JPS6287099A - 微生物によるセルロ−ス性物質の製造方法 - Google Patents
微生物によるセルロ−ス性物質の製造方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
（産業上の利用分野）
本発明はアセトバクター属に属し、セルロース性物質を
生産する能力を有する微生物が生産するセルロース性物
質の製造方法に関する。
生産する能力を有する微生物が生産するセルロース性物
質の製造方法に関する。
このセルロース性物質は可食性であり食品分野で利用さ
れるほか水系分散性に優れているので食品、化粧品又は
塗料等の粘度の゛保持、食品原料生地の強化、水分の保
持、食品安定性向上、低カロリー添加物又は乳化安定化
助剤としての産業上利用価値がある。
れるほか水系分散性に優れているので食品、化粧品又は
塗料等の粘度の゛保持、食品原料生地の強化、水分の保
持、食品安定性向上、低カロリー添加物又は乳化安定化
助剤としての産業上利用価値がある。
また、該セルロース性物質の離解物はミクロフィブリル
の構造的物理的特徴に基づき高分子、特に水系高分子用
補強材として各種の産業用用途がある。この上うな離解
物は高い引張弾性率を示すので該セルロース性離解物を
紙秋またけ固ハリ状に固化した物質はミクロフィブリル
の構造的特徴に基づくすぐれた機械特性が期待され、各
８！産業用発酵槽を用いた発酵はｓｅｐ培養、カビ培養
や、固ス性物質の生産に用いることにより、セルロース
性物質の生産が安定して速く、効率よく安価に製造する
方法を開発することにある。
の構造的物理的特徴に基づき高分子、特に水系高分子用
補強材として各種の産業用用途がある。この上うな離解
物は高い引張弾性率を示すので該セルロース性離解物を
紙秋またけ固ハリ状に固化した物質はミクロフィブリル
の構造的特徴に基づくすぐれた機械特性が期待され、各
８！産業用発酵槽を用いた発酵はｓｅｐ培養、カビ培養
や、固ス性物質の生産に用いることにより、セルロース
性物質の生産が安定して速く、効率よく安価に製造する
方法を開発することにある。
（従来技術）
従来よりアセトバクター属に属しセルロースを生成する
能力を有する微生物を用いてセルロースを生成する方法
は知られている。セルロースヲ生産する培養法は静置培
養法を主体とした培養法であり、深部培養を検討した例
は少なく、Ｋ、Ｗ、アンダーンン（Ｂａｔｔｌｌｅ Ｃ
ｏｌｕｍｂｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ ＵＳＡ＋
静置生産′ＢｋＯ，１３ｇ／１−ｄａｙより低収率であ
ったと報告している。
能力を有する微生物を用いてセルロースを生成する方法
は知られている。セルロースヲ生産する培養法は静置培
養法を主体とした培養法であり、深部培養を検討した例
は少なく、Ｋ、Ｗ、アンダーンン（Ｂａｔｔｌｌｅ Ｃ
ｏｌｕｍｂｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ ＵＳＡ＋
静置生産′ＢｋＯ，１３ｇ／１−ｄａｙより低収率であ
ったと報告している。
さらに、通気攪拌培養槽では、生成したセルロース又は
、セルロース性物質が缶体内の付属物（ス・セーノヤー
、ソヤマ板、熱交換部）、橙拌Ｗ（、や撹拌羽根にから
みつくために深部培養法を成立させるには困難であった
。
、セルロース性物質が缶体内の付属物（ス・セーノヤー
、ソヤマ板、熱交換部）、橙拌Ｗ（、や撹拌羽根にから
みつくために深部培養法を成立させるには困難であった
。
（問題点を解決するための手段）
液の−４を制御しつつ培養を行うと、著しくセルロース
性物質の生産性が向上されることを知った。本発明はこ
の知見に基づいて完成されたものである。
性物質の生産性が向上されることを知った。本発明はこ
の知見に基づいて完成されたものである。
即ち本発明において使用される微生物はアセトバクター
に属し、セルロース性物’］を生産する微生物であれば
どのようなものでもよい。
に属し、セルロース性物’］を生産する微生物であれば
どのようなものでもよい。
−レリを挙げればアセト・ぐクターパアセチ・ザブスピ
ーシス・キシリナム（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ ａｃｅ
ｔｔｏｕｂｓｐ、 ｘｙｌ ｉｎｕｍ） ＡＴｃｃ １
０８２１を浄げることかできる。
ーシス・キシリナム（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ ａｃｅ
ｔｔｏｕｂｓｐ、 ｘｙｌ ｉｎｕｍ） ＡＴｃｃ １
０８２１を浄げることかできる。
炭素す・にとしてはシュークロス、グルコース、７ラク
トース、マンニトール、ソルビトール、がラクトース、
マルトース、エリスリット、カドニット、クリセリン、
エチレングリコール、工ｆｉ／−ル、酢酸、等が単独或
