JPS63118655A - 免疫反応の反応成分を測定するための方法及び試薬 - Google Patents
免疫反応の反応成分を測定するための方法及び試薬Info
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- JPS63118655A JPS63118655A JP62062795A JP6279587A JPS63118655A JP S63118655 A JPS63118655 A JP S63118655A JP 62062795 A JP62062795 A JP 62062795A JP 6279587 A JP6279587 A JP 6279587A JP S63118655 A JPS63118655 A JP S63118655A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
N東上の利用分野
本発明は、イムノアッセイの原理により免疫反応の反応
成分を測定する方法に関し、その際に測定すべき反応成
分を標識付けした特異的レセプターR1及び少なくとも
1種の未標識のレセプターR2と接触させると未S繊の
レセプターR,の1つが結合性物質R3を介して固相に
結合している。
成分を測定する方法に関し、その際に測定すべき反応成
分を標識付けした特異的レセプターR1及び少なくとも
1種の未標識のレセプターR2と接触させると未S繊の
レセプターR,の1つが結合性物質R3を介して固相に
結合している。
従来の技術
免疫反応の反応成分(以下被分析物ともいう)の測定に
当り、しはしばサンドイッチ原理によるイムノアッセイ
が適用される。その際に反応成分を、公知方法で標識し
た、反応成分に対して特異的なレセプターと反応させ、
かつ反応成分と標識レセプターとからの複合体を、測定
すべき反応成分又は複合体に対して作用をしかつ固相に
固定している他のレセプターと反応させる。この原理に
ついては更に別法があり、この反応工程の順序を任意に
変えることができる。
当り、しはしばサンドイッチ原理によるイムノアッセイ
が適用される。その際に反応成分を、公知方法で標識し
た、反応成分に対して特異的なレセプターと反応させ、
かつ反応成分と標識レセプターとからの複合体を、測定
すべき反応成分又は複合体に対して作用をしかつ固相に
固定している他のレセプターと反応させる。この原理に
ついては更に別法があり、この反応工程の順序を任意に
変えることができる。
反応成分を、その都度測定すべき反応成分(被分析物)
に対して作用する可溶性の未標識レセプター及び可溶性
の標識レセプターと反応させ、これら3成分からの複合
体を未標識レセプターに対し工作用する不溶性レセゾタ
ー、即ち固相に結合しているレセプターと反応させるこ
とができる。この6棟類すべ℃のレセプターとの反応は
同時に行なわれるかあるいは段階的に行なわれる。この
すべての方法で、固相に結合した標識レセプター又は溶
液中に存在する未結合のamレセッターの量を好適な測
定法を介して測定して、その測定値から測定すべき反応
成分の量を算出する。
に対して作用する可溶性の未標識レセプター及び可溶性
の標識レセプターと反応させ、これら3成分からの複合
体を未標識レセプターに対し工作用する不溶性レセゾタ
ー、即ち固相に結合しているレセプターと反応させるこ
とができる。この6棟類すべ℃のレセプターとの反応は
同時に行なわれるかあるいは段階的に行なわれる。この
すべての方法で、固相に結合した標識レセプター又は溶
液中に存在する未結合のamレセッターの量を好適な測
定法を介して測定して、その測定値から測定すべき反応
成分の量を算出する。
標識として、例えば放射性物質、酵素、螢光物質又は着
色物質を使用する。標識レセプターの含量は螢光特性、
有色反応生成物の呈色又は固相と液相との間での放射性
物質の分配の変化を介して測定することができる。測定
シグナルと含量との間の関係について十分な理論的知識
がある場合には測定シグナルの変化から直接測定すべき
反応成分の含*’を計算することができあるいは検量曲
線に基づいて測定シグナルから含量を測定する。両方法
でx賢なのは測定シグナルのそれぞれの変化に反応成分
の含量が相関していることである。
色物質を使用する。標識レセプターの含量は螢光特性、
有色反応生成物の呈色又は固相と液相との間での放射性
物質の分配の変化を介して測定することができる。測定
シグナルと含量との間の関係について十分な理論的知識
がある場合には測定シグナルの変化から直接測定すべき
反応成分の含*’を計算することができあるいは検量曲
線に基づいて測定シグナルから含量を測定する。両方法
でx賢なのは測定シグナルのそれぞれの変化に反応成分
の含量が相関していることである。
しかしこのイムノアッセイ法では、固相への非特異的な
付加反応が起るという間趙が生じる。
付加反応が起るという間趙が生じる。
この付加反応は試料に特異的な作用によりもたらされか
つマトリックス効果(Mazrixeffekz)と呼
ばれる。標識付けしたレセプターも非特異的に固相に付
加されるので、測定シグナルの誤差、それ故測定結果の
誤差が生じる。この誤差を補正するために、試料盲検値
を測定しなければならない。しかしながら従来は、確実
に被分析物を含まない試料が得られない場合又は試料中
の被分析物の存在ないしは不存在を確証するための絶対
基準測定法が存在しない場合には前記の試料盲検値の測
定は規則的に困難金もたらした。これらの場合には、試
料の盲検値を正しく計測するためには、試料も標準も同
一の挙動をすることが必要である。しかしながら免疫測
定法では、その都度同じ試験物質を使用する場合にだけ
確実に可能であるに過ぎない。それ故例えば血清中の被
分析物の測定にあたり、標準失速のために被分析物分を
化学的、物理的又は免疫学的方法で除去した血清プール
を使用することが既に提案さnた。しかしなか、らこの
方法の欠点は、ゼロ試料の測定値が存在しないので被分
析物の除去が完全Vζ行なわれているかどうかを制御で
きない点にある。他方、被分析物が完全に除去された場
合でもそのことが、検量曲線のゼロ点及びその勾配に影
響を与え得るようなマトリックスの変化を惹起し得るの
で、試料盲検値の変化を考慮しなければならない。処理
により場合によっては変化する試料盲検値を知っていな
いと、被分析物含量を正確に測定することもできない。
つマトリックス効果(Mazrixeffekz)と呼
ばれる。標識付けしたレセプターも非特異的に固相に付
加されるので、測定シグナルの誤差、それ故測定結果の
誤差が生じる。この誤差を補正するために、試料盲検値
を測定しなければならない。しかしながら従来は、確実
に被分析物を含まない試料が得られない場合又は試料中
の被分析物の存在ないしは不存在を確証するための絶対
基準測定法が存在しない場合には前記の試料盲検値の測
定は規則的に困難金もたらした。これらの場合には、試
料の盲検値を正しく計測するためには、試料も標準も同
一の挙動をすることが必要である。しかしながら免疫測
定法では、その都度同じ試験物質を使用する場合にだけ
確実に可能であるに過ぎない。それ故例えば血清中の被
分析物の測定にあたり、標準失速のために被分析物分を
化学的、物理的又は免疫学的方法で除去した血清プール
を使用することが既に提案さnた。しかしなか、らこの
方法の欠点は、ゼロ試料の測定値が存在しないので被分
析物の除去が完全Vζ行なわれているかどうかを制御で
きない点にある。他方、被分析物が完全に除去された場
合でもそのことが、検量曲線のゼロ点及びその勾配に影
