JPS6253147B2 - - Google Patents
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は血球を溶解し、得た溶液から所望の酵
素を単離することによつて血液から酵素を回収す
る方法に関する。 得ることができる酵素のうちには特にCu、Zn
−スーパーオキサイドデイスムターゼ(SOD)
およびカタラーゼがあるが、またたとえば炭酸ア
ンヒドラーゼも回収することができる。 デンマーク特許第132864号明細書は哺乳動物血
液、特に牛血液からSODを回収する方法を開示
する。その方法はデカンテーシヨンもしくは遠心
分離により血漿を除去した血球を、任意には少量
の界面活性剤を含む冷イオン除去水により溶解
し、そしてエタノールのような水混合性有機溶媒
の存在下にクロロホルムのようなハロゲン化有機
溶媒により、もしくは5℃以下の温度で硫酸アン
モニウムにより溶血物を沈澱させる工程より成
る。沈澱は1回もしくは数回イオン除去水で洗滌
し、合せた上澄液は熱不安定性たん白、特にカル
ボン酸アンヒドラーゼを変性させるために0.69〜
0.80Åの原子半径を有する2価金属イオンを含む
緩衝溶液の存在下に60〜65℃に加熱した。室温以
下に急速冷却後沈澱たん白は過および遠心分離
により除去し、SOD含有溶液はイオン交換クロ
マトグラフイ、分取電気泳動および/もしくはゲ
ル過により精製した。その方法は充填赤血球を
規準にして約0.01%(重量/容量)のSODの収量
を供することを報告する。 その方法における加熱工程をK2HPO4およびア
セトンによる分別に置き換え、その後分別可溶性
たん白の活性部分をPH7.4でジエチルアミノエチ
ルセルロース(DEAEセルロース)上でクロマト
グラフして、充填ウシ血球から本SOD活性の60
%に相当する3300ユニツト/mgの活性を有する
0.006%(重量/容積)のSODの収量を得た。 しかし、その多工程方法は、一部はその方法を
複雑化する多工程のために、一部は多量の有機溶
媒および任意にはK2HPO4を使用する必要がある
ために商業規模では有用ではない。 デンマーク特許第133246号明細書によればヘモ
グロビンの沈澱をクロロホルムおよび/もしくは
エタノールで除き、(a)溶血物を約6のPH値および
約0.01M以下のイオン強度に調整してカルボン酸
アンヒドラーゼを除去するためにK2HPO4および
アセトンにより分別し、その溶液を弱い塩基性基
を有するイオン交換樹脂、好ましくはDEAEセル
ロースのカラムを通して樹脂上にSODを吸着さ
せ、(b)同じPHおよびイオン強度の緩衝塩溶液によ
りカラムを洗滌してヘモグロビンを除去し、そし
て(c)5.7〜6.3のPH値および約0.02M以下から約
0.03M以上に徐々に、もしくは一歩づつの勾配で
増加するイオン強度を有する水性媒体で吸着
SODをカラムから溶離させ、SODはA265〜A280の
吸着値の比が最高に達する最初のイオン強度に始
まり、CuおよびZn含有およびA265〜A280比が同
時に減少する最初のイオン強度に終る溶離物のフ
ラクシヨンから溶離することが試みられた。この
方法は0.01〜0.013%(重量/容積)の充填赤血
球から2500ユニツト/mgもしくは溶血物の初めの
全SOD活性のほとんど75%と同じ活性を有する
SODの収量を得ることが報告される。しかし、
この方法は大量の液のクロマトグラフイより成
り、相当する大量のクロマトグラフイカラムを必
要とするので商業規模では有用ではない。更にク
ロマトグラフイされる98.8%より多いたん白はカ
ラムの寿命およびクロマトグラフイ速度を減少さ
せ、望ましくないたん白である。 デンマーク特許第139914号明細書ではクロロホ
ルム/エタノールによるヘモグロビンの沈澱およ
びカルボン酸アンヒドラーゼを除去するための
K2HPO4およびアセトンによる分別は、PH5〜8
の溶血物を60〜80℃の温度に加熱し、ヘモグロビ
ンと共にカルボン酸アンヒドラーゼおよび他の熱
不安定性たん白を沈澱させる単一加熱工程により
置換され、そして次に混合物を冷却し、沈澱たん
白を分離し、SODはたとえばアセトンによる沈
澱、もしくは好ましくは上記方法と同一条件で
DEAEセルロース上でイオン交換クロマトグラフ
イによる上澄液から単離される。これは勿論工程
を簡畧化する。しかし、それでも尚満足できな
い。何故ならばSODのロスが加熱工程で起こる
からである。その特許は加熱沈澱後40〜50回の精
製および出発血液に含まれるものの70〜90%の
SODの収量を報告する。 BriggsおよびFee(Biochem.et Bio hys.