は併用して用いられる。更にはこれらのものを含有する
澱粉氷解物、チトラスモラセス、ビートモラセス、ピー
） 搾汁、サトウキビ搾汁、柑橘類を始めとする果汁等
が使用ｌｉ１来る。
トース、マンニトール、ソルビトール、がラクトース、
マルトース、エリスリット、カドニット、クリセリン、
エチレングリコール、工ｆｉ／−ル、酢酸、等が単独或
は併用して用いられる。更にはこれらのものを含有する
澱粉氷解物、チトラスモラセス、ビートモラセス、ピー
） 搾汁、サトウキビ搾汁、柑橘類を始めとする果汁等
が使用ｌｉ１来る。
窒系諒としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、
リン酸アンモニウム等のアン七ニワム塩、硝酸塩、尿素
、々ｆトン等有１．′−≧或は無機の窒素源が使用され
る。有機微量栄養素としてはアミノ酸、ビタミン、脂肪
酸、核酸、更にこれらのものを含有するにプトン、カザ
ミノ酸、酵母エキス等が使用、’； 、ｉｌ、この他に
２．７．９−トリカル、どキシ−１）１ピロロＣ２＋３
−５ ］−］キノリンー４，５−ノオも添加すると効果
がある。
リン酸アンモニウム等のアン七ニワム塩、硝酸塩、尿素
、々ｆトン等有１．′−≧或は無機の窒素源が使用され
る。有機微量栄養素としてはアミノ酸、ビタミン、脂肪
酸、核酸、更にこれらのものを含有するにプトン、カザ
ミノ酸、酵母エキス等が使用、’； 、ｉｌ、この他に
２．７．９−トリカル、どキシ−１）１ピロロＣ２＋３
−５ ］−］キノリンー４，５−ノオも添加すると効果
がある。
生−丁にアミノ酸等を要求する朱養要求廿隻゛め株を使
用するヅネ舒には安水さ７Ｌる栄ゑ素を補添することが
必ヂ＾である。ソ（（ｆ機ｊＬ類としてはリン酸塩、マ
グネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩、コバ
ルト塩、モリブデン酸塩、赤血塩、キレート金属類等が
使用される。
用するヅネ舒には安水さ７Ｌる栄ゑ素を補添することが
必ヂ＾である。ソ（（ｆ機ｊＬ類としてはリン酸塩、マ
グネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩、コバ
ルト塩、モリブデン酸塩、赤血塩、キレート金属類等が
使用される。
本発明で用いる気泡塔型培養槽では、エアーリフト型発
酵槽、管型発酵格及び流動層型発Ｄ ＋ｉ１等が使用可
能である。
酵槽、管型発酵格及び流動層型発Ｄ ＋ｉ１等が使用可
能である。
空気は１〜１０日間一定の通ダ１／１００〜２／′ＩＶ
Ｖｍの範囲内で気泡塔型培養槽に・１１（給する。
Ｖｍの範囲内で気泡塔型培養槽に・１１（給する。
培養漕（（供給する酸素０）度は５〜１００チ、望１し
７くは２０〜・１０頭で３られば良い。
７くは２０〜・１０頭で３られば良い。
培養の、Ｊｌけ３ないし０の範囲で副側）する、、望１
しくはＩ・Ｈｌ〜５であれば良い。−Ｉ制御に使用する
酸、アルカリは、全ての有機物無機物が使用可能である
。
しくはＩ・Ｈｌ〜５であれば良い。−Ｉ制御に使用する
酸、アルカリは、全ての有機物無機物が使用可能である
。
培養温度で１０〜４０℃、望ましくは２５〜３５℃の範
囲で行う。
囲で行う。
以上の方法にて、培養すると缶体内に付着することなく
、被レット状のセルロース性物質が生産される。
、被レット状のセルロース性物質が生産される。
本発明の方法によって、生産されたセルロース性物質は
捕集装置にて回収し系外へ取出す。捕集装置は、従来知
られている固液分離装置が利用でき、例えば網、ストレ
ーナ−１遠心分離機や固液分離槽等がある。
捕集装置にて回収し系外へ取出す。捕集装置は、従来知
られている固液分離装置が利用でき、例えば網、ストレ
ーナ−１遠心分離機や固液分離槽等がある。
これらの捕集装置を２つ以上並列に配置することにより
連続的にセルロース性物質を回収する事が出来る。
連続的にセルロース性物質を回収する事が出来る。
取上げたセルロース性物質は、本物質中に含まれる菌体
を始めとするセルロース性物質以外の物質を取り除く処
理をほどこす。
を始めとするセルロース性物質以外の物質を取り除く処
理をほどこす。
不純物を取υ除くだめには水洗、加圧脱水、希酸洗滌、
アルカリ洗滌、トルエン及び酢酸エチルなどの極性有機
溶媒による処理、次亜塩素酸ソーダ及び過酸化水素など
の漂白剤による処理、リゾチームなどの菌体溶解酵素に
よる処理、ラウリル硫酸ンーダ、デス プキシコール酸などの界面活性剤による処理、常温から
２００℃の範囲の加熱洗滌などを単独及び併用してほど
こすことによりセルロース性物質から不純物を除去する
ことが出来る。
アルカリ洗滌、トルエン及び酢酸エチルなどの極性有機
溶媒による処理、次亜塩素酸ソーダ及び過酸化水素など
の漂白剤による処理、リゾチームなどの菌体溶解酵素に
よる処理、ラウリル硫酸ンーダ、デス プキシコール酸などの界面活性剤による処理、常温から
