JPS6038118B2 - 発酵により産生される多糖類の産生方法 - Google Patents
発酵により産生される多糖類の産生方法Info
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- JPS6038118B2 JPS6038118B2 JP51127138A JP12713876A JPS6038118B2 JP S6038118 B2 JPS6038118 B2 JP S6038118B2 JP 51127138 A JP51127138 A JP 51127138A JP 12713876 A JP12713876 A JP 12713876A JP S6038118 B2 JPS6038118 B2 JP S6038118B2
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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- C12P19/04—Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
- C12P19/06—Xanthan, i.e. Xanthomonas-type heteropolysaccharides
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- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は発酵によりキサンタン系多糖類ガムからなる生
重合体を製造する方法に関する。
重合体を製造する方法に関する。
又この方法で使用されるキサントモナス（Ｘａｎｔｈｏ
ｍｏｎａｓ）属新規菌株及び該菌株の単離即ち分離方法
に関する。
ｍｏｎａｓ）属新規菌株及び該菌株の単離即ち分離方法
に関する。
本発明は該発酵方法により得られる生成物にも関する。
例えば特定多繕類をベースとする増粘化組成物の様に周
囲の物理条件にさほど感受性でない流動特性を持つ増粘
化組成物に対する大きな興味がここ多年にわたり示され
ている。
例えば特定多繕類をベースとする増粘化組成物の様に周
囲の物理条件にさほど感受性でない流動特性を持つ増粘
化組成物に対する大きな興味がここ多年にわたり示され
ている。
かかる組成物は石油別ちオイル工業、食品工業で増粘剤
として使用でき、又非常に様々な分野（薬品、織物、爆
薬等）を含む多数の他工業でも使用できる。特に興味あ
る多糖類はキサントモナス属細菌により産生されるもの
である。
として使用でき、又非常に様々な分野（薬品、織物、爆
薬等）を含む多数の他工業でも使用できる。特に興味あ
る多糖類はキサントモナス属細菌により産生されるもの
である。
研究と比較テストとにより、マンノース、グルクロース
、グルコリン酸（ｇｕｃｏｎｎｌｃａｃｉｄ）塩、アセ
チル基、ピルピン基を含む重合体であるこの物質がデキ
ストラン類及びその関連多糖類が示すよりも高い増粘力
を示し、又ｐＨ値と温度の条件にほとんど感受性でない
流動特性を示すことが示された。植物寄生体である細菌
が多糖類を産生することが昭和１０年（１９３５年）に
Ｅ．Ａクーパー（Ｃ肌ｐｅｒ）とＪ．Ｆ．プレストン（
Ｐｒｅｓｔｏｎ）とにより示されて〔‘‘ェンザイム
フオーメイションアンドボリサツカライドシンセシスバ
イバク テ リ ア （ Ｅｎｚｙｍｅ ｂｒｍａｔｉ
ｏｎ ａｎｄＰｏｌ＄ａｃｃｈａｒｉｄｅｓｈｎｔｈｅ
ｓｉｓｂｙ舷ｃｔｅｒｉａ）；バイオケミカル（Ｂｉｏ
ｃｈｅｍ．）Ｊ．２９ ２２６７〜２２７刀頁）以来、
多糖類を生化学的に得るための多数の研究が発表されて
いる。
、グルコリン酸（ｇｕｃｏｎｎｌｃａｃｉｄ）塩、アセ
チル基、ピルピン基を含む重合体であるこの物質がデキ
ストラン類及びその関連多糖類が示すよりも高い増粘力
を示し、又ｐＨ値と温度の条件にほとんど感受性でない
流動特性を示すことが示された。植物寄生体である細菌
が多糖類を産生することが昭和１０年（１９３５年）に
Ｅ．Ａクーパー（Ｃ肌ｐｅｒ）とＪ．Ｆ．プレストン（
Ｐｒｅｓｔｏｎ）とにより示されて〔‘‘ェンザイム
フオーメイションアンドボリサツカライドシンセシスバ
イバク テ リ ア （ Ｅｎｚｙｍｅ ｂｒｍａｔｉ
ｏｎ ａｎｄＰｏｌ＄ａｃｃｈａｒｉｄｅｓｈｎｔｈｅ
ｓｉｓｂｙ舷ｃｔｅｒｉａ）；バイオケミカル（Ｂｉｏ
ｃｈｅｍ．）Ｊ．２９ ２２６７〜２２７刀頁）以来、
多糖類を生化学的に得るための多数の研究が発表されて
いる。
使用されている微生物は一般的にはキサントモナス属に
属し、更に特定すればキサントモナス属のカンベストリ
ス（ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ）種（最も使用される）、ベ
コニェ（戊ｇｏｎｉａｅ）種、インカネ（ｉｎｃａｎａ
ｅ）種、ベシカトリア（ｖｅｓｉｃａ■ｒｉａ）種、フ
アセオリ（ｐｈａｓｅｏｌｉ）種等であるが、アルトロ
バクター（〜ｔｈｒｏＭｃｔｅｒ）属菌株も既に提示さ
れている。
属し、更に特定すればキサントモナス属のカンベストリ
ス（ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ）種（最も使用される）、ベ
コニェ（戊ｇｏｎｉａｅ）種、インカネ（ｉｎｃａｎａ
ｅ）種、ベシカトリア（ｖｅｓｉｃａ■ｒｉａ）種、フ
アセオリ（ｐｈａｓｅｏｌｉ）種等であるが、アルトロ
バクター（〜ｔｈｒｏＭｃｔｅｒ）属菌株も既に提示さ
れている。
提示されている発酵培地は少なくとも１種の炭素源、１
種の窒素源、リン酸イオン及び徴量元素を含み、そのｐ
Ｈ値と温度とは発酵中は約６〜８．５、２５〜３５００
である。使用される発酵方法は普通、糖（最も一般的に
使用される炭素源である）が約１５〜３０夕／夕の含量
で存在する水性培地から得た発酵剤を通気かつ鷹梓又は
振とうして行なう。
種の窒素源、リン酸イオン及び徴量元素を含み、そのｐ
Ｈ値と温度とは発酵中は約６〜８．５、２５〜３５００
である。使用される発酵方法は普通、糖（最も一般的に
使用される炭素源である）が約１５〜３０夕／夕の含量
で存在する水性培地から得た発酵剤を通気かつ鷹梓又は
振とうして行なう。
