JPS62151758A - 免疫測定用材料の製造方法 - Google Patents
免疫測定用材料の製造方法Info
- Publication number
- JPS62151758A JPS62151758A JP29191785A JP29191785A JPS62151758A JP S62151758 A JPS62151758 A JP S62151758A JP 29191785 A JP29191785 A JP 29191785A JP 29191785 A JP29191785 A JP 29191785A JP S62151758 A JPS62151758 A JP S62151758A
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- Japan
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- antibody
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
（゛産業上の利用分野）
ッセイ、ラジオイムノアッセイ等の為のキット成分につ
いて、抗体が結合した不溶性支持体と標識抗原もしくは
、抗原が結合した不溶性支持体と標識抗体を低温下で液
体状態にて混和し続いて凍結乾燥することによって免疫
測定用材料を製造する方法に関する。
いて、抗体が結合した不溶性支持体と標識抗原もしくは
、抗原が結合した不溶性支持体と標識抗体を低温下で液
体状態にて混和し続いて凍結乾燥することによって免疫
測定用材料を製造する方法に関する。
（従来の技術）
一般に血清、尿等の生体試料中に含有される微原又は抗
原の結合した支持体と標識抗体とは別々に保管されるこ
とが多い。また、競争法用キットにおいては、液体状態
で該不溶性支持体と該標識物を接しむると、抗原抗体反
応が起こり測定に供することができない。
原の結合した支持体と標識抗体とは別々に保管されるこ
とが多い。また、競争法用キットにおいては、液体状態
で該不溶性支持体と該標識物を接しむると、抗原抗体反
応が起こり測定に供することができない。
（発明が解決しようとする問題点）
抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物とは、別
々に保管され、測定の際には混合する操作が必要であっ
た。特に、液体状態で保管されている場合、通常、ピペ
ッタ−で該液体を移送した後、混合するため、測定操作
が煩雑であった。
々に保管され、測定の際には混合する操作が必要であっ
た。特に、液体状態で保管されている場合、通常、ピペ
ッタ−で該液体を移送した後、混合するため、測定操作
が煩雑であった。
（問題点を解決するための手段）
本発明者らは、競争法免疫測定を行うにあたり、同一容
器内に抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物と
を内在させることを目的として鋭意研究を行った。その
結果抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物とを
、０℃以上１０゛Ｃ以下好ましくは０°Ｃ以上４℃以下
という低温下にて混和し４時間以内好ましくは１時間以
内に凍結し、さらに凍結乾燥するとこれらの処理中には
抗原抗体反応がほとんど起こらないこと、さらＫこれに
凍結乾燥物を溶解するための水又は緩衝液とサンプルで
ある血清を加えることにより競争法免疫測定が可能であ
るという知見を見出し、本発明を完成するに至った。
器内に抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物と
を内在させることを目的として鋭意研究を行った。その
結果抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物とを
、０℃以上１０゛Ｃ以下好ましくは０°Ｃ以上４℃以下
という低温下にて混和し４時間以内好ましくは１時間以
内に凍結し、さらに凍結乾燥するとこれらの処理中には
抗原抗体反応がほとんど起こらないこと、さらＫこれに
凍結乾燥物を溶解するための水又は緩衝液とサンプルで
ある血清を加えることにより競争法免疫測定が可能であ
るという知見を見出し、本発明を完成するに至った。
本発明により得られる免疫測定用組成物は自動分析機に