２００℃の範囲の加熱洗滌などを単独及び併用してほど
こすことによりセルロース性物質から不純物を除去する
ことが出来る。
このようにして得ら゛れた本発明でいうセルロース性物
質とは以下のものをいう。
質とは以下のものをいう。
本発明のセルロース性物質とはセルロース及びセルロー
スを主鎖としたベテロ多糖を含むもの及びβ−１，３，
β−１，２等のグルカンを含むものである。ペテロ多糖
の場合のセルロース以外の構成成分ハマンノース、フラ
クトース、がラクトース、キシロース、アラビノース、
ラムノース、グルクロン酸等の六炭糖、五炭糖及び有機
酸等である。
スを主鎖としたベテロ多糖を含むもの及びβ−１，３，
β−１，２等のグルカンを含むものである。ペテロ多糖
の場合のセルロース以外の構成成分ハマンノース、フラ
クトース、がラクトース、キシロース、アラビノース、
ラムノース、グルクロン酸等の六炭糖、五炭糖及び有機
酸等である。
なおこれ等の多糖が単一物質である場合もあるし２神具
−Ｈの多糖が水素結合等により混在してもよい。
−Ｈの多糖が水素結合等により混在してもよい。
実施例１゜
シュークロース５チ、リン酸ｌカリウム０．３％。
硫酸マグネシウム（７水塩）０．０５％、カザミノ酸（
Ｄｉｆｃｏ社製）０．８％、ｐＨ５の組成の培地４００
ｍ１を５００ ｍｌ容坂ロフラスコに張込み、１２０℃
３０分間殺菌した。
Ｄｉｆｃｏ社製）０．８％、ｐＨ５の組成の培地４００
ｍ１を５００ ｍｌ容坂ロフラスコに張込み、１２０℃
３０分間殺菌した。
上記の組成の培地に寒天２％を加えた斜面寒天培地で３
０℃６日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブス
ピーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌
した培地に接種し３０℃２日間振盪培養し種母とした。
０℃６日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブス
ピーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌
した培地に接種し３０℃２日間振盪培養し種母とした。
上記培地にそれぞれ単独に酵母エキス（Ｄｉｆｃ。
社ｆｉ）０．５０％を加え、ｐＨを２〜８の範囲内に調
整した培地３５０ｍ１をガラス製の気泡塔（全容量５ｏ
Ｏｍ）Ｋ、Ｉｌｆ的ニ入れ、また５０ｆｆｉ７のｆ’Ｊ
ｌをあわせて入れ、通気１／１０ＹＶｍにて、３０℃で
２週間培養したところ繊維状物質の集合体が形成され、
り ｐ）１３〜．ダの範囲内では・やルプ状でトコなく、２
〜５０の粒状にレットとなった（表１）。
整した培地３５０ｍ１をガラス製の気泡塔（全容量５ｏ
Ｏｍ）Ｋ、Ｉｌｆ的ニ入れ、また５０ｆｆｉ７のｆ’Ｊ
ｌをあわせて入れ、通気１／１０ＹＶｍにて、３０℃で
２週間培養したところ繊維状物質の集合体が形成され、
り ｐ）１３〜．ダの範囲内では・やルプ状でトコなく、２
〜５０の粒状にレットとなった（表１）。
缶体内に付着することなく、セルロース性物質を生成せ
しめ、捕集装置として３２メツシユの網を用いて回収し
、洗浄をくシ返して充分洗った後１０５℃で恒量になる
まで乾燥し測定した。その結果、−１３では、２８０■
１．Ｈ４で１３８０η、μ４５で１１００■、−６では
４１０■であった。
しめ、捕集装置として３２メツシユの網を用いて回収し
、洗浄をくシ返して充分洗った後１０５℃で恒量になる
まで乾燥し測定した。その結果、−１３では、２８０■
１．Ｈ４で１３８０η、μ４５で１１００■、−６では
４１０■であった。
表 １
一：生成なし
実施例２
・／、−クロース５飴、リン酸１カリウム０．３係硫醒
マグネシウム（７水塩）０．０５％、カザミノ酸（Ｄｉ
ｆｃｎ社製）０．８％、ＰＨ５の組成の培地４００ｍ１
を５００Ｍ容坂ロフラスコに張込み、１２０℃３０分間
殺菌した。
マグネシウム（７水塩）０．０５％、カザミノ酸（Ｄｉ
ｆｃｎ社製）０．８％、ＰＨ５の組成の培地４００ｍ１
を５００Ｍ容坂ロフラスコに張込み、１２０℃３０分間
殺菌した。
上記の組成の培地に寒天２チを加えた斜面寒天培地で３
０℃６日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブス
ピーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌
した培地に接極し３０℃２日間振盪培養し種母とした。
０℃６日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブス
ピーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌
した培地に接極し３０℃２日間振盪培養し種母とした。