窒素源は“乾燥蒸留かす則ち消耗粒”、ベプトン類、酵
母エキス、コーン浸液等の様な、窒素化合物を含む物質
から選択される。又、例えばコーンフラワーを使用する
様な他の幾つかの方法では炭素源とも窒素源ともなる物
質を使用する。
母エキス、コーン浸液等の様な、窒素化合物を含む物質
から選択される。又、例えばコーンフラワーを使用する
様な他の幾つかの方法では炭素源とも窒素源ともなる物
質を使用する。
これらの方法の全てにおいて最も幅広く使用されている
菌株はキサントモナス カンベストリス種菌株であり、
特にキサントモナス カンベストリスＮＲＲＬ−Ｂ−１
４５９菌株である。
菌株はキサントモナス カンベストリス種菌株であり、
特にキサントモナス カンベストリスＮＲＲＬ−Ｂ−１
４５９菌株である。
本発明により、新規キサントモナス属菌株による適当な
基質の発酵によりキサンタン系多糖類を作るための新規
方法が提供される。
基質の発酵によりキサンタン系多糖類を作るための新規
方法が提供される。
この方法により、キサントモナス カンベストリス種菌
と通常の複合窒素有機源とを使用する既知方法と比較し
て多糖類の収量即ち収率を向上させ、発酵終了時の培地
の粘度を増加させることができる。本発明の製造方法は
、炭素源と窒素源とをベースとし、軸が約５．５〜９で
あり、温度が約２５〜３５℃であり、キサントモナス属
菌株が接種されている培地の発酵を実施することからな
り、この方法は、グルタミン酸、グルタミン、アルギニ
ン、チロシン、スレオニン、アスパラギン酸、アスパラ
ギン、プロリン、ロィシン及びトリプトフアンからなる
アミノ酸群のうちの１種を含むのみである増殖培地で良
好な増殖を示すキサントモナス属菌株を使用し；又、発
酸培地として、炭水イ臼物含量が５〜５５タノクないし
それ以上であり、又上記アミノ酸群と、同一条件下かつ
同一全窒素含量コーン浸液で産生される多糖類産生量の
少なくとも５０％に等しい産生量を与える他アミノ酸と
のうちから選択される少なくとも１種のアミノ酸を含み
、窒素供給量が０．１〜５夕／そ、好ましくは０．２〜
２夕／その値に対応する培地を使用することを特徴とす
る。
と通常の複合窒素有機源とを使用する既知方法と比較し
て多糖類の収量即ち収率を向上させ、発酵終了時の培地
の粘度を増加させることができる。本発明の製造方法は
、炭素源と窒素源とをベースとし、軸が約５．５〜９で
あり、温度が約２５〜３５℃であり、キサントモナス属
菌株が接種されている培地の発酵を実施することからな
り、この方法は、グルタミン酸、グルタミン、アルギニ
ン、チロシン、スレオニン、アスパラギン酸、アスパラ
ギン、プロリン、ロィシン及びトリプトフアンからなる
アミノ酸群のうちの１種を含むのみである増殖培地で良
好な増殖を示すキサントモナス属菌株を使用し；又、発
酸培地として、炭水イ臼物含量が５〜５５タノクないし
それ以上であり、又上記アミノ酸群と、同一条件下かつ
同一全窒素含量コーン浸液で産生される多糖類産生量の
少なくとも５０％に等しい産生量を与える他アミノ酸と
のうちから選択される少なくとも１種のアミノ酸を含み
、窒素供給量が０．１〜５夕／そ、好ましくは０．２〜
２夕／その値に対応する培地を使用することを特徴とす
る。
用語“良好な増殖”とは、該微生物が増殖し、前記アミ
ノ酸素から選択されるアミノ酸の存在下でキサントモナ
ス カンベストリスＮＲＲＬ一Ｂ−１４５９菌株を使用
して同一条件下、同一全窒素含量で得られる多糖類産生
量よりも粘士の点から推定して少なくとも２０％は高い
多糖類産生量を与えることを意味する。収率貝０ち収量
のかかる増加は、用語“良好な増殖”を定義するのに可
能な基準テストを考えられる次のテストにより特に評価
できる。
ノ酸素から選択されるアミノ酸の存在下でキサントモナ
ス カンベストリスＮＲＲＬ一Ｂ−１４５９菌株を使用
して同一条件下、同一全窒素含量で得られる多糖類産生
量よりも粘士の点から推定して少なくとも２０％は高い
多糖類産生量を与えることを意味する。収率貝０ち収量
のかかる増加は、用語“良好な増殖”を定義するのに可
能な基準テストを考えられる次のテストにより特に評価
できる。
産生渚地としては、後述する実施例１のテストＢで用い
る次の組成のものを使用する。
る次の組成のものを使用する。
１つの培地にはキサントモナス、カンベストリスＮＲＲ
Ｌ一Ｂ−１４５９菌株を接種し、他塔地には本発明のキ
サントモナス属菌株を接種し、窒素源は両側で正確に同
一とし、又前記アミノ酸群から選択される１種ないし数
種のアミノ酸のみからなるものとし、他は該テストＢの
条件（冊＝７．５；３０℃，４日，２０仇．ｐ．ｍ．）
と同一にして実験を行つ。
Ｌ一Ｂ−１４５９菌株を接種し、他塔地には本発明のキ
サントモナス属菌株を接種し、窒素源は両側で正確に同
一とし、又前記アミノ酸群から選択される１種ないし数
種のアミノ酸のみからなるものとし、他は該テストＢの
条件（冊＝７．５；３０℃，４日，２０仇．ｐ．ｍ．）
と同一にして実験を行つ。
前記アミノ酸群から選択されるアミノ酸の存在下で“良
好な増殖”を示す本発明の菌株が、第２アミノ酸群（グ
リココール、リシン、システイン、ヒスチジン、イソロ
イシン及びセリン）から選択されるわずか１種ないし数
種のアミン酸の存在下にある時には非常に低い産生量を
与えるという副次的特徴を一般に示すということも又特
筆されることである。
好な増殖”を示す本発明の菌株が、第２アミノ酸群（グ
リココール、リシン、システイン、ヒスチジン、イソロ
イシン及びセリン）から選択されるわずか１種ないし数
種のアミン酸の存在下にある時には非常に低い産生量を
与えるという副次的特徴を一般に示すということも又特
筆されることである。
これは追って２〜３個の実施例で例示する。本発明の好
ましい１態様においては、発酸培地の窒素源の全窒素量
の７０〜１００％は該第１アミノ酸群のアミノ酸の窒素
により占められる。
ましい１態様においては、発酸培地の窒素源の全窒素量
の７０〜１００％は該第１アミノ酸群のアミノ酸の窒素
により占められる。
第１アミノ酸群のアミノ酸に共通の特徴は、それらを産
生培地の唯一の窒素源として使用する時には、同一条件
下、同一全窒素舎量でコーン浸液を唯一の窒素源として
使用する時に得られるより多い多糖類収量が得られると
いう点にもある。
