JPS6257311B2 - - Google Patents
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- JPS6257311B2 JPS6257311B2 JP17872681A JP17872681A JPS6257311B2 JP S6257311 B2 JPS6257311 B2 JP S6257311B2 JP 17872681 A JP17872681 A JP 17872681A JP 17872681 A JP17872681 A JP 17872681A JP S6257311 B2 JPS6257311 B2 JP S6257311B2
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明は、光学活性炭素骨格を有する種々の天
然物または医薬品等の生理活性物質を合成する際
に有用な原料の1つである光学活性なD(−)―
β―ヒドロキシイソ酪酸の、微生物を利用した工
業的に有利な製造方法に関するものである。 従来、光学活性なD(−)―β―ヒドロキシイ
ソ酪酸の調製方法として光学活性アミン類などの
ような分割剤を用いてDL(±)―β―ヒドロキ
シイソ酪酸を光学分割する方法、2―メチル―
1,3―プロパンジオールより酢酸菌を用いて不
斉酸化により得る方法等があるが、これらはいづ
れも収率および製造費用の面から、とうてい工業
的に行ないうるものではない。 先に本発明者等は、イソ酵酸あるいはメタクリ
ル酸を原料として、微生物による工業的に有利な
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の製造法を確
立した(公開昭56―68394、公開昭56―68395等)
が、更に研究を重ねた結果、イソ酪酸やメタクリ
ル酸より更に安価なイソブチルアルコールから微
生物によりD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸を
製造しうることを見い出し本発明を完成した。 即ち、本発明はイソブチルアルコールに、この
ものをD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸に変換
する能力を有するキヤンデイダ属、ピキア属、ト
ルロプシス属、アスペルギルス属、コアネホラ
属、ウエンゲア属、またはチゴリンカス属に属す
る微生物を作用せしめ、生成したD(−)―β―
ヒドロキシイソ酪酸を採取することを特徴とする
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の製造法に関
するものである。 本発明に使用されるイソブチルアルコールをD
(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸へ変換する能力
を有する微生物としてはキヤンデイダ・ルゴーザ
(Candida rugosa)、キヤンデイダ・パラプシロ
シス(Candida parapsilosis)、ピキア・メンブ
ランアエフアシエンス
(Pichiamembranaefaciens)、トルロプシス・キ
ヤンデイダ(Torulopsis candida)、アスペルギ
ルス・ニガー(Aspergillus niger)、コアネホ
ラ・シルミナンス(Choanephora circinans)、
チゴリンカス・モエレリイ(Zygorhynchus
moelleri)等があり、これらの培養には通常これ
らの菌が資化しうる栄養源ならなんでも使用しう
る。例えば炭素源としてグルコース、シユクロー
ス、マニトール等の炭水化物;エタノールを始め
とするアルコール類;パラフイン、オレフイン類
の炭化水素;酢酸等の有機酸類;大豆油等の単独
又はこれらの混合物、窒素源として硫酸アンモニ
ウム、リン酸アンモニウム等、有機栄養源として
イーストエキス、麦芽エキス、肉エキス、ペプト
ン等、また微量金属塩、ビタミン等、通常の培養
に用いられる栄養源を適宜混合した培地を用いる
ことができる。培養の方法としては、栄養培地の
PHを4.0〜9.5の範囲で好気的に15〜40℃の範囲で
1〜5日間培養する。 イソブチルアルコールから、D(−)―β―ヒ
ドロキシイソ酪酸への変換にはPH6.0〜9.5のPH範
囲が好ましい。また微生物をイソブチルアルコー
ルに作用させる方法としては、菌体の培養と並行
して行なう方法として、例えばイソブチルアルコ
ールと上記の炭素源との共存下でPH4.0〜9.5の範
囲で好気的に培養し、培養液中にD(−)―β―
ヒドロキシイソ酪酸を蓄積させる方法があり、ま