上記培地にフィチン酸（味の累製）０．０５％、を添加
した培地−１４を殺菌し３５０１ｎｌをガラス製の気泡
塔（全容量５００ゴ、図１）に無情的に入れた後に５０
ｍ／の種母をあわせて入れ通気１／ｌＯＶＶｍにて、３
０℃で２週間培養した。Ｒレット状に生成したセルロー
ス性物質を３２メツシーの網目にて回収し、洗浄をくり
返して充分洗った後１０５℃で恒量になるまで乾燥し測
定した。その結果Ｂ、Ｃの生成量は、１７８０■であっ
た。同様５００ ｒｐｍ、 ｐＨ４，０で２週間培養し
た所、図２に示すように邪マ板、借拌羽根にセルロース
性物質がからみつき回収が困難であった。Ｂ、Ｃの生産
量を測定してみると９５０Ｉｎ９であった。通気攪拌型
培養槽の生産性は、気泡塔型発酵槽の約５０％で生成し
たセルロースの抜取は難かしく、また付着した部分の洗
浄が不完全となり、コンタミネーションの危険も大きい
ことが考えられる。気泡塔身）里 形式では、缶体へのセルロース様物質の何本もなく深部
培養形式によるセルロース生産プロセストシて最適な方
法と考えられた。
した培地−１４を殺菌し３５０１ｎｌをガラス製の気泡
塔（全容量５００ゴ、図１）に無情的に入れた後に５０
ｍ／の種母をあわせて入れ通気１／ｌＯＶＶｍにて、３
０℃で２週間培養した。Ｒレット状に生成したセルロー
ス性物質を３２メツシーの網目にて回収し、洗浄をくり
返して充分洗った後１０５℃で恒量になるまで乾燥し測
定した。その結果Ｂ、Ｃの生成量は、１７８０■であっ
た。同様５００ ｒｐｍ、 ｐＨ４，０で２週間培養し
た所、図２に示すように邪マ板、借拌羽根にセルロース
性物質がからみつき回収が困難であった。Ｂ、Ｃの生産
量を測定してみると９５０Ｉｎ９であった。通気攪拌型
培養槽の生産性は、気泡塔型発酵槽の約５０％で生成し
たセルロースの抜取は難かしく、また付着した部分の洗
浄が不完全となり、コンタミネーションの危険も大きい
ことが考えられる。気泡塔身）里 形式では、缶体へのセルロース様物質の何本もなく深部
培養形式によるセルロース生産プロセストシて最適な方
法と考えられた。
実′Ｍｔｊ例３
シュークロース５チ、リン酸１カリウム０．３％、硫酸
マグネシウム（７水塩）０．０５％、カザミノ酸（１）
ｉｆｃｏ社製）０．８％、ｐＨ５の組成の培地４００Ｔ
ｎｅ ４（７５００ｒｎｌ容坂ロフラスコに張込み、１
２０℃３０分間役菌した。
マグネシウム（７水塩）０．０５％、カザミノ酸（１）
ｉｆｃｏ社製）０．８％、ｐＨ５の組成の培地４００Ｔ
ｎｅ ４（７５００ｒｎｌ容坂ロフラスコに張込み、１
２０℃３０分間役菌した。
上記の組成の培地に寒天２％を加えた斜面寒天培地で３
０℃６日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブス
ピーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌
した培地に接種し３０℃２日間振盪培養し種母とした。
０℃６日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブス
ピーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌
した培地に接種し３０℃２日間振盪培養し種母とした。
Ｆ記培地にそれぞれ単独に酵母エキス（Ｄｉｆｃ。
社製）０．５０φを加え、μ（４に調整した。培地３５
Ｑｉをガラス製の気泡塔（全容量５００ ｍｌ ）に無
歯的に入れ、また５０ｄの種母をあわせて入れ、通気１
／１０ ＶＶｍ Ｋて、３０℃で２週間培養した。
Ｑｉをガラス製の気泡塔（全容量５００ ｍｌ ）に無
歯的に入れ、また５０ｄの種母をあわせて入れ、通気１
／１０ ＶＶｍ Ｋて、３０℃で２週間培養した。
Ｒレット状に生成したセルロース性物質を３２メソシユ
の網目にて回収し、洗浄をくり返して充分洗った後１０
５℃で恒量になるまで乾燥し測定しり、七ノ結果Ｂ、Ｃ
ノ生成量は１３８０ｗ４０ｏｍｉであった。
の網目にて回収し、洗浄をくり返して充分洗った後１０
５℃で恒量になるまで乾燥し測定しり、七ノ結果Ｂ、Ｃ
ノ生成量は１３８０ｗ４０ｏｍｉであった。
攪拌５００ ｒｐｍ、 ｐ＋（４，０で２週間培養した
所、セルロースがからみつくのは実施例１と同様であり
、セルロースの生産量は７５０ｍ９であった。
所、セルロースがからみつくのは実施例１と同様であり
、セルロースの生産量は７５０ｍ９であった。
実施例４
シュークロース５チ、リン酸１カリウム０３チ、硫酸マ
グネシウム（７水塩）Ｏ，ＯＳ％、カザミノ酸（Ｄｉｆ
ｃｏ社製）０８％、ｐ！（５の組成の培地４００ｄを５
００ ｍｌ容坂ロフラスコに張込み、１２０℃：３０分
間殺菌した。
グネシウム（７水塩）Ｏ，ＯＳ％、カザミノ酸（Ｄｉｆ
ｃｏ社製）０８％、ｐ！（５の組成の培地４００ｄを５
００ ｍｌ容坂ロフラスコに張込み、１２０℃：３０分
間殺菌した。
上記の組成の培地に４天２チを加えた斜面寒天培地で３