響を与え得るようなマトリックスの変化を惹起し得るの
で、試料盲検値の変化を考慮しなければならない。処理
により場合によっては変化する試料盲検値を知っていな
いと、被分析物含量を正確に測定することもできない。
丈に、組成が著しく変動する試料を使用する場合、例え
ば組織の均質物を使用する場合に大きな盲検値変動を考
慮しなければならない。
ば組織の均質物を使用する場合に大きな盲検値変動を考
慮しなければならない。
更に、緩衝浴液、牛血清アルゾミン溶液のような人工的
物質を使用することが提案された。
物質を使用することが提案された。
しかししはしはこのような溶液は検査すべき試料とは異
なる挙動を示し、それ故誤差をもたらす[1,マルシュ
ナ−(Marschner ) 及びその他共著、”
J、 Chin、 Chem、 (’lin、 Bi
ochem、 ”、345〜351頁(1976年)〕
。
なる挙動を示し、それ故誤差をもたらす[1,マルシュ
ナ−(Marschner ) 及びその他共著、”
J、 Chin、 Chem、 (’lin、 Bi
ochem、 ”、345〜351頁(1976年)〕
。
更に、例えは血清特異性の試料盲検値tm々のヒト血清
試料中で測定できる方法が従来知られていない。その結
果、すべての試料に関して共通の仮定盲検値が採用され
なければならない。
試料中で測定できる方法が従来知られていない。その結
果、すべての試料に関して共通の仮定盲検値が採用され
なければならない。
それ故、シグナルが特異的な試料特性により正確に惹起
されているにもかかわらず、必然的にこの盲検値に対す
る各シグナル差は被分析物含量によるものであるとされ
る。
されているにもかかわらず、必然的にこの盲検値に対す
る各シグナル差は被分析物含量によるものであるとされ
る。
従来、生理的市来の被分析物の測定のために被分析物を
含まないマトリックスを襟準の作成のために製造するこ
とが可能であり、しかもその際に検量曲線の勾配又は検
量曲線の生じ得るゼロ点の誤差を甘受する必要のない方
法もなかった。
含まないマトリックスを襟準の作成のために製造するこ
とが可能であり、しかもその際に検量曲線の勾配又は検
量曲線の生じ得るゼロ点の誤差を甘受する必要のない方
法もなかった。
このことは、試験物質と同一であるマトリックス物質を
使う場合にだけ正しい勾配を有する検量曲線が保障され
ることを表わす。しかし選択したマトリックス物質自体
が未知の被分析物含量を有する場合、検量曲縁のゼロ点
を決定することはできない。検量曲縁のゼロ点の位1i
lil:を知らないと勾配は確定するが、検量曲線の経
過は確定することはできない。
使う場合にだけ正しい勾配を有する検量曲線が保障され
ることを表わす。しかし選択したマトリックス物質自体
が未知の被分析物含量を有する場合、検量曲縁のゼロ点
を決定することはできない。検量曲縁のゼロ点の位1i
lil:を知らないと勾配は確定するが、検量曲線の経
過は確定することはできない。
発明が解決しようとする問題点
それ故、本発明の目的は、被分析物の測定にも使用する
同じマトリックス中の試料盲検値を測定することのでき
る方法を開示することであった。更に、本発明の目的は
、再現可能な検量曲線が得られかつそれによって正確な
測定値が得られる方法を開示することであった。
同じマトリックス中の試料盲検値を測定することのでき
る方法を開示することであった。更に、本発明の目的は
、再現可能な検量曲線が得られかつそれによって正確な
測定値が得られる方法を開示することであった。
問題点を解決するための手段
この目的は、測定すべき反応成分を、標識付けした特異
的なレセプターR1及び少なくとも1筏の未標識レセプ
ターR2と接触させかつその際に未標識のレセプターR
2の1種が結合性物質R3を介して固相に結合する、免
疫反応の反応成分をイムノアッセイ原理により測定する
方法により達成され、その際に試料盲検値の測定に当り
、固相に固定しているレセプターにより結合する未標識
のレセプター2 t−R2の他方の反応成分とは反応し
ない他の未標識のレセプターR2′に変えることを包含
する。
的なレセプターR1及び少なくとも1筏の未標識レセプ
ターR2と接触させかつその際に未標識のレセプターR
2の1種が結合性物質R3を介して固相に結合する、免
疫反応の反応成分をイムノアッセイ原理により測定する
方法により達成され、その際に試料盲検値の測定に当り
、固相に固定しているレセプターにより結合する未標識
のレセプター2 t−R2の他方の反応成分とは反応し
ない他の未標識のレセプターR2′に変えることを包含
する。
本発明方法では、試料盲検値の測定に当り、被分析物の
測定に使われているのと同じマトリックス及びR3を含
めて同じ固相を使用することとができる。存在する測定
すべき反応成分を除去するためのマトリックスの処理は
必要ではない。このようにして、選択した試験系におい
て盲検値及び分析が同様の挙動を示すことが保障される
。
測定に使われているのと同じマトリックス及びR3を含
めて同じ固相を使用することとができる。存在する測定
すべき反応成分を除去するためのマトリックスの処理は
必要ではない。このようにして、選択した試験系におい
て盲検値及び分析が同様の挙動を示すことが保障される
。
免疫学的反応の反応成分、即ち被分析物の測定に当り、
公知方法で試料を、反応成分に特異的な標識レセプター
R1及び少なくとも1徨の未標識レセプターR2と恒温
保持して試料の被分析物含量を測定する。R2は2つの
反応成分、即ちR3と被分析物自体か又は被分析物と結
合性の他のレセプターR2aとを有する。更に、試料盲
検値の測定に当っては同じ由来の試料をこの場合も同様
にR1と恒温保持する。しかしながらR2の代りに、R
2の他方の反応成分とは反応しないR2/を供給する。
公知方法で試料を、反応成分に特異的な標識レセプター
R1及び少なくとも1徨の未標識レセプターR2と恒温
保持して試料の被分析物含量を測定する。R2は2つの
反応成分、即ちR3と被分析物自体か又は被分析物と結
合性の他のレセプターR2aとを有する。更に、試料盲
検値の測定に当っては同じ由来の試料をこの場合も同様
にR1と恒温保持する。しかしながらR2の代りに、R
2の他方の反応成分とは反応しないR2/を供給する。
例えは、測定及び試料盲検値測定は、初めにR2もしく
はR2/を加え恒温保持及び洗浄工程後に試料を加えか
つ更に恒温保持しかつ洗浄した後でR1を添加する。
はR2/を加え恒温保持及び洗浄工程後に試料を加えか
つ更に恒温保持しかつ洗浄した後でR1を添加する。
引続いて恒温保持し、場合により洗浄しかつ液相又は固
相中の標識の測定を行なう。これらの反応工程は部分的
に又は完全に同時にもしくは逆の順序で実施することも
できる。しかしその際に、測定すべき反応成分が完全に
R2を介してR3に結合するようにR3がR2に対して
過剰量で存在するように注意しなければならない。
相中の標識の測定を行なう。これらの反応工程は部分的
に又は完全に同時にもしくは逆の順序で実施することも
できる。しかしその際に、測定すべき反応成分が完全に
R2を介してR3に結合するようにR3がR2に対して
過剰量で存在するように注意しなければならない。
この方法で両方のバッチにおいてその都度のマトリック
スに典墓的な非特異的付加反応、特に標識レセプターR
1の固相への反応が惹起される。しかし試料盲検値のバ
ッチでは特異的反応は起らない。各バッチで測定シグナ
ルが得られ、その際に非特異的な、所−マトリックス効
果により生じるシグナルは両方のバッチで同一であるが
、被分析物を測定するためのバッチのシグナルは被分析