た菌体の培養とイソブチルアルコールからD
(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸への変換反応を
2段階に分けて行なう方法、例えば菌体の生産を
栄養培地でPH4.0〜9.5の範囲で好気的に培養し、
得られた培養液にイソブチルアルコールを添加
し、PHを6.0〜9.5に保持して好気的に反応させる
方法、又は得られた培養液から遠心分離等で菌体
を集め、菌体を適当な組成の液、例えばM/15リ
ン酸緩衝液(PH7.0)に懸濁し、イソブチルアル
コールを加え、好気的でPH6.0〜9.5の範囲で反応
を行なう方法がある。この場合、菌体はアルギン
酸ソーダ等による固定化を行なつたものも使用で
きる。 培養及び反応で得られたD(−)―β―ヒドロ
キシイソ酪酸の採取方法としては、通常の公知の
抽出精製方法が利用しうるが、得られたD(−)
―β―ヒドロキシイソ酪酸含有液のPHを硫酸等で
2.0付近まで下げ、更に飽和となるまで硫酸アン
モニウムを加える。しかる後、等量の酢酸エチル
で3回抽出を行なう。これを減圧下溶剤を除くと
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸含有物が褐色
油状で得られる。更にこのものを少量のベンゼン
に溶解しベンゼン―アセトン混合溶剤で溶出する
シリカゲルカラムクロマトグラフイーを行なうこ
とにより容易に不純物と分離することができる。
また生成D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の定
量は、シマズFAL―M10%/シマライト カラ
ムを用いるガスクロマトグラフイーにより容易に
行なうことができる(長谷川等、ジヤーナル・オ
ブ・フアーメンテーシヨン・テクノロジー59,
203(1981))。 次に本発明を実施例によつて説明するが、本発
明は実施例のみに限定されるものではない。 実施例 1 グルコース2%、イーストエキス0.5%、ペプ
トン0.3%、肉エキス0.3%、イソブチルアルコー
ル0.5%を含有する培地(PH7.0)1にキヤンデ
イダ・ルゴーザIFO 0750、キヤンデイダ・パラ
プシロシスIFO 0708、ピキア・メンブランアエ
フアシエンスIAM4904、トルロプシス・キヤン
デイダIFO 0380、アスペルギルス・ニガ―
IAM2532、コアネホラ・シルシナンス
HUT1324、ウインゲア・ロベルツイIFO 1277、
チゴリンカス・モエレリイHUT1305、をそれぞ
れ植菌し、3容ミニジヤーフアメンターで30
℃、通気1vvm、撹拌500rpmで20時間培養した。
その後PHを7.0に維持し、更に24時間培養を行な
つた。 このようにして得た培養液中のD(−)―β―
ヒドロキシイソ酪酸の含有量をガスクロマトグラ
フイーで分析した結果を表に示す。
然物または医薬品等の生理活性物質を合成する際
に有用な原料の1つである光学活性なD(−)―
β―ヒドロキシイソ酪酸の、微生物を利用した工
業的に有利な製造方法に関するものである。 従来、光学活性なD(−)―β―ヒドロキシイ
ソ酪酸の調製方法として光学活性アミン類などの
ような分割剤を用いてDL(±)―β―ヒドロキ
シイソ酪酸を光学分割する方法、2―メチル―
1,3―プロパンジオールより酢酸菌を用いて不
斉酸化により得る方法等があるが、これらはいづ
れも収率および製造費用の面から、とうてい工業
的に行ないうるものではない。 先に本発明者等は、イソ酵酸あるいはメタクリ
ル酸を原料として、微生物による工業的に有利な
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の製造法を確
立した(公開昭56―68394、公開昭56―68395等)
が、更に研究を重ねた結果、イソ酪酸やメタクリ
ル酸より更に安価なイソブチルアルコールから微
生物によりD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸を
製造しうることを見い出し本発明を完成した。 即ち、本発明はイソブチルアルコールに、この
ものをD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸に変換
する能力を有するキヤンデイダ属、ピキア属、ト
ルロプシス属、アスペルギルス属、コアネホラ
属、ウエンゲア属、またはチゴリンカス属に属す
る微生物を作用せしめ、生成したD(−)―β―
ヒドロキシイソ酪酸を採取することを特徴とする
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の製造法に関