０℃６ Ｆ−１間生耐させたアセトバクター・アセチ・
ＩＦＯ−：（２８−１を上記の殺菌した培地に接種し３
００２日間損盪培養し種母とした。
０℃６ Ｆ−１間生耐させたアセトバクター・アセチ・
ＩＦＯ−：（２８−１を上記の殺菌した培地に接種し３
００２日間損盪培養し種母とした。
上記培地にそれぞれ単独に酵母エキス（Ｄｉｆｃ。
社製）０５０チ添加し−１４に調整した培地３５０ｍ１
をガラス製の気泡塔（全容ｉｓｏｏｍＪ）に無菌的に入
れ、また５ ０ ｍｌの種母をあわせて入れ、通気］
／Ｉ ＯＶＶｒ＋＋にて、３０℃で２週間静置培養した
。
をガラス製の気泡塔（全容ｉｓｏｏｍＪ）に無菌的に入
れ、また５ ０ ｍｌの種母をあわせて入れ、通気］
／Ｉ ＯＶＶｒ＋＋にて、３０℃で２週間静置培養した
。
ベレット状に生成したセルロース性物質を３２メンシユ
の網目にて回収し、洗浄をくり返して充分洗った凌１０
５℃で恒量になる甘で乾燥し測定した。その結果Ｂ 、
Ｃの生成仏は５９０■であった。
の網目にて回収し、洗浄をくり返して充分洗った凌１０
５℃で恒量になる甘で乾燥し測定した。その結果Ｂ 、
Ｃの生成仏は５９０■であった。
ｚＹ生
様物質をからみつき回収が１１雑であった。Ｂ、Ｃの生
産祉ケ混１定（２でみると３２０ ｍ９であった。通気
撹拌型培養槽の生産性は若干低下する程度であるが、セ
ルロース性の採取がむつかしく、−また付着した部分に
洗浄が不完全となり、コンタミネーションの危険も大き
いことが考えられる。気泡塔形Ｙ）ケ 式では、缶体へのセルロース様物質の付着もなく、深部
培養形式によ６セルロース生産ｆロセスに最適な方法と
考えられた。
産祉ケ混１定（２でみると３２０ ｍ９であった。通気
撹拌型培養槽の生産性は若干低下する程度であるが、セ
ルロース性の採取がむつかしく、−また付着した部分に
洗浄が不完全となり、コンタミネーションの危険も大き
いことが考えられる。気泡塔形Ｙ）ケ 式では、缶体へのセルロース様物質の付着もなく、深部
培養形式によ６セルロース生産ｆロセスに最適な方法と
考えられた。
実施例５
シュークロース５％、リン酸１カリウノ・０３係、硫酸
マグネシウム７水塩０．０５％、カザミノ酸（Ｄｉｆｃ
ｏ社’１％ ） ０．８ ％ ｐＨ５，０の組成培地５
１を］Ｏｌ容のミニツヤ−に仕込み１２０℃３０分殺菌
１５た。
マグネシウム７水塩０．０５％、カザミノ酸（Ｄｉｆｃ
ｏ社’１％ ） ０．８ ％ ｐＨ５，０の組成培地５
１を］Ｏｌ容のミニツヤ−に仕込み１２０℃３０分殺菌
１５た。
上記組成の培地に寒天２俤を加えた斜面培地で３０℃６
日間生１１させた、アセトバクター・アセチ・サブスピ
ーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１ｆ上記の殺菌し
た培地に接Ｆ這し；（０℃：３日間通気量１／４ ＶＶ
ｍ 、 ４２拌５００ ｒｐｍで培養し種母とした。
日間生１１させた、アセトバクター・アセチ・サブスピ
ーシス・キシリナムＡＴＣＣ１０８２１ｆ上記の殺菌し
た培地に接Ｆ這し；（０℃：３日間通気量１／４ ＶＶ
ｍ 、 ４２拌５００ ｒｐｍで培養し種母とした。
上記培地に酵母エキス０５チを加え１．１（４に調整し
た培地２５１を５０１容量の気泡塔に入ハ、１２０℃２
０分殺菌し、５１の種母をあわせて加え、通気量１／ｌ
ＯＶＶｍにて３０℃２週間培養した。
た培地２５１を５０１容量の気泡塔に入ハ、１２０℃２
０分殺菌し、５１の種母をあわせて加え、通気量１／ｌ
ＯＶＶｍにて３０℃２週間培養した。
４レツト状に生成したセルロース性物質は、缶体内に付
着することなく、ストレーナ−にて回収できた。捕集し
たセルロース性物質は、洗浄を繰返して行い、１０５℃
で恒量になるまで乾燥し測定した。
着することなく、ストレーナ−にて回収できた。捕集し
たセルロース性物質は、洗浄を繰返して行い、１０５℃
で恒量になるまで乾燥し測定した。
その結果、セルロース性物質は１０５ｇ得られた。
実施例６
シュークロース５％、リン酸ｌカリウム０．３％。
硫酸マグネシウム７水塩０．０５％、カブミノ酸（Ｄｌ
ｆｃｏ社農）ｏ、ｓ％をｐｉ（５，０に調整した培地５
１を１０１容ミニツヤ−に仕込み、１２０℃、２０分殺
菌した。
ｆｃｏ社農）ｏ、ｓ％をｐｉ（５，０に調整した培地５
１を１０１容ミニツヤ−に仕込み、１２０℃、２０分殺
菌した。
上記組成の培地に寒天２チを加えた斜面培地で３０℃６
日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブスピーシ
スキシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌した培地
に接種し３０℃３日間通気ｉ［１／Ｉ ＶＶｍ、攪拌数
５０ Ｏｒｐｍで培養し、種母とした。
日間生育させたアセトバクター・アセチ・サブスピーシ
スキシリナムＡＴＣＣ１０８２１を上記の殺菌した培地
