JPS60237027A - 線維状赤血球凝集素の精製方法 - Google Patents

線維状赤血球凝集素の精製方法

Info

Publication number
JPS60237027A
JPS60237027A JP59091631A JP9163184A JPS60237027A JP S60237027 A JPS60237027 A JP S60237027A JP 59091631 A JP59091631 A JP 59091631A JP 9163184 A JP9163184 A JP 9163184A JP S60237027 A JPS60237027 A JP S60237027A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
gel
cellulose
specific conductivity
hemagglutinin
bordetella
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP59091631A
Other languages
English (en)
Other versions
JPS641447B2 (ja
Inventor
Akihiro Shironaga
明弘 銀永
Susumu Sakuma
晋 作間
Tsukasa Nishihara
司 西原
Tomitaka Tashiro
田代 臣孝
Sadao Shin
進 貞夫
Hiroshi Mizogami
寛 溝上
Tetsuo Kawahara
川原 哲夫
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken
Original Assignee
Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken filed Critical Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken
Priority to JP59091631A priority Critical patent/JPS60237027A/ja
Priority to US06/722,381 priority patent/US4563303A/en
Priority to AU41223/85A priority patent/AU571078B2/en
Priority to CA000479022A priority patent/CA1237998A/en
Priority to KR1019850002492A priority patent/KR890001927B1/ko
Priority to EP85104545A priority patent/EP0159003B1/en
Priority to DE8585104545T priority patent/DE3576173D1/de
Priority to AT85104545T priority patent/ATE50600T1/de
Publication of JPS60237027A publication Critical patent/JPS60237027A/ja
Publication of JPS641447B2 publication Critical patent/JPS641447B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、ボルデテラ属菌が産生する線維状赤血球凝集
素(Filamentous Hemagglul、1
nin; )J、下F −1−I Aと略称する)の精
製方法、さらに詳しくは、ボルデテラ属菌培養物を、セ
ルロース硫酸エステルのゲルに接触せしめ、F −1−
I Aを吸着させた後、ゲルから溶出することにより高
純度F−HAを採取する方法に関する。
産業上の19−用功1f ボルデテラ属に属する微生物としては、百日咳菌、パラ
百1]咳菌、気管支敗血症菌等があり、これらは種々の
生物学的活性物質を産生する。F−IIAはこれらの生
物学的活性物質の中の1つであり、ボルデテラ属に属す
る菌は、いずれもド−HAを産生する。
最近になって百日咳菌F −1−I Aが、百日咳菌の
感染および発病の防御において、きわめて重要なる役割
を演じていることが明らかにされ、百日咳菌感染防御抗
原として注目されるようになった[Sal、o、 ’l
’ら; Tnfecl、、TIIIIITIIII、 
、31 + 122:’l−1231(1!H日)、お
よびSe+n1nars 1nInrec1.1ous
 l’)iseases IV、 Bacl、eria
lVaccine、 、38fl=385(1982)
l。またさらに、各ボルデテラ属菌のl’ −HAが免
疫学的に同一であることが確認され(Arai、 Hら
;Infect、Im+nun、 、32. (1)、
 243−25f’)(1り 8 ])] 、@F’−
HAがボルデテラ属菌に共通のワクチンコンポーネント
となり得る可能性も示されている。 このようなことが
ら、医療−に有効な生物学的活性物質であるF −HA
を簡単にかつ大量に単離精製する方法の開発か望まれて
いる。
W木技術 従来知られているF −1−I Aの採取精製法として
は、石1]咳菌培養−上清を硫安分画し、蔗糖密度勾配
遠心にかけ、さらにゲルろ過を2回くり返し百日咳菌F
 −1−I Aを得る方法かある1sa1.o、Yら;
T+汀eCt、Lu+u+n、、’J、8 i’l l
(1974,)]。 しかしながらこの方法は、工程が
多く複雑であり、しかもF −HAの収率が低い等の欠
点があ1)、工業的な精製法としては採用し難い。
また同様に百日咳菌F −HAを精製した例として、イ
オン交換クロマ)・グラフィー、ゲルろ過による方法[
Arai、IIら; Tnfect、Tmmun、 、
 25、4.60(1979)]があるが、この方法に
よれば、F −1−I Aの収率が低いうえに、百日咳
菌内毒素の除去か゛困難であり、実用には供し難い。
さらに別の例として、ハイドロキシアパタイト吸着クロ
マトグラフィー、ハブトグロビアン・ア3− フィニティクロマ)・グラフィー、硫安分画、ゲルろ過
を組合わせる方法(Cou+elL 、J、 L、ら;
Spminars in I nfecl、1ous 
Diseases IV+r3ac1.erial V
accine、、 27.1 (川382)lおよびハ
イドロキシアパタイト1汲着クロマトグラフィー、特異
抗体・アフィニティクロマi・グラフィー。
蔗糖密度勾配超遠心分離を糾合わせる方法[流用ら;[
1本細菌学雑誌、38,423(1983)1かあるが
、これらの方法は工程が非常に長く複雑であるうえに、
F−11Aの収率が低く、さらにハイドロキシアパタイ
トは高価であり、また−に記において用いられているア
フィニティクロマトグラフィデルは市販されでおらず、
これらの調製は非常に手間がかかるうえに、原料材が非
常に高価である。このような種々の欠点のため、L配力
法もF IIAの工業的で安価な採取方法とはなり得な
い。
発明−の−目的 本発明考らは、F −II Aの工業的な単離精製法を
見い出すべく、種々検討を重ねた結果、ボルデ4− テラ属菌培養物を、セルロース硫酸エステルのゲルに接
触せしめ、F−HAを吸着させ、夾雑物質と分離し、ゲ
ルから溶出することにより、高純度のF−HA7!If
%わめて簡酢にしがも非常に高い収率で得られることを
発見し、本発明を完成するに至った。
すなわも本発明の目的は、医療−1−非常に有用な生物
学的活性物質であるF IIAを、工業的に簡単でかつ
大計に、きわめて高純度にまで精製する方法を提供する
ことにある。
発−吸@構露扛側■釆 本発明は、ボルデテラ属菌培養物を、セルロース硫酸エ
ステルのゲルに接触せしめ、F −HAを吸着させた後
、ゲルから溶出することを特徴とするF−I−IAの精
製方法である。 本発明において、出発材料であるボル
デテラ属菌培養物とは、百日咳菌、パラ百日咳菌、気管
支敗血症菌の培養物を含む。本発明において好ましい培
養物は、百日咳菌培養物であり、百日咳菌を通常の培地
、たとえばコーエン・ウィラー培地や、ステナー・ショ
ルテ培地などの液状培地にて、常法により静置培養また
は振盪培養らしくは通気撹拌培養して得られる培養物で
ある。この培養物は、遠心分離により菌体を除去した培
養−に清、あるいは菌体破壊物遠心−L清、あるいはこ
れらの部分精製標品の形で本発明方法に供される。本発
明方法によれば、塩析。
抽出、超遠心分離等の前段部分精製処理をあえて行なう
必要はなく、培養上清等をそのままセルロース硫酸工人
チルゲル1汲着クロマトグラフィーに付すことがでト、
工程が鰺わめで筒!iiである。
本発明で用いられるセルロース硫酸エステルとは、セル
ロースを硫酸エステル化して得られるのであるが、好ま
しくは結晶セルロースあるいは、結晶領域お]:び非結
晶領域からなるセルロースを硫酸エステル化したものが
良い。この場合、得られたセルロース硫酸エステルは原
料の形状を保持し、水性媒質に不溶性であi)、物理的
安定性にすぐれ、クロマトグラフィー用ゲルとして好適
である。これらの原料セルロース類はすでに市販されて