するものである。 本発明に使用されるイソブチルアルコールをD
(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸へ変換する能力
を有する微生物としてはキヤンデイダ・ルゴーザ
(Candida rugosa)、キヤンデイダ・パラプシロ
シス(Candida parapsilosis)、ピキア・メンブ
ランアエフアシエンス
(Pichiamembranaefaciens)、トルロプシス・キ
ヤンデイダ(Torulopsis candida)、アスペルギ
ルス・ニガー(Aspergillus niger)、コアネホ
ラ・シルミナンス(Choanephora circinans)、
チゴリンカス・モエレリイ(Zygorhynchus
moelleri)等があり、これらの培養には通常これ
らの菌が資化しうる栄養源ならなんでも使用しう
る。例えば炭素源としてグルコース、シユクロー
ス、マニトール等の炭水化物;エタノールを始め
とするアルコール類;パラフイン、オレフイン類
の炭化水素;酢酸等の有機酸類;大豆油等の単独
又はこれらの混合物、窒素源として硫酸アンモニ
ウム、リン酸アンモニウム等、有機栄養源として
イーストエキス、麦芽エキス、肉エキス、ペプト
ン等、また微量金属塩、ビタミン等、通常の培養
に用いられる栄養源を適宜混合した培地を用いる
ことができる。培養の方法としては、栄養培地の
PHを4.0〜9.5の範囲で好気的に15〜40℃の範囲で
1〜5日間培養する。 イソブチルアルコールから、D(−)―β―ヒ
ドロキシイソ酪酸への変換にはPH6.0〜9.5のPH範
囲が好ましい。また微生物をイソブチルアルコー
ルに作用させる方法としては、菌体の培養と並行
して行なう方法として、例えばイソブチルアルコ
ールと上記の炭素源との共存下でPH4.0〜9.5の範
囲で好気的に培養し、培養液中にD(−)―β―
ヒドロキシイソ酪酸を蓄積させる方法があり、ま
た菌体の培養とイソブチルアルコールからD
(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸への変換反応を
2段階に分けて行なう方法、例えば菌体の生産を
栄養培地でPH4.0〜9.5の範囲で好気的に培養し、
得られた培養液にイソブチルアルコールを添加
し、PHを6.0〜9.5に保持して好気的に反応させる
方法、又は得られた培養液から遠心分離等で菌体
を集め、菌体を適当な組成の液、例えばM/15リ
ン酸緩衝液(PH7.0)に懸濁し、イソブチルアル
コールを加え、好気的でPH6.0〜9.5の範囲で反応
を行なう方法がある。この場合、菌体はアルギン
酸ソーダ等による固定化を行なつたものも使用で
きる。 培養及び反応で得られたD(−)―β―ヒドロ
キシイソ酪酸の採取方法としては、通常の公知の
抽出精製方法が利用しうるが、得られたD(−)
―β―ヒドロキシイソ酪酸含有液のPHを硫酸等で
2.0付近まで下げ、更に飽和となるまで硫酸アン
モニウムを加える。しかる後、等量の酢酸エチル
で3回抽出を行なう。これを減圧下溶剤を除くと
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸含有物が褐色
油状で得られる。更にこのものを少量のベンゼン
に溶解しベンゼン―アセトン混合溶剤で溶出する
シリカゲルカラムクロマトグラフイーを行なうこ
とにより容易に不純物と分離することができる。
また生成D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の定
量は、シマズFAL―M10%/シマライト カラ
ムを用いるガスクロマトグラフイーにより容易に
行なうことができる(長谷川等、ジヤーナル・オ
ブ・フアーメンテーシヨン・テクノロジー59,
203(1981))。 次に本発明を実施例によつて説明するが、本発
明は実施例のみに限定されるものではない。 実施例 1 グルコース2%、イーストエキス0.5%、ペプ
トン0.3%、肉エキス0.3%、イソブチルアルコー
ル0.5%を含有する培地(PH7.0)1にキヤンデ
イダ・ルゴーザIFO 0750、キヤンデイダ・パラ
プシロシスIFO 0708、ピキア・メンブランアエ
フアシエンスIAM4904、トルロプシス・キヤン
デイダIFO 0380、アスペルギルス・ニガ―
IAM2532、コアネホラ・シルシナンス
HUT1324、ウインゲア・ロベルツイIFO 1277、
チゴリンカス・モエレリイHUT1305、をそれぞ
れ植菌し、3容ミニジヤーフアメンターで30
℃、通気1vvm、撹拌500rpmで20時間培養した。