物含量に相志する分だけ大きい。
スに典墓的な非特異的付加反応、特に標識レセプターR
1の固相への反応が惹起される。しかし試料盲検値のバ
ッチでは特異的反応は起らない。各バッチで測定シグナ
ルが得られ、その際に非特異的な、所−マトリックス効
果により生じるシグナルは両方のバッチで同一であるが
、被分析物を測定するためのバッチのシグナルは被分析
物含量に相志する分だけ大きい。
未知の被分析物含量を含む試料をこの試料盲検値に対し
て測定する場合、両方の測定シグナルの差が、固相に固
定している結合性物質R3により特異的に結合される標
識レセプターR1の量に相当する。従って、試料盲検値
の測定と被分析物測定が得られる測定シグナルを比較す
ることにより、非特異的付加による部分と実際に測定す
べき反応成分により生じる部分とを区別することができ
る。
て測定する場合、両方の測定シグナルの差が、固相に固
定している結合性物質R3により特異的に結合される標
識レセプターR1の量に相当する。従って、試料盲検値
の測定と被分析物測定が得られる測定シグナルを比較す
ることにより、非特異的付加による部分と実際に測定す
べき反応成分により生じる部分とを区別することができ
る。
本発明範囲においてレセプターとしては、殊に結合性の
完全抗体、抗体フラグメント、もしくは抗体又は抗体フ
ラグメントとハプテンとの接合体を使用する。
完全抗体、抗体フラグメント、もしくは抗体又は抗体フ
ラグメントとハプテンとの接合体を使用する。
レセプターR1としては、被分析物に特異的な、即ち被
分析物とだけ結合する標識レセプターを使用する。既知
量で使用するレセプターR1は尚業者に公知の方法で標
識されている。
分析物とだけ結合する標識レセプターを使用する。既知
量で使用するレセプターR1は尚業者に公知の方法で標
識されている。
標識付けは#素、螢光物質、化学的発光物質又は放射性
物質との結合により行なう。このようなレセプターを標
識付けする方法は、例えは1クリニカ・キミカψアクタ
(C11n、 Chin。
物質との結合により行なう。このようなレセプターを標
識付けする方法は、例えは1クリニカ・キミカψアクタ
(C11n、 Chin。
Acza )”、81巻、1〜40頁(1977年)か
ら当業者に公知であり、ここでは更に詳説する必要はな
い。
ら当業者に公知であり、ここでは更に詳説する必要はな
い。
レセプターR2及びR2′並びに場合によりR2へは抗
体、抗体フラグメント又はその誘導体であってよい。R
2へは、被分析物が抗体である場合には結合成分であっ
てもよい。例えば、誘導体としては、相互に結合性の物
質対の結合成分に結合している抗体又はフラグメントが
好適である。この場合R3はこの物質対の他方の成分で
ある。好適な物質対としては、例えば抗原/ハプテン−
抗体、蛋白質A−免疫グロブリンG1アビジン−ビオチ
ン、コンカナバリンA−レクチン、DNA −DNA
(ハイブリッド)を挙けることができる。
体、抗体フラグメント又はその誘導体であってよい。R
2へは、被分析物が抗体である場合には結合成分であっ
てもよい。例えば、誘導体としては、相互に結合性の物
質対の結合成分に結合している抗体又はフラグメントが
好適である。この場合R3はこの物質対の他方の成分で
ある。好適な物質対としては、例えば抗原/ハプテン−
抗体、蛋白質A−免疫グロブリンG1アビジン−ビオチ
ン、コンカナバリンA−レクチン、DNA −DNA
(ハイブリッド)を挙けることができる。
例えば、R2及びR2′としては、ハプテンに結合して
いる抗体又は7ラグメン)4使用する。
いる抗体又は7ラグメン)4使用する。
この場合R3はハプテンに対して作用する抗体である。
その際、レセプターR2及びR2′がほぼ同じように結
合性物質R3に結合することが保障されるべきである。
合性物質R3に結合することが保障されるべきである。
それ故、ハプテン化した抗体又はフラグメントを使用す
る際に、R2及びR2′のハプテン化度は比較可能かも
しくは同一であるべきである。
る際に、R2及びR2′のハプテン化度は比較可能かも
しくは同一であるべきである。
試料盲検値の測定ではレセプターR2に代えて使用する
レセプターR2′としては、被分析物と反応しないレセ
プターを使用する。このレセプターR2/は標識レセプ
ターR1の固相への非特異的結合に対して影響しないか
もしくは標識レセプターR1の非特異的結合では差異を
生せしめない。測定される系に対するR2′の適性は、
標識レセプターR1を、同じように標識したが該試験に
は特異的ではないレセプターRl/に代え、引続いて特
異的レセプターR2の不存在及び存在での測定シグナル
ないしはR2をR2’ K代えた後の測定シグナルを比
較することにより検査することができる。測定シグナル
が誤差限界の範囲で同じである場合、レセプターR2/
は本発明方法に好適である。
レセプターR2′としては、被分析物と反応しないレセ
プターを使用する。このレセプターR2/は標識レセプ
ターR1の固相への非特異的結合に対して影響しないか
もしくは標識レセプターR1の非特異的結合では差異を
生せしめない。測定される系に対するR2′の適性は、
標識レセプターR1を、同じように標識したが該試験に
は特異的ではないレセプターRl/に代え、引続いて特
異的レセプターR2の不存在及び存在での測定シグナル
ないしはR2をR2’ K代えた後の測定シグナルを比
較することにより検査することができる。測定シグナル
が誤差限界の範囲で同じである場合、レセプターR2/
は本発明方法に好適である。
レセプターR2もしくはレセプターR2′は結合性物’
fiR3を介して固相に結合する。例えば、好適な結合
性物質R3は抗体又は抗体フラグメント並びに前記の物
質対の結合成分である。
fiR3を介して固相に結合する。例えば、好適な結合
性物質R3は抗体又は抗体フラグメント並びに前記の物
質対の結合成分である。
R2及びR,/がIgG群の抗体である場合、例えばR
3は蛋白質A又は抗−免疫グロブリン−抗体であってよ
い。R2及びR2/がハプテン化した抗体である場合、
例えばR3はへブテンに対して作用する抗体であってよ
い。R3として抗−免疫グロブリン−抗体を使用する場
合、R1がR3に結合しないようにすべきである。例え
ば、これはR2とR1が交叉反応しない異なる樵のもの
であるか又はR3としてR1とは別の抗体フラグメント
を使用することにより達成される。例えばその際R3は
抗−Fcy−抗体であり、R1はFabFab’又はF
(ab’)2のような抗体7ラグメントである。
3は蛋白質A又は抗−免疫グロブリン−抗体であってよ
い。R2及びR2/がハプテン化した抗体である場合、
例えばR3はへブテンに対して作用する抗体であってよ
い。R3として抗−免疫グロブリン−抗体を使用する場
合、R1がR3に結合しないようにすべきである。例え
ば、これはR2とR1が交叉反応しない異なる樵のもの
であるか又はR3としてR1とは別の抗体フラグメント
を使用することにより達成される。例えばその際R3は
抗−Fcy−抗体であり、R1はFabFab’又はF
(ab’)2のような抗体7ラグメントである。
R3として、レセプターR2もしくはR2/の一部とだ
け結合性である抗体を使用すると特に優れており、レセ
プターR2もしくはR2′のFc部分と結合性であると
優れている。場合によりR3として、R2もしくはR,
/のハプテン部分又はFab部分ともしくは全レセプタ
ーR2あるいはR2′と特異的に結合性である抗体も使
用することができる。固相に存在する結合性物質R3の
不溶性担持物質への結合は、生物活性の蛋白質を固体の
担持物質に固定するための尚業者に公知の常法により行
なうことができる。共有結合も吸着結合も好適である。
け結合性である抗体を使用すると特に優れており、レセ
プターR2もしくはR2′のFc部分と結合性であると
優れている。場合によりR3として、R2もしくはR,
/のハプテン部分又はFab部分ともしくは全レセプタ
ーR2あるいはR2′と特異的に結合性である抗体も使
用することができる。固相に存在する結合性物質R3の
不溶性担持物質への結合は、生物活性の蛋白質を固体の
担持物質に固定するための尚業者に公知の常法により行
なうことができる。共有結合も吸着結合も好適である。
この際により高い収率が達成されかつ操作法が簡単であ
るために例えば合成樹脂への吸着結合が優れている。吸
着により内面がR3で扱われているポリスチレン及び類
似の合成樹脂製の試験管が特に好適であることが明らか
になった。東に、特にレセプΩ ター及び結合性物質R3選択並びに測定法の実施に関し
てはヨー田ツバ特許第0098590号明細書の実施形
が該当する。
るために例えば合成樹脂への吸着結合が優れている。吸
着により内面がR3で扱われているポリスチレン及び類
似の合成樹脂製の試験管が特に好適であることが明らか
になった。東に、特にレセプΩ ター及び結合性物質R3選択並びに測定法の実施に関し
てはヨー田ツバ特許第0098590号明細書の実施形
が該当する。
使用するレセプターはポリクロナールでもモノクロナー
ルでもよい。試料N検値測定で交換されるレセプターR
2がモノクロナールである場合、その代りに使われるレ
セプターR2/も同様にモノクロナールで同一の種のも
のであると優れている。それが同じサブクラスに属する
と特に優れている。レセプターR2がポリクロナールで
ある場合は、非特異的レセプターR2′も同様にポリク
ロナールで、同じ塊のものであると優れている。R2と
R2′の全組成がサブクラスに関して可能な限り類似し
ていると特に優れている。
ルでもよい。試料N検値測定で交換されるレセプターR
2がモノクロナールである場合、その代りに使われるレ
セプターR2/も同様にモノクロナールで同一の種のも
のであると優れている。それが同じサブクラスに属する
と特に優れている。レセプターR2がポリクロナールで
ある場合は、非特異的レセプターR2′も同様にポリク
ロナールで、同じ塊のものであると優れている。R2と
R2′の全組成がサブクラスに関して可能な限り類似し
ていると特に優れている。
本発明方法により、ゼロ点と勾配が正確に決定される、
測定すべき反応成分の検量−aを作成することもできる
。その際に未知量の被分析物を含む試料に既知量の被分
析物を添加する。
測定すべき反応成分の検量−aを作成することもできる
。その際に未知量の被分析物を含む試料に既知量の被分
析物を添加する。
被分析物の添加量を変えて測定シグナルを測定する。同
時に同じ系中で試料盲検値を測定する。
時に同じ系中で試料盲検値を測定する。
得られた数値から、勾配がマトリックス効果又は他の効
果による誤差を含むことのない検量曲線が得られる。こ
のようにして、正確な再現可能な検量曲線が得られる。
果による誤差を含むことのない検量曲線が得られる。こ
のようにして、正確な再現可能な検量曲線が得られる。
この正確な検量曲線により、分析物試料に関して得られ
る測定シグナルを介して被分析物のfIR度も正確に測
定することができる。
る測定シグナルを介して被分析物のfIR度も正確に測
定することができる。
本発明の他の目的は免疫反応の反応成分を測定するため
の試薬であり、これは試薬が固相に結合している結合性
物質R3、R3及び他の反応成分と結合性の未標識のレ
セプターR2少なくとも1種及び標識付けした特異的レ
セプターR1を含有し、かつ物理的にそれとは別個に、
固相に結合している結合性物質’R3、R2の他方の反
応成分とは反応しない未標識のレセプターR2/及び標
識付けした特異的レセプターR11&:更に含有するこ
とを特徴とする。
の試薬であり、これは試薬が固相に結合している結合性
物質R3、R3及び他の反応成分と結合性の未標識のレ
セプターR2少なくとも1種及び標識付けした特異的レ
セプターR1を含有し、かつ物理的にそれとは別個に、
固相に結合している結合性物質’R3、R2の他方の反
応成分とは反応しない未標識のレセプターR2/及び標
識付けした特異的レセプターR11&:更に含有するこ
とを特徴とする。
試薬を2つの反応容器の形で存在させると優れており、
これらはそれぞれ同じ固相及びこの固相に結合している
レセプターR3を含有し、その際にレセプターR3は抗
−Ig−抗体である。
これらはそれぞれ同じ固相及びこの固相に結合している
レセプターR3を含有し、その際にレセプターR3は抗
−Ig−抗体である。
レセプターR3が既にR2もしくはR2/を担持すると
特に優れている。場合によってはR1とR2もしくはR
2/は前混合されかつR3はそれとは別個に存在する。
特に優れている。場合によってはR1とR2もしくはR
2/は前混合されかつR3はそれとは別個に存在する。
すべてのレセプターR2及びR1は乾燥しているか、皺
解しているかあるいは固体担体上に脱離し得るように施
されて存在していてよい。
解しているかあるいは固体担体上に脱離し得るように施
されて存在していてよい。
レセプターR2もしくはR21がハプテン化されている
他の優れている実施形では、両方のレセプターは、ハプ
テンに対して作用する抗体R3を介して既に固相に結合
している。
他の優れている実施形では、両方のレセプターは、ハプ
テンに対して作用する抗体R3を介して既に固相に結合
している。
本発明により、免疫反応の反応成分の測定に当りゼロ点
が正確でありかつ勾配が誤差を含まない検量曲線の作成
を可能にする方法及び試薬が得られる。本発明方法の他
の利点は、試料と試料盲検値を平行して測定する際に、
盲検値の測定により非特異的な付加反応が認識されるの
で、測定シグナルの差が測定すべき反応成分の含量に相
当し得るという点である。このようにして、極めて確実
で正確な測定を実施することが可能である。
が正確でありかつ勾配が誤差を含まない検量曲線の作成
を可能にする方法及び試薬が得られる。本発明方法の他
の利点は、試料と試料盲検値を平行して測定する際に、
盲検値の測定により非特異的な付加反応が認識されるの
で、測定シグナルの差が測定すべき反応成分の含量に相
当し得るという点である。このようにして、極めて確実
で正確な測定を実施することが可能である。
実施例
次に本発明を実施例につき詳説する。
例1
ヒト血清中のテレオトロピン(TSH)の測定1、 試
薬浴液の製造 1.1 緩衝剤I: に、HPO,溶液50ミリ% ル/l及びKH2PO4
溶液50ミリモル/lを−6,0が達成されるまで混合
することにより製造したリン酸カリウム緩衝液、−6,
0,50ミリモル/1 1.2 緩衝液■: 緩衝液■は、−値を7.5に調節しかつ緩衝液が付加的
に牛血清アルブミン101/l及びNaCj Ig0ミ
リモル/Jjを含有することを除いては緩衝液Iと同様
に製造する◇ 1.6 レセプターR2溶液、TSHと結合性:レセ
プターR2としてサブクラスIgG1のモノクロナール
のマウス−抗−TSH−抗体を使用する。この抗体を含
有する腹水に硫酸アンモニウム合計1.8モルを加える
。この調装物をリン酸ナトリウム、pH7,0,Igミ
リモル及び塩化ナトリウム50ミリモルからの緩衝液中
に収る。
薬浴液の製造 1.1 緩衝剤I: に、HPO,溶液50ミリ% ル/l及びKH2PO4
溶液50ミリモル/lを−6,0が達成されるまで混合
することにより製造したリン酸カリウム緩衝液、−6,
0,50ミリモル/1 1.2 緩衝液■: 緩衝液■は、−値を7.5に調節しかつ緩衝液が付加的
に牛血清アルブミン101/l及びNaCj Ig0ミ
リモル/Jjを含有することを除いては緩衝液Iと同様
に製造する◇ 1.6 レセプターR2溶液、TSHと結合性:レセ
プターR2としてサブクラスIgG1のモノクロナール
のマウス−抗−TSH−抗体を使用する。この抗体を含
有する腹水に硫酸アンモニウム合計1.8モルを加える
。この調装物をリン酸ナトリウム、pH7,0,Igミ
リモル及び塩化ナトリウム50ミリモルからの緩衝液中
に収る。
このようにして得られた溶液をDEARセルロース中を
通過させる。このようにして得られたTSH結合性抗体
を含有する溶出液1に緩衝液■で蛋白質濃度1μs/継
に稀釈する。
通過させる。このようにして得られたTSH結合性抗体
を含有する溶出液1に緩衝液■で蛋白質濃度1μs/継
に稀釈する。
1.4 レセプターR2′、TSHとは非結合性:こ
の溶液はTSHと結合性のレセプターR2浴液(1,3
’)と同様に製造するが、但しここではサブクラスIg
G1のモノクロナールのマウス−抗−CEA−抗体を使
用する。
の溶液はTSHと結合性のレセプターR2浴液(1,3
’)と同様に製造するが、但しここではサブクラスIg
G1のモノクロナールのマウス−抗−CEA−抗体を使
用する。
1.5 榛織付けしたレセプターR1浴液:レセプタ
ーR工としては、R2とは別の抗原決定因子を認識する
モノクロナールのマウス−抗−TSH−抗体を使用する
。この抗体を含有する腹水を1.6に記載したように精
製する。完全抗体を公知のようにR,R,ボータ(Po
rzer )著、” BiocJm、 J、 ”、73
巻、119頁(1959年)による方法でFab−フラ
グメントに分解する。得られたFab −72グメ/)
tイシカワ及びその他共着、1ジヤーナル・オシ・イム
ノアッセイ(J、 of Immunoassay )
” 。
ーR工としては、R2とは別の抗原決定因子を認識する
モノクロナールのマウス−抗−TSH−抗体を使用する
。この抗体を含有する腹水を1.6に記載したように精
製する。完全抗体を公知のようにR,R,ボータ(Po
rzer )著、” BiocJm、 J、 ”、73
巻、119頁(1959年)による方法でFab−フラ
グメントに分解する。得られたFab −72グメ/)
tイシカワ及びその他共着、1ジヤーナル・オシ・イム
ノアッセイ(J、 of Immunoassay )
” 。
4巻、209〜627頁によりβ−がラクトシダーゼと
結合させる。レセプターR1浴iを緩衝液■中に濃度5
00 mU/N (37℃で0−二トロフェニル−β−
がラクトシトで測定)に稀釈する。
結合させる。レセプターR1浴iを緩衝液■中に濃度5
00 mU/N (37℃で0−二トロフェニル−β−
がラクトシトで測定)に稀釈する。
1、8 レセプターR3@液:
羊−抗一マウス−Fcy−抗血清に硫激アンモニウム全
量1.8モルを加える。この調製物をリン酸ナトリウム
、PH7,0,Igミリモル及び塩化ナトリウム50ミ
リモルからのt&衝液中に取る。このようにして得られ
た浴液をDEAEセルロース中を通過させる。特異的抗
体を含有する浴出液を緩爾液I中で蛋白JX!I匿50
μm1/lLtに稀釈する。
量1.8モルを加える。この調製物をリン酸ナトリウム
、PH7,0,Igミリモル及び塩化ナトリウム50ミ
リモルからのt&衝液中に取る。このようにして得られ
た浴液をDEAEセルロース中を通過させる。特異的抗
体を含有する浴出液を緩爾液I中で蛋白JX!I匿50
μm1/lLtに稀釈する。
1.7 基質溶液:
クロルフェノールレッド−β−5ミIJ モに/ 1が
ラクトシト (西ドイツ国特許第3345748号 (3,05
Vl)により製造) HEPE8 70ミリモ
ル/!(16,7g/J) NaCj Ig4ミリ
モル/l(9g/)) 牛血消アルブミン 0.6%(”、9/
l )ツイーン20 0.2%(
2g/))pi((NaOHにより)
7.252、実施(恒温保持はすべて室温で行う)ポリ
スチレン製の微量滴定板(MTP 、板1つ当り96個
の凹部)を凹部1個当りレセプターR3m液600μノ
と1時間恒温保持する。次いで、液体を廃棄する。残り
の非特異的結合部位を凹部1個当り緩衝液1300μノ
を匈時間恒温保持することにより飽和する。次に、凹部
1個当りそれぞれ200μノを用いて、微量滴定板の半
分t−TSHと結合性のレセプターR2溶液(1,3)
と恒温保持しく MTPのA部分)かつ微量滴定板の他
の半分をTSHと非結合性のレセプターR2溶液と1時
間恒温保持する( MTPのB部分)。
ラクトシト (西ドイツ国特許第3345748号 (3,05
Vl)により製造) HEPE8 70ミリモ
ル/!(16,7g/J) NaCj Ig4ミリ
モル/l(9g/)) 牛血消アルブミン 0.6%(”、9/
l )ツイーン20 0.2%(
2g/))pi((NaOHにより)
7.252、実施(恒温保持はすべて室温で行う)ポリ
スチレン製の微量滴定板(MTP 、板1つ当り96個
の凹部)を凹部1個当りレセプターR3m液600μノ
と1時間恒温保持する。次いで、液体を廃棄する。残り
の非特異的結合部位を凹部1個当り緩衝液1300μノ
を匈時間恒温保持することにより飽和する。次に、凹部
1個当りそれぞれ200μノを用いて、微量滴定板の半
分t−TSHと結合性のレセプターR2溶液(1,3)
と恒温保持しく MTPのA部分)かつ微量滴定板の他
の半分をTSHと非結合性のレセプターR2溶液と1時
間恒温保持する( MTPのB部分)。
次に18時間試料と恒温保持する際に、TSHと結合性
の抗体を含有する凹部(MTPのA部分)中にそれぞれ
試料200μノをかつTSHと結合性ではない抗体を富
有する凹部(M’I’PのBs分)中に200μノを加
える。試料の恒温保持が終結した後で、試料を廃棄しか
つ凹部を緩衝液■それぞれ300μノで6回洗浄する。
の抗体を含有する凹部(MTPのA部分)中にそれぞれ
試料200μノをかつTSHと結合性ではない抗体を富
有する凹部(M’I’PのBs分)中に200μノを加
える。試料の恒温保持が終結した後で、試料を廃棄しか
つ凹部を緩衝液■それぞれ300μノで6回洗浄する。
その後、全MTP凹部をlII識レセしターR0#液(
1,5)それぞれ200μノと3時間恒温保持する。標
識レセプターR1溶液を廃棄しかつ緩衝液■それぞれ6
00μlで6回洗浄した後で、に、基質反応により形成
される色素を市販のMTP光度計を用いて570 nm
で測定することにより検出する。
1,5)それぞれ200μノと3時間恒温保持する。標
識レセプターR1溶液を廃棄しかつ緩衝液■それぞれ6
00μlで6回洗浄した後で、に、基質反応により形成
される色素を市販のMTP光度計を用いて570 nm
で測定することにより検出する。
3、評価:
それぞれの試料に関して、MTPのAllS分からの吸
光度(A吸光度)及びMTPのB部分からの吸光度(B
a光度)′t−測定する。それぞれ1試料に関する吸光
度AとBとの差を評価する。このようにして得られたT
SHK特異的な測定シグナルが検量曲線によりT8H含
量に相当する。
光度(A吸光度)及びMTPのB部分からの吸光度(B
a光度)′t−測定する。それぞれ1試料に関する吸光
度AとBとの差を評価する。このようにして得られたT
SHK特異的な測定シグナルが検量曲線によりT8H含
量に相当する。
検量曲線の作成に当っては、それぞれのMI’PKr!
Iaして試料に櫨々の既知TSH官量を加える(このた
めには可能な限り、低いTSH出発含量の試料を使用す
べきである)。添加することKより得られた、それぞれ
の試料と添加したTSH濃縮液中のシグナルの増大から
、線図のゼロ点により外挿される検量曲線が作成される
。この検量曲線を使って、未知試料のT8H含量を試料
特異性盲検値の考慮下に確定することができる。
Iaして試料に櫨々の既知TSH官量を加える(このた
めには可能な限り、低いTSH出発含量の試料を使用す
べきである)。添加することKより得られた、それぞれ
の試料と添加したTSH濃縮液中のシグナルの増大から
、線図のゼロ点により外挿される検量曲線が作成される
。この検量曲線を使って、未知試料のT8H含量を試料
特異性盲検値の考慮下に確定することができる。
記載した方法による代懺的な実験では次の結果が得られ
た: 例2 ビト血清中のα−フェト蛋白ff (AFP) ’eモ
ノクロナール抗体により測定 本例は例1に相応するが、但し次の点が異なっている: a) AFPと結合性であるレセ?ターR2として、
サブクラスIg02aのモノクロナールのマウス−抗−
AFP−抗体を使用する。
た: 例2 ビト血清中のα−フェト蛋白ff (AFP) ’eモ
ノクロナール抗体により測定 本例は例1に相応するが、但し次の点が異なっている: a) AFPと結合性であるレセ?ターR2として、
サブクラスIg02aのモノクロナールのマウス−抗−
AFP−抗体を使用する。
b) AFPと結合性でないレセプターR2′として
、サブクラスIg()2aのモノクロナールのマウス−
抗−7エリテン−抗体を使用する。
、サブクラスIg()2aのモノクロナールのマウス−
抗−7エリテン−抗体を使用する。
c)R4として、R2とは別の抗原決定因子をg■する
モノクロナールのマウス−抗AFP−抗体を使用する。
モノクロナールのマウス−抗AFP−抗体を使用する。
d)試料は測定前に稜1■で1:5に稀釈する。
e)朽釈した試料はMTP中で1時間恒漏保持する。
f)標識付けしたレセプターR1陪欣との恒温保持は1
時間継続する。
時間継続する。
記載した方法による代表的な実験では次の結果が得られ
た: 例6 人血清中のα−フェト蛋白質(AFP)をポリクナール
抗体により測定 本例は次の点を除いて例2に相応する=a) AFP
と結合性のレセプターR2として、ポリクロナールのウ
サギ−抗−AFP−抗血清使用した。
た: 例6 人血清中のα−フェト蛋白質(AFP)をポリクナール
抗体により測定 本例は次の点を除いて例2に相応する=a) AFP
と結合性のレセプターR2として、ポリクロナールのウ
サギ−抗−AFP−抗血清使用した。
k:+) AFPと結合性ではないレセプターR2/
して非特異的なウサギ血清を使用する。
して非特異的なウサギ血清を使用する。
C)レセプターR1としては、レセプターとは別の抗原
決定因子を認識するポリクロヅルの羊−抗−AFP−抗
血清を使用する。振数けしたレセプターR1#液の調製
はモノクロール抗体の処理(前記参照)と同様に行なτ
d)レセプターR3として、ポリクロナーの羊−抗一り
サギーFcr−抗血清を使用す/記載の方法による代表
的な実験では矢の参が得られる: 1)レセプターR2として、AFPと結合性の抗体を使
用した場合の吸光度 2)レセプターR2′として、AFPと結合性ではない
抗体を使用した場合の吸光度 6)試料6a及び6b中にAFPを添加した後(吸光度
A−吸光度B)の増加、検量曲線の勾配は試料6aと6
bのΔの平均値から算出した。
決定因子を認識するポリクロヅルの羊−抗−AFP−抗
血清を使用する。振数けしたレセプターR1#液の調製
はモノクロール抗体の処理(前記参照)と同様に行なτ
d)レセプターR3として、ポリクロナーの羊−抗一り
サギーFcr−抗血清を使用す/記載の方法による代表
的な実験では矢の参が得られる: 1)レセプターR2として、AFPと結合性の抗体を使
用した場合の吸光度 2)レセプターR2′として、AFPと結合性ではない
抗体を使用した場合の吸光度 6)試料6a及び6b中にAFPを添加した後(吸光度
A−吸光度B)の増加、検量曲線の勾配は試料6aと6
bのΔの平均値から算出した。
例4
TSHの測定
使用したレセプター及び基質温液は例1からの試薬と同
じであり、DEAE−セルロースを通して通過させるこ
とを含めてそれまでの絹製工程及び標疏付けしたレセプ
ターR1浴液の合成も同Lrである。記載したレセプタ
ーを使って、試薬担体を製造する。
じであり、DEAE−セルロースを通して通過させるこ
とを含めてそれまでの絹製工程及び標疏付けしたレセプ
ターR1浴液の合成も同Lrである。記載したレセプタ
ーを使って、試薬担体を製造する。
試薬担体の製造
1)試薬担体1(TSHと結合性):11当りリン酸ナ
トリウム、−7,3,100ミリモル、塩化マグネシウ
ム2ミリモル、塩化ナトリウム9g、牛血清アルブミン
5g、マウスからの抗−TSH−モノクロナール抗体5
IILt(レセプターR2)、抗−TIIIIH−抗体
−(マウス) −Fab−フラグメント−β−がラクト
シダーゼー接合体(レセプターR1浴液;活性度は67
℃でオルト−ニトロフェニル−β−D−がラクトシトテ
測定)100OUを含有する溶液40μlを市販のポリ
エステル紙より成るフリース上に温顔する。引続いて、
室温で乾燥させる。このフリースは使用するまでは4°
C及び相対湿度20%で貯蔵する。
トリウム、−7,3,100ミリモル、塩化マグネシウ
ム2ミリモル、塩化ナトリウム9g、牛血清アルブミン
5g、マウスからの抗−TSH−モノクロナール抗体5
IILt(レセプターR2)、抗−TIIIIH−抗体
−(マウス) −Fab−フラグメント−β−がラクト
シダーゼー接合体(レセプターR1浴液;活性度は67
℃でオルト−ニトロフェニル−β−D−がラクトシトテ
測定)100OUを含有する溶液40μlを市販のポリ
エステル紙より成るフリース上に温顔する。引続いて、
室温で乾燥させる。このフリースは使用するまでは4°
C及び相対湿度20%で貯蔵する。
2)試薬担体1’ (TSHと非結合性):抗−TSH
−抗体(レセプターR2)の代りにマウムカラノ抗−〇
EA−モノクロナール抗体(レセ7’ターR2′〕を使
用することを除いては試薬担体1と同様に製造する。
−抗体(レセプターR2)の代りにマウムカラノ抗−〇
EA−モノクロナール抗体(レセ7’ターR2′〕を使
用することを除いては試薬担体1と同様に製造する。
6)試薬担体2ニブロムシアン活性化法(西ドイツ国特
許公開第1768512号明細V)によりセルロースフ
リース上に、マウス−抗体のFar 、部に対する羊抗
体(レセプターR5#液)を固定させ、その際に繊維材
料1!Iaり抗体10μgを固定に使用する。洗浄して
未結合の抗体を除去しかつフリースを注意深く室温で乾
燥させる。このようにして得られたフリースの貯蔵は試
薬担体1と同様に行なう。
許公開第1768512号明細V)によりセルロースフ
リース上に、マウス−抗体のFar 、部に対する羊抗
体(レセプターR5#液)を固定させ、その際に繊維材
料1!Iaり抗体10μgを固定に使用する。洗浄して
未結合の抗体を除去しかつフリースを注意深く室温で乾
燥させる。このようにして得られたフリースの貯蔵は試
薬担体1と同様に行なう。
この両方の試薬担体1と2もしくは1′と2による測定
は西ドイツ画特許出願第3425008.5号明細書に
記載されている分析測定を実施するための装置t(第2
図)で行なう。
は西ドイツ画特許出願第3425008.5号明細書に
記載されている分析測定を実施するための装置t(第2
図)で行なう。
これは、自動遠心分析装置用の回転子組込み部材を開示
しており、この部材は、それぞれが一定の試薬で含浸さ
れた吸収性担持物質を含有する多数の試薬フィールドと
連結している試料受容室、少なくとも1つの混合弁室及
び測定室を備えた成形体より構成されており、前記構成
部が一緒になって、組込み部材が回転子上に固定されて
おり、かつ組込み部材が東に液体を収容するための他の
室少なくとも1つ及びこの室から測定部に案内しかつ試
料成体搬送路と少なくとも一部が同一である搬送路を備
えている場合には、軸方向で内側から外に向って続いて
いる試料液体搬送路を構成する。その際に、試料液体搬
送路は試料受容室(P)から、吸収性材料が充填されか
つ緩衝液を含有する室(a)、室(C)及び室(a)と
(C)との間に配置されている第一弁室(VKl )を
介して第二弁室(VK2)に、かつこの第二弁室から室
(d)及び捕集室(AX)を介して測定室(k)に設置
されている。他の液体を収容するためにポンプ室として
構成されている基3j室(PK)が設けられており、こ
の室は配量室(DK)と毛管(Kap)とより成る配量
装置及びオーバーフロー室(Ux)を介して第二弁室(
VK2)と連結している。第2図は使用される回転子組
込み部材を略図で示したものである。
しており、この部材は、それぞれが一定の試薬で含浸さ
れた吸収性担持物質を含有する多数の試薬フィールドと
連結している試料受容室、少なくとも1つの混合弁室及
び測定室を備えた成形体より構成されており、前記構成
部が一緒になって、組込み部材が回転子上に固定されて
おり、かつ組込み部材が東に液体を収容するための他の
室少なくとも1つ及びこの室から測定部に案内しかつ試
料成体搬送路と少なくとも一部が同一である搬送路を備
えている場合には、軸方向で内側から外に向って続いて
いる試料液体搬送路を構成する。その際に、試料液体搬
送路は試料受容室(P)から、吸収性材料が充填されか
つ緩衝液を含有する室(a)、室(C)及び室(a)と
(C)との間に配置されている第一弁室(VKl )を
介して第二弁室(VK2)に、かつこの第二弁室から室
(d)及び捕集室(AX)を介して測定室(k)に設置
されている。他の液体を収容するためにポンプ室として
構成されている基3j室(PK)が設けられており、こ
の室は配量室(DK)と毛管(Kap)とより成る配量
装置及びオーバーフロー室(Ux)を介して第二弁室(
VK2)と連結している。第2図は使用される回転子組
込み部材を略図で示したものである。
吸光度A(試料盲検値を含む特異的な測定シグナル)の
測定には試薬担体1と試薬担体2を使い、吸光度B(試
料1検値)の測定には試薬担体1′と24−使う。
測定には試薬担体1と試薬担体2を使い、吸光度B(試
料1検値)の測定には試薬担体1′と24−使う。
試薬担体1もしくは1′は回転子組込み部材のフィール
ドCに配置し、かつ試薬担体2はフィールドdに配置す
る。その際に濃試料40μl金上縁部の開口部を通して
直接フィールドaにピペット装入する。基質溶液270
μlは室PK中にぎペット装入する。高い回転数と停止
とが又互に行なわれる好適な遠心分離プログラムにより
、試料と基!X浴液は分離マトリックスとキュベツトの
方向に供給される。
ドCに配置し、かつ試薬担体2はフィールドdに配置す
る。その際に濃試料40μl金上縁部の開口部を通して
直接フィールドaにピペット装入する。基質溶液270
μlは室PK中にぎペット装入する。高い回転数と停止
とが又互に行なわれる好適な遠心分離プログラムにより
、試料と基!X浴液は分離マトリックスとキュベツトの
方向に供給される。
その際、プログラムの進行中にレセプターR1及びR2
もしくはR2′は試料液体を通してフィールドCから浴
離し、かつ引続いて均質な混合物が反応する。フィール
ドdで、形成された複合体がレセプターR3に結合する
。試料のフィールドCからdへの搬送は非常に短時間で
行なわれる。
もしくはR2′は試料液体を通してフィールドCから浴
離し、かつ引続いて均質な混合物が反応する。フィール
ドdで、形成された複合体がレセプターR3に結合する
。試料のフィールドCからdへの搬送は非常に短時間で
行なわれる。
基質浴液は配量罠DKにより少社ずつに分けられ、その
うちの初めのものは過剰の、複合しなかった接合体の洗
浄に使われる。d上での被合体形成を介して結合したβ
−がラクトシダーゼ活性は試料に宮まれる’I’SH1
にもしくは試料璽検僅に比例する。この活性度は他の基
質分割分で測定し、その際に基質は5分間の反応で着色
生成物に変換される。形成された色素及び液相中の発色
7分はキュベツト中576 nmで測定する。
うちの初めのものは過剰の、複合しなかった接合体の洗
浄に使われる。d上での被合体形成を介して結合したβ
−がラクトシダーゼ活性は試料に宮まれる’I’SH1
にもしくは試料璽検僅に比例する。この活性度は他の基
質分割分で測定し、その際に基質は5分間の反応で着色
生成物に変換される。形成された色素及び液相中の発色
7分はキュベツト中576 nmで測定する。
これらの条件下で次の結果が得られた:測定はすべて5
76 nm及び層厚0.6crrLで実施し、層厚d=
1c+rLKp算した。
76 nm及び層厚0.6crrLで実施し、層厚d=
1c+rLKp算した。
1〕 試薬担体1(TSHと結合性〕を使った際の吸光
度 2)#に薬担体1’ (TSHとは結合性ではない)を
使った際の吸光度 6)試料4の中にTSHを添加した後(吸光度へ−吸光
度B)の増加 * 検波 例5 モノクロナール抗−AFP−抗体の測定本例は矢の点を
除いて例1に相応する。
度 2)#に薬担体1’ (TSHとは結合性ではない)を
使った際の吸光度 6)試料4の中にTSHを添加した後(吸光度へ−吸光
度B)の増加 * 検波 例5 モノクロナール抗−AFP−抗体の測定本例は矢の点を
除いて例1に相応する。
1、 レセプターR3浴液として手−抗−ウサギ−Fc
r−抗血清を使用する。
r−抗血清を使用する。
2、 AFPと結合性であるレセプターR2としてウ
サイー抗−AFP−抗血消を使用する。抗体の精製はレ
セプターR3と同様に行なう。
サイー抗−AFP−抗血消を使用する。抗体の精製はレ
セプターR3と同様に行なう。
3、 AFPと結合性ではないレセプターR2/とじ
ては非特異的ウサギ血清を使う。抗体の鞘装はレセプタ
ーR3と同様に行う。
ては非特異的ウサギ血清を使う。抗体の鞘装はレセプタ
ーR3と同様に行う。
4、 レセプターR1としては、羊−抗−マウス−Ig
G−抗体を使用する。抗体はナカネ法[M、 B、ウィ
ルソン(Wilson )、P、 K、ナカネ共著、”
Recenz Developmenzs in z
hePexiodaze Mezhod of Con
jugazing 。
G−抗体を使用する。抗体はナカネ法[M、 B、ウィ
ルソン(Wilson )、P、 K、ナカネ共著、”
Recenz Developmenzs in z
hePexiodaze Mezhod of Con
jugazing 。
Horseradish Peroxidase co
Anzibodies ’(1978年)、Else
vier* North HollandBiomed
ical Press、 ” Immunofluor
escemceand ReLazed Szaini
ng Techniques”甲の2Ig〜224頁〕
により西洋ワサビからのペルオキシダーゼと結合させる
。抗体−酵素一接合体を緩衝gB中で濃度80U/J(
基質としてグアセコールとH2O2を用いて25℃で測
定)に幽節する。
Anzibodies ’(1978年)、Else
vier* North HollandBiomed
ical Press、 ” Immunofluor
escemceand ReLazed Szaini
ng Techniques”甲の2Ig〜224頁〕
により西洋ワサビからのペルオキシダーゼと結合させる
。抗体−酵素一接合体を緩衝gB中で濃度80U/J(
基質としてグアセコールとH2O2を用いて25℃で測
定)に幽節する。
5、例1に相応してレセプターR2もしくはR2′を含
む微量滴定板の恒温保持及び洗浄後に、それぞれの凹部
を緩衝液■中のAFP 12.5 IU/rlLtの浴
液200μl と1時間恒温保持する。
む微量滴定板の恒温保持及び洗浄後に、それぞれの凹部
を緩衝液■中のAFP 12.5 IU/rlLtの浴
液200μl と1時間恒温保持する。
引続いてn 17液11300μノで2回洗浄する。
3、抗体含有試料浴液の恒温保持は1時間である。
z M4識レセプターR1浴液との恒温保持は1時間で
ある。
ある。
8、 指示溶液として次のものを使う:ABT8(R)
(2、2’−アゾノージー〔6−ニチルベンゾチアゾリ
ウムスルホネート(6) ) ) 1.8ミリモル ホスフエート/シトレート−緩衝液、−4,4,100
N中の過ホウ素ナトリウム6.6ミリモル 恒温保持は1時間である。形成色素の測定は光度計を基
JX盲検僅に対して一製した後で405nmで行なう。
(2、2’−アゾノージー〔6−ニチルベンゾチアゾリ
ウムスルホネート(6) ) ) 1.8ミリモル ホスフエート/シトレート−緩衝液、−4,4,100
N中の過ホウ素ナトリウム6.6ミリモル 恒温保持は1時間である。形成色素の測定は光度計を基
JX盲検僅に対して一製した後で405nmで行なう。
記載の方法による代表的な実験では、緩伽液用済液に種
々の抗体を変化する6度で加えた。
々の抗体を変化する6度で加えた。
次の結果が得られた:
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、イムノアツセイの原理により免疫反応の反応成分を
測定する際に、測定すべき反応成分を標識付けした特異
的レセプターR_1及び少なくとも1種の未標識のレセ
プターR_2と接触させ、かつその際に未標識のレセプ
ター R_2の1種が結合性物質R_3を介して固相に結合し
ているその測定法において、試料盲検値の測定に当つて
は、固相に固定されているレセプターにより結合される
未標識のレセプターR_2を、R_2の他方の反応成分
と反応しない他の未標識レセプターR_2′により代え
ることを特徴とする、免疫反応の反応成分を測定するた
めの方法。 2、未標識のレセプターR_2は測定すべき反応成分か
又はレセプターR_1とのその複合体に対して作用する
特許請求の範囲第1項記載の方法。 3、結合性物質R_3としては、R_1と結合しない抗
−Ig−抗体を使用する特許請求の範囲第1項又は第2
項記載の方法。 4、レセプターR_2及びR_2′はモノクロナールで
ありかつ同じサブクラスに属する特許請求の範囲第1項
から第3項までのいずれか1項記載の方法。 5、レセプターR_2及びR_2′としてはハプテン化
した抗体を使いかつ結合性物質R_3としてはハプテン
に対して作用する抗体を使う特許請求の範囲第1項から
第4項までのいずれか1項記載の方法。 6、固相に結合している結合性物質R_3、R_3及び
他の反応成分と結合法の未標識のレセプターR_2少な
くとも1種及び標識付けした特異的なレセプターR_1
を含有し、かつ物理的にそれとは別個に固相に結合して
いる結合性物質R_3、R_2の他方の反応成分とは反
応しない未標識のレセプターR_2′及び標識付けした
特異的なレセプターR_1を更に含有することを特徴と
する、免疫反応の反応成分を測定するための試薬。 7、レセプターR_2もしくはR_2′は抗−Ig−抗
体を介して固相に結合して存在する特許請求の範囲第6
項記載の試薬。 8、レセプターR_2もしくはR_2′はハプテン化さ
れておりかつこのハプテンに対して作用する抗体を介し
て固相に結合している特許請求の範囲第6項記載の試薬
。
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