に接種し３０℃３日間通気ｉ［１／Ｉ ＶＶｍ、攪拌数
５０ Ｏｒｐｍで培養し、種母とした。
上記培地に酵母エキス０．５％を加え、ｐｉ１４に調整
した培地２５１を５０１容量の気泡塔（図３）に入れ１
２０℃２０分殺菌し、５１の種母とあわせて、通気量ｉ
／１ｏ ＶＶｍにて３０℃でアンモニアにてｐＨを４０
に制御し３週間培養した。
した培地２５１を５０１容量の気泡塔（図３）に入れ１
２０℃２０分殺菌し、５１の種母とあわせて、通気量ｉ
／１ｏ ＶＶｍにて３０℃でアンモニアにてｐＨを４０
に制御し３週間培養した。
被レット状に生成したセルロース性物質の捕集はしごき
ポンプにて培養液を循環し、３２メツシユのストレーナ
ｐＨを２個並列に設置し、これを交互に用いる事により
連続的に取上げた。ストレーナから捕集したセルロース
性物質の取出しはストレーナ−の入口と出口の差圧が０
．２〜０．３ ｋｇ７ｃｍになった時点とした。また、
取出した後のストレーナ−は蒸気殺菌をおこない無菌状
態にしてふたたび使用した。
ポンプにて培養液を循環し、３２メツシユのストレーナ
ｐＨを２個並列に設置し、これを交互に用いる事により
連続的に取上げた。ストレーナから捕集したセルロース
性物質の取出しはストレーナ−の入口と出口の差圧が０
．２〜０．３ ｋｇ７ｃｍになった時点とした。また、
取出した後のストレーナ−は蒸気殺菌をおこない無菌状
態にしてふたたび使用した。
セルロース性物質を取上げた時点に上記培地に酵母エキ
ス０．５％を加え、ｐ）１４に調整した培地と種母を１
０チを加えた液を、始発液量となる様に無菌的に添加し
連続的に培養した。
ス０．５％を加え、ｐ）１４に調整した培地と種母を１
０チを加えた液を、始発液量となる様に無菌的に添加し
連続的に培養した。
この結果、生成した４レツト状セルロース性物質は、連
続的に取上げることが出来た。捕集したセルロース性物
質は、洗浄を繰返して行い、１０５℃で恒量になるまで
乾燥し測定した。
続的に取上げることが出来た。捕集したセルロース性物
質は、洗浄を繰返して行い、１０５℃で恒量になるまで
乾燥し測定した。
その結果セルロース性物質の生成量は１２１ｇであった
。
。
実施例７
シュークロース５チ、リン酸１カリウム０．３％、硫酸
マグネシウム７水塩０．０５％、カブミノ酸（ＤｉｆＰ
ｏ社Ｈ） ｏ、 ８ ％を−１５０に調整した培地５１
を１０１容量のミニジャーに仕込み１２０℃２０分殺菌
した。
マグネシウム７水塩０．０５％、カブミノ酸（ＤｉｆＰ
ｏ社Ｈ） ｏ、 ８ ％を−１５０に調整した培地５１
を１０１容量のミニジャーに仕込み１２０℃２０分殺菌
した。
上記組成の培地に寒天２％を加えた斜面培地で３０℃６
日間生育させたアセトバクター・アセテ・ム サブスピーシス・キシリナ＋ＡＴＣＣ１０８２１を上記
の殺菌した培地に接種し３０℃３日間通気ｉ１１／ＩＶ
Ｖｍ 、攪拌数５００ ｒｐｍで培養し種母とした。
日間生育させたアセトバクター・アセテ・ム サブスピーシス・キシリナ＋ＡＴＣＣ１０８２１を上記
の殺菌した培地に接種し３０℃３日間通気ｉ１１／ＩＶ
Ｖｍ 、攪拌数５００ ｒｐｍで培養し種母とした。
上記培地に酵母エキス０５チを加えＰｊｌ ４に調整し
た培地２５１を５０１容量の気泡塔（図４）に入れ１２
０℃２０分殺菌し、５１の種母とあわせて通’Ａ ｆｆ
１／］ ＯＶＶｒｎにで３０℃でアンモニアにてｐＨ
を４．ＯＫ副制御３週間培養した。
た培地２５１を５０１容量の気泡塔（図４）に入れ１２
０℃２０分殺菌し、５１の種母とあわせて通’Ａ ｆｆ
１／］ ＯＶＶｒｎにで３０℃でアンモニアにてｐＨ
を４．ＯＫ副制御３週間培養した。
ベレット状に生成した、セルロース性物質の捕集はしご
きポンプにて培養液を沈降分離槽に導びきセルロース性
物質を沈降させる。沈降分離槽上部よシ、培養液をポン
プを用いて気泡塔へ戻し循環した。
きポンプにて培養液を沈降分離槽に導びきセルロース性
物質を沈降させる。沈降分離槽上部よシ、培養液をポン
プを用いて気泡塔へ戻し循環した。
出弁より糸外へ取出した。系外セルロース性物質を取出
した時点に、上記培地に酵母エキス５％を加えた培地ｐ
Ｈ４と種母を１０俤を加えた液を始発液量となる様に無
菌的に添加し、連続的に培養を続けた。この結果、生成
したベレット状セルロース性物質は連続的に取上げるこ
とが出来た。
した時点に、上記培地に酵母エキス５％を加えた培地ｐ
Ｈ４と種母を１０俤を加えた液を始発液量となる様に無
菌的に添加し、連続的に培養を続けた。この結果、生成
したベレット状セルロース性物質は連続的に取上げるこ
とが出来た。
捕集したセルロース性物質は、洗浄を繰返して行い、１
０５℃で恒量になる壕で乾燥し測定した。
０５℃で恒量になる壕で乾燥し測定した。
その結果、セルロース性物質の生成量は１１６ｇであっ
た。
た。
図１は本発明で使用する気泡塔の一種であるガラス調気