おり例えば、アビセル(旭化成工業拐製)、セルロファ
インC責C−15、同GH−25、同GC−1(1(1
、同GC−2を目)(チッソ社製)などかある。これら
のデルを例えばピリジ゛ンなどの有機溶媒の存在下クロ
ルスルホン酸、無水硫酸などを作用させることによi)
所望のセルロース硫酸エステのゲルが得られる。
本発明において、セルロース硫酸エステルゲルを用いて
、ボルデテラ属菌培養物中のF −HAを精製採取する
1こあたっては、次のよらな方法で行なわれる。
セルロース硫酸エステルゲルは、あらかしめ例えば0.
2 M塩化すトリウム添力旧)、f’)1Mリン酸緩衝
液等の、中性付近の1泪値(1]H6−9)でお1)、
比電導度5−25 tos/cIIl程度の適当な緩衝
液を用いて平衡化を行なった後に、F HAの@着操作
に供する。
セルロース硫酸エステルデルへのF−IIi”、、の吸
着、ゲルの洗浄、F −HAの溶出等一連の精製操 (
作は、バッチ法およびカラム法等の工業的に通常よく用
いられる操作方法で行な)。バッチ法で行7− なう場合は、ボルデテラ属菌培養物中にセルロース硫酸
エステルゲルを投入し、p H6、(’1−・9.()
程度の範囲において()・〜3o’C程度の温度にて1
()〜60分程度緩く撹拌してF −HAを吸着させる
。この際、ボルデテラ属菌培養物の比電導度が5.0〜
25.0 +ns/ cm程度となるように、適宜濃縮
または希釈して吸着操作に付す。
吸着終了後、培養物−ゲル混合液をろ過器−1−に充填
し、吸引ろ過してゲルと口数を分離する。分離したゲル
を、比電導度5〜25m5/cm程度で、1))]が5
.0〜10.0程度である適当な緩衝液例えば、(’1
.2 M塩化ナトリ・クム添加11 、 f’12 M
マッキntヘン(Mc I 1vaine’s)緩衝液
、(’l、 3M塩化ナトリウム添力旧1 、f’l 
I Mリン酸緩衝液ある(・は0゜3M塩化ナトリウム
添加0,0]M)リス塩酸緩衝液等を注ぎ吸引して洗浄
する。
この後1.Hが5.0〜] (1、l)程度で、比電導
度が25− ] 3 (’l +ns/ cm程度であ
る(l記洗浄用緩衝液の比電導度より太)適当な緩衝液
、例えば1.5M塩化ナトリウム添加マツキルベン緩衝
液、8− 1.5M塩化ナトリウム添加リン酸緩衝液等を注ぎ、吸
着しているP −HAを溶出する。
カラム法にて本発明方法を実施する場合は原材料液、洗
浄用緩衝液、溶出用緩衝液の条件はバッチ法の場合と同
様でよく、これらの通液速度は、] f)+nl/c+
n2/ I−(r−51) (’hl/cm2/I−(
r程度に調整して行なうとよい。
本発明の精製法によれば、百日咳菌培養物中のF HA
の特異的吸着能にすぐれ、P HAの精製度は数十倍に
達し、しかもF HAの回収率は9()%以上100%
近くに達する。得られる精製F IIAの比活性は4〜
8X1(141−(Aユニット/111g蛋白質とトわ
めて高く、ポリアクリルアミドディスク電気泳動(pH
4、5)分析において草−のバンドを形成し、百日咳菌
内毒素がほぼ完全に除去される。
」二連のとおり本発明の方法によれば、出発材料の百日
咳菌培養物から所望のF −1(Aを高収率、高純度に
採取することができ、その操作もきわめて簡itで、ま
たその精製用クロマトグラフィー吸着体は、安価に調製
でト、しかもくり返し使用しても劣化が全く無く、きわ
めて経済的にすぐれている。
したがって、本発明方法は高純度F −HAの工業的精
製法としてきわめてすぐれた方法である。
また本発明の方法は従来の技術である蔗糖密度勾配超遠
心分離法、あるいはイオン交換クロマトグラフィー法等
と組合わせることも可能であり、その際は従来方法で得
られる結果に比して非常にすぐれた結果を得ることがで
外る。
本発明の方法で得られるP −HAは高純度で他の蛋白
質、脂質、糖類等を含まず、また内毒素もほぼ完全に除
去されているため、その生物学的活性を利用した各種試
薬、医薬品の調製、さらに百日咳菌ワクチンの調製に有
用である。
へ例 以下、調製例、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に
説明する。
調製例1 0℃以下の温度にてピリジン600m、(7にクロルス
ルホン酸117gを滴下し、混合する。滴下終了後、混
液を加熱し、65〜70℃に昇温する。
この中にセルロファインGC−15(チッソ社製)80
gを加え、撹拌下65〜70℃にて3時間反応させる。
反応終了後、冷却し、10%水酸化ナトリウム水溶液を
加えて中和する。ゲルを濾過分離し、+1.(11Mリ
ン酸緩衝食塩液で充分に洗浄してセルロース硫酸エステ
ルゲルを得る。