おいて特に有用である。従来の競争法キラ）においては
抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物とは別々
に保管され、測定ごとにピペッタ−により液体を移送す
るという方法をとっていた。しかるにこの従来方法では
、ピペッティングするシステム（用手法では、ピペット
にて移す手技）が必要となり、コスト、メンテナンスの
面に問題がある。本発明による方法では、反応容器に既
に標識物及び、抗体又は抗原の結合した不溶性支持体が
内在しているため抗原、抗体反応の開始は、サンプルで
ある血清と凍結乾燥物を溶解するための水又は緩衝液を
加えるだけでよい。よって測定の操作性が著しく向上し
た。さらに反応開始時間が明確になり、また保存性とい
う観点からも凍結乾燥物にて保管できることから安定化
が期待できる。
おいて特に有用である。従来の競争法キラ）においては
抗体又は抗原の結合した不溶性支持体と標識物とは別々
に保管され、測定ごとにピペッタ−により液体を移送す
るという方法をとっていた。しかるにこの従来方法では
、ピペッティングするシステム（用手法では、ピペット
にて移す手技）が必要となり、コスト、メンテナンスの
面に問題がある。本発明による方法では、反応容器に既
に標識物及び、抗体又は抗原の結合した不溶性支持体が
内在しているため抗原、抗体反応の開始は、サンプルで
ある血清と凍結乾燥物を溶解するための水又は緩衝液を
加えるだけでよい。よって測定の操作性が著しく向上し
た。さらに反応開始時間が明確になり、また保存性とい
う観点からも凍結乾燥物にて保管できることから安定化
が期待できる。
本発明に用いる不溶性支持体とは、免疫測定時に用いら
れる水又は緩衝液に不溶の固体であればよい。例えば合
成高分子、セル四−ス等の天然高分子、セラミックス、
ガラス、金属等を用いることが可能である。これらを公
知技術で表面処理し、抗体又は抗原を結合させる。
れる水又は緩衝液に不溶の固体であればよい。例えば合
成高分子、セル四−ス等の天然高分子、セラミックス、
ガラス、金属等を用いることが可能である。これらを公
知技術で表面処理し、抗体又は抗原を結合させる。
本発明における凍結乾燥は、公知の手法を用いて行えば
よい。例えば、混和後、４時間以内の抗体又は抗原が結
合した支持体と標識物とを一８０°Ｃの温度で２時間凍
結させる。その後、１０４〜１０″″” ｔｏｒｒの減
圧下、０°Ｃで３〜１２時間乾燥させ、さらに室温で２
〜３時間乾燥させることによって凍結乾燥した免疫測定
用材料を得ることができる。
よい。例えば、混和後、４時間以内の抗体又は抗原が結
合した支持体と標識物とを一８０°Ｃの温度で２時間凍
結させる。その後、１０４〜１０″″” ｔｏｒｒの減
圧下、０°Ｃで３〜１２時間乾燥させ、さらに室温で２
〜３時間乾燥させることによって凍結乾燥した免疫測定
用材料を得ることができる。
本発明の具体的な実施方法はまず第１に試薬として標識
抗体又は標識抗原を０°Ｃから１０℃好ましくは０℃か
ら４℃に冷却しておく。次いで、抗体又は抗原の結合し
た不溶性支持体を反応容器に入れ、この容器を０℃から
１０℃好ましくは０”Ｃから４“Ｃに冷却する。さらに
この容器へ先に冷却した標識抗体又は標識抗原を加え４
時間以内好ましくは１時間以内に凍結させる。次にこれ
らを凍結乾燥して、測定用組成物とする。
抗体又は標識抗原を０°Ｃから１０℃好ましくは０℃か
ら４℃に冷却しておく。次いで、抗体又は抗原の結合し
た不溶性支持体を反応容器に入れ、この容器を０℃から
１０℃好ましくは０”Ｃから４“Ｃに冷却する。さらに
この容器へ先に冷却した標識抗体又は標識抗原を加え４
時間以内好ましくは１時間以内に凍結させる。次にこれ
らを凍結乾燥して、測定用組成物とする。
測定の際には、この測定用組成物へ水又は緩衝液とさら
に、サンプルである血清を加え混和し、一定時間インキ
ユベートした後、洗浄を行い標識物の検出を行う。例え
ば、酵素標識の場合には、一定量の酵素基質を加えイン
キユベートし、その生成物の量を測定すれば良い。この
時には、未凍結乾燥物との差は殆んどなく凍結乾燥によ
りアッセイ系が質的に変化することはない。
に、サンプルである血清を加え混和し、一定時間インキ
ユベートした後、洗浄を行い標識物の検出を行う。例え
ば、酵素標識の場合には、一定量の酵素基質を加えイン
キユベートし、その生成物の量を測定すれば良い。この