Acta537、1978、86〜99頁)はヘモグロビンおよ
び熱不安定性たん白の沈澱を、最初にPH6でカル
ボキシメチルセルロース(CMセルロース)によ
り、次に約中性までのPHの調整下に混合ベツドイ
オン交換器による溶血物のバツチ処理で置換す
る。生成混合物はDEAEセルロースで処理し、そ
れをカラムに移し、最初に大量の2mMリン酸ソ
ーダ緩衝液で洗滌し、次に0.1Mリン酸ソーダ緩
衝液で溶離しそして活性フラクシヨンを集めた。
これらを組み合せ再度混合ベツドイオン交換剤お
よびCMセルロースでそれぞれバツチ処理して更
に随伴たん白を除去する。SOD含有溶液は再び
DEAEセルロースカラムに適用し、2〜100mM
のリン酸ソーダ緩衝液の直線勾配で溶離し、そし
て活性フラクシヨンを集め、限外過により濃縮
し、「Biogel P−100」上でゲル過した。クロ
マトグラフイおよびゲル過は反復し、純粋標品
を得た。 この方法は多工程により非常に複雑であり、且
過剰に大量のイオン交換剤が、たとえば、最初の
精製工程で2の溶血物に対し2.5KgのCMセルロ
ースおよび0.5Kgの混合ベツドイオン交換剤が使
用されるので商業規模で使用するには総じて不適
である。更に、この方法におけるSODの収量は
理論的収量の僅か21%であり、CMセルロース精
製工程において既に全SOD活性の約25%のロス
がある。それは同時係属出願デンマーク特許第第
1687/80号明細書に記載の発明がすなわちカルボ
キシメチルセルロースは4.7〜5.5のPHで完全に
SODを吸着することができることに基づく最近
の発見に微して不思議ではない。 今日まで血液からSODの回収に実際に使用さ
れた唯一の方法は、溶血物をクロロホルム/エタ
ノールで沈澱させ、上澄はK2HPO4およびアセト
ンで分別し、次いでDEAEセルロース上で活性部
分をクロマトグラフする上記のものである。これ
は一般に約100mg1の理論的収量に対し充填血
球1につき約40mgの純SODを収得させる。 本発明によれば血球を溶血し、全SOD活性お
よび他の所望酵素、特にカタラーゼおよびカルボ
ン酸アンヒドラーゼの活性を保有させながら1工
程でヘモグロビンを沈澱させることができること
がわかつた。その結果それらの酵素は商業規模で
それ自体を使用できる方法で回収することができ
る。 これは全部もしくは一部単離した血球を、2〜
4炭素原子を有するアルカノール、好ましくはエ
タノールと10〜70容量%の濃度まで混合し、血球
の溶血およびヘモグロビンを変性させるために放
置し、次に少なくとも約2倍容まで水を加え、サ
スペンジヨンから血球残留物、ヘモグロビンおよ
び他の変性たん白の沈澱を除去し、最後に得た溶
液から所望の酵素を単離することを特徴とする発
明方法により達成される。 本方法は全部もしくは一部単離した血球、たと
えば放置し大部分の血漿をデカンテーシヨンによ
り除いた血液を、等しい大量の96%エタノールと
烈しく撹拌しながら混合することによりもつとも
実用的に行なわれる。約1時間撹拌しながら放置
してサスペンジヨンはイオン除去水で2倍容に稀
釈し、30〜60分間撹拌を継続する。次にサスペン
ジヨンは遠心分離し、ヘモグロビンおよび血球残
留物のケーキを少量の水で洗滌する。すなわち
SOD、カタラーゼおよびカルボン酸アンヒドラ
ーゼを含む透明赤色溶液が生成する。 カルボン酸アンヒドラーゼはこの溶液から特定
的にカルボン酸アンヒドラーゼを吸着し、他の所
望酵素を吸着しない樹脂上で親和クロマトグラフ
イにより容易に単離することができる。このよう
な樹脂の例はグリシル−チロシン−アゾベンゼン
スルホンアミド基で置換した架橋結合アガロース
「Sepharose」(商標)である。樹脂の洗滌により