泡塔を図示したものである。 図２は小１観がラスツヤｐＨを用いてセルロース性物質
を生産させた状態を図示したものである。 図３は本発明で使用する気泡塔を図示したものである。 図４は本発明で使用する気泡塔を図示しだものである。 五Ｉｕ’ｌｉ暑−・・：゛・夏−り７：Ｎ（：、ｊＩこ
云？にｌ ｊ ■２ 衝 ４ 誦菊１先
泡塔を図示したものである。 図２は小１観がラスツヤｐＨを用いてセルロース性物質
を生産させた状態を図示したものである。 図３は本発明で使用する気泡塔を図示したものである。 図４は本発明で使用する気泡塔を図示しだものである。 五Ｉｕ’ｌｉ暑−・・：゛・夏−り７：Ｎ（：、ｊＩこ
云？にｌ ｊ ■２ 衝 ４ 誦菊１先
Claims (1)
- １）アセトバクター属に属しセルロース性物質生産能を
有する微生物を液体培地を入れた気泡塔型培養槽に接種
し、気泡塔に空気を通気しつつ、培養液中のｐＨを３．
０ないしｐＨ６．０に調整しつつ培養を行ない該培養液
中にセルロース性物質を生成・蓄積せしめ、この物質を
採取することを特徴とするセルロース性物質の製造方法
。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60228219A JPS6287099A (ja) | 1985-10-14 | 1985-10-14 | 微生物によるセルロ−ス性物質の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60228219A JPS6287099A (ja) | 1985-10-14 | 1985-10-14 | 微生物によるセルロ−ス性物質の製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6287099A true JPS6287099A (ja) | 1987-04-21 |
| JPH0568235B2 JPH0568235B2 (ja) | 1993-09-28 |
Family
ID=16873042
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60228219A Granted JPS6287099A (ja) | 1985-10-14 | 1985-10-14 | 微生物によるセルロ−ス性物質の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6287099A (ja) |
Cited By (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0323717A2 (en) * | 1988-01-06 | 1989-07-12 | Zeneca Limited | Process for the production of microbial cellulose |
| US4863565A (en) * | 1985-10-18 | 1989-09-05 | Weyerhaeuser Company | Sheeted products formed from reticulated microbial cellulose |
| JPH01243997A (ja) * | 1988-03-25 | 1989-09-28 | Ajinomoto Co Inc | 微生物セルロースの産生方法 |
| US5079162A (en) * | 1986-08-28 | 1992-01-07 | Weyerhaeuser Company | Reticulated cellulose and methods and microorganisms for the production thereof |
| US5144021A (en) * | 1985-10-18 | 1992-09-01 | Weyerhaeuser Company | Reticulated cellulose and methods and microorganisms for the production thereof |
| WO1996033222A1 (fr) * | 1995-04-18 | 1996-10-24 | Bio-Polymer Research Co., Ltd. | Nouvelles bacteries generatrices de cellulose |
| US5821109A (en) * | 1985-10-18 | 1998-10-13 | Monsanto Life Sciences Co. | Reticulated cellulose and methods and microorganisms for the production thereof |