時には、未凍結乾燥物との差は殆んどなく凍結乾燥によ
りアッセイ系が質的に変化することはない。
（発明の効果）
以上の如く本発明によれば従来の競争法キットよりも扱
いが簡便になり、またその保存、輸送形態も非常に簡素
化される。さらに、末法によるキットにおいては液体の
ものとほぼ同等の測定値が得られることも特徴である。
いが簡便になり、またその保存、輸送形態も非常に簡素
化される。さらに、末法によるキットにおいては液体の
ものとほぼ同等の測定値が得られることも特徴である。
（実施例）
以下、本発明を実施例により更に説明するが本発明は、
これら実施例のみに限定されるものではない。
これら実施例のみに限定されるものではない。
実施例１
ベーター２−ミクログロブリンの競争法エンザイムイム
ノアッセイ（その１〕 合成ポリマーを基材とした直径１．６ｍｘのビーズにヒ
トベーター２−ミクログロブリンを結合したもの１０ケ
を抗原結合不溶性支持体として用い、これを径１０騙の
円筒状容器へ入れた。これに１００μｔの酵素アルカリ
ホスファターゼ（Ｚ、Ｃ。
ノアッセイ（その１〕 合成ポリマーを基材とした直径１．６ｍｘのビーズにヒ
トベーター２−ミクログロブリンを結合したもの１０ケ
を抗原結合不溶性支持体として用い、これを径１０騙の
円筒状容器へ入れた。これに１００μｔの酵素アルカリ
ホスファターゼ（Ｚ、Ｃ。
五１．五１）で標識したヒトベーター２−ミクログロブ
リンのウサギ抗体を分注した。その後この容器を４℃、
１０℃、２５℃のインキユベーターへ１時間又は４時間
入れ、次いで一８０℃の冷凍庫へ入れ、内容物を凍結し
た。さらに、これを凍結乾燥し反応用組成物とした。
リンのウサギ抗体を分注した。その後この容器を４℃、
１０℃、２５℃のインキユベーターへ１時間又は４時間
入れ、次いで一８０℃の冷凍庫へ入れ、内容物を凍結し
た。さらに、これを凍結乾燥し反応用組成物とした。
□” 測定に当たっては、１００μｔの蒸
留水及び１０μｔのサンプル血清（牛血清にベーター２
−ミクログロブリンを溶解したもの）を加えた。この後
反応容器を３７℃にて４０分間インキュベートし、その
後これに７５０μｔの洗浄液（１１重量％のツイーン２
０、α１Ｍ）リス塩酸緩衝液ｐＨａｏ、［Ｌ１重量％の
牛血清アルブミン、［ｌＬ１重量％のアジ化ナトリウム
）を加え、アスピレータ−にて不要物を吸引除去した。
留水及び１０μｔのサンプル血清（牛血清にベーター２
−ミクログロブリンを溶解したもの）を加えた。この後
反応容器を３７℃にて４０分間インキュベートし、その
後これに７５０μｔの洗浄液（１１重量％のツイーン２
０、α１Ｍ）リス塩酸緩衝液ｐＨａｏ、［Ｌ１重量％の
牛血清アルブミン、［ｌＬ１重量％のアジ化ナトリウム
）を加え、アスピレータ−にて不要物を吸引除去した。
この洗浄操作を６回繰り返した後１１００μｔのｊｍＭ
−４メチルウンベリフエロンリン酸を含む基質液ｐＨ１
１０を加えて３７゛ＣＫて１０分間インキュベートした
。その後２．４−の反応停止液を加えて反応を停止させ
た。この液を励起波長５６０ ｎｍ、ケイ光波長４５０
ｎｍにてケイ光測定を行った。その結果を図１に示す
。実験に用いたヒトベーター２−ミクログロブリン（サ
ンプル）の濃度は、０，１０，１００，３００゜１００
０．１１００００ｎ／７である。
−４メチルウンベリフエロンリン酸を含む基質液ｐＨ１
１０を加えて３７゛ＣＫて１０分間インキュベートした
。その後２．４−の反応停止液を加えて反応を停止させ
た。この液を励起波長５６０ ｎｍ、ケイ光波長４５０
ｎｍにてケイ光測定を行った。その結果を図１に示す
。実験に用いたヒトベーター２−ミクログロブリン（サ
ンプル）の濃度は、０，１０，１００，３００゜１００
０．１１００００ｎ／７である。
縦軸の値は、サンプル抗原Ｏｎν讐の際に得られたケイ
光強度を１００％としその相対強度値を示している。図
１より明らかな様に１０°Ｃ以下、好ましくは４℃以下
で４時間以内好ましくは１時間以内であれば未凍結乾燥
物とほとんど同じ値が得られることが判った。
光強度を１００％としその相対強度値を示している。図
１より明らかな様に１０°Ｃ以下、好ましくは４℃以下
で４時間以内好ましくは１時間以内であれば未凍結乾燥
物とほとんど同じ値が得られることが判った。
実施例２
ベーター２−ミクログロブリンの競争法エンザイムイム
ノアッセイ（その２） 合成ポリマーを基材とした直径１．６謡のビーズに人尿
由来のヒトベーター２−ミクログロブリンを結合したも
の１０ケを抗原結合不溶性支持体として用い、これを径
１０騙の円筒状容器へ入れた。
ノアッセイ（その２） 合成ポリマーを基材とした直径１．６謡のビーズに人尿
由来のヒトベーター２−ミクログロブリンを結合したも
の１０ケを抗原結合不溶性支持体として用い、これを径
１０騙の円筒状容器へ入れた。
これに１００μｔの酵素アルカリホスファターゼ（Ｋ、
Ｃ！、１．５．１．５ ）で標識したヒトベーター２−
ミクログロブリンのウサギ抗体を分注した。その後この
容器を氷水にて０°Ｃに保ち０分（標識抗体添加後すぐ
に冷凍）、５０分、１時間、２時間、４時間、２４時間
靜靜置た後すぐに冷凍した。さら杢 に、これら凍結乾燥し反応用組成物とした。
Ｃ！、１．５．１．５ ）で標識したヒトベーター２−
ミクログロブリンのウサギ抗体を分注した。その後この
容器を氷水にて０°Ｃに保ち０分（標識抗体添加後すぐ
に冷凍）、５０分、１時間、２時間、４時間、２４時間
靜靜置た後すぐに冷凍した。さら杢 に、これら凍結乾燥し反応用組成物とした。
測定に当たっては、実施例１と同じ操作を行い反応によ
り得られたケイ光強度の測定を行った。
り得られたケイ光強度の測定を行った。
その結果を図２に示す。
縦軸の値は実施例１の場合と同様である。図２より明ら
かな様に、４時間以内、好ましくは１時間以内では、未
凍結乾燥物とほとんど同じ値が得ろれることか判った。
かな様に、４時間以内、好ましくは１時間以内では、未
凍結乾燥物とほとんど同じ値が得ろれることか判った。
実施例３
ベーター２−ミクログロブリンの競争法エンザイムノム
ノアッセイ（その３） 合成ポリマーを基材とした直径１．６鴎のビーズにヒト
ベーター２−ミクログロブリンのウサギ抗体を結合した
もの１０ケを抗体結合不溶性支持体として用い、これを
径１０騙の円筒状容器へ入れた。
ノアッセイ（その３） 合成ポリマーを基材とした直径１．６鴎のビーズにヒト
ベーター２−ミクログロブリンのウサギ抗体を結合した
もの１０ケを抗体結合不溶性支持体として用い、これを
径１０騙の円筒状容器へ入れた。
これに１００μｔの酵素アルカリホスファターゼ（Ｋ、
Ｃ！、１． Ａ １．３ ）で標識した人尿由来のヒト
ベーター２−ミクログロブリンを分注した。その後この
容器を氷水にて０°Ｃに保ち、０分（標識抗原添加後す
ぐに冷凍）、３０分、１時間、２時間、４時間、静置し
た後、すぐに冷凍した。さらにこれらを凍結乾燥し、反
応用組成物とした。
Ｃ！、１． Ａ １．３ ）で標識した人尿由来のヒト
ベーター２−ミクログロブリンを分注した。その後この
容器を氷水にて０°Ｃに保ち、０分（標識抗原添加後す
ぐに冷凍）、３０分、１時間、２時間、４時間、静置し
た後、すぐに冷凍した。さらにこれらを凍結乾燥し、反
応用組成物とした。
測定に当たっては、実施例１と同じ操作を行い反応によ
り得られたケイ光強度の測定を行った。
り得られたケイ光強度の測定を行った。
その結果を図３に示す。
縦軸の値は、実施例１の場合と同様である。図３より明
らかな様に、４時間以内、好ましくは１時間以内では、
未凍結乾燥物とほとんど同じ匝が得られることが判った
。
らかな様に、４時間以内、好ましくは１時間以内では、
未凍結乾燥物とほとんど同じ匝が得られることが判った
。
実施例４
Ｌ−サイロキシン（Ｔ４）の競争法エンザイムノムノア
ッセイ 合成ポリマーな基材とした直径１．６ ＋ｍｓのビーズ
にＴ、にウサギ抗体を結合したもの１０ケを抗体結合不
溶性支持体として用い、これを径１０騙の円筒状容器へ
入れた。これに１２０μｔの酵素アルカリホスファター
ゼ（Ｅ、Ｃ！、１．五１．５）で標識したＴ４である標
識抗原を分注した。その後この容器を氷水にて０℃に保
ち、０分（標識抗原添加後すぐに冷凍）、３０分、１時
間、２時間、４時間、２４時間静置した後、すぐに冷凍
した。さらにこれを凍結乾燥し、反応用組成物とした。
ッセイ 合成ポリマーな基材とした直径１．６ ＋ｍｓのビーズ
にＴ、にウサギ抗体を結合したもの１０ケを抗体結合不
溶性支持体として用い、これを径１０騙の円筒状容器へ
入れた。これに１２０μｔの酵素アルカリホスファター
ゼ（Ｅ、Ｃ！、１．五１．５）で標識したＴ４である標
識抗原を分注した。その後この容器を氷水にて０℃に保
ち、０分（標識抗原添加後すぐに冷凍）、３０分、１時
間、２時間、４時間、２４時間静置した後、すぐに冷凍
した。さらにこれを凍結乾燥し、反応用組成物とした。
測定に当たっては、１２０μｔの蒸留水及び２０μｔの
サンプル血清（活性炭素処理した牛血清にＴ４を溶解し
たもの）を加えた。この後、反応容器を５７”Ｃにて４
０分間インキエベートシ、さらにその後７５０μｔの洗
浄ｇ（実施例１と同組成）を加え、アスピレータ−にて
不要物を吸引除去した。
サンプル血清（活性炭素処理した牛血清にＴ４を溶解し
たもの）を加えた。この後、反応容器を５７”Ｃにて４
０分間インキエベートシ、さらにその後７５０μｔの洗
浄ｇ（実施例１と同組成）を加え、アスピレータ−にて
不要物を吸引除去した。
この洗浄操作を３回繰り返した後、１００μｔの基質液
（実施例１と同組成）を加えて、３７°Ｃにて１０分間
インキュベートした。その後５００μｔの結果を図４に
示す。実験に用いたＴ４（サンプル）の濃度は０，１０
，１００，１０００，１１００００ｎ／ｍｌである。
（実施例１と同組成）を加えて、３７°Ｃにて１０分間
インキュベートした。その後５００μｔの結果を図４に
示す。実験に用いたＴ４（サンプル）の濃度は０，１０
，１００，１０００，１１００００ｎ／ｍｌである。
縦軸の値は実施例１の場合と同様である１図４より明ら
かな様に４時間以内好ましくは１時間以内では未凍結乾
燥物とほとんど同じ値が得られることが判った。
かな様に４時間以内好ましくは１時間以内では未凍結乾
燥物とほとんど同じ値が得られることが判った。
以上の様に本発明により、競争法免疫測定用材料が凍結
乾燥された状態にて同一容器内に標識物と抗原又は抗体
の結合した不溶性支持体を内在させることができ、免疫
測定が可能であることがわかった。
乾燥された状態にて同一容器内に標識物と抗原又は抗体
の結合した不溶性支持体を内在させることができ、免疫
測定が可能であることがわかった。
図１１図２及び図３は、それぞれ実施例１．実施例２及
び実施例３の各条件下におけるβ、−ミクログロブリン
濃度とケイ光相対強度との関係を示している。図４は、
実施例４の条件下におけるＬ−サイロキシン濃度とケイ
光相対強度との関係を示している。
び実施例３の各条件下におけるβ、−ミクログロブリン
濃度とケイ光相対強度との関係を示している。図４は、
実施例４の条件下におけるＬ−サイロキシン濃度とケイ
光相対強度との関係を示している。
Claims (5)
- （１）抗体が結合した不溶性支持体と標識抗原もしくは
、抗原が結合した不溶性支持体と標識抗体を低温下で混
和し、凍結乾燥することを特徴とする免疫測定用材料の
製造方法。 - （２）該低温が０℃以上１０℃以下であることを特徴と
する特許請求の範囲第（１）項記載の方法。 - （３）混和後、４時間以内に凍結乾燥することを特徴と
する特許請求の範囲第（１）項、第（２）項記載の方法
。 - （４）免疫測定の方法が競争法であることを特徴とする
特許請求の範囲第（１）項〜第（３）項記載の方法。 - （５）標識方法に酵素を用いることを特徴とする特許請
求の範囲第（１）項〜第（４）項記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP29191785A JPS62151758A (ja) | 1985-12-26 | 1985-12-26 | 免疫測定用材料の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP29191785A JPS62151758A (ja) | 1985-12-26 | 1985-12-26 | 免疫測定用材料の製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62151758A true JPS62151758A (ja) | 1987-07-06 |
Family
ID=17775129
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP29191785A Pending JPS62151758A (ja) | 1985-12-26 | 1985-12-26 | 免疫測定用材料の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62151758A (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0383313A2 (en) * | 1989-02-15 | 1990-08-22 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Reagent for immunoassay, and kit containing the same |
| EP0710293A1 (en) * | 1993-07-16 | 1996-05-08 | U.S. Drug Testing, Inc. | Lyophilized ligand-receptor complexes for assays and sensors |
| US5766713A (en) * | 1995-06-14 | 1998-06-16 | Exxon Chemical Patents Inc. | Elastomeric vehicle hoses |
| JP2011137694A (ja) * | 2009-12-28 | 2011-07-14 | Tosoh Corp | 凍結乾燥試薬 |
| JP2017172975A (ja) * | 2016-03-18 | 2017-09-28 | 東ソー株式会社 | 免疫反応試薬及びその製造方法 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5170812A (ja) * | 1974-10-30 | 1976-06-18 | Monsanto Co |
-
1985
- 1985-12-26 JP JP29191785A patent/JPS62151758A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5170812A (ja) * | 1974-10-30 | 1976-06-18 | Monsanto Co |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0383313A2 (en) * | 1989-02-15 | 1990-08-22 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Reagent for immunoassay, and kit containing the same |
| US5283176A (en) * | 1989-02-15 | 1994-02-01 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Reagents for use in competition assays for progesterone |
| US5459045A (en) * | 1989-02-15 | 1995-10-17 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Reagent for immunoassay, and device using the same |
| EP0710293A1 (en) * | 1993-07-16 | 1996-05-08 | U.S. Drug Testing, Inc. | Lyophilized ligand-receptor complexes for assays and sensors |
| EP0710293A4 (en) * | 1993-07-16 | 2002-10-31 | Us Drug Testing Inc | LYOPHILIZED LIGAND RECEPTOR COMPLEXES FOR DETECTION AND AS SENSORS |
| US5766713A (en) * | 1995-06-14 | 1998-06-16 | Exxon Chemical Patents Inc. | Elastomeric vehicle hoses |
| JP2011137694A (ja) * | 2009-12-28 | 2011-07-14 | Tosoh Corp | 凍結乾燥試薬 |
| JP2017172975A (ja) * | 2016-03-18 | 2017-09-28 | 東ソー株式会社 | 免疫反応試薬及びその製造方法 |
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