JPS63196269A - 植物の組織培養方法 - Google Patents
植物の組織培養方法Info
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Classifications
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- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
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- A01H4/005—Methods for micropropagation; Vegetative plant propagation using cell or tissue culture techniques
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/0018—Culture media for cell or tissue culture
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- C12N2501/30—Hormones
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野〕
本発明は植物の組織培養方法に関する。更に詳しくは、
液体培地を用いて植物を組織培養するに当って、植物ホ
ルモンを特定の条件のもとに培地に間欠的に供給するこ
とにより細胞の増殖速度が速く、かつ長期間安定した培
養が可能となる組織培養方法に関する。
液体培地を用いて植物を組織培養するに当って、植物ホ
ルモンを特定の条件のもとに培地に間欠的に供給するこ
とにより細胞の増殖速度が速く、かつ長期間安定した培
養が可能となる組織培養方法に関する。
従来の組織培養方法としては、例えば植物ホルモン、を
所定濃度にした培地を用いて培養を開始しても、それ以
後には植物ホルモン等の培地成分を新たに追加供給して
その濃度を適宜調整して培養を続ける方法については試
みられ、でいないようである。
所定濃度にした培地を用いて培養を開始しても、それ以
後には植物ホルモン等の培地成分を新たに追加供給して
その濃度を適宜調整して培養を続ける方法については試
みられ、でいないようである。
培養開始後は、植物ホルモン等の培地成分は細胞によっ
て消費され次第にその濃度を低下させてゆくので、ある
培地成分にとっては培養を継続する上で好ましくない濃
度範囲になっていることも考えられる。従来のこのよう
なバッチ培養の方法では細胞の増殖速度はかんばしくな
く、又細胞の生育安定性も良くない。
て消費され次第にその濃度を低下させてゆくので、ある
培地成分にとっては培養を継続する上で好ましくない濃
度範囲になっていることも考えられる。従来のこのよう
なバッチ培養の方法では細胞の増殖速度はかんばしくな
く、又細胞の生育安定性も良くない。
一方、連続培養方法として培養物と一緒に培養液を培養
帯域外へ排出して培地を更新して培養する方法が知られ
ている。例えば「醗酵工学」第61巻117〜128頁
(1983年)には、タバコ植物細胞を培養する方法と
して2.4−D(2,4−ジクロロフェノキシ酢酸)の
植物ホルモンを含む液体培地を更新させながら連続培養
する方法が示されており、この場合には培養期間中はぼ
一定濃度の植物ホルモンが培地に存在するものと考えら
れる。又培地を更新させて培養する方法として特公昭6
1−36915号公報には培地液中の細胞を沈降させて
得られる培養上清を培養槽外に排出しながら新鮮培地を
加えて培養する浮遊細胞の高濃度培養の方法が示されて
いる。しかしこれら従来の方法に示された培養方法では
、培養細胞の増殖速度や生育安定性が不充分であり、従
って培養によって得られる二次代謝産物の例えばアルカ
ロイドや色素の生産量は未だ充分ではなく改善の余地が
ある。
帯域外へ排出して培地を更新して培養する方法が知られ
ている。例えば「醗酵工学」第61巻117〜128頁
(1983年)には、タバコ植物細胞を培養する方法と
して2.4−D(2,4−ジクロロフェノキシ酢酸)の
植物ホルモンを含む液体培地を更新させながら連続培養
する方法が示されており、この場合には培養期間中はぼ
一定濃度の植物ホルモンが培地に存在するものと考えら
れる。又培地を更新させて培養する方法として特公昭6
1−36915号公報には培地液中の細胞を沈降させて
得られる培養上清を培養槽外に排出しながら新鮮培地を
加えて培養する浮遊細胞の高濃度培養の方法が示されて
いる。しかしこれら従来の方法に示された培養方法では
、培養細胞の増殖速度や生育安定性が不充分であり、従
って培養によって得られる二次代謝産物の例えばアルカ
ロイドや色素の生産量は未だ充分ではなく改善の余地が
ある。
かかる背景のもとに本発明者等は、従来法に比べて細胞
の増殖速度が速く、また生育安定性に優れ二次代謝産物
を効率良く高収率で得ることのできる培養方法について
検討したところ、植物ホルモンを培養期間中必ずしも一
定濃度に維持する必要はなく、細胞の成長に合わせてそ
の濃度を適宜変えることが良いことを認めた。そしてこ
の知見をもとに前記目的を達成できる組織培養方法に関
する発明を完成するに到った。
の増殖速度が速く、また生育安定性に優れ二次代謝産物
を効率良く高収率で得ることのできる培養方法について
検討したところ、植物ホルモンを培養期間中必ずしも一
定濃度に維持する必要はなく、細胞の成長に合わせてそ
の濃度を適宜変えることが良いことを認めた。そしてこ
の知見をもとに前記目的を達成できる組織培養方法に関
する発明を完成するに到った。
すなわち、本発明の方法によれば、液体培地を用いて組
織培養するに当たって、植物ホルモンを以下の(a)と
(b)の条件を満足するようにして培地に間欠的に供給
しながら培養を行うことを特徴とする植物の組織培養方
法が提供される。
織培養するに当たって、植物ホルモンを以下の(a)と
(b)の条件を満足するようにして培地に間欠的に供給
しながら培養を行うことを特徴とする植物の組織培養方
法が提供される。
(a)植物ホルモンの供給間隔D〔時間〕を細胞の倍増
時間の0.5〜5倍とする。
時間の0.5〜5倍とする。
(b)CI3式を満足するような量の植物ホルモンを培
地に加える。
地に加える。
10−” < A/D −W<1O−h(1)ここでA
は培地に間欠的に加えられる植物ホルモンの量〔モル〕
、Wは培養帯域にある細胞の新鮮重量〔g〕、Dは植物
ホルモンの供給間隔(day )を表わす。
は培地に間欠的に加えられる植物ホルモンの量〔モル〕
、Wは培養帯域にある細胞の新鮮重量〔g〕、Dは植物
ホルモンの供給間隔(day )を表わす。
本発明の植物の組織培養方法が適用される植物としては
特に限定されず、従来の組織培養が適用できる植物であ
れば、本発明の方法を該植物に適用することは原理的に
可能である。このような植物として具体的には、ズボイ
シア・ミオポロイデス(Duboisia myopo
roides)、ズボイシア・ライヒハルデイ(Dub
oisia 1eichhardtii)等のズボイシ
ア属植物、ダツラ・タック(Datura tatul
a)。
特に限定されず、従来の組織培養が適用できる植物であ
れば、本発明の方法を該植物に適用することは原理的に
可能である。このような植物として具体的には、ズボイ
シア・ミオポロイデス(Duboisia myopo
roides)、ズボイシア・ライヒハルデイ(Dub
oisia 1eichhardtii)等のズボイシ
ア属植物、ダツラ・タック(Datura tatul
a)。
ダツラ・アルボレア(Datura arborea)
、ダツラ・ストラモニウム(Datura stram
onium)等のダツラ属植物、スコボリア・ジャポニ
カ(5copoliajaponica)等のスコポリ