カルボン酸アンヒドラーゼはJ.T.Johansen
(Carsberg Research Commu−nications
Vol.41、73〜81、1976)の記載のようにチオシア
ン酸カリ水溶液で溶離することができる。 カルボン酸アンヒドラーゼが除去された溶液は
尚SODおよびカタラーゼを含む。本発明によれ
ばデンマーク特許出願第1687/80号明細書に特許
請求される水性溶液からSODを単離する方法
は、使用PH範囲でSODと同じ極性を有するカチ
オン交換剤上でPH4.7〜5.5のその溶液をクロマト
グラフイすることにより単一工程で溶液から
SODおよびカタラーゼの両者を単離するために
使用できることがわかつた。SODおよびカタラ
ーゼは4.7〜7.5の範囲のPHおよび0.01〜1.0Mの範
囲のイオン強度を有する緩衝溶液により樹脂から
もつとも良く溶離される。SODは最低PHおよ
び/もしくは最低イオン強度で溶離される。これ
らの範囲におけるPH勾配および/もしくはイオン
強度勾配は既知方法で使用することができ、その
結果SODが最初に単離される。好ましくはSOD
は4.7〜5.5のPHおよび0.02〜0.2Mのイオン強度を
有する緩衝溶液により最初に溶離され、次にカタ
ラーゼは6.5〜7.5のPHおよび0.1〜1.0Mのイオン
強度を有する緩衝溶液で溶離される。次にSOD
およびカタラーゼ含有フラクシヨンは別々に既知
方法で更に精製することができる。 上記クロマトグラフイにおける有用なカチオン
交換樹脂の例は、「CM−23」および「CM−52」
の各称で英国whatman Ltd.が、および「CM−
Sephacel」(商標)の名称でスエーデンの
Pharmacia Fine Chemicals ABが市販するよう
なカルボキシメチルセルロース、「CM
Sephadex」(商標)の名称でPharmacia Fine
Chemicals ABが市販するようなカルボキシメチ
ル基で置換した架橋結合デキストラン、「SP−
Sephadex」の名称でPharmacia Fine Chemicals
ABが市販するスルホプロピル基で置換した架橋
結合デキストランおよび「CM−Sepharose(商
標)CL 6B」の名称でPharmacia Fine
Chemicals ABが市販するようなカルボキシメチ
ル基で置換した架橋結合アガロースを挙げること
ができる。 溶離後カラムは塩基、水、酸および水を流し、
その後所望の緩衝液で平衡化することにより再生
することができる。 カチオンイオン交換樹脂上の溶液のクロマトグ
ラフイは任意にはイオン交換粒子を溶液中に撹拌
することによつてバツチ式で行なうことができ
る。しかし、大規模での作業がより容易であり、
すべての酵素がイオン交換剤上に吸着されること
を保証するカラム処理として行なうことがもつと
も有利である。 得た2溶液をそれ以上精製する前に、この段階
で限外過することによりその両者を濃縮するこ
とが有利であることがわかつた。 適当には、次にSODは低イオン強度のリン酸
塩緩衝液を使用し透析過し低分子不純物を除去
することができる。 SOD溶液の最後の精製は適当にはDEAEセルロ
ース上のクロマトグラフイにより行なうことがで
きる。これにより透明溶液を得、任意には凍結乾
燥することにより精製SODを固形で単離するこ
とができる。 上記の方法で本発明方法を使用し理論的に可能
な約100mg/の約60%に相当する充填血球1
につき約60mgの完全に純粋のSODの収量を供す
るであろうことがわかつた。 カタラーゼ溶液は適当には硫酸アンモニウムに
よる分別沈澱により精製することができる。 本発明方法は次例で更に十分に例示されるであ