その後PHを7.0に維持し、更に24時間培養を行な
つた。 このようにして得た培養液中のD(−)―β―
ヒドロキシイソ酪酸の含有量をガスクロマトグラ
フイーで分析した結果を表に示す。
【表】
IAMは東京大学応用微生物研究所有用菌株保
存施設(東京都文京区弥生1丁目1番1号)に、
HUTは広島大学工学部醗酵工学科菌株保存施設
(東広島市西条町下見)に、夫々保存されている
菌株である。 得られた培養液を遠心分離で菌体を除去後、
200mlに減圧濃縮し、硫酸でPH1.0とし、更に硫酸
アンモニウムを飽和溶液とした。次に2倍量の酢
酸エチルで抽出し、これを減圧下、50℃以下で溶
剤を除去し黄色油状物質を得た。 この油状物質を重量の5倍量のシリカゲル(ワ
コーゲルQ―50)を用いベンゼンで調製したカラ
ムにかけた。その後、ベンゼン:アセトン(3:
1)溶剤でD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸を
溶出した。 得られたD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸画
分を集め、減圧下で溶剤を除去し、メタノールに
溶解後、その旋光度を測定した結果夫々〔α〕25 D
=−15.1〜18.0゜(C=3,メタノール)の値を
得、D(−)体のβ―ヒドロキシイソ酪酸である
ことが確認された。 実施例 2 グルコース2%、イーストエキス0.5%、ペプ
トン0.3%、肉エキス0.3%を含有する培地(PH
7.0)1にキヤンデイダ・ルゴーザIFO0750を
植菌し、3容ミニジヤーフアメンターで30℃、
通気1vvm、撹拌500rpmで20時間培養した。その
後、遠心分離によつて菌体を集め、1%イソブチ
ルアルコール、1%グルコース含有M/15リン酸
緩衝液(PH7.0)に懸濁し、PHを7.0にカセイソー
ダで維持しながら培養と同一条件で反応を24時間
行なつた。その後、更に10gのイソブチルアルコ
ールを添加し、24時間反応を行つた。このように
して得た培養液中のD(−)―β―ヒドロキシイ
ソ酪酸の含有量をガスクロマトグラフイーで分析
した結果、9.2mg/mlのD(−)―β―ヒドロキ
シイソ酪酸の蓄積が認められた。更に実施例1と
同様にD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の蓄積
が認められた。更に実施例1と同様にD(−)―
β―ヒドロキシイソ酪酸をを精製し、旋光度を測
定した結果〔α〕25 D=−17.7゜(C=3,メタノ
ール)を示し、D(−)体のβ―ヒドロキシイソ
酪酸であることが確認された。 本実施例において、培養液から菌体を分離する
ことなしに、培養液に直接イソブチルアルコール
を添加して反応させた場合においてもほぼ同量の
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の蓄積が認め
られた。
存施設(東京都文京区弥生1丁目1番1号)に、
HUTは広島大学工学部醗酵工学科菌株保存施設
(東広島市西条町下見)に、夫々保存されている
菌株である。 得られた培養液を遠心分離で菌体を除去後、
200mlに減圧濃縮し、硫酸でPH1.0とし、更に硫酸
アンモニウムを飽和溶液とした。次に2倍量の酢
酸エチルで抽出し、これを減圧下、50℃以下で溶
剤を除去し黄色油状物質を得た。 この油状物質を重量の5倍量のシリカゲル(ワ
コーゲルQ―50)を用いベンゼンで調製したカラ
ムにかけた。その後、ベンゼン:アセトン(3:
1)溶剤でD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸を
溶出した。 得られたD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸画
分を集め、減圧下で溶剤を除去し、メタノールに
溶解後、その旋光度を測定した結果夫々〔α〕25 D
=−15.1〜18.0゜(C=3,メタノール)の値を
得、D(−)体のβ―ヒドロキシイソ酪酸である
ことが確認された。 実施例 2 グルコース2%、イーストエキス0.5%、ペプ
トン0.3%、肉エキス0.3%を含有する培地(PH
7.0)1にキヤンデイダ・ルゴーザIFO0750を
植菌し、3容ミニジヤーフアメンターで30℃、
通気1vvm、撹拌500rpmで20時間培養した。その
後、遠心分離によつて菌体を集め、1%イソブチ
ルアルコール、1%グルコース含有M/15リン酸
緩衝液(PH7.0)に懸濁し、PHを7.0にカセイソー
ダで維持しながら培養と同一条件で反応を24時間