ア属植物、ヒョシアマス0ニガー(Hyoscyamu
s niger)等のヒヨス属植物およびアトローバ・
ベラドンナ(Atropa belladonna)等
のアトローパ属植物などのナス科植物、オウレン(Co
ptis japonica Makino)、セリバ
オウレン(Nakai) 、キクバオウレン(C,ja
ponika Makin。
、ダツラ・ストラモニウム(Datura stram
onium)等のダツラ属植物、スコボリア・ジャポニ
カ(5copoliajaponica)等のスコポリ
ア属植物、ヒョシアマス0ニガー(Hyoscyamu
s niger)等のヒヨス属植物およびアトローバ・
ベラドンナ(Atropa belladonna)等
のアトローパ属植物などのナス科植物、オウレン(Co
ptis japonica Makino)、セリバ
オウレン(Nakai) 、キクバオウレン(C,ja
ponika Makin。
var、 japonika)、コセリバオウレン(C
,japonikaMakino var、 n+aj
or 5atake) 、バイカオウレン(C,qui
nquefolia Miq、)およびミツバオウレン
(C,trifolia 5alisb、)等のコプテ
イス属の植物、アキカラマツ(Thalictrum
m1nus L、var hypolecumMiq、
)等のサリクトラム属の植物、サリントリザ属の植物お
よびヒドラスチス属植物等のキンポウゲ科植物、ケシ科
植物のケシ、マメ科植物のカンゾウ、セリ科植物のニン
ジン、ミシマサイコ、タデ科植物のダイオウ、キョウチ
クトウ科植物のインドジャボク、ニチニチソウ、ナス科
植物のタバコ、ムラサキ科植物のムラサキ、シソ科植物
のシソ、ハツカ、アカネ科植物のコーヒー、ゴマノハグ
サ科植物のジキタリスなどを挙げることができる。
,japonikaMakino var、 n+aj
or 5atake) 、バイカオウレン(C,qui
nquefolia Miq、)およびミツバオウレン
(C,trifolia 5alisb、)等のコプテ
イス属の植物、アキカラマツ(Thalictrum
m1nus L、var hypolecumMiq、
)等のサリクトラム属の植物、サリントリザ属の植物お
よびヒドラスチス属植物等のキンポウゲ科植物、ケシ科
植物のケシ、マメ科植物のカンゾウ、セリ科植物のニン
ジン、ミシマサイコ、タデ科植物のダイオウ、キョウチ
クトウ科植物のインドジャボク、ニチニチソウ、ナス科
植物のタバコ、ムラサキ科植物のムラサキ、シソ科植物
のシソ、ハツカ、アカネ科植物のコーヒー、ゴマノハグ
サ科植物のジキタリスなどを挙げることができる。
本発明では前記植物の組織(細胞、器官を含む)を液体
培地を用いて、培養が行われるが、この場合の液体培地
としては、従来から知られている植物の組織培養に使用
されている培地が使用できる。
培地を用いて、培養が行われるが、この場合の液体培地
としては、従来から知られている植物の組織培養に使用
されている培地が使用できる。
該培地として゛具体的には無機成分、炭素源および植物
ホルモンを必須成分とし、これにビタミン類を添加し、
更に必要に応じてアミノ酸類を添加した培地である。該
培地の無機成分としては、窒素、リン、カリウム、ナト
リウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マン
ガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、コバ
ルト等の元素を含む無機塩を挙げることができ、具体的
には硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム
、塩化アンモニウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、
リン酸1水素カリウム、リン酸2水素ナトリウム、硫酸
マグネシウム、塩化マグネシウム、硫酸ナトリウム、硫
酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫酸マンガン、硫酸量、モリブ
デン酸ナトリウム、酸化モリブデン、ヨウ化カリウム、
硫酸亜鉛、ホウ酸、塩化コバルト等の化合物を例示でき
る。
ホルモンを必須成分とし、これにビタミン類を添加し、
更に必要に応じてアミノ酸類を添加した培地である。該
培地の無機成分としては、窒素、リン、カリウム、ナト
リウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マン
ガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、コバ
ルト等の元素を含む無機塩を挙げることができ、具体的
には硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム
、塩化アンモニウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、
リン酸1水素カリウム、リン酸2水素ナトリウム、硫酸
マグネシウム、塩化マグネシウム、硫酸ナトリウム、硫
酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫酸マンガン、硫酸量、モリブ
デン酸ナトリウム、酸化モリブデン、ヨウ化カリウム、
硫酸亜鉛、ホウ酸、塩化コバルト等の化合物を例示でき
る。
該培地の炭素源としては、ショ糖等の炭水化物とその誘
導体、脂肪酸等の有機酸およびエタノール等の1級アル
コールなどを例示できる。
導体、脂肪酸等の有機酸およびエタノール等の1級アル
コールなどを例示できる。
該培地の植物ホルモンとしては、インドール酢酸(IA
A) 、ナフタレン酢酸(NAA) 、I)−クロロフ
ェノキシイソ酪酸および2,4−ジクロロフェノキシ酢
酸(2,4−D)等のオーキシン類およびカイネチン、
ゼアチンおよびベンジルアデニン等のサイトカイニン類
を例示できる。
A) 、ナフタレン酢酸(NAA) 、I)−クロロフ
ェノキシイソ酪酸および2,4−ジクロロフェノキシ酢
酸(2,4−D)等のオーキシン類およびカイネチン、
ゼアチンおよびベンジルアデニン等のサイトカイニン類
を例示できる。
該培地のビタミン類としては、ビオチン、チアミン(ビ
タミンBl)、ピリドキシン(ビタミンB6)、ピリド
キサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウム、
アスコルビン酸(ビタミンc)、イノシトール、ニコチ
ン酸、ニコチン酸アミドおよびリボフラビン(ビタミン
Bt)などを例示できる。
タミンBl)、ピリドキシン(ビタミンB6)、ピリド
キサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウム、
アスコルビン酸(ビタミンc)、イノシトール、ニコチ
ン酸、ニコチン酸アミドおよびリボフラビン(ビタミン
Bt)などを例示できる。
該培地のアミノ酸類としては、例えばグリシン、アラニ
ン、グルタミン酸、システィン、チロシンおよびリジン
などを例示できる。
ン、グルタミン酸、システィン、チロシンおよびリジン
などを例示できる。
本発明で使用される液体培地は、通常は、前記無機成分
を約0.1μMないし約10On+M、前記炭素源を約
1 g / 12ないし約100 g / jl 、前
記ビタミン類を約0.1mg / 12ないし約150
mg/lおよび前記アミノ類類を0ないし約1000m
g/ It含ませて使用されることが望ましい。植物ホ
ルモンについては、本発明では培地に特定条件のもとに
特定量の植物ホルモンが間欠的に加えられるわけである
が、植物ホルモンが間欠的に加えられる直前の培地にお
ける植物ホルモン濃度は通常0 (検出限界以下の濃度
)あるいはそれに近い濃度になっているが、必要に応じ
て該濃度がO−10−”Hの範囲にあっても差し支えな
い。又植物ホルモンが間欠的に培地に加えられた直後の
培地における植物ホルモン濃度は通常10−4ないし1
0− ” M、好ましくは10− ’ないし10− ”
Mの範囲にあるようにして後述する特定条件のもとに後
述の(I)式によって規定される所定量の植物ホルモン
が培地に間欠的に加えられる。
を約0.1μMないし約10On+M、前記炭素源を約
1 g / 12ないし約100 g / jl 、前
記ビタミン類を約0.1mg / 12ないし約150
mg/lおよび前記アミノ類類を0ないし約1000m
g/ It含ませて使用されることが望ましい。植物ホ
ルモンについては、本発明では培地に特定条件のもとに
特定量の植物ホルモンが間欠的に加えられるわけである
が、植物ホルモンが間欠的に加えられる直前の培地にお
ける植物ホルモン濃度は通常0 (検出限界以下の濃度
)あるいはそれに近い濃度になっているが、必要に応じ
て該濃度がO−10−”Hの範囲にあっても差し支えな
い。又植物ホルモンが間欠的に培地に加えられた直後の
培地における植物ホルモン濃度は通常10−4ないし1
0− ” M、好ましくは10− ’ないし10− ”
Mの範囲にあるようにして後述する特定条件のもとに後
述の(I)式によって規定される所定量の植物ホルモン
が培地に間欠的に加えられる。
本発明で使用される培地として具体的には、従来から知
られている植物の組織培養に用いられている培地、例え
ば、ムラシゲ・スクーグ(”62)(Murashig
e & Skoog )の培地、リンスマイヤー・スク
ーグ(RM−1965) (Linsmaier &
Skoog )の培地、ホワイト(’63) (W
hite )の培地、ガンボルグ(Gamborg )
の8−5培地、三井のM−9培地の培地等に前記した炭
素源を添加し、更に必要に応じて前記した植物ホルモン
、ビタミン類、アミノ酸類を添加して調製される培地を
例示できるが、本発明ではこの中でも特にリンスマイヤ
ー・スクーグ又はムラシゲ・スクーグの培地を用いて調
製される培地が好ましい。なお、上記した従来公知の培
地の組成に関しては、例えば、行内、中島、古谷著の「
新植物組織培養J P3B6〜P391、朝食書店、1
979年に記載されている。
られている植物の組織培養に用いられている培地、例え
ば、ムラシゲ・スクーグ(”62)(Murashig
e & Skoog )の培地、リンスマイヤー・スク
ーグ(RM−1965) (Linsmaier &
Skoog )の培地、ホワイト(’63) (W
hite )の培地、ガンボルグ(Gamborg )
の8−5培地、三井のM−9培地の培地等に前記した炭
素源を添加し、更に必要に応じて前記した植物ホルモン
、ビタミン類、アミノ酸類を添加して調製される培地を
例示できるが、本発明ではこの中でも特にリンスマイヤ
ー・スクーグ又はムラシゲ・スクーグの培地を用いて調
製される培地が好ましい。なお、上記した従来公知の培
地の組成に関しては、例えば、行内、中島、古谷著の「
新植物組織培養J P3B6〜P391、朝食書店、1
979年に記載されている。
本発明では前記液体培地を用いて前記植物を組織培養す
る場合、本発明を特徴づける以下の条件のもとに培養が
実施される。以下該条件について詳述する。
る場合、本発明を特徴づける以下の条件のもとに培養が
実施される。以下該条件について詳述する。
本発明に係る植物組織培養方法においては、液体培地に
占める細胞濃度は任意であるが、好ましくは細胞濃度を
液体培地に対して100〜500(g/f) 、特に好
ましくは200〜400(g/l)の範囲にあるように
して培養を行うと、培養槽の単位容積当たりの細胞の収
量を高くして効率良く培養できるので望ましい。細胞濃
度が通常500g/1以上になるとスラリー濃度が高く
なり培養液の攪拌、混合が不充分となるため、効率良く
酸素供給を行うことが困難となり、培養中に細胞の壊死
などが起こって、細胞の正常な増殖が困難となりやすい
。また、酸素の供給を充分にしようとして攪拌を激しく
すると細胞の破壊、損傷が起きるなどして培養が困難と
なる。このように細胞濃度を500(g/l)を越えて
高くした場合には、培養にとって好ましくないことが起
きるので通常は細胞濃度は500(g/l)以下にして
培養を行うことが好ましい。培養期間中には細胞が増殖
してその量を増すので、本発明では必要に応じて培養期
間中に細胞を適宜の量培養帯域外へ適宜方法によって取
り出すことによって、培養帯域中の細胞濃度を適宜濃度
に維持することができる。なお細胞細胞濃度を算出する
際の細胞の重量は湿った(wet)状態で測定された新
鮮重量である。ここに新鮮重量とは通常以下の方法によ
って求められる細胞の重量である。すなわち、組織培養
物を濾布をひいたヌツチェにとり、水洗ポンプなどで5
分間濾過を行い、細胞以外の培養液を除いたときの細胞
の重量である。このようにして得られる細胞は植物によ
っても異なるが通常含水率が80〜95−t%である。
占める細胞濃度は任意であるが、好ましくは細胞濃度を
液体培地に対して100〜500(g/f) 、特に好
ましくは200〜400(g/l)の範囲にあるように
して培養を行うと、培養槽の単位容積当たりの細胞の収
量を高くして効率良く培養できるので望ましい。細胞濃
度が通常500g/1以上になるとスラリー濃度が高く
なり培養液の攪拌、混合が不充分となるため、効率良く
酸素供給を行うことが困難となり、培養中に細胞の壊死
などが起こって、細胞の正常な増殖が困難となりやすい
。また、酸素の供給を充分にしようとして攪拌を激しく
すると細胞の破壊、損傷が起きるなどして培養が困難と
なる。このように細胞濃度を500(g/l)を越えて
高くした場合には、培養にとって好ましくないことが起
きるので通常は細胞濃度は500(g/l)以下にして
培養を行うことが好ましい。培養期間中には細胞が増殖
してその量を増すので、本発明では必要に応じて培養期
間中に細胞を適宜の量培養帯域外へ適宜方法によって取
り出すことによって、培養帯域中の細胞濃度を適宜濃度
に維持することができる。なお細胞細胞濃度を算出する
際の細胞の重量は湿った(wet)状態で測定された新
鮮重量である。ここに新鮮重量とは通常以下の方法によ
って求められる細胞の重量である。すなわち、組織培養
物を濾布をひいたヌツチェにとり、水洗ポンプなどで5
分間濾過を行い、細胞以外の培養液を除いたときの細胞
の重量である。このようにして得られる細胞は植物によ
っても異なるが通常含水率が80〜95−t%である。
本発明に係わる組織培養では植物の組織片や細胞などが
培養される。該組織片としては茎頂、茎、葉、花、種子
、根などの組織片を例示でき、組織片から誘導されるカ
ルスや、培養細胞も更に組織培養の原料として用いるこ
とができる。
培養される。該組織片としては茎頂、茎、葉、花、種子
、根などの組織片を例示でき、組織片から誘導されるカ
ルスや、培養細胞も更に組織培養の原料として用いるこ
とができる。
本発明に係わるm織培養方法はバッチ培養でも連続培養
でも行うことができるが、連続培養に適用することが好
ましい。この連続培養の場合には、培地の栄養基質濃度
を所定の濃度に調整した液体培地を培養帯域に連続的ま
たは非連続的に供給する一方、培養帯域の他方により培
養液を連続的または非連続的に抜き出して、培養帯域中
の培養液を更新させながら組織培養を行うことができる
。
でも行うことができるが、連続培養に適用することが好
ましい。この連続培養の場合には、培地の栄養基質濃度
を所定の濃度に調整した液体培地を培養帯域に連続的ま
たは非連続的に供給する一方、培養帯域の他方により培
養液を連続的または非連続的に抜き出して、培養帯域中
の培養液を更新させながら組織培養を行うことができる
。
培養液の更新は連続的であっても非連続的であってもよ
い。
い。
ここで栄養基質とは、前述した本発明で使用する液体培
地の培地成分であって、前記した無機成分、炭素源、植
物ホルモン、ビタミン類およびアミノ酸類である。
地の培地成分であって、前記した無機成分、炭素源、植
物ホルモン、ビタミン類およびアミノ酸類である。
また栄養基質濃度が所定の濃度に調整された培養液とは
、前述したように無機成分を約0.1μM〜約100m
M、炭素源を約1〜約100 g / 1、ビタミン類
をOないし約150+sg/ It 、アミノ酸類をO
ないし約1000mg/ lの濃度範囲に調整した液体
培地である。液体培地を更新させながら行う連続培養法
の場合には、培養帯域に供給される液体培地中の植物ホ
ルモン濃度については通常O(検出限界以下の濃度)で
あることが好ましいが、必要に応じてO〜10− ”−
の範囲で植物ホルモンをふくんでいても差し支えない。
、前述したように無機成分を約0.1μM〜約100m
M、炭素源を約1〜約100 g / 1、ビタミン類
をOないし約150+sg/ It 、アミノ酸類をO
ないし約1000mg/ lの濃度範囲に調整した液体
培地である。液体培地を更新させながら行う連続培養法
の場合には、培養帯域に供給される液体培地中の植物ホ
ルモン濃度については通常O(検出限界以下の濃度)で
あることが好ましいが、必要に応じてO〜10− ”−
の範囲で植物ホルモンをふくんでいても差し支えない。
培養帯域に植物ホルモンが間欠的に加えられた直後の培
養帯域における植物ホルモン濃度は前述と同様に通常1
0−4〜10−”M、好ましくは10−s〜10−”M
の範囲にある。本発明では培養帯域に供給される培地成
分の濃度を前記範囲になるように調整した液体培地につ
いては、通常は新鮮な液体培地を用いることが好ましい
が、培養帯域から抜き出された培地の栄養基質濃度を調
整してからこれを再度循環使用する方法を行っても差し
支えない。循環使用する場合には培養液中の細胞の代謝
によって生じる老廃物を適宜除去する処理を行うことが
好ましい。
養帯域における植物ホルモン濃度は前述と同様に通常1
0−4〜10−”M、好ましくは10−s〜10−”M
の範囲にある。本発明では培養帯域に供給される培地成
分の濃度を前記範囲になるように調整した液体培地につ
いては、通常は新鮮な液体培地を用いることが好ましい
が、培養帯域から抜き出された培地の栄養基質濃度を調
整してからこれを再度循環使用する方法を行っても差し
支えない。循環使用する場合には培養液中の細胞の代謝
によって生じる老廃物を適宜除去する処理を行うことが
好ましい。
本発明では培養液を更新させながら組織培養を行う場合
には、培養槽(培養帯域)中の培養液の量をV (f)
、培養槽に供給する液体培地の量をF (1/day
)としてF / V (1/ day−’)で定義さ
れる培地更新率と組織培養物の比増殖速度μ(day−
’)の関係がμ≦F/V<20μの範囲にあるようにし
て植物の組織培養を行うことが好ましい。ここで比増殖
速度μ(day−’)とは以下の方法によって定義され
る量である。
には、培養槽(培養帯域)中の培養液の量をV (f)
、培養槽に供給する液体培地の量をF (1/day
)としてF / V (1/ day−’)で定義さ
れる培地更新率と組織培養物の比増殖速度μ(day−
’)の関係がμ≦F/V<20μの範囲にあるようにし
て植物の組織培養を行うことが好ましい。ここで比増殖
速度μ(day−’)とは以下の方法によって定義され
る量である。
培養細胞を培養帯域外へ排出させない場合、培養のある
時期toの細胞の量をxoとし、を時間(日)後の細胞
の量をxtとした場合、比増殖速度μは次式で定義され
る。
時期toの細胞の量をxoとし、を時間(日)後の細胞
の量をxtとした場合、比増殖速度μは次式で定義され
る。
xt
l、l−
O
μ 2
また細胞の量をxoと維持して増殖した細胞を培養帯域
外に排出した場合、を時間(日)後培養帯域外に排出さ
れた細胞の量をytとすると比増殖速度μは次式で定義
される。
外に排出した場合、を時間(日)後培養帯域外に排出さ
れた細胞の量をytとすると比増殖速度μは次式で定義
される。
xt
O0t
そしてμのもつその物理的意味は(time”’)の次
元をもち、μの値が大きいほど組織培養物の増殖が速い
ことになる。
元をもち、μの値が大きいほど組織培養物の増殖が速い
ことになる。
本発明では比増殖速度μの値は植物の種類によっても異
なるが通常0.02〜0.4 (day−’) 、好ま
しくは0.05〜0.2 (day−’)の範囲にある
ようにして組織培養が行われる。本発明で連続培養法を
用いる場合には、培地の栄養基質の濃度が所定の濃度に
調整された液体培地を培養帯域に連続的または非連続的
に供給する際の供給fJF (β/ day)はμ≦F
/V<20μの式をもんぞくするようにして決めること
が好ましいことは前述したとおりである。この場合の培
地更新率F/Vの値としては通常0.02〜8 (da
y−’) 、好ましくは0.05〜4 (day−’
)の範囲にある。
なるが通常0.02〜0.4 (day−’) 、好ま
しくは0.05〜0.2 (day−’)の範囲にある
ようにして組織培養が行われる。本発明で連続培養法を
用いる場合には、培地の栄養基質の濃度が所定の濃度に
調整された液体培地を培養帯域に連続的または非連続的
に供給する際の供給fJF (β/ day)はμ≦F
/V<20μの式をもんぞくするようにして決めること
が好ましいことは前述したとおりである。この場合の培
地更新率F/Vの値としては通常0.02〜8 (da
y−’) 、好ましくは0.05〜4 (day−’
)の範囲にある。
本発明では培養帯域の他方より培養液を連続的または非
連続的に抜き出す場合、培養中の培養槽における細胞の
濃度を100〜500(g/J)の範囲になるようにし
て培養することが好ましいが、この際培養槽から培養液
のみを抜き出してもよいし、あるいは必要に応じて適宜
量の細胞を培養液と共に抜き出しても差し支えない。
連続的に抜き出す場合、培養中の培養槽における細胞の
濃度を100〜500(g/J)の範囲になるようにし
て培養することが好ましいが、この際培養槽から培養液
のみを抜き出してもよいし、あるいは必要に応じて適宜
量の細胞を培養液と共に抜き出しても差し支えない。
本発明では培地更新率(F/V)が比増殖速度μよりも
小さなF/V<μの場合には、細胞の濃度が高くなりす
ぎてしまい、細胞の最適濃度を維持できなくなるなどの
理由から培養帯域から培養液だけを取り出すことよりも
適宜量の培養細胞も含めて取り出すことが好ましく、例
えば培養槽に設けられた排出管より細胞を含む培養液を
取り出すと共に、培地の栄養基質濃度が前記所定濃度に
調製された液体培地を培養槽に送入して培養槽における
細胞の濃度を適宜濃度にして培養することもできる。
小さなF/V<μの場合には、細胞の濃度が高くなりす
ぎてしまい、細胞の最適濃度を維持できなくなるなどの
理由から培養帯域から培養液だけを取り出すことよりも
適宜量の培養細胞も含めて取り出すことが好ましく、例
えば培養槽に設けられた排出管より細胞を含む培養液を
取り出すと共に、培地の栄養基質濃度が前記所定濃度に
調製された液体培地を培養槽に送入して培養槽における
細胞の濃度を適宜濃度にして培養することもできる。
本発明で連続培養法を用いる場合には培地更新率(F/
V)が比増殖速度μより極端に大きい20μ≦F/Vの
場合には、細胞の黒化、壊死などの悪影響が通常おこり
易い。そこで本発明では培地更新率(F/V)をμ≦F
/V<20μの範囲で制御することによって組織培養を
行うことが特に好ましい。
V)が比増殖速度μより極端に大きい20μ≦F/Vの
場合には、細胞の黒化、壊死などの悪影響が通常おこり
易い。そこで本発明では培地更新率(F/V)をμ≦F
/V<20μの範囲で制御することによって組織培養を
行うことが特に好ましい。
本発明においては、培養帯域の他方により連続的または
非連続的に抜き出される培養液の量としては、通常は前
述した培養帯域に供給される培地量F (It /da
y )に相応する量であるが、必ずしもこの量に限定さ
れるものでは無く、例えば前記したF/V<μの条件で
培養している場合には必要に応じて培地の抜き出し量を
F (1/day )よりも適宜置場しても差し支えな
い。
非連続的に抜き出される培養液の量としては、通常は前
述した培養帯域に供給される培地量F (It /da
y )に相応する量であるが、必ずしもこの量に限定さ
れるものでは無く、例えば前記したF/V<μの条件で
培養している場合には必要に応じて培地の抜き出し量を
F (1/day )よりも適宜置場しても差し支えな
い。
本発明では前述の如く植物ホルモンを以下の(a)と(
b)の条件を満足にするようにして培地に間欠的に供給
して培養が行われる。
b)の条件を満足にするようにして培地に間欠的に供給
して培養が行われる。
(a)植物ホルモンの供給間隔D〔時間〕を細胞の倍増
時間の0.5〜5倍とする。
時間の0.5〜5倍とする。
(、b”) CI)式を満足するような量の植物ホル
モンを培地に加える。
モンを培地に加える。
to”<A/D−W<1o−” CI)ここでAは培
地に間欠的に加えられる植物ホルモンの量〔モル〕、W
は培養帯域にある細胞の新鮮重量〔g〕、Dは植物ホル
モンの供給間隔(day )を表わす。
地に間欠的に加えられる植物ホルモンの量〔モル〕、W
は培養帯域にある細胞の新鮮重量〔g〕、Dは植物ホル
モンの供給間隔(day )を表わす。
以下本発明に係わる植物ホルモンの供給方法について詳
述する。本発明では(b)の(1)式を満足するような
量(A)の前記した植物ホルモンが培地に間欠的に加え
られるが、この場合の間欠的な供給の仕方としては先の
(a)に示したように、植物ホルモンを供給するときの
間欠的な時間間隔りが培養帯域における細胞の倍増時間
(doublingtime)の0.5〜5倍となるよ
うにして植物ホルモンは供給される。ここで細胞の倍増
時間とは、全問題としている培養帯域で培養されている
細胞が増殖してその量を2倍にするのに要する時間であ
って、該倍増時間として具体的には植物の種類や培養条
件によっても多少異なるが通常2〜20日程度である。
述する。本発明では(b)の(1)式を満足するような
量(A)の前記した植物ホルモンが培地に間欠的に加え
られるが、この場合の間欠的な供給の仕方としては先の
(a)に示したように、植物ホルモンを供給するときの
間欠的な時間間隔りが培養帯域における細胞の倍増時間
(doublingtime)の0.5〜5倍となるよ
うにして植物ホルモンは供給される。ここで細胞の倍増
時間とは、全問題としている培養帯域で培養されている
細胞が増殖してその量を2倍にするのに要する時間であ
って、該倍増時間として具体的には植物の種類や培養条
件によっても多少異なるが通常2〜20日程度である。
本発明では植物ホルモン供給の間欠的な時間間隔りが細
胞の倍増時間の0.5倍未満の場合には、ホルモンを連
続的に供給した場合と同様に、培養期間が長くなるにつ
れて、細胞の黒化、壊死が起こり細胞の生育を著しく阻
害するなどの理由から好ましくない。またDが細胞の倍
増時間の5倍以上となるようにして植物ホルモンを供給
した場合には、1回当りに供給するホルモン量が多くな
るため、供給直後には細胞から二次代謝産物が培地中に
放出されたり、ホルモン異常と思われる一時的な細胞の
生育阻害が起こり安定な培養を長期に亘って実施するこ
とが困難になることから好ましくないので、植物ホルモ
ンの間欠的な供給の時間間隔は前記した範囲で行われる
。
胞の倍増時間の0.5倍未満の場合には、ホルモンを連
続的に供給した場合と同様に、培養期間が長くなるにつ
れて、細胞の黒化、壊死が起こり細胞の生育を著しく阻
害するなどの理由から好ましくない。またDが細胞の倍
増時間の5倍以上となるようにして植物ホルモンを供給
した場合には、1回当りに供給するホルモン量が多くな
るため、供給直後には細胞から二次代謝産物が培地中に
放出されたり、ホルモン異常と思われる一時的な細胞の
生育阻害が起こり安定な培養を長期に亘って実施するこ
とが困難になることから好ましくないので、植物ホルモ
ンの間欠的な供給の時間間隔は前記した範囲で行われる
。
なお先のCI)式に示した植物ホルモンのit (A)
は培地に間欠的に供給される量であるが、本発明ではこ
れとは別に植物ホルモンを間欠的に添加した直後の培地
における植物ホルモンの濃度は前記したように通常10
4〜10− ’Hの範囲にあるようにして培養が行われ
るので、培地に間欠的に供給される植物ホルモンの量(
八)は(1)式を満足すると同時に、植物ホルモンが間
欠的に供給された直後の培地の植物ホルモン濃度(間欠
的に供給された植物ホルモン量と供給前の培地に残存す
る植物ホルモン量を合計した量に基づく濃度)も前記し
た10−’〜10−’Hの範囲にあるように、間欠的に
供給される植物ホルモンの量(八)は選ばれなければな
らない。従って添加される植物ホルモンの量(A)は、
CI)式によって制約を受ける他に培地に残存する植物
ホルモンの量も考慮して決められる。
は培地に間欠的に供給される量であるが、本発明ではこ
れとは別に植物ホルモンを間欠的に添加した直後の培地
における植物ホルモンの濃度は前記したように通常10
4〜10− ’Hの範囲にあるようにして培養が行われ
るので、培地に間欠的に供給される植物ホルモンの量(
八)は(1)式を満足すると同時に、植物ホルモンが間
欠的に供給された直後の培地の植物ホルモン濃度(間欠
的に供給された植物ホルモン量と供給前の培地に残存す
る植物ホルモン量を合計した量に基づく濃度)も前記し
た10−’〜10−’Hの範囲にあるように、間欠的に
供給される植物ホルモンの量(八)は選ばれなければな
らない。従って添加される植物ホルモンの量(A)は、
CI)式によって制約を受ける他に培地に残存する植物
ホルモンの量も考慮して決められる。
そして本発明では培地に残存する植物ホルモンの濃度が
実質的に零になった時点で前記した(a)と(b)の条
件を満足するようにして前記した範囲の植物ホルモン濃
度となるように植物ホルモンを培地に間欠的に供給する
方法を用いた場合には、正常な細胞の分裂−肥大のサイ
クルが保持されて、細胞の生育および二次代謝産物の生
産が長期間に亘って可能になるので特に好ましい。なお
本発明では必要に応じて培地に残存する植物ホルモンの
濃度が実質的に零でない前記した範囲の任意の濃度で、
先の(a)及び(b)等の条件を満足するようにして植
物ホルモンを間欠的に供給する方法を用いることが出来
ることは言うまでもない。
実質的に零になった時点で前記した(a)と(b)の条
件を満足するようにして前記した範囲の植物ホルモン濃
度となるように植物ホルモンを培地に間欠的に供給する
方法を用いた場合には、正常な細胞の分裂−肥大のサイ
クルが保持されて、細胞の生育および二次代謝産物の生
産が長期間に亘って可能になるので特に好ましい。なお
本発明では必要に応じて培地に残存する植物ホルモンの
濃度が実質的に零でない前記した範囲の任意の濃度で、
先の(a)及び(b)等の条件を満足するようにして植
物ホルモンを間欠的に供給する方法を用いることが出来
ることは言うまでもない。
本発明では先のCI)式で(A/D−W)の値が1o−
11以下の場合(間欠的に加えられる植物ホルモンの量
が少ない)には、細胞の増殖速度が遅くなり、また細胞
の生育が不充分となるので好ましくない。また咳値が1
0−以上の場合には、培地の植物ホルモンの濃度が高く
なり過ぎて細胞の壊死が起こり、しかも二次代謝産物の
生産が著しく低下することがあるなどの理由から本発明
では植物ホルモンの間欠的な添加量は前記範囲で行われ
る。
11以下の場合(間欠的に加えられる植物ホルモンの量
が少ない)には、細胞の増殖速度が遅くなり、また細胞
の生育が不充分となるので好ましくない。また咳値が1
0−以上の場合には、培地の植物ホルモンの濃度が高く
なり過ぎて細胞の壊死が起こり、しかも二次代謝産物の
生産が著しく低下することがあるなどの理由から本発明
では植物ホルモンの間欠的な添加量は前記範囲で行われ
る。