ろう。 例 ヘモグロビンの溶血と沈澱 約2の血漿を尚含み、約5の充填血球が相
当するデカントした7の血液を烈しく撹拌しな
がら7の96%エタノールと混合した。1時間後
15のイオン除去水を添加し、そして30分間撹拌
を続けた。 サスペンジヨンは約2000pmのMSEバスケツト
遠心分離機で遠心分離し、ヘモグロビンのケーキ
は遠心機を空にする前に2の水で洗滌した29.5
の上澄液を得た。 カルボン酸アンヒドラーゼの単離 上澄液はカルボン酸アンヒドラーゼを特異的に
吸着するが、SODおよびカタラーゼを吸着しな
い親和マトリツクス「Sepharose」−グリシル−
チロシン−アゾベンゼンスルホンアミドの10×12
cmカラムに適用した。親和マトリツクスの洗滌
後、カルボン酸アンヒドラーゼは0.05M「トリ
ス」サルフエートを含み、6.5のPHを有する0.2M
チオシアン酸カリ水溶液で溶離した。 SODおよびカタラーゼの単離 SODおよびカタラーゼを含む溶液は1M酢酸で
PH4.5に調整し、20mM酢酸ソーダ緩衝液でPH4.8
に平衡化した2の「CM−23」を詰めた20cm直
径カラムを通した。流速は約15/時間であつ
た。次にイオン交換剤はPH4.8の20mM酢酸ソー
ダ緩衝液15で洗滌した。 カラムは1.5/時間の流速でPH4.8の3の
100mMおよび3の200mM酢酸ソーダの直線状
勾配で溶離した。SODは約150mM酢酸ソーダで
溶離した。 カタラーゼはPH7.0の0.1Mリン酸ソーダ緩衝液
で溶離した。 フラクシヨンを含むSODおよびカタラーゼは
別別にプールし、「DDS MF cell」中の「DDS
600」膜(両者ともDe danske Sukkerfabriker
A/Sから市販)上で限外過した。 SODの精製 SOD溶液はPH7.5の10mMリン酸ソーダ緩衝液
を使用し透析過し、更に10mMリン酸ソーダ緩
衝液のPH7.5に平衡化した「DE−52」カラム(5
×8cm)上でクロマトグラフして精製した。カラ
ムは0→0.125M NaClを含むPH7.5の10mMリン
酸ソーダ緩衝液2×600mの直線状勾配で展開し
た。流速は110ml/時間で、10mlのフラクシヨン
を集めた。SOD含有フラクシヨンはプールし
た。比活性および吸収スペクトルは酵素が純粋で
あることを示した。 カタラーゼの精製 限外過からのカタラーゼ溶液は(NH4)2SO4
分別により精製した。 「CM−23」カラムの再生 カタラーゼの溶離後3の0.5M NaOH溶液を
カラムを通し次いで3の水を通した。次に3
の0.5M Hclをカラムを通し、次いで3の水を
通し、そしてPH4.8の3の0.2M酢酸ソーダが衝
液を通した。 次にカラムは溶離物の伝導度およびPHが緩衝液
のものと同じになるまで、PH4.8の20mM酢酸ソ
ーダ緩衝液で処理した。カラムは再使用の用意が
できた。 結 果 行なつた精製工程およびSOD、カタラーゼお
よびカルボン酸アンヒドラーゼの収量の調査は次
表に示す。 【表】
素を単離することによつて血液から酵素を回収す
る方法に関する。 得ることができる酵素のうちには特にCu、Zn
−スーパーオキサイドデイスムターゼ(SOD)
およびカタラーゼがあるが、またたとえば炭酸ア
ンヒドラーゼも回収することができる。 デンマーク特許第132864号明細書は哺乳動物血
液、特に牛血液からSODを回収する方法を開示
する。その方法はデカンテーシヨンもしくは遠心
分離により血漿を除去した血球を、任意には少量
の界面活性剤を含む冷イオン除去水により溶解
し、そしてエタノールのような水混合性有機溶媒
の存在下にクロロホルムのようなハロゲン化有機
溶媒により、もしくは5℃以下の温度で硫酸アン
