果を奏し、また、抗生物質耐性の病原性感染病に対しも予防および治療が可能となる、安全な下痢抑制剤及び抑制方法を提供することにある。

家畜のうちでも特に食肉として、近年需要性が高い豚において、哺乳期、離乳期前後の子豚、或いは授乳期の母豚では、下痢を伴う病原性の大腸菌により浮腫病に罹る。この疾病は離乳後の子豚にみられることが多く、発生農場では子豚の１０〜４０％が発病するといわれている。

本発明者らは、このような豚の飼育期間において、離乳期前後の子豚に高い確率で罹患する下痢に着目し、その予防及び治療について鋭意研究の結果、特定の乳酸菌エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を投与すると、大幅に子豚の下痢、浮腫病が減少することを見い出し、本発明を完成するに至った。

すなわち本発明は、（１）エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有することを特徴とする家畜・家禽の下痢抑制剤や、（２）下痢因子が病原性細菌によるものであることを特徴とする上記（１）記載の家畜・家禽の下痢抑制剤や、（３）病原性細菌が、大腸菌（Escherichia coli）であることを特徴とする上記（１）又は（２）記載の家畜・家禽の下痢抑制剤や、（４）大腸菌が、浮腫病を引き起こす大腸菌、又は腸管毒血症性大腸菌（Enterotoxemic Escherichia coli）であることを特徴とする上記（３）記載の家畜・家禽の下痢抑制剤や、（５）病原性細菌が、クロストリディウム（Clostridium）属に属する微生物であることを特徴とする上記（１）又は（２）記載の家畜・家禽の下痢抑制剤や、（６）下痢因子が、コクシジウム原虫であることを特徴とする上記（１）記載の家畜・家禽の下痢抑制剤や、（７）下痢が、腸過敏性下痢であることを特徴とする上記（１）記載の家畜・家禽の下痢抑制剤や、（８）死菌体が、加熱処理死菌体であることを特徴とする上記（１）〜（７）のいずれかに記載の家畜・家禽の下痢抑制剤に関する。

また本発明は、（９）エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有する組成物を、家畜・家禽に経口投与することを特徴とする家畜・家禽の下痢抑制方法や、（１０）下痢因子が、病原性細菌によるものであることを特徴とする上記（９）記載の家畜・家禽の下痢抑制方法や、（１１）病原性細菌が、大腸菌（Escherichia coli）であることを特徴とする上記（１０）記載の家畜・家禽に経口投与することを特徴とする家畜・家禽の下痢抑制方法や、（１２）大腸菌が、浮腫病を引き起こす大腸菌、又は腸管毒血症性大腸菌（Enterotoxemic Escherichia coli）であることを特徴とする上記（１１）記載の家畜・家禽の下痢抑制方法や、（１３）死菌体が、加熱処理死菌体であることを特徴とする上記（９）〜（１２）のいずれかに記載の家畜・家禽の下痢抑制方法や、（１４）授乳期の母豚及び離乳期前後の子豚に経口投与することを特徴とする上記（９）〜（１３）のいずれかに記載の家畜・家禽の下痢抑制方法に関する。

本発明のエンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有する家畜・家禽の下痢抑制剤を経口的に投与すると、家畜・家禽、特に豚の下痢を抑制し、下痢による死亡率が著しく低下し、従来のように家畜・家禽の感染症に使用されてきた抗生物質や合成抗菌剤を使用することなく、効果的に下痢抑制剤効果を奏するうえに、抗生物質耐性の病原性感染病に対しも予防および治療が可能となる。

本発明の家畜・家禽の下痢抑制剤としては、乳酸菌エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有する組成物であれば特に制限されず、また、本発明の家畜・家禽の下痢抑制方法としては、乳酸菌エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有する組成物を、家畜・家禽に経口投与する方法であれば特に制限されず、上記感染防除剤や組成物は、そのままあるいは製剤などあらゆる形態で使用することができる。

本発明において用いられるエンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２の菌学的性質を（表１）に示す。このエンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２の培養方法としては、従来公知の乳酸菌の培養方法も含め特に制限されるものではないが、乳酸菌生育用培地を用い、３７℃で培養ｐＨを中性付近に維持しながら５〜１２０時間、好ましくは、１６〜２８時間培養し、生菌数約１０^７〜１０^１０／ｍｌ、好ましくは約１０^８〜１０^１０／ｍｌの培養液を得る方法を例示することができる。また、エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（〒３０５−８５６６日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）において２００５年２月２５日に「ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４」としても寄託されており、エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２の１６ＳｒＤＮＡは、国立遺伝研究所に「ＡＢ１５４８２」として登録されている。

本発明においては、エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２は、死菌体又はその処理物として用いる必要があるが、かかる死菌体としては、常法により培養、集菌した乳酸菌の菌体を洗浄し、遠心脱水し、必要に応じて洗浄・脱水を繰り返した後、蒸留水、生理食塩水等に懸濁し、この懸濁液を、例えば８０〜１１５℃で３０分〜３秒間加熱することにより得られる死菌体懸濁液やその乾燥物、又は前記死菌体懸濁液にガンマ線或いは中性子線を照射することにより得られる死菌体懸濁液やその乾燥物を挙げることができる。該死菌体懸濁液の乾燥手段としては公知の乾燥手段であれば特に制限されないが、噴霧乾燥、凍結乾燥等を例示することができる。場合によっては、加熱等による殺菌処理の前後、あるいは、乾燥処理の前後に、酵素処理、界面活性剤処理、磨砕・粉砕処理を行うこともでき、これらの処理により得られるものも、本発明の死菌体又はその処理物に含まれる。

前記の下痢抑制剤や組成物を製剤として用いる場合、デンプン、乳糖、大豆蛋白等の担体、賦形剤、結合材、崩壊剤、滑沢剤、安定剤、懸濁剤等の添加剤を配合して、周知の方法で粉剤、錠剤、顆粒剤、カプセル剤、液剤等に製剤することができる。かかる製剤はそのまま投与することもできるが、飼料等に混じて給餌させることもできる。

本発明において、下痢抑制の対象となる家畜・家禽類としては、牛、豚、馬、羊、ヤギなどの家畜、鶏、鴨、ダチョウなどの家禽を例示することができ、授乳、哺乳期も含め、いずれの段階の日齢、年齢の家畜・家禽にも適用できるが、特に、豚の飼育においては、授乳期の母豚及び離乳期前後の子豚に経口投与することが浮腫病の感染防除の点で好ましい。豚の下痢は、上記のように、特に離乳後の子豚や哺乳豚に多く発生するが、その発生原因としては、飼育されている分娩舎や離乳舎の構造等の飼育環境要因や、大腸菌が発生しやすい梅雨の期間、夏の暑い時や冬の寒い時など子豚の免疫力が低下する季節要因や、また、離乳方法が悪く消化不良等による哺乳要因や、栄養不良等の飼育要因や、遺伝要因などが複雑に関与すると考えられる。その主なる症状は、眼瞼の浮腫（赤く腫れる）、著明な腸管膜リンパ節の腫脹、下痢が特徴であり、神経症状もある。

本発明の下痢抑制剤は、下痢の治療ばかりでなく、下痢の予防にも有用であり、家畜・家禽への投与時期としては、その時期は下痢症状を発症している時に投与することは勿論、抵抗力が低下している時や、周囲で下痢が流行している時、家畜・家禽の妊娠時、授乳時、哺乳期間等を好適に例示することができる。また、下痢としては、病原性細菌やコクシジウム原虫に起因する下痢や腸過敏性下痢を好適に例示することができ、また、上記病原性細菌としては大腸菌、特に浮腫病を引き起こす大腸菌や腸管毒血症性大腸菌の他、クロストリディウム・パーフリンゲンス（Clostrdium perfringens）等のクロストリディウム属に属する微生物を具体的に例示することができる。

本発明の下痢抑制剤や本発明の下痢抑制方法における組成物の投与量や投与回数は、家畜・家禽の種類、体重、下痢の症状、回復状態等に応じて、適宜決定することができるが、例えば、子豚に関しては、エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２の死菌体又はその処理物として、体重１ｋｇあたり０．１〜２００ｍｇ／日、好ましくは２０〜１００ｍｇ／日を、通常の離乳後の飼料に混ぜて投与することが好ましい。投与期間は、子豚の健康状態、環境により異なるが、２１日齢より４２日齢、さらに望ましくは、５日齢より約７０日齢までの間が適当である。

以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。

エンテロコッカス・フェカリスＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）をロゴサ培地で３７℃、２４時間培養した前培養液を、酵母エキス４％、ポリペプトン３％、乳糖１０％を含む液体培地に０．１（ｖ／ｖ）％接種し、ｐＨスタットを用いてｐＨ６．８〜７．０に苛性ソーダ水溶液で調整しながら３７℃、２２〜２４時間中和培養を行なった。

培養終了後、連続遠心機で菌体を分離、回収した後、水を加えて元の液量まで希釈して再度連続遠心機で菌体を分離、回収した。この操作を合計４回繰り返して菌体を洗浄した。次いで、洗浄した菌体を適量の水に懸濁し、１００℃、３０分間殺菌した後、スプレードライヤーを用いて菌体を乾燥して加熱処理菌体粉末を調整した。

［病原因子の特定と臨床スコア］
１．供試飼料・供試動物・飼育方法
実施例１で得られた乾燥死菌体（以下、「ＥＣ−１２」という）は予め小麦粉で１０倍希釈したプレミックスを作製しておき、ＥＣ−１２を０．０５％含有するように基礎飼料ＳＤＳＮｏ．１（日本配合飼料株式会社製、抗菌剤及び生菌剤を含まないもの）に添加したものを用いた。また、対照飼料には、０．５％の市販小麦粉を基礎飼料に添加したものを用いた。被検動物として、哺乳期及び離乳期に下痢が頻発している養豚場において飼育されている、下痢症状を認めた哺乳豚（ＬＷＤ系三元交雑種豚）３１頭（４腹分）を対象とした。該哺乳豚は１８〜２４日齢で，分娩ストールで母豚とともに飼育されており，母乳のみを摂食していた。ＥＣ−１２投与群は試験開始後４又は８日で，無投与対照群は試験開始後２日に離乳されていた。なお、分娩時から母豚及び供試子豚に薬剤は投与されていなかった。

２．試験の概要
投与前に、供試豚全頭の採糞をスワブで行い、病原因子の陽性率を定性的に調査した。次に、供試豚の２１頭（３腹分）にＥＣ−１２添加飼料を、残りの１０頭（１腹分）にＥＣ−１２無添加飼料（対照）を１４日間給与した。その間、投与開始後７日目に全頭スワブで採糞を行い、その後７日間投与を継続し、経過を観察した。具体的には、病原因子の特定と、平均臨床スコアと、体重測定について試験した。

３．病原因子の特定
子豚の哺乳期であり、罹患しやすい１）クロストリジウム（Clostrdium perfringens）、２）サルモネラ（Salmonella sp.）、３）溶血性大腸菌（E.coli）について、投与開始後０及び７日に、病原菌の検出を行った。糞便中の病原因子検査結果を（表２）に示す。なお、投与開始後１４日の観察時に糞便を採材し、Brychispira hyodysenteriae（豚赤痢原因菌）、Lowsonia intracellaris（増殖性腸炎原因菌）、ロタウィルス、コクシジウムの検査を行ったが、全例陰性であった。

その結果、溶血性大腸菌陽性率は，無投与対照群では試験開始後０日で０％（０／１０例），試験開始後７日で９０％（９／１０例）であった。ウィルコクソンの符号付順位和検定の結果では，試験開始後０日と７日の間に有意差が認められた。ＥＣ−１２投与群では試験開始後０日で５％（１／２１例），試験開始後７日で０％（０／２１例）であった。観察時点毎に実施したフィッシャーの直接確率計算法の結果では，試験開始後７日で無投与対照群及びＥＣ−１２投与群間に有意差が認められた。また、クロストリジウム（Clostrdium perfringens）陽性率は、無投与対照群では試験開始後０日で１０％（１／１０例），試験開始後７日で０％（０／１０例）であった。ＥＣ−１２投与群では試験開始後０日で５７％（１３／２１例），試験開始後７日で０％（０／２１例）であった。ウィルコクソンの符号付順位和検定の結果では，試験開始後０日と７日の間に有意差が認められた。観察時点毎に実施したフィッシャーの直接確率計算法の結果では，試験開始後０日で無投与対照群及びＥＣ−１２投与群間に有意差が認められた。なお，試験期間を通してサルモネラは検出されなかった。

４．平均臨床スコア
投与開始後０，１，２，３，４，７，１０及び１４日に、糞便性状観察、活力、被毛、食欲について観察して記録し、総合臨床スコアを求めた。結果を（表３）に示す。

（１）糞便性状スコア
平均糞便性状スコアは無投与対照群では試験開始後０日で１．８，試験開始後１日で１．４，試験開始後２日で０．９，試験開始後３日で１．０，試験開始後４日で１．２，試験開始後７日で１．９，試験開始後１０日で１．４，試験開始後１４日で１．１であり，試験開始後１から１４日（ＥＣ−１２投与期間中）の合計スコアは８．９であった。ＥＣ−１２投与群では試験開始後０日で１．５，試験開始後１日で０．７，試験開始後２日で０．５，試験開始後３及び４日で０．６，試験開始後７日で０．５，試験開始後１０日で０．４，試験開始後１４日で０．８であり，試験開始後１から１４日（ＥＣ−１２投与期間中）の合計スコアは４．０であった。観察時点毎に実施したマン・ホイットニ検定の結果では，試験開始後１，２，４，７及び１０日で有意差が認められ，ＥＣ−１２投与期間中の合計スコアでの比較でも有意差が認められた。

（２）活力スコア
平均活力スコアは無投与対照群では試験開始後０から１０日まで０．０，試験開始後１４日で０．２であった。ＥＣ−１２投与群では試験期間中の活力スコアは全て０．０であった。試験開始後１４日のマン・ホイットニ検定で有意差が認められた。

（３）被毛スコア
平均被毛スコアは無投与対照群では試験開始後０日で０．１，試験開始後１から７日まで０．０，試験開始後１０日で０．４，試験開始後１４日で０．７であった。ＥＣ−１２投与期間中の合計スコアは１．１であった。ＥＣ−１２投与群では試験期間中の被毛スコアは全て０．０であった。観察時点毎に実施したマン・ホイットニ検定の結果では，試験開始後１０，１４日で有意差が認められ，ＥＣ−１２投与期間中の合計スコアでの比較でも有意差が認められた。

（４）食欲スコア
平均食欲スコアは無投与対照群では試験開始後０から１０日まで０．０，試験開始後１４日で０．１であった。ＥＣ−１２投与群では試験期間中の食欲スコアは全て０．０であった。試験開始後１４日のマン・ホイットニ検定で有意差は認められなかった。

（５）総合臨床スコア
平均総合臨床スコアは無投与対照群では試験開始後０日で１．９，試験開始後１日で１．４，試験開始後２日で０．９，試験開始後３日で１．０，試験開始後４日で１．２，試験開始後７日で１．９，試験開始後１０日で１．８，試験開始後１４日で２．１であり，ＥＣ−１２投与期間中の合計スコアは１０．３であった。ＥＣ−１２投与群では試験開始後０日で１．５，試験開始後１日で０．７，試験開始後２日で０．５，試験開始後３及び４日で０．６，試験開始後７日で０．５，試験開始後１０日で０．４，試験開始後１４日で０．９であり，ＥＣ−１２投与期間中の合計スコアは４．１であった。観察時点毎に実施したマン・ホイットニ検定の結果では，試験開始後１，２，４，７，１０及び１４日で有意差が認められ，ＥＣ−１２投与期間中の合計スコアでの比較でも有意差が認められた。

５．体重測定
投与開始後０，７及び１４日に体重測定を実施した。試験期間中の体重測定結果及び増体量の推移を（表４）に示す。

その結果、平均体重は，無投与対照群では試験開始後０日で５．２ｋｇ、試験開始後７日で５．９ｋｇ、試験開始後１４日で６．８ｋｇであった。ＥＣ−１２投与群では試験開始後０日で５．３ｋｇ、試験開始後７日で６．３ｋｇ、試験開始後１４日で６．６ｋｇであった。ｔ検定の結果では，どの時点にも有意差は認められなかった。また、試験期間中の平均増体量は，無投与対照群では試験開始後０〜７日で０．７ｋｇ，試験開始後７〜１４日で０．９ｋｇ、試験開始後０〜１４日で１．６ｋｇであった。ＥＣ−１２投与群では試験開始後０〜７日で１．０ｋｇ、試験開始後７〜１４日で０．３ｋｇ、試験開始後０〜１４日で１．３ｋｇであった。ｔ検定の結果では，試験開始後０〜７日ではＥＣ−１２投与群で，試験開始後７〜１４日では無投与対照群でそれぞれに対して高値となり，有意差が認められた。

６．まとめ
ＥＣ−１２投与開始後１日から便性状は有意に改善され，その傾向は試験終了時まで認められた。試験開始後１４日ではＥＣ−１２を投与している１豚房（試験開始後８日に離乳）で下痢の再発が散見されたが，他の２豚房では重篤な再発は認められなかった。その他の臨床スコアは，無投与対照群では下痢の継続による活力減退，被毛失沢及び食欲不振などを起こす個体が認められたが，ＥＣ−１２投与群では試験期間を通して観察されなかった。糞便中の病原因子検査では，試験開始後７日では無投与対照群の１０頭中９頭で溶血性大腸菌が陽性であったのに対してＥＣ−１２投与群では全て陰性であった。また，ＥＣ−１２投与群で試験開始後０日に２１頭中１３頭陽性であったクロストリジウム（Clostrdium perfringens）は試験開始後７日には全例陰性になっていた。以上の結果から，ＥＣ−１２を哺乳期子豚に投与することで病原性大腸菌及びクロストリジウム（Clostrdium perfringens）による下痢を抑制する可能性が示唆された。また試験期間中ＥＣ−１２投与によると思われる異常は認められず，ＥＣ−１２の豚に対する投与の安全性も確認された。

［子豚の死亡頭数の減少］
１．試験の概要
試験農場は、母豚４００頭を一貫経営する農場で、分娩舎は解放豚舎で離乳舎はウィンドレス豚舎で、オールインオールアウトを実施している。ＥＣ−１２を、餌付け開始時より離乳後７日までの間に飼料に混ぜて、５日齢より３３日齢の子豚に投与した。その他の条件は実施例２と同様に行った。体重１ｋｇ当たり１００ｍｇのＥＣ−１２の投与は、２００２年６月２２日より開始し、同年７月１８日まで行った。２００２年７月１９日から投与量を半分に減らし、体重１ｋｇ当たり５ｍｇを同年８月２日まで投与した。２００２年８月３日から投与量を元に戻し、体重１ｋｇ当たり１００ｍｇを同年９月２７日まで投与した。その後、投与量を倍量に増加して、体重１ｋｇ当たり２００ｍｇを２００３年１２月まで投与した。

