JPS6161055A - ウイルス赤血球凝集反応試験用鳥類固定赤血球の保存液 - Google Patents
ウイルス赤血球凝集反応試験用鳥類固定赤血球の保存液Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
イ1発明の目的
星東上立■貝公里
ウィルスは一般にその表面に動物赤血球を凝集させる性
質を有するHA抗原[Hemagglutinatto
nantigen]と呼ばれる成分を保有している。H
A抗原と赤血球との凝集反応は、ウィルスの種類によっ
て凝集させる赤血球の動物種が異なることも知られてい
る。例えば、風疹ウィルスはヒヨコおよびガチョウの赤
血球を凝集させるし、インフルエンザウィルスはニワト
リ(ヒヨコおよび成鳥)の赤血球を、パラインフルエン
ザウィルスはモルモットおよびニワトリの赤血球を、ま
た麻疹ウィルスはサルの赤血球を凝集きせるなどである
。この性質を利用してウィルスの同定や定量を行うこと
ができる。
質を有するHA抗原[Hemagglutinatto
nantigen]と呼ばれる成分を保有している。H
A抗原と赤血球との凝集反応は、ウィルスの種類によっ
て凝集させる赤血球の動物種が異なることも知られてい
る。例えば、風疹ウィルスはヒヨコおよびガチョウの赤
血球を凝集させるし、インフルエンザウィルスはニワト
リ(ヒヨコおよび成鳥)の赤血球を、パラインフルエン
ザウィルスはモルモットおよびニワトリの赤血球を、ま
た麻疹ウィルスはサルの赤血球を凝集きせるなどである
。この性質を利用してウィルスの同定や定量を行うこと
ができる。
本発明はこのようなウィルスと赤血球の凝集反応に基づ
いて行なう赤血球凝集反応(HA反応)または赤血球凝
集抑制反応(HI反応)に用いる固定赤血球の保存液に
関するものであり、HA反応およびHI反応は臨床検査
分野でウィルス感染の有無の診断に広く用いられている
。
いて行なう赤血球凝集反応(HA反応)または赤血球凝
集抑制反応(HI反応)に用いる固定赤血球の保存液に
関するものであり、HA反応およびHI反応は臨床検査
分野でウィルス感染の有無の診断に広く用いられている
。
更米辣オ
各種ウィルスの上記のような特異抗原性を利用してウィ
ルスの同定や力価測定にHA反応が用いられており、ま
た、ウィルス感染に対する免疫反応の結果生体が保有す
るHA抗原の抗体すなわちH1抗体を測定するには、H
I反応が利用詐れ、共に赤血球を反応試薬として必要と
する。明確な凝集または凝集抑制反応を起こさせるには
新鮮な赤血球の使用が望まれるが、試験時毎に新鮮面を
得ることは煩雑で、実際には不可部である。そのため長
期保存後も赤血球の被凝集能力が低下しない赤血球の保
存方法の研究が続けられている6例えば、ホルマリン等
による固定化や固定赤血球の凍結保存、凍結乾燥などの
方法がある。凍結乾燥においては、更に洗浄により無塩
状態にすること(特公昭50−37724号)およびグ
ルツースや血清アルブミンの添加(特開昭54−231
19号)等の凍結乾燥前の処理により、安定化が試みら
れている。しかし、凍結乾燥の処理をせずに溶液中で固
定赤血球を長期保存する方法は未だ見い出されていない
。
ルスの同定や力価測定にHA反応が用いられており、ま
た、ウィルス感染に対する免疫反応の結果生体が保有す
るHA抗原の抗体すなわちH1抗体を測定するには、H
I反応が利用詐れ、共に赤血球を反応試薬として必要と
する。明確な凝集または凝集抑制反応を起こさせるには
新鮮な赤血球の使用が望まれるが、試験時毎に新鮮面を
得ることは煩雑で、実際には不可部である。そのため長
期保存後も赤血球の被凝集能力が低下しない赤血球の保
存方法の研究が続けられている6例えば、ホルマリン等
による固定化や固定赤血球の凍結保存、凍結乾燥などの
