JPS62259589A - β―チロシナーゼ活性を有するDNA断片および形質転換された原核生物細胞 - Google Patents
β―チロシナーゼ活性を有するDNA断片および形質転換された原核生物細胞Info
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- JPS62259589A JPS62259589A JP10112086A JP10112086A JPS62259589A JP S62259589 A JPS62259589 A JP S62259589A JP 10112086 A JP10112086 A JP 10112086A JP 10112086 A JP10112086 A JP 10112086A JP S62259589 A JPS62259589 A JP S62259589A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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- C12N9/88—Lyases (4.)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明はβ−チロシナーゼ遺伝子、該遺伝子で形質転換
された原核生物細胞および該細胞を用いるし一ドーパま
たはL−チロシンの製造方法に関する。
された原核生物細胞および該細胞を用いるし一ドーパま
たはL−チロシンの製造方法に関する。
β−チロシナーゼはカテコール(またはフェノール)と
ピルビン酸およびアンモニアまたはアンモニウム塩から
し一ドーパ(L−ジヒドロキシフェニルアラニン)(ま
たはL−チロシン)を生成する反応を行なう酵素として
知られている。
ピルビン酸およびアンモニアまたはアンモニウム塩から
し一ドーパ(L−ジヒドロキシフェニルアラニン)(ま
たはL−チロシン)を生成する反応を行なう酵素として
知られている。
β−チロシナーゼ・活性を有する微生物は種々知られて
おり、該微生物もしくはその処理物を用いてI7−ドー
パやL−チロシンを製造する方法も提案されている。
おり、該微生物もしくはその処理物を用いてI7−ドー
パやL−チロシンを製造する方法も提案されている。
しかしながら、β−チロシナーゼ活性を有する微生物の
取扱いが不都合であったり、目的とするL−−ドーパや
■、−チロシンの収率が十分でないという問題があった
。
取扱いが不都合であったり、目的とするL−−ドーパや
■、−チロシンの収率が十分でないという問題があった
。
また、従来ばβ−チロシナーゼ遺伝子を単箭した例もな
く、β−チロシナーゼ活性を有しない微生物への該活性
の付与という試みも全くなされていない。
く、β−チロシナーゼ活性を有しない微生物への該活性
の付与という試みも全くなされていない。
r問題点を解決するための手段〕
本発明者は、β−チロシナーゼ活性を有する微生物から
β−チロシナーゼ遺伝子を分離することに成功し、単離
した遺伝子の性質について検討し、該遺伝子をβ−チロ
シナーゼ活性を持たない微生に 物に導入するこゴ成功した。また、該遺伝子で形質転換
された微生物を用いることによってL −ドーパや■、
−チロシンの製造を効率よく行なうことができることを
見出した。本発明はかかる知見により完成されたもので
ある。
β−チロシナーゼ遺伝子を分離することに成功し、単離
した遺伝子の性質について検討し、該遺伝子をβ−チロ
シナーゼ活性を持たない微生に 物に導入するこゴ成功した。また、該遺伝子で形質転換
された微生物を用いることによってL −ドーパや■、
−チロシンの製造を効率よく行なうことができることを
見出した。本発明はかかる知見により完成されたもので
ある。
本発明は第1に、β−チロシナーゼ活性を有し、塩基対
数が1.lbであり、そのDNA鎖中に制限酵素1!c
oRTで切断される個所を含むβ−チロシナーゼ遺伝子
を提供するものである。
数が1.lbであり、そのDNA鎖中に制限酵素1!c
oRTで切断される個所を含むβ−チロシナーゼ遺伝子
を提供するものである。
第2に、該遺伝子とベクターよりなる組換え体DNAに
より形質転換された原核生物細胞に関し、第3に該原核
生物細胞の存在下に、カテコールまたはフェノールをピ
ルビン酸およびアンモニアまたはアンモニウム塩と反応
させることを特徴とするI、−ドーパまたはI7−チロ
シンの製造方法に関する。
より形質転換された原核生物細胞に関し、第3に該原核
生物細胞の存在下に、カテコールまたはフェノールをピ
ルビン酸およびアンモニアまたはアンモニウム塩と反応
させることを特徴とするI、−ドーパまたはI7−チロ
シンの製造方法に関する。
β−チロシナーゼ遺伝子は、β−チロシナーゼ活性を保
持する微生物から次のようにして調製することができる
。なお、β−チロシナーゼ活性を保持する微生物は種々
のものが知られており、たとえばAgr、 Biol、
Chem、 、 36. Nll]l、 1861〜
1868頁(1972)、特公昭47−22275号公
報、同5]−5475号公報などに記載されている。以
下に、代表的な菌株を例示する。
持する微生物から次のようにして調製することができる
。なお、β−チロシナーゼ活性を保持する微生物は種々
のものが知られており、たとえばAgr、 Biol、
Chem、 、 36. Nll]l、 1861〜
1868頁(1972)、特公昭47−22275号公
報、同5]−5475号公報などに記載されている。以
下に、代表的な菌株を例示する。
エルヴイニア・ハービコラ便堕槙uherb−崩1搬A
TCC21433,同ATCC21434,アエロバク
タ−・アエロゲネス旦9.エン9□匝蛙ゴ憇皿4タ1r
15艷号1う□へTCC21214゜シュードモナス・
オバリス(Pseudomonas ovalis)A
TCC15175,キサントモナス・キャンペストリス
仄り1的竺9□η、9□旦5艷5し≦−(に」−=Ω八
へCC6420,アクロモバクタ−・キャンディカンス
(^chromobac、t、er9閃1cans)
0IIT 8005 、バチルス・セレウス(、す、孕
□すl1us cer−明吋IへM 1029.エシェ
リヒア・インターメディア(Esc!!er山事神1n
ter町屯達すATCC21073+エシエリヒア・コ
リー(旦、傅)八TCC15289,プロテウス・ミラ
ビリス(Proteuユf□m1rabilis)八T
CCまずはじめに、β−チロシナーゼ活性保持菌株から
通常の[lNA抽出法(J、 Mo1. Riot、、
3.208(14161))によって染色体DNAを
抽出し、制限酵素で切断して染色体DNA断片を得る。
TCC21433,同ATCC21434,アエロバク
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TCC15175,キサントモナス・キャンペストリス
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リヒア・インターメディア(Esc!!er山事神1n
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リー(旦、傅)八TCC15289,プロテウス・ミラ
ビリス(Proteuユf□m1rabilis)八T
CCまずはじめに、β−チロシナーゼ活性保持菌株から
通常の[lNA抽出法(J、 Mo1. Riot、、
3.208(14161))によって染色体DNAを
抽出し、制限酵素で切断して染色体DNA断片を得る。
一方、適当なベクタープラスミドを同じ制限酵素で切断
したのち、これを上記染色体DNAと連結させる。次い
で、この組換え体r]NAをβ−チロシナーゼ活性を持
たない微生物、たとえば大腸菌JI8101株に対し通
常の方法(たとえばJ、 Mo1. Biol、、 5
3.159(1970))により形質転換する。常法に
よりクローニングを行なったのち単離した遺伝子がβ−
チロシナーゼ遺伝子であることを確認し、この遺伝子領
域の小型化を行なう。すなわち、形質転換株からプラス
ミドl]N^を抽出し、制限酵素で部分分解して得たI
’1N11断片のそれぞれを前述の如くベクターと連結
し、大腸菌118101株に対し形質転換を行ない、目
的とする遺伝子領域を有する株を選抜する。次いで、選
抜した菌株からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素に
よる切断を行い、β−チロシナーゼ遺伝子を得る。この
ものについて制限酵素による切断解析を行なって制限酵
素地図(第3図)を作成する。
したのち、これを上記染色体DNAと連結させる。次い
で、この組換え体r]NAをβ−チロシナーゼ活性を持
たない微生物、たとえば大腸菌JI8101株に対し通
常の方法(たとえばJ、 Mo1. Biol、、 5
3.159(1970))により形質転換する。常法に
よりクローニングを行なったのち単離した遺伝子がβ−
チロシナーゼ遺伝子であることを確認し、この遺伝子領
域の小型化を行なう。すなわち、形質転換株からプラス
ミドl]N^を抽出し、制限酵素で部分分解して得たI
’1N11断片のそれぞれを前述の如くベクターと連結
し、大腸菌118101株に対し形質転換を行ない、目
的とする遺伝子領域を有する株を選抜する。次いで、選
抜した菌株からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素に
よる切断を行い、β−チロシナーゼ遺伝子を得る。この
ものについて制限酵素による切断解析を行なって制限酵
素地図(第3図)を作成する。
このβ−チロシナーゼ遺伝子は、上記手法によってβ−
チロシナーゼ活性を持たない生物、特に原核生物細胞に
導入することができる。ここでβ−チロシナーゼ活性を
持たない原核生物細胞としては様々なものがあるが、特
に大腸菌が好適である。形質転換された原核生物細胞を
用い、該細胞の存在下にカテコールまたはフェノールを
ピルビン酸およびアンモニアもしくはアンモニウム塩と
反応させることによってL−ドーバまたは■、−チロシ
ンを効率よく製造することができる。
チロシナーゼ活性を持たない生物、特に原核生物細胞に
導入することができる。ここでβ−チロシナーゼ活性を
持たない原核生物細胞としては様々なものがあるが、特
に大腸菌が好適である。形質転換された原核生物細胞を
用い、該細胞の存在下にカテコールまたはフェノールを
ピルビン酸およびアンモニアもしくはアンモニウム塩と
反応させることによってL−ドーバまたは■、−チロシ
ンを効率よく製造することができる。
本発明によりβ−チロシナーゼ遺伝子がはじめて提供さ
れ、該遺伝子を大腸菌などのβ−チロシナーゼ活性を持
たない微生物に導入し、β−チロシナーゼ活性を付与さ
せることが可能となった。
れ、該遺伝子を大腸菌などのβ−チロシナーゼ活性を持
たない微生物に導入し、β−チロシナーゼ活性を付与さ
せることが可能となった。
しかも、遺伝子増幅効果によるβ−チロシナーゼ活性の
活性を高めることができる。したがって、I2−ドーパ
やI、−チロシンを非常に効率よく生産質を構成する芳
香族アミノ酸の1つとして知られ、様々の用途に供され
ている。
活性を高めることができる。したがって、I2−ドーパ
やI、−チロシンを非常に効率よく生産質を構成する芳
香族アミノ酸の1つとして知られ、様々の用途に供され
ている。
次に、本発明を実施例により詳しく説明する。
実施例1
(1)染色体DNAおよびその断片の調製β−チロシナ
ーゼ活性保持菌株として知られるエルヴイニア・ハービ
コラへTCC21,434株F200m lの143培
地中で30℃にて24時間振とう培養を行なった。菌体
を集菌したのち通常のl′lNA抽出法(J、 Mol
。
ーゼ活性保持菌株として知られるエルヴイニア・ハービ
コラへTCC21,434株F200m lの143培
地中で30℃にて24時間振とう培養を行なった。菌体
を集菌したのち通常のl′lNA抽出法(J、 Mol
。
Rial、、 3.208(1961))により染色体
を抽出、精製して最終3.0■を得た。この染色体1]
NA IoOμgを制限酵素Ram1l Tで切断(3
7℃、15分間)し、染色体r)Nへ断片を得た。
を抽出、精製して最終3.0■を得た。この染色体1]
NA IoOμgを制限酵素Ram1l Tで切断(3
7℃、15分間)し、染色体r)Nへ断片を得た。
(2) β−チロシナーゼ遺伝子のクローン化大腸菌
において一般的に使用されるヘクタープラスミド(pR
R322) 5 μgを制限酵素口amllIで切断
(37°C12時間)した後、ベクターの自己閉環を防
止するため、アルカリフォスファターゼ処理を行なった
。この切断したベクターrlNA 1μgに」二記(1
)で得た染色体11NA断片10μgを混合し、ATP
およびジチオスレイトール、 MgCl□存在下にT4
−DNAリガーゼにて4°Cで24時間rlNA鎖の連
結反応を行なった。
において一般的に使用されるヘクタープラスミド(pR
R322) 5 μgを制限酵素口amllIで切断
(37°C12時間)した後、ベクターの自己閉環を防
止するため、アルカリフォスファターゼ処理を行なった
。この切断したベクターrlNA 1μgに」二記(1
)で得た染色体11NA断片10μgを混合し、ATP
およびジチオスレイトール、 MgCl□存在下にT4
−DNAリガーゼにて4°Cで24時間rlNA鎖の連
結反応を行なった。
この反応液を用いてコンピテントな大腸菌1(8101
株に対して通常の方法(、L Mo1.旧of、、 5
3.159(1970))により形質転換を行ない、ア
ンピシリン50pg/m11. T−−チロシン2+
ng/+nj!含有1、Bプレート上にコロニーを得た
。このコロニーの中からI、−チロシンを分解してコロ
ニーの周辺に透明な領域(クリアーゾーン)を形成する
1株を分離した。
株に対して通常の方法(、L Mo1.旧of、、 5
3.159(1970))により形質転換を行ない、ア
ンピシリン50pg/m11. T−−チロシン2+
ng/+nj!含有1、Bプレート上にコロニーを得た
。このコロニーの中からI、−チロシンを分解してコロ
ニーの周辺に透明な領域(クリアーゾーン)を形成する
1株を分離した。
この菌株よりプラスミドDNAを抽出(Nuclejc
Acid Re5earch、 7.1513(197
3)) シ、上記コンピテントな大腸菌JI8101株
に対して再度形質転換したところ、アンピシリン50μ
g/mj!、L−チロシン2w/ml含有Ll’lプレ
ート上に生育したコロニーはすべてクリアーゾーン形成
株であった。
Acid Re5earch、 7.1513(197
3)) シ、上記コンピテントな大腸菌JI8101株
に対して再度形質転換したところ、アンピシリン50μ
g/mj!、L−チロシン2w/ml含有Ll’lプレ
ート上に生育したコロニーはすべてクリアーゾーン形成
株であった。
(3) クローン化遺伝子がβ−チロシナーゼ遺伝子
であることの確認上記(2)により得られたクリアーゾ
ーン形成株をアンピシリン50μg/mρを含むLB培
地(10m j! )中で30°Cにて18時間培養し
た。
であることの確認上記(2)により得られたクリアーゾ
ーン形成株をアンピシリン50μg/mρを含むLB培
地(10m j! )中で30°Cにて18時間培養し
た。
集菌後、カテコールlOg/ R、ピルビン酸10g/
ρ。
ρ。
酢酸アンモニウム5 g/ 7!を含む反応液10m
e (pt18.0)に菌体を懸濁し、30℃で5時間
反応させた。
e (pt18.0)に菌体を懸濁し、30℃で5時間
反応させた。
反応終了液の一部をシリカゲル薄層クロマトプレート上
にスポットし、ブタノール:酢酸:水−4=2:1の溶
媒で展開させ、ニンヒドリン溶液噴霧により発色させた
ところ、標準I、−ドーパと同一のRf値(0,37)
を示した。
にスポットし、ブタノール:酢酸:水−4=2:1の溶
媒で展開させ、ニンヒドリン溶液噴霧により発色させた
ところ、標準I、−ドーパと同一のRf値(0,37)
を示した。
このことは、少なくともエルヴイニア・ハービコラAT
CC2]434株のβ−チロシナーゼ遺伝子を含む遺伝
子領域がベクターpBR322に挿入され、大腸菌中で
発現したことを意味している。
CC2]434株のβ−チロシナーゼ遺伝子を含む遺伝
子領域がベクターpBR322に挿入され、大腸菌中で
発現したことを意味している。
(4) β−チロシナーゼ遺伝子領域の小型化前記(
2)により得られたクリアーゾーン形成株が保持するプ
ラスミドrlNA (ps+ 2000と称する。)
を抽出し、制限酵素Sau 3AIで部分分解(37℃
、5分間)した。生じたDNA断片を予めRam1ll
で切断したベクターpFIR322と混合し、T4−D
NAリガーゼにより連結したのち、大腸菌111110
1株に対して形質転換を行なった。アンピシリン50
/Z g/m j! 。
2)により得られたクリアーゾーン形成株が保持するプ
ラスミドrlNA (ps+ 2000と称する。)
を抽出し、制限酵素Sau 3AIで部分分解(37℃
、5分間)した。生じたDNA断片を予めRam1ll
で切断したベクターpFIR322と混合し、T4−D
NAリガーゼにより連結したのち、大腸菌111110
1株に対して形質転換を行なった。アンピシリン50
/Z g/m j! 。
L−チロシン2 mg/m 1を含む1、Bプレート上
に生育し、大きなりリアーゾーンを形成する5株を選抜
した。これらの株よりプラスミドロNへを抽出し、各種
制限酵素による切断を行なった。その結果、比較的小さ
なりNA断片の連結された2種のプラスミドpST 2
073およびpsT2074について第1図に示す制限
酵素地図を得た。
に生育し、大きなりリアーゾーンを形成する5株を選抜
した。これらの株よりプラスミドロNへを抽出し、各種
制限酵素による切断を行なった。その結果、比較的小さ
なりNA断片の連結された2種のプラスミドpST 2
073およびpsT2074について第1図に示す制限
酵素地図を得た。
(5) β−チロシナーゼ遺伝子領域の限定上記(4
)で得られたプラスミドρSr 2073より、さらに
必須部分を限定するため、該プラスミドpsI2073
を制限酵素Pst Iで切断(37℃、2時間)した。
)で得られたプラスミドρSr 2073より、さらに
必須部分を限定するため、該プラスミドpsI2073
を制限酵素Pst Iで切断(37℃、2時間)した。
生成したDNA断片を予めPstlで切断したpUC1
8プラスミドと混合し、T4−11NAリガーゼで連結
し、大腸菌1111101株に対し形質転換を行なった
。上記(4)と同じ1、Bプレート上に生育した株の中
からクリアーゾーンを形成する株を選択し、該菌株が保
持するプラスミドの制限酵素解析を行なった。その結果
、最小のDNA断片を連結したプラスミドとしてpsl
22B3とpsl 2284を得た。これらプラスミ
ドの作製法を第2図に示す。
8プラスミドと混合し、T4−11NAリガーゼで連結
し、大腸菌1111101株に対し形質転換を行なった
。上記(4)と同じ1、Bプレート上に生育した株の中
からクリアーゾーンを形成する株を選択し、該菌株が保
持するプラスミドの制限酵素解析を行なった。その結果
、最小のDNA断片を連結したプラスミドとしてpsl
22B3とpsl 2284を得た。これらプラスミ
ドの作製法を第2図に示す。
プラスミドps12283とpsT 2284を保持す
る菌株のクリアーゾーンの大きさはプラスミドpsT
2073を保持する菌株と比較すると小さいものであっ
た。
る菌株のクリアーゾーンの大きさはプラスミドpsT
2073を保持する菌株と比較すると小さいものであっ
た。
これらの結果より、プラスミドps12283. ps
r2284に含まれるエルヴイニア・ハービコラへTC
C21434株の染色体11N八由来の断片(1,7K
b)が、β−チロシナーゼ活性を発現させるためには少
なくとも必要であると云える。プラスミドpST 22
83とpsl 2284の制限酵素地図を第3図に示す
。
r2284に含まれるエルヴイニア・ハービコラへTC
C21434株の染色体11N八由来の断片(1,7K
b)が、β−チロシナーゼ活性を発現させるためには少
なくとも必要であると云える。プラスミドpST 22
83とpsl 2284の制限酵素地図を第3図に示す
。
実施例2
第1表に示した菌株のそれぞれをL−チロシン2■7m
1.I−−フェニルアラニン2曙/mffを含むLB培
地(10+++ 1 )に接種し、30°Cで20時間
培養した。
1.I−−フェニルアラニン2曙/mffを含むLB培
地(10+++ 1 )に接種し、30°Cで20時間
培養した。
培養終了液より集菌し、生理的食塩水にて洗浄後、10
m7!の下記反応液に懸濁し、30℃にて反応を開始し
た。
m7!の下記反応液に懸濁し、30℃にて反応を開始し
た。
反応液組成
カテコール10g/ fi 、 ピルビン酸10g/
7!、酢酸ア7−E二6ム5g/ffi、 [!DT
A1g/ffi、亜硫酸ソーダ2g/β (pH8,0
) 2時間後の反応液中のL−ドーパ住産量を高速液体クロ
マトグラフィー(日本分光型、カラム:カテコールパッ
ク)を用いて定量した。結果を第1表に示す。
7!、酢酸ア7−E二6ム5g/ffi、 [!DT
A1g/ffi、亜硫酸ソーダ2g/β (pH8,0
) 2時間後の反応液中のL−ドーパ住産量を高速液体クロ
マトグラフィー(日本分光型、カラム:カテコールパッ
ク)を用いて定量した。結果を第1表に示す。
大腸菌 118101 0実施例3
実施例2と同様に処理した菌株を用いてL−チロシンの
製造を行なった。なお、反応液組成中のカテコールをフ
ェノールに変えたこと以外は実施例2と同様に行なった
。結果を第2表に示す。
製造を行なった。なお、反応液組成中のカテコールをフ
ェノールに変えたこと以外は実施例2と同様に行なった
。結果を第2表に示す。
xybtt仁7・ハービコラ ATCC214342,
7大腸菌 11B 101 0大
腸菌 HB 101 (9312074保持)8.3
7大腸菌 11B 101 0大
腸菌 HB 101 (9312074保持)8.3
第1図はβ−チロシナーゼ活性を有する遺伝子psT2
073とpsI 2074の制限酵素地図である。 第2図はpsr 2283およびpsi 221?4の
作製法を示す説明図である。 第3図はβ−チロシナーゼ活性を有する遺伝子pSI2
283およびpsl 2284の制限酵素地図である。
073とpsI 2074の制限酵素地図である。 第2図はpsr 2283およびpsi 221?4の
作製法を示す説明図である。 第3図はβ−チロシナーゼ活性を有する遺伝子pSI2
283およびpsl 2284の制限酵素地図である。
Claims (7)
- (1)β−チロシナーゼ活性を有し、塩基対数が1.7
Kbであり、そのDNA鎖中に制限酵素EcoRIで切
断される個所を含むβ−チロシナーゼ遺伝子。 - (2)β−チロシナーゼ活性を有し、塩基対数が1.7
Kbであり、そのDNA鎖中に制限酵素EcoRIで切
断される個所を含むβ−チロシナーゼ遺伝子とベクター
よりなる組換え体DNAにより形質転換された原核生物
細胞。 - (3)原核生物が大腸菌である特許請求の範囲第2項記
載の細胞。 - (4)大腸菌がエシエリヒア・コリSI2074(FE
RM P−8747)である特許請求の範囲第3項記載
の細胞。 - (5)β−チロシナーゼ活性を有し、塩基対数が1.7
Kbであり、そのDNA鎖中に制限酵素EcoRIで切
断される個所を含むβ−チロシナーゼ遺伝子とベクター
よりなる組換え体DNAにより形質転換された原核生物
細胞の存在下に、カテコールまたはフェノールをピルビ
ン酸およびアンモニアまたはアンモニウム塩と反応させ
ることを特徴とするL−ドーパまたはL−チロシンの製
造方法。 - (6)原核生物細胞が大腸菌である特許請求の範囲第5
項記載の方法。 - (7)大腸菌がエシエリヒア・コリSI2074(FE
RM P−8747)である特許請求の範囲第6項記載
の方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP10112086A JPH0698003B2 (ja) | 1986-05-02 | 1986-05-02 | β―チロシナーゼ活性を有するDNA断片および形質転換された原核生物細胞 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP10112086A JPH0698003B2 (ja) | 1986-05-02 | 1986-05-02 | β―チロシナーゼ活性を有するDNA断片および形質転換された原核生物細胞 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62259589A true JPS62259589A (ja) | 1987-11-11 |
JPH0698003B2 JPH0698003B2 (ja) | 1994-12-07 |
Family
ID=14292217
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP10112086A Expired - Lifetime JPH0698003B2 (ja) | 1986-05-02 | 1986-05-02 | β―チロシナーゼ活性を有するDNA断片および形質転換された原核生物細胞 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0698003B2 (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63222682A (ja) * | 1987-03-10 | 1988-09-16 | Ajinomoto Co Inc | β−チロシナ−ゼの製造法及びβ−チロシナ−ゼ生産菌 |
EP0450920A2 (en) * | 1990-03-31 | 1991-10-09 | MITSUI TOATSU CHEMICALS, Inc. | Cloned tyrosine phenol-lyase gene, recombinant plasmid containing it and E. coli transformed with the plasmid |
WO2001048210A1 (fr) * | 1999-12-23 | 2001-07-05 | Fudan University | Nouveau polypeptide, tyrosinase 10, et polynucleotide codant pour ce polypeptide |
-
1986
- 1986-05-02 JP JP10112086A patent/JPH0698003B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63222682A (ja) * | 1987-03-10 | 1988-09-16 | Ajinomoto Co Inc | β−チロシナ−ゼの製造法及びβ−チロシナ−ゼ生産菌 |
JP2521945B2 (ja) * | 1987-03-10 | 1996-08-07 | 味の素株式会社 | β−チロシナ−ゼの製造法及びβ−チロシナ−ゼ生産菌 |
EP0450920A2 (en) * | 1990-03-31 | 1991-10-09 | MITSUI TOATSU CHEMICALS, Inc. | Cloned tyrosine phenol-lyase gene, recombinant plasmid containing it and E. coli transformed with the plasmid |
US5260198A (en) * | 1990-03-31 | 1993-11-09 | Mitsui Toatsu Chemicals, Inc. | Cloned tyrosine phenol-lyase gene, recombinant plasmid containing the same and escherichia coli transformed with the same |
WO2001048210A1 (fr) * | 1999-12-23 | 2001-07-05 | Fudan University | Nouveau polypeptide, tyrosinase 10, et polynucleotide codant pour ce polypeptide |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0698003B2 (ja) | 1994-12-07 |
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