本発明の組織培養方法を用いるとベルベリン、アトロピ
ン、スコポラミンなどのアルカロイド、シコニン、ブリ
プリン、アリザリンなどの色素成分等の二次代謝産物を
高収率で効率良く得ることができる。
ン、スコポラミンなどのアルカロイド、シコニン、ブリ
プリン、アリザリンなどの色素成分等の二次代謝産物を
高収率で効率良く得ることができる。
本発明に係わる植物ホルモンを特定条件のもとに間欠的
に培地に供給して行う組織培養方法によれば、従来法に
比べて細胞の増殖速度が早く、又細胞の生育安定性が優
れているので二次代謝産物を高収量で効率良く得ること
ができる。
に培地に供給して行う組織培養方法によれば、従来法に
比べて細胞の増殖速度が早く、又細胞の生育安定性が優
れているので二次代謝産物を高収量で効率良く得ること
ができる。
以下、本発明の方法を実施例によって具体的に説明する
。
。
実施例1
オウレン(Coptis japonica)の培養細
胞をリンスマイヤーとスクーグの培地を用いて21の通
気攪拌型培養槽で培養を行った。培養中の培養槽におけ
る液体培地の容量は1.81であり、オウレン細胞の濃
度がオウレン細胞の新鮮重量で表わして300(g/l
)となるように、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に調
整した液体培地を培養槽に連続的(540m!/日)に
供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸9XIQ
−’モル、ベンジルアデニン9X10−”モル)を4日
間隔(doubling timeの1倍)で添加する
一方培養槽の他方から培地と増殖した細胞を抜き出しな
がら培養を行った。
胞をリンスマイヤーとスクーグの培地を用いて21の通
気攪拌型培養槽で培養を行った。培養中の培養槽におけ
る液体培地の容量は1.81であり、オウレン細胞の濃
度がオウレン細胞の新鮮重量で表わして300(g/l
)となるように、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に調
整した液体培地を培養槽に連続的(540m!/日)に
供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸9XIQ
−’モル、ベンジルアデニン9X10−”モル)を4日
間隔(doubling timeの1倍)で添加する
一方培養槽の他方から培地と増殖した細胞を抜き出しな
がら培養を行った。
60日間に亘って連続培養を行った結果、オウレン細胞
の比増殖速度は0.18(daシー1)、オウレン細胞
中のベンベリン含量は5.0%であった。
の比増殖速度は0.18(daシー1)、オウレン細胞
中のベンベリン含量は5.0%であった。
実施例2
実施例1において、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸3X1
0−’モル、ベンジルアデニン3X10−’モル)を1
22日間隔doubling timeの3倍)で添加
した以外は実施例1と同様に培養したところ、オウレン
細胞の比増殖速度は0.17(day−’)、オウレン
細胞中のベンベリン含量は4.9%であった。
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸3X1
0−’モル、ベンジルアデニン3X10−’モル)を1
22日間隔doubling timeの3倍)で添加
した以外は実施例1と同様に培養したところ、オウレン
細胞の比増殖速度は0.17(day−’)、オウレン
細胞中のベンベリン含量は4.9%であった。
実施例3
実施例1において、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mf/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酸# 4
Xl0−’モル、ベンジルアデニン4×lO″?モル)
を188日間隔添加した以外は実施例1と同様に培養し
たところ、オウレン細胞の比増殖速度は0.16(da
y″’) 、オウレン細胞中のベルベリン含量は4.7
%であった。
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mf/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酸# 4
Xl0−’モル、ベンジルアデニン4×lO″?モル)
を188日間隔添加した以外は実施例1と同様に培養し
たところ、オウレン細胞の比増殖速度は0.16(da
y″’) 、オウレン細胞中のベルベリン含量は4.7
%であった。
比較例1
実施例1において、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mf 7日
)に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸5X
10−’モル、ベンジルアデニン5XIO−7モル)を
21日間隔(doubling timeの5.3倍)
で添加した以外は実施例1と同様に培養したところ、培
養期間が長くなるにつれてオウレン細胞の比増殖速度お
よび細胞中のベンベリン含量は徐々に低下する傾向を示
し、60日間培養後の比増殖速度およびベルベリン含量
はそれぞれ0.08(day−’) 、2.0%であっ
た。
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mf 7日
)に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸5X
10−’モル、ベンジルアデニン5XIO−7モル)を
21日間隔(doubling timeの5.3倍)
で添加した以外は実施例1と同様に培養したところ、培
養期間が長くなるにつれてオウレン細胞の比増殖速度お
よび細胞中のベンベリン含量は徐々に低下する傾向を示
し、60日間培養後の比増殖速度およびベルベリン含量
はそれぞれ0.08(day−’) 、2.0%であっ
た。
比較例2
実施例1において、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ 7日
)に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸5X
10−”モル、ベンジルアデニン5XIO−’モル)を
4日間隔(doubling 、timeの1倍)で添
加した以外は実施例1と同様に培養したところ、培養細
胞の黒変(壊死)が起こり、30日間培養後の比増殖速
度およびベルベリン含量はそれぞれ0.05(day−
’) 、1.5%であった。
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ 7日
)に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸5X
10−”モル、ベンジルアデニン5XIO−’モル)を
4日間隔(doubling 、timeの1倍)で添
加した以外は実施例1と同様に培養したところ、培養細
胞の黒変(壊死)が起こり、30日間培養後の比増殖速
度およびベルベリン含量はそれぞれ0.05(day−
’) 、1.5%であった。
比較例3
実施例1において、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸10−
Sモル、ベンジルアデニン10−”モル)を8hr間隔
(doubling timeの0.08倍)で添加し
た以外は実施例1と同様に培養したところ、約7日間の
培養でカルスの黒化が起り始め、30日間培養後の比増
殖速度およびベルベリン含量はそれぞれ0.10(da
y−’) 、2.5%であった。
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢酸10−