モニウムにより溶血物を沈澱させる工程より成
る。沈澱は1回もしくは数回イオン除去水で洗滌
し、合せた上澄液は熱不安定性たん白、特にカル
ボン酸アンヒドラーゼを変性させるために0.69〜
0.80Åの原子半径を有する2価金属イオンを含む
緩衝溶液の存在下に60〜65℃に加熱した。室温以
下に急速冷却後沈澱たん白は過および遠心分離
により除去し、SOD含有溶液はイオン交換クロ
マトグラフイ、分取電気泳動および/もしくはゲ
ル過により精製した。その方法は充填赤血球を
規準にして約0.01%(重量/容量)のSODの収量
を供することを報告する。 その方法における加熱工程をK2HPO4およびア
セトンによる分別に置き換え、その後分別可溶性
たん白の活性部分をPH7.4でジエチルアミノエチ
ルセルロース(DEAEセルロース)上でクロマト
グラフして、充填ウシ血球から本SOD活性の60
%に相当する3300ユニツト/mgの活性を有する
0.006%(重量/容積)のSODの収量を得た。 しかし、その多工程方法は、一部はその方法を
複雑化する多工程のために、一部は多量の有機溶
媒および任意にはK2HPO4を使用する必要がある
ために商業規模では有用ではない。 デンマーク特許第133246号明細書によればヘモ
グロビンの沈澱をクロロホルムおよび/もしくは
エタノールで除き、(a)溶血物を約6のPH値および
約0.01M以下のイオン強度に調整してカルボン酸
アンヒドラーゼを除去するためにK2HPO4および
アセトンにより分別し、その溶液を弱い塩基性基
を有するイオン交換樹脂、好ましくはDEAEセル
ロースのカラムを通して樹脂上にSODを吸着さ
せ、(b)同じPHおよびイオン強度の緩衝塩溶液によ
りカラムを洗滌してヘモグロビンを除去し、そし
て(c)5.7〜6.3のPH値および約0.02M以下から約
0.03M以上に徐々に、もしくは一歩づつの勾配で
増加するイオン強度を有する水性媒体で吸着
SODをカラムから溶離させ、SODはA265〜A280の
吸着値の比が最高に達する最初のイオン強度に始
まり、CuおよびZn含有およびA265〜A280比が同
時に減少する最初のイオン強度に終る溶離物のフ
ラクシヨンから溶離することが試みられた。この
方法は0.01〜0.013%(重量/容積)の充填赤血
球から2500ユニツト/mgもしくは溶血物の初めの
全SOD活性のほとんど75%と同じ活性を有する
SODの収量を得ることが報告される。しかし、
この方法は大量の液のクロマトグラフイより成
り、相当する大量のクロマトグラフイカラムを必
要とするので商業規模では有用ではない。更にク
ロマトグラフイされる98.8%より多いたん白はカ
ラムの寿命およびクロマトグラフイ速度を減少さ
せ、望ましくないたん白である。 デンマーク特許第139914号明細書ではクロロホ
ルム/エタノールによるヘモグロビンの沈澱およ
びカルボン酸アンヒドラーゼを除去するための
K2HPO4およびアセトンによる分別は、PH5〜8
の溶血物を60〜80℃の温度に加熱し、ヘモグロビ
ンと共にカルボン酸アンヒドラーゼおよび他の熱
不安定性たん白を沈澱させる単一加熱工程により
置換され、そして次に混合物を冷却し、沈澱たん
白を分離し、SODはたとえばアセトンによる沈
澱、もしくは好ましくは上記方法と同一条件で
DEAEセルロース上でイオン交換クロマトグラフ
イによる上澄液から単離される。これは勿論工程
を簡畧化する。しかし、それでも尚満足できな
い。何故ならばSODのロスが加熱工程で起こる
からである。その特許は加熱沈澱後40〜50回の精
製および出発血液に含まれるものの70〜90%の
SODの収量を報告する。 BriggsおよびFee(Biochem.et Bio hys.
Acta537、1978、86〜99頁)はヘモグロビンおよ
び熱不安定性たん白の沈澱を、最初にPH6でカル
ボキシメチルセルロース(CMセルロース)によ
り、次に約中性までのPHの調整下に混合ベツドイ
オン交換器による溶血物のバツチ処理で置換す
る。生成混合物はDEAEセルロースで処理し、そ
れをカラムに移し、最初に大量の2mMリン酸ソ
ーダ緩衝液で洗滌し、次に0.1Mリン酸ソーダ緩
衝液で溶離しそして活性フラクシヨンを集めた。
これらを組み合せ再度混合ベツドイオン交換剤お
よびCMセルロースでそれぞれバツチ処理して更
に随伴たん白を除去する。SOD含有溶液は再び
DEAEセルロースカラムに適用し、2〜100mM
のリン酸ソーダ緩衝液の直線勾配で溶離し、そし
て活性フラクシヨンを集め、限外過により濃縮
し、「Biogel P−100」上でゲル過した。クロ
マトグラフイおよびゲル過は反復し、純粋標品
を得た。 この方法は多工程により非常に複雑であり、且
過剰に大量のイオン交換剤が、たとえば、最初の
精製工程で2の溶血物に対し2.5KgのCMセルロ
ースおよび0.5Kgの混合ベツドイオン交換剤が使
用されるので商業規模で使用するには総じて不適
である。更に、この方法におけるSODの収量は
理論的収量の僅か21%であり、CMセルロース精
製工程において既に全SOD活性の約25%のロス
がある。それは同時係属出願デンマーク特許第第
1687/80号明細書に記載の発明がすなわちカルボ
キシメチルセルロースは4.7〜5.5のPHで完全に
SODを吸着することができることに基づく最近
の発見に微して不思議ではない。 今日まで血液からSODの回収に実際に使用さ
れた唯一の方法は、溶血物をクロロホルム/エタ
ノールで沈澱させ、上澄はK2HPO4およびアセト
ンで分別し、次いでDEAEセルロース上で活性部
分をクロマトグラフする上記のものである。これ
は一般に約100mg1の理論的収量に対し充填血
球1につき約40mgの純SODを収得させる。 本発明によれば血球を溶血し、全SOD活性お
よび他の所望酵素、特にカタラーゼおよびカルボ
ン酸アンヒドラーゼの活性を保有させながら1工
程でヘモグロビンを沈澱させることができること
がわかつた。その結果それらの酵素は商業規模で
それ自体を使用できる方法で回収することができ
る。 これは全部もしくは一部単離した血球を、2〜
4炭素原子を有するアルカノール、好ましくはエ
タノールと10〜70容量%の濃度まで混合し、血球
の溶血およびヘモグロビンを変性させるために放
置し、次に少なくとも約2倍容まで水を加え、サ
スペンジヨンから血球残留物、ヘモグロビンおよ
び他の変性たん白の沈澱を除去し、最後に得た溶
液から所望の酵素を単離することを特徴とする発
明方法により達成される。 本方法は全部もしくは一部単離した血球、たと
えば放置し大部分の血漿をデカンテーシヨンによ
り除いた血液を、等しい大量の96%エタノールと
烈しく撹拌しながら混合することによりもつとも
実用的に行なわれる。約1時間撹拌しながら放置
してサスペンジヨンはイオン除去水で2倍容に稀
釈し、30〜60分間撹拌を継続する。次にサスペン
ジヨンは遠心分離し、ヘモグロビンおよび血球残
留物のケーキを少量の水で洗滌する。すなわち
SOD、カタラーゼおよびカルボン酸アンヒドラ
ーゼを含む透明赤色溶液が生成する。 カルボン酸アンヒドラーゼはこの溶液から特定
的にカルボン酸アンヒドラーゼを吸着し、他の所
望酵素を吸着しない樹脂上で親和クロマトグラフ
イにより容易に単離することができる。このよう
な樹脂の例はグリシル−チロシン−アゾベンゼン
スルホンアミド基で置換した架橋結合アガロース
「Sepharose」(商標)である。樹脂の洗滌により
カルボン酸アンヒドラーゼはJ.T.Johansen
(Carsberg Research Commu−nications
Vol.41、73〜81、1976)の記載のようにチオシア
ン酸カリ水溶液で溶離することができる。 カルボン酸アンヒドラーゼが除去された溶液は
尚SODおよびカタラーゼを含む。本発明によれ
ばデンマーク特許出願第1687/80号明細書に特許
請求される水性溶液からSODを単離する方法
は、使用PH範囲でSODと同じ極性を有するカチ
オン交換剤上でPH4.7〜5.5のその溶液をクロマト
グラフイすることにより単一工程で溶液から
SODおよびカタラーゼの両者を単離するために
使用できることがわかつた。SODおよびカタラ
ーゼは4.7〜7.5の範囲のPHおよび0.01〜1.0Mの範
囲のイオン強度を有する緩衝溶液により樹脂から
もつとも良く溶離される。SODは最低PHおよ
び/もしくは最低イオン強度で溶離される。これ
らの範囲におけるPH勾配および/もしくはイオン
強度勾配は既知方法で使用することができ、その
結果SODが最初に単離される。好ましくはSOD
は4.7〜5.5のPHおよび0.02〜0.2Mのイオン強度を
有する緩衝溶液により最初に溶離され、次にカタ
ラーゼは6.5〜7.5のPHおよび0.1〜1.0Mのイオン
強度を有する緩衝溶液で溶離される。次にSOD
およびカタラーゼ含有フラクシヨンは別々に既知
方法で更に精製することができる。 上記クロマトグラフイにおける有用なカチオン
交換樹脂の例は、「CM−23」および「CM−52」
の各称で英国whatman Ltd.が、および「CM−
Sephacel」(商標)の名称でスエーデンの
Pharmacia Fine Chemicals ABが市販するよう
なカルボキシメチルセルロース、「CM
Sephadex」(商標)の名称でPharmacia Fine
Chemicals ABが市販するようなカルボキシメチ
ル基で置換した架橋結合デキストラン、「SP−
Sephadex」の名称でPharmacia Fine Chemicals
ABが市販するスルホプロピル基で置換した架橋
結合デキストランおよび「CM−Sepharose(商
標)CL 6B」の名称でPharmacia Fine
Chemicals ABが市販するようなカルボキシメチ
ル基で置換した架橋結合アガロースを挙げること
ができる。 溶離後カラムは塩基、水、酸および水を流し、
その後所望の緩衝液で平衡化することにより再生
することができる。 カチオンイオン交換樹脂上の溶液のクロマトグ
ラフイは任意にはイオン交換粒子を溶液中に撹拌
することによつてバツチ式で行なうことができ
る。しかし、大規模での作業がより容易であり、
すべての酵素がイオン交換剤上に吸着されること
を保証するカラム処理として行なうことがもつと
も有利である。 得た2溶液をそれ以上精製する前に、この段階
で限外過することによりその両者を濃縮するこ
とが有利であることがわかつた。 適当には、次にSODは低イオン強度のリン酸
塩緩衝液を使用し透析過し低分子不純物を除去
することができる。 SOD溶液の最後の精製は適当にはDEAEセルロ
ース上のクロマトグラフイにより行なうことがで
きる。これにより透明溶液を得、任意には凍結乾
燥することにより精製SODを固形で単離するこ
とができる。 上記の方法で本発明方法を使用し理論的に可能
な約100mg/の約60%に相当する充填血球1
につき約60mgの完全に純粋のSODの収量を供す
るであろうことがわかつた。 カタラーゼ溶液は適当には硫酸アンモニウムに
よる分別沈澱により精製することができる。 本発明方法は次例で更に十分に例示されるであ
ろう。 例 ヘモグロビンの溶血と沈澱 約2の血漿を尚含み、約5の充填血球が相
当するデカントした7の血液を烈しく撹拌しな
がら7の96%エタノールと混合した。1時間後
15のイオン除去水を添加し、そして30分間撹拌
を続けた。 サスペンジヨンは約2000pmのMSEバスケツト
遠心分離機で遠心分離し、ヘモグロビンのケーキ
は遠心機を空にする前に2の水で洗滌した29.5
の上澄液を得た。 カルボン酸アンヒドラーゼの単離 上澄液はカルボン酸アンヒドラーゼを特異的に
吸着するが、SODおよびカタラーゼを吸着しな
い親和マトリツクス「Sepharose」−グリシル−
チロシン−アゾベンゼンスルホンアミドの10×12
cmカラムに適用した。親和マトリツクスの洗滌
後、カルボン酸アンヒドラーゼは0.05M「トリ
ス」サルフエートを含み、6.5のPHを有する0.2M
チオシアン酸カリ水溶液で溶離した。 SODおよびカタラーゼの単離 SODおよびカタラーゼを含む溶液は1M酢酸で
PH4.5に調整し、20mM酢酸ソーダ緩衝液でPH4.8
に平衡化した2の「CM−23」を詰めた20cm直
径カラムを通した。流速は約15/時間であつ
た。次にイオン交換剤はPH4.8の20mM酢酸ソー
ダ緩衝液15で洗滌した。 カラムは1.5/時間の流速でPH4.8の3の
100mMおよび3の200mM酢酸ソーダの直線状
勾配で溶離した。SODは約150mM酢酸ソーダで
溶離した。 カタラーゼはPH7.0の0.1Mリン酸ソーダ緩衝液
で溶離した。 フラクシヨンを含むSODおよびカタラーゼは
別別にプールし、「DDS MF cell」中の「DDS
600」膜(両者ともDe danske Sukkerfabriker
A/Sから市販)上で限外過した。 SODの精製 SOD溶液はPH7.5の10mMリン酸ソーダ緩衝液
を使用し透析過し、更に10mMリン酸ソーダ緩
衝液のPH7.5に平衡化した「DE−52」カラム(5
×8cm)上でクロマトグラフして精製した。カラ
ムは0→0.125M NaClを含むPH7.5の10mMリン
酸ソーダ緩衝液2×600mの直線状勾配で展開し
た。流速は110ml/時間で、10mlのフラクシヨン
を集めた。SOD含有フラクシヨンはプールし
た。比活性および吸収スペクトルは酵素が純粋で
あることを示した。 カタラーゼの精製 限外過からのカタラーゼ溶液は(NH4)2SO4
分別により精製した。 「CM−23」カラムの再生 カタラーゼの溶離後3の0.5M NaOH溶液を
カラムを通し次いで3の水を通した。次に3
の0.5M Hclをカラムを通し、次いで3の水を
通し、そしてPH4.8の3の0.2M酢酸ソーダが衝
液を通した。 次にカラムは溶離物の伝導度およびPHが緩衝液
のものと同じになるまで、PH4.8の20mM酢酸ソ
ーダ緩衝液で処理した。カラムは再使用の用意が
できた。 結 果 行なつた精製工程およびSOD、カタラーゼお
よびカルボン酸アンヒドラーゼの収量の調査は次
表に示す。 【表】
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 血液細胞を分離し、得た溶液から所望の酵素
を単離することによる血液から酵素を回収する方
法において、全部もしくは一部単離した血液細胞
を2〜4炭素原子を有するアルカナール、好まし
くはエタノールと、10〜70容量%の濃度まで混合
し、血球の溶血およびヘモグロビンを変性させる
ために放置し、次に少なくとも約2倍容まで水を
添加し、血球残留物、ヘモグロビンおよび他の変
性たん白の沈澱をサスペンジヨンから除去し、そ
して最後に得た溶液から所望の酵素を単離するこ
とを特徴とする、上記方法。 2 溶液から1種もしくはそれ以上の酵素Cu、
Zn−スーパーオキサイドデイスムターゼ
(SOD)、カタラーゼおよびカルボン酸アンヒド
ラーゼを単離することを特徴とする特許請求の範
囲第1項記載の方法。 3 SODおよびカタラーゼはPH4.7〜5.5でその溶
液を使用PH範囲でSODと同じ極性のカチオン交
換樹脂上でクロマトグラフし、SODおよびカタ
ラーゼを4.7〜5.5の範囲のPHおよび0.01〜0.1Mの
範囲のイオン強度を有する緩衝溶液により樹脂か
ら溶離し、SODは最低PHおよび/もしくは最低
イオン強度で溶離することを特徴とする特許請求
の範囲第1項および第2項記載の方法。 4 SODを4.7〜5.5のPHおよび0.02〜0.2Mのイオ
ン強度を有する緩衝溶液によりカチオン交換樹脂
から溶離し、そして6.5〜7.5のPHおよび0.1〜
1.0Mのイオン強度を有する緩衝溶液によりカタ
ラーゼを溶離することを特徴とする特許請求の範
囲第3項記載の方法。 5 カチオン交換樹脂としてカルボキシメチルセ
ルロース、もしくはカルボキシメチル基もしくは
スルホプロピル基で置換した架橋結合デキストラ
ン、もしくはカルボキシメチル基で置換した架橋
結合アガロースを使用することを特徴とする特許
請求の範囲第3項もしくは第4項記載の方法。
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DK168880A DK144800C (da) | 1980-04-21 | 1980-04-21 | Fremgangsmaade til udvinding af enzymer,fortrinsvis cu,zn-superoxid-dismutase (sod),catalase og carbonsyreanhydrase,fra blod |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS56148287A JPS56148287A (en) | 1981-11-17 |
JPS6253147B2 true JPS6253147B2 (ja) | 1987-11-09 |
Family
ID=8107219
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP6516080A Granted JPS56148287A (en) | 1980-04-21 | 1980-05-16 | Recovery of enzyme from blood |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4341867A (ja) |
EP (1) | EP0038393B2 (ja) |
JP (1) | JPS56148287A (ja) |
AT (1) | ATE6077T1 (ja) |
DE (1) | DE3066356D1 (ja) |
DK (1) | DK144800C (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02139733U (ja) * | 1989-04-25 | 1990-11-21 |
Families Citing this family (48)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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