生培地の唯一の窒素源として使用する時には、同一条件
下、同一全窒素舎量でコーン浸液を唯一の窒素源として
使用する時に得られるより多い多糖類収量が得られると
いう点にもある。
この多糖類の高収量即ち高収率は、ブルツクフィールド
粘度計での粘度測定により評価できる。換言すれば、第
１群のアミノ酸はコーン浸液で得られるよりも高い粘度
を与え、一方第２群のアミノ酸はコーン浸液で得られる
よりも実質上低い粘度を与える。従って、以下に示され
る様に、本発明により、アミノ酸と様々な新規分離菌株
との相互作用がアミノ酸の違いにより大きく異ることが
明らかとなり、それゆえキサントモナス カンベストリ
ス種菌株による通常の窒素有機源の通常の発酵の場合に
比較して実質上高収量の多糖類を与える方法の開発に成
功した。
粘度計での粘度測定により評価できる。換言すれば、第
１群のアミノ酸はコーン浸液で得られるよりも高い粘度
を与え、一方第２群のアミノ酸はコーン浸液で得られる
よりも実質上低い粘度を与える。従って、以下に示され
る様に、本発明により、アミノ酸と様々な新規分離菌株
との相互作用がアミノ酸の違いにより大きく異ることが
明らかとなり、それゆえキサントモナス カンベストリ
ス種菌株による通常の窒素有機源の通常の発酵の場合に
比較して実質上高収量の多糖類を与える方法の開発に成
功した。
あるアミノ酸で分離された菌株が別個に用意された多数
の池アミノ酸で増殖できることが発見された。
の池アミノ酸で増殖できることが発見された。
しかしアミノ酸の全てが均等物であるわけではない。特
に産生態を示すまでの培養期間はアミノ酸の種類に依存
して多少延長され、又最終増殖数従って最終粘度は多少
なりとも実質上変動がある。全窒素量を等しくして多種
のアミノ酸で実験したところ発酵終了時の粘度は同一条
件下でコーン浸液の様な通常の複合窒素源で得られる値
よりも高く、かかる粘度は幾つかの場合においてはコー
ン浸液で得られる粘度の２倍に達することもある（粘度
は特記ない限りブルックフィールド粘度計、ロッドＬＶ
４−３仇．ｐ．ｍ．，で測定されたセンチポアズで表示
）。最高粘度をもたらすアミノ酸が、本発明の産生方法
で使用される菌株の分離を実施するアミノ酸と常に一致
するとは限らないことも強調される。
に産生態を示すまでの培養期間はアミノ酸の種類に依存
して多少延長され、又最終増殖数従って最終粘度は多少
なりとも実質上変動がある。全窒素量を等しくして多種
のアミノ酸で実験したところ発酵終了時の粘度は同一条
件下でコーン浸液の様な通常の複合窒素源で得られる値
よりも高く、かかる粘度は幾つかの場合においてはコー
ン浸液で得られる粘度の２倍に達することもある（粘度
は特記ない限りブルックフィールド粘度計、ロッドＬＶ
４−３仇．ｐ．ｍ．，で測定されたセンチポアズで表示
）。最高粘度をもたらすアミノ酸が、本発明の産生方法
で使用される菌株の分離を実施するアミノ酸と常に一致
するとは限らないことも強調される。
全てのアミノ酸が均等物であるわけではないという事実
が、通常の複合窒素源で得られる貧弱な結果の原因を説
明している。通常の複合窒素源は一定割合のアミノ酸混
合物からなる。これらのうちで幾つかは生重合体の高収
量産生を促し、他はその程度がはるかに低いが、全て該
細菌により資化され得る。この事実が、本発明者らに実
証された様な最も有効なアミノ酸で得られるよりも多量
の生重合体が発酵終了時に発見されるという事実の原因
を明らかにしている。本発明の特徴により、発酵培地は
二塩基性リン酸カルシウム量に換算して０．１０〜２０
夕／その、好ましくは０．５〜５夕／その、リン酸イオ
ンと１種ないし数種の徴量元素、とりわけマグネシウム
、とを含む。この発酵培地のマグネシウムイオン含量は
マグネシウム量に換算して０．００２５〜１夕／そある
ことが好ましく、又便利なマグネシウム源は硫酸マグネ
シウム、酢酸マグネシウム、塩化マグネシウム、硝酸マ
グネシウムの様な可溶性マグネシウム塩である。リン酸
イオンは特にリン酸又は可溶性リン酸塩、例えばリン酸
カリウム又はリン酸ナトリウム、として発酵塔地中に存
在させる。発酵培地の炭素源の少なくとも一部はグルコ
ース、スターチ即ちアミラム、スターチ則ちアミラムの
水鯛物、サツカロース、レブロース、フルクトース、マ
ルトース、てんごし、及びさとうきびの糠蜜から選択さ
れることが好ましい炭水加物からなる。本発明により、
前記規定の菌株による発酵は十分な通気下、縄梓又は振
とう条件下、５．５〜９の、好ましくは６．５〜８のｐ
Ｈ、約２５〜３５℃の、好ましくは２７〜３１℃の温度
で１〜６日間行なう。
が、通常の複合窒素源で得られる貧弱な結果の原因を説
明している。通常の複合窒素源は一定割合のアミノ酸混
合物からなる。これらのうちで幾つかは生重合体の高収
量産生を促し、他はその程度がはるかに低いが、全て該
細菌により資化され得る。この事実が、本発明者らに実
証された様な最も有効なアミノ酸で得られるよりも多量
の生重合体が発酵終了時に発見されるという事実の原因
を明らかにしている。本発明の特徴により、発酵培地は
二塩基性リン酸カルシウム量に換算して０．１０〜２０
夕／その、好ましくは０．５〜５夕／その、リン酸イオ
ンと１種ないし数種の徴量元素、とりわけマグネシウム
、とを含む。この発酵培地のマグネシウムイオン含量は
マグネシウム量に換算して０．００２５〜１夕／そある
ことが好ましく、又便利なマグネシウム源は硫酸マグネ
シウム、酢酸マグネシウム、塩化マグネシウム、硝酸マ
グネシウムの様な可溶性マグネシウム塩である。リン酸
イオンは特にリン酸又は可溶性リン酸塩、例えばリン酸
カリウム又はリン酸ナトリウム、として発酵塔地中に存
在させる。発酵培地の炭素源の少なくとも一部はグルコ
ース、スターチ即ちアミラム、スターチ則ちアミラムの
水鯛物、サツカロース、レブロース、フルクトース、マ
ルトース、てんごし、及びさとうきびの糠蜜から選択さ
れることが好ましい炭水加物からなる。本発明により、
前記規定の菌株による発酵は十分な通気下、縄梓又は振
とう条件下、５．５〜９の、好ましくは６．５〜８のｐ
Ｈ、約２５〜３５℃の、好ましくは２７〜３１℃の温度
で１〜６日間行なう。
本発明の１態様においては、発酵塔地の窒素源は該第１
群のアミノ酸の結晶母液、例えば発酵方法又は化学方法
