JPS6131091A - 発酵によるポリオ−ル類の製造方法 - Google Patents
発酵によるポリオ−ル類の製造方法Info
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- JPS6131091A JPS6131091A JP15320884A JP15320884A JPS6131091A JP S6131091 A JPS6131091 A JP S6131091A JP 15320884 A JP15320884 A JP 15320884A JP 15320884 A JP15320884 A JP 15320884A JP S6131091 A JPS6131091 A JP S6131091A
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- Japan
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- polyol
- polyols
- aureobasidium
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- microorganism
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、発酵によるポリオール類の製造方法に関し、
更に詳細には、オーレオバシデイウム（Ａｕｒｅｏｂａ
ｓｉｄｉｕｍ ）属に属する微生物を用いて発酵性糖類
をポリオール類に変換することを特徴とする発酵による
ポリオール類の製造方法に関する。
更に詳細には、オーレオバシデイウム（Ａｕｒｅｏｂａ
ｓｉｄｉｕｍ ）属に属する微生物を用いて発酵性糖類
をポリオール類に変換することを特徴とする発酵による
ポリオール類の製造方法に関する。
従来より、発酵によるポリオール類、就中エリスＩＪ
）−ルの製造方法に於て使用される微生物としては、例
えばキャンシダ属、デバリオミセス属。
）−ルの製造方法に於て使用される微生物としては、例
えばキャンシダ属、デバリオミセス属。
トリゴノプンス属、トルロゾンス属、ハンゼヌラ属など
に属するものが知られている。
に属するものが知られている。
例えば、特公昭４７−４１５４９号公報には培地中の主
炭素源としてグリセロールなどの発酵性糖類を用いてキ
ャンシダ属、トリゴノゾンス属に属する微生物によるポ
リオール類への変換方法が記載されている。しかしなが
ら、この方法に従えば微生物の耐糖性の問題から主炭素
源としての糖質濃度（基質濃度）Ｋ限界があり、比較的
低濃度で発酵を行なう必要があり、またポリオール類へ
の変換率も必ずしも十分でないことから、未だ工業的に
利用されるに至っていない。
炭素源としてグリセロールなどの発酵性糖類を用いてキ
ャンシダ属、トリゴノゾンス属に属する微生物によるポ
リオール類への変換方法が記載されている。しかしなが
ら、この方法に従えば微生物の耐糖性の問題から主炭素
源としての糖質濃度（基質濃度）Ｋ限界があり、比較的
低濃度で発酵を行なう必要があり、またポリオール類へ
の変換率も必ずしも十分でないことから、未だ工業的に
利用されるに至っていない。
本発明者らは、かねてより生体触媒としての微生物の有
用性についてそのポリオール類−＼の変換能の検索を行
なってきたが、偶々、沖縄系の澱粉Ｔ場の廃カスから分
離された不完全菌類のオーレオパ／デイウム属に属する
微生物が高いピリオール類への変換能を有することを見
出し、本発明に到達したものである。
用性についてそのポリオール類−＼の変換能の検索を行
なってきたが、偶々、沖縄系の澱粉Ｔ場の廃カスから分
離された不完全菌類のオーレオパ／デイウム属に属する
微生物が高いピリオール類への変換能を有することを見
出し、本発明に到達したものである。
即ち、本発明はオーレオパ／デイウム属に属しポリオー
ル類生産能を有する微生物をグルコース々どの発酵性糖
類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的に培養し
て培養液中にポリオール類を生成蓄積せしめ、これを採
取することを特徴とする発酵によるポリオール類の製造
方法に関する。
ル類生産能を有する微生物をグルコース々どの発酵性糖
類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的に培養し
て培養液中にポリオール類を生成蓄積せしめ、これを採