方法がある。凍結乾燥においては、更に洗浄により無塩
状態にすること(特公昭50−37724号)およびグ
ルツースや血清アルブミンの添加(特開昭54−231
19号)等の凍結乾燥前の処理により、安定化が試みら
れている。しかし、凍結乾燥の処理をせずに溶液中で固
定赤血球を長期保存する方法は未だ見い出されていない
。
明が 決しようとする。 。
赤血球が被凝集能力を失わずに長期間安定に維持されて
いる保存液を開発するにあたり、先ず固定赤血球を用い
て、風疹ウィルスの特異的赤血球凝集反応を妨害して正
確な結果を与えない非特異的凝集抑制の原因解明を試み
た。その結果、非特異的凝集抑制は従来より赤血球保存
液として使われているリン酸緩衝液や生理食塩水に因る
ものであり、これらの使用が固定赤血球のβ−リボ蛋白
質の滲出をもたらし、非特異的に赤血球凝集反応を抑制
することが明らかになった。それゆえに、風疹H1抗体
価検査においても固定赤血球液にβ−リボ蛋白質が含ま
れていると、陰性検体(抗体価8倍以上)が陽性となり
、検査判定が不能になることが判明した。
いる保存液を開発するにあたり、先ず固定赤血球を用い
て、風疹ウィルスの特異的赤血球凝集反応を妨害して正
確な結果を与えない非特異的凝集抑制の原因解明を試み
た。その結果、非特異的凝集抑制は従来より赤血球保存
液として使われているリン酸緩衝液や生理食塩水に因る
ものであり、これらの使用が固定赤血球のβ−リボ蛋白
質の滲出をもたらし、非特異的に赤血球凝集反応を抑制
することが明らかになった。それゆえに、風疹H1抗体
価検査においても固定赤血球液にβ−リボ蛋白質が含ま
れていると、陰性検体(抗体価8倍以上)が陽性となり
、検査判定が不能になることが判明した。
アルデヒド類で固定化した赤血球は一般に、長期保存が
可能であるが、振盪、混和などの機械的刺激を与えると
、赤血球が破壊され、赤血球浮遊中β−リボ蛋白質が滲
出してくる。このβ−リボ蛋白質の滲出が多い原因は、
固定赤血球を従来の生理食塩水などの塩類を含む水溶液
で保存した場合には、塩類の影響により赤血球同志の吸
着が強くなり、したがって、使用時に分散させるために
はより多くの機械的刺激を長時間かけねばならないため
と考えられる。それに反し、精製水に保存すると、上記
の血球同志の吸着も少なく、β−リボ蛋白質の滲出が抑
制される。
可能であるが、振盪、混和などの機械的刺激を与えると
、赤血球が破壊され、赤血球浮遊中β−リボ蛋白質が滲
出してくる。このβ−リボ蛋白質の滲出が多い原因は、
固定赤血球を従来の生理食塩水などの塩類を含む水溶液
で保存した場合には、塩類の影響により赤血球同志の吸
着が強くなり、したがって、使用時に分散させるために
はより多くの機械的刺激を長時間かけねばならないため
と考えられる。それに反し、精製水に保存すると、上記
の血球同志の吸着も少なく、β−リボ蛋白質の滲出が抑
制される。
口0発明の構成
41.を 決するための手段
前記のβ−リボ蛋白質の滲出を阻止するためには、した
がって、リン酸緩衝液や生理食塩水を用いずに、精製水
に固定赤血球を浮遊させることが必要で、この方法によ
り非特異的凝集抑制反応を阻止できる。
がって、リン酸緩衝液や生理食塩水を用いずに、精製水
に固定赤血球を浮遊させることが必要で、この方法によ
り非特異的凝集抑制反応を阻止できる。
また、この精製水よりなる保存液に血清アルブミン、グ
リセリンまたはメチルスルホキシドを適当量添加するこ
とにより赤血球の安定性が高められ、さらに細菌増殖肪
止剤を添加すると、赤血球はより一層長期の保存に耐え
うろことが確認きれた。
リセリンまたはメチルスルホキシドを適当量添加するこ
とにより赤血球の安定性が高められ、さらに細菌増殖肪
止剤を添加すると、赤血球はより一層長期の保存に耐え
うろことが確認きれた。
本発明の保存液の対象となる固定赤血球は鳥類の赤血球
であって、例えば、ガチョウ、ニワトリなどの固定赤血
球を用いるとよく、特にガチョウの固定赤血球に対する
効果が顕著である。なお、固定化はホルムアルデヒドや
グルタルアルデヒドなどの通常用いられる固定化剤を用
いて常法に従って行なわれる。例えば、グルタルアルデ
ヒド約0.1〜0.3%(w/v)溶液で約1〜2時間
固定化を行なう。
であって、例えば、ガチョウ、ニワトリなどの固定赤血
球を用いるとよく、特にガチョウの固定赤血球に対する
効果が顕著である。なお、固定化はホルムアルデヒドや
グルタルアルデヒドなどの通常用いられる固定化剤を用
いて常法に従って行なわれる。例えば、グルタルアルデ
ヒド約0.1〜0.3%(w/v)溶液で約1〜2時間
固定化を行なう。
保存液は精製水(蒸留水、イオン交換水など)よりなる
。
。
所望により、血清アルブミン、グリセリンまたはジメチ
ルスルホキシドを添加してもよく、血清アルブミンの場
合は、保存液の約0.01〜1.0%(w/ v )、
好ましくは約0.05〜0.2%(w/V)を添加する
とよい、血清アルブミンとしては、人、牛、馬、兎など
のものが用いうるが、牛血清アルブミンがより好ましい
、グリセリンまたはジメチルスルホキシドを添加する場
合は、約5〜10%(v/v)を加える。
ルスルホキシドを添加してもよく、血清アルブミンの場
合は、保存液の約0.01〜1.0%(w/ v )、
好ましくは約0.05〜0.2%(w/V)を添加する
とよい、血清アルブミンとしては、人、牛、馬、兎など
のものが用いうるが、牛血清アルブミンがより好ましい
、グリセリンまたはジメチルスルホキシドを添加する場
合は、約5〜10%(v/v)を加える。
きらに必要に応じて、細菌増殖防止剤(例えば、アジ化
ナトリウム、チメロサールなど)を加えてもよく、添加
量は通常防腐の目的で用いられる濃度でよく、例えば、
保存液の0.01〜0゜2%(w/ V )前後がよい
、特にアジ化ナトリウムの使用により高い安定性が得ら
れる。
ナトリウム、チメロサールなど)を加えてもよく、添加
量は通常防腐の目的で用いられる濃度でよく、例えば、
保存液の0.01〜0゜2%(w/ V )前後がよい
、特にアジ化ナトリウムの使用により高い安定性が得ら
れる。
本発明の保存液に上記の鳥類固定赤血球を浮遊許せて、
ウィルス、特に風疹、日本脳炎、ムンプス、インフルエ
ンザなどに対するHA試験および血清中のHI抗体を測
定するH1試験を行いうる。
ウィルス、特に風疹、日本脳炎、ムンプス、インフルエ
ンザなどに対するHA試験および血清中のHI抗体を測
定するH1試験を行いうる。
闘
本発明にかかる保存液に鳥類固定赤血球を所望濃度、好
ましくは約8〜12%(v/v)に浮遊きせると、赤血
球の分散がよくかつ長期冷蔵保存後も赤血球は安定であ
る。したがって、凝集パターンの崩れがなく鮮明で凝集
反応の判定が容易である。長期保存後も非特異的凝集反
応の抑制がなく、正確なHA価またはHI価が得られる
。同赤血球浮遊液は風疹、日本脳炎、ムンプスなどのウ
ィルス、特に風疹ウィルスのHA反応、H1反応におい
て、鮮明な凝集パターンを与え、長期保存後も効果にお
いて変わりがないことが認められた。
ましくは約8〜12%(v/v)に浮遊きせると、赤血
球の分散がよくかつ長期冷蔵保存後も赤血球は安定であ
る。したがって、凝集パターンの崩れがなく鮮明で凝集
反応の判定が容易である。長期保存後も非特異的凝集反
応の抑制がなく、正確なHA価またはHI価が得られる
。同赤血球浮遊液は風疹、日本脳炎、ムンプスなどのウ
ィルス、特に風疹ウィルスのHA反応、H1反応におい
て、鮮明な凝集パターンを与え、長期保存後も効果にお
いて変わりがないことが認められた。
夾農週
以下に実施例により本発明の実施態様を示すがこれら実
施例は何ら本発明を限定するものではない。
施例は何ら本発明を限定するものではない。
実施例1
精製水10100Oにガチョウ固定赤血球100m1を
分散させ、10%赤血球浮遊液とする。
分散させ、10%赤血球浮遊液とする。
実施例2
ウシ血清アルブミン1gとアジ化ナトリウム1gを、精
製水に攪拌溶媒し、全量を10100Oとし、固定赤血
球の保存に使用する。
製水に攪拌溶媒し、全量を10100Oとし、固定赤血
球の保存に使用する。
実施例3〜10
下記の成分および精製水(全量で10100Oとする)
を実施例2と同様の方法で混合し保存液を調製する。
を実施例2と同様の方法で混合し保存液を調製する。
(以下余白)
第 1 表
ハ1発明の効果
(1)下記の方法で調製したガチョウ固定赤血球を用い
て、実施例1の赤血球浮遊液および実施例2〜4の保存
液に固定赤血球を浮遊させて得た10%浮遊液を、冷蔵
工時々混和し1.35.39および64日後のβ−リボ
蛋白質の滲出量を測定し、第1図の結果を得た。これら
保存液においてはβ−リボ蛋白質の滲出は認められなか
った。
て、実施例1の赤血球浮遊液および実施例2〜4の保存
液に固定赤血球を浮遊させて得た10%浮遊液を、冷蔵
工時々混和し1.35.39および64日後のβ−リボ
蛋白質の滲出量を測定し、第1図の結果を得た。これら
保存液においてはβ−リボ蛋白質の滲出は認められなか
った。
実験方法
a、ガチョウ固定赤血球の調製
市販のガチョウ赤血球を生理食塩水で3回、下記組成の
リン酸緩衝液生理食塩水(PBS)で1回洗浄したのち
、同PBSの約5%(v/v)浮遊液とした。この血球
浮遊液にPBSで希釈した1、5%グルタルアルデヒド
溶液を血球量の179量加えて、スターラーでゆっくり
攪拌しながら室温60分間反応許せた。得られた固定赤
血球を精製水で6回洗浄後、保存液に浮遊許せた。
リン酸緩衝液生理食塩水(PBS)で1回洗浄したのち
、同PBSの約5%(v/v)浮遊液とした。この血球
浮遊液にPBSで希釈した1、5%グルタルアルデヒド
溶液を血球量の179量加えて、スターラーでゆっくり
攪拌しながら室温60分間反応許せた。得られた固定赤
血球を精製水で6回洗浄後、保存液に浮遊許せた。
PBS :塩化カリウム 0.2 gリン酸
−水素ナトリウム 1.15g リン酸二水素カリウム 0.2 g 塩化ナナトリウム 8.0 g 精製水 全量で10100Oとする。
−水素ナトリウム 1.15g リン酸二水素カリウム 0.2 g 塩化ナナトリウム 8.0 g 精製水 全量で10100Oとする。
b、リボ蛋白質の測定法
風疹HA抗原による血球凝集の抑制能で測定した。すな
わち、固定赤血球をよく分散させた保存液0.4mlを
試験管にとり、その遠心上清につき風疹H1試験を行な
った。ただし、β−リボ蛋白質の検出感度を上げるため
に2単位の風疹HA抗原を用いた。風疹ウィルスの赤血
球凝集を抑制する最大希釈倍数をもってβ−リボ蛋白質
の値とした。なお、この測定法において、8倍以上のβ
−リボ蛋白質の滲出のみられた固定血球を用いて風疹H
1試験(予研マイクロプレート法)を行なうと、陰性血
清が陽性と判定きれた。
わち、固定赤血球をよく分散させた保存液0.4mlを
試験管にとり、その遠心上清につき風疹H1試験を行な
った。ただし、β−リボ蛋白質の検出感度を上げるため
に2単位の風疹HA抗原を用いた。風疹ウィルスの赤血
球凝集を抑制する最大希釈倍数をもってβ−リボ蛋白質
の値とした。なお、この測定法において、8倍以上のβ
−リボ蛋白質の滲出のみられた固定血球を用いて風疹H
1試験(予研マイクロプレート法)を行なうと、陰性血
清が陽性と判定きれた。
(り実施例2の保存液、PBSおよび生理食塩水に(1
)に記載のガチョウ固定赤血球を浮遊きせて、10%浮
遊液をつくり、これらと実施例1の浮遊液を、冷蔵下1
日1回混和し、8および28日後のβ−リボ蛋白質の滲
出量を測定した。結果を第2図に示す、実施例2の保存
液ではβ−リボ蛋白質の滲出は認められなかった。
)に記載のガチョウ固定赤血球を浮遊きせて、10%浮
遊液をつくり、これらと実施例1の浮遊液を、冷蔵下1
日1回混和し、8および28日後のβ−リボ蛋白質の滲
出量を測定した。結果を第2図に示す、実施例2の保存
液ではβ−リボ蛋白質の滲出は認められなかった。
0)実施例2の保存液に浮遊せしめたガチョウ固定赤血
球と、DGV(デキストロース−ゲラチン−ベロナール
)緩衝液に浮遊許せた生ガチョウ赤血球を使用し予研マ
イクロプレート法により48例の臨床患者血清検体を用
いて、風疹HA(抗原力価)試験およびHI(抗体力価
)試験を行なった。結果は第2表および第3表に示すと
おりであり、本発明の保存液に浮遊させたガチョウ固定
赤血球は生血球と全く同一の結果を示した。
球と、DGV(デキストロース−ゲラチン−ベロナール
)緩衝液に浮遊許せた生ガチョウ赤血球を使用し予研マ
イクロプレート法により48例の臨床患者血清検体を用
いて、風疹HA(抗原力価)試験およびHI(抗体力価
)試験を行なった。結果は第2表および第3表に示すと
おりであり、本発明の保存液に浮遊させたガチョウ固定
赤血球は生血球と全く同一の結果を示した。
第2表 風疹HA抗原力価の比較
第3表 風疹HI抗体価の比較
<8 8 16 32 64128256生赤血球−D
GV緩衝液のHI抗体価 特許出願人 塩野義製薬株式会社 第1図 第2図 昭和60年 2月28日
GV緩衝液のHI抗体価 特許出願人 塩野義製薬株式会社 第1図 第2図 昭和60年 2月28日
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、精製水から成るウィルス赤血球凝集反応試験用鳥類
固定赤血球の保存液。 2、血清アルブミン約0.01〜1.0%(w/v)を
含有する特許請求の範囲第1項記載の保存液。 3、血清アルブミンが牛血清アルブミンである特許請求
の範囲第2項記載の保存液。 4、グリセリン約5〜10%(v/v)を含有する特許
請求の範囲第1項記載の保存液。 5、ジメチルスルホキシド約5〜10%(v/v)を含
有する特許請求の範囲第1項記載の保存液。 6、細菌増殖防止剤を含有する特許請求の範囲第1、2
、4または5項記載の保存液。 7、細菌増殖防止剤がアジ化ナトリウムである特許請求
の範囲第5項記載の保存液。
Priority Applications (6)
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---|---|---|---|
JP59183039A JPS6161055A (ja) | 1984-08-31 | 1984-08-31 | ウイルス赤血球凝集反応試験用鳥類固定赤血球の保存液 |
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KR1019850006270A KR890000393B1 (ko) | 1984-08-31 | 1985-08-29 | 비루스성 적혈구 응집 반응 시험용 조류(鳥類)고정 적혈구의 보존액 |
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JP59183039A JPS6161055A (ja) | 1984-08-31 | 1984-08-31 | ウイルス赤血球凝集反応試験用鳥類固定赤血球の保存液 |
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