によるグルタミン酸製造の創生物であるグルタミン酸結
晶母液、に含まれる窒素化合物からなる。かかる母液に
由来するグルタミン酸含量が窒素量に換算してアミノ酸
全量の６０〜８０％を占めることを銘記されたい。発酵
塔地の窒素源として、その可溶性窒素含量が該第１群の
アミノ酸により主として占められる農業源及び食品源の
創生物を使用することも可能である。本発明の産生方法
で使用されるキサントモナス属菌種属は昭和５位王（１
９７９宅）１０月１４日にアメリカン タイフ。
群のアミノ酸の結晶母液、例えば発酵方法又は化学方法
によるグルタミン酸製造の創生物であるグルタミン酸結
晶母液、に含まれる窒素化合物からなる。かかる母液に
由来するグルタミン酸含量が窒素量に換算してアミノ酸
全量の６０〜８０％を占めることを銘記されたい。発酵
塔地の窒素源として、その可溶性窒素含量が該第１群の
アミノ酸により主として占められる農業源及び食品源の
創生物を使用することも可能である。本発明の産生方法
で使用されるキサントモナス属菌種属は昭和５位王（１
９７９宅）１０月１４日にアメリカン タイフ。
力ルチヤ− コ レクシ ョ ン（Ａｍｅｒｉｃａ
ｎ ｔｙｐｅｃｕｌｔｍｅｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（Ａ
ＴＣＣ）に寄託番号第３１１７６号の下に寄託されたも
のである。本発明の産生方法で使用される菌株、特に上
記ＡＴＣＣ寄託第３１１７６号菌株は、‘１’炭水化物
から本質的になることが好ましい炭素源；■徴量元素；
及び（３揃記群から選択される少なくとも１種のアミノ
酸、特に前記定義の第１群に属するアミノ酸の１種、即
ちグルタミン酸、アルギニン、チロシン、スレオニン、
アスパラギン酸、プロリン、ロィシン及びトリプトフア
ンにより少なくとも主要部が組成される窒素源；を含む
分離培地を使用することにより病植物から分離して得る
ことができる。
ｎ ｔｙｐｅｃｕｌｔｍｅｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（Ａ
ＴＣＣ）に寄託番号第３１１７６号の下に寄託されたも
のである。本発明の産生方法で使用される菌株、特に上
記ＡＴＣＣ寄託第３１１７６号菌株は、‘１’炭水化物
から本質的になることが好ましい炭素源；■徴量元素；
及び（３揃記群から選択される少なくとも１種のアミノ
酸、特に前記定義の第１群に属するアミノ酸の１種、即
ちグルタミン酸、アルギニン、チロシン、スレオニン、
アスパラギン酸、プロリン、ロィシン及びトリプトフア
ンにより少なくとも主要部が組成される窒素源；を含む
分離培地を使用することにより病植物から分離して得る
ことができる。
産生菌株の分離方法は、病植物のサンプルを選択し、窒
素源の主要部として該第１群アミノ酸の少なくとも１種
を含み、又該アミノ酸の少なくとも１種からなることが
好ましい分離培地で継時培養を実施することにより行な
うことが好ましい。
素源の主要部として該第１群アミノ酸の少なくとも１種
を含み、又該アミノ酸の少なくとも１種からなることが
好ましい分離培地で継時培養を実施することにより行な
うことが好ましい。
その操作は例えば良く知られている微生物学的技術によ
り次の方法で実施される。疾病にかかっている植物の一
部を、ゲロースをベースとし、特に増殖のために選択し
たアミノ酸を含む分離培地（第１分画）に挿入する；こ
の分画を２７〜３１℃で４５〜５加時間培養する；この
分画の小量を同一組成の培地（第２分画）に接種する（
例えば次の様に操作する：最も分離された黄色かつ粘性
のコロニーを白金耳で再採取し、各分離コロニ−を該第
２分画に画線培養する）；２７〜３１００で４５〜５脚
時間再培養する；粘性外観を持つ分離黄色コロニーを採
取し、それを１つ１つ傾斜試験管内の同一組成の分離渚
地（第３分画）に接種し、これにより全て本発明に含ま
れる数種の別個の菌株を回収する。
り次の方法で実施される。疾病にかかっている植物の一
部を、ゲロースをベースとし、特に増殖のために選択し
たアミノ酸を含む分離培地（第１分画）に挿入する；こ
の分画を２７〜３１℃で４５〜５加時間培養する；この
分画の小量を同一組成の培地（第２分画）に接種する（
例えば次の様に操作する：最も分離された黄色かつ粘性
のコロニーを白金耳で再採取し、各分離コロニ−を該第
２分画に画線培養する）；２７〜３１００で４５〜５脚
時間再培養する；粘性外観を持つ分離黄色コロニーを採
取し、それを１つ１つ傾斜試験管内の同一組成の分離渚
地（第３分画）に接種し、これにより全て本発明に含ま
れる数種の別個の菌株を回収する。
例えば、その疾病が葉のしおれ及び黄変により反映され
るハーロツク〔ｈａｒｌｏｃｋ：シナピス アルベンシ
ス（Ｓｉｎａｐｉｓａｒｖｅｎｓｉｓ）〕の幹の破片（
厚さが１〜３柳の薄片又は細長片）を植物として使用し
；分離塔地として次の組成を持つ培地（水酸化カリウム
の添加によりｐＨは７に調整）を使用し；前述の様に操
作して複数の菌株を得ることが可能である。
るハーロツク〔ｈａｒｌｏｃｋ：シナピス アルベンシ
ス（Ｓｉｎａｐｉｓａｒｖｅｎｓｉｓ）〕の幹の破片（
厚さが１〜３柳の薄片又は細長片）を植物として使用し
；分離塔地として次の組成を持つ培地（水酸化カリウム
の添加によりｐＨは７に調整）を使用し；前述の様に操
作して複数の菌株を得ることが可能である。
使用するアミノ酸がグルタミン酸である場合には、得ら
れる菌株をＯＲＳ−Ｂ−２４３〜ＯＲＳ−Ｂ−２５６と
呼ぶ。それらは全て黄色であり、顕微鏡では同一の外観
を示す。これら菌株のうちではＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株
が本発明の産生方法では最もすぐれた糖類生重合体産生
菌であることが証明された。この菌株がＡＴＣＣに寄託
された前述の菌株である。この特定菌株の分離は次の様
に実施した。第３の培地（分画）の培養を３０ｑｏで４
鞘時間、行ない、ついで試験管を直立位置にセットし、
等容量のＮａＣ〆８％溶液を導入した。
れる菌株をＯＲＳ−Ｂ−２４３〜ＯＲＳ−Ｂ−２５６と
呼ぶ。それらは全て黄色であり、顕微鏡では同一の外観
を示す。これら菌株のうちではＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株
が本発明の産生方法では最もすぐれた糖類生重合体産生
菌であることが証明された。この菌株がＡＴＣＣに寄託
された前述の菌株である。この特定菌株の分離は次の様
に実施した。第３の培地（分画）の培養を３０ｑｏで４
鞘時間、行ない、ついで試験管を直立位置にセットし、
等容量のＮａＣ〆８％溶液を導入した。
１ぴ音系列希釈液（ｓＭｃｅｓｓｉｖｅｄｉｌｕｔｉｏ
ｍ）を調整して３０ｑｏで４曲時間培養し、様々な分離
コロニーを回収し、それを保存のため傾斜試験管内の同
一組成の分離培地に二次培養した。
ｍ）を調整して３０ｑｏで４曲時間培養し、様々な分離
コロニーを回収し、それを保存のため傾斜試験管内の同
一組成の分離培地に二次培養した。
ＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株の特性をキサントモナスカンベ
ストリスＮＲＲ−Ｂ−１４５９菌株と比較して次表に示
す。
ストリスＮＲＲ−Ｂ−１４５９菌株と比較して次表に示
す。
これら特徴は、比較すべき両菌株の各々の分離コロニー
を同一条件下で微生物学上の常法により観察して確認し
た。キサントモナス カンベストリス ＮＫ凪山一Ｂ−
１４５９菌株とキサントモナスＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株
との比燈溝藷性キサントモナス カンベストリスＮＲＲ
Ｌ一Ｂ−１４５９菌株の場合とＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株
の場合との、産生培地の唯一の窒素源として使用される
アミノ酸の関数としての多糖類生重合体の産生（粘度測
定値表示による産生量則ち産生率）を比較した表を以下
に示す。
を同一条件下で微生物学上の常法により観察して確認し
た。キサントモナス カンベストリス ＮＫ凪山一Ｂ−
１４５９菌株とキサントモナスＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株
との比燈溝藷性キサントモナス カンベストリスＮＲＲ
Ｌ一Ｂ−１４５９菌株の場合とＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株
の場合との、産生培地の唯一の窒素源として使用される
アミノ酸の関数としての多糖類生重合体の産生（粘度測
定値表示による産生量則ち産生率）を比較した表を以下
に示す。
産生培地の組成は次の通りだった。
以下に本発明の様々な態様の例示である実施例を示す。
これら実施例中で発酸培地の唯一の窒素源としてコ−ン
浸液を使用しているテストは本発明の一部ではない。実
施例 １ テストＡ 次の組成を持つＭＹ培地からなる７５地の予備培地にキ
サントモナスＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株傾斜培養菌を接種
した。
浸液を使用しているテストは本発明の一部ではない。実
施例 １ テストＡ 次の組成を持つＭＹ培地からなる７５地の予備培地にキ
サントモナスＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株傾斜培養菌を接種
した。
ｐＨが７の上記塔地は１１５℃で２び分間前もって滅菌
した。
した。
培養後この予備培地を２０仇．ｐ．ｍで回転する回転濃
洋装層又は振とう機で３０００で２独特間培養した。窒
素源のみが異り、次の組成を持つ７つの産生渚地を調製
した。
洋装層又は振とう機で３０００で２独特間培養した。窒
素源のみが異り、次の組成を持つ７つの産生渚地を調製
した。
これらの産生培地のｐＨを、１１０ｏＣ３０分の滅菌前
に窒素源の性質に依存してリン酸又は水酸化カリウムの
添加により７．５に調整した。
に窒素源の性質に依存してリン酸又は水酸化カリウムの
添加により７．５に調整した。
５００の【バィアル内に置かれた１００私の産生培地を
、５叫の該予備渚地（２独時間予備培養）の添加により
培養させて産生を開始させた。
、５叫の該予備渚地（２独時間予備培養）の添加により
培養させて産生を開始させた。
回転渡梓装層即ち振とう機（２０仇．ｐ．ｍ．で回転）
で２日間培養した後に産生を停止させた。得られた培養
物を、培地の１／５０希釈物で分光光度計で６５皿山で
測定した。生重合体の量を、測定用ロッドＬＶ３を装備
したブルックフィールド粘度計（３仇．ｐ．ｍ）での粘
度測定により求めた。テストＢ グルコース舎量が３０夕／そであり、窒素源含量を全窒
素量換算で０．７２夕／夕とした点以外はテストＡと同
一だった。
で２日間培養した後に産生を停止させた。得られた培養
物を、培地の１／５０希釈物で分光光度計で６５皿山で
測定した。生重合体の量を、測定用ロッドＬＶ３を装備
したブルックフィールド粘度計（３仇．ｐ．ｍ）での粘
度測定により求めた。テストＢ グルコース舎量が３０夕／そであり、窒素源含量を全窒
素量換算で０．７２夕／夕とした点以外はテストＡと同
一だった。
実施例Ａと同一条件下で４日間培養後に次の結果を得た
。
。
実施例 ２
産生培地は次の基本組成を持っていた。
ｐＨ値を７．５に調整し、１バィアル当たり１００の上
の割合で５００泌バィアルに入れた後に１２ｒＣで１８
分間滅菌した。
の割合で５００泌バィアルに入れた後に１２ｒＣで１８
分間滅菌した。
窒素源は次に割合で与えた〔値（夕／Ｚ）は全窒素量換
算による〕。実施例１と同様に調製したキサントモナス
ＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株の予備培養物を様々のバィアル
で６％合量の割合で培養し、ついで健投装置良Ｏち振と
う機で４日間、３０ｑｏで培養した。
算による〕。実施例１と同様に調製したキサントモナス
ＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株の予備培養物を様々のバィアル
で６％合量の割合で培養し、ついで健投装置良Ｏち振と
う機で４日間、３０ｑｏで培養した。
４日間に次の結果を得た。
実施例 ３
産生培地は次の基本組成を持っていた。
窒素源はテストＡではコーン浸液、テストＢではグルタ
ミン酸、テストＣではグルタミン酸の結晶母液だった。