Sモル、ベンジルアデニン10−”モル)を8hr間隔
(doubling timeの0.08倍)で添加し
た以外は実施例1と同様に培養したところ、約7日間の
培養でカルスの黒化が起り始め、30日間培養後の比増
殖速度およびベルベリン含量はそれぞれ0.10(da
y−’) 、2.5%であった。
比較例4
実施例1において、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢filo
−’モル、ベンジルアデニン10− ’ ”モル)を4
日間隔(doubling timeの1倍)で添加し
た以外は実施例1と同様に培養したところ、細胞の黒化
・壊死は起こらなかったが、細胞の増殖が悪く、比増殖
速度は0.11(day””) 、ベルベリン含量は5
%であった。
調製した液体培地を培養槽に連続的(540mZ/日)
に供給しながら、ホルモン成分(ナフタレン酢filo
−’モル、ベンジルアデニン10− ’ ”モル)を4
日間隔(doubling timeの1倍)で添加し
た以外は実施例1と同様に培養したところ、細胞の黒化
・壊死は起こらなかったが、細胞の増殖が悪く、比増殖
速度は0.11(day””) 、ベルベリン含量は5
%であった。
実施例4
タバコ(Nicotiana tabacum)の培養
細胞をリンスマイヤーとスクーグの培地を用いて2j2
の通気攪拌型培養槽で培養を行った。培養中の培養槽に
おける液体培地の容量は1.81であり、タバコ細胞の
濃度がタバコ細胞の新鮮重量で表わして、211 (
g / It )となるように培地の栄養基質濃度を所
定の濃度に調製した液体培地を培養槽に連続的(600
mZ/日)に供給しながらホルモン成分(2,4−ジク
ロロフェノキシ酢酸4X10−’モル)を2日間隔(d
oubling ti+neの1倍)で添加する一方、
培養槽の他方から培地と増殖した細胞を抜き出しながら
培養を行った。60日間に亘って連続培養を行った結果
、タバコ細胞の比増殖速度は0.38(day−’)で
あった。
細胞をリンスマイヤーとスクーグの培地を用いて2j2
の通気攪拌型培養槽で培養を行った。培養中の培養槽に
おける液体培地の容量は1.81であり、タバコ細胞の
濃度がタバコ細胞の新鮮重量で表わして、211 (
g / It )となるように培地の栄養基質濃度を所
定の濃度に調製した液体培地を培養槽に連続的(600
mZ/日)に供給しながらホルモン成分(2,4−ジク
ロロフェノキシ酢酸4X10−’モル)を2日間隔(d
oubling ti+neの1倍)で添加する一方、
培養槽の他方から培地と増殖した細胞を抜き出しながら
培養を行った。60日間に亘って連続培養を行った結果
、タバコ細胞の比増殖速度は0.38(day−’)で
あった。
実施例5
アカネ(Rubia cordifolia)の培養細
胞をムラシゲとスクーグの培地を用いて21の通気攪拌
型培養槽で培養を行った。培養中の培養槽における液体
培地の容量は1.81であり、アカネ細胞の濃度がアカ
ネ細胞の新鮮重量で表わして、138gCg/l)とな
るように、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に調製した
液体培地を培養槽に連続的(600d7日)に供給しな
がらホルモン成分(ベンジルアデニン1.I X 10
−’モル、2.4−ジクロロフェノキシ酢酸1.I X
10−’モル)を6日間隔(doublingtim
eの1倍)で添加する一方、培養槽の他方から培地と増
殖した細胞を抜き出しながら培養を行った。60日間に
亘って連続培養を行った結果、アカネ細胞の比増殖速度
は0.11(day一つ、アンスラキノン類の含量は1
.1%であった。
胞をムラシゲとスクーグの培地を用いて21の通気攪拌
型培養槽で培養を行った。培養中の培養槽における液体
培地の容量は1.81であり、アカネ細胞の濃度がアカ
ネ細胞の新鮮重量で表わして、138gCg/l)とな
るように、培地の栄養基質濃度を所定の濃度に調製した
液体培地を培養槽に連続的(600d7日)に供給しな
がらホルモン成分(ベンジルアデニン1.I X 10
−’モル、2.4−ジクロロフェノキシ酢酸1.I X
10−’モル)を6日間隔(doublingtim
eの1倍)で添加する一方、培養槽の他方から培地と増
殖した細胞を抜き出しながら培養を行った。60日間に
亘って連続培養を行った結果、アカネ細胞の比増殖速度
は0.11(day一つ、アンスラキノン類の含量は1
.1%であった。
比較例5
実施例4において、ホルモン成分(2,4−ジクロロフ
ェノキシ酢酸2.4 X 10−’モル)を122日間
隔doubling timeの6倍)で添加した以外
は実施例4と同様に培養を行った結果、タバコ細胞の比
増殖速度は0.29(day−’)であった。
ェノキシ酢酸2.4 X 10−’モル)を122日間
隔doubling timeの6倍)で添加した以外
は実施例4と同様に培養を行った結果、タバコ細胞の比
増殖速度は0.29(day−’)であった。
比較例6
実施例5において、ホルモン成分(ベンジルアデニン1
.I X 10’−’モル、2,4−ジクロロフェノキ
シ酢酸1.I X 10−’モル)を0.6日間隔(d
oublingtimeの0.1倍)で添加した以外は
実施例5と同様に培養を行った結果、アカネ細胞の比増
殖速度は0.05(day−’) 、アンスラキノン類
の含量は0.7%であった。
.I X 10’−’モル、2,4−ジクロロフェノキ
シ酢酸1.I X 10−’モル)を0.6日間隔(d
oublingtimeの0.1倍)で添加した以外は
実施例5と同様に培養を行った結果、アカネ細胞の比増
殖速度は0.05(day−’) 、アンスラキノン類
の含量は0.7%であった。
Claims (3)
- (1)液体培地を用いて植物を組織培養するに当たつて
、植物ホルモンを以下の(a)と(b)の条件を満足す
るようにして培地に間欠的に供給しながら培養を行うこ
とを特徴とする植物の組織培養方法。 (a)植物ホルモンの供給間隔D〔時間〕を細胞の倍増
時間の0.5〜5倍とする。 (b)〔 I 〕式を満足するような量の植物ホルモンを
培地に加える。 10^−^1^2<A/D・W<10^−^6〔 I 〕 ここでAは培地に間欠的に加えられる植物ホルモンの量
〔モル〕、Wは培養帯域にある細胞の新鮮重量〔g〕、
Dは植物ホルモンの供給間隔〔day〕を表わす。 - (2)培地に残存する植物ホルモンの濃度が実質的に零
になつた時点で植物ホルモンを培地に間欠的に供給する
ことを特徴とする特許請求の範囲第1項に記載の組織培
養方法。 - (3)培地の栄養基質濃度を所定の濃度に調整した液体
培地を培養帯域に連続的または非連続的に供給する一方
、培養帯域の他方より培養液を連続的または非連続的に
抜き出して、培養帯域中の培地を更新させながら培養を
行うことを特徴とする特許請求の範囲第1項ないし第2
項に記載の組織培養方法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62026411A JPH0822224B2 (ja) | 1987-02-09 | 1987-02-09 | 植物の組織培養方法 |
CN88101342A CN1017904B (zh) | 1987-02-09 | 1988-02-09 | 植物的组织培养方法 |
KR1019880001180A KR880010121A (ko) | 1987-02-09 | 1988-02-09 | 식물의 조직 배양 방법 |
EP19880301083 EP0282164A3 (en) | 1987-02-09 | 1988-02-09 | Method for plant tissue culture |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62026411A JPH0822224B2 (ja) | 1987-02-09 | 1987-02-09 | 植物の組織培養方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63196269A true JPS63196269A (ja) | 1988-08-15 |