取することを特徴とする発酵によるポリオール類の製造
方法に関する。
尚、本発明に於て使用されるオーレオバシデイウム属に
属する微生物のポリオール類生産能については未だ知ら
れておらず、本発明に於て分離、確認されたオーレオバ
７デイウムｓｐ．ＳＮ−４５菌株が最初のものである。
属する微生物のポリオール類生産能については未だ知ら
れておらず、本発明に於て分離、確認されたオーレオバ
７デイウムｓｐ．ＳＮ−４５菌株が最初のものである。
本発明に於て用いられる微生物オーレオバシデイウムｓ
ｐ、 ５Ｎ−４５菌株は、次のような菌学的性質を有す
る。
ｐ、 ５Ｎ−４５菌株は、次のような菌学的性質を有す
る。
１）顕微鏡的所見
栄養細胞の大きさく＄１） ８〜１ｏ×８〜１４μ
栄養細胞の形 状（＊１） 単胞、卵形又は楕円形
栄養細胞の増殖法（＄１） 多極出芽菌 糸
体（＊２） 真正菌糸を形成し、側面に出
芽型分生子を多 教生ずる。
栄養細胞の形 状（＊１） 単胞、卵形又は楕円形
栄養細胞の増殖法（＄１） 多極出芽菌 糸
体（＊２） 真正菌糸を形成し、側面に出
芽型分生子を多 教生ずる。
（註）＊ＩＹＭ寒天培地に２７°Ｃ１
５日間培養
本２ ポテトグルコース寒天
によるスライＶ培養
２）寒天斜面（＊３）
生 育 良 灯光
沢 無 し色 調
３日以上培養すると白色クリーム状か
ら暗色。
沢 無 し色 調
３日以上培養すると白色クリーム状か
ら暗色。
黒色のコロニーとなる。
（註）中３ ＹＭ寒天培地
３）液体培養（＊４）
表面生育 皮膜形成
濁 度 透 開院 査
大（註）＄４ＹＭ液体培地 ２ 子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成せずコーンミール寒
天培地 形成せずＹＭ寒天培地
形成せずニンジンエキス寒天培地 形成せず■６寒
天培地 形成せず３ 生理学的性質 酸素要求性 好気的 生育温度 ２０〜３７°Ｃ最適生育
温度 ３４°Ｃ生育ｐＨ２，５〜９０ 最適生育ｐｌ（５，０〜７．０ ＫＮＯ３（＄５） 有り （ＮＨ４）２Ｓｏ４（＄５ン 有り 脂肪の分解（＊６） 無 し 尿素の分解 有 リ ゼラチンの液化 有 リ スクロースの 生育可能最高濃度（＊７） 約６０％生育最適濃度
（＊７） 約２０％カロチノイドの生成
無 し有機酸の生成 有 リデ
ンプン様物質の生成 無 しビタミンの要求性
（＊５） 無 しく註） ＊ ５ Ｗｉ ｃＫ
ｔ＋ａｍの合成培地を用いたと工 Ｊ、 Ｌｏｄｄｅｒらの方 法により判定 ＊６ 牛脂を使用 ＊７ 液体培地 ４ 糖の発酵性（＊５） グルコース ＋ ラクトース − ガラクトース ＋ ノリビオース − スクロース ＋ ラフイノース ＋ マルトース ＋ ５、糖の資化性（傘５） グルコース ＋ Ｄ−キシロース 十 がラクトース ＋ エリスリトール ＋ Ｄ−アラビノース ＋ Ｌ−アラビノース ＋ Ｄ−ソルボース ＋ Ｌ−ソルボース ＋ Ｄ−リポース ＋ スクロース ＋ Ｌ−ラムノース ＋ マルトース ＋ エタノール − セロビオース − グリセロール ＋ トレハロース ＋ アドニトール ＋ ラクトース ＋ ズルシトール ＋ ノリビオヘス ＋ Ｄ−マンニトール ＋ ラフイ／−ス ＋ Ｄ−ソルビトール フルクトース ＋ αーメチ／レーＤーグルコシド ＋ イヌリン ＋ サリンン ー イノ／トール ＋ 可溶性デンプン ＋ ＤＬ−乳酸 − コハク酸 十 クエン酸 十 上記のごとき菌学的性質を有する本菌株の分類学上の位
置をＴＨＥ ＧＥＮＥＲＡ ＯＦ ＦｔＪＮＧＩＳＰＯ
ＲＵＬＡＴＩＮＧ ＩＮ ＰＵＲＥ ＣＵＬＴＵＲＥ（
Ｊ．Ａ．ＶＯＮ ＡＲＸ ；１９７４年）を参照にして
検討した結果１本菌株はＹＭ寒天培地上での培養後期に
於て白色から黒色のコロニーを形成し、栄養細胞に菌糸
を形成し、多くのＢＩａｓｔ ｓｐｏｒｅを生じ、かつ
厚膜胞子を持つ、などの特徴を有していることがらオー
レオバシデイウム属に属するものと考えられ、これをオ
ーレオバシディウムｓｐ． ＳＮ− ４ ５菌株と命名
した。
大（註）＄４ＹＭ液体培地 ２ 子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成せずコーンミール寒
天培地 形成せずＹＭ寒天培地
形成せずニンジンエキス寒天培地 形成せず■６寒
天培地 形成せず３ 生理学的性質 酸素要求性 好気的 生育温度 ２０〜３７°Ｃ最適生育
温度 ３４°Ｃ生育ｐＨ２，５〜９０ 最適生育ｐｌ（５，０〜７．０ ＫＮＯ３（＄５） 有り （ＮＨ４）２Ｓｏ４（＄５ン 有り 脂肪の分解（＊６） 無 し 尿素の分解 有 リ ゼラチンの液化 有 リ スクロースの 生育可能最高濃度（＊７） 約６０％生育最適濃度
（＊７） 約２０％カロチノイドの生成
無 し有機酸の生成 有 リデ
ンプン様物質の生成 無 しビタミンの要求性
（＊５） 無 しく註） ＊ ５ Ｗｉ ｃＫ
ｔ＋ａｍの合成培地を用いたと工 Ｊ、 Ｌｏｄｄｅｒらの方 法により判定 ＊６ 牛脂を使用 ＊７ 液体培地 ４ 糖の発酵性（＊５） グルコース ＋ ラクトース − ガラクトース ＋ ノリビオース − スクロース ＋ ラフイノース ＋ マルトース ＋ ５、糖の資化性（傘５） グルコース ＋ Ｄ−キシロース 十 がラクトース ＋ エリスリトール ＋ Ｄ−アラビノース ＋ Ｌ−アラビノース ＋ Ｄ−ソルボース ＋ Ｌ−ソルボース ＋ Ｄ−リポース ＋ スクロース ＋ Ｌ−ラムノース ＋ マルトース ＋ エタノール − セロビオース − グリセロール ＋ トレハロース ＋ アドニトール ＋ ラクトース ＋ ズルシトール ＋ ノリビオヘス ＋ Ｄ−マンニトール ＋ ラフイ／−ス ＋ Ｄ−ソルビトール フルクトース ＋ αーメチ／レーＤーグルコシド ＋ イヌリン ＋ サリンン ー イノ／トール ＋ 可溶性デンプン ＋ ＤＬ−乳酸 − コハク酸 十 クエン酸 十 上記のごとき菌学的性質を有する本菌株の分類学上の位
置をＴＨＥ ＧＥＮＥＲＡ ＯＦ ＦｔＪＮＧＩＳＰＯ
ＲＵＬＡＴＩＮＧ ＩＮ ＰＵＲＥ ＣＵＬＴＵＲＥ（
Ｊ．Ａ．ＶＯＮ ＡＲＸ ；１９７４年）を参照にして
検討した結果１本菌株はＹＭ寒天培地上での培養後期に
於て白色から黒色のコロニーを形成し、栄養細胞に菌糸
を形成し、多くのＢＩａｓｔ ｓｐｏｒｅを生じ、かつ
厚膜胞子を持つ、などの特徴を有していることがらオー
レオバシデイウム属に属するものと考えられ、これをオ
ーレオバシディウムｓｐ． ＳＮ− ４ ５菌株と命名
した。
即ち、本発明の微生物は沖縄系の澱粉工場の廃カスから
常法に従って純外分離されたもので、オーレオバシデイ
ウム属に属し、栄養細胞が８〜１０×８〜１４μの卵形
もしくは楕円形で、多極出芽により増殖し、子のう胞子
は見られず、真正菌糸が見られ、殆どの糖類を資化する
性質を有し、ＹＭ寒天培地上での生育も速く３日間で白
色から黒色のコロニーとなり、液体培地では皮膜を形成
し、かつ発酵性糖類をエリスリトール、グリセロールな
どのポリオール類に変換する能力を有する。
常法に従って純外分離されたもので、オーレオバシデイ
ウム属に属し、栄養細胞が８〜１０×８〜１４μの卵形
もしくは楕円形で、多極出芽により増殖し、子のう胞子
は見られず、真正菌糸が見られ、殆どの糖類を資化する
性質を有し、ＹＭ寒天培地上での生育も速く３日間で白
色から黒色のコロニーとなり、液体培地では皮膜を形成
し、かつ発酵性糖類をエリスリトール、グリセロールな
どのポリオール類に変換する能力を有する。
本菌株は、工業技術院微生物工業技術研究所に「微生物
受託番号 微工研菌寄 第７５９４号」と１，て寄託さ
れている。
受託番号 微工研菌寄 第７５９４号」と１，て寄託さ
れている。
以下に、本発明に係わるポリオール類の製造方法につい
て述べる。
て述べる。
本発明に於る培養方法は、通常液体培地を用いて好気的
条件下に攪はん培養により実施されることが望ましい。
条件下に攪はん培養により実施されることが望ましい。
当該液体培地の主炭素源としてはグルコース。
フルクトース、スクロースなどの糖質が使用されるが、
これらの糖質の培地中に於る量的割合としては１０〜４
０チ（Ｗ／Ｗ）、特に好１しくけ２０〜３ ０ ％ （
ｗ／ｗ）の範囲で添加使用されることが好ましい。窒素
源としては微生物により利用可能な窒素化合物、例えば
酵母エキス、ペプトン、麦芽エキス、コーンスチープリ
カーなどが使用されるが、酵母エキス、コーンスチープ
リ力ーなどが特に好ましい。１だ、培地に加える無機塩
類としては例えばリン酸，マグネシウム、カルンウム，
カリウム、鉄などの塩類が使用される。更に、必要に応
じて酵母の生育に必要な各種の有機物，無機物などを培
地に添加することが出来る。
これらの糖質の培地中に於る量的割合としては１０〜４
０チ（Ｗ／Ｗ）、特に好１しくけ２０〜３ ０ ％ （
ｗ／ｗ）の範囲で添加使用されることが好ましい。窒素
源としては微生物により利用可能な窒素化合物、例えば
酵母エキス、ペプトン、麦芽エキス、コーンスチープリ
カーなどが使用されるが、酵母エキス、コーンスチープ
リ力ーなどが特に好ましい。１だ、培地に加える無機塩
類としては例えばリン酸，マグネシウム、カルンウム，
カリウム、鉄などの塩類が使用される。更に、必要に応
じて酵母の生育に必要な各種の有機物，無機物などを培
地に添加することが出来る。
培養は、前記組成からなる液体培地に微生物菌体を直接
接種するか、又は、別に前培養によって得られる種培養
液を接種して行なわれる。この種培養液の調製は、例え
ば前記のごとき本培養と同様な組成からなる液体培地に
直接菌体を接種して３３〜３６℃の温度で２〜３日間程
度培養することにより可能である。
接種するか、又は、別に前培養によって得られる種培養
液を接種して行なわれる。この種培養液の調製は、例え
ば前記のごとき本培養と同様な組成からなる液体培地に
直接菌体を接種して３３〜３６℃の温度で２〜３日間程
度培養することにより可能である。
培養温度は微生物が生育しうる範囲内、即ち３０〜３７
°Ｃで行なわれるが、特に好ましくは３３〜３６°Ｃの
範囲である。
°Ｃで行なわれるが、特に好ましくは３３〜３６°Ｃの
範囲である。
また、培地の…は３，５〜８．０、好ましくは４．５〜
５．５の範囲で調節される。
５．５の範囲で調節される。
培養期間は使用する培地の種類及び主炭素源である糖質
の濃度により異なるが、通常５〜６日間程度である。
の濃度により異なるが、通常５〜６日間程度である。
本発明に於る培養は、培地の栄養源が最大限に利用され
、かつ培養液中のポリオール類の生成量が最高に達した
時点で培養を終了させることが望′ましい。
、かつ培養液中のポリオール類の生成量が最高に達した
時点で培養を終了させることが望′ましい。
尚、培養液中のポリオール類生成量はガスクロマトグラ
フィー、高速液体クロマトグラフィーなどの周知の方法
を用いて速やかに測定することが出来る。
フィー、高速液体クロマトグラフィーなどの周知の方法
を用いて速やかに測定することが出来る。
かくして、培養液中に蓄積さｆだポリオール類は次いで
常法に従って培養液中から分離される。
常法に従って培養液中から分離される。
即ち、かかる場合に当該分野に於て通常使用されている
周知の手段、例えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸
着クロマトグラフィー、溶媒抽出。
周知の手段、例えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸
着クロマトグラフィー、溶媒抽出。
蒸留、結晶化などの操作が必要に応じて適宜組み合わせ
て用いられる。−例を挙げれば、培養液からろ過、遠心
分離などＫよって菌体を除去し、次いでこの液を活性炭
で処理して着色物質などを除き、更にイオン交換樹脂に
よシ脱イオンした後、液を濃縮して／ロングとする。次
に、この７０ノブからエリスリトールを結晶化して分離
し、更にエリスリトールを分離した後の母液は、これを
更に減圧（真空）蒸留により精製してグリセロールを得
る。
て用いられる。−例を挙げれば、培養液からろ過、遠心
分離などＫよって菌体を除去し、次いでこの液を活性炭
で処理して着色物質などを除き、更にイオン交換樹脂に
よシ脱イオンした後、液を濃縮して／ロングとする。次
に、この７０ノブからエリスリトールを結晶化して分離
し、更にエリスリトールを分離した後の母液は、これを
更に減圧（真空）蒸留により精製してグリセロールを得
る。
次に実施例を示し、本発明の態様を更に具体的に説明す
る。
る。
実施例１
グルコース３０ ％ （ｗ／ｗ） 、酵母エキス（Ｄｉ
ｆｃｏ製）１．０％、に市ＰＯ４０，０２チを含む培地
５０ａｔ／を綿栓した５００ゴの三角フラスコに入れ、
１２０℃、１５分間滅菌した。放冷後、培地の−を無菌
的に５．０に調整した。このフラスコにオーレオバシデ
イウムｓｐ、 ５Ｎ＝４５菌株「微工研菌寄第７５９４
号」を接種し、３０℃、２２０ ｒｐｍで１１日間振と
う培養を行なった。その結果、この培養液中に２ｏりの
エリスリトールが蓄積した。
ｆｃｏ製）１．０％、に市ＰＯ４０，０２チを含む培地
５０ａｔ／を綿栓した５００ゴの三角フラスコに入れ、
１２０℃、１５分間滅菌した。放冷後、培地の−を無菌
的に５．０に調整した。このフラスコにオーレオバシデ
イウムｓｐ、 ５Ｎ＝４５菌株「微工研菌寄第７５９４
号」を接種し、３０℃、２２０ ｒｐｍで１１日間振と
う培養を行なった。その結果、この培養液中に２ｏりの
エリスリトールが蓄積した。
この培養液を遠心分離し菌体を分離した後、活性炭処理
及びイオン交換樹脂（ＩＲＡ−４１０：ＩＲ−１２０Ｂ
＝２：１ ）による脱塩を行なった。次いで、エタノー
ル抽出を行ない、これを濃縮し、冷所（５°Ｃ）保存す
ることにより結晶を得た。生成した結晶をエタノールよ
り再結晶して得られた白色結晶は、融点１２１℃で甘味
を有していた。高速液体クロマトグラフィー、 ＴＭＳ
誘導体によるガスクロマトグラフィーの保持時間による
同定及び旋光度の測定結果から、この結晶はエリスリト
ールと確認された。
及びイオン交換樹脂（ＩＲＡ−４１０：ＩＲ−１２０Ｂ
＝２：１ ）による脱塩を行なった。次いで、エタノー
ル抽出を行ない、これを濃縮し、冷所（５°Ｃ）保存す
ることにより結晶を得た。生成した結晶をエタノールよ
り再結晶して得られた白色結晶は、融点１２１℃で甘味
を有していた。高速液体クロマトグラフィー、 ＴＭＳ
誘導体によるガスクロマトグラフィーの保持時間による
同定及び旋光度の測定結果から、この結晶はエリスリト
ールと確認された。
実施例２
グルコース４０％（ｗ／ｗ） 、 酵母エキス帆５％。
ＫＨ２ＰＯ４０，０２％からなる培地５０ｄを５００！
／の三角フラスコに入れ滅菌した。放冷後、培地の−を
無菌的に７．０に調整した。このフラスコにオーレオバ
シデイウムｓｐ、 ５Ｎ−４５菌株［微工研菌寄第７５
９４号」を接種し、３０°Ｃ，２２Ｏｒｐｍで１５日間
振とう培養を行なった。
／の三角フラスコに入れ滅菌した。放冷後、培地の−を
無菌的に７．０に調整した。このフラスコにオーレオバ
シデイウムｓｐ、 ５Ｎ−４５菌株［微工研菌寄第７５
９４号」を接種し、３０°Ｃ，２２Ｏｒｐｍで１５日間
振とう培養を行なった。
その結果、この培養液中には４．８１のエリスリトール
及び１２２のグリセロールが蓄積した。
及び１２２のグリセロールが蓄積した。
特許出願人 農林水産省食品総合研究所長手続補正書（
自発） 昭和５９年８月２３日
自発） 昭和５９年８月２３日
Claims (3)
- （１）オーレオバシデイウム属に属しポリオール類生産
能を有する微生物をグルコースなどの発酵性糖類を主炭
素源として含む培地に接種し、好気的に培養して培養液
中にポリオール類を生成蓄積せしめ、これを採取するこ
とを特徴とする発酵によるポリオール類の製造方法。 - （２）生成するポリオール類が主としてエリスリトール
である特許請求の範囲第１項記載の方法。 - （３）オーレオバシデイウム属に属する微生物が、オー
レオバシデイウムｓｐ．ＳＮ−４５菌株（微工研菌寄第
７５９４号）である特許請求の範囲第１項記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15320884A JPS6131091A (ja) | 1984-07-25 | 1984-07-25 | 発酵によるポリオ−ル類の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15320884A JPS6131091A (ja) | 1984-07-25 | 1984-07-25 | 発酵によるポリオ−ル類の製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6131091A true JPS6131091A (ja) | 1986-02-13 |
| JPS639831B2 JPS639831B2 (ja) | 1988-03-02 |
Family
ID=15557406
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15320884A Granted JPS6131091A (ja) | 1984-07-25 | 1984-07-25 | 発酵によるポリオ−ル類の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6131091A (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0262463A2 (en) | 1986-09-09 | 1988-04-06 | Director of National Food Research Institute Ministry of Agriculture Forestry and Fisheries | Novel aureobasidium sp. microorganisms, method for preparing erythritol with the same |
| JPS63196298A (ja) * | 1987-02-06 | 1988-08-15 | Natl Food Res Inst | 新規微生物 |
| US4923812A (en) * | 1988-02-03 | 1990-05-08 | Ngk Insulators, Ltd. | Process for producing erythritol |
| US6030820A (en) * | 1997-10-07 | 2000-02-29 | Mitsubishi Chemical Corporation | Process for producing high-purity erythritol crystal |
| WO2012167012A2 (en) | 2011-06-03 | 2012-12-06 | Dynamic Food Ingredients Corporation | Methods for the electrolytic production of erythritol |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4886677A (en) | 1987-08-25 | 1989-12-12 | Mitsubishi Kasei Corporation | Surface-modified meso-erythritol composition |
-
1984
- 1984-07-25 JP JP15320884A patent/JPS6131091A/ja active Granted
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0262463A2 (en) | 1986-09-09 | 1988-04-06 | Director of National Food Research Institute Ministry of Agriculture Forestry and Fisheries | Novel aureobasidium sp. microorganisms, method for preparing erythritol with the same |
| US4939091A (en) * | 1986-09-09 | 1990-07-03 | Director Of National Food Research Institute, Ministry Of Agriculture, Forestry And Fisheries | Novel auerobasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same and method for preparing erythritol with the same |
| JPS63196298A (ja) * | 1987-02-06 | 1988-08-15 | Natl Food Res Inst | 新規微生物 |
| JPH0411189B2 (ja) * | 1987-02-06 | 1992-02-27 | ||
| US4923812A (en) * | 1988-02-03 | 1990-05-08 | Ngk Insulators, Ltd. | Process for producing erythritol |
| US6030820A (en) * | 1997-10-07 | 2000-02-29 | Mitsubishi Chemical Corporation | Process for producing high-purity erythritol crystal |
| WO2012167012A2 (en) | 2011-06-03 | 2012-12-06 | Dynamic Food Ingredients Corporation | Methods for the electrolytic production of erythritol |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS639831B2 (ja) | 1988-03-02 |
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