| US5871978A (en) * | 1985-10-18 | 1999-02-16 | Monsanto Life Sciences Co | Method of producing reticulated cellulose having type II crystalline cellulose |
| WO2008026295A1 (fr) * | 2006-09-01 | 2008-03-06 | Toyo Shinyaku Co., Ltd. | Support |
| JP2008113590A (ja) * | 2006-11-02 | 2008-05-22 | Univ Kansai | アミノ脂質の製造方法 |
-
1985
- 1985-10-14 JP JP60228219A patent/JPS6287099A/ja active Granted
Cited By (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5821109A (en) * | 1985-10-18 | 1998-10-13 | Monsanto Life Sciences Co. | Reticulated cellulose and methods and microorganisms for the production thereof |
| US4863565A (en) * | 1985-10-18 | 1989-09-05 | Weyerhaeuser Company | Sheeted products formed from reticulated microbial cellulose |
| US6429002B1 (en) | 1985-10-18 | 2002-08-06 | Cp Kelco U.S., Inc. | Reticulated cellulose producing acetobacter strains |
| US6329192B1 (en) | 1985-10-18 | 2001-12-11 | Cp Kelco U.S., Inc. | Reticulated cellulose and methods of microorganisms for the production thereof |
| US5144021A (en) * | 1985-10-18 | 1992-09-01 | Weyerhaeuser Company | Reticulated cellulose and methods and microorganisms for the production thereof |
| US5871978A (en) * | 1985-10-18 | 1999-02-16 | Monsanto Life Sciences Co | Method of producing reticulated cellulose having type II crystalline cellulose |
| US5079162A (en) * | 1986-08-28 | 1992-01-07 | Weyerhaeuser Company | Reticulated cellulose and methods and microorganisms for the production thereof |
| EP0323717A2 (en) * | 1988-01-06 | 1989-07-12 | Zeneca Limited | Process for the production of microbial cellulose |
| JP2797308B2 (ja) * | 1988-03-25 | 1998-09-17 | 味の素株式会社 | 微生物セルロースの産生方法 |
| JPH01243997A (ja) * | 1988-03-25 | 1989-09-28 | Ajinomoto Co Inc | 微生物セルロースの産生方法 |
| WO1996033222A1 (fr) * | 1995-04-18 | 1996-10-24 | Bio-Polymer Research Co., Ltd. | Nouvelles bacteries generatrices de cellulose |
| WO2008026295A1 (fr) * | 2006-09-01 | 2008-03-06 | Toyo Shinyaku Co., Ltd. | Support |
| JP2008113590A (ja) * | 2006-11-02 | 2008-05-22 | Univ Kansai | アミノ脂質の製造方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0568235B2 (ja) | 1993-09-28 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |