JPS6341557B2 - - Google Patents
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- JPS6341557B2 JPS6341557B2 JP11228485A JP11228485A JPS6341557B2 JP S6341557 B2 JPS6341557 B2 JP S6341557B2 JP 11228485 A JP11228485 A JP 11228485A JP 11228485 A JP11228485 A JP 11228485A JP S6341557 B2 JPS6341557 B2 JP S6341557B2
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Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は、リンパ球又は白血病由来細胞を培養
する培地に関するものである。 〔従来の技術〕 近年、リンパ球又は白血病由来細胞を培養し
て、その培養上清液もしくは細胞から、有用な生
理活性物質を得ることを目的とした研究が活発化
しており、特にインターフエロン(IFN)やモノ
クロナール抗体の開発については、癌の予防、治
療への可能性を秘めていることからその進捗には
著しいものがある。しかしながら、細胞培養上清
液から生理活性物質を大量に得、それを精製して
利用するためには技術的に大きな問題がある。 その一つは、細胞培養培地に牛胎児血清
(FBS)などの血清を10%程度添加する必要があ
ることである。これらの血清は非常に高価であ
り、かつ原因不明のロツト差があるため、大量に
細胞を培養するには問題があつた。さらに、これ
らの血清は、多種類の異種蛋白を含むので、有用
活性物質を精製する際に大変な不都合が生じる。 これまでに、血清の代替として、インシユリ
ン,トランスフエリン,表皮性細胞増殖因子など
の各種の増殖因子や血清アルブミンなど性格が明
らかな蛋白を含む無血清培地が開発されてきた。
(D.Barnes,G.H.Sato,Cell,22巻,649頁、
1980年) しかしながら、これらの無血清培地では、糖源
としてグルコースが用いられているが、グルコー
スを用いたときには、多量のPH緩衝剤を培地に加
えないと、培養の間培地のPHが急激に低下し、良
好な結果が得られなかつた。 グルコースの代わりにガラクトースを用いた培
地(A.Laibovitz,Amer.J.Hyg.,78巻173頁1963
年;高岡聰子,組織培養,9巻,196頁,1983年)
あるいはフラクトースを用いた培地(C.
Wolfrom et al.Exp.Cell Res.149巻535頁1983
年)ではPHの急激な低下は生じないが、リンパ球
又は白血病由来細胞の無血清培養では良好な細胞
増殖は得られない。 〔本発明が解決しようとする問題点〕 従つてこの発明の目的は、リンパ球又は白血病
由来細胞がよく増殖し、かつPHの急激な低下が生
じない無血清培地を見い出すことにある。 〔問題点を解決するための手段〕 我々は、以上のような問題点を踏まえ、鋭意検
討した結果、グルコースを含まず0.5から5g/
のマンノースを含有する無血清培地が上記の目
的を達成しうるものであることを見い出した。 本発明における実質的に血清を含まない培地と
は、RPMI1640培地、ハムF―12培地、ダルベツ
コMEM培地などの培地を単独または混合した培
地に、インシユリン、トランスフエリン、ステロ
イドホルモンなどの各種増殖因子や、アルブミン
などの血清蛋白成分を含有せしめた培地、例え
ば、イスコフ培地、RITC80―7培地、RITC57
―1培地、HB101培地など及びこれらの培地を
改変したものである。 マンノースの濃度範囲は、0.5から5g/の
範囲であり、より好ましくは、通常の細胞増殖に
おいては、0.5から2g/が、高密度細胞培養
(5×106個/ml以上)では2から5g/であ
る。0.5g/以下では、有意な効果が認められ
ず、5g/以上では、乳酸産生速度が増大する
結果、PH低下速度が増大し、細胞毒性が認められ
る。糖源としてマンノースのほかにガラクトース
(0.5〜1g/)や、その他の糖源ピルビン酸や
アミノ酸を併用して用いることもできる。 これらの培地は、培地を時々入れかえる交換培
養法に用いれば、5から106/mlの高密度細胞数
が得られる、所謂高密度培養法にも用いることが
できる。 本発明のリンパ球又は白血病由来細胞とは、ヒ
ト、マウス、ラツト、ウシ、ハムスターなどの哺
乳動物のリンパ球又は白血病由来細胞であつて、
初代培養細胞、リンパ腫、白血病、骨髄腫瘍由来
の細胞株、リンパ球を片方の親細胞とするハイブ
リドーマ、並びにウイルス等で変異した細胞株
が、これに含まれる。例えば、ヒト細胞では、
BALL―1細胞、UMCL細胞、ATL―2細胞、
CCR―CEM細胞、TALL―1細胞、RPMI1788
細胞、HL―60細胞、NALM―1細胞などがあげ
られ、動物細胞ではX―5563細胞、BW5147細
胞、FS―6細胞やNS―1細胞、SP―1細胞な
どを親株とするマウス脾臓リンパ球のハイブリド
ーマなどがあげられる。 本発明による培養方法は、通常の浮遊細胞培養
用の容器または装置を用いればよく、細胞増殖培
養では、細胞数1から5×105個/mlの細胞密度
で、37℃、5%CO2下、3から5日間培養する。
また、効率的な有用物質産生のための培養法とし
ては、連続培養法がある。 〔本発明の作用、効果〕 本発明の無血清培地を用いてリンパ球又は白血
病由来細胞を培養すると、充分な細胞増殖が得ら
れ、且つ培養の間、PHが低下する程度が少い。 実施例 1 表1に示すグルコース、ガラクトース及びマン
ノースを含まず0.1%のウシ血清アルブミン
(BSA)を添加したRITC59―1培地を基礎培地
とし、これに表2に示す濃度の糖を添加した後、
培地の侵透圧を水またはNaClで290±0smに調整
した。ついで、0.22μmのメンブラン・フイルタ
ー(ミリポア社製)で濾過滅菌した。各々の培地
20mlをフアルコン社製3024フラスコに入れ、ヒト
臍帯血リンパ球をEpstain―Barr Virusで変異さ
せ、INFを自発産生するUMCL細胞又はBALL
―1細胞を、5×105個/mlの初発細胞濃度とな
るように加え、5%CO2,37℃にてUMCL細胞を
4日間、BALL―1細胞を5日間、培養した。
する培地に関するものである。 〔従来の技術〕 近年、リンパ球又は白血病由来細胞を培養し
て、その培養上清液もしくは細胞から、有用な生
理活性物質を得ることを目的とした研究が活発化
しており、特にインターフエロン(IFN)やモノ
クロナール抗体の開発については、癌の予防、治
療への可能性を秘めていることからその進捗には
著しいものがある。しかしながら、細胞培養上清
液から生理活性物質を大量に得、それを精製して
利用するためには技術的に大きな問題がある。 その一つは、細胞培養培地に牛胎児血清
(FBS)などの血清を10%程度添加する必要があ
ることである。これらの血清は非常に高価であ
り、かつ原因不明のロツト差があるため、大量に
細胞を培養するには問題があつた。さらに、これ
らの血清は、多種類の異種蛋白を含むので、有用
活性物質を精製する際に大変な不都合が生じる。 これまでに、血清の代替として、インシユリ
ン,トランスフエリン,表皮性細胞増殖因子など
の各種の増殖因子や血清アルブミンなど性格が明
らかな蛋白を含む無血清培地が開発されてきた。
(D.Barnes,G.H.Sato,Cell,22巻,649頁、
1980年) しかしながら、これらの無血清培地では、糖源
としてグルコースが用いられているが、グルコー
スを用いたときには、多量のPH緩衝剤を培地に加
えないと、培養の間培地のPHが急激に低下し、良
好な結果が得られなかつた。 グルコースの代わりにガラクトースを用いた培
地(A.Laibovitz,Amer.J.Hyg.,78巻173頁1963
年;高岡聰子,組織培養,9巻,196頁,1983年)
あるいはフラクトースを用いた培地(C.
Wolfrom et al.Exp.Cell Res.149巻535頁1983
年)ではPHの急激な低下は生じないが、リンパ球
又は白血病由来細胞の無血清培養では良好な細胞
増殖は得られない。 〔本発明が解決しようとする問題点〕 従つてこの発明の目的は、リンパ球又は白血病
由来細胞がよく増殖し、かつPHの急激な低下が生
じない無血清培地を見い出すことにある。 〔問題点を解決するための手段〕 我々は、以上のような問題点を踏まえ、鋭意検
討した結果、グルコースを含まず0.5から5g/
のマンノースを含有する無血清培地が上記の目
的を達成しうるものであることを見い出した。 本発明における実質的に血清を含まない培地と
は、RPMI1640培地、ハムF―12培地、ダルベツ
コMEM培地などの培地を単独または混合した培
地に、インシユリン、トランスフエリン、ステロ
イドホルモンなどの各種増殖因子や、アルブミン
などの血清蛋白成分を含有せしめた培地、例え
ば、イスコフ培地、RITC80―7培地、RITC57
―1培地、HB101培地など及びこれらの培地を
改変したものである。 マンノースの濃度範囲は、0.5から5g/の
範囲であり、より好ましくは、通常の細胞増殖に
おいては、0.5から2g/が、高密度細胞培養
(5×106個/ml以上)では2から5g/であ
る。0.5g/以下では、有意な効果が認められ
ず、5g/以上では、乳酸産生速度が増大する
結果、PH低下速度が増大し、細胞毒性が認められ
る。糖源としてマンノースのほかにガラクトース
(0.5〜1g/)や、その他の糖源ピルビン酸や
アミノ酸を併用して用いることもできる。 これらの培地は、培地を時々入れかえる交換培
養法に用いれば、5から106/mlの高密度細胞数
が得られる、所謂高密度培養法にも用いることが
できる。 本発明のリンパ球又は白血病由来細胞とは、ヒ
ト、マウス、ラツト、ウシ、ハムスターなどの哺
乳動物のリンパ球又は白血病由来細胞であつて、
初代培養細胞、リンパ腫、白血病、骨髄腫瘍由来
の細胞株、リンパ球を片方の親細胞とするハイブ
リドーマ、並びにウイルス等で変異した細胞株
が、これに含まれる。例えば、ヒト細胞では、
BALL―1細胞、UMCL細胞、ATL―2細胞、
CCR―CEM細胞、TALL―1細胞、RPMI1788
細胞、HL―60細胞、NALM―1細胞などがあげ
られ、動物細胞ではX―5563細胞、BW5147細
胞、FS―6細胞やNS―1細胞、SP―1細胞な
どを親株とするマウス脾臓リンパ球のハイブリド
ーマなどがあげられる。 本発明による培養方法は、通常の浮遊細胞培養
用の容器または装置を用いればよく、細胞増殖培
養では、細胞数1から5×105個/mlの細胞密度
で、37℃、5%CO2下、3から5日間培養する。
また、効率的な有用物質産生のための培養法とし
ては、連続培養法がある。 〔本発明の作用、効果〕 本発明の無血清培地を用いてリンパ球又は白血
病由来細胞を培養すると、充分な細胞増殖が得ら
れ、且つ培養の間、PHが低下する程度が少い。 実施例 1 表1に示すグルコース、ガラクトース及びマン
ノースを含まず0.1%のウシ血清アルブミン
(BSA)を添加したRITC59―1培地を基礎培地
とし、これに表2に示す濃度の糖を添加した後、
培地の侵透圧を水またはNaClで290±0smに調整
した。ついで、0.22μmのメンブラン・フイルタ
ー(ミリポア社製)で濾過滅菌した。各々の培地
20mlをフアルコン社製3024フラスコに入れ、ヒト
臍帯血リンパ球をEpstain―Barr Virusで変異さ
せ、INFを自発産生するUMCL細胞又はBALL
―1細胞を、5×105個/mlの初発細胞濃度とな
るように加え、5%CO2,37℃にてUMCL細胞を
4日間、BALL―1細胞を5日間、培養した。
【表】
【表】
ール酸抱接化合物
【表】
【表】
培養後生細胞密度とUMCL細胞については
INF活性、BALL―1については、IgM量を測定
した。 これらの結果を基礎培地に10%FBSを添加し
た培地を対照培地として用いた結果と比較して表
2に示す。この結果より、マンノースを糖源とす
る倍地が、最も細胞増殖及び物質生産に適してい
ることがわかる。 実施例 2 実施例1に示した培地20mlにUMCL細胞又は
BALL―1細胞を1.5×107個/mlになるように懸
濁し、5%CO2濃度の保温器中に設置したベルコ
社製ロツキングプレートにて15回/分の速度で
UMCL細胞は、40時間、BALL―1細胞は72時
間揺動培養した。培養後、実施例1と同様に各々
の生細胞密度及びIFN産生並びにIgM産生を計測
した。これらの結果を基礎培地に20%FBSを添
加した培地を対照培地として用いた結果と比較し
て表3に示す。
INF活性、BALL―1については、IgM量を測定
した。 これらの結果を基礎培地に10%FBSを添加し
た培地を対照培地として用いた結果と比較して表
2に示す。この結果より、マンノースを糖源とす
る倍地が、最も細胞増殖及び物質生産に適してい
ることがわかる。 実施例 2 実施例1に示した培地20mlにUMCL細胞又は
BALL―1細胞を1.5×107個/mlになるように懸
濁し、5%CO2濃度の保温器中に設置したベルコ
社製ロツキングプレートにて15回/分の速度で
UMCL細胞は、40時間、BALL―1細胞は72時
間揺動培養した。培養後、実施例1と同様に各々
の生細胞密度及びIFN産生並びにIgM産生を計測
した。これらの結果を基礎培地に20%FBSを添
加した培地を対照培地として用いた結果と比較し
て表3に示す。
【表】
これらの結果から、マンノースを主糖源とする
無血清培地は、細胞高密度培養において生細胞維
持率と物質産生を有意に増大せしめることが認め
られる。
無血清培地は、細胞高密度培養において生細胞維
持率と物質産生を有意に増大せしめることが認め
られる。
Claims (1)
- 1 グルコースを含まず0.5から5g/のマン
ノースを含有し、実質的に血清を含まないリンパ
球又は白血病由来細胞を培養するための無血清培
地。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11228485A JPS61271984A (ja) | 1985-05-27 | 1985-05-27 | 無血清培地 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11228485A JPS61271984A (ja) | 1985-05-27 | 1985-05-27 | 無血清培地 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61271984A JPS61271984A (ja) | 1986-12-02 |
JPS6341557B2 true JPS6341557B2 (ja) | 1988-08-17 |
Family
ID=14582839
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11228485A Granted JPS61271984A (ja) | 1985-05-27 | 1985-05-27 | 無血清培地 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61271984A (ja) |
-
1985
- 1985-05-27 JP JP11228485A patent/JPS61271984A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS61271984A (ja) | 1986-12-02 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |