JPS62240862A - 少なくとも1つの核酸配列を増幅する方法及び装置 - Google Patents

少なくとも1つの核酸配列を増幅する方法及び装置

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JPS62240862A
JPS62240862A JP62040524A JP4052487A JPS62240862A JP S62240862 A JPS62240862 A JP S62240862A JP 62040524 A JP62040524 A JP 62040524A JP 4052487 A JP4052487 A JP 4052487A JP S62240862 A JPS62240862 A JP S62240862A
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    • C40B60/14Apparatus specially adapted for use in combinatorial chemistry or with libraries for creating libraries

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明はDNA或いはRN八(核酸)を増幅するための
連鎖反応の分野に関し、より詳しくは、この方法を温度
循環により自動的に行う機械の分野に関する。
既存の配列から核酸配列を合成するための従来の方法、
例えばホスホジエステル及びホスホトリエステル法[ナ
ラング等(Narang et al、) Math。
Enzymol、68.90(1979) ;及びブラ
ウン等(13rown etal、)MeLh、Enz
ymol、68.109(1979)をそれぞれ参照]
は多量の核酸配列を製造するためには実用的なものでは
なかった。その様な方法は労力及び時間が嵩み、高価な
装置及び試薬を必要とし、又総括的効率の低いものであ
る。
少瞳の既存の配列から多量に核酸配列を製造する方法が
ある。。その様な方法は適当な宿主系内に核酸配列をク
ローン化し、核酸配列が挿入されたヘクターが複製され
る宿主を培養してベクターのコピー従って配列を得るこ
とを含むものである。
′I゛、マニアティス等(T、Maniatis et
 al、)Molecular  CIoniB   
:   八 Laboratory  Manual。
Co1d Spring l1arbor Labor
atory+ 390−401(1982);及び米国
特許4,416,988号及び4,403.036号各
明細書参照。元の配列は又ベクターに挿入前に有機合成
することもできる。米国特許4,293.652号明細
書参照。
サイキ等(Saiki at al、)、5cienc
e 230.1530−1534 (1985)により
説明される方法は、プライマー、ヌクレオチドトリホス
フェート、及びDNAポリメラーゼなどの重合用試剤を
用いて1種以上の特定の核酸配列或いはその混合物を増
幅するために工夫されたものである。−・つのプライマ
ーの延長生成物は他のプライマーにハイブリダイスされ
ると所望の特種の核酸配列の製造のための鋳型になり、 又その逆も同様である。この方法を必要なだけ繰返して
所望量の配列が製造される。
この方法は多量のDNA或いはRNAが容易に入手可能
でなく、そしてより多くのDNA及びRNAが試験を行
うために十分な量を得るために調製されなければならな
い場合に、胎児その他の供与者からのDNA或いはRN
Aについて臨床試験を行うために特に有用である。特定
の病気に特徴的なりNA或いはRNAの存在は、患者か
らの核酸のサンプルを増幅し、そして試験において検出
される核酸配列の存在を分析するための各種プローブ操
作を用いることにより検出することができる。その様な
試験には上記サイキ等により説明されている鎌状赤血球
貧血の胎児診断があり、この場合にはゲノムDNAの特
定のω−グロビン標的配列の増幅の結果、標的DNAコ
ピーの指数的増大(220、000倍)が生じ、診断の
感度及び速度を増大すると共にその複雑性を減少させた
。もう一つの試験はその犠牲者の核酸配列を変更させる
と考えられているAIDSウィルスの診断である。
この増幅方法は上記分子クローニング法と幾つかの類似
性を存しているが、しかし、宿主生物体の伝播を含まず
、そこに含まれる危険性及び不都合が回避される。加え
て、この増幅法は目的配列と関連しない核酸配列の合成
を必要とせず、それにより複雑な生物学的混合物からの
生成物の広範な精製の必要性を無くす。最後に、この増
幅は目的配列からの多量の核酸配列を製造するための及
びその様な配列を比較的短時間内に製造するためのその
他の方法よりも効率的である。
当初上記増幅方法は実験室において手動により行われた
。この手動方法は多数繰返される液体取扱工程及び制御
された温度におけるインキュベーションを含むものであ
る。これは単に時間がかかり退屈であるのみならず、そ
れはヌヒトのオペレータによる緊張のはずれによって生
ずる誤りにもつながるものである。その様な誤りは遺伝
的出産欠陥の診断ミスや不必要な妊娠中絶が行われたり
、或いは出産欠陥が存在する場合に妊娠中絶がなされな
いことなどが生じ得る。更に、その様な誤りの結果鎌状
赤*球貧血その他の遺伝的障害の誤診を生じ得る。
更に、ある種の核酸は他のものよりもより効率的に増幅
し、その結果核酸配列増幅のあるものは他のものよりも
より多くの増幅サイクルを必要とする。実験室労働力の
コストは高いことがあり得るので、又実験室が曝される
危険性は誤って増幅を行う場合の誤りにおいて高いので
、この増幅方法を自動化し得る系の必要性が生じた。
本発明は、熱安定性酵素が用いられる場合に、この増幅
方法を実施するための温度−循環装置を利用するもので
ある。熱安定性酵素の使用は、酵素が熱の存在下におい
て不安定である場合に必要とされる酵素の液体移転の必
要性を回避する。
より具体的には、本発明は下記手段を含んでなる少なく
とも一つの特定の核酸配列の自動化された増幅を行うた
めの装置に関する: 熱安定性酵素、増幅されるべき核酸配列、4種の異るヌ
クレオチドトリホスフェート及び増幅されるべき各々異
る特定の配列について一つのオリゴヌクレオチドプライ
マーよりなる反応混合物(ここで、各プライマーは、一
つのプライマーから合成される延長生成物がそれがその
相補体から分離された後に他方のプライマーの延長生成
物の合成のための鋳型として役立ち得るように、各特定
の配列の異る鎖に対して実質的に相補的であるように選
ばれる)を保持するための熱伝導性容器、該容器を複数
の所定の(ユーザーにより規定された)温度のいずれか
に加熱、冷却及び維持するための手段であって、且つ該
容器が加熱、冷却、又は維持される該所定温度がいづれ
であるかを制御する制御信号を受取るための入力を存す
る手段、及び 温度レベル、温度変化率勾配、及びある温度レベルにお
けるインキューベーションの時間を制御するために適当
な制御信号を発生するための該加熱及び冷却手段の人力
に連結されたコンビョ、−タ手段。
本発明は又1記手段を含んでなる少なくとも一つの特定
の核酸配列の自動化された増幅を行うための装置を提供
するものである: 該増幅されるべき核酸配列、4種の異るヌクレオチドト
リホスフェート、熱安定性酵素及び増幅されるべき各々
の異る特定の配列につき一つのオリゴヌクレオチドプラ
イマーを含んでなる反応混合物(ここで、各プライマー
は、一つのプライマーから合成される延長生成物がそれ
がその相補体から分離された後に他方のプライマーの延
長生成物の合成のための鋳型として役立ち得るように各
特定の配列の異る鎖に実質的に相補的であるように選ば
れる)を保持するための第一の手段(ここで、該保持は
任意の選ばれた温度或いは複数の温度において行われる
)、及び 該第一の手段にその内容物を第一の期間加熱させ、そし
てその内容物を第二の期間冷却させることを含む所定の
順序の工程を自動的に行うための第二の手段。
又、もう一つの実施態様においては、本発明は下記手段
を含んでなる、アッセイの連続工程の一部に加熱及び冷
却工程を含むアッセイを行うための装置を提供するもの
である: 加熱及び冷却工程が有益である一連の工程を行うための
手段、及び 該加熱及び冷却工程を、アッセイを構成する一連の工程
における適当な時点において行わせるための該手段内の
手段。
もう一つの実施態様においては、本発明は下記工程を含
んでなる、少なくとも一つの特定の核酸配列を増幅する
ための方法を提供する:コンピューターにより指令され
た機械を用いて、増幅されるべき核酸、4種の異るヌク
レオチドホスフェート、熱安定性酵素、及び増幅される
べき各々の異る特定の配列ついて1個のオリゴヌクレオ
チドプライマーよりなるサンプル(ここで、各プライマ
ーは、一つのプライマーから合成される延長生成物がそ
れが相補体から分離された場合に他のプライマーの延長
生成物の合成のための鋳型として役立ち得るように各特
定の配列の異った鎖に実質的に相補的であるように選ば
れる)(以下混合物という)を所定の温度に所定時間加
熱する工程、及び コンピューターにより指令された機械を用いて、この混
合物をユーザーにより規定された温度に加熱し、そして
この混合物をユーザーにより規定された温度に冷却する
工程。
更にもう一つの態様においては、本発明は下記工程を含
んでなる、少なくとも一つの特定の核酸配列を増幅する
だめの方法を提供する:a)コンピューターにより指令
された機械を用いて、加熱装置に熱信号を与えて反応室
を所定時間、所定温度まで及び/又は所定温度において
加熱させる工程(ここで、該反応室は前記の混合物を含
む)、 b)コンピューターにより指令された機械を用いて、冷
却装置に冷却信号を与えて該反応室を所定時間所定温度
まで冷却させる工程、及びC)これまでに行われたサイ
クル数がユーザーにより規定されたサイクル数より少な
い場合に、能動冷却信号の経過時間がユーザーにより規
定された時間に等しい時に、工程a)からC)よりなる
ザイクルを繰返す工程。
本発明の装置は又一般的に、操作のための電力供給源、
装置の全要素を収用するための構造系統及びオペレータ
ーによる装置の制御を可能にするキーボード及びディス
プレイパネルを含むものである。
そこで反応が起こる試薬を保持する受容部はその温度を
ユーザーにより規定されたあるインキュヘーションプロ
フィールに一致するよう゛にコンピュータにより制御さ
れる。3個の循環流体貯蔵器及びソレノイド操作される
バルブ、或いは任意のその他の方法を用いて温度が制御
される。
MaLcrials [1lecLronics Pr
oducts Corporation(トレントン、
ニューシャーシー州)から市販されているPc1Lie
r  (ベルチェ)ソリッドステートヒートポンプ、並
びにコンピュータにより制御される水熱交換器或いは任
意のその他の加熱及び冷却系も使用されてよい。
ソレノイドにより操作されるバルブが用いられる場合に
は、それらは、コンピュータ制御下にある増幅操作中の
適当な時点において、適当な温度の流体が熱伝導性受容
部のための支持構造を通して通過することのできるよう
にコンピュータに連結される。この受容部は、コンピュ
ータ制御下に、受容部の支持構造を通して高温流体或い
は低温流体のいづれかを入れるように工程中の適当な時
点において制御信号をソレノイドにより操作されるバル
ブに送信することにより、二つの温度間にスイッチされ
る。この反応室に温度センサーが連結され、そして実際
の温度を指示する信号を与えるためにコンピューターが
使用される。コンピュータは実際の温度を所望温度と比
較する。この様にして誤差信号が発生され、それを用い
て反応室を加熱及び冷却する装置を制御する。コンピュ
ータは又、この方法おけるインキュベーションを実施す
るための特定の温度における経過時間も追跡する。
出発物質が反応ウェル内に負荷された後に増幅処決を実
施するために機械が行う基本的操作は水浴を用いる一つ
の実施態様においては以下の通りである。
反応室の支持構造体を介して高温流体を入れるようにコ
ンピュータがソレノイド操作バルブに信号を出すことに
より反応ウェルの内容物を高温流体の温度まで加熱する
高温流体が“オン”の状態で入れられる時間は経過時間
カウンタにより測定される。
コンピュータは高温流体が“オン”の状態で入れられた
経過時間を記憶中の変数設定値と対比する。好ましい実
施態様においてはこの変数はユーザーインターフェース
を介してユーザーにより変更することができる。他の実
施態様においては、それは固定されていてもよい。
経過時間が高温インキュベーションに対する変数に一致
した場合には、コンピュータはソレノイド操作バルブに
高温流体流れを停止させ、反応容器の支持構造体を通し
て低温流体流れを入れるように信号を送る。
高温及び低温流体のために経験的に決定された“オン”
の状態の時間の代りに温度制御フィードバックを用いる
実施態様においては、ユーザーインターフェースを介し
てコンピュータ内に、反応室についての温度プロフィー
ル対時間がプログラムされる。これにより、コンピュー
タが、特定の増幅反応パラメータにより要求される順序
で反応温度或いは反応試薬容器温度を制御する。その様
な実施態様においては、反応室の温度を追跡するために
サーミスタ或いはその他の温度センサーを用い反応室の
実際の温度をユーザーにより規定された温度プロフィー
ルと比較することにより得られる誤差信号が発生する。
この誤差信号を用いてヒートポンプその他の加熱及び冷
却装置を制御し、高温加熱及び高温インキュベーション
の際及び冷却及び低温インキュベーションの際に所望の
温度プロフィールを維持する。
温度フィードハックの態様或いは経験的に決定された時
間の態様のいづれにおいても、コンピュータはタイマー
をスタートさせ、高温或いは低温流体流れに対する経過
時間或いは特定の温度における経過時間を温度プロフィ
ールにおける各セグメント即ちし・フグについての記憶
装置内に貯蔵されたユーザーにより規定された変数と対
比する。
好ましい実施態捧においては、これらの変数はユーザー
によりユーザーインターフェイスを介して設定すること
ができる。温度センサーが用いられない場合の実施態様
においては、高温或いは低温流体流れの提案される時間
についての変数は、ユーザーにより経験的に反応容器を
出発温度から所定温度まで加熱或いは冷却するのに必要
な時間プラス所望のインキュベーション時間として決定
される。
高温及び低温流体貯蔵器及びソレノイド操作バルブを用
いる実施態様のための上記温度プロフィール制御装置及
び方法は反応室に連結されたPettierヒートポン
プ或いはその他の形態の加熱及び冷却装置を用いる実施
態様にも同様に適用可能である。
第1図は熱安定性酵素を使用して核酸増幅方法を実施す
ることのできる機械の一般的ブロック線図である。増幅
されるべき核酸試料及び必要な試薬よりなる出発物質は
先ず熱交換器10内の反応ウェル40中に充填される。
熱交換器10は反応ウェル40を支持し、このものは熱
交換器内に機械工作された凹みであってよいが、しかし
、好ましくは反応に含まれる流体を保持し、且つ熱交換
器10内に形成された凹みにあるプラスチック容器(以
後時々プレート1と称する)である。好ましい実施態様
においては、熱交換器1oは好ましくはアルミニウム製
の与えられた数の0.5mlのEppendorf管を
その中に嵌込むことができるような大きさの複数の凹み
を形成した熱伝導性ブロックである。
これらの管の目的は、同一の反応ウェルが異った核酸配
列を増幅させるために用いられた場合に交差汚染を避け
るように流体を熱交換器IO内の凹みの壁から分離する
ために反応ウェルを内張すするものである。熱交換器1
0の目的は、管を支持し、そして反応成分がユーザーに
より規定された時間にわたり各種温度においてインキュ
ベートされるように、反応ウェル内の管内に貯蔵された
流体に或いは流体から熱エネルギーを移動させるための
熱交換器として作用することである。
その目的のために、熱交換器lOは反応室40のごとき
反応ウェル内の流体が操作中の適当な時点で、しかも適
当な時間にわたり且つ加熱及び冷却されるような構造を
有していなければならない。
この加熱及び冷却機能を実行するために、任意の構造成
いは方法、例えば熱交換器内或いはそれに連結された電
気加熱、及び冷蔵装置、例えばヒートポンプ或いはソリ
ッドステートの熱電子クーラーなどが用いられる。この
加熱及び冷却のためには使用される温度を到達しそして
それを維持することのできる装置であれば何であれ用い
られ、又その加熱及び冷却装置がユーザー規定の温度対
時間のプロフィールを達成するものであればよい。
第1図に示される好ましい実施態様においては、一つの
その様な電気的に駆動される加熱及び冷却装置はMel
cor Corporation ()レントン、ニュ
ーシャーシー州)から市販されているPettierソ
リッドステート熱電子ヒートポンプ12である。コンプ
レフサ、エバポレータ及びコンデンサを用いる通常のヒ
ートポンプも又ヒートポンプ12として有用である。P
e1Licr装置などのソリッドステートヒートポンプ
はバック対バックのPN結合を形成する配向多結晶イン
ゴットの形態において且つセラミック板でインターフェ
イスされた銅バスバーに末端がハンダ付されたN及びP
型のテルル化ビスマスよりなる。第3図はその様な配置
を示す。これらのヒートポンプは、ヒートシンク14と
熱交換器10の間のいづれの方向にも熱を移動させるた
めの既知の方法により、特にそれらの中に電流を通すこ
とにより加熱或いは冷却する。これらのソリッドステー
トヒートポンプはGilfordInsLrumenL
s Corporationによりギュベットを加熱及
び冷却するために用いられており、150ワツトまでの
範囲のワット数が利用可能である。これらの装置はこれ
らに熱的に連結された物質の塊を、)■氏−150度乃
至+110度の範囲の温度まで冷却或いは加熱すること
ができる。その様な半導体は熱交換器■0に公知の方法
で熱的に連結することが出来、或いは挿入管或いはウェ
ルに直接熱的に連結することも可能である。その様な半
導体は標単的プロセス制御アルゴリズムに従い、所望の
温度レベルに応じてそれらの中を流れる電流を変調する
ことにより容易に制御して特定の温度を達成し、そして
維持することができる。その様なソリッドステートヒー
トポンプ系の設計方法はMelcor(9905pru
ce 5LreeL、  トレントン、NJO864B
 (609) −393−4178)による出願に開示
されている。
第2図に図示されたもう一つの実施態様においては、流
体の貯蔵器を一定温度に維持する水浴I6及び18が使
用される。ここでも又、熱交換器10はアルミニウム板
或いは良好な熱伝導特性を有するその他の金属である。
この熱交換器の金属内に加熱或いは冷却流体がポンプ送
りされる流路が機械工作され或いは成形される。第2図
に図示される機械の一つの実施態様において、熱交換器
10は管42に連結した流体入口及び管44に連結した
流体出口を有する。これらの二本の管は流体マルチプレ
キサ−46の出力に連結している。
この流体マルチプレキサ−は二対の入口/出口を有する
。一方の対47は高温流体搬送管48及び50に連結さ
れており、そして他方の対49は低温流体搬送管52及
び54に連結されている。各対の口は一つの入口路及び
一つの出口路を有する。
例えば第一の対は管48に連結されたその入口路及び管
50に連結されたその出口路を有する。同様に流体マル
チプレキサ−46の出口対は管42に連結された一つの
出口路及び管44に連結された一つの入1コ路を有する
。流体マルチプレキサ−46の目的は第一の入口対、管
48及び50、或いは第二の入口対、管52及び54の
いづれかを選択的にライン56上の選択信号に従って出
口対43に選択的に連結することである。第一の対の口
47が選ばれるならば、管48は5OV−1と示される
ソレノイド操作バルブの形の流体マルチプレキサ−46
中の内部流体流路を介して流体連通的に管42に連結さ
れる。同様に、管50は5OV2で示されるソレノイド
操作バルブの形の流体制御マルチプレキサ−46内の内
部流体流路を介して管44に連結される。第二の対の口
49が選ばれる場合にも同様な接続が生ずる。
この様にして、熱交換器10、及びウェル40のごとき
反応ウェル内の管に貯蔵された流体の温度は導体56上
のTEMP 5ELECT信号の状態により制御される
。一つの実施態様において、流体マルプフレキサ−46
は適当に管42 、44 、48 、50 、52及び
54と相互連結された5OVI〜4で示される四つのソ
レノイド操作バルブで操作される。しかしながら、上記
流体切替えを行うことのできる任意の装置で十分である
。事実、熱交換器10の温度の操作に関してソリッドス
テートの或いは通常のヒートポンプ12が使用されるな
らば、流体マルチプレキサ−46の必要性及び費用が除
去される。
流体マルプフレキサー46に連結された管内を流れる加
熱及び冷却流体はそれぞれ高温流体貯蔵器16及び低温
流体貯蔵器18からポンプ送りされる。これらの貯蔵器
の目的はその様な流体の体積を維持すること或いは一定
温度において凍結防止することである。一般的に、高温
流体は80〜150℃、好ましくは90〜100℃の温
度に維持され、及び低温流体は約35〜60℃、好まし
くは37℃〜50℃の一定温度に維持される。貯蔵器1
6及び18はそれらがそれらの流体貯蔵器を維持する温
度に関して調整可能である。水浴18は一35〜+15
0℃の範囲のいづれにおいても貯蔵器温度を達成するこ
とができるように調整可能であるのが好ましい。この水
浴18は131の水容積及び毎分100℃を越える冷却
速度を有するような迅速な冷却特性を有するのが好まし
い。これは温度安定化時間を最少にするのに役立つ。増
幅操作の期間に亘ってその様な温度を達成しそして維持
することのできる任意の流体加熱及び冷却装置が本発明
の目的のために十分である。好ましい実施態様において
は、VWI? 1135及びVWR1155水浴が用い
られる。
増幅方法において用いられる酵素はまず反応ウェル40
内のその他の試薬に添加される。
Qlに用いられる酵素は以下に規定するような核酸鎖を
変性するために用いられる高温に耐えることのできる熱
安定性酵素である。従って、熱安定性酵素を温度プロフ
ィールのいづれかの点において反応ウェルに添加するた
めに液体取扱器は必要ではない。酵素は常時反応ウェル
40に留まってよい。
反応容器の温度の制御は第1図の実施態様及び第2図の
実施B様のいづれの場合にもCPU20により維持され
る。CPUは以下に詳細に説明される制御プログラムを
実行する。基本的には、記憶装置24に貯蔵されている
制御プログラムはヒートポンプ12或いは流体マルチプ
レキサ−46を制御する。ユーザーは、どの温度プロフ
ィールをユーザーが実行したいかに関してCPU20及
びディスプレイ/キーボードユーザーインターフェース
22を介して制御プログラムにより質問される。
ユーザーは所望プロフィール上の温度及びユーザーがそ
れらの温度を達成したいと思う回数を回答する。これら
の回答はユーザーインターフェース22からCPU20
により読取られる。ユーザーへの質問はユーザーインタ
ーフェース22上のディスプレイに表示されそしてユー
ザーの回答はそのキーボードを介して受取られる。所望
プロフィール上の時間及び温度のチェックポイントの形
態でのユーザーの回答はRAM 24内に貯蔵される。
典型的時間対温度プロフィールを第5図に示す。cr’
uは次いで反応容器40を所望温度プロフィールに維持
するために熱を熱交換器10に添加するか或いはそれか
ら除去するための適当な制御信号を発生する。
第1図に示された実施態様の場合において、ヒートポン
プを制御するためにCI’U20により発生される制御
信号はパルス幅変調制御パルスのパルス列より構成され
るものである。これらのパルスはライン56上のヒート
ポンプインターフェース回路26に連結される。
ヒートポンプインターフェースの回路構成をより詳細に
第4図に示す。このインターフェース回路の目的はパル
ス幅変調制御パルスを論理レベルにおいてCPUからソ
リッドステートヒートポンプ12を通る同一継続時間の
高電流パルスに変換することである。この目的のために
四つのNチャンネルMOSFUTパワートランジスタ3
0 、32 、34及び36が用いられる。これらのト
ランジスタは負荷としてのソリッドステートヒートポン
プ12とブリッジ配置で接続される。このブリッジはラ
イン39及び40上のCPUからの二つの制御信号の影
響下に負荷12を通る電流の流れの方向を反転させる。
ライン40上の冷却制御信号が能動的である場合には、
トランジスタ34及び32のスイッチを入れ、そしてト
ランジスタ3o及び36のスイッチを切る。この理由は
冷却信号がライン58によりトランジスタ34のゲート
に連結され、このトランジスタのスイッチを入れるから
である。
この信号は又ライン64上のゲート電圧を接地ボテーン
シャルまで引下ろすトランジスタ62のスイッチを入れ
て、それによりトランジスタ36のス、インチを切る。
ライン39」二の熱制御信号は常にライン4o上の冷却
制御信号と同様に反対二元状態にある。冷却が能動的で
ある場合には、トランジスタ3oのゲート66は論理O
において低く、このトランジスタは切られてしまう。ラ
イン66上の論理0は又トランジスタ68のスイッチを
切り、それはライン70上の→−15ボルトの電圧をし
てトランジスタ32のゲート72を論理ルベルに駆動さ
せる。これがトランジスタ32のスイッチを入れ、それ
により負荷12を介して右から左への、即ちライン70
及び電力供給源からトランジスタ34のドレイン及びソ
ースを通りライン76、負荷12及びライン78を通り
そしてトランジスタ32のドレイン及びソースを通り接
地に至る電流経路を完成する。
熱信号が能動的である場合には、反対の状況が生ずる。
この場合には、トランジスタ30 、68及び36のス
イッチが入れられ、トランジスタ34 、62及び32
のスイッチが切られる。
第2図に示された実施態様においては第4図のインター
フェース回路は必要ではない。しかしながら、CI) 
Uにソレノイド操作バルブを制御させるために幾つかの
ソレノイド駆動器インターフェースが必要である。適当
なインターフェースの設計は当業者によく知られている
第1図或いは第2図のいづれかの実施態様における(J
’t120は数多くの異った種類のコンピュータのいづ
れであってもよい。それは通常コンピュータと称される
もの、LFE Corporation  (クリント
ン、マサチューセッツ州)から市販されているコン1−
ローラなどの既製のコントローラであってよく、或いは
それはIBMその他のパーソナルコンピュータ、ミニコ
ンピユータ或いはメインフレームであってよい。いづれ
の種類のコンピュータが使用されても、それはリアルタ
イムにおいて或いはコンピュータが設定される時点のい
づれにおいても所望温度プロフィールに関し、ユーザー
からのデータを許容することのできるものでなければな
らない。第1図及び第2図のセンサー80のごとき実際
の温度センサーを用いる態様において、「設定点」を計
算するための何等かの機構がなければならない。「設定
点」とは実際の温度と目標温度の間の誤差に基づいて誤
差信号を計算する際に用いることのできるユーザー規定
温度プロフィールからとられる目標温度である。次に第
5図に図示される典型的温度プロフィールを参照する。
典型的ユーザー規定温度プロフィールチェックポイント
が小円として示されている。チェックポイント1は時間
T0における反応容器40中の温度レベルL0により特
徴付けられる。チェックポイント2はより遅い時間T、
における温度レベルL2により特徴付けられる。チェッ
クポイント3は時間T2などにおける反応容器40にお
ける温度レベルL2の存在により特徴付けられる。これ
らのチェックポイントの間の区間は「レッグ」と称され
る。
実際の温度センサーを用いない実施態様においてC11
1120は加熱或いは冷却作用が行われる際の時間を追
跡するようにプログラムされなければならない。更に、
CPUは加熱或いは冷却レッグの際の実際に経過した時
間を対比させる1以上の経験的に求められた時間を貯蔵
することができなければならない。これらの経験的に決
定される時間はユーザーにより実験的に決定されるもの
である。
典型的にはユーザーは第4図のソリッドステートヒート
ポンプのインターフェースの設計に際し、ある種の電流
を設定し、この電流を第1図の実施態様における全ての
加熱及び冷却に用いる。第2図の実施態様の場合におい
ては、ユーザーは高温及び低温貯蔵器16及び18の温
度レベルを設定しなければならない。第1図の実施態様
の場合における固定された電流及び第2図の実施態様に
おける貯蔵器の固定された温度レベルは、ある与えられ
た質量の熱交換器10及び反応容器及び内容物について
ユーザーにより規定される加熱或いは冷却変化率を確立
する。ユーザーは次いで所望のチェックポイントを規定
し、及び固定された加熱或いは冷却速度においてこれら
のチェックポイントまで加熱或いは冷却するまでに必要
な時間を決定する。チェックポイントに到達するまでの
時間が許容可能でない場合には、時間が正しくなるまで
加熱或いは冷却速度を調節しなければならない。
勿論、この手法は加熱及び冷却レッグの傾斜が「経験的
種類」の実施態様と称されるこれらの実施態様を用いる
場合には、常に同一でなければならないので加熱或いは
冷却速度がリアルタイムで調整することができない場合
には余り、柔軟性があるとは云えない。
他の経験タイプの実施態様の種類はcpυ20が各レッ
グ上において異った加熱及び冷却速度を用いるようにプ
ログラムすることである。これは各レッグに異った傾斜
をもたせる。これはパルス幅変調を用いて達成されるが
、しかし第1図及び第2図の実施態様のいづれにおいて
も如何なる温度センサー及び実際の温度フィードバック
をも用いずに達成される(破線部の温度センサーの図示
はこれらの実施態様を示すことを目的としたものである
)。これらの代替的実施態様においては、加熱或いは冷
却電流(即ち第2図の実施態様においては流体流)はパ
ルスの流れである。本来のサイクルはCl1lJ20に
よってより大きな加熱或いは冷却速度が必要である場合
には、パルスの“オン”時間が延長されるようにCPU
20により制御される。加熱或いは冷却速度が残少され
るべき場合には反対か状況が適用される。これらの実施
態様においては経験時間及び加熱及び冷却速度は共にチ
ェックポイントにおける温度レベル間の間隔が所望通り
になるまで調整されるので温度プロフィールを調整する
ためのより大きな自由度を有する。
−C的に、これは好ましい実施態様よりもユーザー側に
より多くの作業を要求し、余り正確ではない。その理由
は、一度ユーザーが各レッグに対して固定された加熱或
いは冷却速度を確立すると、その速度がそのレッグに対
して固定され、変化する条件をバ1酌するためにリアル
タイムに変更することができない。即ち、これらの実施
態様においては、変化する周囲条件或いはその他の変化
を補正するためにCIIU20はリアルタイムで加熱及
び冷却速度を変更しない。
好ましい実施態様は加熱及び冷却速度を制御するために
実際の温度フィードバック及び閉ループ制御系を用いる
。これはリアルタイム誤差信号発生により所望温度プロ
フィールに実際の温度プロフィールを一致させることを
可能にする。好ましい実施態様を実施するために、CI
’U20はユーザーに所望の温度プロフィールについて
「チェックポイント」を入れさせるようにプログラムさ
れる。
次いでCPU20は経過時間を測定するために時計の進
行を開始し、そしてチェックポイントにより定義された
所望の温度プロフィールに基づいて「設定点」を定期的
に計算する。これらの計算された設定点は達成目標であ
り、誤差信号を発生するためにもう一つのソフトウェア
ルーチンにおいて使用される。
誤差信号発生ルーチンは温度センサー80からの反応室
の実際の温度を読取りそれを設定点により定義された所
望温度と対比する。第5図の温度プロフィールについて
計算された典型的な設定点はチェックポイント1及び2
の間のレッグl上の三つのX印により示されている。こ
の比較は誤差信号をもたらし、それはパルス幅変調ルー
チンにより用いられて加熱及び冷却装置による反応室の
加熱或いは冷却を引起こす制御信号を発生する。
このパルス幅変調ルーチンは加熱及び冷却制御信号のた
めの必要な“オン”時間即ちデユーティサイクルを計算
し、そしてこれらの二つの制御信号のいづれが能動的で
あるべきかを決定する。次に、適当な制御信号が発生さ
れ、ソリッドステートヒートポンプインターフェース2
6或いは流体マルチプレキサ−その他の加熱及び冷却装
置に書込まれる。
第1図及び第2図に示された実施態様のためにセンサー
80を用いない経験時間実施態様についてこの機械が行
わなければならない増幅方法は第6図におけるフローチ
ャート形式に与えられている。この方法はブロック74
においてユーザーからの増幅処理をスタートさせるコマ
ンドでスタートする。この時間前にユーザーは熱交換器
10内の反応室40中に適当な酵素を増幅されるべき核
酸配列及び以下に規定する適当な試薬と共に充填してお
かねばならない。ある実施態様においては、熱交換器1
0内の反応室70には米国特許4.478.094号に
より説明されているCetus Corpo−rati
on (エメリービル、カリフォルニア州)からの液体
取扱器などの通常の液体取扱器(図示せず)により自動
的に適当な出発物質が装填される。
このスタートコマンドを受取ると、CPU70は工程8
2において第一のチェックポイントデータを検索し、そ
して第2図の温度選択ライン56上に適当な信号を与え
(第6図の操作方法は第1図に示された実施態様にも同
様に適用可能である)、SOV対46の開口部に熱交換
器IOを以下において温度変数り、と称するユーザー規
定レベルに等しい高温に加熱査せる。
幾つかの実施態様においては、温度変数り、は変数では
なく、5高温貯蔵器16の温度において固定された定数
である。その他の実際の温度フィ−Iハックデータを用
いる非−経験的実施態様においては変数LHはユーザー
規定のものであり、CPU70ば反応室40の温度を監
視し、温度制御装置(ソレノイド−操作バルブプラス貯
蔵器或いはヒートボンプインターフェースプラスヒート
ボンブ)に適当なコマンド信号を発して所望の温度に達
するまでそれに熱交換器10を加熱させ、次いで温度制
御装置に適当なコマンドを発して所望温度を維持させる
。現在説明されている経験的実施態様においては、CP
U20によっては熱交換器10の温度の監視は行われな
い。しかしながら、好ましい実施態様においては熱交換
器10及び反応容器の温度はCPU40により監視され
、及び誤差信号が実際の温度をユーザー−規定チェック
ポイントからの計算された設定点と対比することにより
発生され、ユーザー−規定時間対温度プロフィールに従
って熱交換器10の温度を制御する。
この高温インキュベーション時の反応室40の温度は8
0〜109 ”C5好ましくは90〜100℃に維持さ
れるべきである。変性過程が生ずる最小温度は80℃で
ある。温度LHまでの温度上昇プロフィールは可能な限
り迅速であるべきであり、1サイクル内の全完結時間に
おける時間を節約するために通常0.5〜5分間、より
好ましくは1〜3分間である。
勿論全てのこれらが起こる前にユーザーはチェックポイ
ントデータを入れなければならない。ユーザーにチェッ
クポイントの人力をうながし、その様に入れられたデー
タを貯蔵し、そしてそれを順次設定点の計算のために検
索する工程は通常のものであり、本発明の方法に重要な
ものではなく、従ってそれらは示されない。
これらの経験的時間の実施態様の増幅方法は加熱のスタ
ートからインキュベーションの終りまでのユーザーによ
り規定された経験的に決定された時間の高温インキュベ
ーション期間を用いる。インキュベーションの実施のた
めに、コンピュータは工程84において時計をスタート
させ、加熱の開始から温度レベルLHに向って経過時間
を測り、この経過時間を工程86により表示されている
ようにユーザーにより入れられた高温インキュベーショ
ン時間T、lと対比する。好ましい実施態様においては
、インキュベーション時間変数はユーザーによりリアル
タイムに任意の非経験的値に設定されてよい。
その他の実施態様においては、時間T□ (加熱及び高
温インキュベーション時間)は実験的に決定され次いで
永久貯蔵のためにROM中に「焼付けられる」固定時間
であってよい。ある実施態様においては、CPU20は
、第1図の熱交換器10に結合されライン81を介して
CPU20に連結されている温度センサー80などを使
用して熱交換器10の温度を監視し、そしてプレート1
が温度変数l、□の温度に到達する時点で高温インキュ
ベーション時間の計時を開始してよい。
第6図の実施態様において、ユーザーはプレートlが所
望温度り、に達するのに必要な時間プラス温度り、にお
ける高温インキュベーションのための所望時間を含む経
験的に確立された時間における変数THを設定する。コ
ンピュータが、所望温度り、Iが達成された時にのみ経
過時間の追跡をスタートする場合即ち温度センサー80
が用いられる場合の実施態様においては、変数THはユ
ーザーによりプレート1が温度Lllに到達するに必要
な時間の量を考慮することなく温度L11における高温
インキュベーションに所望な時間に設定されてよい。好
ましい実施態様においては、温度LHは90−100℃
に固定される。
経過時間が工程88により決定された所望インキュベー
ション時間に等しい場合には、CPU20は加熱及び冷
却装置に適当なコマンドを送り、プレート1をユーザー
により設定された低温インキュベーション温度LLの方
向に冷却させる。これは工程90により表示されている
。工程90は、第2図の実施態様の場合においては、チ
ューブ52及び54を選択してチューブ42及び44に
連絡するための、CPU20によるコマンドの流体制御
マルチプレキサ−49への伝達を表わし、この様にして
ユーザーにより手動的にLLに設定された低温流体貯蔵
器18の温度の流体が熱交換器10を通って流れ始める
。その他の実施態様においては、CI’ U 20は単
に加熱及び冷却装置にPe1tierヒートポンプ12
のごときプレート1に熱的に連結している電気的に駆動
される冷蔵装置のスイッチを入れるためのコマンドを送
るのみでよい。良結果をもって用いられる高温から低温
への冷却速度の範囲はバランスを考慮して決定される。
極めて迅速な冷却例えばドライアイスを用いて反応室の
温度を直らに低下させることは増幅方法を阻害或いは停
止させる。他方、遅い冷却は1サイクルの全完結時間を
長引かせる。好ましくは、冷却速度は約0.5〜5分間
、好ましくは1〜3分間の範囲である。好ましい実施態
様においては約35〜60℃の範囲の固定温度がユーザ
ーにより低温流体貯蔵器18の手動調整により設定され
、第2図の実施態様の場合にこの温度を維持する。第1
図の実施態様の場合においては、CPU20がLLにつ
いてユーザーの入れたデータに基づき電流の適当な方向
及びデユーティサイクルを確立する。デユーティサイク
ルは特定のレッグについてユーザー規定データに基づい
ても良く、或いはいづれかのタイプの実施態様において
固定されてよい。この増幅方法において用いられる熱安
定性酵素に対しては約35〜60℃の温度範囲が最適温
度である。この増幅方法が首尾よ〈実施され得る広範囲
の温度は約30−35℃乃至105℃である。
次の工程は工程92により示され、経過時間を測定しそ
れをユーザー設定低温時間と対比する過程である。温度
LLに到達するのに必要な最適時間は正確には知られて
いないが、しかし、約1〜3分間が有効であることが知
られている。経験的実施態様においては、CPU20は
プレートlの温度を追跡しない。それは単にプレー1−
1を冷却する旨のコマンドが発生された後で経過時間を
追跡するに過ぎない。ユーザーは経験的にプレート1の
温度を温度LLまで減少させるのにどれ位時間がかかる
かを決定しなければならない。工程92におけるCPU
20は常に実際に経過した時間をユーザー−規定時1i
1 T Lと対比する。必要な時間が経過すると、処理
は工程94に進行する。
工程94ば低温インキュベーションの完了に対する監視
の過程を表す。ある実施態様において、コンピュータC
I’U20は、温度LLが達成されると経過時間の追跡
を開始する。工程94はコンピュータが実際の経過時間
を低温インキュベーション時間、すなわちユーザー設定
変数TLと対比する過程である。ある実施態様において
はこの変数はリアルタイムにコンピュータの記憶装置内
に貯蔵されたユーザー規定時間であるのに対し、他の実
施態様においては、時間TLは固定され経験的に決定さ
れた後永久に貯蔵される。
経過時間が所望低温インキュベーション時間TLに等し
くなるや否や、工程94は処理を工程96に進行させ、
この工程はソフトウェアサイクルカウンタを増して第一
サイクルの終りをマークする。実際の経過時間が時間T
Lに等しくならない場合は、処理はライン98上を工程
92に進み、もう一度経過時間を所望時間TLと対比す
る。工程96の後、CPU20は工程100に進む。
工程100及び工程102はサイクルカウント数を所望
サイクル数を表わす記憶装置内のユーザー規定変数と対
比する過程である。ある実施態様においては、所望サイ
クル数は固定された数であるが、しかし好ましい実施態
様においては所望サイクル数はユーザー−規定数である
。これはユーザーに以下に更に説明する異る核酸配列の
増幅の異る効率をW↓酌するために行われる増幅のサイ
クル数を変化させる柔軟性を与える。サイクルカウント
数が所望サイクル数に一致しない場合には処理はライン
104を介して工程106に進み、経過時間時計を再セ
ットし、そしてそこから処理はライン108を介して工
程82に進み、そこでもう一つのサイクルが開始される
。所望サイクル数が行われたならば、次いで処理は工程
108に進む。そこでユーザーがもう一つの「ファイル
」即ちデータベースに貯蔵されているもう一つの温度プ
ロフィールを運転することを望むかどうかが決定される
。ユーザーにより入れられるいづれの温度プロフィール
もリンクデーターフィールドを有し、これには実行され
るべき次のファイル即ち温度プロフィールがある場合に
はそのファイル特定が貯蔵されている。このリンクフィ
ールドの内容は工程108におい”ζ読取られる。ユー
ザーがリンクフィールドに何も入れていない場合には、
次いで処理は工程110に進み、終了メソセージが表示
される。工程+08がリンクフィールドにファイル番号
を見出す場合には、次いで処理は工程112に進む。こ
の工程は経過時間時計を再設定し、そして新しいファイ
ルからの第一のチェックポイントを検索する。
処理は次いで工程82においてスタートし、新しいファ
イルのチェックポイントにより決定される温度プロフィ
ールの実行に進む。
第6図の制御方法は温度プロフィールのための二つのチ
ェックポイントのみを示す。他の実施態様においては、
一般的に高温のインキュベーション及び一般的に低温の
インキュベーションが適当な温度において十分な時間行
われることを条件としてより多くのチェックポイントが
使用されてよい。
第7図に示された方法を実行する好ましい非経験的「閉
鎖ループ」実施態様においては、工程81におけるCP
U20はユーザー規定温度プロフィールのレッグ1のた
めの加熱をデフォルト(default)速度でスター
トさせ、そして工程83における時計をスタートさせる
。CPt120は次いで工程85において目標温度とし
て設定点を計算し、そして工程87においてプレート1
の温度を監視し、それをユーザー−設定温度プロフィー
ル上の設定点と対比する。工程85は、温度プロフィー
ルの勾配をユーザー−設定チェックポイント間で計算し
、そしてその勾配と計算時における経過時間とに基づき
新しい設定点を計算することにより定期的に設定点に改
訂する。比較に基づく誤差信号は工程89においてCP
U20により発生することができる。この誤差信号を次
いで工程91において、適当な制御信号に転換して加熱
及び冷却装置を制御する。ソリッドステートヒートポン
プの場合には、誤差信号はデユーティサイクルを変更す
るのに用いられる。この改訂された制御信号を次いでラ
イン56上に出力し、加熱及び冷却装置に反応室温度を
調整させる。プレート1がある特定の設定点について所
望プロフィールよりも熱くなったならば、次いで低温流
体のスイッチを入れ、それを第2図の実施態様において
冷却する。第1図の実施態様の場合にはソリッドステー
トヒートポンプを通る電流の方向を減少させるか或いは
熱パルス必須サイクルの“オン”時間を減少させて誤差
信号の大きさをゼロの方向に減少させることが可能であ
る。
第7図の好ましい実施態様の制御方法においては、CP
U20は、工程81において、温度制御装置にプレート
1を高温インキュベーションレベルに加熱することを開
始するコマンドが送られると同時に経過時間の計時を開
始する。工程91 (或いは誤差がない場合には工程8
9)が第7図において行われた後、工程93を実行して
実際に経過した時間を記憶装置内に貯蔵されたユーザー
設定時間(その時点で次のチェックポイントが達成され
なければならない)と対比する。経過時間がチェックポ
イント時間に等しいか或いはより大きい場合には、処理
は工程95に進み、次のチェックポイントの時間及び温
度データを検索する。
経過時間が次のチェックポイントへの時間より短い場合
には、処理はライン97上を第7図の工程87に戻る″
。次いで、次の設定点が計算され、そして処理はF記と
同様に継続される。
工程89の誤差信号計算は任意の公知の比例的制御アル
ゴリズムを用いてなされる。その様なアルゴリズムは良
く知られており、シンスキー(Shinskey)、P
rocess Control 5yste+ws第2
版第1章(McGra−旧II 1979) l5BN
 0−07−056891xに記載されている。
次のチェックポイントについての時間及び温度データの
検索後、CPUは工程99において完全な温度プロフィ
ールが処理された否かを決定する。
このサイクルが完結されていなかった場合には処理はラ
イン97上を工程87に戻り次の設定点を計算する。処
理は工程87から次いで上記の如く@I続される。
温度プロフィールが完結されたならば、次いで工程+0
1を実行してザイクルカウンター(ソフトウェアカウン
ター)を増加して温度プロフィールを通じて一つの完全
なサイクルが完結されたことを示す。次に、CPU20
は記憶装置から全完結された特定の温度プロフィールの
所望サイクル数を示す値をデータベース中のデータフィ
ールドから検索する。これは工程103により示される
。この値はユーザーにより第1図及び第2図のユーザー
インターフェースにより供給されそしてRAM 24に
貯蔵されているチェックポイントデータ及びその他の情
報が充填されているデータベースから検索される。工程
105においては、完結されたサイクル数がユーザー規
定所望サイクル数と対比される。
所望サイクル数が完結されていない場合には次いで処理
はライン107上工程81に戻る。同一のプロフィール
における第一のチェックポイントを次いで検索し、そし
て現在の温度プロフィールにおける同一チェックポイン
トの処理が再び上記の如く開始される。
工程105が、温度プロフィールによる所望のサイクル
数が完結されたことを示す場合には、次いで工程109
を実行してファイルリンケージを決定する。ユーザーの
うちあるものは一つの温度プロフィールを幾つかのサイ
クル数X回運転し、そして次いで異った温度プロフィー
ルを異ったサイクル数7回運転するなど、各温度プロフ
ィールについて異ったサイクル数を運転することを希望
することがある。各温度プロフィールデータベースはフ
ァイル特定番号が与えられ、そして各ファイルはそのプ
ロフィールのためのデータベース中にリンクフィールド
を有する。このリンクフィールドの内容が工程109に
おいて検索され、次の温度プロフィールのファイル番号
が実行される。即ち次のファイルが「運転」される、こ
のリンクフィールドの内容がゼロ或いは何等かの他の所
定の暗号である場合には次いでリンキンクは行われず、
ディスプレイ上にその旨表示されて処理が停止される。
リンケージがある場合には、工程111が行われ、新し
いプロフィールの第一のチェックポイントを検索し、処
理は上記の如く工程81から継続する。このリンキンク
操作は次の温度プロフィールの終りにおいて繰返され、
リンキンクアドレスがなくなるまで続けられる。処理は
次いで完了する。
贈1L杭汰 本発明により自動化される増幅方法は熱安定性酵素を用
いる現存する核酸配列の増幅方法である。
具体的には、この増幅方法は、核酸或いは核酸混合物に
含有される少な(とも一つの特定の核酸配列を増幅する
ことを含むものであって、その核酸が二本鎖である場合
には、それは二本の等しい或いは等しくない長さの分離
された相補的鎖よりなるものであり、下記工程を含んで
なるものである: (a)各核酸鎖を四種の異るヌクレオチドトリホスフェ
ート及び増幅されるべき各々の異る特定の配列について
一つのオリゴヌクレオチドプライマーと接触させる工程
であって、各プライマーが一つのプライマーから合成さ
れる延長生成物がそれがその相補体から分離された場合
に他のプライマーの延長生成物の合成のための鋳型とし
て役立ち得るように各特定の配列の異った鎖に実質的に
相補的であるように選ばれ、該接触が各プライマーのそ
の相補的核酸鎖へのハイブリダイゼーションを促進する
温度において行われる工程、(b)各核酸鎖を、工程(
a)と同時に或いはその後にヌクレオチドトリホスフェ
ートの結合を触媒して各核酸の各鎖に相補的なブライマ
ー延長生成物を形成する熱安定性酵素と接触させる工程
、(c)工程(b)からの混合物を有効時間にわたり且
つ有効温度において加熱して、酵素の活性を促進し、そ
して増幅されるべき各々の異る配列について、各核酸鎖
の鋳型に対して相補的である各プライマーの延長生成物
を合成するが、しかし、各延長生成物をその相補的核酸
鎖から分離する程高温には加熱しない加熱工程、 (d)工程(c)からの混合物を有効時間にわたり且つ
有効温度において加熱してプライマー延長生成物をそれ
らが合成された鋳型から分離して一本鎖分子を生成する
が、しかし不可逆的に酵素を変性させる程高温には加熱
しない加熱工程、(0)工程(d)からの混合物を有効
時間にわたり且つ各プライマーの工程(d)において、
生成された一本鎖分子の各々へのハイブリダイゼーショ
ンを促進する有効温度に冷却する工程、及び(「)工程
(e)からの混合物を有効時間にわたり且つ酵素の活性
を促進して増幅されるべき各々の異る配列について、工
程(d)において生成された各核酸鎖鋳型に相補的であ
る各プライマーの延長生成物を合成するに有効な温度に
加熱するがしかし、延長生成物をその相補的鎖鋳型から
分離する程の高温には加熱しない加熱工程(但し工程(
e)〜(f)は同時に或いは逐次行われてよい)。
工程(d)〜(「)は配列の所望レベルの増幅が得られ
る迄繰返されてよい。
この増幅方法は既存の完全に特定された核酸配列の多量
製造のみならず、存在することは知られているが完全に
は特定されていない核酸配列の製造にも有用である。い
づれの場合においても、増幅されるべき配列の最初のコ
ピーが利用可能でなければならないが、それは純粋な或
いは個々の分子である必要はない。
本発明において用いられる「オリゴヌクレオチド」とい
う用語は2個以上好ましくは3個を越えるデオキシリボ
ヌクレオチド類或いはりボスクレオチド類よりなる分子
と定義される。その正確な大きさは数多くの要因に依存
するが、それらの要因は又オリゴヌクレオチドの究極的
機能或いは用途に応じて異る。このオリゴヌクレオチド
は合成的に或いはクローニングによって誘導されてよい
本発明において用いられる「プライマー」という用語は
、生成された制限消化物に天然において存在するか或い
は合成的に製造されたかを問わず、核酸鎖に相補的であ
るプライマー延長生成物の合成が誘発される条件下、即
ち適当な温度及びpttにおいて四種の異ったヌクレオ
チドトリホスフェート及び熱安定性酵素の存在下に置か
れた際に合成の開始点として作用することのできるオリ
ゴヌクレオチドを指す。
プライマーは、増幅における最大効率のためには一本鎖
であるのが好ましいが、或いは又二本鎖であってもよい
。二本鎖の場合には、プライマーは先ず処理されてその
鎖を分離してから延長生成物を調製するために用いられ
る。好ましくはプライマーはオリゴデオキシリボヌクレ
オチドである。
プライマーは熱安定酵素の存在下において延長生成物の
合成を開始するのに十分に長くなければならない。プラ
イマーの正確な長さは温度、プライマーの由来及び使用
される方法などの多くの要因に応じて異る。例えば、目
標配列の複雑さに応じて、オリゴヌクレオチドプライマ
ーは典型的に15〜25或いはそれ以上のヌクレオチド
を含有するが、それは更に少ないヌクレオチドを含むも
のであってもよい。短いプライマー分子は一般的に鋳型
と十分に安定なハイブリッド複合体を形成するためには
より低温を必要とする。
本発明におけるプライマーは増幅されるべき各特定の配
列の異る鎖に「実質的に」相補的であるように選ばれる
。これはプライマーがそれらのそれぞれの鎖とハイブリ
ダイズするように十分に相補的でなければならないこと
を意味する。従って、プライマー配列は鋳型の正確な配
列を反映する必要はない。例えば非−相補的ヌクレオチ
ド断片がプライマーの5′末端に結合し、プライマー配
列の残部が鎖と相補的であってよい。或いは又、そのプ
ライマー配列が増幅される鎖の配列とそれとハイブリダ
イズするに十分な相補性を有して他のプライマーの延長
生成物の合成のための鋳型を形成するならば、非相補的
塩基或いはより長い配列をプライマー中に散在させるこ
とができる。しかしながら、検出目的のためには、特に
標識配列に特異的なプローブを用いる場合には、最良の
結果を得るためにプライマーは典型的に正確な相補性を
有する。
本発明において用いられる[制限エンドヌクレアーゼ」
及び「制限酵素」という用語はその各々がある特定のヌ
クレオチド配列において或いはその近辺において二本鎖
DNAを切断する細菌酵素を指す。
本発明において用いられる「熱安定性酵素」とは熱に安
定であり且つ耐熱性であり、そして適当な方法でヌクレ
オチドの結合を触媒(容易化して)して各核酸鎖に相補
的なプライマー延長生成物を形成する酵素を指す。一般
的に合成は各プライマーの3′末端から開始され合成が
終了して異る長さの分子を生成するまで鋳型鎖に沿って
5′方向に進行する。しかしながら、上記同一方法を用
いて5′末端から合成を開始して他の方向に進行する熱
安定性酵素もある。
本発明における熱安定性酵素は増幅反応に対して有効で
なければならないという一つ標準を満足しなければなら
ない。即ちこの酵素は二本鎖核酸の変性を行うのに必要
な時間高温に曝された場合に不可逆的に変性(不活性化
)されてはならない。
本発明における目的のための不可逆的変性とは酵素活性
の永久的且つ完全な喪失を指す。変性に必要な加熱条件
は例えば緩衝塩濃度及び変性される核酸の長さ及びヌク
レオチド組成などに応じて異るが、典型的には約90〜
約105℃でその時間は主として温度及び核酸長さに応
じて異るが、典型的には約0.4〜4分間である。緩衝
液潤度及び/又は核酸のGC組成が増大されるにつれて
より高温が許容可能となる。好ましくは酵素は約90〜
100℃において可逆的に変性されないのがよい。
本発明における熱安定性酵素は、それが機能する最適温
度を、プライマーの鋳型へのハイブリダイゼーションが
それ未満で促進される温度である約40℃よりも高温に
有するのが好ましい。酵素のための最適温度が高ければ
高い程、プライマー指令延長過程の特異性及び/又は選
択性がより太き(なる。しかしながら、40℃未満例え
ば37℃において、活性である酵素も又それらが熱−安
定性である限り本発明の範囲内に含まれる。好ましくは
最適温度は約50〜80℃、より好ましくは60〜80
℃の範囲である。
文献に耐熱性であると報告された酵素の具体例としては
、熱安定性ポリメラーゼ類、例えば好熱性細菌サーマス
・フラバス(Thermus  flavus)、サー
マス・ルーバー(Thermus  ruber ) 
、サーマス・サーモフィルス(Thermus  th
ermo hilus)、バチルス・ステアロサーモフ
ィルス(Bacilluss Ler+ ro th吐
賎匝■4) (これは掲げられた他のものよりも幾分よ
り低い最適温度を有する)、サーマス・アクアティクス
(Thera+us  ■胆旦CUS )、サーマス・
ラフテラス(Thermus  Iacteus )、
サーマス・ルーベンス(Ther+wus  rube
ns)及びメタノサーマス・フエルビドウス(Meth
anotherw+usrervidus)などが挙げ
られる。
本発明において好ましい熱安定性酵素はサーマス・アク
アティクスYT−1株から単離されたDNAポリメラー
ゼであり、次の様に精製されたものである:サーマス・
アクアティクスの細胞を増殖せしめ、そしてこのポリメ
ラーゼを単離し、粗製抽出液からカレディン等(Kal
edin et al、)Biokhimiya、 4
5.644−651 (1980)により示された最初
の五つの工程を用いて精製した。第5工程(p)17.
5におけるDEAEカラム)の際に汚染デオキシリボヌ
クレアーゼ(エンドヌクレアーゼ及びエキソヌクレアー
ゼ)についてアッセイを行い、ポリメラーゼ活性を有し
、最少のヌクレアーゼ汚染を有する画分のみをプールし
た。最終のクロマトグラフィ精製工程はチェノ等(Ch
ien eL al、) J、Bact−eriol、
 127 : 1550−1557(1976)により
示唆されたホスホセルロースカラムを用いるものである
。ヌクレアーゼ及びポリメラーゼ活性のアッセイを行い
、最少ヌクレアーゼ汚染のポリメラーゼ画分のみをプー
ルした。
カレディン等(Kaledin et al、)及びチ
ェノ(Chien)等は62−63 kダルトンの分子
量を有する精製酵素を報告しているが、上記精製方法を
用いたデータは約86〜90にダルトンの分子量を示唆
する。
−i的に、本発明の増幅方法は含まれる反応工程の数に
対し、て指数的量において少なくとも一つの特定の核酸
配列を製造する連鎖反応を含むものであるが、その前提
として(a)必要とされる配列の末端がそれらにハイブ
リダイズするオリゴヌクレオチドが合成できるように十
分に詳細に知られていること、及び(b)連鎖反応を開
始するために小量の配列が利用可能であること、が挙げ
られる。この連鎖反応の生成物は、用いられた特定のプ
ライマーの末端に対応する末端を有する個々の核酸二本
鎖である。
任意の核酸配列を、それが所望の特定の核酸配列を含有
するか或いは含有すると想像される限り、精製或いは非
精製形態において、出発核酸として利用することができ
る。即ち、本発明の方法は例えばDNA、或いはメツセ
ンジャーRNAを含むRNAを使用してよく、そのDN
A或いはRNAは一本鎖であっても二本鎖であってもよ
い。更に各々の一本鎖を含有するDNA −RNAハイ
ブリッドを利用してもよい、これらの核酸の任意の混合
物も又使用され、或いは本発明のものと同一の或いは異
るプライマー用いる前増幅反応から生成された核酸もそ
の様に利用されてよい。増幅される特定の核酸配列は大
分子の一部分のみであってよく、或いは当初から個別の
分子として存在し、その結果特定の配列が全核酸を構成
していてもよい。
増幅される配列は当初純粋な形態で存在する必′要はな
い。即ち、それは複雑な混合物の少部分であってよい。
すなわち、全ヒトDNAに含まれるβ−グロビン遺伝子
の一部(例えば上記サイキ等の論文に例示されるような
)でもよく、或いはその生物体が特種の生物学的試料の
極めて少部分のみを構成するが故に核酸配列の一部など
であってよい。出発核酸配列は1より多くの同−或いは
異った所望の特定の核酸配列を含有してよい。従って、
本発明の増幅方法は多量の一つの特定の核酸配列を製造
するのみならず、同一の或いは異る核酸分子上に位:l
する一つより多くの異る特定の核酸配列を増幅するため
にも有用である。
核酸は任意の由来、例えばpBR322などのプラスミ
ドから、クローン化されたDNA或いはRNAから、或
いは任意の由来例えば細菌、酵母、ウィルス、オルガネ
ル及び植物或いは動物などの高等動物を含む任意の起源
からの天然DNA或いはRNAから得られる。DNA或
いはRNAは各種技術例えばマニアティス等(Mani
atis et al、)Molecular CIo
ning(1982) 、80−281に記載されてい
る技術により血液、絨毛膜絨毛或いは羊膜細胞などの組
織材料から抽出されてよい。
増幅される配列に対して特異的でありその後検出される
プローブが用いられる場合には、細胞を低張緩衝液に懸
濁させ細胞溶解及び細胞内成分の分散が起こるまで通常
1〜15分間約分間−100℃に加熱されるならば核酸
の抽出なしに細胞を直接使用してもよい。加熱工程後増
幅試薬は直接に溶解細胞に添加されてよい。
任意の特定の核酸配列を本発明の増幅方法により製造す
ることができる。所望配列の異る鎖にハイブリダイズす
る二つのオリゴヌクレオチドブライマーが配列に沿って
一つのプライマーから合成される延長生成物がそれがそ
の鋳型(補体)から分離された場合に他のプライマーを
一定長さの核酸配列に延長するための鋳型として役立ち
得るような相対的位置において調製することができるよ
うに十分に詳細に配列の十分な数の塩基が知られている
ことのみが必要である。配列の両末端の塩基についての
知識が多ければ多い程、目標核酸配列に対するプライマ
ーの特異性従って方法の効率が増大する。
以下に用いられる「プライマー」という用語は特に増幅
されるべき断片の末端配列に関する情報において何等か
の曖昧さがある場合にはlより多くのプライマーを指す
ことが理解されるであろう。
例えば核酸配列が蛋白質配列情報から推定される場合に
おいて、遺伝暗号の縮重に基づくあらゆる可能性のある
コドン変化を表わす配列を含むプライマーの集合体が各
鎖に対して用いられる。この集合体からの一つのプライ
マーは増幅されるべき所望配列の末端と相同である。
オリゴヌクレオチドプライマーは任意の適当な方法例え
ば上記ホスホトリエステル及びホスホジエステル方法或
いはそれらの自動化された実施態様などにより調製され
る。一つのその様な自動化された実施B様において、ジ
エチルホスホルアミダイトが出発材料として用いられ、
ビューケージ等(Beaucage el al、) 
Tetrahedron Letters(1981)
22 : 1859−1862により記載されるように
して合成される。修飾された固体支持体上でオリゴヌク
レオチドを合成する一つの方法は米国特許4,458,
066号明細書に記載されている。又、細菌源から単離
されたプライマー(例えば制限エンドヌクレアーレ消化
物)を用いることも可能である。
1.1定の核酸配列はその配列を鋳型として含有する核
酸を用いることにより製造される。第一の工程は各核酸
鎖を四種のヌクレオチドトリボスフエート及び増幅され
或いは検出されるべき各界る核酸配列につき一つのオリ
ゴヌクレオチドプライマーと接触させることを含む。増
幅或いは検出されるべき核酸がDNAであるならば、ヌ
クレオチドトリボスフエートはdATP 、 dCTP
 、 dGTP及びTTPである。
これらの核酸鎖は追加の核酸鎖の合成のための鋳型とし
て使用される。この合成は任意の適当な方法を用いて行
うことができる。一般的には、それは緩衝化水溶液中に
おいて好ましくはρ]17〜9、最も好ましくは8にお
いて行われる。好ましくは、モル濃度過剰(クローン化
核酸に対しては通常約1000:1のプライマ一対鋳型
、及びゲノム核酸に対しては通常10’:1のプライマ
一対鋳型)の二つのオリゴヌクレオチドプライマーが分
^1tされた鋳型鎖を含有する緩衝液に添加される。し
かしながら、相補開鎖の量は本発明における方法が診断
用途に用いられるならば知られていないことがあり、そ
の結果相補開鎖の計に対するプライマーの量は確実に決
定することができないことが理解される。しかしながら
、実際問題として、添加されるプライマーの世は一般的
に増幅される配列が複雑な長鎖核酸鎖の混合物中に含有
されている場合には相補開鎖(鋳型)の量に対しである
モル濃度過剰である。この方法の能率を改良するために
は大きなモル濃度過剰が好ましい。
得られた溶液を次いで増幅或いは検出されるべき核酸が
二本鎖であるか或いは一本鎖であるかに従って処理する
。核酸が一本鎖である場合には、変性工程を使用する必
要がな(、反応液をプライマーのその相補的目標(鋳型
)配列へのハイブリダイゼーションを促進する温度に保
つ。その様な温度は通常約35〜約65℃より好ましく
は約り7℃〜約50℃であり、有効時間通常1.5〜5
分、好ましくは1〜3分間行う。
元の一本鎖核酸に対する相補体は1個或いは2個のオリ
ゴヌクレオチドプライマーをそれに添加することにより
合成される。適当な単一プライマーが添加されるならば
、プライマー延長生成物がプライマー、熱安定性酵素及
びヌクレオチドトリボスフエートの存在下において合成
される。この生成物は一本鎖核酸に対して部分的に相補
的であり、核酸鎖とハイブリダイズして長さの等しくな
い鎖の二本鎖を形成し、これは次いで上記の如く一本鎖
に分離され、二本の単一の分離された相補開鎖を生成す
る。或いは又、二つの適当なプライマーを一本鎖核酸に
添加して反応を行ってもよい。
核酸が二本の鎖を含有する場合には、それを鋳型として
使用する前に核酸の鎖を分離する必要がある。この鎖分
離は物理的、化学的或いは酵素的手段を含む任意の適当
な変性方法により達成することができる。一つの好まし
い核酸の鎖を分離する物理的方法は核酸をそれが完全に
(〉99%)変性されるまで加熱することを含むもので
ある。
典型的な熱変性は約90〜105℃の範囲の温度を通常
約0.5〜5分間の範囲の時間含むものである。
好ましくは有効な変性温度は0.5〜3分間の間の90
〜100℃である。鎖分離は又ヘリカーゼ頚部ち酵素R
ecA、として知られているへりカーゼ活性を有し、そ
してriboATPの存在下においてDNAを変性する
ことが知られている種類の酵素からの酵素により誘発さ
れる。核酸の鎖をヘリカーゼ類を用いて分離するために
適した反応条件はターンホフマンーベーリング(Kuh
n lioffmann−Berling)C5II−
Quantitative Biology  43 
: 63(1978)に記載されており、そしてRec
Aを用いる技術はC,ラッディング(C,R++ddi
ng)^nn、Rev、Genetics、16 :4
05−37 (19B2)に総説されている。この変性
は等しい或いは等しくない長さの二本の分離された相補
開鎖を生成する。
二本鎖核酸が熱により変性されたならば、反応液を存在
する各プライマーのその相補的目標(鋳型)配列へのハ
イブリダイゼーションを促進する温度に冷却させる。こ
の温度は通常約35〜65℃以上、好ましくは約37°
C〜約50℃であり、有効時間通常0.5〜5分間、好
ましくは1〜3分間維持される。実際的には、温度は単
に約95℃から約65℃或いは37℃程度の低温に低下
され、ハイブリダイゼーションはこの範囲の温度におい
て起こる。
核酸が一本鎖であると或いは二本鎖であるとを問わず、
熱安定性酵素は変性工程において或いは温度がハイブリ
ダイゼーションを促進する範囲に低下しているか或いは
範囲にある時点において添加されてよい。反応液を次い
で酵素の活性が促進されるか或いは最適化される温度即
ちハイブリダイズされたブライマー及び鋳型からプライ
マー延長生成物の合成を容易にするように酵素の活性を
増大させるのに十分な温度に加熱する。この温度は実際
に各核酸鋳型に相補的である各プライマーの延長生成物
を合成するのに十分でなければならないが、しかし、そ
の相補的鋳型からの各延長生成物を変性する程高くあっ
てはならない(即ち、IXA度は通常約80〜90°C
未/Xljである)。
主として用いられる酵素及び核酸の種類に応して、この
合成反応に有効な典型的温度は約40〜80℃、好まし
くは50〜70℃の範囲である。サーマス・アクアティ
カス(Thermus  7ユ)からのポリメラーゼが
用いられる場合には温度はより好ましくは約60〜65
℃の範囲である。この合成に必要とされる時間は、主と
して温度、核酸の長さ、酵素及び核酸混合物の複雑性に
応じて約0.5〜40分以上の範囲であるが、好ましく
は1〜3分間である。核酸がより長ければより長い時間
が一般的に必要とされる。好ましくは、増幅された生成
物の検出を容易にするのに十分な量のジメチルスルホキ
シド(D?1SO)も又反応液中に存在するのがよい。
DMSOは本発明の方法のいづれの工程において添加さ
れてもよいが、好ましくはこの工程及び全ての引続く工
程において存在するのがよい。最も好ましくは5〜10
容量%のDMSOが存在する。
新たに合成された鎖及びその相補的核酸鎖は以下の工程
において用いられる二本鎖分子を形成する。次の段階に
おいて、二本鎖分子の鎖は分子を変性するのに有効であ
るが、しかし熱安定性酵素が完全且つ不可逆的に変性或
いは不活性化されるようには高くない温度において熱変
性により分離される。主として酵素の種類及び核酸の長
さに応してこの温度は通常90〜105℃、より好まし
くは90〜+00°Cの範囲であり、そして変性の時間
は主として温度及び核酸の長さに応じて典型的に0.5
〜4分の範囲である。
この時間の後、前工程から生成されたその相補的一本鎖
分子(鋳型)へのブライマーのハイブリダイゼーション
を促進するレベルに温度を低下せしめる。その様な温度
は上記の通りである。
このハイプリダイゼーション工程の後、或いはハイプリ
ダイゼーション工程の代りに(或いは同時に)、温度を
熱安定性酵素の活性を促進して鋳型として前の工程から
新たに合成された鎖を用いてブライマー延長生成物の合
成を可能にするのに有効である温度に調整する。この温
度も又前記の如く延長生成物をその鋳型から分離(変性
)する程高くあってはならない(通常40〜80℃で0
.5〜40分間、好ましくは50〜70℃で1〜3分間
)。
この工程の際に、ハイブリダイゼーションが起こること
があり、その結果変性後の先の冷却工程は必要とされな
い。同時工程を用いるその様な場合には、50〜70℃
の温度範囲が好ましい。
これらの鎖分離、ハイブリダイゼーション、及び延長生
成物合成の加熱及び冷却工程は必要な回数繰返して究極
的用途に応じて所望量の特定の核酸配列を製造すること
ができる。唯一の制限は存在するプライマー、熱安定性
酵素及びヌクレオチドトリホスフェートの量である。好
ましくは、これらの工程は少なくとも一回繰返すのがよ
い。検出に使用するためには、サイクル数は例えば試料
の性質に応じて異る。例えば、増幅されるべきサンプル
が純粋である場合にはより少ないサイクル数ですむ。サ
ンプルが核酸の複雑な混合物であるならばその検出シグ
ナルを十分に増幅するためにはより多くのサイクルが必
要とされるであろう。
−i的増幅及び検出のためには、好ましくはこの方法が
少なくとも20回繰返される。
標識された配列特異的プローブが以下の如く用いられる
場合には、これらの工程は少なくとも5回繰返されるの
が好ましい。ヒトゲノムDNAをその様なプローブと共
に用いる場合には、この方法は明確に検出可能なシグナ
ルが生成されるために、即ちハックグラウンドノイズが
検出を妨害しないように配列を十分に増幅するために1
5〜30回繰返すのが好ましい。
更に詳細に以下に説明される如く、生成される特定の核
酸配列の量は指数的に蓄積する。
酵素が不可逆的に変性或いは不活性化されていない限り
、最初の添加後追加のヌクレオチド、プライマー或いは
熱安定性酵素を追加する必要なく、不活性化される場合
には各変性工程の後酵素を補給する必要がある。しかし
ながら、各工程においてその様な物質を添加することは
反応に悪影響を及ぼさない。
第一の核酸或いは核酸の混合物から一つより多くの特定
の核酸配列を生成した場合には、適当な数のWっだオリ
ゴヌクレオチドプラ・イマーがill用される。例えば
、2種の異る特定の核酸配列が製造されるべき場合には
、4個のプライマーが利用される。これらのプライマー
の2個は特定の核酸配列の一方に対して特異的であり、
他の2個のプライマーは第二の特定の核酸配列に1.Y
異的である。
この様にして、2種の異る特定の配列の各々を本発明の
方法により指数的に製造することができる。
適当な長さの時間が経過して所望量の特定の核酸配列を
製造した後、任意の公知の方法で酵素を不活性化するこ
とにより或いは反応の成分を分離することにより反応を
停止してよい。
増幅工程を模式的に後記する。ここで、相補的な鎖〔S
°〕及び〔S−〕を含んで成る所望の配列(S)を含有
する2本鎖DNAが核酸として使用される。第1の及び
これに続く各反応サイクルの間、もとの鋳型上での各オ
リゴヌクレオチドプライマーの延長が、プライマーの1
つのみにより停止する無限長の新しい、、DNA分子生
成物を生成する。今後“長生酸物”と称するこれらの生
成物は直線的に蓄積するであろう。すなわち、ある数の
サイクルの後に存在する量がサイクル数に比例するであ
ろう。
こうして生成された長生酸物は、その後のサイクルの間
一方又は他方のオリゴヌクレオチドプライマーの鋳型と
して機能し、そして所望の配列〔S°〕又は〔S−〕の
分子を生成するであろう。
これらの分子もまた、一方又は他方のオリゴヌクレオチ
ドプライマーの鋳型として機能してさらに〔S°〕及び
(S−)を生成し、そしてそれ故に、サイクル数に対し
て指数的速度での(S)の蓄積をもたらずであろう鎖反
応が継続され得る。
意図されるオリゴヌクレオチドハイブリダイゼーション
以外のオリゴヌクレオチドハイブリダイゼーションによ
り生成される副産物は自己触媒的ではなく、そしてそれ
故に直線的速度で蓄積する。
以下余白 増幅されるべき特異的配列 C3) を次の様に模式的に表すことができる。
[S”)     5 (S−〕3 へへへΔへへへへへへXXXXXXXXXXCCCCC
CCCCC3’TTTT1’TTTTTVYYYYYY
YYYGGGGGGGGGG  5’対応するオリゴヌ
クレオチドプライマーは次の通りであろう。
プライマー1 :    3’ GGGGGGGGGG
 5’ブライマー2 :    5′ へへへへへAA
AAA  3”従って、(S)を含有するDNA : 、’+ 、zzzzzzzzzzzzzzzz^八八八
AAAAAAXXXXXXXへへへCCCCCCCCC
Czzzzzzzzzzzzzzzz、、、。
、 、 、 、 zzzzzzzzzzzzzzzzT
TTTTTTTTTYYYYYYYYYYGGGGGG
GGGGzzzzzzzzzzzzzzzz、 、 、
 。
が単鎖に分離され、そしてその単鎖がプライマーl及び
2とハイブリダイズし、4種類のデオキシリボヌクレオ
シドトリホスフェートの存在下、DNAポリメラーゼの
存在下で次の延長反応が触媒され得る。
3°     5′ 延 長             GGGGGGGGG
Gプライマーl、、 、、ZZ2ZZZZZ2Z2ZZ
ZZZAΔΔ八^八^AAAXXXXXXXXXXCC
CCCCCCCCzzzzzzzzzzzzzzzz、
、 、。
もとの鋳型類′ もとの鋳型類− 、、、、ZZZZZZZZZZZZZZZZTTTTT
TTTTTYYYYYYYYYYGGGGGGGGGG
ZZZZZZZZZZZZ2ZZZブライマー2  A
AAAAAAAA八      延 長5+     
3+ 生成した2つのデュプレックスの変性の後、次の生成物
が生ずる。
35′ 、、、、zzzzzzzzzzzzzzzzTTTTT
TTTTTVYYYYYYYYYGGGGGGGGGG
新たに合成された長生酸物l 以1・−六白 5”                       
              3′0.、、zzzzz
zzzzzzzzzzzAAAA^八AAAAXXXX
XXXXXXCCCCCへCCCCzzzzzzzzz
zzzzzzz、、、 。
もとの鋳型類。
3°                       
                5゛、 、 、 、
 zzzzzzzzzzzzzzzzTTTTTTTT
TTYYYYYYYYYYGGGGGGGGGGzzz
zzzzzzzzzzzzz、 、 、 。
もとの鋳型類− 5”                       
       3゛八八八AAAAAAAXXXXXX
XXXXCCCCCCCCCCzzzzzzzzzzz
zzzzz、、、。
新たに合成された長生酸物2 次のサイクルにおいて、これら4つの鎖をプライマー1
及び2とハイブリダイズせしめれば、重合用試薬は次の
反応を触媒するであろう。
ブライマー25°^AAAAAAAAA       
    ここまで延長3’ 、、、、zzzzzzzz
zzzzzzzzzzTTTTTTTT’rTYYYY
YYYYYYGGGGGGGGGG 5’新たに合成さ
れた長生酸物 延 長            GGGGGGGGGG
 5°ブライマー15’ 、、、、zzzzzzzzz
zzzzz^八AAAAAAAAXXXXXへXXXX
CCCCCCCCCCzzzzzzzzzzzzzz、
、、。
もとの鋳型類゛ ブライマー25°八AAA八八AAA^       
          延長3’ 、、、、zzzzzz
zzzzzzzzzzzzTTT’「TT’rTTTY
YYYY’/YYYYGGGGGGGGGGzzzzz
zzzzz、、、。
もとの鋳型類− 5′ ここまで延長          GGGGGGGGG
G 5”プライマー15’ AAA^^AAAAAXX
XXXXXXXXCCCCCCCCCCzzzzzzz
zzzzzzzzz、 。
新たに合成された長生酸物2 以下全白 上記4種類のデュプレックスが分離されれば次の鎖が生
ずる。
AAAAAAAA八AXXXXXへXXXXCCCCC
CCCCC新たに合成された〔S゛〕 3’  、、、、zzzzzzzzzzzzzzzzz
zzTTTTTT’門ゴ’rYYYYYYYYYYGG
GGGGGGGG第1サイクルで合成された長生酸物1 3’  、1.、zzzzzzzzzzzzzzzzz
zz’rTTTT1’TT’l’TYYYYYYYYY
YGG[:GGGGGGG新たに合成された長生酸物1 5゜ 5’  、、、、zzzzzzzzzzzzzzzzz
zzAAAAA八AAAAXXXXXXXXXXCCC
CCCCCへCzzzzzzzzz、、、。
もとの鋳型類゛ 3′ 5’  AAAAA^^八八AXXXへへXXXXXC
CCCCCCCCCzzzzzzzzzzzzzzzz
、、 。
新たに合成された長生酸物2 3′ 3’ 、、zzzzzzzzzzzzzzzTTTTT
’rTTTTvvYYYYYvYYGGGGGGGGG
Gzzzzzzzzzzzzzzzz、、。
もとの鋳型類 5゛ 3’  TTTTTTTTTTYYYYYYYYYYG
GGGGGGGGG新たに合成された〔S−〕 5゜ 5’  AAAA八^Δへ八八へへへXXXXXXXC
CCCCCCCCCzzzzzzzzzzzzzzz、
、。
第1サイクルで合成された長生酸物2 3゜ 以下余白 一方のプライマーのオリゴヌクレオチド配列及び他方の
相補的配列で末端を終了する各類が製造されるべき特定
の核酸配列(S)であることが判る。
元の核酸の量はそれは複製されないので全過程において
一定に留まる。長生酸物の量はそれらが元の核酸のみか
ら製造されるので線形的に増大する。特定の配列の量は
指数的に増大する。この様に、特異的配列が支配的種と
なる。これは下表に例示され、それは各サイクルにおい
て100%の効率を想定してnナイクル後に理論的に存
在するこれらの種の相対的量を示すものである:以下余
白 一木鎖核酸が鋳型として用いられる場合には、1個のみ
の長生酸物が毎サイクル形成される。
ある与えられた配列内の配列はある与えられた数の増幅
後に増幅されて少なくともlサイクルの増幅後に増幅さ
れる配列の内部配列(末端にあるものではない)に相補
的である一組のブライマーを添加することにより反応の
より大きな特異性を得ることができる。その様なプライ
マーは任意の段階において添加されてよく、より短い増
幅された断片を提供する。或いは又、より長い断片を非
−相補的末端を有するが、しかし、増幅において先に利
用されたプライマーと何等かの重複を有するプライマー
を用いることにより調製することができる。
この増幅方法を利用して適当な発現ベクター中に挿入す
るための特種の核酸配列がクローニングされる。このベ
クターを用いて組換えDNA技術の標準的方法により適
当な宿主生物体を形質転換してこの配列の遺伝子生成物
が製造される。その様なりローニングは平滑−末端連結
を用いたベクター中への直接連結成いはプライマー内に
含まれる部位において切断するための制限酵素の使用を
含むものである。
加えて、本発明の増幅方法はinνi troの突然変
異誘発に使用することができる。オリゴデオキシリボヌ
クレオチドプライマーは増幅されるDNA配列に正確に
相補的である必要はない。それらは熱安定性酵素により
よく延長されるように十分に配列にハイブリダイズする
能力があればよい。用いられたプライマーが元の鋳型に
正確に相補的でない増幅反応の生成物は鋳型以外のプラ
イマーの配列を含有し、それによりin vitroの
突然変異を導入する。更にサイクルを重ねるとこの突然
変異は更に不適当な対のプライミングが必要とされない
ので減少されない効率をもって複製される。この様に製
造された突然変異体は標卓的分子生物学的技術により適
当なベクター中に挿入され、このベクターに例えば変更
された蛋白質の製造の潜在能力などの変異特性を与える
可能性がある。
上記変更DNA配列を作成する方法を異るプライマーを
用いて変更されたDNAに繰返して更に配列変化を誘発
することが可能である。この様にして、一連の突然変異
配列を徐々に製造して各々の新しい添加が最後のものか
らは少ししか異ならないが、しかし元のDNA源配列か
らは次第に大きく異るものとされる。この様にして極め
て深刻に不適当な組合せのプライマーが機能することが
できないために、単一工程では実現不能であった変更を
究極的に行うことが可能である。
加えて、増幅されるべき鎖に相補的である配列を十分な
世のプライマーが含有するならば、プライマーはその配
列の一部として非−相補的配列を含有することができる
。例えば鋳型配列に相補的でないヌクレオチド配列(例
えば、プロモータ、リンカ−、コード配列など)をプラ
イマーの一方或いは両方の5′末端に結合し、そしてこ
れによって増幅工程の生成物に付加してもよい。延長プ
ライマーの添加後、十分なサイクルを実施してこの非相
補的ヌクレオチドインサートを含有する所望量の新しい
鋳型が達成される。これは単純な技術を用いて比較的短
時間(例、2時間以下)に大量の組合された断片の製造
を可能にする。
本発明の増幅方法は又感染症、遺伝的障害或いは癌など
に関連する特定の核酸配列例えば腫瘍形成遺伝子の検出
及び/又は特性化を可能にするために用いられてよい。
分析に利用可能な核酸の量が例えば胎児の細胞から得ら
れるDNAを用いる繊状赤血球貧血の胎児期の診断にお
けるように極めて少ない場合に増幅が有用である。この
増幅は、その様な分析が本来感度の低い非−放射性検出
技術を用いる少量の試料についてなされる場合、或いは
放射性技術が用いられても迅速な検出が望ましい場合に
は特に有用である。
この検討の目的のためには、遺伝病としては、任意の生
物体からのゲノムDNAにおける特異的欠失及び/又は
突然変異、例えば繊状赤血球貧血、α−サラセミア、β
−サラセミアなどが挙げられる。繊状赤血球貧血は例え
ばEP特許公開164.054号明細書(1985年1
2月11日公開)に記載されているようなオリゴマー制
限分析を介して或いは増幅法による適当なりNA配列の
増幅に従ったRFLP 一様分析を介して容易に検出す
ることができる。
α−サラセミアはある配列の不存在によりそしてβ−サ
ラセミアは病気を引起こす突然変異に密接に関連した多
型性制限部位の存在により検出することができる。
これらの遺伝病の全ては適当な配列を増幅し、及びそれ
を放射性プローブを用いることなくSou thern
プロットにより分析することにより検出される。その様
な方法において、例えば、DNAしてSou ther
nブロッティング技術により分析する。
非−放射性プ11−ブの使用は高レベルの増幅されたシ
グナルにより容易にされる。
もう一つの実施態様において、DNAの小サンプルを便
利な1ノベルまで増幅し、次いで容易に検出可能なヌク
I/オチド誘導体(例えば32p=標識或いはビオヂン
ー標識ヌクレオチドトリホスフェート)が制限処理及び
電気泳動分離或いは任意の他の適当な方法により分析さ
れる最終DNA生成吻り弓こ直接に導入されるように更
に延長反応のサイクルが行われる。
更に一つの実施態様においては、核酸は増幅前に特定の
制限エンドヌクレアーゼに曝されてよい。
その様な切断された配列は増幅することができないので
DNAサンプルの前の制限処理にも拘らず増幅断片が出
現することは増幅配列内のエンドヌクレアーゼに対する
部位の不存在を意味する。増幅配列の存在或いは不存在
は適当な方法により検出することができる。
この増幅技術の一つの実用的応用即ちオリゴマー制限技
術[上記IEP 164,054号明細書、及びサイキ
等、Bio/Technology Vol、3. p
plo08 1012(1985)に記載]による繊状
赤血球貧血の検出を容易にすることにおける応用は、上
記サイキ等(Science)の記事に詳細に記載され
ている。その5cienceの記事において、ある特種
の増幅方法がβ−グロビン遺伝子セグメントを用いて例
示されている。
本発明における増幅方法は又配列−特異的オリゴヌクレ
オチドを用いて核酸配列(例えばゲノムDNAにおける
)単一のヌクレオチド変化を直接検出するために用いら
れてもよい。簡単に述べると、この方法においては、増
幅されたサンプルを直接に一連の膜上にスポットし、各
膜を異る標識された配列特異的オリゴヌクレオチドプロ
ーブとハイブリダイズせしめる。ハイブリダイゼーショ
ン後、サンプルを洗浄し、標識を検出する。この技術は
特にDNA多型性を検出するのに特に有用である。
各種感染病は臨床サンプルにおける原因微生物に特徴的
な特定のDNA配列の存在により診断することができる
。これらにはサルモネラ(Salmo−nella )
 、クラミジア(い士1回I−)、ネイセリア(Nei
sseria )などの細菌類、肝炎ウィルスなどのウ
ィルス類及びマラリアの原因であるプラスモジウL (
Plasmodium)などの寄生虫などが挙げられる
。米国特許再審査証明書814,358.535号(1
986年5月13日ファルコウ等(Falkow et
 al、)に発行)は感染病の診断のための特異的DN
Aハイブリダイゼーションプローブの使用を記載してい
る。感染した患者からの臨床サンプルには比較的少数の
病原生物体が存在するにすぎず、又これらから抽出され
たDNAがサンプル中の全DNAの極めて僅かの部分を
構成するにすぎない場合がある。DNAサンプルのハイ
ブリダイゼーションによる固定化及び検出に先立つ疑い
をもたれた配列の特定の増幅は伝統的操作の感度及び特
異性を大きく改良することが可能である。
感染症の診断のためのDNAプローブの日常的な臨床的
使用は非−放射性標識プローブがウォード(Ward)
のEP 63,879号明細書に記載されたように用い
ることができれば相当に簡素化されるであろう。この操
作において、ビオチン−含’[DNAがアビジン或いは
ビオチン−特異的抗体に結合した発色性酵素により検出
されている。このタイプの検出は便利であるが、しかし
比較的感度が悪い。
本発明による特定のDNA増幅と安定に標識されたプロ
ーブの使用の組合わせはファルコウ(Falkow)等
及びウォード(Ward)の操作を日常的な臨床的設定
において有用とするために必要とされる便利さ及び感度
を与える可能性がある。
この増幅技術の特別の用途はAIDSウィルスを検出或
いは監視するためのものである。簡単に述べると、この
増幅及び検出方法をAIDSウィルス内の核酸中に実質
的に保存され、そしてAIDSウィルス内の核酸に特異
的である核酸配列をそれぞれ増幅及び検出するように設
計されたプライマー及びプローブと共に用いられる。即
ち、被検出配列は重合を好ましくは室温において酵素及
びヌクレオチドトリホスフェートの存在下において開始
させるためにAIDSウィルス内の核酸に対して十分に
相補的でなければならない。
この増幅方法を利用して又エチジウムブロマイドなどの
単純な非−特異的DNA染色による検出がDNAを診断
するために直接に用いることが出来るように単一コピー
のヒト遺伝子からのDNAを十分な型製造することが出
来る。
感染症及び生物体のゲノムにおける病理学的異常に加え
て、この増幅方法を用いて如何なる病理学的状態をも伴
なわないDNA多型性を検出することもできる。
要約すると、この増幅方法は引続き更にプライマー延長
反応の鋳型として作用することのできるプライマー延長
生成物が生成される連鎖反応及び熱安定性酵素を用いて
1以上の特定の核酸配列を増幅するだめの方法を提供す
ることが見られた。
この方法は極めて生計でのみ当初存在する核酸配列の検
出において特に有用である。
以下の実施例は例示を目的としてのみ提供されるもので
あり、本発明の特許請求の範囲を制限するものでは決っ
してない。これらのサンプルにおいて、全てのパーセン
トは固体に対しては重量基r4?、であり、液体に対し
ては容量基準であり、全ての温度は1■氏度で与えられ
ている。
天上1土 1、プライマーの合成 次の二つのオリゴヌクレオチドプライマーを下記方法に
より製造した: 5′−へCACへへCTGTGTTCACTAGC−3
’   (PCO3)5゛−CへへCTTCATCCA
CGTTCACC−3′  (PCO4)これらの共に
20−marのプライマーはゲノムDNAの反対の鎖と
110塩基対の距離で分離されたそれらの5′末端でア
ニールする。
Δ、自動化合成操作; ビューケージ及びカルザース(
BeaucalHe and Caruthers) 
(TetrahcdronLetters (1981
)22 : 1859−1862)に従って合成された
ジエチルホスホルアミダイトを逐次ヌクレオシドで誘導
体化された制御された多孔ガラス支持体にBiosea
rch SAM−1を用い“ζ縮合せしめた。この操作
はジクロロメタン中トリクロロ酢酸を用いる脱トリチル
化、活性化プロトン供与体としてベンゾトリアゾールを
用いる縮合及びテトラヒドロフラン及びピリジン中無水
酢酸及びジメチルアミノピリジンによるキャッピングを
含むものであった。サイクル時間は約30分であった。
各工程における収率は木質的に定量的であり、脱トリチ
ル化中に放出されたジメトキシトリチルアルコールの収
集及び分光学的検査により決定した。
B、オリゴデオキシリボヌクレオチドの脱係8W及び精
製操作: 固体支持体をカラムから取り出し、閉じられ
た管内で1rrlの濃水酸化アンモニウムに室温におい
て4時間曝した。次いでこの支持体を濾過により除去し
、部分的に保護されたオリゴヌクレオチドを55℃に5
時間置いた。アンモニアを除去し、残渣を分収用ポリア
クリルアミドゲルにかけた。電気泳動を30ポルト/C
mで90分間行い、その後生成物を含有するバンドを蛍
光板のUVシャドーイングにより同定した。このバンド
を切出し、1mgの蒸留水で4℃において一晩溶出した
。この溶液をAltech RP18カラムにかけ、p
H6,0において1%酢酸アンモニウム緩衝液中アセト
ニトリルの7−13%勾配で溶出させた。溶出は260
nmにおけるUV吸光度により追跡し、そして適当な両
分を集め、固体容量内のUV吸光度により定量し、そし
て真空遠心分離器内で室温で蒸発乾固させた。
C,オリゴデオキシリボヌクレオチドの特徴付け: 精
製オリゴヌクレオチドの試験アリコートをポリヌクレオ
チドキナーゼ及びγ−32p−ΔTPを用いてizp標
識した。この標識化合物を50ボルト/cI11におけ
る45分間の電気泳動後に14〜20%のポリアクリル
アミドゲルのオートラジオグラフィにより検査した。こ
の操作は分子量を立証するものである。塩基組成は毒液
ジエステラ−ゼ及び細菌アルカリホスファターゼを用い
るオリゴデオキシリボヌクレオチドのヌクレオシドへの
消化及び引続く逆用II P L Cカラム及び10%
アセトニトリル、1%酢酢酸アンモニウム可動金用いる
得られたヌクレオシドの分離及び定量により決定した。
■、細胞系からのヒトゲノムDNAの単離高分子量ゲノ
ムDNAを本質的にマニアナイス(Maniatis)
等(Molecular Cloning(1982)
280−2813の方法を用いてlluman Gen
etic MuLant Ce1l Dep−osHo
ry  にュージャージ州、カムデン)からGM221
9Cとして取得可能な正常なβ−グロビンについてホモ
接合性のT細胞系Mo1L4から単離した。
■、ササ−ス・アクアティカス(Thermus  B
肛aticus)からのポリメラーゼの精製アメリカン
・タイプ・カルチャー・コレクション(America
n Type Cu1ture Co11ection
) (12301パークローンドライブ、ロックビル、
メリーランド州)から^TCCNo、25.104とし
て制限なしに取得可能なサーマス・アクアティカス株Y
TIを次の培地中においてフラスコ内で増り1なせしめ
た。
クエン酸ナトリウム        1mMリン酸カル
シウム、ρ117.9     5mM塩化アンモニウ
ム        10mM硫酸マグネシウム    
   0.2wM塩化カルシウム        0.
1mM塩化ナトリウム        Ig/n酵母エ
キス         1g/2トリプトン     
     Ig/j!グルコース         2
g/l硫酸第一鉄          0.01mM(
pHは殺菌前に8.0に調整した。)10eファーメン
タ−に、上記培地中で70℃で一晩培養した種フラスコ
から接種した。種フラスコからの総1600mzを用い
て1(lの同一培地に接種した。pHを水酸化アンモニ
ウムにより8.0に、溶存酸素量を40%に、温度を7
0 ’Cに、そして撹拌速度を400rpn+に調整し
た。
細胞の増殖後、上記力レディン(Kaledin)等の
方法(僅かに修正)の最初の5段階を用い、且つ第6段
階のために異った方法を用いてそれらを精製した。6エ
程の全てを4℃において行った。カラム上の分別速度は
0.5力ラム容/時間であり溶出時の勾配の容量は10
カラム容であった。
簡単に説明すると、上記T、アクアティカス細胞の培養
液を9時間の培養後、後期対数期において1.4g乾燥
重量/lの細胞密度において遠心分離により採集した。
20gの細胞を50mM Tris−HClpH7,5
,0,1mM EDT^よりなる80m1の緩衝液中に
再懸濁した。細胞を溶解し、そして溶解物をローター内
において4℃で35.000rpn+にて2時間遠心分
離した。上澄液を集め(画分A)、45〜75%飽和度
の硫酸アンモニウムの間で沈澱する蛋白質画分を集め、
0.2Mリン酸カリウム(al16.5) 、10s+
M2−メルカプトエタノール及び5%グリセリンよりな
る緩衝液中に溶解し、最終的に同一緩衝液に対して透析
して画分Bを得た。
百分Bを上記緩衝液で平衡化されたDEAE−セルロー
スの2.2X30CIIlカラムにかけた。カラムを次
いで同一緩衝液で洗浄し、蛋白質を含有する両分(28
0nmにおける吸光度により測定)を集めた。
−緒にした蛋白質画分を0.01Mリン酸カリウム(a
l17.5) 、10mM2−メルカプトエタノール及
び5%グリセリンを含有する第二の緩衝液に対して透析
して百分Cを得た。
百分Cを第二の緩衝液で平衡化されたヒドロキシアパタ
イトの2.6X21(Jカラムにかけた。カラムを次い
で洗浄し、10mMメルカプトエタノール及び5%グリ
セリンを含む0.01−0.5 Mリン酸カリウム緩衝
液の線形勾配で酸素を溶出した。
DNAポリメラーゼ活性を含む両分(90〜180++
Mリン酸カリウム)を−緒にし、^+wicon攪拌セ
ル及びY旧0膜を用いて4倍にfl縮し、第二の緩衝液
に対して透析して画分りを得た。
画分りを第二の緩衝液で平衡化されたDEAR−セルロ
ースの1.6 X 28 cvaカラムにかけた。カラ
ムを洗浄し、ポリメラーゼを第二緩衝液中のo、oi−
0,5Mリン酸カリウムの線形勾配で溶出した。画分を
過剰のON八へリメラーゼと共にインキュベーションし
た後(エンドヌクレアーゼについて)、及びDNAを数
個の断片に切断する制限酵素により処理した後(エキソ
ヌクレアーゼについて)、ファージスDNA或いはスー
パコイル血Wi D N Aの分子量変化を電気泳動的
に検出することにより汚染エンドヌクレアーゼ及び液相
ヌクレアーゼのアッセイを行った。最少のヌクレアーゼ
汚染を有するDNAポリメラーゼ画分のみ(65−95
mMリン酸カリウム)をプールした。このプールに殺菌
したゼラチンを250 μg/mlで添加し、透析を第
二の緩衝液に対して行い、画分Eを得た。
画分Eを9mJのホスホセルロースカラムにかけ、10
0m1の勾配(20mMリン酸カリウム緩衝液pl+7
.5中0.01−0.4 MKCN (7)勾配)で溶
出L f、=。
これらの両分について上記の如く汚染エンド/工;ドソ
ヌクレアーゼ並びにポリメラーゼ活性(カレディン等の
方法により)のアッセイを行い次いでプールした。プー
ルした両分を第二の緩衝液に対して透析し、次いで50
%グリセリン及び第二の緩(ji液に対する透析により
濃縮した。
このポリメラーゼの分子量をSO3PAGEにより求め
た。マーカー蛋白質(低分子量標準)はホスホリラーゼ
(92,500)、ウシ血清アルブミン(66、200
)、オハルブミン(45,000)、炭素アンヒドラー
ゼ(31,000)、大豆トリプシン阻害因子(21,
500)及びリゾチーム(14,400)であった。
予備的データはこのポリメラーゼは文献に報告される6
2,000〜63,000ダルトン(例えばカレディン
等による)ではなく、約86,000〜90 、000
ダルトンの分子量を有することを示唆する。
■、増幅反応 1、czgの上記ゲノムDNAを25d Tris −
!IC1(pH8,0) 、50 mMKcl、10n
+M FIgClz 、5mMジチオスレイトール、2
00μg/mlゼラチン、1μMのプライマーPCO3
、lμMのプライマーr’cO4、1,5+M  dA
TP  、  1.5mM  dCTP  、  1.
5mM  dGTP及び1.5 mM TTPを含有す
る当初100μ2の水性反応液中に稀釈した。このサン
プルを98℃で10分間加熱して、ゲノムDNAを変性
し、次いで室温に冷却した。サーマス・アクアティカス
からの4μeのポリメラーゼを反応液に添加し、100
μlの鉱油キャップを重層した。サンプルを次いで液体
取扱い及び加熱器具のアルミニウム加熱ブロック内に入
れた。
このDNANノナンにつき、次のプログラムサイクルを
繰返して機械内で20サイクルの増幅を行った: ■)加熱ブロック内における2、5分に亘る37℃から
98℃への加熱、及び 2)プライマー及びDNAをアニールさせるための3分
間に亘る98℃から37℃への冷却。
最終サイクル後、サンプルを55℃で更に10分間イン
キュベートして最終延長反応を完結させた。
■、オリゴデオキシリボヌクレオチドプローブの合成及
びリン酸化 下記配列のR524と称される標識されたDNAプロー
ブを調整した: 以下余白 5゛−“ CCCACAGGGCAGTAACGGCA
GACTTCTCCTCAGGAGTCAG−3’  
(RS24)(ばに*は標識を示す)。このプローブは
40個の塩基長さであり、遺伝子の4番目〜17番目の
コドンに亘りそして正常β−グロビン対立遺伝子(βA
)に相補的である。
プライマー及びプローブの概略図を以下に示ず;β−グ
ロビン Tひ1  1Ω「  −π面 このプローブは実施例1の分節lで説明した操作に従っ
て合成した。このプローブはその20pmo lを70
mM Tris(pH17,6) 、10mM MgC
1z、1.5mMスバーミン及び10o+Mジチオスレ
イトールを含有する40μlの反応液中37℃において
60分間4ノ1位のT4ポリヌクレオチドキナーゼ及び
約40 pmo6のr−” p−ATP (約7000
Ci/mmoffc)と接触させることにより標識した
全容量を次いで25mM EDT八で100μlに調整
し、Tris−EDTA(TE) 緩衝液(10mM 
Tris 、0.1mM1iDTA、all 8.0 
)で平衡化された1mffのスピン透析カラム上でマニ
アティス等[ManiaLis eL al。
Mo1ecular Cloning(1982) 4
66−467 ]の方法に従って積装した。反応生成物
のTCΔ沈澱は+1524について比活性は4.3μC
i/ pmoleであり、最終濃度は0.118pmo
 l e / メt lであることを示した。
■、ドットブ1コツトハイブリダイゼーション分節lか
らの増幅サンプル4μl及び70 、75 。
80 、85 、90 、95、及びioo%の増幅効
率を表わすように計算された適当な稀釈率のβ−グロビ
ンプラスミドDNA5.6pHを200μmの0.4 
N NaOH125mM UDTAで稀釈し、リード及
びマン(Reedand Mann)  [Nucle
ic Ac1ds Re5earch 13+7202
−7221 (1985)]に開示されるように、先ず
フィルターを水で濡らし、フィルターを所定位置に保持
するドツトプロット作成用装置内にフィルターを入れ、
サンプルを適用しそして各ウェルを0,1mlの20 
X5SPE (3,6M NaC1、200mM Na
1lzPO*、20mM EDT^)で濯ぐことにより
ナイロンフィルター上にスポットした。次いでフィルタ
ーを取出し、20 X5SPE中で濯ぎ真空オープン中
において80℃で30分間焼付けた。
焼付は後各フィルターを3xSSPE、5×デンハルト
溶液(1x=0.02%ポリビニルピロリドン、0.0
2%Ficoll、0.02%ウシ血清アルブミン、0
.2mM Tris 、 0.2mM EDTA 、 
pH8,0) 、0.5%SDS、及び30%ホルムア
ミドよりなる15rrlのハイブリダイゼーション溶液
と接触させ、42℃で2時間インキュベートした。次い
で2pH101eのプローブR524をこのハイブリダ
イゼーション溶液に添加し、フィルターを42℃で2時
間インキュベートした。
最後に、各ハイブリダイズされたフィルターを100 
mlの2XSSPE及び0.1%SDSで室温において
10分間2回洗浄した。次いでフィルターを100m1
の2 xSSt’E、 0.1%SDSで60℃におい
て10分間1回処理した。
各フィルターを次いでオートラジオグラフにかけたとこ
ろ、シグナルは2時間後に容易に明らかとなった。
■、オートラジオダラムの説明 ドツトプロットのオートラジオグラフは2時間後に分析
され、上記サイキ等(Saiki et al。
5cience)により説明されるようにHaeuI/
Mae  I−消化pBR:βA (β^は野性種の対
立遺伝子である)を用い−ご調製された標準的逐次稀釈
β−グロビン再構成液に対して強度を対比した。反応生
成物の分析は総括増幅効率が約95%であり、β−グロ
ビン目標配列における630.000倍の増大に対応す
ることを示した。
1崖■↓ ■、増幅反応 実施例Iと同様のMojt41tl胞系統から抽出され
た二つの1μgのゲノムDNAのサンプルをそれぞれ5
0+wM KCII 、 25++l’l Tris 
 ・IIcIt(all、8.0)、10mM MgC
Itz 、1 pMのプライマーPCO3,1pMのプ
ライ?−PCO4,200μg/mlゼラチン、10%
ジメチルスルホキシド(容量%)、1.5mMdATP
、 1.5mM dCTP 、 1.5+sM dGT
P 、及び1.5 mMTTPを含イ1する100μl
の反応液中に稀釈した。
この混合物を98℃で10分間加熱して、ゲノムDNA
を変性後、サンプルを室温に冷却し、実施例1と同様の
サーマス・アクアティスからのポリメラーゼ4pHを各
サンプルに添加した。これらのサンプルに鉱油を重層し
て濃縮及び蒸発損失を防止した。
サンプルの一方を実施例Iと同様の機械の加熱ブロック
内に入れ、次のプログラムサイクルを繰返して25サイ
クルの増幅に付した: (1)2.5分間に亘る37℃から93℃への加熱、(
2)ブライマー及びDNAをアニールさせるための3分
間に亘る93℃から37℃への冷却、及び (3)2分間に亘る37℃における維持。
最終サイクル後、サンプルを更に60℃で10分間イン
キエベートして最終延長反応を完結させた。
第二のサンプルは上記により詳細に説明した機械の熱伝
導性容器内に入れた。この熱伝導性容器は温度を上方、
及び下方、に調整するPettierヒ−トポンブ及び
マイクロプロセッサコントローラに結合して自動的に増
幅順序、温度レベル、温度勾配及び温度のタイミングを
制御した。
第二の試料は次のプログラムサイクルを繰返して25サ
イクルの増幅に付した: (1)3分間に亘る37℃から95℃への加熱、(2)
変性を起こすための0.5分間の95℃における維持、 (3)1分間に亘る95℃から37℃への冷却、及び (4)1分間の37℃における維持。
■9分析 分析のために二つの試験、すなわちドツトプロット及び
アガロースゲル分析を行った。
ドツトプロット分析のためには、下記配列のR518と
称される標識DNAプローブを調製した:5°−”CT
CCTGAGGAGAAGTCTGC−3’   (R
SlB)(*は標識を示す)。このプローブは15個の
塩基長であり、遺伝子の第4番目乃至第17番目のコド
ンに亘りそして正常なβ−グロビン対立遺伝子(βA)
に相補的である。ブライマー及びプローブの概略図を下
記に示す: β−グロビン PCO3R518PCO4 このプローブは実施例Iの分節■に示した操作に従って
合成した。このプローブはその10pmo l eを4
単位のT4ポリヌクレオチドキナーゼ及び約40pmo
j2eのr−” p−ATP (約7000Ci/mm
o6e)と70mM Trts  1tC1(pH7,
6)、10mM HgC1z 、1.5mMスバーミン
及び10mMジチオスレイトールを含有する40μlの
反応液中において37℃で60分間接触させることによ
り標識した。次いで全容量を25mM EDTAで10
0μlに調整し、そしてマニアティス等[Molecu
larCloning (1982) 466−467
1の操作に従ってTris −EDTA (TE) I
I衝液(10n+M Tris  ・II(J緩衝液、
0、1 mM EDTA、pH8,0)で平衡化された
1mMのスピン透析カラム上で精製した。反応生成物の
TCA沈澱はR518について比活性は4.6μCi 
/pmo II eであり、最終濃度は0.114pm
o l e /μlであることを示した。
分節■で得られた増幅サンプル、及び熱安定性酵素の代
りに巳、コリ(E、coli) D N Aポリメラー
ゼrのフレノウ断片を用いた以外は上記と同様にして増
幅したサンプル5μEを195μlの0.4 NNa0
11.25mM l0TAで稀釈し、リード及びマン[
Reed  and  Mann+  Nucleic
  Ac1ds  Re5earch+13+7202
−7221(1985) ]に開示されるように先ずフ
ィルターを水で濡らし、それらをフィルターを所定位置
に保持するドツトプロア)作成用装置内に置き、サンプ
ルを適用し、そして各ウェルを0.4mMの20 X5
SPE (3,6M Macl、 200 mM Na
1lzPOn。
20+M EDTA)で濯ぐことにより2個のレプリカ
ナイロンフィルター上にスポットした。次いでこれらの
フィルターを取出し、20 X5SPE中で濯ぎそして
真空オーブン内で80℃において30分間焼付けた。
焼付後、各フィルターを次いで6ml1の5×5SPE
、 5 xデンハルト溶液(IX=0.02%ポリビニ
ルピロリドン、0.02%Fico[I、0.02%ウ
シ血清アル)゛ミン、0.2mM Tris 、 0.
2mM EDTA 、pH8,0)及び0.5%SDS
よりなる6mMのハイブリダイゼーション溶液と接触さ
せ55℃で60分間インキュベートした。次いで、5μ
lのプローブR518をハイブリダイゼーション溶液に
添加し、フィルターを55℃で60分間インキュベート
した。
最後に各ハイブリダイズされたフィルターを100 m
l (7) 2 X5SPE及び0.1%sDsで室温
ニオいて10分間2回洗浄した0次いで、フィルターを
それぞれ100 mlの5 X5SPE、 0.1%S
O3で60℃において1)1分間及び2)3分間の2回
処理した。
次いで各フィルターをオートラジオグラフィにかけたと
ころ、シグナルは90分後に容易に明らかとなった。
アガロースゲル分析において、各5μlの増幅反応液を
1xTBE11衝液(0,089M Trisホウ酸塩
、0.089Mホウ酸、及び2111MEDT^)中の
0.5%アガロースゲルに負荷し、100 Vで60分
171電気泳動させた。エチジウムブロマイドで染色後
、DNAをUV蛍光により可視化した。
これらの結果は、実施例I及び本例で用いた機械はDN
Aの増幅に同様に有効であり、所望配列に対応する同様
な強度の個々の高密度の110塩基対バンド並びにはる
かに低い強度の僅かのその他の個々のバンドを示した。
これに対して、各サイクル後にE、コリポリメラーゼI
のフレノウ断片を用いる試薬移転を含む増幅方法は多く
の非関連DNA配列の非−特異的増幅から生ずるDNA
スメアを与えた。
11LA−DQ、、D I’?及びDP領領域評価にお
いても同様の増幅及び検出における改良が達成されるこ
とが期待される。
ヒトβ−ヘモグロビン遺伝子上の119塩基対断片の増
幅のために、上記の如(、Mo1t4細胞系或イハGM
2064細11ti系(β−及びΔ−ヘモグロビン領域
の示モ接合性削除を表わし、lluman Genet
icMutant Ce1l Depository、
 ニュージャージ州カムデンから取得可能)から単離さ
れたヒトゲノムDN’Aのそれぞれ総量111 gを、
50mM KCl。
25mM Tris  何ICI pl+ 8.10m
M MgC1z 、200μg/meゼラチン、5II
IMベーターメルカプトエタノール、1.5mM dA
TP 、 1.5mM dCTP 、 1.5mMdT
TP、、1.5mM dGTr’ 、及び1.crMの
下記プライマーの各々を含有する100μlの反応液中
で増幅させた: 5′−CTTCTGcagCAACTGTGTTCAC
TAGC−3”  (Gl118)5′−CACaAg
CTTCATCCACGTTCACC−3’     
 (GI119)(蔵に小文字は制限酵素部位を創出す
ための野性様配列からのミスマツチを示す)。
G1118は9L鎖に相補的な26塩基オリゴヌクレオ
チドであり、内部Pst  1部位を含有する。G11
19は玉鎖に相補的である23塩凸オリゴヌクレオチド
であり、内部旧ndn[認識部位を含有する。これらの
プライマーは先ずバタテリオファージM13のPst 
 I及びHindI[[制限部位に対する相同性のため
の遺伝子の領域をスクリーニングすることにより選択さ
れた。次いでプライマーが実施例Iと同様にして調製さ
れた。
上記反応液を95℃において10分間加熱し、次いで室
温に冷却した。実施例Iにおいて記載したポリメラーゼ
の総量4μlを各反応液に添加し、次いで各混合液に鉱
油を重層した。これらの反応液を次のプログラムで30
サイクルの増幅に対した: 25分間勾配、37から98℃ 3分間勾配、98から37℃ 2分間浸漬、37℃。
最終サイクル後、反応混合物を次いで65℃で20分間
インキエベートして最終延長を完結させた。鉱油をクロ
ロホルムで抽出し、反応液を20℃で貯蔵した。
総量LOplの増幅生成物を[loehringer 
−Mannheimから市販されているM13mplO
クローニングベクター0.58gと共に50 mM N
aC1,10mMTris ・11(J 、 pH?、
 8.10mM MgC1z 、20単位のPst I
及び26単位の旧ndllIを含有する50μl容の液
中で37℃において90分間消化した。
20℃に冷却することにより反応を停止させた。
容量をTE緩衝液で110μlに調整し、1m1Bio
Gel P −4スピン透析カラム上に負荷したく10
0μl)。一つの0.1mIt画分を集めエタノール沈
澱させた。
(この時点において、GM2064サンプル中にはβ−
グロビン増幅生成物があることが見出された。
引続く実験はG1118或いはGH19のいづれかのプ
ライマーに対する汚染源を追跡した。その他のプライマ
ー源は利用可能でなかったので、実験はプライマー中の
汚染DNAから何等かのクローン化された配列に由来す
るとの理解をもって継続された。)エタノールベレット
を15μlの水に再懸濁し、次いで50mM Tris
  ・II(J 、pH?、 8.10n+MMgC1
l z 、0.5mPI AT、P、  I 0mMジ
チオスレイトール及び400単位のりガーゼを含有する
20111容量に調整した。この混合物を16℃で3時
間インキュベートした。
Mo1L4DNAを含有する10μβの結合反応液をB
RL (メリーランド州、ヘテスダ)から市販されてい
るE、コリ株J旧03コンピテント細胞中に形質転換し
た。形質転換株を調製するために従った操作はメソシン
グ、J、  [Mcssing、 J、(1981)[
巨大分子についての第三回クリーブランドシンポジウム
二組換えDNA(Third C1eveland S
ymp−osium  on  Macromolec
ules  :  RacombinanL  DNA
)J八、 Wa I ton編、エルセピア、アムステ
ルダム、143−153]に説明されている。全部で6
51個の無色プラーク(及び0個の青色プラーク)が得
られた。
これらのうち119個は(+)−鎖インサート18%)
を有し、そして19個は(−)−鎖インサート(3%)
を存した。これは反応が25℃で2分間進行され、その
後2分間100℃に加熱、冷却、フレノウ断片の添加、
及び反応を行う工程が9回繰返される、E、コリポリメ
ラーゼIのフレノウ断片を用いる増幅技術から得られる
プライマー−陽性プラーク内のβ−グロビン陽性プラー
クのパーセント割合に対する殆んど20倍の増大である
。これらの結果は本発明の熱安定性酵素を用いる増幅反
応の改良された特異性を確認するものである。
その後のGM2064及び汚染プライマーを用いるクロ
ーニング実験においては、510個の無色プラークのう
ら43個(8%)は(+)−鎖インサートを有した。こ
れはMo1t4からの119個のクローンのうち約半分
が汚染配列を含有することを示唆する。
Mo1t4からの10個の(+)−鎖クローンを配列決
定した。5個は正常の野性種配列であり、そして5個は
遺伝子の第二のコドンの第3番目の位置において単一の
CからTへの変異を存した(CACからCATへ)。G
M2064からの4個の汚染クローンを配列決定したと
ころ、四つとも全て正常であった。
制限部位修飾プライマーを用いてヒl−N−rasオン
コーゲンを増幅及びクローン化し、そして部分的に配列
決定し、そして上記技術を用いてHLADQ−α、DQ
−β及びDR−β遺伝子の塩基対セグメントをクローン
化することもできる。これらの増幅反応の全ては10容
量%のジメチルスルホキシドの存在下において行われる
プレートヒ びスクI−ニング 増幅及びクローニングから生ずるインサートのパーセン
トを決定するためにプライマーPCO4を用いてフィル
ターをプローブした。増幅プライマー−陽性プラーク内
のβ−グロビン陽性プラークのパーセントは約20%で
あった。これは反応が25℃で2分間行われ、その後2
分間の100℃への加熱、冷却、フレノウ断片の添加、
及び反応の工程が9回繰返されるE、コリポリメラーゼ
Iのフレノウ断片を用いる増幅技術からのプライマー−
陽性プラーク内のβ−グロビン陽性ブラークツパーセン
トに対して20倍の増大である。これらの結果は本発明
の熱安定性酵素を用いる増幅反応の改良された特異性を
確認するものである。
制限部位−変成プライマーを用いてヒトN−rasオン
コーゲンを増幅及びクローン化及び部分的に配列決定し
、及び上記技術を用いてHLA  DQ−α、DQ−β
及びDR−β遺伝子の塩基対セグメントをクローン化す
ることもできる。これらの増幅反応の全てはIO容量%
のジメチルスルホキシドの存在下において行われる。
要約すると、本発明は温度−Va環連鎖反応及び熱安定
性酵素を含む1種以上の核酸配列の自動化増幅を行うた
めの装置を提供するものであり、その装置は試薬のため
の熱−伝導容器、容器を任意の与えられた温度まで或い
はその温度において加熱、冷却及び維持するための手段
、及び温度レベルを制御する信号を発生するコンピュー
タ手段を有する。この増幅方法の結果、増幅生成物の増
大した収率、より大きな特異性が生じ、及び従来開示さ
れたものに比べて操作を実施するために必要な工程数が
少なくなる。
【図面の簡単な説明】
第1図は熱安定性酵素及び反応容器の温度を循環させる
ためのPe1Lierヒートポンプを用いて増幅方法を
行うことのできる機械の一般的ブロック線図である。 第2図は反応容器の温度を循環させるための水浴を用い
る本発明における熱安定性酵素増幅方法を行うことので
きる機械の一般的ブロック線図である。 第3図はソリッドステートヒートポンプ及び反応室熱交
換器構造体の図面である。 第4図はソリッドステートヒートポンプのためのインタ
ーフムースユニットの外機図である。 第5図は典型的なユーザーにより規定される温度プロフ
ィールの図面である。 第6A図及び第6B図は実際の反応室温度のフィードバ
ックを用いない経験的実施態様のための制御ソフトウム
アのための流れ図よりなる。 第7A図及び第7B図は反応室の実際の温度を監視し、
そしてそれを所望温度プロフィールに対比する実際の温
度フィードバック信号を用いる好ましい実施態様のため
の制御ソフトウェアのための流れ図よりなる。 1ご↓下余白 屈 −14d 問 工程82へ 第68図

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、反応混合物を保持するための熱伝導性容器、該容器
    を複数のユーザーにより規定された温度の内の任意の温
    度へ又はその温度において加熱及び冷却するための手段
    であって、該容器が加熱されるか或いは冷却されるかを
    制御する制御信号を受取る制御入力を有する手段、及び 該手段の該制御入力に連結された、複数の温度及び該温
    度が達成されるべき回数を規定するユーザーからのチェ
    ックポイントデータを受取りそして貯蔵して、それによ
    り温度プロフィールを規定し、そしてユーザーからのコ
    マンドの受取り時に該チェックポイントデータをアクセ
    スし、そして前記加熱及び冷却手段の制御入力における
    制御信号をそれから発生させて、ユーザーにより規定さ
    れた温度プロフィールを該容器において達成させるため
    のコンピュータ手段、を有してなることを特徴とする反
    応混合物の温度循環を行うための装置。 2、前記加熱及び冷却手段がソリッドステートのヒート
    ポンプであるか、又はその中に形成された流体流路を有
    するアルミニュウ板であってこのチャンネルはポンプに
    流体連結されており、このポンプは流体容器に貯蔵され
    た流体を循環させるものであり、この流体容器は一定の
    ユーザーにより規定される温度に該流体を保持するため
    の加熱素子及び冷却素子をその中に有している、特許請
    求の範囲第1項記載の装置。 3、該コンピュータ手段が、温度プロフィールを規定す
    る各組のチェックポイントについてユーザーから入れら
    れるリンクデータを該コンピュータ手段により貯蔵され
    た各々の該温度プロフィールに関連するデータベース内
    のリンクデータフィールド内に受取りそして貯蔵するた
    めの手段、及び各々が自身のリンクデータ項目を有する
    、複数の温度プロフィールを規定するためのユーザーに
    より入力された複数の組のチェックポイントを受取りそ
    して貯蔵するための手段を含み、そして該コンピュータ
    手段がさらに、ユーザーにより特定された任意の特定の
    温度プロフィールを実行し、そしてその完結後に、もし
    特定されれば、特定された温度プロフィールをその実行
    された温度プロフィールのリンクデータフィールド内で
    実行し、そして実行される各温度プロフィールに関連す
    るリンクデータフィールド内において特定された温度プ
    ロフィールを実行するこの操作を最早温度プロフィール
    が特定されなくなるまで継続する手段を含む特許請求の
    範囲第1項又は第2項記載の装置。 4、少なくとも一つの特定の核酸配列の自動化された増
    幅を行うための装置であって、 該被増幅されるべき核酸、4種の異なるヌクレオチドト
    リホスフェート、熱安定性酵素及び増幅されるべき各々
    異る特定の配列について1個のオリゴヌクレオチドプラ
    イマーを含んでなる反応混合物を保持するための第一の
    手段であって、各プライマーが、一つのプライマーから
    合成される延長生成物がその相補体から分離された際に
    他のプライマーの延長生成物の合成のための鋳型として
    役立ち得るように各特定の配列の異る鎖に実質的に相補
    的であるように選ばれ、該保持が任意の選ばれた温度或
    いは複数の温度において行われる手段、及び 該第一の手段にその内容物を第一の期間加熱させ、そし
    てその内容物を第二の期間冷却させる所定の順序の工程
    を自動的に行うための第二の手段、を有しなることを特
    徴とする装置。 5、該第一の手段がその中に貯蔵された前記液体を二つ
    の温度のいづれかにおいて保持し、そして該第二の手段
    が該第一の手段にその内容物を第一の温度においてユー
    ザーにより規定された期間保持させ、次いで冷却期間を
    置かせ、そしてユーザーにより規定された期間第二の温
    度における低温インキュベーションを行わせる、特許請
    求の範囲第4項記載の装置。 6、前記第一の装置が、流体をユーザーにより規定され
    る一定の温度に保つための加熱及び冷却素子を有する流
    体貯蔵器内に貯蔵された流体を循環させるポンプと流体
    連通された流体流路がその中に形成されているアルミニ
    ウム板に熱的に連結された反応室である特許請求の範囲
    第5項記載の装置。 7、少なくとも一つの特定の核酸配列の自動化された増
    幅を行う装置であって、 反応室、 該反応室に熱的に連結されたソリッドステートのヒート
    ポンプ、 熱制御信号を受取るための熱制御信号入力及び冷却制御
    信号を受取るための冷却制御信号入力を有し、且つ該熱
    及び冷却制御信号に指示された通りに加熱或いは冷却の
    いづれかを引起こす正しい性質を有する、該熱及び冷却
    制御信号を該ソリッドステートのヒートポンプを流れる
    電流に変換するための、該ソリッドステートのヒートポ
    ンプに連結された電力出力を有するインタフェイス、及
    び1以上の温度プロフィールを規定する1組以上のチェ
    ックポイントを受取りそして貯蔵する(ここで、各チェ
    ックポイントはユーザーにより入れられ、そしてそれが
    関連する温度プロフィールの特定の時点において達成さ
    れるべき或いは維持されるべき特定の温度を規定する)
    ための、及びその温度プロフィールが何回実行されるべ
    きかを規定する各温度プロフィールに対するサイクル数
    データフィールドを受取りそして貯蔵するための、及び
    該ユーザーからリンクデータを受取りそれを実行される
    べき次の温度プロフィールを指示するリンクデータフィ
    ールド内に貯蔵するための、熱及び冷却制御信号を供給
    するために該インターフェイス手段に連結された熱及び
    冷却制御信号出力を有するコンピュータ手段であって、 該コンピュータ手段はさらに、前記ユーザーから開始の
    コマンド及び温度プロフィール特定を受取った後に、ユ
    ーザーにより規定された温度プロフィールが前記反応室
    において実現するように前記加熱及び冷却シグナルを適
    切な順序で発生せしめることにより前記サイクル数デー
    ターフィールド中に特定された回数だけ特定された温度
    プロフィールを実行するための、そして所望のサイクル
    数の完結後、完結された温度プロフィールのリンクデー
    タフィールドをアクセスし、そしてもし存在すれば該リ
    ンクデータフィールド内に特定された温度プロフィール
    を実行し、そしてこのリンクされた温度プロフィールの
    操作をすぐ前に完結された温度プロフィールのリンクフ
    ィールドが実行されるべき他の温度プロフィールを特定
    しなくなるまで継続するための手段、 を包含することを特徴とする装置。 8、下記工程を含んでなることを特徴とする少なくとも
    一つの特定の核酸配列を増幅するための方法: コンピューターにより指令された機械を用いて、増幅さ
    れるべき核酸、四種の異るヌクレオチドトリホスフェー
    ト、熱安定性酵素及び増幅されるべき各々の異る特定の
    配列について1個のオリゴヌクレオチドプライマーより
    なるサンプル(ここで各プライマーが一つのプライマー
    から合成される延長生成物がそれが相補体から分離され
    た場合に他のプライマーの延長生成物の合成のための鋳
    型として役立ち得るように各特定の配列の異る鎖に実質
    的に相補的であるように選ばれる)(以下、混合物とい
    う)を所定の温度に所定時間加熱する工程、及び コンピューターにより指令された機械を用いてこの混合
    物をユーザーにより規定された温度に加熱し、そしてこ
    の混合物をユーザーにより規定された温度に冷却する工
    程。 9、冷却工程後にコンピューターにより指令された機械
    を用いて該混合物を所定温度に所定時間維持する特許請
    求の範囲第8項記載の方法。 10、加熱工程後及び冷却工程前に、コンピューターに
    より指令された機械を行いて該混合物を所定の最高温度
    に所定時間維持する特許請求の範囲第8項又は第9項記
    載の方法。 11、更に操作における全工程を通じて時間、温度及び
    サイクル数の幾つか或いは全てを制御する所望パラメー
    タに関し、コンピューターにより指令された機械にユー
    ザーに質問させる工程を含む特許請求の範囲第8項記載
    の方法。 12、コンピューターにより指令された機械を用いて多
    数の試料を、一度に一個ずつ、核酸増幅過程を通じて処
    理することを含んでなる特許請求の範囲第11項記載の
    方法。 13、下記工程を含んでなる少なくとも一つの特定の核
    酸配列を増幅する方法: a)コンピューターにより指令された機械を用いて、加
    熱装置に熱信号を与えて反応室を所定時間、所定温度ま
    で及び/又は所定温度において加熱させる工程であって
    、該反応室が増幅されるべき核酸、四種の異るヌクレオ
    チドトリホスフェート、熱安定性酵素及び増幅されるべ
    き各々の異る特定の配列について1個のオリゴヌクレオ
    チドプライマーからなる試料(各プライマーが、一つの
    プライマーから合成された延長生成物がそれがその相補
    体から分離された際に他のプライマーの延長生成物の合
    成の鋳型として役立ち得るように各特定の配列の異る鎖
    に実質的に相補的であるように選ばれる)を含有してい
    る、工程、 b)コンピューターにより指示された機械を用いて、冷
    却装置に冷却信号を与え該反応室を所定時間所定温度ま
    で冷却させる工程、及び c)これまでに行われたサイクル数がユーザーにより規
    定されたサイクル数より少ない場合に、能動冷却信号の
    経過時間がユーザーにより規定された時間に等しい時に
    、工程a)からb)よりなるサイクルを繰返す工程。
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