行なつた。その後、更に10gのイソブチルアルコ
ールを添加し、24時間反応を行つた。このように
して得た培養液中のD(−)―β―ヒドロキシイ
ソ酪酸の含有量をガスクロマトグラフイーで分析
した結果、9.2mg/mlのD(−)―β―ヒドロキ
シイソ酪酸の蓄積が認められた。更に実施例1と
同様にD(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の蓄積
が認められた。更に実施例1と同様にD(−)―
β―ヒドロキシイソ酪酸をを精製し、旋光度を測
定した結果〔α〕25 D=−17.7゜(C=3,メタノ
ール)を示し、D(−)体のβ―ヒドロキシイソ
酪酸であることが確認された。 本実施例において、培養液から菌体を分離する
ことなしに、培養液に直接イソブチルアルコール
を添加して反応させた場合においてもほぼ同量の
D(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸の蓄積が認め
られた。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 イソブチルアルコールに、このものをD
(−)―β―ヒドロキシイソ酪酸に変換する能力
を有するキヤンデイダ属、ピキア属、トルロプシ
ス属、アスペルギルス属、コアネホラ属、ウイン
ゲア属、またはチゴリンカス属に属する微生物を
作用せしめ、生成したD(−)―β―ヒドロキシ
イソ酪酸を採取することを特徴とするD(−)―
β―ヒドロキシイソ酪酸の製造法。 2 微生物がキヤンデイダ・ルゴーザ、キヤンデ
イダ・パラプシロシス、ピキア・メンブランアエ
フアシエンス、トルロプシス・キヤンデイダ、ア
スペルギルス・ニガー、コアネホラ・シルシナン
ス、ウインゲア・ロベルツイあるいはチゴリンカ
ス・モエレリイである特許請求の範囲第1項記載
の製造法。 3 イソブチルアルコールを添加した培地で微生
物を培養することにより、微生物をイソブチルア
ルコールに作用させる特許請求の範囲第1項記載
の製造法。 4 微生物を栄養培地で培養して得た培養液から
微生物菌体を分離して、菌体懸濁液を調製し、そ
れをイソブチルアルコールに作用させる特許請求
の範囲第1項記載の製造法。 5 微生物を栄養培地で培養して得た培養液にイ
ソブチルアルコールを添加し、作用させる特許請
求の範囲第1項記載の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17872681A JPS5878593A (ja) | 1981-11-06 | 1981-11-06 | D(−)−β−ヒドロキシイソ酪酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17872681A JPS5878593A (ja) | 1981-11-06 | 1981-11-06 | D(−)−β−ヒドロキシイソ酪酸の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5878593A JPS5878593A (ja) | 1983-05-12 |
JPS6257311B2 true JPS6257311B2 (ja) | 1987-11-30 |
Family
ID=16053494
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP17872681A Granted JPS5878593A (ja) | 1981-11-06 | 1981-11-06 | D(−)−β−ヒドロキシイソ酪酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5878593A (ja) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA1239361A (en) * | 1984-01-27 | 1988-07-19 | Robert S. Robison | METHOD OF PREPARING D(-)-.beta.-HYDROXYISOBUTYRIC ACID BY FERMENTATION |
-
1981
- 1981-11-06 JP JP17872681A patent/JPS5878593A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS5878593A (ja) | 1983-05-12 |
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