調製例2 0°C以下の温度にてピリジン6 f’l (1+nθ
 にクロルスルホン酸117gを滴下し、混合する。滴
下終了後、混液を加熱し、65〜7()℃に昇温する。
この中に結晶セルロースであるクロマトグラフィー用ア
ビセル(無化成工業社製)8(’1gを加え、撹拌下6
5〜7 (’) ’Cにて4時間保持する。反応終了後
、冷却し、10%水酸化す) IJウム水溶液を加えて
中和する。ゲルを濾過分離し、Oo(11Mリン酸緩衝
食塩液で充分に洗浄してセルロース硫酸エステルゲルを
得る。
調製例3 11− 0〜5℃の温度にてピリジン500J にクロルスルホ
ン酸82gを滴下し、混合する。滴下終了後、混液を加
熱し、65〜70℃に昇温する。
この中にセルロファインGH−25(チッソ社製)80
gを加え、撹拌下65〜70℃にて4時間反応させる。
反応終了後、冷却し、10%水酸化ナトリウム水溶液を
徐々に加えて中和する。デルを濾過分離し、Q 、(’
、11 M IJン酸緩衝食塩液(pH7゜2)で充分
に洗浄してセルロース硫酸エステルデルを得る。
実施例1 前記調製例1と同様にして調製したセルロファインGC
−15の硫酸エステル化物をカラム(16mmφX 1
00 n+m)に充填し、これに0.2 M塩化す) 
IJウム添加0.OIMIJン酸緩衝液(ρ1−18.
O1比電導度約17 、5 ms/cm)を通液して平
衡化する。このカラムに百日咳■相菌東浜株ファーメン
ター培養」二清800m1を希釈して、比電導度的1 
?、 5 ms/Cm 、pH8,0に合わせた液を通
液する。通液後、上記緩衝液にて洗浄し、夾−】2− 雑物質を洗い出す。ついで、1.5M塩化ナトリウム添
加リン酸緩衝液(pH7,6)で溶出し、F−HAを含
む両分30m1を得る。
培養上清液および、素通り画分、精製F−HA画分の分
析結果を第1表に記す。
F −HAの回収率は93.8%で、精製度(精製F−
HA画分の比活性/培養上清の比活性)は34倍に達し
た。精製F −HA画分のL P F −HA活性は、
ハブ) ELISA法[佐藤ら、第28回毒素シンポジ
ウム予稿集141(1,981)]による分析で1.O
ELIS八ユニへ)/ml以下であった。
第 1 表 1)F−HA血球凝集試験[5ato、 Y、eL a
l、Infect。
Immun、、 7,929−999(1973)12
)キルゾール法蛋白窒素測定値X6.25により蛋白質
含量として表示 3)HA価/蛋白質含量 4)5)6.25μg蛋白質/1n1の含量に希釈後、
生物学的製剤基準(薬発287号、1981)に準じて
実施した。
実施例2 調製例2と同様にして得られたアビセルの硫酸エステル
化物をカラム(12+omφ×10IIII11)に充
填し、これに0.14M塩化ナトリウム添加O0()1
M リン酸緩衝液(1)H8、O)を通液して平衡化す
る。このカラムに、百日咳I相菌東浜株静置培養上清4
0(’1mlを、比電導度的1 (ln+s/cmに希
釈し、pH8,0に合わせた液を通液する。通液終了後
、」二記緩衝液で洗浄し、ついで、1.5M塩化ナトリ
ウム添加リン酸緩衝液(pH7,6)で溶出して精製P
−HA含有画分15艶1を得る。
培養上清液お上び、素通り画分、精製F−HA画分の分
析結果を第2表に記す。
F−HAの回収率は75%で、精製度は18倍に達した
で 15− 17− 16− 実施例3 調製例3と同様にして得られたセルロファインGH−2
5の硫酸エステル化物をカラム(16n+mφX]OO
m+n)に充填し、これに0.2M塩化ナトリウム添加
0.OIM リン酸緩衝液(pH8,0)を通液し平衡
化する。このカラムに実施例1で用いたものと同一ロッ
トの百日咳■相菌東浜株ファーメンター培養」二清80
0+olを希釈して比電導度的17 、5 ms/cm
、およびr+Hを8.0に調整した液を通液する。通液
終了後、上記緩衝液にて洗浄し、夾雑物質を洗い出す。
ついで1.5M塩化ナトリウム添加リン酸緩衝液(pH
7,6)で溶出し、F−HAを含む画分30IIllを
得る。
培養上清液および、素通り画分、精製F−HA画分の分
析結果を第3表に記す。
F−HAの回収率は93.8%で、精製度は30倍に達
した。
本精製品を用いて生物学的製剤基準[百日ぜきワクチン
](薬発第287号、1981を参照)に準じ、マウス
体重減少試験、マウス白血球増加試験、易熱性毒素否定
試験およびマウスヒスタミン増感試験を実施したか、い
ずれも、生理食塩水を接種した対照群と同等であり、副
作用は認められなかった。
第 3 表 J)、、?)、 3)、4)、5)第1表に同じ特許出
願人 財団法人化学友血清療法研究所代理 人 弁理士
前出 葆はか1名 19− 20−