JPH0822224B2 JPH0822224B2 (ja) | 1996-03-06 |
Family
ID=12192807
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62026411A Expired - Lifetime JPH0822224B2 (ja) | 1987-02-09 | 1987-02-09 | 植物の組織培養方法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0282164A3 (ja) |
JP (1) | JPH0822224B2 (ja) |
KR (1) | KR880010121A (ja) |
CN (1) | CN1017904B (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE69031711T2 (de) * | 1989-08-09 | 1998-04-09 | Dekalb Genetics Corp | Methoden und zusammensetzungen für die herstellung von stabil transformierten, fruchtbaren mais pflanzen und zellen dafür |
US6803499B1 (en) | 1989-08-09 | 2004-10-12 | Dekalb Genetics Corporation | Methods and compositions for the production of stably transformed, fertile monocot plants and cells thereof |
US7705215B1 (en) | 1990-04-17 | 2010-04-27 | Dekalb Genetics Corporation | Methods and compositions for the production of stably transformed, fertile monocot plants and cells thereof |
US5550318A (en) * | 1990-04-17 | 1996-08-27 | Dekalb Genetics Corporation | Methods and compositions for the production of stably transformed, fertile monocot plants and cells thereof |
US5484956A (en) * | 1990-01-22 | 1996-01-16 | Dekalb Genetics Corporation | Fertile transgenic Zea mays plant comprising heterologous DNA encoding Bacillus thuringiensis endotoxin |
US6329574B1 (en) | 1990-01-22 | 2001-12-11 | Dekalb Genetics Corporation | High lysine fertile transgenic corn plants |
US6777589B1 (en) | 1990-01-22 | 2004-08-17 | Dekalb Genetics Corporation | Methods and compositions for the production of stably transformed, fertile monocot plants and cells thereof |
US6946587B1 (en) | 1990-01-22 | 2005-09-20 | Dekalb Genetics Corporation | Method for preparing fertile transgenic corn plants |
WO1991010725A1 (en) * | 1990-01-22 | 1991-07-25 | Dekalb Plant Genetics | Fertile transgenic corn plants |
US6395966B1 (en) | 1990-08-09 | 2002-05-28 | Dekalb Genetics Corp. | Fertile transgenic maize plants containing a gene encoding the pat protein |
US6118047A (en) | 1993-08-25 | 2000-09-12 | Dekalb Genetic Corporation | Anthranilate synthase gene and method of use thereof for conferring tryptophan overproduction |
US5780709A (en) * | 1993-08-25 | 1998-07-14 | Dekalb Genetics Corporation | Transgenic maize with increased mannitol content |
US7250126B2 (en) * | 2004-08-11 | 2007-07-31 | Fleetguard, Inc. | Acid-neutralizing filter media |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2492404A1 (fr) * | 1980-10-22 | 1982-04-23 | Synthelabo | Procede de production ou de biotransformation de metabolites par des cellules vegetales in vitro |
JPS57115181A (en) * | 1980-11-06 | 1982-07-17 | Bush Boake Allen Ltd | Preparation of plant metabolite |
-
1987
- 1987-02-09 JP JP62026411A patent/JPH0822224B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1988
- 1988-02-09 EP EP19880301083 patent/EP0282164A3/en not_active Ceased
- 1988-02-09 CN CN88101342A patent/CN1017904B/zh not_active Expired
- 1988-02-09 KR KR1019880001180A patent/KR880010121A/ko not_active Application Discontinuation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0282164A2 (en) | 1988-09-14 |
KR880010121A (ko) | 1988-10-07 |
EP0282164A3 (en) | 1990-11-07 |
CN1017904B (zh) | 1992-08-19 |
JPH0822224B2 (ja) | 1996-03-06 |
CN88101342A (zh) | 1988-09-28 |
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