２．投与効果
図１に示すように、投与開始の２００２年６月２２日の翌週より下痢の発生が減少するとともに、下痢による死亡も半数以下となった。また、図１に示すように、■印は、図欄外右の縦軸に示す死亡子豚の日齢を表し、この死亡日齢をみると、約３５日〜４５日齢であることから、投与は約３５日〜４５日齢以前の日齢から開始することが好ましいことがわかった。

その後の２００２年７月１９日から投与量を半分に減らし、体重１ｋｇ当たり５０ｍｇを同年８月２日まで２週間投与をしたところ、図２に示すように、死亡の増加が見られた。これは、分娩舎の環境と離乳舎の環境の影響を受けていることも考えられるが、投与量を半分に減らしたのが更に死亡数の増加に関係すると思われた。その後８月３日から投与量を元に戻し、９月の最後の週まで、即ち、体重１ｋｇ当たり１００ｍｇを投与したところ、図２に示すように、死亡頭数が約１／２〜１／３以下となり、〜９月６日の週では、死亡頭数はわずか１頭であった。

９月の最後の週より死亡頭数が増加し始めたので、投与量を倍量に増加した。即ち、体重１ｋｇ当たり２００ｍｇを投与した。その結果、図２に示すように、徐々に死亡頭数が減少し、〜１１月８日の週では、死亡頭数が２頭まで減少した。その後２週にわたり、死亡頭数が増加したが、その原因は明らかでなく、分娩舎の環境にあると思われた。旧分娩舎は、温度コントロールが悪く外気温と殆ど変わらない状態の建物である。２００３年の死亡頭数を２００２年の同週の死亡頭数を合わせて図３に示す。図３に示す死亡頭数からみて、明らかに本発明のＥＣ−１２を投与した２００３年の方が、２００２年に比べてその数は少ないことがわかった。

ＥＣ−１２死菌体の投与開始よりの週別下痢死亡頭数（２００２年５月〜同年７月）を示す図である。ＥＣ−１２死菌体の投与開始、投与量の変更を含む週別下痢死亡頭数（２００２年５月〜同年１１月）を示す図である。２００２年と２００３年を比較した週ごとの離乳後下痢死亡頭数を示す図である。

Claims

エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有することを特徴とする家畜・家禽の下痢抑制剤。
下痢因子が病原性細菌によるものであることを特徴とする請求項１記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
病原性細菌が、大腸菌（Escherichia coli）であることを特徴とする請求項１又は２記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
大腸菌が、浮腫病を引き起こす大腸菌、又は腸管毒血症性大腸菌（Enterotoxemic Escherichia coli）であることを特徴とする請求項３記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
病原性細菌が、クロストリディウム（Clostridium）属に属する微生物であることを特徴とする請求項１又は２記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
下痢因子が、コクシジウム原虫であることを特徴とする請求項１記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
下痢が、腸過敏性下痢であることを特徴とする請求項１記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
死菌体が、加熱処理死菌体であることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の家畜・家禽の下痢抑制剤。
エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＥＣ−１２（ＦＥＲＭＡＢＰ−１０２８４）の死菌体又はその処理物を有効成分として含有する組成物を、家畜・家禽に経口投与することを特徴とする家畜・家禽の下痢抑制方法。
下痢因子が、病原性細菌によるものであることを特徴とする請求項９記載の家畜・家禽の下痢抑制方法。
病原性細菌が、大腸菌（Escherichia coli）であることを特徴とする請求項１０記載の家畜・家禽に経口投与することを特徴とする家畜・家禽の下痢抑制方法。
大腸菌が、浮腫病を引き起こす大腸菌、又は腸管毒血症性大腸菌（Enterotoxemic Escherichia coli）であることを特徴とする請求項１１記載の家畜・家禽の下痢抑制方法。
死菌体が、加熱処理死菌体であることを特徴とする請求項９〜１２のいずれかに記載の家畜・家禽の下痢抑制方法。
授乳期の母豚及び離乳期前後の子豚に経口投与することを特徴とする請求項９〜１３のいずれかに記載の家畜・家禽の下痢抑制方法。