Claims (7)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)ボルデテラ属菌が産生する線維状赤面味?疑集素
    を精製取得するに際し、該線維状赤血球凝集素含有液を
    、セルロース硫酸エステルのゲルに接触せしめ、線維状
    赤血球凝集素を吸着させた後、吸着した線維状赤血球凝
    集素をゲルから溶出することを特徴とする線維状赤血球
    凝集素の精製方法。
  2. (2) セルロース硫酸エステルが結晶セルロース主た
    は結晶領域および非結晶領域からなるセルロースの硫酸
    エステルである前記第(1)項記載の方法。
  3. (3) 該セルロー又硫酸エステルのゲルな、pH6,
    9−9,(1、比電導度5.0−25.Oms/c箱の
    緩衝液であらかじめ処理して平衡化したのち吸着処理に
    付す、前記第(1)または(2)項の方法。
  4. (4)該吸着処理を、pH6,0〜8.1’)、温度(
    1−3(1’C1比電導度5.0−25.(1+ns/
    cmの条件下に行なう前記第(1)〜(3)項の0ずれ
    か1つの方法。
  5. (5)線維状赤血球凝集素のゲルからの溶出を、pH5
    ,0〜10.0、比電導度25.0〜130m5/c+
    11の緩衝液を用いて行なう前記第(1)〜(4)項の
    いずれか1つの方法。
  6. (6)該溶出処理に先だって、@着ゲルを、pH5、(
    1−1(1,(1、比電導度5.(’1−25,01l
    ls/etaの緩衝液で洗浄する前記第(5)項の方法
  7. (7)該線維状赤血球凝集素含有液が百日咳菌培養物で
    ある前記第(1)〜(6)項のいずれか1つの方法。
JP59091631A 1984-04-14 1984-05-07 線維状赤血球凝集素の精製方法 Granted JPS60237027A (ja)

Priority Applications (8)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP59091631A JPS60237027A (ja) 1984-05-07 1984-05-07 線維状赤血球凝集素の精製方法
US06/722,381 US4563303A (en) 1984-04-14 1985-04-12 Method for purification of filamentous hemagglutinin
AU41223/85A AU571078B2 (en) 1984-04-14 1985-04-12 Purification of filamentous hemagglutinin
CA000479022A CA1237998A (en) 1984-04-14 1985-04-12 Method for purification of filamentous hemagglutinin
KR1019850002492A KR890001927B1 (ko) 1984-04-14 1985-04-13 섬유질 헤마글루티닌의 정제방법
EP85104545A EP0159003B1 (en) 1984-04-14 1985-04-15 Method for purification of filamentous hemagglutinin
DE8585104545T DE3576173D1 (de) 1984-04-14 1985-04-15 Verfahren zur reinigung von faserartigem haemoglobin.
AT85104545T ATE50600T1 (de) 1984-04-14 1985-04-15 Verfahren zur reinigung von faserartigem haemoglobin.

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP59091631A JPS60237027A (ja) 1984-05-07 1984-05-07 線維状赤血球凝集素の精製方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS60237027A true JPS60237027A (ja) 1985-11-25
JPS641447B2 JPS641447B2 (ja) 1989-01-11

Family

ID=14031889

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP59091631A Granted JPS60237027A (ja) 1984-04-14 1984-05-07 線維状赤血球凝集素の精製方法

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS60237027A (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62258326A (ja) * 1986-04-16 1987-11-10 パスツール メリウー セロム エ ヴアクサン ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法
US4849358A (en) * 1987-04-24 1989-07-18 The Research Foundation For Microbial Diseases Of Osaka University Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62258326A (ja) * 1986-04-16 1987-11-10 パスツール メリウー セロム エ ヴアクサン ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法
US4849358A (en) * 1987-04-24 1989-07-18 The Research Foundation For Microbial Diseases Of Osaka University Method for culturing bordetella pertussis, a pertussis toxoid and a pertussis vaccine

Also Published As

Publication number Publication date
JPS641447B2 (ja) 1989-01-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4997915A (en) Purification of pertussis toxins
EP0159003B1 (en) Method for purification of filamentous hemagglutinin
US4704274A (en) Method for the purification of LPF-HA
JPH05506649A (ja) 百日咳菌外膜蛋白質の精製方法
JP2538224B2 (ja) 百日咳抗原の精製
EP0175841B1 (en) Method for the production of pertussis component vaccine and combined vaccine of pertussis antigen; diphtheria toxoid and tetanus toxoid
JPS60237027A (ja) 線維状赤血球凝集素の精製方法
JPH03169893A (ja) 精製方法
JPS6154450A (ja) 群特異性を有するアフイニテイクロマトグラフイ用ゲルおよびその製造法
EP0170162B1 (en) Method for the purification of leukocytosis-promoting factor haemagglutinin
SU433688A3 (ru) Способ получения стимулятора интерферопа
JPS60226822A (ja) 線維状赤血球凝集素の精製方法
JPS641445B2 (ja)
JPS6241691B2 (ja)
CN105175517A (zh) 一种百日咳抗原的分离纯化方法
JPS6241692B2 (ja)
JPS6153224A (ja) Lpf−haの精製方法
JPH08176199A (ja) アフィニティークロマトグラフィーを用いたヒルジンの精製法
US3650903A (en) Method of production of fibrinolytic material
CA2224052C (en) Pertussis outer membrane protein
JP4706093B2 (ja) パルボウイルスの除去方法及び精製方法
DE3726879A1 (de) Verfahren zur herstellung von rekombinanten vakzinen gegen hepatitis b
JPS63502718A (ja) エルウィニア カロトヴォラからのl−アスパラギナ−ゼの製造方法
JPS6363391A (ja) 生理活性物質の製造方法
DK144179B (da) Fremgangsmaade til udvinding af streptokokstofskifteprodukter

Legal Events

Date Code Title Description
EXPY Cancellation because of completion of term