ミン酸、テストＣではグルタミン酸の結晶母液だった。
テストは以上の実施例と同機にキサントモナスＯＲＳ−
Ｂ−２５３繭株を用いて行った。４日間培養後の結果は
次の通りであった。
Ｂ−２５３繭株を用いて行った。４日間培養後の結果は
次の通りであった。
実施例 ４キサントモナスＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株の４
報時間傾斜培養菌を実施例１に定義したＭＹ培地７５地
で２４時間予備培養した。
報時間傾斜培養菌を実施例１に定義したＭＹ培地７５地
で２４時間予備培養した。
この第１予備培地を、６そバィアル内の同一のＭＹ培地
１５００の【での第２予備培地の培養に使用した。この
第２予備培地を、回転縄洋装層即ち振とう機で２独時間
３０ｏｏで培養した。１４そニュー フルンスヴイツク
（ＮｅｗＢｒ肌ｓＭｃｈ）発酵槽での培養のために次の
組成を持つ産生塔地を調製した。
１５００の【での第２予備培地の培養に使用した。この
第２予備培地を、回転縄洋装層即ち振とう機で２独時間
３０ｏｏで培養した。１４そニュー フルンスヴイツク
（ＮｅｗＢｒ肌ｓＭｃｈ）発酵槽での培養のために次の
組成を持つ産生塔地を調製した。
産地培地を粗製カ性カリでｐＨ７．２に調整し、オート
クレ‐ブで４粉ふ間１１５つ０で滅菌した。
クレ‐ブで４粉ふ間１１５つ０で滅菌した。
産生塔地を第２（２独時間）予備培地３５０地を用いて
培養させて発酵を開始した。発酵中軸は自動制御装置に
より粗製カ性カリで７．２に保持し、又温度は２８℃に
維持した。発酵開始時の頚梓速度を６０仇．ｐ．ｍ．に
調整し、徐々に上昇させて発酵終了時には７５仇．ｐ．
ｍ．にした。通気速度は１容量／容量／分の一定に維持
した。２独特間の発酵後、ブルックフィールド粘度計（
ＬＶ４−３仇．ｐ．ｍ．）で測定した粘度は６０比ｐｓ
に等しかった。
培養させて発酵を開始した。発酵中軸は自動制御装置に
より粗製カ性カリで７．２に保持し、又温度は２８℃に
維持した。発酵開始時の頚梓速度を６０仇．ｐ．ｍ．に
調整し、徐々に上昇させて発酵終了時には７５仇．ｐ．
ｍ．にした。通気速度は１容量／容量／分の一定に維持
した。２独特間の発酵後、ブルックフィールド粘度計（
ＬＶ４−３仇．ｐ．ｍ．）で測定した粘度は６０比ｐｓ
に等しかった。
４凪時間の発酵後それは６３０比ｐｓに等しかった。
５期時間の発酵後それは１２００比ｐｓに等しかった。
発酵は６７時間後に停止した。全還元糖に換算した残留
糖の量は０．１５夕／そに等しく、又粘度は１２６０比
ｐｓに達した。
糖の量は０．１５夕／そに等しく、又粘度は１２６０比
ｐｓに達した。
最終ブロスの１そをアルコールで沈殿させ、凝集物を乾
燥した後に３０夕の多榛類生重合体を単離した。該多糖
類生重合体の加水分解と成分分析とにより次の物質を発
見できた。グルコース、マンノース、グルクロン酸、ピ
ルビン酸、酢酸。
燥した後に３０夕の多榛類生重合体を単離した。該多糖
類生重合体の加水分解と成分分析とにより次の物質を発
見できた。グルコース、マンノース、グルクロン酸、ピ
ルビン酸、酢酸。
実施例 ５
グルタミン酸を全窒素量換算表示で等量のグルタミン酸
結晶母液に代えた点以外は実施例４と同一だつた。
結晶母液に代えた点以外は実施例４と同一だつた。
６８時間の発酵後の粘度は１０５０比ｐｓに等しかった
。
。
ついでブロスから乾燥状態で２７夕／その多糖類生重合
体を単離できた。６錨時間経過後も生重合体を抽出する
ことなく発酵を続け、得られた結果を添付図面の曲線Ａ
，Ｂとしてプロツトした。
体を単離できた。６錨時間経過後も生重合体を抽出する
ことなく発酵を続け、得られた結果を添付図面の曲線Ａ
，Ｂとしてプロツトした。
曲線Ａ，Ｂは発酵時間（日）に対して残留糖含量（グル
コ−スタ／〆換算）と粘度（ｃｐｓ）とをプロットした
ものである。実施例 ６ ５５夕／そではなく２２９／そのグルコースと、１夕／
そのＫ２ＨＰ０４・班２０ではなく２．０Ｍ／その二塩
基性リン酸ナトリウムとを使用し、水酸化ナトリウム添
加によりｐＨを７．３に保持した以外は実施例５と同一
に操作した。
コ−スタ／〆換算）と粘度（ｃｐｓ）とをプロットした
ものである。実施例 ６ ５５夕／そではなく２２９／そのグルコースと、１夕／
そのＫ２ＨＰ０４・班２０ではなく２．０Ｍ／その二塩
基性リン酸ナトリウムとを使用し、水酸化ナトリウム添
加によりｐＨを７．３に保持した以外は実施例５と同一
に操作した。
次の結果を得た。４．８時間の発酵後に１２．５夕／そ
の乾燥多糖類生重合体を抽出した。
の乾燥多糖類生重合体を抽出した。
実施例 ７
６夕／その二塩基性リン酸ナトリウムを使用し、発酵中
何ら制御することなくｐＨ値を変動させた点以外は実施
例６と同一に行なった。
何ら制御することなくｐＨ値を変動させた点以外は実施
例６と同一に行なった。
次の結果を得た。３幼時間発酵後に１０夕／その乾燥多
糖類生重合体を単離した。
糖類生重合体を単離した。
実施例 ８
様々な炭素源を使用した。
産生培地は次の組成を持っていた。
炭素源として使用した糖は次の通りだった。
培地（５００の【バィアル中１００の【）をそのＰＨを
粗製カ性カリで７．５に調整した後に１１０℃で３０分
間滅菌した。実施例１と同様に調製されたＯＲＳ−Ｂ−
２５３菌株の２４時間予備培地を５泌添加して各ノベィ
アルでの培養を行なった。回転蝿洋装層即ち振とう機で
４日間２８ｏｏで培養後に得られた粘度（ブルツクフイ
ールド粘度計ＬＶ４一３仇．ｐ．ｍ．）は次の通りだっ
た。
粗製カ性カリで７．５に調整した後に１１０℃で３０分
間滅菌した。実施例１と同様に調製されたＯＲＳ−Ｂ−
２５３菌株の２４時間予備培地を５泌添加して各ノベィ
アルでの培養を行なった。回転蝿洋装層即ち振とう機で
４日間２８ｏｏで培養後に得られた粘度（ブルツクフイ
ールド粘度計ＬＶ４一３仇．ｐ．ｍ．）は次の通りだっ
た。
単位はｃｐｓである。実施例 ９全窒素含量を様々に（
０．２０５〜２．０５夕／そ）かえてみた。
０．２０５〜２．０５夕／そ）かえてみた。
産生培地は次の組成を持っていた。
培地を１バイアル当たり１００泌の割合で５００泌バィ
アルに入れた。
アルに入れた。
全窒素含量は次の通りであった。ｐＨを７．５に調整し
た後に１１０℃で３０分滅菌した。
た後に１１０℃で３０分滅菌した。
実施例１と同様に調製したＯＲＳ一Ｂ−２５３菌株の２
４時間予備培地の４の‘を培地に入れた後に、２０仇．
ｐ．ｍ．で回転する回転蝿洋装層艮０ち振とう機で２８
ｑｏで培養した。結果（粘度；ｃｐｓ．）は次の通りだ
った（ブルツクフイールド粘度計ＬＶ４一３仇．Ｐ．ｍ
．）。実施例 １０ ｐＨ値を様々に（６．６０〜８．７０）かえてテストし
た。
４時間予備培地の４の‘を培地に入れた後に、２０仇．
ｐ．ｍ．で回転する回転蝿洋装層艮０ち振とう機で２８
ｑｏで培養した。結果（粘度；ｃｐｓ．）は次の通りだ
った（ブルツクフイールド粘度計ＬＶ４一３仇．Ｐ．ｍ
．）。実施例 １０ ｐＨ値を様々に（６．６０〜８．７０）かえてテストし
た。
産生塔地は次の組成を持っていた。
この培地を５００の【バィアルに各々１００の【入れた
。
。
各バィアルのｐＨ値を粗製カ性カリか１Ｊン酸で調整し
、１１０『Ｃで３０分滅菌した後のｐＨ値は次の通りだ
つた。実施例１と同一に調製したキサントモナス種ＯＲ
Ｓ−Ｂ−２５３菌株の２岬時間予備塔地の４叫を産生培
地に接種した。
、１１０『Ｃで３０分滅菌した後のｐＨ値は次の通りだ
つた。実施例１と同一に調製したキサントモナス種ＯＲ
Ｓ−Ｂ−２５３菌株の２岬時間予備塔地の４叫を産生培
地に接種した。
回転振とう機で２８℃で４日間培養後のｐＨ値と粘度と
は次の通りだった。実施例 １１リン酸イオン含量を様
々にかえてテストした。
は次の通りだった。実施例 １１リン酸イオン含量を様
々にかえてテストした。
１〆当たり次の組成を持つ培地を生水で調製した。
上記塔地を１バイアル当り１００の‘の割合で５００の
【バイアルに入れた。
【バイアルに入れた。
培地の掛値を７．５に調製し、１００℃で３０分間滅菌
した。
した。
ＯＲＳ−Ｂ−２５３菌株の２４時間予備培地を、各バィ
アル当たり４の上の割合で培地の培養に使用した。２０
比．ｐ．ｍで回転する回転振とう機で２８℃で２日間培
養後に得られた粘度（ｃｐｓ．）は次の通りだった。
アル当たり４の上の割合で培地の培養に使用した。２０
比．ｐ．ｍで回転する回転振とう機で２８℃で２日間培
養後に得られた粘度（ｃｐｓ．）は次の通りだった。
本発明の多糖類生重合体の産生方法で産生培地の窒素源
としてグルタミン酸結晶母液を用いた場合の発酵時間と
残留礎含量との関係（曲線Ａ）、又は粘度との関係（曲
線Ｂ）を示す。
としてグルタミン酸結晶母液を用いた場合の発酵時間と
残留礎含量との関係（曲線Ａ）、又は粘度との関係（曲
線Ｂ）を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ ｐＨ値が約５．５〜９であり、温度が２５〜３５℃
であり、炭素源と窒素源とをベースとし、キサントモナ
ス属に属する微生物が接種されている培地における好気
性・撹拌下での発酵によりキサンタン系多糖類を産生す
る方法において、グルタミン酸、グルタミン、アルギニ
ン、チロシン、スレオニン、アスパラギン酸、アスパラ
ギン、プロリン、ロイシン及びトリプトフアンからなる
アミノ酸群のうちの１種を含むのみである増殖培地で良
好な増殖を示すキサントモナス属菌株を使用すること；
及び、発酵培地として、炭水化物含量が５〜５５ｇ／ｌ
ないしそれ以上であり、かつ（i）上記アミノ酸群およ
び （ii）他のアミノ酸群と同一の発酵条件および発酵培地
中の全窒素含量が他のアミノ酸群と同一である条件下で
発酵培地としてコーン浸液を用いて産出される多糖類産
生量の５０％に少なくとも等しい多糖類産生量を与える
他アミノ酸群、のうちから選択される少なくとも１種の
アミノ酸を含み、窒素源が０．１〜５ｇ／ｌの値に対応
する培地を使用すること；からなる方法。 ２ 窒素供給量が０．２〜２ｇ／ｌの全窒素量に対応す
る、特許請求の範囲第１項の方法。 ３ 窒素供給源の全窒素量の７０〜１００％が該アミノ
酸群の窒素により占められる、特許請求の範囲第１項記
載の方法。 ４ 発酵培地が二塩基性リン酸カリウム量に換算して０
．１０〜２０ｇ／ｌのリン酸イオンと少なくとも１種の
微量元素、特にマグネシウムイオン、とを含む、特許請
求の範囲第１項の方法。 ５ 該リン酸イオン含量が０．５〜５ｇ／ｌである、特
許請求の範囲第４項の方法。 ６ 該菌株が、微量元素、炭素源及び該アミノ酸群から
選択される少なくとも１種のミノ酸が主要部を占める窒
素源を含む分離培地を使用することにより病植物から得
られる、特許請求の範囲第１項の方法。 ７ 窒素源が該アミノ酸群から選択される少なくとも１
種のアミノ酸のみからなる、特許請求の範囲第６項の方
法。 ８ 分離培地の窒素源の少なくとも主要部がグルタミン
酸からなる、特許請求の範囲第４項の方法。 ９ 菌株がＡＴＣＣ第３１１７６号菌株である、特許請
求の範囲第１項の方法。 １０ 該菌株が次の特性を示す、特許請求の範囲第１項
の方法。 ゲロース表面培養での外観 丸い粘性の黄色コロニー グラム染色性− ゼラチンゆつくりと液化 硝酸塩還元− インドール− オキシダーゼ （ゴードンとマツクレオド）＋ クエン酸塩（シモンズ）＋ ヒユーライフソン酸化 β−ガラクトシダーゼ＋ ウレアーゼ− トリプトフアンデスアミナーゼ− アセトインの産生＋ アルギニンジヒドロラーゼ− リシンデカルボキシラーゼ− オルニチンデカルボキシラーゼ− 塩化ナトウム耐性１〜２％ １１ 該菌株の分離に使用するアミノ酸を、発酵培地へ
の窒素供給量の、窒素量に換算して少なくとも７０％の
割合で発酵培地に含める、特許請求の範囲第１項の方法
。 １２ 発酵培地の窒素源がグルタミン酸結晶母液からな
る、特許請求の範囲第１項の方法。 １３ 発酵培地の窒素源が、その窒素含量が主として該
アミノ酸群から選択されるアミノ酸による農業・食品源
副生物である、特許請求の範囲第１項の方法。 １４ 発酵培地の炭水化物が、グルコース、スターチ、
特にコーンスターチ、スターチ水解物、サツカロース、
レブロース、フルクトース、マルトース及び糖密からな
る群から選択される、特許請求の範囲第１項の方法。 １５ 発酵培地が、マグネシウム量に換算して含量が０
．００２５〜１ｇ／ｌの可溶性マグネシウム塩の形をし
たマグネシウム源を含む、特許請求の範囲第１項の方法
。 １６ 発酵に使用する温度が２７〜３１℃である、特許
請求の範囲第１項の方法。 １７ 発酵培地のｐＨ値を発酵中５．５〜９に保持する
、特許請求の範囲第１項の方法。 １８ ｐＨ値が６．５〜８である、特許請求の範囲第１
７項の方法。 １９ 前記キサントモナス属菌株が継時培養した病植物
からの綿棒採取物からの該菌株の選択を、窒素源の主要
部としてグルタミン酸、グルタミン、アルギニン、チロ
シン、スレオニン、アスパラギン酸、アスパラギン、プ
ロリン、ロイシン及びトリプトフアンからなる群から選
択される少なくとも１種のアミノ酸を含む分離培地で行
なうことにより分離されたものである、特許請求の範囲
第１項記載の方法。 ２０ 前記ＡＴＣＣ第３１１７６号菌株が該培養で得ら
れた粘性外観の黄色コロニーを該分離培地表面に接種し
て様々な菌株を分離させ、ついでＡＴＣＣ第３１１７６
号菌株を選択することからなる方法により分離したもの
である、特許請求の範囲第９項記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR7532498A FR2328770A1 (fr) | 1975-10-23 | 1975-10-23 | Nouveau procede de production d'un polysaccharide par fermentation |
| FR7532498 | 1975-10-23 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5290696A JPS5290696A (en) | 1977-07-30 |
| JPS6038118B2 true JPS6038118B2 (ja) | 1985-08-30 |
Family
ID=9161578
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP51127138A Expired JPS6038118B2 (ja) | 1975-10-23 | 1976-10-22 | 発酵により産生される多糖類の産生方法 |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4104123A (ja) |
| JP (1) | JPS6038118B2 (ja) |
| CA (1) | CA1074241A (ja) |
| DE (1) | DE2645975A1 (ja) |
| FR (1) | FR2328770A1 (ja) |
| GB (1) | GB1564020A (ja) |
| IT (1) | IT1077082B (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH053703Y2 (ja) * | 1985-07-20 | 1993-01-28 |
Families Citing this family (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4296203A (en) * | 1977-11-15 | 1981-10-20 | Pfizer Inc. | Xanthomonas bipolymer for use in displacement of oil from partially depleted reservoirs |
| US4340678A (en) * | 1977-11-15 | 1982-07-20 | Pfizer Inc. | Xanthomonas biopolymer for use in displacement of oil from partially depleted reservoirs |
| US4352741A (en) * | 1977-11-15 | 1982-10-05 | Pfizer Inc. | Xanthomonas biopolymer for use in displacement of oil from partially depleted reservoirs |
| AT373916B (de) * | 1982-06-30 | 1984-03-12 | Jungbunzlauer Aktiengesellscah | Verfahren zur herstellung von xanthan |
| GB8317696D0 (en) * | 1983-06-29 | 1983-08-03 | Shell Int Research | Preparing xanthomonas heteroplysaccharide |
| EP0195773B1 (en) * | 1984-09-19 | 1989-11-08 | The Secretary of State for Defence in Her Britannic Majesty's Government of the United Kingdom of Great Britain and | Continuous production of bacterial polysaccharide |
| US4868293A (en) * | 1985-08-06 | 1989-09-19 | Getty Scientific Development Company | Polysaccharide polymer made by xanthomonas |
| FR2616803B1 (fr) * | 1987-06-22 | 1989-11-17 | Mero Rousselot Satia | Procede d'obtention de xanthane par fermentation et xanthane obtenu |
| FR2624135B1 (fr) * | 1987-12-04 | 1990-04-13 | Rhone Poulenc Chimie | Procede de production de polysaccharides |
| CN117535202B (zh) * | 2023-12-21 | 2024-04-02 | 内蒙古工业大学 | 一株发酵产透明型黄原胶的野油菜黄单胞菌及其应用 |
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